WO1995006242A1 - Bod sensor and bod measuring method - Google Patents

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WO1995006242A1
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bod
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measuring
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PCT/JP1994/001418
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Inventor
Isao Karube
Kiyoko Yano
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Akebono Brake Industry Co Ltd
Akebono Research and Development Centre Ltd
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Akebono Brake Industry Co Ltd
Akebono Research and Development Centre Ltd
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/001Enzyme electrodes
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/18Water
    • G01N33/1806Biological oxygen demand [BOD] or chemical oxygen demand [COD]

Definitions

  • the present invention relates to a BOD sensor, and more particularly, to a BOD sensor that does not use an oxygen electrode.
  • BACKGROUND ART BOD biochemical oxygen demand
  • BOD biochemical oxygen demand
  • Water pollution caused by organic compounds is reduced or eliminated by the oxidation reaction of aerobic microorganisms, and dissolved oxygen is consumed according to the concentration of the organic substances. By measuring the amount of oxygen consumed, water pollution will become apparent. That is, BOD is an indirect expression of the concentration of the organic compound by the amount of oxygen.
  • the Japanese Industrial Standard JIS defines a method for measuring BOD, but this method requires complicated operations, and has the problem of requiring five days for measurement. Therefore, there is a need for a BOD measurement method that can be performed quickly, easily, and on-line.
  • a BOD sensor has already been developed and is being used for measuring wastewater from factories.
  • a conventionally used B 0 D sensor is composed of a microbial membrane and an oxygen electrode, and measures B 0 D based on the amount of decrease in dissolved oxygen in a solution.
  • a microbial electrode in which microorganisms that assimilate organic substances and consume oxygen are encapsulated between a diaphragm of an oxygen electrode and a dialysis membrane covering the same (Japanese Patent Application Laid-Open No. 54-476999) Is known.
  • a sensor that measures B 0 D based on the amount of decrease in dissolved oxygen as described above has a problem that it is difficult to measure an accurate value with a low dissolved oxygen and waste liquid.
  • the structure of the oxygen electrode required a certain size in order to incorporate an electrolyte or the like in the electrode.
  • the present invention has been made in view of the above, and has been directly applied to an organic compound without using an oxygen electrode. It is an object of the present invention to provide a BOD sensor which can measure the concentration of a compound and can measure even if the amount of dissolved oxygen is low.
  • a BOD sensor as follows. That is, the present invention is a BOD sensor having a working electrode (microbial electrode) formed of a metal or carbon electrode, a thin film containing microbial cells in contact with the electrode, and a counter electrode.
  • the present invention provides a sensor having a working electrode (microbial electrode) comprising a metal or carbon electrode and a thin film containing microbial cells in contact with the electrode, and a counter electrode in a solution containing an organic substance. It provides a method for measuring the B 0 D of this solution by measuring the current flowing when immersed and applying a potential difference between the microbial electrode and the counter electrode.
  • microbial electrode working electrode
  • a counter electrode in a solution containing an organic substance.
  • the present invention also provides a BOD sensor having a reference electrode in addition to the above configuration, and a current flowing when the BOD sensor is immersed in a solution containing an organic substance and a potential difference is applied between the working electrode and the reference electrode. Provides a way to measure the B 0 D of this solution by measuring
  • the BOD sensor of the present invention includes an electrode made of metal or carbon (hereinafter, also simply referred to as “metal electrode”) and a thin film containing microbial cells in contact with the metal electrode (hereinafter, also simply referred to as “microbial membrane”). And a counter electrode.
  • a BOD sensor according to another embodiment of the present invention includes a working electrode including a metal electrode and a thin film containing a microbial cell in contact with the metal electrode (hereinafter, also simply referred to as a “microbial membrane”), and a counter electrode. And a reference electrode.
  • the microorganisms When microorganisms are present in a sample solution containing organic compounds, the microorganisms metabolize the organic compounds to obtain energy. In the process, electron transfer occurs in the electron transport system of the respiratory chain. At this time, there is a correlation between the concentration of metabolized organic substances and the amount of transferred electrons. Therefore, by measuring the amount of the moving electrons, the concentration of the organic substances existing around the microorganism can be determined, and the BOD can be measured. Of this electron Since it is difficult to directly measure the movement amount, in the present invention, the B0D sensor having the above configuration is immersed in a solution containing an organic compound, and the sensor is placed between the working electrode of the sensor and the counter electrode or reference electrode.
  • the microbial membrane is for allowing microbial cells to be present on or near the surface of the metal electrode.
  • a microbial cell encapsulated in a three-dimensionally crosslinked structure such as an alginate gel film, an agarose gel film, a photocrosslinkable polyvinyl alcohol film, or a polyacrylamide film may be used.
  • Microorganisms may be encapsulated between the metal electrode and a membrane such as a dialysis membrane that does not allow microbial cells to permeate.
  • Microbial cells may be immobilized on the polymer membrane. Further, a microorganism in which microorganisms are immobilized on the surface of the metal film constituting the working electrode using glutaraldehyde or the like may be used. It is desirable that the microorganisms in the thin film survive.
  • the microorganism is not particularly limited as long as it can transfer electrons to the electron transfer system by metabolizing organic substances. Either prokaryotic or eukaryotic microorganisms can be used.However, in eukaryotic cells, since the transfer of respiratory chain electrons takes place in the mitochondria, the amount of electrons transferred to the working electrode is relatively small. Prokaryotic microorganisms are preferred in terms of BOD measurement sensitivity.
  • prokaryotic microorganisms examples include prokaryotic microorganisms such as Escherichia coli, bacteria belonging to the genera Bacillus, Acinetobacter, Gluconobacter and Pseudomonas, and eukaryotic microorganisms such as yeast belonging to the genus Trichosporon.
  • prokaryotic microorganisms such as Escherichia coli, bacteria belonging to the genera Bacillus, Acinetobacter, Gluconobacter and Pseudomonas
  • eukaryotic microorganisms such as yeast belonging to the genus Trichosporon.
  • the electrode made of metal or carbon receives electrons generated by the metabolism of organic matter in the BOD measurement sample by microorganisms.
  • the material for the working electrode may be any material that is stable, has high conductivity, and is substantially harmless to microorganisms, such as metals such as platinum, gold, and silver, or graphite, carbon, and the like. Carbon material.
  • the shape is not particularly limited, and examples thereof include a rod shape, a cylindrical shape, and a sheet shape.
  • the working electrode constituting the BOD sensor of the present invention is obtained by bringing a microbial membrane into contact with the metal electrode. If the distance between the metal electrode and the microbial membrane is too large, electrons generated at the microbial membrane cannot transfer to the metal electrode. In this sense, “contact” does not necessarily mean complete contact, but is as close as possible to the extent that electrons can move in solution. Just do it.
  • the working electrode include a structure in which microorganisms are immobilized on the surface of a metal electrode via a functional group, a structure in which a gel film containing microorganisms is adhered to a metal electrode, a dialysis membrane covering a metal electrode end, and a metal electrode. And a dialysis membrane containing microorganisms.
  • the microorganism suspension is suction-filtered on a thin film of acetyl cellulose or the like, and the microorganisms are collected in a membrane on the thin film.
  • the dialysis membrane is covered from outside the acetyl cellulose membrane with a metal electrode. May be covered.
  • the shape of the metal electrode and the shape of the microbial membrane should preferably be such that their contact area is large.
  • the BOD sensor of the present invention has the working electrode and the counter electrode, and further has a reference electrode as needed.
  • Materials for the opposite electrode include platinum, silver, gold, and carbon.
  • the BOD measurement method of the present invention is based on a method in which the above BOD sensor is immersed in a solution containing an organic substance (measurement sample solution), and a current flowing between both electrodes when a potential difference is applied between the working electrode and the counter electrode or the reference electrode. This is a method of measuring the BOD of this solution by measuring the BOD.
  • the BOD sensor is immersed in a measurement sample solution, a potential difference is applied between the working electrode and the counter electrode, and the current flowing between both electrodes is measured.
  • a potential difference is applied between the working electrode and the reference electrode, and the current flowing between the two electrodes is measured.
  • the potential difference load and the current may be measured using a potentiostat or the like.
  • a mediator to the sample liquid, because measurement with higher sensitivity is possible.
  • media between the microbial membrane or between the microbial membrane and the metal electrode An eta may be included.
  • the media will promote the transfer of electrons generated by the metabolism of organic matter by microorganisms to metal electrodes.
  • the mediator may be any mediator that promotes the transfer of electrons from the microorganism to the metal electrode.
  • 1-methoxy-5-methylphenadinium methylsulfonate (1M-PMS) 2,6-Dichloromouth Indophenol (DCIP), 9-Dimethylaminobenzo- ⁇ -Phenazoxonium Chloride, Methylene Blue, Indigotrisulfonic Acid, Phenosa Furanin, Thionine, New Methylene Blue, 2,6-Dichloro Mouth phenol, indophenol, azure ⁇ , ⁇ , ⁇ , ⁇ ', ⁇ , -tetramethyl- ⁇ -phenylenediamindihydrochloride, resorufin, safranin, sodium anthraquinone / 3-sulfonate, indigo carmine, dyes such as riboflavin, rib
  • the BOD is measured by measuring the current flowing between the counter electrode or reference electrode and the working electrode using a buffer solution containing no organic substance, and then using the measurement sample or the measurement sample solution diluted with the above buffer solution. This is done by measuring the current and comparing the difference between these currents with the current difference when using the standard sample.
  • the current flowing through the sensor depends on the type of microorganism, the contact area between the metal electrode and the microbial membrane, the type and concentration of the media, the potential difference applied between the counter electrode and the metal electrode, the BOD concentration, etc. May be set appropriately by conducting preliminary experiments.
  • the BOD sensor of the present invention When the BOD sensor of the present invention is immersed in an organic substance-containing solution, the organic substances are metabolized by microorganisms in the microbial membrane of the sensor. As a result, the electrons move to the electron transport system.
  • a potential difference is applied between the counter electrode and the metal electrode, electrons are transferred from the microbial membrane to the metal electrode. As a result, the obtained current is different from when no electrons are generated.
  • the organic matter concentration that is, the BOD can be measured.
  • FIG. 1 is a sectional view showing an embodiment of a working electrode constituting a BOD sensor of the present invention.
  • FIG. 2 is a front view showing an example of a BOD measurement system using the BOD sensor of the present invention.
  • FIG. 3 is a graph showing the relationship between the load voltage and the current value.
  • FIG. 4 is a graph showing the relationship between the buffer concentration and the current value.
  • FIG. 5 is a graph showing the relationship between the media concentration (DC IP) concentration and the current value.
  • FIG. 6 is a graph showing the relationship between the mediator concentration (1 M-PMS) concentration and the current value.
  • FIG. 7 is a graph showing the relationship between B 0 D and the current value when the type of media is changed.
  • FIG. 8 is a graph showing an example of a calibration curve for BOD measurement.
  • FIG. 9 is a rough diagram showing the effect of dissolved gas on B 0 D measurement.
  • FIG. 10 is a graph showing the relationship between the BOD and the current value when using an 8 mM ferricyanide power realm as a media.
  • FIG. 11 is a graph showing the relationship between B 0 D and current when 40 nM 9-dimethylaminobenzo-phenazoxonium chloride was used as a mediator.
  • FIG. 12 is a graph showing the relationship between BOD and current value when using 80 nM 1-M-PMS as a media.
  • FIG. 13 is a graph showing the relationship between the BOD and the current value when the electrode material was changed.
  • FIG. 14 is a graph showing the relationship between the BOD and the current value when Escherichia coli is used as the microorganism of the microbial membrane.
  • FIG. 15 is a graph showing the relationship between BOD and current value when Bacillus stearothermophilus is used as the microorganism in the microbial membrane.
  • FIG. 16 is a graph showing the relationship between BOD and current value when using Acinetobacter calcoaceticus as a microorganism in a microbial membrane.
  • FIG. 17 is a graph showing the relationship between BOD and current value when Trichosporone ctaneum is used as a microorganism in a microorganism membrane.
  • FIG. 18 is a graph showing the relationship between BOD and current value when Gluconobacter suboxydans is used as a microorganism in a microorganism membrane.
  • FIG. 19 is a graph showing the relationship between BOD and current value when Pseudomonas aeruginosa was used as the microorganism of the microbial membrane.
  • FIG. 20 is a graph showing the effect of low dissolved oxygen on BOD measurement.
  • FIG. 21 is a diagram showing the measurement of BOD by a B0D sensor in which microbial cells are fixed to a metal electrode using agarose.
  • FIG. 22 is a diagram showing the measurement of BOD by a B 0 D sensor in which microbial cells are fixed to a metal electrode using photocrosslinkable polyvinyl alcohol (PVA—SbQ: polyvinyl alcohol stilbazole quaternized).
  • PVA—SbQ polyvinyl alcohol stilbazole quaternized
  • FIG. 23 is a diagram showing the measurement of B 0 D by a B 0 D sensor in which microbial cells are fixed to a metal electrode using glutaraldehyde.
  • BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Hereinafter, embodiments of the present invention will be described.
  • a microorganism belonging to the genus Bacillus which is screened from the activated sludge (and named L- GL 3), 0. 3% K 2 HP0 4, 0. 1% ⁇ 2 ⁇ 4 0. 0 3% Mg S 0 4 ⁇ 7 ⁇ 2 Inoculate 80 ml (pH 7.0) of a medium containing 0.5% ammonium sulfate, 0.01% L-glutamic acid and 0.1% yeast extract, and shake at 30 ° for 48 hours. did. The culture was centrifuged to separate the cells from the medium, and the cells were washed with a buffer (0.05 M phosphoric acid, pH 7.0) and suspended in the same buffer.
  • a buffer 0.05 M phosphoric acid, pH 7.0
  • the bacterial suspension obtained above was filtered through a porous acetyl cellulose membrane 1a (pore diameter: 0.45 ⁇ m), and bacterial cells 1b were attached to the membrane surface.
  • This membrane 1 is used as a microbial membrane, and the bacterial cell 1b of the membrane adheres to one end of a cylindrical platinum electrode 2 having a diameter of 3 mm, the side of which is insulated by coating a Teflon tube 8.
  • the dialysis membrane 1 c was covered from above, and fixed with a 0-ring 3 (Fig. 1).
  • the other end of the electrode was connected by bonding a lead wire 4 with silver paste.
  • the lead wire may be fixed to the metal electrode using a clip or the like.
  • the connection between the lead wire and the metal electrode was insulated by coating a heat-shrinkable tube. Insulation of the side surface of the metal electrode and the connection portion with the lead wire was performed in the following examples in the same manner as described above.
  • a BOD measurement method was examined by the following measurement system (triode method) (FIG. 2).
  • the working electrode, the reference electrode 5 (Ag / AgCl electrode) and the counter electrode (platinum electrode) 7 were connected to a potentiostat 6 and immersed in a sample tank 9 containing a buffer solution to obtain a BOD sensor.
  • a constant voltage was applied between the reference electrode and the working electrode, and the flowing current was measured.
  • a BOD standard solution or L-glutamic acid solution was added, and the current value was measured in the same manner.
  • the sample solution was stirred using a magnetic stirrer 10. Measurements were recorded on recorder 12.
  • Sample solution 30 was 40 nM DC IP, 40 nM 1-M- PMS containing 0.01 M phosphate buffer (pH 7.0), and the BOD sensor was inserted into the sample tank containing 5 ml of this buffer.
  • the load potential was set at +200 mV to IV; a constant concentration of organic substance (15 Omg / 1 L-glutamic acid) 40 ⁇ 1 was added, and the increase in the current value was measured. The results are shown in Figure 3.
  • Example 3 Examination of optimal concentration of buffer solution The concentration of buffer solution was examined. The increase in the current value was measured in the same manner as in Example 2 except that the concentration of the phosphate buffer (pH 7.0) was changed between 10 mM and 20 OmM, and the load potential was fixed at +400 mV.
  • Fig. 4 shows the results.
  • the optimal DC IP concentration at 0 nM was examined. Same as Example 2 except that the concentration of the phosphate buffer (pH 7.0) was 0.01 M, the load potential was fixed at +40 OmV, and the DC IP concentration was varied between 10 and 80 nM. Then, the increase in the current value was measured. Fig. 5 shows the results. A good response value was obtained at a DC IP concentration of 10 nM or more.
  • Example 8 Investigation of the effect of dissolved oxygen The effect of dissolved oxygen on the method of the present invention was examined. 0.011 ⁇ 1 Phosphate buffer (H7.0) 5 ml of nitrogen, oxygen, and air are passed through each for 30 minutes, and DC IP and 11M-PMS are adjusted to a final concentration of 40 nM each. Add the BOD sensor, apply a potential of +40 OmV, add 40 ⁇ l of BOD standard solution, The increase in value was measured. Similarly, the measurement was performed without passing gas. Fig. 9 shows the results.
  • the current value was constant irrespective of the presence or absence of ventilation of various gases, and the BOD sensor of the present invention could measure BOD without being affected by dissolved oxygen.
  • the BOD sensor of the present invention does not measure BOD based on a decrease in dissolved oxygen, but measures BOD by measuring electrons generated by metabolism of organic matter. It supports that it is.
  • Example 9 Examination of other medias
  • Example 10 Examination of electrode material A BOD sensor was manufactured using a gold, silver, and carbon electrode having a diameter of 3 mm as in the case of the platinum electrode, and the BOD was measured in the same manner as in Example 6. However, a potential difference was applied between the working electrode and the counter electrode without using the reference electrode, and the current flowing between both electrodes was measured.
  • Figure 13 shows the results. As is clear from these results, similar results were obtained for the platinum, gold, silver, and carbon electrodes, and it was found that measurement was possible with a stable conductive material such as metal or carbon.
  • Example 11 Examination of types of microorganisms used for microbial membrane
  • Escherichia coli JMl09 was cultured with shaking at 37 ° C for 12 hours, immobilized on a Nitrocell orifice membrane, and attached to a Pt electrode.
  • the obtained BOD sensor consisting of the working electrode, counter electrode and reference electrode is inserted into a buffer solution containing media (11 M—PMS, DC IP 4 OnM each), and BOD standard solution is added. Then, the increase in the current value was measured in the same manner as above.
  • Acinetobacter calcoaceticus IFN552 was cultured in 30 cells and a similar experiment was performed. Overnight on media, potassium fluoride (8 mM) was used. The results are shown in FIG.
  • Gluconobacter suboxydans (Gluconobacter suboxydans) The same experiment was carried out by culturing D. fulconobacter suboxydans IF30172 with 30 cells. In the media evening, potassium furocyanide (lOmM) was used. The results are shown in FIG.
  • Example 13 Another Example of B0D Sensor
  • the cells of the L-GL3 strain obtained by culturing in the same manner as in Example 1 were placed on a metal surface of a columnar platinum electrode having a diameter of 3 mm by agarose, A working electrode was prepared by immobilization using photo-crosslinkable polyvinyl alcohol (PVA-SbQ: polyvinyl alcohol stilbazole quatemized) or guanolethanoleanolaldehyde.
  • PVA-SbQ photo-crosslinkable polyvinyl alcohol
  • B 0D was measured using these working electrodes and a B 0 D sensor composed of a counter electrode and a reference electrode.
  • Agarose was dissolved by heating to an appropriate concentration (for example, 2%), and a suspension prepared by suspending L-GL3 cells in a phosphate buffer was mixed with the solution while maintaining the concentration at about 60. .
  • the agarose solution in which the cells thus obtained were suspended was evenly attached to one end face of a cylindrical platinum electrode having a diameter of 3 mm, and cooled to obtain a working electrode.
  • B 0 D can be measured using the B 0 D sensor of the present invention regardless of the method of immobilizing the cells on the metal electrode.
  • BOD can be measured without being affected by the dissolved oxygen concentration.

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Description

明細書
B 0 Dセンサ及び B 0 Dの測定方法 技 ifo分野 本発明は、 B O Dセンサに関し、 詳しくは、 酸素電極を用いない B O Dセンサ に関する。 背景技術 河川や産業排水の水質管理に重要な項目として、 B O D (生物化学的酸素要求 量) があり、 国際的な有機性水質汚濁の指標とされている。 有機化合物に起因す る水質汚濁は、 好気性微生物による酸化反応で減少、 消去され、 その有機物質濃 度に対応して溶存酸素が消費される。 この消費された酸素量を計測することで、 水質汚濁が明らかになる。 すなわち B O Dは、 有機化合物濃度を、 酸素量により 間接的に表したものである。
日本工業規格 J I Sで B O Dの測定法が規定されているが、 この方法は煩雑な 操作を必要とし、 さらに測定に 5日間を要するなどの問題点があつた。 そこで迅 速、 簡単、 かつオンライン計測可能な B O D測定法が要望され、 既に B O Dセン ザが開発されており、 工場排水などの測定に利用されている。
従来使用されている B 0 Dセンサは、微生物膜と酸素電極で構成されており、 溶液中の溶存酸素の減少量により B 0 Dを測定するものである。 このようなセン サとして、 例えば、 酸素電極の隔膜とそれを覆う透析膜の間に有機物を資化し酸 素を消費する微生物を封入せしめた微生物電極(特開昭 5 4— 4 7 6 9 9号公報) が知られている。
しかしながら、 上記のような溶存酸素の減少量により B 0 Dを測定するセンサ では、 溶存酸素の低 t、廃液では正確な値を測定することは難しいという問題があ る。 また、 酸素電極の構造は、 電極内に電解液等を内蔵するために、 ある程度の 大きさが必要であった。
本発明は、 上記観点からなされたものであり、 酸素電極を用いずに直接に有機 化合物濃度を測定することができ、 溶存酸素量が低くても測定が可能な B 0 Dセ ンサを提供することを課題とする。 発明の開示 本発明者は、 上記課題を解決するために、 B O Dセンサを以下の構成とした。 すなわち本発明は、 金属又は炭素からなる電極並びにこの電極に当接された微 生物菌体を含有する薄膜からなる作用電極 (微生物電極) と、 対極とを有する B O Dセンサである。 また本発明は、 有機物を含有する溶液に、 金属又は炭素から なる電極並びにこの電極に当接された微生物菌体を含有する薄膜からなる作用電 極 (微生物電極) と、 対極とを有するセンサを浸潰し、 微生物電極と対極との間 に電位差を負荷したときに流れる電流を計測することにより、 この溶液の B 0 D を測定する方法を提供する。
また本発明は、 上記構成に加えてさらに参照電極を有する B O Dセンサ、 及び 有機物を含有する溶液に、 この B O Dセンサを浸潰し、 作用電極と参照電極との 間に電位差を負荷したときに流れる電流を計測することにより、 この溶液の B 0 Dを測定する方法を提供する
以下、 本発明を詳細に説明する。
< 1 >本発明の B O Dセンサ
本発明の B O Dセンサは、 金属又は炭素からなる電極 (以下、 単に 「金属電極」 ともいう) 並びにこの金属電極に当接された微生物菌体を含む薄膜 (以下、 単に 「微生物膜」 ともいう) からなる作用電極と、 対極とを有する。 本発明の他の態 様の B 0 Dセンサは、 金属電極並びにこの金属電極に当接された微生物菌体を含 む薄膜 (以下、 単に 「微生物膜」 ともいう) からなる作用電極と、 対極と、 さら に参照電極とを有する。
微生物を有機化合物を含む試料溶液に存在させると、 微生物は有機化合物をェ ネルギー獲得のために代謝する。 その過程において、 呼吸鎖の電子伝達系に電子 の移動が起こる。 この際、 代謝される有機物濃度と移動する電子の量には相関が ある。 したがって、 この移動する電子の量を測定することによって微生物のまわ りに存在する有機物濃度がわかり、 B O Dを測定することができる。 この電子の 移動量を直接計測することは困難であるので、 本発明においては、 上記構成を有 する B 0 Dセンサを有機化合物含有溶液に浸漬し、 センサの作用電極と対極もし くは参照電極との間に、 電子が移動しやすいように一定の電位差を負荷し、 両電 極間に流れる電流を計測する。 以下に、 本発明の B O Dセンサの構成を説明する c 微生物膜は、 微生物菌体を金属電極表面又はその近傍に存在させるためのもの であり、 薄膜状のものであれば、 特に形態は問わない。 例えば、 微生物菌体を、 アルギン酸ゲル膜、 ァガロースゲル膜、 光架橋性ポリビニルアルコール膜あるい はポリアクリルアミ ド膜等の三次元架橋構造体中に封入したものが挙げられる。 金属電極と透析膜等の微生物菌体を透過させない膜との間に微生物を膜状に封入 してもよい。 また、 高分子膜に微生物菌体を固定してもよい。 さらには、 作用電 極を構成する金属膜表面に、 グルタルアルデヒド等を用いて微生物を膜状に固定 化したものでもよい。 薄膜中の微生物は生存していることが望ましい。
上記微生物としては、 有機物を代謝することにより電子伝達系に電子の移動が 起こるものであればよく、 特に制限されない。 前核微生物及び真核微生物のいず れも使用できるが、 真核生物細胞內では呼吸鎖の電子伝達がミ トコンドリア内で 行われるため、 作用電極に移動する電子の量が比較的少ないので、 B O D測定感 度の点では前核微生物が好ましい。 前核微生物としては、 例えば、 大腸菌、 バチ ルス属、 ァシネトパクター属、 グルコノバクター属あるいはシユードモナス属に 属する細菌、 放線菌などの前核微生物が、 真核微生物としてはトリコスポロン属 に属する酵母等が挙げられる。
金属又は炭素からなる電極は、 B 0 D測定試料中の有機物が微生物により代謝 されて生じる電子を受け取る。 作用電極の素材としては、 安定であり、 かつ、 導 電性が大きく、 微生物に実質的に無害なものであればよく、 例えば、 白金、 金、 銀等の金属、 又はグラフアイ ト、 カーボン等の炭素素材が挙げられる。 また、 そ の形状としては、 特に制限はないが、 棒状、 筒状、 シート状が挙げられる。
本発明の B O Dセンサを構成する作用電極は、 上記金属電極に微生物膜を当接 させたものである。 金属電極と微生物膜との距離が離れすぎると、 微生物膜で生 じた電子が金属電極に移動することができない。 この意味で、 「当接」 とは必ず しも完全に接している必要はなく、 溶液中で電子が移動可能な程度に近接してい ればよい。
上記作用電極の具体的構造としては、 金属電極表面上に官能基を介して微生物 を固定したもの、 微生物を含むゲル膜を金属電極に接着したもの、 金属電極端に 透析膜を被せ、 金属電極と透析膜の間に微生物を入れたものなどが挙げられる。 また、 微生物懸濁液をァセチルセルロース等の薄膜上で吸引濾過し、 この薄膜上 に微生物を膜状に集菌し、 ァセチルセルロース膜の外側から透析膜で覆うように して金属電極に被せてもよい。 また、 金属電極の形状及び微生物膜の形状は、 こ れらの接触面積が大きくなるようにするとよい。
本発明の B O Dセンサは、 上記作用電極と対極とを有し、 必要に応じてさらに 参照電極を有する。 対極の素材としては、 白金、 銀、 金、 カーボン等が挙げられ る。 B O Dセンサを測定試料液に浸漬し、 作用電極と対極との間に電位差を負荷 したときに、 電極反応が進行するにつれて、 電極表面での反応種の濃度は減少し、 また生成物の濃度が増加するなどして電極電位が設定した電位からずれてしまう ことがある。 そこで、 A g ZA g C 1電極等の参照電極を試料液に浸潰し、 参照 電極を電位設定の基準として作用電極の電位を設定することが好ましい (3極法) c 本発明の B 0 Dセンサは、 作用電極と対極及び必要に応じて参照電極とを別体 としてもよいし、 また一体構造としてもよい。
< 2 > B O Dの測定法
本発明の B O Dの測定法は、 有機物を含有する溶液 (測定試料液) に上記 B O Dセンサを浸漬し、 作用電極と対極もしくは参照電極との間に電位差を負荷した ときに両電極間に流れる電流を計測することにより、 この溶液の B 0 Dを測定す る方法である。
具体的には、 例えば、 上記 B O Dセンサを測定試料液に浸漬し、 作用電極と対 極との間に電位差を負荷し、 両電極間に流れる電流を計測する。 また、 3極法に おいては、 作用電極と参照電極との間に電位差を負荷し、 両電極間に流れる電流 を計測する。 電位差の負荷及び電流の測定は、 ポテンシォスタツ ト等を用いると よい。
また、 試料液にメディエータを添加しておくと、 より高感度な測定が可能とな るので好ましい。 あるいは、 微生物膜中又は微生物膜と金属電極との間にメディ エータを含ませてもよい。
メデイエ一夕は、 微生物により有機物が代謝されて生じる電子が、 金属電極に 移行するのを促進するものである。 メディエータとしては、 微生物から金属電極 に電子が移行するのを促進するものであればよく、 具体的には 1ーメ トキシ— 5 一メチルフエナジニゥムメチルスルフォネート (1一 M— PMS)、 2, 6—ジ クロ口インドフエノール (D C I P)、 9ージメチルァミノベンゾー α—フエナ ゾキソニゥムクロライ ド、 メチレンブルー、 インジゴトリスルホン酸、 フヱノサ フラニン、 チォニン、 ニューメチレンブルー、 2, 6—ジクロ口フエノール、ィ ンドフエノール、 ァズレ Β、 Ν, Ν, Ν' 、 Ν, ーテトラメチルー ρ—フエニレ ンジアミ ンジヒ ドロクロリ ド、 レゾルフイン、 サフラニン、 ソディウムアントラ キノン /3—スルフォネート、 インジゴカーミ ン等の色素、 リボフラビン、 Lーァ スコルビン酸、 フラビンアデニンジヌクレオチド、 フラビンモノヌクレオチド、 ニコチンアデニンジヌクレオチド、 ノレミクロム、 ュビキノン、 ハイ ドロキノン、 2, 6—ジクロ口べンゾキノン、 2—メチルベンゾキノン、 2, 5—ジヒ ドロキ シベンゾキノン、 2—ヒ ドロキシー 1, 4一ナフトキノン、 グルタチオン、 パー ォキシダーゼ、 チトクロム C、 フヱレドキシン等の生体酸化還元物質又はその誘 導体、 その他 F e— EDTA、 Mn— EDTA、 Zn— EDTA、 メソスルフエ ート、 2, 3, 5, 6—テトラメチルー p—フエ二レンジァミン、 フェリシアン 化カリウム等が挙げられる。 これらのメディエー夕の濃度は、 40 nM以上程度 が好ましい。
上記の化合物の中では、 1一 M— PMS、 DC I P、 フェリシアン化カリウム 及び 9ージメチルァミノべンゾー α—フエナゾキソニゥムクロライドが好ましい c
BODの測定は、 有機物を含有しない緩衝液を用いて対極若しくは参照電極と 作用電極との間を流れる電流を測定し、 続いて測定試料あるいは前記緩衝液で希 釈した測定試料液を用いて同様に電流を測定し、 これらの電流の差を、 標準試料 を用いたときの電流の差と比較することにより行う。
センサを流れる電流は、 微生物の種類、 金属電極と微生物膜との接触面積、 メ ディエー夕の種類及び濃度、 対極と金属電極との間に負荷する電位差、 BOD濃 度等に依存するので、 これらは予備実験を行つて適宜設定するとよい。 本発明の B ODセンサを有機物含有溶液に浸漬すると、 センサの微生物膜中の 微生物により、 有機物が代謝される。 その結果、 電子が電子伝達系に移動する。 対極と金属電極との間に電位差を負荷すると、 電子が微生物膜から金属電極に移 行する。 その結果、 電子が発生しないときと比べて得られる電流が異なる。 この 電流を計測することにより、 有機物濃度、 すなわち BODを測定することができ る。
この際、 試料溶液中又は微生物膜にメディエータを添加しておくと、 微生物か ら電子が金属電極に移行するのを促進するので、 測定感度が向上する。 図面の簡単な説明 図 1は、 本発明の BODセンサを構成する作用電極の一実施例を示す断面図で あ 。
図 2は、 本発明の BODセンサを用いた BOD測定系の一例を示す正面図であ る。
図 3は、 負荷電圧と電流値との関係を示すグラフ図である。
図 4は、 緩衝液濃度と電流値との関係を示すグラフ図である。
図 5は、 メデイエ一夕 (DC I P) 濃度と電流値との関係を示すグラフ図であ る。
図 6は、 メディエー夕 (1一 M— PMS)濃度と電流値との関係を示すグラフ 図である。
図 7は、 メデイエ一夕の種類を変えたときの B 0 Dと電流値との関係を示すグ ラフ図である。
図 8は、 BOD測定検量線の一例を示すグラフ図である。
図 9は、 溶存気体が B 0 D測定に与える影響を示すダラフ図である。
図 10は、 メデイエ一夕として 8mMフェリシアン化力リゥムを使用したとき の BODと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 11は、 メディエー夕として 40 nM 9—ジメチルアミノベンゾ一な一フエ ナゾキソニゥムクロライ ドを使用したときの B 0 Dと電流値との関係を示すグラ フ図である。 図 12は、 メデイエ一夕として 80 nM 1— M— PMSを使用したときの BO Dと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 13は、 電極素材を変えたときの BODと電流値との関係を示すグラフ図で あ 。
図 14は、 微生物膜の微生物として大腸菌を用いたとき BODと電流値との関 係を示すグラフ図である。
図 15は、 微生物膜の微生物としてバチルス ·ステアロザーモフィルスを用い たとき BODと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 16は、 微生物膜の微生物としてァシネトパクター ·カルコァセティカスを 用いたとき BODと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 17は、 微生物膜の微生物としてトリコスポロン ·クタネゥムを用いたとき BODと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 18は、 微生物膜の微生物としてグルコノパクター ·サブォキシダンスを用 いたとき BODと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 19は、 微生物膜の微生物としてシユードモナス ·エルギノーサを用いたと き BODと電流値との関係を示すグラフ図である。
図 20は、 低溶存酸素が BOD測定に与える影響を示すグラフ図である。
図 21は、 ァガロースを用いて微生物菌体を金属電極に固定した B0Dセンサ による BODの測定を示す図である。
図 22は、 光架橋性ポリビニルアルコール (P V A— S b Q: polyvinyl alco hoi stilbazole quaternized) を用いて微生物菌体を金属電極に固定した B 0 D センサによる BODの測定を示す図である。
図 23は、 グルタルアルデヒドを用いて微生物菌体を金属電極に固定した B0 Dセンサによる B 0 Dの測定を示す図である。 発明を実施するための最良の形態 以下に、 本発明の実施例を説明する。 実施例 1 BODセンサ はじめに、 BODセンサを構成する作用電極の一例、 及びこの作用電極を有す る BODセンサを用いた測定系を、 図 1、 2に基づいて説明する。
活性汚泥からスクリーニングされたバチルス属に属する微生物 (L— GL 3と 命名した) を、 0. 3%K2HP04、 0. 1 %ΚΗ2Ρθ4 0. 0 3 %Mg S 0 4 · 7Η20、 0. 5%硫酸アンモニゥム、 0. 0 0 1 %L—グルタミン酸、 0. 1 %酵母エキスを含む培地 80m 1 (pH7. 0) に植菌し、 3 0てで 4 8時間、 振盪培養した。 培養液を遠心して菌体と培地とを分雜し、 菌体を緩衝液 (0. 0 5Mリン酸 pH7. 0) で洗維し、 同緩衝液に懸濁させた。
上記で得られた菌懸濁液を多孔性ァセチルセルロース膜 1 a (孔径 0. 4 5〃 m) で濾過し、 膜面に菌体 1 bを付着させた。 この膜 1を微生物膜とし、 テフ口 ンチューブ 8を被覆することにより側面を絶縁した直径 3 mmの円柱状の白金電 極 2の一方の端部に、 膜の菌体 1 bが付着している面が接するように被せ、 その 上から透析膜 1 cで覆い、 0—リング 3で固定した (図 1) 。 電極の他方の端部 には、 リード線 4を銀ペーストで接着することにより結線した。 リード線は、 ク リップ等を用いて金属電極に固定してもよい。 上記リード線と金属電極との接続 部位は、 熱収縮チューブを被覆することにより絶縁した。 金属電極の側面及びリ 一ド線との接続部位の絶縁は、 以下の実施例においても上記と同様にして行った。
上記のように構成された作用電極 2 0を用いて、 以下のような測定系 (3極法) (図 2) により BOD測定法の検討を行った。 上記作用電極と参照電極 5 (Ag/A gCl電極) と対極 (白金電極) 7とをポテンシォスタツト 6に接続し、 緩衝液を入 れた試料槽 9に浸漬し、 BODセンサとした。 参照電極と作用電極との間に定電 圧を負荷し、 流れる電流を計測した。 次に、 BOD標準液又は L一グルタミン酸 溶液を添加し、 同様に電流値を測定した。 BODの測定中は、 マグネチックスタ ーラ 1 0を用いて試料液を攪拌した。 測定値は、 レコーダ 1 2で記録した。 実施例 2 至適電位の検討 上記測定系における至適負荷電位の検討を行った。 試料液 30を 40 nM DC I P、 40 nM 1— M— PMSを含む 0. 01 Mリン酸緩衝液 ( p H 7. 0) と し、 これを 5m 1入れた試料槽中に BODセンサを挿入し、 負荷電位を +200 mV〜; I Vに設定し、 一定濃度の有機物 (15 Omg/ 1 L—グルタミン酸) 4 0 β 1を添加し、 電流値の増加を測定した。 結果を図 3に示す。
この結果から、 + 200mV〜80 OmVの間でほぼ等しい応答値を示し、 上 記条件下においてはこの範囲で測定するのが好ましいことがわかった。 実施例 3 緩衝液の至適濃度の検討 緩衝液濃度の検討を行った。 リン酸緩衝液 (pH 7. 0) の濃度を 10mM〜 20 OmMの間で変化させ、 負荷電位を +400 mVに固定した以外は実施例 2 と同様にして電流値の増加を測定した。 結果を図 4に示す。
この結果から、 10mM〜20 OmMのリン酸緩衝液 (pH7. 0) では等し い応答値を示し、 少なくともこの範囲で測定できることがわかった。 実施例 4 至適メディエータ濃度の検討 (1) メディエー夕に DC I P及び 1一 M— PMSを用い、 1一 M— PMSが濃度 4
0 nMのときの至適 DC I P濃度の検討を行った。 リン酸緩衝液 (pH 7. 0) の濃度を 0. 01Mとし、 負荷電位を +40 OmVに固定し、 DC I P濃度を 1 0〜80 nMの間で変化させた以外は実施例 2と同様にして電流値の増加を測定 した。 結果を図 5に示す。 DC I P濃度 10 nM以上で良い応答値が得られた。 実施例 5 至適メディエータ濃度の検討 2) メディエー夕に DC I P及び 1一 M—PMSを用い、 DC I P濃度が 40 nM のときの至適 1一 M— PMS濃度の検討を行った。 DC I P濃度を 40 nMとし、
1一 M— PMS濃度を 0〜80 nMの間で変化させた以外は実施例 4と同様にし て電流値の増加を計測した。 結果を図 6に示す。 この結果から 10 nM以上で良い応答値が得られることがわかる。 実施例 6 メディエー夕が電流値に与える影響の検討
0. 01Mリン酸緩衝液 (pH7. 0) 5m 1中に、 メディエータとして 1一 M— PMSのみ 40 nM、 D C I Pのみ 40 nM、 あるいは 1一 M— PMS及び DC I Pを各々 40 nMとなるように添加し、 これらの緩衝液またはメディエー タを添加していない緩衝液に BODセンサを挿入し、 さらに、 BOD標準液 (グ ルコース及び Lーグルタミン酸をそれぞれ 15 Omg/ 1含む混合溶液 (BOD
22 Omg/1 ) :以下、 単に 「BOD標準液」 という) を加え、 電流を測定し た。 結果を図 7に示す。
高濃度の BOD標準溶液添加では、 メディエータなしでも小さいながら電流値 の増加が得られた。 しかし、 メディエータを添加した方が、 大きい電流値の増加 が得られた。 従って、 本センサは、 メディエータなしでも BOD測定が可能であ るが、 メディエータを添加した方がより効果があることが示された。 実施例 7 BOD測定用検量線の作成
40 nM DC I P、 40 nM 1 - M— PMSを含む 0. 01Mリン酸緩衝液 (pH7. 0) を 5m 1入れた試料槽中に、 BODセンサを挿入し、 + 400m Vの電位を負荷し、 BOD標準液を添加し、 電流値の増加を測定した。 結果を図 8に示す。
この結果から明らかなように、 少なくとも 150 Omg/m 1程度までは、 電 流値は BOD濃度に比例して増加し、 本発明の方法により、 BODを正確に測定 できることがわかる。 実施例 8 滾存酸素の影響の検討 本発明の方法に溶存酸素が与える影響を調べた。 0. 011^1リン酸緩衝液 ( H7. 0) 5m 1中に、 窒素、 酸素、 空気をそれぞれ 30分間通気し、 DC I P 及び 1一 M— PMSを各々終濃度が 40 nMとなるように添加し、 BODセンサ を挿入し、 +40 OmVの電位を負荷し、 BOD標準液を 40 μ 1添加し、 電流 値の増加を測定した。 同様に気体を通気せずに測定を行った。 結果を図 9に示す。 各種気体の通気の有無に関わらず、 電流値は一定であり、 本発明の BODセン サは、 溶存酸素の影響を受けずに BODを測定できた。 本発明の BODセンサは、 従来のセンサのように、 溶存酸素の減少量により BODを測定するものではなく、 有機物が代謝されることにより生じる電子を計測することにより B 0 Dを測定す るものであることを支持するものである。 実施例 9 他のメディエー夕の検討
0. 01Mリン酸緩衝液 (pH7. 0) 5m l中に、 1一 M— PMSのみ (8 O nM) 、 フヱリシアン化カリウム (8mM) あるいは 9ージメチルァミノベン ゾー α—フヱナゾキソニゥムクロライド (40 nM) を添加し、 BODセンサを 挿入し、 さらに、 BOD標準液を加え、 電流を測定した。 結果を図 10〜12に 示す。 実施例 10 電極素材についての検討 白金電極と同じく、 径 3mmの金、 銀、 カーボン電極を用いて BODセンサを 作製し、 実施例 6と同様に BODの測定を行った。 但し、 参照電極を使用せず、 作用電極と対極との間に電位差を負荷し、 両電極間に流れる電流を測定した。 結 果を図 13に示す。 この結果から明らかなように、 白金、 金、 銀、 カーボン電極 とも同様の結果が得られ、 安定な金属あるいはカーボンの様な導電性の物質であ れば測定可能であることがわかつた。 実施例 11 微生物膜に用いる微生物の種類の検討
( 1 ) ェシヱリヒア ·コリ (Escherichia coli:大腸菌)
ェシヱリヒア ' コリ J Ml 09を 37てで 12時間振盪培養し、 二トロセル口 —ス膜に固定化して、 これを P t電極に装着した。 得られた作用電極と対極と参 照電極から構成される BODセンサを、 メデイエ一夕 (1一 M— PMS、 DC I P各 4 O nM) を含む緩衝液中に挿入し、 BOD標準液を添加し、 上記と同様に して電流値の増加を測定した。 結果を図 14に示す。 (2)ノ チノレス · ステアロザーモフィルス (Bacillus stearothermophilus) バチルス ·ステアロザーモフィルス I AMI 1602を 45てで振盪培養して 同様の実験を行った。 結果を図 15に示す。
( 3 ) ァシネ卜ノく'クタ一 ·カルコ了セティカス (Acini tobacter calcoaceticus) ァシネトパクター ·カルコァセティカス I F012552を 30 で培養して 同様の実験を行った。 メデイエ一夕にはフ リシアン化カリウム (8mM) を使 用した。 結果を図 16に示す。
(4) トリコスポロン ·クタネゥム (Trichosporon cutaneum)
トリコスポロン ·クタネゥム I F010466を 30てで培養して同様の実験 を行った。 メディエー夕には 1一 M— PMS (80 nM) を使用した。 結果を図 17に示す。
(5) ダルコノバクタ一 'サブォキシダンス (Gluconobacter suboxydans) ダルコノバクタ一 ·サブォキシダンス I F03172を 30てで培養して同様 の実験を行った。 メディエー夕にはフヱリシアン化カリウム (l OmM) を使用 した。 結果を図 18に示す。
6 ) シユードモナス ·エノレ干ノーサ (Pseudomanas aeruginosaリ
シユードモナス ·エルギノーサ I FO 10466を 30 で培養して同様の実験 を行った。 メディエー夕にはフェリシアン化カリウム (8mM) を使用した。 結 果を図 19に示す。
以上の結果から、 異なる種類の微生物を用いても、 本発明の方法により BOD を測定できることが明らかである。 実施例 12 溶存酸素の低い溶液中での B 0D測定
0. 01Mリン酸緩衝液に窒素ガスを 30分間通気させた後に、 5m l緩衝液 中に最終濃度 40 nMになるように DC I P及び 1— M— PM Sを添加した。 こ れに実施例 1と同様の B0Dセンサを挿入し、 +40 OmVの電位差をかけ、 B OD標準液を添加した。 測定中、 緩衝液中の溶存酸素のない状態又は低い状態を 保っために液面に窒素ガスを吹き付けながら、 電流値の増加を測定した。
窒素ガスを吹き付けたものと、 通常通り測定したものとではほぼ同様の結果を 得た (図 20) 。 よって、 本発明の BODセンサを用いることにより溶存酸素の 低いあるいはない溶液でも B 0 Dの測定が可能であることが示された。 実施例 13 B 0 Dセンサの他の実施例 実施例 1と同様にして培養して得られた L— GL 3株の菌体を、 直径 3mmの 円柱状の白金電極の金属面に、 ァガロース、 光架橋性ポリビニルアルコール (P V A - S b Q: polyvinyl alcohol stilbazole quatemized) 又 {まグノレタノレアノレ デヒドを用いて固定化し、 作用電極を作製した。 これらの作用電極と、 対極及び 参照電極からなる B 0 Dセンサを用いて、 B 0 Dの測定を行つた。
(1) ァガロース
ァガロースを適当な濃度 (例えば 2%) となるように加熱溶解し、 約 60てに 保持しながら、 これに L一 GL 3菌体をリン酸緩衝液に懸濁させた懸濁液を混合 した。 こうして得られた菌体を懸濁させたァガロース溶液を、 直径 3mmの円柱 状の白金電極の一方の端面に均一に付着させ、 冷却し、 作用電極とした。
この作用電極、 対極及び参照電極を用いて、 図 1と同様の測定系により BOD の測定を行った。 試料には前記 B0D標準液を、 メディエー夕には 10 O nM 1 一 M—PMSを用いた。 結果を図 21に示す。
(2) P VA- S bQ
リン酸緩衝液に懸濁した L一 G L 3懸濁液に、 P V A— S b Q溶液を適量混合 し、 これを直径 3 mmの円柱状の白金電極の金属面に均一に付着させ、 37てで 3時間喑所でインキュベートした。 この後、 蛍光灯を照射し、 ? 八ー313(3を 架橋させた。
この作用電極を用いて、 (1) と同様にして BODの測定を行った。 但し、 メ ディエー夕には 1 mMフヱリシァン化カリゥムを用いた。 結果を図 22に示す。
(3) グルタルアルデヒド
リン酸緩衝液に懸濁した L— GL 3懸濁液にゥシ血清アルブミン (BSA) を 適量溶解させ、 直径 3 mmの円柱状の白金電極の金属面に均一に付着させた。 こ れを、 約 25 %濃度のダルタルアルデヒド水溶液の蒸気に 20分曝した後、 リン 酸緩衝液で 3回リンスした。 この作用電極を用いて、 (1) と同様にして BODの測定を行った。 但し、 メ ディエー夕には 80 nM 1一 M— PMSを用いた。 結果を図 23に示す。
以上の結果から、 金属電極に菌体を固定化する方法にかかわらず、 本発明の B 0 Dセンサを用いて B 0 Dを測定することができることが明らかである。
産業上の利用性
本発明の BODセンサを用いると、 溶存酸素濃度に影響されることなく、 BO Dを測定することができる。

Claims

請求の範囲
1. 金属又は炭素からなる電極並びにこの電極に当接された微生物菌体を含 有する薄膜からなる微生物電極と、 対極とを有する BODセンサ。
2. さらに参照電極を有する請求項 1記載の B 0 Dセンサ。
3. 前記微生物が前核生物であることを特徴とする請求項 1又は 2記載の B ODセンサ。
4. 有機物を含有する溶液に、 金属又は炭素からなる電極並びにこの電極に 当接された微生物菌体を含む薄膜からなる作用電極と対極とを浸潰し、 作用電極 と対極との間に電位差を負荷したときに両電極間に流れる電流を計測することに より、 この溶液の BODを測定する方法。
5. 請求項 4において、 前記溶液にさらに参照電極を浸潰し、 作用電極と参 照電極との間に電位差を負荷したときに両電極間に流れる電流を計測することに より、 この溶液の BODを測定する方法。
6. 前記微生物が前核生物であることを特徴とする請求項 4又は 5に記載の BODを測定する方法。
7. 前記有機物を含有する溶液及び/又は微生物膜にメディエータを添加す ることを特徴とする請求項 4〜 6のいずれか一項に記載の B 0 Dを測定する方法。
8. 前記メディエー夕が、 1 -メ トキシ一 5—メチルフヱナジニゥムメチル スルフォネート、 2, 6—ジクロ口インドフエノール及びフェリシアン化力リウ ム、 からなる群から選ばれることを特徴とする請求項 6記載の BODを測定する 方法。
9. 前記メディエー夕が、 10 nm以上の濃度範囲で添加されることを特徴 とする請求項 7記載の B 0 Dを測定する方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112119304A (zh) * 2018-07-24 2020-12-22 哈希公司 通过将金属氧化到较高化合价的水样测量

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100303611B1 (ko) * 1999-07-07 2001-09-24 박호군 미생물의 전기화학적 농화배양 방법 및 유기물질 및 bod 분석용 바이오센서
CA2783256C (en) 2009-12-08 2018-06-12 Justin Buck Microbially-based sensors for environmental monitoring
EP3242352A1 (en) 2011-06-14 2017-11-08 Cambrian Innovation, Inc. Method for determining the biological oxygen demand

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5447699A (en) * 1977-09-21 1979-04-14 Ajinomoto Kk Bod measuring method
JPH0442049A (ja) * 1990-06-08 1992-02-12 New Japan Radio Co Ltd バイオセンサ
JPH04337453A (ja) * 1991-05-13 1992-11-25 Mizuo Iki Bod迅速測定方法及びこれに用いる微生物電極

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4350763A (en) * 1978-03-23 1982-09-21 Ajinomoto Company, Inc. Method for determining biochemical oxygen demand
DE3707815A1 (de) * 1987-03-09 1988-09-22 Ulrich Pilz Verfahren zur bestimmung des chemischen sauerstoffbedarfs von wasser
EP0360276A3 (en) * 1988-09-22 1991-12-11 Kao Corporation Microbial adsorbent and microbial sensor using the same

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5447699A (en) * 1977-09-21 1979-04-14 Ajinomoto Kk Bod measuring method
JPH0442049A (ja) * 1990-06-08 1992-02-12 New Japan Radio Co Ltd バイオセンサ
JPH04337453A (ja) * 1991-05-13 1992-11-25 Mizuo Iki Bod迅速測定方法及びこれに用いる微生物電極

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112119304A (zh) * 2018-07-24 2020-12-22 哈希公司 通过将金属氧化到较高化合价的水样测量
CN112119304B (zh) * 2018-07-24 2024-04-09 哈希公司 通过将金属氧化到较高化合价的水样测量

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