PL248751B1 - Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) - Google Patents
Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.)Info
- Publication number
- PL248751B1 PL248751B1 PL450067A PL45006724A PL248751B1 PL 248751 B1 PL248751 B1 PL 248751B1 PL 450067 A PL450067 A PL 450067A PL 45006724 A PL45006724 A PL 45006724A PL 248751 B1 PL248751 B1 PL 248751B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- avena
- pair
- resistance gene
- sterilis
- rust resistance
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
- C12Q1/6895—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/13—Plant traits
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Przedmiot zgłoszenia stanowi para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa o sekwencjach nr 1 i 2 przedstawionych na liście sekwencji. Przedmiotem zgłoszenia jest ponadto sposób identyfikacji allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa, w którym polimorficzny fragment DNA sprzężony z badanym genem amplifikowany jest w reakcji PCR z zastosowaniem pary starterów, po czym dokonuje się detekcji produktu amplifikacji, a parę starterów stanowi para oligonukleotydów o sekwencjach nr 1 i 2 przedstawionych na liście sekwencji, przy czym stosuje się marker 496_C.
Description
Opis wynalazku
Przedmiot wynalazku stanowi para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa.
Znaczenie gospodarcze owsa (Avena sativa L.), szczególnie jako zboża przeznaczonego do konsumpcji przez człowieka, a nie na cele paszowe, w ostatnich latach rośnie, z uwagi na doceniane przez konsumentów walory prozdrowotne. Polska jako czwarty z największych światowych producentów każdego roku wprowadza na rynek nowe, coraz lepiej plonujące odmiany. Niestety są to odmiany o niskiej odporności na choroby grzybowe. Choroby wywoływane przez patogeny grzybowe takie jak mączniak prawdziwy, rdza koronowa czy rdza źdźbłowa pojawiają się rokrocznie i są jednym z głównych czynników biotycznych ograniczających plonowanie. Chorobą grzybową będącą przyczyną znaczących strat w plonach, z uwagi na obniżenie intensywności fotosyntezy w zainfekowanych tkankach, jest rdza koronowa powodowana przez grzyb Puccinia coronata Cda. f. sp. avenae P. Syd. & Syd. Jak stwierdzono w przeprowadzonych badaniach wszystkie polskie odmiany owsa są wysoce podatne na rdzę koronową (Sowa, S., Paczos-Grzęda, E., 2020, A study of crown rust resistance in historical and modern oat culitivars representing 120 years of Polish oat breeding. Euphytica 216, 1-10; Koroluk A, Paczos-Grzęda E., Sowa S., Bączkowska M., Toporowska J. 2022, Diversity of Polish oat cultivars with a glance at breeding history and perspectives. Agronomy-Basel Vol 12 (10)2423). Najlepszym sposobem poprawy zdrowotności odmian jest wprowadzanie genetycznie uwarunkowanej odporności, w postaci genów głównych R. Jednym z takich genów odporności jest Pc101 wprowadzony do owsa zwyczajnego z dzikiego gatunku Avena sterilis (genotyp PI 334961) poprzez krzyżowanie z odmianą Avena sativa ‘Harmon’. W potomstwie uzyskanych mieszańców wyselekcjonowano linie homozygotyczne zarówno pod względem alleli genu Pc101, jak i większości pozostałych genów w roślinie. Z uwagi na wysoką skuteczność gen Pc101 może być z powodzeniem wykorzystywany w hodowli odpornościowej owsa, stanowiąc obiecujący pod względem efektywności i trwałości samodzielny gen odporności, jak również komponent piramid genowych w nowych odmianach (Paczos-Grzęda, E., Róg, S., Koroluk, A., Okoń, S., Ostrowska, A., Ociepa, T., Erdzik, R. Chrząstek, M., Kowalczyk, K., 2014. Virulence structure of Puccinia coronata f. sp. avenae in Central and South Eastern Poland 2020; Paczos-Grzęda, E., Sowa, S., 2019. Virulence structure und diversity of Puccinia coronata f. sp. avenae P. syd. & syd in Poland during 2013 to 2015. Plant Dis. 103. 1559-1564; Sowa, S., Paczos-Grzęda, E., 2017. Puccinia coronata f. sp. avenae virulence in south-eastern Poland in 2014. Folia Pomer. Univ. Technol. Stetin., Agric., Aliment. Pisc., Zootech. 336:43, 157-166; Sowa, S., Paczos-Grzęda, E., 2021. Virulence structure of Puccinia coronata f. sp. avenae and effectiveness of Pc resistance genes in Poland during 2017-2019. Phytopathology Vol. 111, No. 7 s. 1158-1165). Aby usprawnić, ułatwić i przyśpieszyć proces wprowadzania nowych genów głównych do materiałów hodowlanych zalecane jest wykorzystywanie markerów molekularnych. Bazujące na metodzie PCR markery DNA wykorzystywane są we współczesnej hodowli wspomaganej markerami. Markery stanowią szczególnie użyteczne narzędzie w hodowli odpornościowej gdyż umożliwiają pewną i szybką identyfikację form zawierających określone kombinacje alleli genów na wczesnych etapach rozwoju rośliny w bardzo krótkim czasie. Testy molekularne zastępują pracochłonne i wymagające specjalistycznej wiedzy testy fizjologiczne.
Celem wynalazku było znalezienie takiej pary oligonukleotydów, która umożliwiłaby identyfikację allelu dominującego genu Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa zarówno w stadium siewki, jak i rośliny dorosłej.
Przedmiot wynalazku stanowi para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961, w roślinach owsa o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Sposób identyfikacji allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa, w którym to sposobie polimorficzny fragment DNA sprzężony z badanym genem amplifikowany jest w reakcji PCR z zastosowaniem pary starterów, po czym dokonuje się detekcji produktu amplifikacji, charakteryzuje się tym, że parę starterów stanowi para oligonukleotydów o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, przy czym stosuje się marker 496_C, przedstawiony na Fig. 1-3, o długości 127 pz związany z obecnością w roślinach owsa allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 (sekwencja nr 3).
Fig. 1 przedstawia produkty PCR uzyskane w wyniku amplifikacji DNA roślin pokolenia F2 populacji 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’ x (Avena sativa Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] i 851 [Avena sativa ‘Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] po włączeniu do reakcji pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Numery 1-24 - rośliny populacji 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’x (Avena sativa Harmon' x Avena sterilis PI 334961)] opisane pod względem fenotypu: numery 1-10 - homozygoty odporne; numery 11-20 homozygoty wrażliwe na porażenie; numery 21-24 - heterozygoty; numery 25-46 - rośliny populacji 851 [Avena sativa ‘Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] opisane pod względem fenotypu: numery 25-34 - homozygoty odporne; numery 35-44 - homozygoty wrażliwe na porażenie: numery 45-46 - heterozygoty; P1 - linia Pc101 Avena sativa ’Harmon’x Avena sterilis PI 334961, P2 - Avena sativa ‘Kasztan’ - formy rodzicielskie badanych populacji; M - marker wielkości GeneRulerTM 50 bp DNA Ladder.
Fig. 2 przedstawia produkty PCR uzyskane w wyniku amplifikacji DNA roślin pokolenia F2 populacji 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] po włączeniu do reakcji pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Numery 1-48 - rośliny populacji 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] opisane pod względem fenotypu: numery 1-20 - homozygoty odporne; numery 21-40 homozygoty wrażliwe na porażenie: numery 41-48 - heterozygoty; M - marker wielkości GeneRulerTM 50 bp DNA Ladder.
Fig. 3 przedstawia produkty PCR uzyskane w wyniku amplifikacji DNA roślin pokolenia F2 populacji 851 [Avena sativa ‘Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] po włączeniu do reakcji pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Numery 1-48 - rośliny populacji 851 - Avena sativa ‘Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961) opisane pod względem fenotypu: numery 1-20 - homozygoty odporne; numery 21-40 - homozygoty wrażliwe na porażenie: numery 41-48 - heterozygoty; M - marker wielkości GeneRulerTM 50 bp DNA Ladder.
W pierwszym etapie wytworzono 2 populacje mieszańcowe 848 [Avena sativa Kasztan 1’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] i 851 [Avena sativa Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)], w których dawcą genu odporności na rdzę koronową owsa jest linia zawierająca gen Pc101, będąca formą mieszańcową Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961. Następnie za pomocą testu fizjologicznego prowadzonego na 300 liniach pokolenia F3 zidentyfikowano rośliny homozygotyczne, dominujące - odporne; rośliny heterozygotyczne - segregujące pod względem odporności na rdzę koronową oraz rośliny homozygotyczne, recesywne - wrażliwe na porażenie w stosunku ilościowym 1:2:1 odpowiadającym dziedziczeniu monogenicznemu. Po wyizolowaniu DNA z roślin o przeciwstawnych fenotypach (odpornych/porażonych) oraz heterozygot poddano je komercyjnej analizie polimorfizmu DArTseq (Diversity Array Technologies Ltd. Canberra, Australia) polegającej na sekwencjonowaniu zredukowanej reprezentacji genomu. Wyniki uzyskano w postaci macierzy binarnych dla 90 roślin. Po przyporządkowaniu segregacji fenotypów do segregacji markerów DArTseq zidentyfikowano sekwencje DArTseq, które po zlokalizowaniu na genomie odmiany owsa zwyczajnego Sang (https://wheat.pw.usda.gov/blast/; Kamal, N., Tsardakas-Renhuldt, N., Bentzer. J. et al. 2022. The mosaic oat genome gives insights into a uniquely healthy cereal crop. Nature 606, 113-119) wydłużono na końcach 5’ oraz 3’ i stały się one podstawą do zaprojektowania odpowiednich par starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
Z udziałem oligonukleotydowych starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, uzyskano dominujący marker 496_C (Fig. 1-3), który w prosty i szybki sposób identyfikuje rośliny owsa posiadające allel recesywny genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzący z Avena sterilis PI 334961. Marker 496_C w oparciu o wyniki analizy segregacji produktu 496_C o długości 127 pz, wykazywał sprzężenie genetyczne z locus genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961, ma charakter specyficzny, bazuje na reakcji PCR oraz generuje łatwe w interpretacji i powtarzalne wyniki umożliwiając jego zastosowanie w selekcji wspomaganej markerami.
Przeprowadzone badania markera 496_C wykazały, że jest on znacznikiem allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961 w owsie zwyczajnym.
Zastosowanie markera 496_C może być przydatne do identyfikacji genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961 obecnego w materiałach hodowlanych owsa. Podstawową zaletą opracowanego systemu identyfikacji jest możliwość określenia w bardzo krótkim czasie genotypu rośliny już w stadium kilkudniowej siewki, niezależność od warunków środowiska oraz fazy rozwojowej
PL 248751 Β1 rośliny, a także niezależność od obecności bądź braku porażenia określonym izolatem Puccinia coronata f. sp. avenae.
Sposób identyfikacji markera 496_C
Materiał:
DNA izolowane z liści owsa przy wykorzystaniu komercyjnie dostępnych zestawów.
Skład mieszaniny w reakcji PCR (Polymerase Chain rection):
| DNA | 10 - 50 ng |
| 2x PCR Master Mix (Thermo Fishcr Scientific) | lx |
| Starter 496 F7 (sekwencja nr I) | OJ -0.5 μΜ |
| Starter 496 R2C (sekwencja nr 2) | OJ -0,5 μΜ’ |
| h2o | W zależności od objętości końcowej mieszaniny PCR |
Sekwencje starterów:
Sekwencja nr 1: 496_F7 5’ GACTCGAAGAAGTAAACTGAAGTC 3'
Sekwencja nr 2: 496_R2C 5’ AGGTCGCCGCCTTCATCG 3'
Startery projektowano przy użyciu programu Primer 3.0.
Warunki amplifikacji DNA
Reakcję PCR przeprowadzono w termocyklerach: SimpliAmp (Applied Biosystems) lub ProFlex (Applied Biosystems)
Profil termiczny reakcji PCR: 94°C - 4 min., 37 cykli (94°C-30 s., 58°C-30 s., 72°C-45 s), 72°C-7 min.
Identyfikacja markera 496_C:
Elektroforeza w 1,5% żelu agarozowym zawierającym 0,5 pg/ml bromku etydyny w buforze TBE (pH 8,0) przy napięciu 100V przez 2 godziny. Jako wzorzec długości fragmentów DNA użyto GeneRuler™ 50 bp plus DNA Ladder (ThermoFisher Scientific, USA). Wizualizacji markera dokonano wykorzystując system Uvidoc HD6 (Uvitec, Cambridge, UK).
Wyniki:
Testowanie markera 496_C na osobnikach populacji 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’ x (Avena sativa 'Harmon’ Avena sterilis PI 334961)] i 851 [Avena sativa ‘Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] wykazało wysoką zgodność segregacji z allelem recesywnym odporności na rdzę koronową owsa. Spośród 300 testowanych roślin reprezentujących populacje 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] i 851 [Avena sativa ‘Kasztan 2’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)], wybrano losowo 142 rośliny oraz formy rodzicielskie: ‘Bingo’, ‘Kasztan’ i Pc101 Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961). Na 142 testowane rośliny 98% zostało właściwie zakwalifikowanych. Spośród 142 testowanych roślin 72 pochodziły z populacji 848 [Avena sativa ‘Kasztan 1’ x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] i stwierdzono w nich 2,78% niedopasowań genotypu z fenotypem (Fig. 1, Fig. 2). 70 spośród 142 testowanych roślin pochodziło z populacji 851 [Avena sativa 'Kasztan 2' x (Avena sativa ‘Harmon’ x Avena sterilis PI 334961)] i stwierdzono w nich 1,43% niedopasowań fenotypu z markerem (Fig. 1, Fig. 3). Obecność allelu recesywnego stwierdzono w linii Pc101 (P1 - Avena sativa ‘Harmon’ z Avena sterilis PI 334961), zaś w formie rodzicielskiej Kasztan (P2) nie stwierdzono obecności tego amplikonu. Na elektroforegramach (Fig. 1-3) przedstawiono amplifikowane fragmenty DNA po włączeniu do analizy pary starterów nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, świadczące o obecności w badanych genotypach allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961.
Claims (3)
- Zastrzeżenia patentowe1. Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa zwyczajnego o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji.
- 2. Sposób identyfikacji allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 z Avena sterilis PI 334961 w roślinach owsa zwyczajnego, w którym to sposobie polimorficzny fragment DNA sprzężony z badanym genem amplifikowany jest w reakcji PCR z zastosowaniem pary starterów, po czym dokonuje się detekcji produktu amplifikacji, znamienny tym, że parę starterów stanowi para oligonukleotydowych starterów o sekwencjach nr 1 i 2, przedstawionych na liście sekwencji, przy czym stosuje się marker 496_C, przedstawiony na Fig. 1-3.
- 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że w wyniku reakcji PCR amplifikowany jest fragment DNA o długości 127 par zasad o sekwencji nr 3, przedstawionej na liście sekwencji.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL450067A PL248751B1 (pl) | 2024-10-17 | 2024-10-17 | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL450067A PL248751B1 (pl) | 2024-10-17 | 2024-10-17 | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL450067A1 PL450067A1 (pl) | 2025-08-04 |
| PL248751B1 true PL248751B1 (pl) | 2026-01-26 |
Family
ID=96584840
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL450067A PL248751B1 (pl) | 2024-10-17 | 2024-10-17 | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL248751B1 (pl) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL422536A1 (pl) * | 2017-08-11 | 2019-02-25 | Uniwersytet Przyrodniczy W Lublinie | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu Pc39 odporności na rdzę koronową w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
| PL438756A1 (pl) * | 2021-08-16 | 2023-02-20 | Uniwersytet Przyrodniczy W Lublinie | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa 'Pendek' x Avena sterilis CW-486 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
| PL440934A1 (pl) * | 2022-04-13 | 2023-10-16 | Uniwersytet Przyrodniczy W Lublinie | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Arena satmi L.) |
-
2024
- 2024-10-17 PL PL450067A patent/PL248751B1/pl unknown
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PL422536A1 (pl) * | 2017-08-11 | 2019-02-25 | Uniwersytet Przyrodniczy W Lublinie | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu Pc39 odporności na rdzę koronową w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
| PL438756A1 (pl) * | 2021-08-16 | 2023-02-20 | Uniwersytet Przyrodniczy W Lublinie | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa 'Pendek' x Avena sterilis CW-486 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) |
| PL440934A1 (pl) * | 2022-04-13 | 2023-10-16 | Uniwersytet Przyrodniczy W Lublinie | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Arena satmi L.) |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| PARK RF AT AL.: "Theor Appl Genet. 2022 Nov;135(11):3709-3734. doi: 10.1007/s00122-022-04121-z. Epub 2022 Jun 4", BREEDING OAT FOR RESISTANCE TO THE CROWN RUST PATHOGEN PUCCINIA CORONATA F. SP. AVENAE: ACHIEVEMENTS AND PROSPECTS * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL450067A1 (pl) | 2025-08-04 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US20230366039A1 (en) | Genetic markers for myb28 | |
| US10337072B2 (en) | Copy number detection and methods | |
| PL233477B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu Pc39 odporności na rdzę koronową w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL245140B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL245142B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL243633B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej Avena sativa ‚Pendek’ x Avena sterilis CW-486 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL233478B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc39 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| US20160355838A1 (en) | Anaerobic germination-tolerant plants and related materials and methods | |
| RU2717017C2 (ru) | Молекулярные маркеры гена rlm2 резистентности к черной ножке brassica napus и способы их применения | |
| PL233476B1 (pl) | Dwie pary oligonukleotydowych starterów do wykrywania obecności alleli dominującego lub recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc39 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.), kombinacja dwóch par starterów oraz sposób wykrywania układu alleli genu Pc39 | |
| EP1466973A1 (en) | Characteristic base sequences occurring in plant genes and method of utilizing the same | |
| JP4775945B2 (ja) | Ｐｂ１遺伝子と連鎖する分子マーカーを指標にイネの穂いもち抵抗性を識別する方法 | |
| RU2718584C2 (ru) | Молекулярные маркеры гена rlm4 резистентности к черной ножке brassica napus и способы их применения | |
| PL248751B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL244887B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową z sublinii formy mieszańcowej A. sterilis PI 296244 x A. sativa TAM-O-312 w roślinach owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL248753B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| Al-Doss et al. | Impact of'Cre'and peroxidase genes of selected new wheat lines on cereal cyst nematode ('Heterodera Avenae'Woll) resistance | |
| PL248752B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL248718B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL248969B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL249317B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL248719B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu recesywnego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| PL248720B1 (pl) | Para oligonukleotydowych starterów do wykrywania oraz sposób wykrywania allelu dominującego genu odporności na rdzę koronową Pc101 pochodzącego z Avena sterilis PI 334961 w genomie owsa zwyczajnego (Avena sativa L.) | |
| BR112021012597A2 (pt) | Métodos e composições para selecionar e/ou prever plantas de algodão resistentes à resistência ao fusarium race-4 em algodão | |
| KR102680459B1 (ko) | 개선된 내병성을 갖는 토마토 식물 |