WO2004017987A2 - L'heterocarpine, une proteine d'origine vegetale aux proprietes anticancereuses - Google Patents

L'heterocarpine, une proteine d'origine vegetale aux proprietes anticancereuses Download PDF

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WO2004017987A2
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    • A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis

Definitions

  • Heterocarpine a plant-based protein with anticancer properties
  • the present invention relates to a protein of plant origin with anticancer properties which fixes the human GHRH (human Growth Hormone releasing hormone or hormone releasing human growth hormone).
  • GH Growth hormone
  • IGF-1 Y Insulin-Like Growth Factor I
  • tissues skeleton, connective tissues, muscles and viscera
  • GH also has physiological activities by increasing the synthesis of nucleic acids, proteins and lipolysis while decreasing urinary secretions (Frohman LA & Kineman, RD, Handbook of Physiology, Hormonal Control of Growth, edited by Kostyo, JL & Goodman , HM (Oxford Univ. Press, New York, 1999), pp. 189-221).
  • GHRH Crowth Hormone Releasing Hormone
  • GH and GHRH are involved in many diseases. Among these, mention should be made in particular of cancer (in particular those of the prostate or of the lung), acromegaly, retinopathies and diabetic nephropathies; for these pathologies, treatment with GHRH antagonists is indicated. Due to the number of potentially affected diseases, the industry continues to seek GHRH antagonists.
  • the Applicant has therefore just isolated a new protein of plant origin, which has the property of fixing human GHRH.
  • the subject of the invention is therefore firstly an isolated protein capable of being obtained by extraction of the Pilocarpus heterophyllus plant, which is characterized in that it has a molecular mass of approximately 90.9 kDa and contains the fragments of SEQ peptide sequences. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 and SEQ. ID. NO. 3, said protein being capable of being in a glycosylated or non-glycosylated form.
  • this protein will be designated below by “heterocarpine”.
  • Said sequences SEQ. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 and SEQ. ID. NO. 3 are as follows:
  • a protein is said to be "isolated” if it is taken outside of its original environment.
  • a natural protein is isolated if it is separated from the biological material with which it coexists in the natural system.
  • the invention preferably relates to heterocarpine in its non-glycosylated form.
  • the heterocarpine is obtained from an extract of the cells of the plant Pilocarpus Heterophyllus cultivated in vitro.
  • the invention also further relates to a monoclonal antibody, or an antigen binding fragment thereof, which specifically binds heterocarpine.
  • Heterocarpine has the property of fixing human GHRH.
  • heterocarpine fixes human GHRH and thus inhibits the cyclic dAMP synthesis induced during the binding of human GHRH to its receptor.
  • the heterocarpine / human GHRH complex is formed in the blood compartment and inhibits in a dose-dependent manner the synthesis of GH induced by 10 ⁇ g of human GHRH in a mole to mole ratio.
  • Heterocarpine has the property of fixing human GHRH.
  • a subject of the invention is therefore also, as a medicament, heterocarpine in a glycosylated or non-glycosylated form. It also relates to pharmaceutical compositions containing, as active principle, heterocarpine in a glycosylated or non-glycosylated form, said composition also comprising one or more pharmaceutically acceptable excipients. It further relates to the use of heterocarpine in a glycosylated or non-glycosylated form to prepare medicaments intended to antagonize the effects of GHRH, to treat proliferative diseases (and in particular cancer), to treat acromegaly or to treat diabetic retinopathies and nephropathies.
  • heterocarpine will be particularly suitable for preparing a medicament intended to treat carcinoid and pancreatic tumors, hypothalamic-pituitary gangliocytomas, bronchial, intestinal and hepatic carcinomas, sympathoadrenergic tumors, pheochromocytomas, pituitary adenomas and thyroid carcinomas.
  • the heterocarpine will be particularly suitable for preparing a medicament intended for treating cancers whose growth is dependent on the growth factor GHRH, and in particular for preparing a medicament intended for treating a cancer chosen from small cell lung cancer and cancer of the breast (and especially small cell lung cancer).
  • the subject of the invention is also, as a medicament, a monoclonal antibody, or an antigen binding fragment thereof, which specifically binds heterocarpine. It further relates to a pharmaceutical composition comprising, as active principle, a monoclonal antibody, or an antigen binding fragment thereof, which specifically binds heterocarpine, said composition also comprising one or more pharmaceutically acceptable excipients . It further relates to the use of a monoclonal antibody, or an antigen binding fragment thereof, which specifically binds heterocarpine, to prepare medicaments intended to antagonize the effects of GHRH, to be treated proliferative diseases (and in particular cancer), to treat acromegaly or to treat retinopathies and diabetic nephropathies.
  • said monoclonal antibody or said antigen binding fragment thereof will be particularly suitable for preparing a medicament intended for treating carcinoid and pancreatic tumors, hypothalamic-pituitary gangliocytomas, bronchial and intestinal carcinomas and hepatic, sympathoadrenergic tumors, pheochromocytomas, pituitary adenomas and thyroid carcinomas.
  • the invention also relates to the use of heterocarpine as an excipient in a pharmaceutical composition intended for the sustained release of GHRH. It also relates to a pharmaceutical composition comprising GHRH, heterocarpine and one or more pharmaceutically acceptable excipients.
  • Other objects of the invention are finally the methods making it possible to extract and isolate the heterocarpine from cells of the plant Pilocarpus Heterophyllus, said cells preferably coming from cultures in vitro.
  • These methods include essentially a step of extracting the cells of the Pilocarpus Heterophyllus plant with water at a temperature of 0 to 50 ° C., and preferably from 4 to 25 ° C., said extraction step being followed by a step of filtration in order to separate the heterocarpine-rich filtrate from the cells of Pilocarpus Heterophyllus and from one or more stages of separation of the heterocarpine from the other components extracted from the plant Pilocarpus Heterophyllus.
  • these extraction and isolation methods essentially comprise the following successive stages: a) a stage of extraction of the cells of the Pilocarpus Heterophyllus plant with water at a temperature of 0 to 50 ° C., and preferably from 4 to 25 ° C, said extraction step being followed by a filtration step in order to separate the filtrate rich in heterocarpine from the cells of Pilocarpus Heterophyllus; b) a step of precipitation of the proteins extracted, for example by addition of ammonium sulfate, followed by a step of separation of the precipitate (by filtration or, preferably, by centrifugation); c) dissolving the precipitate recovered in step b) in water; and d) a gel-filtration chromatography step in order to separate the heterocarpine from the other components of the solution.
  • these extraction and isolation methods essentially comprise the following successive stages: a) a stage of extraction of the cells of the Pilocarpus Heterophyllus plant with water at a temperature of 0 to 50 ° C., and preferably from 4 to 25 ° C, said extraction step being followed by a filtration step in order to separate the filtrate rich in heterocarpine from the cells of Pilocarpus Heterophyllus; b) a degreasing step of the solution obtained in a), acidified by adding a non-oxidizing acid (for example hydrochloric acid, sulfuric acid or phosphoric acid) at a pH preferably understood between 2 and 4, using liquid-liquid extraction (preferably using an organic solvent such as dichloromethane, heptane, hexane or cyclohexane); c) a step of eliminating the tannins by bringing the degreased solution obtained in c) into contact with polyvinylpyrrolidone (or nylon 66) followed by filtration on large
  • compositions containing a compound of the invention can be in solid form such as, for example, powders, pills, granules, tablets, liposomes, capsules or suppositories.
  • the pills, tablets or capsules can be coated with a substance capable of protecting the composition from the action of stomach acid or enzymes in the stomach of the subject for a period of time sufficient to allow this composition to pass undigested in the latter's small intestine.
  • the compound can also be administered locally, for example at the site of a tumor.
  • the compound can also be administered by an extended release process (eg, using an extended release composition or an infusion pump).
  • Suitable solid carriers can be, for example, calcium phosphate, magnesium stearate, magnesium carbonate, talc, sugars, lactose, dextrin, starch, gelatin, cellulose, cellulose methyl, sodium carboxymethyl cellulose, polyvinylpyrrolidine and wax.
  • compositions containing a compound of the invention can also be presented in liquid form such as, for example, solutions, emulsions, suspensions or a sustained-release formulation.
  • suitable liquid carriers can be, for example, water, organic solvents such as glycerol or glycols such as polyethylene glycol, as well as their mixtures, in varying proportions, in water.
  • a medicament according to the invention can be done by topical, oral, parenteral route, by intramuscular injection, etc.
  • the dose of a compound according to the present invention, to be provided for the treatment of the diseases or disorders mentioned above varies according to the mode of administration, the age and the body weight of the subject to be treated as well as the state of the latter, and it will be decided ultimately by the attending physician or veterinarian. Such an amount determined by the attending physician or veterinarian is referred to herein as a "therapeutically effective amount".
  • the heterocarpine can be prepared by the process described below.
  • in vitro cultures of calluses or cell suspensions from different organs of the plant were carried out. These tissues cultivated on semi-solid or liquid medium are capable of bio-synthesizing compounds having biological properties.
  • cal is meant in the present application a macroscopic cluster of undifferentiated cells of plants in culture on a semi-solid nutritive medium.
  • undifferentiated cells are designated in the present application cells which have an ability under certain conditions to multiply in the form of a callus or a cell suspension without phenomenon of morphogenesis.
  • cell suspension is meant undifferentiated cells which can form microscopic clusters in culture in a liquid nutrition medium.
  • Pilocarpus Heterophyllus seed cells can be grown in suspension, for example according to the following procedure.
  • the organs are decontaminated according to the usual methods before cultivation. Organisms of seedlings in vitro were also used as starting material for callogenesis without requiring prior disinfection.
  • the preferred basic nutrient medium is one of the media commonly used for in vitro culture: it is Gamborg medium (described in Gamborg et al., Nutrient requirements of suspension cultures of Soybean root cells, Exp. Cell Res (1968), 50 (1), 151-158).
  • the carbon source is sucrose but glucose can also be used at a concentration of 1 to 120 g / 1, preferably about 30 g / 1. The content of macro-elements by a factor 2.
  • the medium is supplemented with auxin or an auxin and a cytokinin with a preference for the association of the 2 hormones, in general 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and kinetin, but ⁇ -naphthalene acetic acid (ANA), ⁇ -indoleacetic acid (AIA), ⁇ -indolbutanoic acid (AIB) or picloram can also be combined with kinetin or benzylaminopurine (BAP).
  • the concentration can vary from 0.1 to 10 mg / 1 for auxin (we can choose for example
  • Vitamins are those associated with different basic environments. Cultures are made in light or dark. The temperature can vary from 10 ° C to 33 ° C but will preferably be around 23 ° C. The pH of the medium is between 4 and 6.5 and preferably adjusted to 5.8 before sterilization. The medium can moreover be added or not with agar.
  • the primary calluses appear after a few days of culture and can be separated from the original implant, removed and transplanted after approximately 1 month and then cultured on semi-solid agar medium (in a tube or in a Petri dish), with passages of 4 to 8 weeks, preferably 6 weeks, it is thus possible to keep a callus for years by successive subcultures on new media.
  • the callus can also be subcultured in an agitated liquid culture medium (Erlenmeyer flask or bioreactor) with subcultures of
  • the strains obtained are distinguished by genetic origin, culture conditions, appearance and absence of morphogenesis.
  • the lyophilized Pilocarpus Heterophyllus cells are extracted with water at a temperature of 0 to 50 ° C, and preferably from 4 to 25 ° C.
  • the extract thus obtained is lyophilized before being redissolved at an adequate concentration (for example around 30% of dry matter).
  • the proteins precipitated by adding a concentrated solution of ammonium sulphate (for example at a concentration representing from 70 to 90% of the saturation concentration) are dissolved in a minimum of water and the insoluble matters are recovered by centrifugation.
  • the proteins are then separated by column chromatography (the eluent preferably being water) and the heterocarpine (identifiable by its molecular mass of approximately 90.9 kDa) can then be recovered.
  • the present invention provides binding agents, such as antibodies which specifically bind heterocarpine.
  • binding agents such as antibodies which specifically bind heterocarpine.
  • Such an agent is said to be "specifically fixing” a protein if it reacts at a detectable level (for example by an ELISA test) with said protein and does not react detectably with other proteins.
  • "Fixation” refers to a non-covalent association between 2 separate molecules so that a complex is formed.
  • the binding capacity can be assessed, for example, by determining the binding constant for the formation of the complex.
  • the binding constant is the value obtained when the value of the concentration of the complex is divided by the product of the values of the concentration of the non-complexed components. 2 products will be said to be “fixed” when the fixing constant reaches 103 1 / mol.
  • the binding constant can be determined using methods well known to those skilled in the art.
  • Any agent capable of meeting the above criteria can be considered a fixing agent.
  • a fixing agent is preferably an antibody or a fragment thereof.
  • Antibodies can be prepared by any technique available to those skilled in the art (cf. Harlow and Lane, Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988). In general, antibodies can be produced by cell culture techniques including the generation of monoclonal antibodies or via transfections of antibody genes in host cells of bacteria or mammals to produce the recombinant antibodies.
  • heterocarpine can serve as an immunogen without modification.
  • a higher immune response can be induced if the heterocarpine is joined to a transport protein such as bovine serum albumin or keyhole limpet hemocyanin.
  • the immunogen is injected into the host animal, preferably according to a predetermined schedule, and the animals are bled periodically.
  • Polyclonal antibodies specific for heterocarpine can thus be purified from such antiserum, for example, by affinity chromatography using heterocarpine coupled to an adequate solid support.
  • compositions intended for the release of GHRH are provided.
  • compositions can in particular be prepared from heterocarpine and GHRH according to one of the methods described in the review by De Wolf and Brett, Pharmacological Reviews (2000), 52, 207-236 and the references cited therein. Unless otherwise defined, all technical and scientific terms used herein have the same meaning as that commonly understood by an ordinary specialist in the field to which this invention belongs. Likewise, all publications, patent applications, all patents and all other references mentioned herein are incorporated by reference.
  • a seed of Pilocarpus Heterophyllus is put to germinate and the stem resulting from this germination is taken.
  • Said stem is cultured in Gamborg medium (Gamborg et al., Nutrient requirements of suspension cultures of Soybean root cells, Exp. Cell Res. (1968), 50 (1), 151-158) supplemented with 30 g / 1 of sucrose, 1 mg / 1 of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 0.06 mg / 1 of kinetin.
  • the culture is carried out in tubes at a temperature of 23 ° C and in the dark. Transplants are carried out every 6 weeks under usual conditions.
  • the strains, with a grainy appearance have a beige pigmentation.
  • 25 g of lyophilized Pilocarpus Heterophyllus cells are extracted twice by immersion in 375 ml of water at 4 ° C, and left overnight at 4 ° C, then in 250 ml of water at 4 ° C for 4 hours and finally washed with 125 ml of water at 4 ° C.
  • Each aqueous solution thus obtained is filtered under vacuum through a glass filter surmounted by celite to separate cell debris from the aqueous solution.
  • the aqueous solutions thus combined are then lyophilized to obtain 9.4 g of dry matter.
  • the lyophilized dry extract is then dissolved in 31 ml of water at 20 ° C to obtain a solution containing 30% of dry extract.
  • the purity of the product obtained is demonstrated by the appearance of a single band on an electrophoresis gel containing sodium dodecyl sulfate (SDS PAGE).
  • SDS PAGE sodium dodecyl sulfate
  • the product corresponding to this band is designated in the following as heterocarpine.
  • the cells cultured in vitro according to the same procedure as that described in Example 1 above are extracted according to the method described below.
  • the cells and the extract are filtered by suction on a frit (porosity 3, diameter of 20 cm) covered with a bed of celite (previously washed with acid; 1 to 2 cm thick).
  • the recovered cells are washed with 400 ml of demineralized water before being eliminated.
  • the aqueous filtrate is then acidified to pH 3.0 by adding approximately 10 ml of 18% hydrochloric acid.
  • the acidified solution is then degreased by liquid-liquid extraction using 400 ml of dichloromethane.
  • the dichloromethane phase is decanted and then eliminated.
  • the degreased solution is subjected to rotary evaporation to remove the residual dichloromethane.
  • About 30 g of polyvinylpyrrolidone are then added to the degreased solution (pH about 3.0) and the mixture is stirred for about 30 minutes to remove the tannins.
  • the mixture is filtered a bed by suction on a frit (porosity 3, diameter 10 cm) covered with a mixed bed composed of 25 g of celite
  • the majority of the heterocarpine is recovered in the first three 3 column volumes of buffer containing the concentration ⁇ M of NaCl.
  • the active fractions were desalted by passage through a Sephadex ® G25 column (bed volume: 260 ml) using demineralized water as eluent.
  • the active fractions, found in the first column volume corresponding to the dead volume, are then lyophilized to obtain 170 mg of heterocarpine.
  • the heterocarpine thus obtained is practically single-band on SDS PAGE gel.
  • the samples are loaded onto a 10% polyacrylamide gel. After migration, the gels are fixed and stained with Coomassie blue.
  • the gel tracks represented in FIG. 3 corresponding to tracks 1, 2, 3, 4 and 5 are respectively the molecular weight marker (Amersham), 0.5, 1 and 2 ⁇ g of the content of the final heterocarpine fraction such that obtained in Example 1 and the molecular weight marker (Amersham). Determining the molecular weight using a standard curve for the molecular weight marker using conventional computer tools well known to those skilled in the art (for example, Bio-Profil BiolD software from Viber Lourmat) makes it possible to show that the heterocarpine has a molecular mass of 90.9 kiloDaltons ( ⁇ 1.6 kiloDaltons).
  • the polyacrylamide band containing the protein is cut and digested in 300 ⁇ l of digestion buffer containing 50 mM Tris (pH 8.6), 0.03% of sodium dodecyl sulfate at 35 ° C for 18 hours in the presence of 0.4 ⁇ g of endolysin-C (Sigma).
  • the peptides obtained are separated, by HPLC, on an in-line column of DEAE-C18 with a diameter of 1 mm. The separation gradient is based on a mixture of acetonitrile (2 to 70%) and 0.1% trifluoroacetic acid (TFA).
  • the sequencing is then carried out on a Procise sequencer (Applied Biosystem). Three peaks were thus sequenced, making it possible to uniquely characterize the heterocarpine.
  • the corresponding sequences are identified in this application by SEQ. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 and SEQ. ID. NO. 3.
  • the analysis of the glycoproteins is carried out by the detection of sugar structures of the glycoproteins separated by SDS-PAGE gel.
  • This detection system is a modification of the “Periodic acid-Schiff” methods and leads to the appearance of magenta bands highlighting the glycoproteins (Sigma).
  • the result reproduced in FIG. 4 is obtained for heterocarpine as obtained in Example 1.
  • HEK-293 Human kidney embryonic cells, HEK-293, (a cell line developed by Dr. Stuart Sealfon, Mount Sinai Medical School, New York, New York) stably expressing the human GHRH receptor were obtained from Dr. Kelly Mayo (Northwestern University, Chicago, IL).
  • the HEK-293 cells stably transfected with the human GHRH receptor described above are cultured in DMEM (Eagle medium modified by Dulbecco, high glucose content; supplied by Life technologies) supplemented with 0.4 mg / ml of G418 (Life technologies) in the presence of 10% fetal calf serum and 4 mM L-glutamine (Life technologies).
  • DMEM Stemcell medium modified by Dulbecco, high glucose content; supplied by Life technologies
  • the cells are homogenized in buffer A containing 50 mM HEPES (pH 7.4), 5 mM magnesium chloride (MgCl 2 ), 2 mM ethylene glycol-bis (2-amino-ethyl) -N, N, N ', N'-tetraacetic (EGTA) and 50 ⁇ g / ml of bacitracin then are subjected to sonication in the same buffer A.
  • the cells thus homogenized are centrifuged at 4 ° C at 39,000 g for 10 minutes, suspended in the buffer A and re-centrifuged at 4 ° C at 40,000 g for 10 minutes. Total membrane proteins are quantified by the Bradford technique.
  • the diaphragm membranes are thus stored at -80 ° C for later use.
  • the membranes of the HEK-293 cells transfected stably with the human GHRH receptor are diluted to the concentration of 100 ⁇ g / ml in the reaction buffer containing 50 mM HEPES (pH 7.4), 5 mM MgCl 2 , 2 mM EGTA,
  • HEK-293 cells stably transfected with the human GHRH receptor are distributed in 48-well culture plates and cultured for 3 days.
  • the culture medium is then removed and replaced by medium B containing 250 ⁇ l of DMEM (Eagle medium modified by Dulbecco, high glucose content; supplied by Life technologies) in the presence of 0.5% BSA, 0.5 mM of 3-isobutyl-1-methylxanthine (-OBMX) and pre-incubated for 5 minutes at 37 ° C.
  • BSA 0.5 mM of 3-isobutyl-1-methylxanthine
  • the heterocarpine is tested for an additional 20 minutes. The concentrations observed are reported in Figure 2. Incubation is stopped by adding 100 ⁇ l of 0.1 HCl and the aliquots are analyzed for their content in cyclic AMP using the FlashPlate kit (New England Nuclear).
  • GH levels in rats males, Sprague Dawley are measured in blood samples by an enzyme immunoassay developed by Spi-Bio (Spi-Bio, France).
  • the rats are treated by intravenous injection of heterocarpine in increasing doses (vehicle alone, 1, 3 and 10 nmol), then, 10 minutes later, by intravenous injection of 10 ⁇ g (3 nmol) of hGHRH.
  • 10 ⁇ g (3 nmol) of hGHRH Ten minutes after the injection of hGHRH, growth hormone levels are measured in blood samples as described above. The results obtained are shown in Figure 5.
  • Human tumor cells and in particular H-69 small cell lung cancer cells are injected under the skin of athymic mice in order to produce a xenograft of human tumor of approximately 80 mm 3 ten days after the first transplant.
  • the mice are treated every two days by intravenous injection of heterocarpine in increasing doses (vehicle alone, 2.5 mg / kg, 5 mg / kg and 10 mg / kg).
  • the tumor volume is then measured every 4 days for the duration of the treatment.
  • Figure 1 is a curve representing the inhibition of binding of human GHRH to the human GHRH receptor as a function of increasing concentrations of heterocarpine.
  • Figure 2 is a curve depicting the inhibition of cyclic AMP production in cells stably transfected with the human GHRH receptor in the presence of 10 nM human GHRH as a function of increasing concentrations of heterocarpine.
  • Figure 3 is a reproduction of an SDS-PAGE protein gel plate showing the presence of heterocarpine having a molecular weight of 90.9 kDa.
  • Figure 4 is a reproduction of an SDS-PAGE protein gel plate showing that heterocarpine is a glycoprotein (Panel B).
  • Figure 5 is a representation in the form of histograms representing the inhibition of GH synthesis in rats in the presence of 10 ⁇ g of human GHRH as a function of increasing concentrations of heterocarpine.

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Abstract

L'invention concerne une protéine d'origine végétale aux propriétés anticancéreuses qui fixe le GHRH humain (human Growth Hormone releasing hormone ou hormone libératrice d'hormone de croissance humaine). Cette protéine, obtenue à partir de la plante Pilocarpus Heterophyllus, est particulièrement adaptée pour préparer un médicament destiné à traiter les cancers dont la croissance est dépendante du facteur de croissance GHRH, et notamment pour préparer un médicament destiné à traiter un cancer choisi parmi le cancer du poumon à petites cellules et le cancer du sein.

Description

L'hétérocarpine, une protéine d'origine végétale aux propriétés anticancéreuses
La présente invention concerne une protéine d'origine végétale aux propriétés anticancéreuses qui fixe le GHRH humain (human Growth Hormone releasing hormone ou hormone libératrice d'hormone de croissance humaine).
L'hormone de croissance (« GH ») est une protéine de 191 acides aminés qui stimule la production de nombreux facteurs de croissance, comme Y Insulin-Like Growth Factor I (IGF-1) et déclenche la croissance d'un grand nombre de tissus (squelette, tissus connectifs, muscles et viscères). GH possède également des activités physiologiques en augmentant la synthèse des acides nucléiques, des protéines et de la lipolyse tout en diminuant les sécrétions urinaires (Frohman L.A. & Kineman, R.D., Handbook of Physiology, Hormonal Control of Growth, édité par Kostyo, J.L. & Goodman, H.M. (Oxford Univ. Press, New York, 1999), p. 189-221).
La synthèse de GH est régulée par des facteurs à action positive ou négative sécrétés par l'hypothalamus. Le facteur majoritaire contrôlant la production de GH est le « Growth Hormone Releasing Hormone » (GHRH), peptide de 44 acides aminés chez l'homme.
GH et GHRH sont impliqués dans de nombreuses maladies. Parmi celles-ci, il y a lieu de citer notamment le cancer (en particulier ceux de la prostate ou du poumon), Pacromégalie, les rétinopathies et les néphropathies diabétiques ; pour ces pathologies, un traitement par des antagonistes de GHRH est indiqué. Du fait du nombre de maladies potentiellement concernées, l'industrie continue à chercher des antagonistes de GHRH.
La demanderesse vient donc justement d'isoler une nouvelle protéine d'origine végétale, laquelle a pour propriété de fixer le GHRH humain.
L'invention a donc en premier lieu pour objet une protéine isolée susceptible d'être obtenue par extraction de la plante Pilocarpus heterophyllus, laquelle est caractérisée en ce qu'elle possède une masse moléculaire d'environ 90,9 kDa et comporte les fragments de séquences peptidiques SEQ. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 et SEQ. ID. NO. 3, ladite protéine étant susceptible de se présenter sous une forme glycosylée ou non glycosylée. Pour simplifier l'exposé qui suit, cette protéine sera désignée ci-après par « hétérocarpine ». Lesdites séquences SEQ. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 et SEQ. ID. NO. 3 sont les suivantes :
SEQ. ID. NO. 1 KLIGARYFDK
SEQ. ID. NO. 2 YGEDEVGVIDSGN SEQ. ID. NO. 3 PESESY
La nomenclature utilisée ci-dessus (comme dans le reste de la présente demande) pour définir les peptides est celle spécifiée par la « --UPAC-RJB Commissioner on Biochemical Nomenclature » dans laquelle, en accord avec la représentation conventionnelle, l'acide aminé au niveau N-terminal (groupe amino) apparaît à gauche et l'acide aminé au niveau C-terminal (groupe carboxyle) apparaît à droite. Le terme « acide aminé naturel » indique l'un des L-acides aminés naturels trouvé dans les protéines naturelles : Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Ser, Thr, Lys, Arg, Asp, Asn, Glu, Gin, Cys, Met, Phe, Tyr, Pro, Trp et His.
Une protéine est dite « isolée » si elle est prise hors de son environnement original. En particulier, une protéine naturelle est isolée si elle est séparée du matériel biologique avec lequel elle coexiste dans le système naturel.
L'invention concerne de préférence l'hétérocarpine sous sa forme non glycosylée.
Selon une variante préférée de l'invention, l'hétérocarpine est obtenue à partir d'un extrait des cellules de la plante Pilocarpus Heterophyllus cultivées in vitro.
L'invention a par ailleurs également pour objet un anticorps monoclonal, ou un fragment de liaison de l'antigène de celui-ci, qui fixe spécifiquement Phétérocarpine.
L'hétérocarpine a pour propriété de fixer le GHRH humain. In vitro, l'hétérocarpine fixe le GHRH humain et inhibe ainsi la synthèse dAMP cyclique induite lors de la fixation du GHRH humain sur son récepteur. In vivo, chez le rat, le complexe hétérocarpine/GHRH humain se forme dans le compartiment sanguin et inhibe de manière dose-dépendante la synthèse de GH induite par 10 μg de GHRH humain dans un rapport mole à mole. L'hétérocarpine a pour propriété de fixer le GHRH humain.
Ces propriétés rendent les composés de l'invention aptes à une utilisation pharmaceutique. L'invention a donc également pour objet, à titre de médicament, l'hétérocarpine sous une forme glycosylée ou non glycosylée. Elle concerne aussi des compositions pharmaceutiques contenant, à titre de principe actif, l'hétérocarpine sous une forme glycosylée ou non glycosylée, ladite composition comprenant aussi un ou des excipients pharmaceutiquement acceptables. Elle a de plus pour objet l'utilisation de l'hétérocarpine sous une forme glycosylée ou non glycosylée pour préparer des médicaments destinés à antagoniser les effets de GHRH, à traiter les maladies prolifératives (et notamment le cancer), à traiter l'acromégalie ou à traiter les rétinopathies et les néphropathies diabétiques. En ce qui concerne le cancer, l'hétérocarpine sera particulièrement adaptée pour préparer un médicament destiné à traiter les tumeurs carcinoïdes et pancréatiques, les gangliocytomes hypothalamo- hypophysaires, les carcinomes bronchiques, intestinaux et hépatiques, les tumeurs sympathoadrénergiques, les phéochromocytomes, les adénomes hypophysaires et les carcinomes thyroïdiens. L'hétérocarpine sera particulièrement adaptée pour préparer un médicament destiné à traiter les cancers dont la croissance est dépendante du facteur de croissance GHRH, et notamment pour préparer un médicament destiné à traiter un cancer choisi parmi le cancer du poumon à petites cellules et le cancer du sein (et tout particulièrement le cancer du poumon à petites cellules).
L'invention a encore pour objet, en tant que médicament, un anticorps monoclonal, ou un fragment de liaison de l'antigène de celui-ci, qui fixe spécifiquement l'hétérocarpine. Elle concerne de plus une composition pharmaceutique comprenant, à titre de principe actif, un anticorps monoclonal, ou un fragment de liaison de l'antigène de celui-ci, qui fixe spécifiquement l'hétérocarpine, ladite composition comprenant aussi un ou des excipients pharmaceutiquement acceptables. Elle concerne en outre l'utilisation d'un anticorps monoclonal, ou d'un fragment de liaison de l'antigène de celui-ci, qui fixe spécifiquement l'hétérocarpine, pour préparer des médicaments destinés à antagoniser les effets de GHRH, à traiter les maladies prolifératives (et notamment le cancer), à traiter l'acromégalie ou à traiter les rétinopathies et les néphropathies diabétiques. En ce qui concerne le cancer, ledit anticorps monoclonal ou ledit fragment de liaison de l'antigène de celui-ci sera particulièrement adapté pour préparer un médicament destiné à traiter les tumeurs carcinoïdes et pancréatiques, les gangliocytomes hypothalamo- hypophysaires, les carcinomes bronchiques, intestinaux et hépatiques, les tumeurs sympathoadrénergiques, les phéochromocytomes, les adénomes hypophysaires et les carcinomes thyroïdiens.
L'invention concerne encore l'utilisation de l'hétérocarpine comme excipient dans une composition pharmaceutique destinée à la libération prolongée de GHRH. Elle concerne aussi une composition pharmaceutique comprenant GHRH, de l'hétérocarpine et un ou des excipients pharmaceutiquement acceptables.
D'autre objets de l'invention sont enfin les procédés permettant d'extraire et d'isoler l'hétérocarpine à partir de cellules de la plante Pilocarpus Heterophyllus, lesdites cellules provenant de préférence de cultures in vitro. Ces procédés comprennent essentiellement une étape d'extraction des cellules de la plante Pilocarpus Heterophyllus avec de l'eau à une température de 0 à 50 °C, et de préférence de 4 à 25 °C, ladite étape d'extraction étant suivie d'une étape de filtration afin de séparer le filtrat riche en hétérocarpine des cellules de Pilocarpus Heterophyllus et d'une ou plusieurs étapes de séparation de l'hétérocarpine des autres composants extraits de la plante Pilocarpus Heterophyllus.
Selon une première variante, ces procédés d'extraction et d'isolement comprennent essentiellement les étapes successives suivantes : a) une étape d'extraction des cellules de la plante Pilocarpus Heterophyllus avec de l'eau à une température de 0 à 50 °C, et de préférence de 4 à 25 °C, ladite étape d'extraction étant suivie d'une étape de filtration afin de séparer le filtrat riche en hétérocarpine des cellules de Pilocarpus Heterophyllus ; b) une étape de précipitation des protéines extraites, par exemple par addition de sulfate d'ammonium, suivie d'une étape de séparation du précipité (par filtration ou, de préférence, par centrifugation) ; c) la mise en solution du précipité récupéré à l'étape b) dans de l'eau ; et d) une étape de chromatographie par gel-filtration afin de séparer l'hétérocarpine des autres composants de la solution.
Selon une autre variante, ces procédés d'extraction et d'isolement comprennent essentiellement les étapes successives suivantes : a) une étape d'extraction des cellules de la plante Pilocarpus Heterophyllus avec de l'eau à une température de 0 à 50 °C, et de préférence de 4 à 25 °C, ladite étape d'extraction étant suivie d'une étape de filtration afin de séparer le filtrat riche en hétérocarpine des cellules de Pilocarpus Heterophyllus ; b) une étape de dégraissage de la solution obtenue en a), acidifiée par ajout d'un acide non oxydant (par exemple de l'acide chlorhydrique, de l'acide sulfurique ou de l'acide phosphorique) à un pH de préférence compris entre 2 et 4, à l'aide d'une extraction liquide-liquide (de préférence en utilisant un solvant organique comme le dichlorométhane, l'heptane, l'hexane ou le cyclohexane) ; c) une étape d'élimination des tannins par mise en contact de la solution dégraissée obtenue en c) avec de la polyvinylpyrrolidone (ou encore du nylon 66) suivie d'une filtration sur résine à pores larges (de préférence une telle résine à base de polystyrènes comme la résine Diaion® HP-20) ; d) le passage à pH alcalin (de préférence entre pH 9 et 11) du filtrat obtenu après l'étape c) par ajout d'une base comme l'hydroxyde d'ammonium, l'hydroxyde de sodium ou l'hydroxyde de potassium ; e) une ou des étapes de filtration sur résine échangeuse d'anions, l'éluant pour cette ou ces étapes de filtration étant de préférence une solution tampon ayant un pH entre 9 et 11 et contenant éventuellement des gradients de concentration en un sel (comme par exemple le chlorure de sodium ou le sulfate d'ammonium), afin de séparer l'hétérocarpine des autres composants de la solution ; et f) une étape de dessalage consistant en le passage de la solution obtenue à l'étape e) sur une résine séparant les constituants d'un mélange en fonction de leur masse moléculaire (comme la résine Sephadex® G25 ou Superdex® 200 HR) et l'élution de ce mélange sur ladite résine avec de l'eau.
Les compositions pharmaceutiques contenant un composé de l'invention peuvent être sous forme solide comme, par exemple, les poudres, pilules, granules, comprimés, liposomes, gélules ou suppositoires. Les pilules, les comprimés ou les gélules peuvent être revêtus d'une substance capable de protéger la composition de l'action de l'acide gastrique ou des enzymes dans l'estomac du sujet pendant une période de temps suffisante pour permettre à cette composition de passer non digérée dans l'intestin grêle de ce dernier. Le composé peut aussi être administré localement, par exemple à l'emplacement même d'une tumeur. Le composé peut aussi être administré selon un processus de libération prolongée (par exemple en utilisant une composition à libération prolongée ou une pompe de perfusion). Les supports solides appropriés peuvent être, par exemple, le phosphate de calcium, le stéarate de magnésium, le carbonate de magnésium, le talc, les sucres, le lactose, la dextrine, l'amidon, la gélatine, la cellulose, la cellulose de méthyle, la cellulose carboxyméthyle de sodium, la polyvinylpyrrolidine et la cire.
Les compositions pharmaceutiques contenant un composé de l'invention peuvent également se présenter sous forme liquide comme, par exemple, des solutions, des émulsions, des suspensions ou une formulation à libération prolongée. Les supports liquides appropriés peuvent être, par exemple, l'eau, les solvants organiques tels que le glycérol ou les glycols tel que le polyéthylène glycol, de même que leurs mélanges, dans des proportions variées, dans l'eau.
L'administration d'un médicament selon l'invention pourra se faire par voie topique, orale, parentérale, par injection intramusculaire, etc. La dose d'un composé selon la présente invention, à prévoir pour le traitement des maladies ou troubles mentionnés ci-dessus, varie suivant le mode d'administration, l'âge et le poids corporel du sujet à traiter ainsi que l'état de ce dernier, et il en sera décidé en définitive par le médecin ou le vétérinaire traitant. Une telle quantité déterminée par le médecin ou le vétérinaire traitant est appelée ici "quantité thérapeutiquement efficace".
Conformément à l'invention, on peut préparer l'hétérocarpine par le procédé décrit ci-après.
Préparation de l'hétérocarpine
Selon une variante préférée de l'invention, des cultures in vitro de cals ou de suspensions cellulaires issus de différents organes de la plante ont été effectuées. Ces tissus cultivés sur milieu semi-solide ou liquide sont capables de bio-synthétiser des composés ayant des propriétés biologiques.
Par « cal », il faut entendre dans la présente demande un amas macroscopique de cellules indifférenciées de plantes en culture sur un milieu nutritif semi-solide. Par « cellules indifférenciées » sont désignées dans la présente demande des cellules qui ont une aptitude sous certaines conditions à se multiplier sous forme d'un cal ou d'une suspension cellulaire sans phénomène de morphogenèse. Enfin, par « suspension cellulaire », on entend des cellules indifférenciées pouvant former des amas microscopiques en culture dans un milieu de nutrition liquide.
Le choix du milieu nutritif, des hormones, des conditions de culture font partie intégrante de l'invention ainsi que l'extraction et l'analyse de l'extrait à partir de ces cultures in vitro.
Les cellules de graines de Pilocarpus Heterophyllus peuvent être cultivées en suspension par exemple selon la procédure ci-après.
Les organes sont décontaminés selon les méthodes habituelles avant la mise en culture. Des organes de plantules in vitro ont également servi de matériel de départ à la callogénèse sans nécessiter de désinfection préalable. Le milieu nutritif de base préféré est l'un des milieux couramment utilisés pour la culture in vitro : il s'agit du milieu de Gamborg (décrit dans Gamborg et coll., Nutrient requirements of suspension cultures of Soybean root cells, Exp. Cell Res. (1968), 50(1), 151-158). La source de carbone est le saccharose mais le glucose peut également être employé à une concentration de 1 à 120 g/1, de préférence de 30 g/1 environ. On peut également diminuer la teneur en macro-éléments par un facteur 2. Le milieu est additionné d'auxine ou d'une auxine et d'une cytokinine avec une préférence pour l'association des 2 hormones, en général l'acide 2,4-dichlorophénoxyacétique et la kinétine, mais l'acide α-naphtalèneacétique (ANA), l'acide β-indoleacétique (AIA), l'acide β-indolbutanoïque (AIB) ou le picloram peuvent aussi être combinés à la kinétine ou à la benzylaminopurine (BAP). La concentration peut varier de 0,1 à 10 mg/1 pour l'auxine (on pourra choisir par exemple
1 mg/1), et de 0,01 à 2 mg/1 pour la cytokinine (on pourra choisir par exemple 0,06 mg/1). Les vitamines sont celles associées aux différents milieux de base. Les cultures sont faites à la lumière ou à l'obscurité. La température peut varier de 10 °C à 33 °C mais sera préférentiellement d'environ 23 °C. Le pH du milieu est compris entre 4 et 6,5 et préférentiellement ajusté à 5,8 avant stérilisation. Le milieu peut par ailleurs être additionné ou non d'agar.
Les cals primaires apparaissent après quelques jours de culture et peuvent être séparés de l'implant d'origine, prélevés et repiqués après environ 1 mois puis cultivés sur milieu semi-solide gélose (en tube ou en boite de Pétri), avec des passages de 4 à 8 semaines, de préférence 6 semaines, on peut ainsi conserver un cal pendant des années par repiquages successifs sur des milieux neufs. On peut également repiquer le cal dans un milieu de culture liquide agité (fiole erlenmeyer ou bioréacteur) avec des repiquages de
2 à 6 semaines de préférence 3 semaines.
Les souches obtenues se distinguent par l'origine génétique, les conditions de culture, l'aspect et l'absence de morphogénèse.
Les cellules de Pilocarpus Heterophyllus lyophilisées sont extraites avec de l'eau à une température de 0 à 50 °C, et de préférence de 4 à 25 °C. L'extrait ainsi obtenu est lyophilisé avant d'être redissous à une concentration adéquate (par exemple environ 30 % de matière sèche). Les protéines précipitées par ajout d'une solution concentrée de sulfate d'ammonium (par exemple à une concentration représentant de 70 à 90 % de la concentration de saturation) sont dissoutes dans un minimum d'eau et les matières insolubles sont récupérées par centrifugation. Les protéines sont ensuite séparées par chromatographie sur colonne (l'éluant étant de préférence de l'eau) et l'hétérocarpine (identifiable par sa masse moléculaire d'environ 90,9 kDa) peut alors être récupérée.
Préparation d'anticorps fixant spécifiquement l'hétérocarpine
La présente invention fournit des agents de fixation, comme les anticorps qui fixent spécifiquement l'hétérocarpine. Un tel agent est dit comme « fixant spécifiquement » une protéine s'il réagit à un niveau détectable (par exemple par un essai ELISA) avec ladite protéine et ne réagit pas de manière détectable avec d'autres protéines. « La fixation » se réfère à une association non covalente entre 2 molécules séparées de telle sorte qu'un complexe se forme. La capacité à la fixation peut être évaluée, par exemple, par la détermination de la constante de fixation pour la formation du complexe. La constante de fixation est la valeur obtenue lorsque la valeur de la concentration du complexe est divisée par le produit des valeurs des concentration des composants non complexés. 2 produits seront dits « fixés » lorsque la constante de fixation atteint 103 1/mol. La constante de fixation peut être déterminée en utilisant des méthodes bien connues de l'homme du métier.
N'importe quel agent capable de répondre aux critères ci-dessus peut être considéré comme un agent fixant.
Dans la présente invention, un agent de fixation est de préférence un anticorps ou un fragment de celui-ci. Les anticorps peuvent être préparés par n'importe quelle technique disponible à l'homme du métier (cf. Harlow et Lane, Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988). En général, les anticorps peuvent être produits par des techniques de culture cellulaire incluant la génération d'anticorps monoclonaux ou via des transfections de gènes d'anticorps dans des cellules hôtes de bactéries ou de mammifères afin de produire les anticorps recombinants.
Parmi d'autres techniques, on préférera employer celles décrites ci-après. Un immunogène contenant l'hétérocarpine est injecté chez un groupe de mammifères (par exemple des souris, rats, lapins, moutons ou chèvres). Dans cette étape, l'hétérocarpine peut servir d' immunogène sans modification. Alternativement, une réponse immunitaire supérieure peut être induite si l'hétérocarpine est jointe à une protéine de transport comme l'albumine de sérum bovin ou l'hémocyanine de patelle. L'immunogène est injecté chez l'animal hôte, de préférence selon un schéma prédéterminé, et les animaux sont saignés périodiquement. Des anticorps poly-clonaux spécifiques de l'hétérocarpine peuvent ainsi être purifiés à partir de tels antisérum, par exemple, par chromatographie d'affinité en utilisant de l'hétérocarpine couplée à un support solide adéquat.
Compositions pharmaceutiques destinées à la libération de GHRH :
Ces compositions peuvent notamment être préparées à partir de l'hétérocarpine et de GHRH selon l'une des méthodes décrites dans la revue de De Wolf et Brett, Pharmacological Reviews (2000), 52, 207-236 et les références qui y sont citées. A moins qu'ils ne soient définis d'une autre manière, tous les termes techniques et scientifiques utilisés ici ont la même signification que celle couramment comprise par un spécialiste ordinaire du domaine auquel appartient cette invention. De même, toutes les publications, demandes de brevets, tous les brevets et toutes autres références mentionnées ici sont incorporées par référence.
Les exemples suivants sont présentés pour illustrer les procédures ci-dessus et ne doivent en aucun cas être considérés comme une limite à la portée de l'invention.
OBTENTION DE L'HETEROCARPINE
Exemple 1 :
Culture de cellules in vitro :
Une graine de Pilocarpus Heterophyllus est mise à germer et la tige issue de cette germination est prélevée. Ladite tige est mise en culture dans un milieu de Gamborg (Gamborg et coll., Nutrient requirements of suspension cultures of Soybean root cells, Exp. Cell Res. (1968), 50(1), 151-158) additionné de 30 g/1 de saccharose, de 1 mg/1 d'acide 2,4-dichlorophénoxyacétique et de 0,06 mg/1 de kinétine. La culture est effectuée dans des tubes à une température de 23° C et dans l'obscurité. Des repiquages sont effectués toutes les 6 semaines dans des conditions habituelles. Les souches, d'aspect granuleux, possèdent une pigmentation beige. Une cinétique de croissance des souches, basée sur l'augmentation de masse de matière fraîche et sèche de la biomasse, a été réalisée sur 8 semaines. Les cals de 2 tubes sont réunis et constituent une récolte bihebdomadaire, la première récolte ayant lieu au temps 0. Cals et gélose sont ensuite récoltés et lyophilisés. On constate que la croissance est exponentielle jusqu'à 6 semaines de culture avant l'apparition d'une phase stationnaire de croissance.
Extraction des cultures cellulaires :
25 g de cellules de Pilocarpus Heterophyllus lyophilisées sont extraites 2 fois par immersion dans 375 ml d'eau à 4° C, et laissées la nuit à 4° C, puis dans 250 ml d'eau à 4° C pendant 4 heures et finalement lavées avec 125 ml d'eau à 4° C. Chaque solution aqueuse ainsi obtenue est filtrée sous vide au travers d'un filtre de verre surmonté de célite pour séparer les débris cellulaires de la solution aqueuse. Les solutions aqueuses ainsi combinées sont ensuite lyophilisées pour obtenir 9,4 g de matière sèche. L'extrait sec lyophilisé est ensuite dissous dans 31 ml d'eau à 20° C pour obtenir une solution contenant 30 % d'extrait sec. 17,4 g de sulfate d'ammonium sont ajoutés par petites portions avec une agitation magnétique constante pour précipiter la fraction protéique. Le précipité protéique est ensuite séparé de la solution de sulfate d'ammonium par centrifugation à 3000 rpm pendant 20 minutes. La solution de sulfate d'ammonium est décantée et les protéines précipitées sont dissoutes dans 22 ml d'eau, re-centrifugées et filtrées pour éliminer les particules insolubles. Le filtrat obtenu est ensuite soumis à une chromatographie par gel-filtration. Il est injecté dans une colonne (Buchi N° 19678, L = 230 mm ; diamètre interne = 26 mm) remplie de Superdex ™ 200 (Amersham Pharmacia Biotech, référence n° 17-1043-01 ; particules de diamètre moyen de 13 μm) préparée selon les recommandations du fabricant en utilisant de l'eau ultra-pure (Water's Milli-Q) comme éluant à un débit de 5 ml par minute. Des fractions de 40 ml sont ainsi collectées et la protéine active est trouvée dans la troisième et la quatrième fraction. Ces fractions sont lyophilisées pour obtenir environ 14,2 mg de produit actif.
La pureté du produit obtenu est démontrée par l'apparition d'une seule bande sur gel d'électrophorèse contenant du dodécylsulfate de sodium (SDS PAGE). Le produit correspondant à cette bande est désigné dans ce qui suit comme l'hétérocarpine.
Exemple 2 :
Les cellules cultivées in vitro selon la même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 ci-dessus sont extraites selon la méthode décrite ci-après.
100 g de cellules de Pilocarpus Heterophyllus lyophilisées sont extraites à l'aide de 2 litres d'eau déminéralisée à 20 °C, le mélange étant maintenu agité pendant une nuit.
Les cellules et l'extrait sont filtrés par succion sur fritte (porosité 3, diamètre de 20 cm) recouvert d'un lit de célite (préalablement lavée avec de l'acide ; 1 à 2 cm d'épaisseur).
Les cellules récupérées sont lavées avec 400 ml d'eau déminéralisée avant d'être éliminées. Le filtrat aqueux est ensuite acidifié à pH 3,0 par addition d'environ 10 ml d'acide chlorhydrique à 18%. La solution acidifiée est ensuite dégraissée par extraction liquide-liquide à l'aide de 400 ml de dichlorométhane. La phase dichlorométhane est décantée puis éliminée. La solution dégraissée est soumise à une évaporation rotative pour éliminer le dichlorométhane résiduel. Environ 30 g de polyvinylpyrrolidone sont ensuite ajoutés à la solution dégraissée (pH environ 3,0) et le mélange est agité pendant environ 30 minutes pour éliminer les tannins. Le mélange est filtré un lit par succion sur fritte (porosité 3, diamètre de 10 cm) recouvert d'un lit mixte composé de 25 g de célite
(préalablement lavée avec de l'acide) et 25 g de polyvinylpyrrolidone. Le filtrat est ensuite passé à travers un lit de 400 ml de Diaion® HP -20 (Mitsubishi Chemical Company) pré-activé selon les instructions du fabricant. Le filtrat résultant est ensuite rendu alcalin (pH 10) par addition d'environ 60 ml d'une solution d'hydroxyde d'ammonium à 20%. Une légère précipitation apparaît après 30 minutes de repos. 1 g de célite (préalablement lavée avec de l'acide) est ajouté à la solution alcaline qui est ensuite filtrée par succion à travers un filtre à membrane (0,22 μm). Environ 2 litres de filtrat sont ensuite passés à travers une colonne HiPrep® Q XL 16/10, montée sur un purificateur Akta® et pré-équilibrée à pH 10,2 avec un tampon pipérazine/HCl 0,1 , avec un débit de 0,5 ml par minute (la colonne HiPrep® et le purificateur Akta® sont tous deux des produits de la société Amersham Biosciences). La colonne est ensuite successivement lavée avec 6 volumes de colonne du tampon de départ à pH 10,2, 5 volumes de colonne du même tampon contenant une concentration 0,2 de NaCl; et 10 volumes de colonne du même tampon contenant une concentration l de NaCl. La majorité de l'hétérocarpine est récupérée dans les trois premiers 3 volumes de colonne de tampon contenant la concentration \M de NaCl. Les fractions actives sont dessalées par passage à travers une colonne Sephadex® G25 (volume du lit : 260 ml) en utilisant de l'eau déminéralisée comme éluant. Les fractions actives, trouvées dans le premier volume de colonne correspondant au volume mort, sont ensuite lyophilisées pour obtenir 170 mg d'hétérocarpine. L'hétérocarpine ainsi obtenue est pratiquement mono- bande sur gel SDS PAGE.
CARACTERISATION DE L'HETEROCARPINE
Analyse et micro-séquençage :
Les échantillons sont chargés sur un gel de polyacrylamide à 10 %. Après migration, les gels sont fixés et colorés au bleu de Coomassie.
Les pistes du gel représenté dans la Figure 3 correspondant aux pistes 1, 2, 3, 4 et 5 sont respectivement le marqueur de poids moléculaire (Amersham), 0,5, 1 et 2 μg du contenu de la fraction finale d'hétérocarpine telle qu'obtenue à l'exemple 1 et le marqueur de masse moléculaire (Amersham). La détermination de la masse moléculaire grâce à une courbe standard du marqueur de masse moléculaire en utilisant des outils informatiques classiques et bien connus de l'homme de l'art (par exemple, le logiciel Bio-Profil BiolD de Viber Lourmat) permet de montrer que l'hétérocarpine possède une masse moléculaire de 90,9 kiloDaltons (± 1,6 kiloDaltons). Pour l'analyse par micro-séquençage de protéine, la bande de polyacrylamide contenant la protéine est découpée et digérée dans 300 μl de tampon de digestion contenant 50 mM Tris (pH 8,6), 0,03 % de dodécylsulfate de sodium à 35° C pendant 18 heures en présence de 0,4 μg d'endolysine-C (Sigma). Les peptides obtenus sont séparés, par HPLC, sur colonne en ligne de DEAE-C18 de 1 mm de diamètre. Le gradient de séparation est basé sur un mélange d'acétonitrile (de 2 à 70 %) et d'acide trifluoroacétique à 0,1 % (TFA). Le séquençage est ensuite réalisé sur un séquenceur Procise (Applied Biosystem). Trois pics ont ainsi été séquences, permettant de caractériser de manière unique l'hétérocarpine. Les séquences correspondantes sont identifiées dans la présente demande par SEQ. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 et SEQ. ID. NO. 3.
L'analyse des glycoprotéines est réalisée par la détection de structures sucrées des glycoprotéines séparées par gel SDS-PAGE. Ce système de détection est une modification des méthodes « Periodic acid-Schiff » et conduit à l'apparition de bandes magenta mettant en évidence les glycoprotéines (Sigma). On obtient, pour l'hétérocarpine telle qu'obtenue à l'exemple 1, le résultat reproduit en Figure 4.
PROPRIETES PHARMACOLOGIOUES DE L'HETEROCARPINE
Transfections stables du récepteur humain à GHRH (hGHRH-R) :
Les cellules humaines embryonnaires de reins, HEK-293, (une lignée cellulaire développée par le Dr. Stuart Sealfon, Mount Sinai Médical School, New York, New York) exprimant de manière stable le récepteur humain à GHRH ont été obtenues du Dr. Kelly Mayo (Northwestern University, Chicago, IL).
Culture cellulaire et préparation membranaire :
Les cellules HEK-293 transfectées de manière stable avec le récepteur humain à GHRH décrites ci-dessus sont cultivées en DMEM (milieu de Eagle modifié par Dulbecco, forte teneur en glucose ; fourni par Life technologies) supplémenté avec 0,4 mg/ml de G418 (Life technologies) en présence de 10 % de sérum de veau fœtal et de 4 mM de L-glutamine (Life technologies). Les cellules sont homogénéisées dans le tampon A contenant 50 mM HEPES (pH 7,4), 5 mM de chlorure de magnésium (MgCl2), 2 mM d'acide éthylèneglycol-bis(2-amino-éthyl)-N,N,N',N'-tétraacétique (EGTA) et 50 μg/ml de bacitracine puis sont soumises à sonication dans le même tampon A. Les cellules ainsi homogénéisées sont centrifugées à 4° C à 39 000 g pendant 10 minutes, suspendues dans le tampon A et re-centrifugées à 4° C à 40 000 g pendant 10 minutes. Les protéines totales membranaires sont quantifiées par la technique de Bradford. Les membranes culottées sont ainsi stockées à -80° C pour une utilisation ultérieure.
Test de liaison compétitive sur hGHRH-R :
Les membranes des cellules HEK-293 transfectées de manière stable avec le récepteur humain à GHRH sont diluées à la concentration de 100 μg/ml dans le tampon réactionnel contenant 50 mM HEPES (pH 7,4), 5 mM de MgCl2, 2 mM d'EGTA,
50 μg/ml de bacitracine et 0,5 % d'albumine de sérum bovin (BSA). Les membranes sont incubées avec 0,05 nM de [125I]GHRH(l-44 amide) (Amersham) dans un volume final de 200 μl en présence de concentrations croissantes d'hétérocarpine pendant 2 heures à 23° C. La réaction est arrêtée par une filtration rapide sur des filtres 96 puits
GF/C pré-chargés à 0,1 % en polyéthylènimine. Les filtres sont ensuite lavés trois fois à
4° C avec du tampon de lavage contenant 50 mM Tris (pH 7,4) en utilisant une station de filtration Packard 96 puits. Les filtres ainsi séchés sont submergés de 20 μl de cocktail scintillant (Microscint O, Packard) et sont soumis à un comptage sur le Topcount (Packard). L'activité non-spécifique est déterminée en présence de 100 nM de hGHRH. Une courbe dose-réponse est générée pour hGHRH (0,001 nM-100 nM) et les résultats obtenus sont repris en Figure 1.
Formation compétitive d'AMP cyclique :
Les cellules HEK-293 transfectées de manière stable avec le récepteur humain à GHRH sont distribuées dans des plaques de culture 48 puits et cultivées pendant 3 jours. Le milieu de culture est ensuite retiré et remplacé par le milieu B contenant 250 μl de DMEM (milieu de Eagle modifié par Dulbecco, forte teneur en glucose ; fourni par Life technologies) en présence de 0,5 % de BSA, 0,5 mM de 3-isobutyl-l-méthylxanthine (-OBMX) et pré-incubées 5 minutes à 37° C. A la fin de la période de pré-incubation, l'hétérocarpine est testée pendant 20 minutes additionnelles. Les concentrations observées sont reportées en Figure 2. L'incubation est stoppée par l'ajout de 100 μl de HC1 0,1 et les aliquots sont analysés pour leur contenu en AMP cyclique en utilisant le kit FlashPlate (New England Nuclear).
Dosage de GH chez les rats :
Les niveaux de GH chez les rats (mâles, Sprague Dawley) sont mesurés dans des prélèvements sanguins par un test enzymo-immunologique développé par Spi-Bio (Spi- Bio, France). Les rats sont traités par injection intra- veineuse d'hétérocarpine à des doses croissantes (véhicule seul, 1, 3 et 10 nmol), puis, 10 minutes après, par injection intra-veineuse de 10 μg (3 nmol) de hGHRH. Dix minutes après l'injection du hGHRH, les niveaux de l'hormone de croissance sont mesurés dans les prélèvements sanguins comme décrit ci-dessus. Les résultats obtenus sont représentés en Figure 5.
Mesure de l'activité anti-tumorale :
Les cellules tumorales humaines et en particulier les cellules de cancer du poumon à petites cellules H-69 sont injectées sous la peau de souris athymiques afin de produire une xénogreffe de tumeur humaine d'environ 80 mm3 une dizaine de jours après la première greffe. Les souris sont traitées tous les deux jours par injection intra-veineuse d'hétérocarpine à des doses croissantes (véhicule seul, 2,5 mg/kg, 5 mg/kg et 10 mg/kg). Le volume des tumeurs est ensuite mesuré tous les 4 jours pendant toute la durée du traitement.
Brève description des figures :
La Figure 1 est une courbe représentant l'inhibition de fixation du GHRH humain sur le récepteur à GHRH humain en fonction de concentrations croissantes d'hétérocarpine.
La Figure 2 est une courbe représentant l'inhibition de production d'AMP cyclique dans des cellules transfectées de manière stable avec le récepteur à GHRH humain en présence de 10 nM de GHRH humain en fonction de concentrations croissantes d'hétérocarpine.
La Figure 3 est la reproduction d'une plaque de gel de protéine SDS-PAGE montrant la présence de l'hétérocarpine ayant un poids moléculaire de 90,9 kDa.
La Figure 4 est la reproduction d'une plaque de gel de protéine SDS-PAGE montrant que l'hétérocarpine est une glycoprotéine (Panneau B).
La Figure 5 est une représentation sous forme d'histogrammes représentant l'inhibition de synthèse de GH chez le rat en présence de 10 μg de GHRH humain en fonction de concentrations croissantes d'hétérocarpine.

Claims

Revendications
1. Utilisation d'une protéine isolée susceptible d'être obtenue par extraction de la plante Pilocarpus heterophyllus, ladite protéine étant caractérisée en ce qu'elle possède une masse moléculaire d'environ 90,9 kDa et comporte les fragments de séquences peptidiques SEQ. ID. NO. 1, SEQ. ID. NO. 2 et SEQ. ID. NO. 3, cette protéine étant en outre susceptible de se présenter sous une forme glycosylée ou non glycosylée, pour préparer un médicament destiné à traiter les cancers dont la croissance est dépendante du facteur de croissance GHRH.
2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que la protéine a été obtenue à partir d'un extrait des cellules de la plante Pilocarpus Heterophyllus cultivées in vitro.
3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que les cancers dont la croissance est dépendante du facteur de croissance GHRH sont choisis parmi le cancer du poumon à petites cellules et le cancer du sein.
4. Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en ce que le cancer dont la croissance est dépendante du facteur de croissance GHRH est le cancer du poumon à petites cellules.
5. Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en ce que le cancer dont la croissance est dépendante du facteur de croissance GHRH est le cancer du sein.
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