RO127467A2 - Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene - Google Patents

Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene Download PDF

Info

Publication number
RO127467A2
RO127467A2 ROA201001159A RO201001159A RO127467A2 RO 127467 A2 RO127467 A2 RO 127467A2 RO A201001159 A ROA201001159 A RO A201001159A RO 201001159 A RO201001159 A RO 201001159A RO 127467 A2 RO127467 A2 RO 127467A2
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
strain
production
brevibacillus laterosporus
laterosporus
phytopathogenic fungi
Prior art date
Application number
ROA201001159A
Other languages
English (en)
Other versions
RO127467B1 (ro
Inventor
Florin Oancea
Florica Constantinescu
Sicuia Oana
Sorina Dinu
Original Assignee
Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor filed Critical Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority to ROA201001159A priority Critical patent/RO127467B1/ro
Publication of RO127467A2 publication Critical patent/RO127467A2/ro
Publication of RO127467B1 publication Critical patent/RO127467B1/ro

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Prezenta invenţie se referă la o tulpină 56.1s de, număr depozit DSMZ 23663, destinată utilizării în exploataţiile agricole conservative, care este antagonistă faţă de ciupercile fitopatogene de sol, şi care prezintă o capacitate ridicată de colonizare a materialului vegetal şi a ţesuturilor vegetale, datorită producerii de amilază şi lactonază AHL, a mobilităţii de migrare şi agregare, şi a formării de biofilme, şi asigură creşterea nivelului producţiilor de porumb în sistemele de agricultură conservativă pe bază de mulci bioactiv, în condiţiile reducerii costurilor de producţie aferente erbicidării şi arăturii.

Description

TULPINA DE BREVIBACILUS LATEROSPORUS ANTAGONISTA
FATA DE CIUPERCI FITOPATOGENE
Prezenta invenție se referă la o tulpină nouă de Brevibacilus laterosporus (număr depozit DSM 23663), care prezintă, concomitent, antagonism față de ciupercile fitopatogene din sol și capacitate ridicată de colonizare a materialului vegetal și a țesuturilor plantelor, și care este destinată utilizării în exploatațiile agricole conservative, inclusiv în cele care utilizează muici format din culturi verzi de protecție.
Sunt cunoscute o serie întreagă de tulpini de bacterii gram-pozitive sporulate, aparținând speciei Brevibacillus laterosporus și destinate utilizării în practică. Brevetul WO 2008/03887 descrie o tulpină de Brevibacillus laterosporus, UNISS18, nepatogenă pentru om, depozitată cu numărul 41419 la NCIMB, care este prezintă activitate insecticidă pentru dipterele care sunt vectori ai unor boli umane (Musca domestica, Culex quinquefasciatus, Anopheles maculipennis, Aedes aegypti). Tulpina este destinată combaterii biologice a acestor diptere prin aplicare în diferite tipuri de formulări. Brevetul SUA 5055293 se referă la tulpina P5 de Brevibacillus laterosporus (nr de depozit ATCC 53694), care este patogenă pentru de o serie întreagă de lepidoptere dăunătoare culturilor agricole, și în special față viermele vestic al porumbului (Diabrotica virgifera virgifera). Tulpina P5 se aplică ca tratament la sol sau al seminței pentru limitarea populațiilor lepidopterelor dăunătoare față de care este activă.
Nu s-au descris până în prezent tulpini de Brevibacillus laterosporus care să aibă, concomitent, activitate de antagonism față de agenții fitopatogeni din sol și capacitate de colonizare a materialului vegetal și a țesuturilor plantelor. Astfel de tulpini sunt necesare sistemelor de agricultură conservativă. In cadrul acestor sisteme lucrările mecanice ale solului sunt reduse, iar solul este acoperit cu cel puțin 30% resturi vegetale. Sistemele de agricultură conservativă reduc eroziunea solului, și poluarea apelor, de suprafață și din pânza freatică, dar au dezavantajul că mențin solul rece, reducând germinația și dezvoltarea plantelor cultivate, și favorizând dezvoltarea agenților de dăunare, în special ciuperci fitopatogene din sol cu spectru larg de acțiune.
In cadrul acestor sisteme de agricultură conservativă tulpinile de Brevibacillus laterosporus, care prezintă atât activitate de antagonism față de agenții fitopatogeni din sol cât și capacitate de colonizare a materialului vegetal și a țesuturilor plantelor, ar contribui la înlăturarea dezavantajului menționat mai sus, pentru că ar inhiba agenți fitopatogeni din sol, ar proteja plantele de cultură pe care le colonizează și ar asigura un management durabil al resturilor vegetale.
ΪΟΚίαΰΓ5?3ΤΑΤ PE&TRU INVENȚII Șl MĂRCI î Cerere de brevet de invenție
C^-2 Ο 1 Ο - Ο 1 1 59 - 2 k -11- 2910
Tulpina Brevibacillus laterosporus 56.1s (număr de depozit DSM 23654, DSMZ - Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen, Braunschweig, Germania) prezintă acțiune antifungică față de ciupercile fitopatogene din sol și capacitate de colonizare a materialului vegetal și a țesuturilor plantelor.
Tulpina Brevibacillus laterosporus 56.1s prezintă următoarele avantaje:
- creștere bogată pe mediile uzuale utilizate pentru creșterea bacililor gram pozitivi sporulați;
- formarea de spori cu viabilitate îndelungată;
- capacitate de a modula formarea consorțiilor microbiene de consens cu alte bacterii utilizate în biopreparate mixte datorită activității lactonazice prin care influențează semnalele AHL implicate în realizarea sensibilității de grup;
- acțiune împotriva atacului principalelor ciupercilor fitopatogene de sol;
- mobilitate ridicată, capacitate de a coloniza material vegetal și de a forma biofilme;
- capacitate de colonizare a țesuturilor plantelor în primele faze de vegetație și de protejare împotriva atacului unor agenți fitopatogeni.
Prezenta invenție se ilustrează cu exemplul prezent mai jos.
Exemplu. Tulpina 56.1s de Brevibacillus laterosporus a fost obținută la Institutul de Cercetare-Dezvoltare pentru Protecția Plantelor, București, dintr-o proba de sol provenit din Bărăganul de sud. Pentru izolarea bacteriei s-a utilizat agar nutritiv (peptona - 5g/l, extract de carne - 3g/l, agar - 20g/l, la 1000 ml apa; pH 6.8-7.2), iar pentru cultivare s-a utilizat mediul Luria-Bertani agarizat (LBA: bactotriptona - 10g/I, extract de drojdie - 5g/l, NaCI - 10g/I, agar - 20g/l, la 1000 ml apa; pH 7.5.), la o temperatura optima de incubare de 28°C.
Această tulpină a fost selectată dintr-o colecție de peste 50 izolate de bacili sporulanți gram-pozitivi, pe baza acțiunii antagoniste față de ciupercile fitopatogene de sol (Fusarium graminearum, Alternaria spp, Sclerotinia sclerotiorum, Rhizoctonia solani, Fusarium oxisporum f. sp. radicis-lycopersici, Sclerotium bataticola), producerii de amilază și lactonază AHL, mobilității de migrare / swimming și agregare / swarming, formării de biofilme in vitro, capacității de colonizare a materialului vegetal, activității de protecție a plantulelor de porumb față de atacul de Fusarium graminearum.
In vederea încadrării taxonomice, tulpina 56.1 s a fost caracterizată pe baza unei taxonomii polifazice, respectiv a combinării caracterelor morfologice (tabel 1), cu cele fiziologice (tabel 2) și cu cele moleculare (secvența 16S rADN, tab.3, profilului de acizi grași din lipidele membranare, tab. 4). Coroborând toate aceste
CC 2 Π 1 Ο - Ο 1. ί 5 9 - 2 ί| -Ί· 2010 date, tulpina 56.1s a fost încadrată ca aparținând speciei Brevibacillus laterosporus.
Tab. 1. Morfologia coloniilor de Brevibacillus laterosporus 56.1s pe diferite medii după cultivare timp de 24 ore.
Mediul utilizat Morfologia coloniilor tulpinii Usa2
culoare aspect exterior dimensiuni (24h)
Medii gelifiate semisintetice mediul cu decoct de cartof - glucoza agar (CGA) brune rugoase, margini neregulate sub forma de filamente colonii medii
mediu cu extract de carne (beef extract) crem rugoase, centrul proeminent, încrețit, margini neregulate colonii mari
mediul cu decoct de fasole crembrun rugoase, margini neregulate colonii medii
mediul cu extract de sol crembrun rugoase, margini neregulate colonii medii
Medii solide naturale felii de cartof sterile brun rugoase, margini neregulate, centru cu rugozități fine colonii mari
Medii lichide mediul cu decoct de cartof - glucoza - peliculă fină la suprafața, rugoasă, turbiditate slabă -
mediu cu extract de carne - peliculă fină la suprafață, rugoasă, turbiditate slabă -
Tab. 2. Caracteristicile fiziologice ale tulpinii 56.1s.
Testul biochimic 56.1s
Reacția Gram +
Reacția Voges-Proskauer ±
Hidroliza amidonului +
Hidroliza gelatinei +
Reducerea NO3->NO2 +
Creștere anaeroba -
Sursa de carbon: malonat +
citrat +
propionat -
tartrat +
trehaloza +
glucoza +
Acidifica: xiloza +
glucoza +
arabinoza ±
manitol +
rafinoza +
celobioza +
Toleranta la NaCI 7% +
^2010-01159-2 4 -11- 2010
Identificarea pe baza secvenței 16S rADN s-a realizat prin aplicarea unui protocol de lucru caracterizat prin următoarele etape: obținerea de culturi pure colonii izolate, tehnica însămânțării prin epuizarea ansei; extracția ADN-ului bacterian; electroforeză în gel pentru detectarea ADN-ului; amplificarea secvenței 16S rADN prin tehnica PCR și electroforeză în gel; purificarea ADN-ului ribozomal; amplificare enzimatică a acizilor nucleici înainte de secvențializare; precipitarea și uscarea ADN-ului codificând pentru 16sRNA. Secvențierea nucleotidică a fost realizată cu metoda Dye Terminator Cycle Sequencing (Perkin Elmer, 1998), folosind un secvențiator automat de tip ABI PRISM 310 (Perkin Elmer). Secvențele au fost analizate folosind programul CHROMAS 2.33 (Technelysium Pty Ltd). Compararea secvențelor 16S rADN obținute cu secvențele existente în Banca de gene NCBI (Național Center for Biotechnology Information), s-a realizat cu ajutorul programului BLAST (Basic Local Alignment Search Tool). Rezultatele sunt prezentate în tab. 3, ele dovedind o similaritate de 99,8% cu alte tulpini de Brevibacillus laterosporus.
Tab. 3. Identificarea tulpinii pe baza similarității secvenței 16 S rADN cu tulpinile din GenBank.
Tulpina Lungimea secvenței 16S ' rADN1 Compoziția nucleotidică a secvenței 16SrADN Identificarea tulpinii2
56.1 s 840 _ GACGAACGCT GGCGGCGTGCCTAATACATG AAGTCGAGCGAGGGTCTTC GGACCCTAGCGCGGACGGGGAGTAACACTAGGCAACCTGCCTG TNAGCTGGGATAACATAGGGAAACTTATGCTAATACCGGATAGG GTTTTGCTTCCTGAAGCGAAACGGAAA GATGGCGCAAGCTATCACTT ACAGATGGGC CTGCGGCGCA TAGCTAGTT GGTGAGGTAANGGCTCACCAAGGCGACGAT GCGTAGCCGA CCTGAGAGGG TGACCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTCGG GAGGCACAGTAGGGAATTTTCCACATGGACGAAATCTGATGGAG CAACGCCGCGTGAACGATGAAGGCTTTCGGTCGTAAAGTTCTGT TGTTGGGAAGAAAAGTGCTATTAAATAAGGTAGCACCTTGA CGGTACCTAACGAGAAAGCCACGGCTAACTACGTGCCAGCGCC GCGGTAATACGTAGGTGGCAAGCGTT GTCCGGAATT ATTGGGCGTAAAGCGCGCGC AGGTGGCTAT GTAAGTCTGA TGTTAAAGCCCGAGGCTCAACCTCGGTTCGCATTGGAAAC TGTGTAGCTT GAGTGCAGGA GAGGAAAGTG GTATTCCACGTGTAGCGGTG AAATGCGTAG AGATGTGGAG GAACACCAGT GGCGAAGGCG ACTTTCTGGC CTGTAACTGACACTGAGGCG CGAAAGCGTG GGGAGCAAAC AGGATTAGAT ACCCTGGTAG TCCACGCCGTAAACGATGAG TGCTAGGTGT TAGGGGTTTC AATACCCTTA GTGCCGCAGC TAACGCAATA Brevibacillus laterosporus NBRC 15654 - similaritate: 99,8%
1 - (perechi de baze - pb); 2 - pe baza similarității secvenței 16S rADN cu tulpinile din GenBank (nr. de referință - procentul de similaritate
Profilul acizilor grași membranari a fost determinat cu ajutorul unui sistem Sherlock® Microbial ID, prin folosirea procedurii Instant FAME™. Esterii acizilor grași din membrana bacteriană au fost separați pe un cromatograf de gaze GC 4
t\- 2 Ο 1 0 - Ο 1 1 5 9 - 2h -II- 2010
6890Ν (Agilent Technologies) echipat cu injector split/splitless clasic, coloana capilara tip Ultra 2 (cod Agilent 19091B-102, având lungimea de 25m, diametrul interior de 0,2mm, faza staționara 5% feriil metil siloxan, grosimea fazei staționare de 0,33 pm) și detector de ionizare în flacără (FID). Soiturile utilizate pentru achiziția si prelucrarea automata a datelor cromatografice au fost: GC ChemStation, versiunea B.01.03 [204] / 2005, și Sherlock Microbial Identification System, versiunea 6.1 / 2008. S-au folosit metode cromatografice dezvoltate si validate de producător (MIDI, Inc.), utilizând bibliotecile de profile de esteri metilici ai acizilor grași pentru microorganisme aerobe din mediu (RTSBA6, versiunea 6.0 / 2008). Ca material de referință s-a folosit un amestec etalon de esteri metilici ai acizilor grași cu catenă lineară cu număr de atomi de carbon in moleculă cuprins între 9 și 20 (etalonare cantitativă pentru metodele cromatografice Sherlock rapide și sensibile). Microorganismele de referință pentru verificarea protocoalelor microbiologice și chimice de procesare a probelor au fost Bacillus subtilis (tulpina ATCC 6633) și Stenotrophomonas maltophilia (tulpina ATCC 13637).
Tab. 4. Profilul acizilor grași din membrana tulpinii 56.1s.
Timp retenție Tip acid gras membranar Proporție (%)
1,8769 13:0 iso 0,98
1,9018 13:0 anteiso 0,40
2,1668 14:0 iso 3,27
2,2777 14:0 2,26
2,4762 15:0 iso 22,67
2,5055 15:0 anteiso 58,86
2,7257 16:1 w7c alcohol 0,39
2,7959 16:0 iso 2,26
2,8441 16:1 w11c 0,99
2,9135 16:0 1,98
2,9972 15:0 2OH 0,65
3,0475 17:1 iso w10c 0,56
3,1184 17:0 iso 1,53
3,1493 17:0 anteiso 2,88
3,4887 18:1 w9c 0,33
Activitatea antagonistă a tulpinii 56.1s față de diferite ciuperci fitopatogene, cum ar fi: Fusarium graminearum, Fusarium oxisporum radicis-lycopersici, Sclerotinia sclerotiorum, Sclerotium bataticola si Alternaria spp. s-a analizat in vitro prin utilizarea tehnicii culturilor duble sau prin înțeparea mediului cu biomasă bacteriană la maxim 2 cm de o rondea calibrată (5 mm) de miceliu. Culturile de ciuperci fitopatogene au fost împrospătate pe mediu CGA (cartof, dextroza, agar) și incubate la 28°C timp de 5 zile. Tulpina 56.1s a fost împrospătată pe mediu Luria-Bertani (LB) agarizat prin incubare la 28°C timp de 24 ore. Testarea activității antagoniste in vitro a fost efectuată pe mediul cu cartof glucoza agar
V ^-2 0 1 0 - 0 1 1 5 9 -2 4 -11- 20W (CGA). Plăcile Petri însămânțate cu microorganismele de testat au fost incubate la 28°C și analizate în ceea ce privește zona de inhibiție (mm) produsa de B.
laterosporus 56.1s, la 24, 48 și 72 ore. Experiența a fost repetată de trei ori.
Tab. 5. Testarea in vitro a activității antagoniste a tulpinii de Brevibacillus laterosporus 56.1s asupra creșterii miceliene a unor ciuperci fitopatogene (zona de inhibiție la 72 h, mm).
Ciuperca fitopatogena Zona de inhibiție (mm) indusă de tulpina 56.1s
Fusarium graminearum 5
Fusarium oxisporum f. sp. radicis lycopersici 5
Sclerotinia sclerotiorum 8
Sclerotium bataticola 2
Alternaria spp. 5
Rezultatele au demonstrat ca tulpina 56.1s produce metaboliți antifungici care au inhibat dezvoltarea ciupercilor luate in studiu. Cea mai mare zonă de inhibiție s-a înregistrat față de ciuperca S. sclerotiorum (8 mm) aceasta fiind urmata de Fusarium graminearum, F. oxisporum f. sp. radicis-lycopersici si Alternaria spp. (5 mm).
Tulpina 56.1s a fost analizată în ceea ce privește producerea de enzime care au un rol important în colonizarea materialului vegetal, în activitatea antagonistă și în modularea consorțiilor de consens formate de diferite tipuri de microorganisme.
Producerea de amilază s-a analizat prin însămânțarea sub forma de striu pe mediul nutrient agar (NA) + 0,4% amidon solubil. Plăcile au fost incubate la 28°C timp de 48 -72 ore, după care s-au tratat cu soluție de iod în iodură de potasiu prin inundare. Zonele clare din jurul creșterii bacteriene, după adăugarea soluției de iod, au indicat descompunerea amidonului din mediu și deci, producerea de amilază. Rezultatele au reflectat faptul ca tulpina 56.1s produce amilaza.
Producerea de lactonază (enzima implicată în quorum quencing, prin care se împiedică comunicarea dintre bacteriile dăunătoare care folosesc sistemul de quorum sensing de tip AHL) s-a analizat prin inocularea tulpinii 56.1s în 2 ml mediu lichid Luria Bertani în care s-a adăugat C6-hexanoil homoserin lactonă (C6-HHL) în concentrație finală de 5 μΜ urmata de incubarea peste noapte la 28°C și 150 rpm. Simultan, același mediu numai cu C6-HHL a fost utilizat ca martor negativ pentru a vedea daca mediul induce lactoliza. Testul a fost efectuat pe plăci Petri cu mediul LBA (Luria Bertani cu agar) suplimentat cu 50 pg/ml
Ofil O 1 o - o 115 9 - - ή -li- 2010 kanamicină și inoculat în plaja cu tulpina biosenzor de Chromobacterium violaceum CV026 prin distribuția sub formă de plaja unei cantități de 250 μΙ dintro cultură de 12 ore. Pe suprafața plăcii astfel inoculate au fost efectuate godeuri cu diametrul de 5 mm în care s-au distribuit 100 μΙ din supernatantul culturii 56.1s. Petriurile au fost incubate peste noapte la 28°C si apoi analizate pentru prezența halourilor violete. Absenta halourilor violete a indicat faptul ca tot C6-HHL din mediul de creștere a fost degradat. Rezultatele au evidențiat faptul că tulpina 56.1s a produs lactonază.
Tulpina 56.1s a fost testata în ceea ce privește mobilitatea de migrare la suprafața agarului (swimming) și de agregare (swarming). Ca martor a fost utilizată o tulpina martor, modificată genetic pentru a fi imobilă, P. putida PCL1760 (Validov, 2007). Pentru aceasta, tulpinile au fost împrospătate pe mediul LB suplimentat cu 1,8% agar si crescute peste noapte la 28°C. Petriuri cu 25 ml mediu LB suplimentat cu 0,3% agar, pentru swimming si cu 0,5% agar pentru swarming au fost preparate și lăsate să se usuce pentru 20-30 minute în hota cu flux laminar înainte de utilizare. Tulpinile s-au inoculat prin înțepare în centrul mediului cu betișoare sterile din lemn. După 18 ore incubare la 28°C plăcile s-au analizat în ceea ce privește mobilitatea. Rezultatele au evidențiat faptul că tulpina 56.1s a prezentat ambele tipuri de mobilitate.
Tulpina 56.1s a fost testate in vitro in ceea ce privește formarea biofilmului prin cultivarea in mediul CM (Fall et al., 2004) si mediul M63 (O'Toole et al., 1998). împreuna cu tulpina 56.1s au fost testate si doua tulpini martor, Pseudomonas fluorescens WCS 365 (Simons et al. 1996) considerata martor pozitiv si Bacillus subtilis B168 (Burkholder et al., 1947) cunoscuta ca fiind slaba producătoare de biofilm.
Testul a constat în împrospătarea celulelor pe mediul LB prin incubare la 28°C timp de 18 ore, după care 10 μΙ au fost utilizați pentru inocularea a 0,5 ml mediu CM si respectiv M63, distribuit in tuburi Eppendorf din polipropilenă. Tuburile astfel inoculate au fost incubate peste noapte la 37°C fără agitare. In scopul analizei fenotipice a biofilmului, după eliminarea mediului din tuburi si clătirea cu apa distilata sterila, celulele aderente au fost colorate cu 1% w/v cristal violet timp de 10-15 minute.
Formarea biofilmului, a fost cuantificată prin adiționarea a 2x 200 μΙ etanol 95% și spălarea celulelor aderente colorate cu cristal violet. Etanolul a fost apoi transferat intr-un tub Eppendorf de 1,5 ml si s-a ajustat volumul la 1 ml cu apa distilata sterila. Absorbanta s-a analizat la 540 nm cu ajutorul spectrofotometrului.
(1-2 Ο 1 Ο - Ο 1 1 59 - 2 h -11- 2010
Rezultatele, prezentate in tabelul 6, reflecta faptul ca tulpina 56.1s a format biofilm pe cele doua tipuri de medii testate. Pe ambele medii de creștere, analiza cantitativa a biofilmului a evidențiat diferența nesemnificativa dintre tulpina WCS365 si tulpina 56.1s. Pe mediul de creștere CM s-a observat o mai buna dezvoltare a biofilmului, pentru toate tulpinile studiate, comparative cu mediul M63.
Tab. 6. Cuantificarea biofilmului după 24 ore de creștere in condiții statice la 37°C a tulpinii 56.1s, pe mediile CM si M63.
Cod tulpina Absorbanta 540 nm - Creștere pe mediul CM Absorbanta 540 nm - Creștere pe mediul M63
56.1s 0,545 0,152
WCS365 0,612 0,206
B168 0,336 0,096
Formarea biofilmului este o caracteristica importanta a microorganismelor benefice, acest mecanism fiind direct implicat în protecția plantelor prin colonizarea substratului de creștere și competiția pentru nișa.
Tulpina 56.1s a fost analizata in ceea ce privește inocuitatea pe larve de Galleria mellonella in conformitate cu protocolul descris de Seed et al. in 2008. Pentru aceasta, tulpina 56.1s de Brevibacillus laterosporus a fost cultivata pe mediul LB la 28°C cu agitare la 150 rpm timp de 48 ore, după care a fost centrifugata la 4000 rpm iar sedimentul a fost resuspendat in 10mM MgSO4 suplimentat cu 1,2 mg/ml ampicilina. Concentrația inocului utilizat pentru tratarea larvelor a fost masurata cu spectrofotometrul la OD 600 (cunoscându-se ca OD600=1 reprezintă 108 ufc/ml) si este indicata in tabelul 7.
Tab.7. Valoarea densității optice la OD600nm a inoculului de 56.1s utilizat in testul de inocuitate.
Cod tulpina Valoarea citirii la OD 600nm
Inocul nediluat 101 ufc/mL'1 102 ufc/mL'1 103 ufc/mL'1 104 ufc/mL'1 105 ufc/mL'1 106 ufc/mL'1
B. laterosporus 56.1s 1.900 0.252 0.100 0.070 0.020 0.010 0.001
Larvele de G. mellonella au fost crescute pe mediul Haydak la 30°C. Pentru testul de inocuitate, larvele in ultimul stadiu au fost tinute la 4°C timp de 5 minute, după care au fost injectate cu 5μΙ suspensie bacteriana, utilizând o seringa Hamilton. Fiecare varianta de dilutie a cuprins 30 larve, iar zece larve au
^‘2 0 1 0 - 0 1 1 5 9 -2 4 -11- 2010
fost utilizate pentru fiecare repetitive. Varianta martor a constat in larve injectate cu 5μΙ 10mM MgSO4 si 1,2 mg/ml ampicillin in scopul analizării efectelor fizice letale determinate de injecții. Larvele inoculate au fost menținute apoi pe mediul Haydak la 30°C în întuneric. La 24, 48 si 72 ore după infecție larvele au fost analizate, iar cele moarte au fost numărate. Larvele care nu au prezentat semne vitale la atingerea cu vârful pipetei au fost considerate moarte. Rezultatele au evidențiat faptul că tulpina de Brevibacillus laterosporus 56.1s, nici atunci când a fost aplicată nediluată, nu a determinat o mortalitate mai mare de 50%, iar la diluția de 103 ufc/mL'1 nu s-a determinat mortalitatea larvelor de G. mellonella (tabel 8). Deci tulpina de Brevibacillus laterosporus 56.1s nu este patogenă pentru organisme nețintă, fapt demonstrat prin mortalitatea redusă a larvelor de G. mellonella tratate.
Tab. 8. Procentul larvelor de G. mellonella moarte la 24, 48 si 72 ore după inoculare cu tulpina B. laterosporus 56.1s.
Varianta % larve moarte
24 ore 48 ore 72 ore
Martor 0 0 0
Inocul nediluat 30 40 40
101ufc/mL‘1 20 20 30
102ufc/mL'1 10 30 30
103ufc/mL'1 0 0 0
Pentru determinarea capacității de colonizare a materialului vegetal s-au utilizat paie de grâu sterilizate prin iradiere gamma. Paie sterile de circa 6... 7 cm au fost depuse aseptic pe plăci petri cu diametrul de 9 cm, care conțineau hârtei de filtru umectată cu tampon fosfat salin steril. Pe un capăt al paiului de grâu s-au depus 10 pl suspensie bacteriană conținând 106 ufc/ml 56.1s. După 48 ore s-a prelevat aseptic capătul celălalt al paiului (cca 2 cm), care s-au trecut într-o epubetă cu 10 ml tampon fosfat salin steril. S-a fiert timp de 10 min, iar din izolatul răcit s-au prelevat 0,5 ml care s-au diluat serial de trei ori și s-au inoculat pe nutrient agar. Coloniile formate au fot re-identificate ca fiind Brevibacillus laterosporus, pe baza unui test de microetalare fenotipică de tip Biolog și a testelor API 20E. Concluzia experimentului a fost că tulpina bacteriană 56.1s prezintă capacitate de colonizare a materialului vegetal.
Pentru a verifica activitatea de protecție a plantelor de porumb împotriva atacului de Fusarium graminearum s-a realizat o experiență în condiții controlate. Semințele de porumb sterilizate chimic prin spălări repetate cu hipoclorit au fost bacterizate cu o suspensie bacteriană de 10® ufc/ml. S-a lucrat față de un martor
<C-2 010-01159-- \
4 -11- 2010 neinoculat și cu un martor etalon, tratat cu un produs chimic (2g/kg, metiltiofanat 70%). Infecția s-a realizat prin tratatarea soluției nutritive cu o suspensie concentrată de spori, astfel încât numărul de spori per ml de soluție nutritivă a fost de 104 ufc/ml. Variantele experimentale au fost: V! - 56.1s; V2 - 56.1s + F. graminearum', V3 - metil tiofanat 70% 2 g/kg + F. graminearum-, V4 - Martor neinoculat cu bacterii sau ciuperci. Fiecare variantă a fost realizată în 5 repetiții. S-au utilizat pungi de creștere cyg (Mega Internațional), iar in fiecare punga s-au plasat 3 semințe pregerminate. Pungile au fost amplasate randomizat într-o cameră de creștere. Plantulele au fost crescute în condiții controlate (temperatură de 22°C± 0,2°C, iluminare 12 ore pe zi cu 250 pmol fotoni m'2s‘1) timp de 10 zile. Rezultatele finale au arătat că tulpina 56.1s are o eficacitate de peste 90%, cu 2% mai mult decât etalonul chimic tiofanat-metil. Deci tulpina 56.1s prezintă un antagonism semnificativ pentru F. graminearum și in vivo, în condiții controlate.
S-au prelevat aseptic părți din tulpinița plantulelor provenite din semințe pre-germinate tratate cu tulpina 561.s. Tulpinițele s-au trecut într-o eprubetă cu 10 ml tampon fosfat salin steril. S-a fiert timp de 10 min, iar din izolatul răcit s-au prelevat 0,5 ml care s-au diluat serial de trei ori și s-au inoculat pe nutrient agar. Coloniile formate au fot re-identificate ca fiind Brevibacillus laterosporus, pe baza unui test de microetalare fenotipică de tip Biolog și a testelor API 20E. S-a concluzionat că tulpina 56.1s are capacitatea de a coloniza endofit plantele de porumb pe care le protejează împotriva atacului unor patogeni majori.
A fost realizat și un experiment de testare în condiții de câmp a eficacității tulpinii 56.1s. Experimentele de cultivare au fost realizate pe un cernoziom cambie, la Amzacea (Dobrogea). Cultura de mazăre de toamnă, Pisum sativus subsp. arvense, cv. Enduro a fost semănată direct în miriștea de grâu, la sfârșitul lunii septembrie. S-a folosit o mașină de semănat direct în miriște și s-a semănat la o densitate de 70...75 semințe germinabile de mazăre/m2, corespunzând unei cantități de 65...75 kg/ha. Adâncimea de semănat a fost de 7...8 cm. In primăvară s-a transformat cultura de mazăre în muici bioactiv prin tăvălugire, și tratare cu 900 litri de suspensie care include un erbicid total pe bază de glifosat, aplicat în doză de 1,25 s.a./ha, și suspensie de 105 ufc/ml spori Brevibacillus laterosporus 56.1s. S-a însămânțat o cultură de porumb, hibrid mediu, la o densitate de 5... 7 boabe germinabile/m2, după 14 zile de la mulcire. Cultura de porumb a fost întreținută până la jumătatea lunii mai, când s-a aplicat o fertirigare cu 250 m3/ha, cu o doză de 60 îngrășăminte complexe care conțin 15% azot, 5% fosfor, 20% potasiu și 2% microelemente. S-a întreținut în continuare cultura de porumb și s-a recoltat la sfârșitul lunii septembrie. S-a lucrat față de o variantă martor intensiv, la care s-a realizat arătură de toamnă adâncă, tratarea cu erbicide pre-mergente și
io a-2 O 1 O - O 1 159 - v 2 h -11- 2010 post-emergente, fertirigarea în aceeași perioadă. De asemenea s-a folosit și o variantă la care nu s-a realizat bioactivarea mulciului vegetal cu bacterii 56.1s.
Fiecare variantă a fost realizată în 4 repetiții.
In stadiul V6 al dezvoltării porumbului s-a determinat vigoarea plantelor, înălțimea și biomasa aeriană. Vigoarea plantelor s-a diferențiat semnificativ în stadiul V6. Pe o scară de la 1 la 9, la sistemul intensiv vigoarea plantelor a fost de doar 7, în pofida condițiilor climatice foarte favorabile pentru porumb în anul de experimentare. La sistemul în care s-a folosit muici vegetal vigoarea a crescut la 7,5. La sistemul cu muici bioactivat, tratament al mulciului cu suspensie de bacterii 56.1s. Plantele de porumb au prezentat o vigoare sporită de 8,5. înălțimea plantelor nu a fost influențată semnificativ, la mulciul bioactivat plantele au acumulat o semnificativ mai multă biomasa. In final vigoarea suplimentară a plantelor de porumb protejate și în condiții de câmp de atacul ciupercilor fitopatogene din sol s-a concretizat într-un spor de producție de aprox.10%. Datele sunt prezentate în tab. 9.
Tab. 9. Influența diferitelor sisteme tehnologice asupra creșterii și producției porumbului1.
Varianta Vigoarea2 medie a plantelor înălțimea plantei stadiul V6 (cm) Biomasă aeriană uscată (g) Producția kg/ha
Martor intensiv, arat 7 41,6a 1,85a 9220a
Muici vegetal 7,5 38,3a 2,08a 8920a
Muici vegetal bioactivat cu 56.1s 8,5 42,5a 2,47b 9870b
H — - 1 — — — . . i - - 1 - — — — 1—
- valorile urmate de aceeași literă nu diferă semnificativ pentru P>0,05.
2- stadiul V6, vigoarea 1 - plante mici cu frunze mici; 9 - plante mari cu frunze robuste
Creșterile de producție s-au realizat în condițiile unui sistem conservativ, în care sunt reduse costurile de producție aferente folosirii erbicidelor și arăturii, iar folosirea unei culturi de protecție este încurajată prin plățile compensatorii asociate măsurilor de agro-mediu.

Claims (1)

  1. TULPINA DE BREVIBACILUS LATEROSPORUS ANTAGONISTA FATA
    DE CIUPERCI FITOPATOGENE
    Revendicare
    1. Tulpina 56.1s de Brevibacilus laterosporus, număr depozit DSM 23663, DSMZ Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen, Braunschweig, Germania, caracterizată prin aceea că este antagonistă față de ciuperci fitopatogene de sol Fusarium graminearum, Alternaria spp, Sclerotinia sclerotiorum, Rhizoctonia solarii, Fusarium oxisporum f. sp. radicis-lycopersici, Sclerotium bataticola, prezintă o capacitate ridicată de colonizare a materialului vegetal și a țesuturilor vegetale, datorită producerii de amilază și lactonază AHL, mobilității de migrare și agregare și formării de biofilme, și asigură creșterea nivelului producțiilor de porumb în sistemele de agricultură conservativă pe bază de muici bioactiv în condițiile reducerii costurile de producție aferente folosirii erbicidelor și arăturii.
ROA201001159A 2010-11-24 2010-11-24 Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene RO127467B1 (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201001159A RO127467B1 (ro) 2010-11-24 2010-11-24 Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201001159A RO127467B1 (ro) 2010-11-24 2010-11-24 Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RO127467A2 true RO127467A2 (ro) 2012-06-29
RO127467B1 RO127467B1 (ro) 2015-02-27

Family

ID=46319340

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA201001159A RO127467B1 (ro) 2010-11-24 2010-11-24 Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene

Country Status (1)

Country Link
RO (1) RO127467B1 (ro)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2765185A2 (en) 2013-02-11 2014-08-13 SC Euro Bio SRL Strain of Brevibacillus parabrevis and controlled release composition based on it

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107151641B (zh) * 2017-07-04 2020-11-27 沈阳农业大学 一株抑制水稻纹枯病菌的侧孢短芽孢杆菌及其应用

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2765185A2 (en) 2013-02-11 2014-08-13 SC Euro Bio SRL Strain of Brevibacillus parabrevis and controlled release composition based on it

Also Published As

Publication number Publication date
RO127467B1 (ro) 2015-02-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Palmieri et al. A microbial consortium in the rhizosphere as a new biocontrol approach against fusarium decline of chickpea
US8404476B2 (en) Pure culture of strain AH2 of the Bacillus velezensis species and a product for the biological control of phytopathogenic fungi
Hiltunen et al. Interactions and biocontrol of pathogenic Streptomyces strains co‐occurring in potato scab lesions
CN104480046B (zh) 一株侧孢短芽孢杆菌及其应用
CN1952116A (zh) 一株解淀粉芽孢杆菌菌株及其应用
CN1952117A (zh) 一株枯草芽孢杆菌菌株及其应用
CN112980739A (zh) 枯草芽孢杆菌n24及其应用
Al-Hinai et al. Isolation and characterization of Pseudomonas aeruginosa with antagonistic activity against Pythium aphanidermatum
CN104164393A (zh) 用于防治稻瘟病的枯草芽孢杆菌
Benaissa et al. Antagonistic effect of plant growth promoting rhizobacteria associated with Rhus tripartitus on gram positive and negative bacteria.
Bardin et al. Control, by microbial seed treatment, of dampingoff caused by Pythium sp. on canola, safflower, dry pea, and sugar beet
KR101005484B1 (ko) 식물병원균에 대한 항균 활성을 갖는 스트렙토마이세스 스포로클리바투스 cjs-49 kctc 11109bp 및 이를 포함하는 생물농약
RO128931A0 (ro) Tulpină de brevibacillus parabrevis şi compoziţie cu eliberare controlată pe bază de aceasta
KR100812649B1 (ko) 식물 병원균에 대한 항균 활성을 갖는 스트렙토마이세스 속vsv-12 kctc10936bp 및 이를 이용한 식물병원균 방제제
WO2007043771A1 (en) Compositions for preventing plant disease comprising bacillus subtilis kccm 10639 or kccm 10640 and methods of preventing plant disease by using them
CN115141786B (zh) 一种苏云金芽孢杆菌及其在植物害虫防控中的应用
Cai et al. Study on the biocontrol effect of Streptomyces sp. NEAU-KT41 and its cell-free culture filtrate against wheat root rot
Naik et al. Antibacterial and plant growth promoting attributes of Limosilactobacillus sp. MYSN3 isolated from noni fruit
RO127514A2 (ro) Tulpina de bacillus subtilis cu activitate de combatere a agenţilor fitopatogeni din sol, stimulare a creşterii plantelor şi biodegradare controlată a materialului vegetal
KR100494663B1 (ko) 항진균 활성세균인 바실러스 서브틸리스 ys1, 감마선 조사를 이용한 돌연변이체 제조방법 및 그 돌연변이체
RO127467B1 (ro) Tulpina de brevibacillus laterosporus antagonistă faţă de ciuperci fitopatogene
Al Farraj et al. Biocontrol of Fusarium wilt disease by endophytic Bacillus xiamenensis BS10 isolated from the root nodules of Brassica nigra (mustard plant) and analysis of defence molecular biomarkers in the greenhouse and field trial
KR100735572B1 (ko) 주요 식물 병원균에 대한 항균 활성을 갖는스트렙토마이세스 파다누스 vsp-32 및 이를 이용한식물 병원균 방제용 미생물 제제
KR101107330B1 (ko) 인삼 근부병을 억제하는 신규한 스트렙토마이세스 스포로클리바투스 균주
KR101027082B1 (ko) 식물 병원균에 대한 항균활성을 갖는 스트렙토마이세스 미조넨시스 cjs-70 균주 및 이를 이용한 식물 병원균방제용 미생물 제제