PL248549B1 - Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie - Google Patents

Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie

Info

Publication number
PL248549B1
PL248549B1 PL441220A PL44122022A PL248549B1 PL 248549 B1 PL248549 B1 PL 248549B1 PL 441220 A PL441220 A PL 441220A PL 44122022 A PL44122022 A PL 44122022A PL 248549 B1 PL248549 B1 PL 248549B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
bone
cleaned
fragments
pressure
rinsed
Prior art date
Application number
PL441220A
Other languages
English (en)
Other versions
PL441220A1 (pl
Inventor
Fabian KĘPSKI
Fabian Kępski
Henryk BURSIG
Henryk Bursig
Michał Ligocki
Original Assignee
Henryk Bursig
Kepski Fabian
Ligocki Michal
Regionalne Centrum Krwiodawstwa I Krwiolecznictwa W Katowicach
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Henryk Bursig, Kepski Fabian, Ligocki Michal, Regionalne Centrum Krwiodawstwa I Krwiolecznictwa W Katowicach filed Critical Henryk Bursig
Priority to PL441220A priority Critical patent/PL248549B1/pl
Publication of PL441220A1 publication Critical patent/PL441220A1/pl
Publication of PL248549B1 publication Critical patent/PL248549B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/32Bones; Osteocytes; Osteoblasts; Tendons; Tenocytes; Teeth; Odontoblasts; Cartilage; Chondrocytes; Synovial membrane
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/58Materials at least partially resorbable by the body
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/02Prostheses implantable into the body
    • A61F2/28Bones
    • A61F2002/2835Bone graft implants for filling a bony defect or an endoprosthesis cavity, e.g. by synthetic material or biological material

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia jest sposób otrzymywania przeszczepu przestrzennego o zdefiniowanym kształcie charakteryzujący się tym, że po etapie oczyszczania mechanicznego kości zbitej, gąbczastej lub zbito-gąbczastej, korzystnie pochodzenia ludzkiego z tkanek miękkich, dzielenia kości na fragmenty, myje się i odtłuszcza się kości w H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> o stężeniu od 1% do 40% przy pomocy ultradźwięków o częstotliwości od 20 do 1000 kHz, a następnie pakuje się przeszczep oraz sterylizuje radiacyjnie dawką 10 — 50 kGy. Przedmiotem zgłoszenia jest także przeszczep przestrzenny o zdefiniowanym kształcie.

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie oraz przeszczep kostny przestrzenny.
Rozwiązania według wynalazku znajdują zastosowanie w klinice człowieka np. ortopedii, stomatologii, chirurgii onkologicznej do wypełniania ubytków kostnych - cyst, nowotworów, przetok, a także w zabiegach endoprotezoplastyki stawu biodrowego.
Współczesna ortopedia odczuwa brak wystarczającej ilości dostępnych allogenicznych przeszczepów tkanki kostnej gąbczastej. Pobranie tkanki własnej chorego nie zawsze jest możliwe (np. u dzieci), a u dorosłych występuje konieczność pobrania podczas tej samej operacji i przeszczepienia jej, co wydłuża czas zabiegu oraz zwiększa ryzyko np. zakażenia ze względu na dwa pola operacyjne (miejsce pobrania i przeszczepienia).
Obecnie niewystarczająca liczba dawców tkanek ludzkich powoduje, że dostępne przeszczepy tkanki kostnej gąbczastej nie są w stanie zabezpieczyć wszystkich potencjalnych odbiorców, stąd poszukiwanie metod wytwarzania materiałów kościozastępczych lub stosowania przeszczepów ksenogenicznych od zwierząt, bądź pozyskiwania materiału tkankowego od chorego - przeszczepy autologiczne (bardzo często brak możliwości pobrania).
Żaden z tych materiałów i substytutów syntetycznych lub ksenoprzeszczepów nie jest jednak tak efektywny w działaniu jak natywna kość ludzka.
Tkanka kostna to rodzaj tkanki łącznej zbudowanej z komórek - osteoblastów, osteocytów, osteoklastów, które stanowią ok. 5% masy tkanki kostnej oraz istoty międzykomórkowej składającej się z części organicznej tzw. osteoidu ok. 25% i części nieorganicznej, która stanowi 60% - 70% całej masy tkanki kostnej. Osteoid w skład którego wchodzi kolagen, osteonektyna, osteokalcyna, proteoglikany i mukopolisacharydy, nadaje tkance kostnej sprężystość i wytrzymałość, natomiast składniki nieorganiczne, którymi są sole wapnia, magnezu i fosforu, odpowiedzialne są za jej twardość. Tkanka kostna ma charakterystyczną organizację przestrzenną tworząc kość.
Wyróżnia się tkankę kostną zbitą, która znajduje się w zewnętrznej części kości oraz tkankę kostną gąbczastą. Najwięcej tkanki kostnej gąbczastej, występuje przy nasadach kości długich.
Istnieje bogata literatura fachowa na temat transplantacji tkanek (np. Stacchi Cl i in.: Fresh Frozen Allogeneic Bone Block in Maxillary Sinus Floor Elevation: Histomorphometric Analysis of a Bone Specimen Retrieved 15 Years after Grafting Procedure, Appl. Sci. 2019, 9, 1119; doi:10.3390/app9061119; Schlee M. i Rothamel D. Ridge Augmentation Using Customized Allogenic Bone Blocks: Proof of Concept and Histological Findings. Implant Dentistry Volume 0 # Number 0). Publikacje te skupiają się na samym procesie transplantacji i wymogów dla tkanek do przeszczepu.
Literatura patentowa na temat przeszczepiania tkanek kostnych również jest bardzo bogata. Wśród tej literatury szczególną uwagę zwraca opis europejskiego zgłoszenia patentowego EP1929862. W opisie tym przy pozyskiwaniu allogenicznych przeszczepów kostnych wykorzystuje się ultradźwiękowe oczyszczanie z wykorzystaniem 3% nadtlenku wodoru o odpowiedniej temperaturze w myjce ultradźwiękowej. Jednak, jak w większości opisów, nie stosuje się sterylizacji radiacyjnej, jako skomplikowanej, wymagającej specjalistycznego sprzętu i wątpliwości co do skuteczności sterylizacji w stosunku do uszkodzeń pobranej tkanki.
Sposób otrzymywania przeszczepu przestrzennego o zdefiniowanym kształcie według wynalazku, w którym kość zbitą, gąbczastą lub zbito-gąbczastą oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych. Następnie z takiej kości przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm. Przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany kształt - blaszki, bloki lub kształtki „U”, „L”, „I”. Tak przygotowane fragmenty płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane przestrzenne fragmenty kostne, w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia, umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej H2O2 o stężeniu od 1% do 40% i podgrzanej w zakresie 30°C do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy pomocy ultradźwięków o częstotliwości od 20 do 1 000 kHz. Następnie wyłącza się ultradźwięki i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie fragmenty zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz. Po tym oczyszczone przestrzenne fragmenty kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Później odsącza się na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Tak przygotowane przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 10-50 kGy i przechowuje w temperaturze poniżej - 60°C do 5 lat.
Korzystnie sposób otrzymywania przeszczepu przestrzennego o zdefiniowanym kształcie, w którym kość zbitą, gąbczastą lub zbito-gąbczastą oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych, a następnie z takiej kości przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm; przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany kształt - blaszki, bloki lub kształtki „U”, „L”, „I”. Tak przygotowane fragmenty płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane przestrzenne fragmenty kostne, w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia, umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej H2O2 o stężeniu od 1% do 40% i podgrzanej w zakresie 30°C do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy pomocy ultradźwięków o częstotliwości od 20 do 1 000 kHz. Dalej wyłącza się ultradźwięki i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie fragmenty zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz. Po czym oczyszczone przestrzenne fragmenty kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Potem odsącza się na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Tak przygotowane - przeszczepy mrozi się i poddaje liofilizacji przez okres 48-72 godz. w temp. -47 do -55°C i próżni od 0,016 do 0,090 mBar pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 10-50 kGy i przechowuje w temperaturze pokojowej.
Pojęcie kształtu ‘blaszka’ jest równoważne z ICCBBAT1732 Bone Strip.
Poniższe przykłady wykonania nie zawężają szukanej ochrony patentowej.
Przykład 1
Kość udową, kość piszczelową, kość strzałkową, kość ramienną, łokciową, promieniową, kość czaszki, kość piętową, kość biodrową lub talerz biodrowy pochodzący ze zwłok oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych. Następnie z odpowiednio wybranych części wyżej wymienionych tkanek przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm. Przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany kształt np. „U”, „L” lub „I”. Tak przygotowane kształtki zbudowane z kości gąbczastej, zbitej lub zbito-gąbczastej płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane kształtki kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej 1200 ml 3% H2O2 podgrzanej w zakresie 30°C do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy 40 kHz. Po tym czasie wyłącza się ultradźwięki i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie kształtki zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 28°C na okres od 24 do 36 godz. Po upływie tego czasu oczyszczone kształtki kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Następnie odsącza się kształtki kostne na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Tak przygotowane kształtki - przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy i przechowuje w temperaturze poniżej - 60°C do 5 lat.
P rz y kła d 2
Kość udową, kość piszczelową, kość strzałkową, kość ramienną, łokciową, promieniową, kość czaszki, kość piętową, kość biodrową lub talerz biodrowy pochodzący ze zwłok oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych. Następnie z odpowiednio wybranych części wyżej wymienionych tkanek przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm. Przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany blok kostny z tkanki kostnej zbitej, zbito-gąbczastej i gąbczastej. Tak przygotowane bloki kostne zbudowane z kości gąbczastej, zbitej lub zbito- gąbczastej płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane bloki kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej 1200 ml 3% H2O2 podgrzanej w zakresie 30°C do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy 40 kHz. Po tym czasie wyłącza się ultradźwięki i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie kształtki zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz. Po upływie tego czasu oczyszczone bloki kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Następnie odsącza się bloki kostne na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Tak przygotowane bloki - przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy i przechowuje w temperaturze poniżej - 60°C do 5 lat.
Przykład 3
Kość udową, kość piszczelową, kość strzałkową, kość ramienną, łokciową, promieniową, kość czaszki, kość piętową, kość biodrową lub talerz biodrowy pochodzący ze zwłok oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych. Następnie z odpowiednio wybranych części wyżej wymienionych tkanek przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm. Przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany kształt np. „U”, „L” lub „I”. Tak przygotowane kształtki zbudowane z kości gąbczastej, zbitej lub zbito-gąbczastej płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane kształtki kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej 1200 ml 3% H2O2 podgrzanej do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy 40 kHz. Po tym czasie wyłącza się ultradźwięki, i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie kształtki zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz. Po upływie tego czasu oczyszczone kształtki kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Następnie odsącza się kształtki kostne na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Zamrożone przeszczepy liofilizuje się przez okres od 48 do 72 h przy temperaturze -47°C do -55°C przy próżni 0,016 do 0,090 mBara. Po liofilizacji przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy. Tak przygotowane kształtki przeszczepy przechowuje się w temperaturze 16°C do 30°C do 18 miesięcy.
P rz y kła d 4
Kość udową, kość piszczelową, kość strzałkową, kość ramienną, łokciową, promieniową, kość czaszki, kość piętową, kość biodrową lub talerz biodrowy pochodzący ze zwłok oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych. Następnie z odpowiednio wybranych części wyżej wymienionych tkanek przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm. Przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany blok kostny z tkanki kostnej zbitej, zbito-gąbczastej i gąbczastej. Tak przygotowane bloki kostne zbudowane z kości gąbczastej, zbitej lub zbito-gąbczastej płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane bloki kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej 1200 ml 3% H2O2 podgrzanej do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy 40 kHz. Po tym czasie wyłącza się ultradźwięki, i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie bloki kostne zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz. Po upływie tego czasu oczyszczone bloki kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Następnie odsącza się bloki kostne na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Zamrożone przeszczepy liofilizuje się przez okres od 48 do 72 h przy temperaturze -47°C do -55°C przy próżni 0,016 do 0,090 mBara. Po liofilizacji przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy. Tak przygotowane bloki - przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy i przechowuje w temperaturze 16°C do 30°C do 18 miesięcy.
P rz y kła d 5
Tkankę kostną pochodzącą ze zwłok oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych. Następnie z odpowiednio wybranych fragmentów kostnych przycina się za pomocą obrabiarki typu CNC fragmenty o długości od 5 do 500 mm, szerokości od 5 do 200 mm i wysokości od 5 do 200 mm. Przy użyciu narzędzi tnących-skrawających obrabiarki CNC uzyskuje się pożądany kształt np. „U”, „L” lub „I”. Tak przygotowane kształtki zbudowane z kości gąbczastej, zbitej lub zbito-gąbczastej płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Wstępnie wypłukane bloki kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej 1200 ml 3% H2O2 podgrzanej do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy 40 kHz. Po tym czasie wyłącza się ultradźwięki, i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa. Następnie bloki kostne zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz. Po upływie tego czasu oczyszczone bloki kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment. Następnie odsącza się bloki kostne na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich. Zamrożone przeszczepy liofilizuje się przez okres od 48 do 72 h przy temperaturze -47°C do -55°C przy próżni 0,016 do 0,090 mBara. Po liofilizacji przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy. Tak przygotowane bloki - przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 35 kGy i przechowuje w temperaturze 16°C do 30°C do 18 miesięcy.
Przedmiot wynalazku rozwiązuje problem dopasowania przeszczepu do łoża kostnego biorcy. Przeszczepy przygotowywane tradycyjnymi metodami nie zawsze są dopasowane w taki sposób, aby możliwa była szybka regeneracji i przebudowa tkanki kostnej. Często lekarz-operator musi ręcznie na bloku operacyjnym dopasowywać przeszczep do ubytku kostnego, co naraża chorego na dłuższy pobyt na sali operacyjnej i dłuższy powrót do zdrowia.
Stosowane obecnie metody czyszczenia i odtłuszczania przeszczepów nie uwzględniają wykorzystania zjawiska kawitacji przy oczyszczaniu i odtłuszczaniu. Przedmiot wynalazku jest doczyszczany i myty przy użyciu myjki ultradźwiękowej, która wypełniona jest 3% nadtlenkiem wodoru (wodą utlenioną).
Woda utleniona rozkłada się przy kontakcie ze szpikiem kostnym, degraduje ona lipidy budujące otoczki komórek, czyli błony komórkowe. Kiedy komórka zostaje uszkodzona, na zewnątrz uwalniany jest ich skład, czyli m.in. katalaza, która następnie reaguje z nadtlenkiem wodoru gwałtownie wydzielając tlen, a towarzyszy temu silne spienianie. 3% H2O2 pozwala na wyczyszczenie i oddzielenie ukrytych zanieczyszczeń oraz mikroorganizmów z struktury tkanki kostnej.
Połączeniu procesu fizycznego, zjawiska kawitacji jakim jest - proces mycia ultradźwiękowego z właściwościami 3% H2O2 powoduje precyzyjne oczyszczenie i odtłuszczenie pozostawiając jedynie natywna tkankę kostną, pozbawioną zanieczyszczeń tkanek miękkich, krwi, szpiku kostnego i itp. a wraz ze sterylizacją radiacyjną pozwala na przygotowanie sterylnego przeszczepu dopasowanego do ubytku tkanki u biorcy. Co ma znaczący wpływ na przebudowę przeszczepu w organizmie biorcy.

Claims (3)

1. Sposób otrzymywania przeszczepu przestrzennego o zdefiniowanym kształcie, w którym kość zbitą, gąbczastą lub zbito-gąbczastą oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych, a następnie z takiej kości przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm; przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany kształt - blaszki, bloki lub kształtki „U”, „L”, „I”; tak przygotowane fragmenty płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa, a wstępnie wypłukane przestrzenne fragmenty kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłuszczenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej H2O2 o stężeniu od 1% do 40% i podgrzanej w zakresie 30°C do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy pomocy ultradźwięków o częstotliwości od 20 do 1 000 kHz; po czym wyłącza się ultradźwięki i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa; następnie fragmenty zalewa się 3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz.; następnie oczyszczone przestrzenne fragmenty kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment; następnie odsącza się na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich; tak przygotowane - przeszczepy pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 10-50 kGy i przechowuje w temperaturze poniżej - 60°C.
2. Sposób otrzymywania przeszczepu przestrzennego o zdefiniowanym kształcie wg zastrzeżenia 1, w którym kość zbitą, gąbczastą lub zbito-gąbczastą oczyszcza się z tkanek miękkich przy użyciu narzędzi chirurgicznych, a następnie z takiej kości przycina się za pomocą piły mechanicznej fragmenty o długości od 10 do 30 mm, szerokości od 1 do 20 mm i wysokości od 10 do 20 mm; przy użyciu narzędzi tnących-skrawających uzyskuje się pożądany kształt blaszki, bloki lub kształtki „U”, „L”, „I”; tak przygotowane fragmenty płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa, a wstępnie wypłukane przestrzenne fragmenty kostne w celu końcowego efektywnego mycia i odtłusz czenia umieszcza się w myjce ultradźwiękowej zalanej H2O2 o stężeniu od 1% do 40% i podgrzanej w zakresie 30°C do 40°C i oczyszcza się od 20-30 min przy pomocy ultradźwięków o częstotliwości od 20 do 1 000 kHz; po czym wyłącza się ultradźwięki i ponownie płucze się wodą w pojemniku z sitem przy użyciu myjki wysokociśnieniowej ciśnieniem od 5 do 11 MPa; następnie fragmenty zalewa się
3% H2O2 i pozostawia w temperaturze 2-8°C na okres od 24 do 36 godz.; następnie oczyszczone przestrzenne fragmenty kostne zalewa się 0,9% NaCl w ilości 100 ml na 15 minut na każdy fragment; następnie odsącza się na papierze bezpyłowym i doczyszcza z pozostałych tkanek miękkich; tak przygotowane - przeszczepy mrozi się i poddaje liofilizacji przez okres 48-72 godz. w temp. -47 do -55°C i próżni od 0,016 do 0,090 mBar pakuje się w szczelne pojemniki, zgrzewa, etykietuje i sterylizuje radiacyjnie w dawce 10-50 kGy i przechowuje w temperaturze pokojowej.
PL441220A 2022-05-18 2022-05-18 Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie PL248549B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL441220A PL248549B1 (pl) 2022-05-18 2022-05-18 Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL441220A PL248549B1 (pl) 2022-05-18 2022-05-18 Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL441220A1 PL441220A1 (pl) 2023-11-20
PL248549B1 true PL248549B1 (pl) 2025-12-22

Family

ID=88838726

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL441220A PL248549B1 (pl) 2022-05-18 2022-05-18 Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL248549B1 (pl)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5797871A (en) * 1994-08-19 1998-08-25 Lifenet Research Foundation Ultrasonic cleaning of allograft bone
EP1929862A1 (en) * 2002-08-23 2008-06-11 Musculoskeletal Transplant Foundation Allograft tissue purification process for cleaning bone
PL232494B1 (pl) * 2015-12-14 2019-06-28 Henryk Bursig Sposób otrzymywania przeszczepu gruzu korowo-gąbczastego do regeneracji tkanki kostnej, oraz przeszczep do tej regeneracji
PL232501B1 (pl) * 2015-12-14 2019-06-28 Henryk Bursig Sposób otrzymywania przeszczepu do regeneracji tkanki kostnej, zwłaszcza ludzkiej oraz przeszczep do regeneracji tkanki kostnej, zwłaszcza ludzkiej

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5797871A (en) * 1994-08-19 1998-08-25 Lifenet Research Foundation Ultrasonic cleaning of allograft bone
EP1929862A1 (en) * 2002-08-23 2008-06-11 Musculoskeletal Transplant Foundation Allograft tissue purification process for cleaning bone
PL232494B1 (pl) * 2015-12-14 2019-06-28 Henryk Bursig Sposób otrzymywania przeszczepu gruzu korowo-gąbczastego do regeneracji tkanki kostnej, oraz przeszczep do tej regeneracji
PL232501B1 (pl) * 2015-12-14 2019-06-28 Henryk Bursig Sposób otrzymywania przeszczepu do regeneracji tkanki kostnej, zwłaszcza ludzkiej oraz przeszczep do regeneracji tkanki kostnej, zwłaszcza ludzkiej

Also Published As

Publication number Publication date
PL441220A1 (pl) 2023-11-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100978562B1 (ko) 스폰지형 골 이식재 및 이를 제조하는 방법
Katthagen Bone regeneration with bone substitutes: an animal study
Dallari et al. In vivo study on the healing of bone defects treated with bone marrow stromal cells, platelet‐rich plasma, and freeze‐dried bone allografts, alone and in combination
US4654464A (en) Bone substitute material on the base of natural bones
RU2665962C1 (ru) Биорезорбируемый биологический матрикс для замещения дефектов костной ткани и способ его получения
PT95955B (pt) Processo de fabrico de um material para osteoplastia a partir de tecido osseo natural
JPS6238169A (ja) 骨移植材料
KR101163594B1 (ko) 치아 골 이식재 제조방법 및 그로 인해 제조된 골 이식재
CN105311681A (zh) 一种可注射的骨修复用复合材料及其制备方法
JP2013500823A (ja) 歯槽骨移植材の加工方法及びそれによる歯槽骨移植材、並びに上記歯槽骨移植材を利用した治療方法{alveolarbonegraftprocessingmethodandalveolarbonegrafttherefromandmethodfortreatmentusingalveolarbonegraft}
Masaoka et al. Bone defect regeneration by a combination of a β-tricalcium phosphate scaffold and bone marrow stromal cells in a non-human primate model
CN114209883A (zh) 一种异种骨修复材料的制备方法
RU2721604C1 (ru) Способ получения остеопластических биоматериалов из костной ткани
CN110279892B (zh) 一种骨修复材料及其制备方法和应用
CN116328039A (zh) 一种可调控炎症代谢的特定矿化度天然骨修复材料及其制备方法和应用
CN108273135B (zh) 一种骨软骨缺损修复材料及其制备方法
JPH08276003A (ja) 硬組織修復材料および埋入型医療用具
Emami et al. Decellularizing bone tissue: various protocols
PL248549B1 (pl) Sposób otrzymywania przestrzennego przeszczepu kostnego o zdefiniowanym kształcie
KR101175051B1 (ko) 치아 블록골 이식재 및 그 제조방법
CN118105545A (zh) 一种天然生物骨材料及其制备方法
CN105854082A (zh) 一种半月板支架及其制备方法
RU2343934C1 (ru) Способ получения костного аллоимплантата с высокими механическими свойствами
Verburg et al. The healing of biologic and synthetic bone implants: An Experimental Study
Lee et al. Biomechanics of bone grafts and bone substitutes