WO2008077413A1 - Vacunas adn en peces - Google Patents

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WO2008077413A1
WO2008077413A1 PCT/EC2007/000004 EC2007000004W WO2008077413A1 WO 2008077413 A1 WO2008077413 A1 WO 2008077413A1 EC 2007000004 W EC2007000004 W EC 2007000004W WO 2008077413 A1 WO2008077413 A1 WO 2008077413A1
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SOLUCIONES BIOTECNOLOGICAS INNOVACION Ltda
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    • Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
    • Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
    • Y02A40/818—Alternative feeds for fish, e.g. in aquacultures

Definitions

  • VHSV and IHNV Rhabdovirus
  • IPNV Birnavirus
  • Rhabdoviruses constitute the main group of pathogenic salmonid viruses. They are enveloped ribonucleic acid (RNA) viruses, with an extensive complex lipid envelope surrounding the nucleocapsid. Viral particles are shaped like a cane (rhabdo means a cane) and measure about 70 nm in diameter and 175 nm long (Brock and Madigan Microbiology). Among the rhabdoviruses, they produce two important diseases: Viral hemorrhagic septicemia (HSV) and Infectious Hematopoietic Necrosis (IHNV).
  • HSV Viral hemorrhagic septicemia
  • IHNV Infectious Hematopoietic Necrosis
  • HSVV viral haemorrhagic septicemia virus
  • IHNV Infectious Hematopoietic Necrosis virus
  • DNA vaccines are mainly based on plasmids isolated from E. coli, designed for transient expression in eukaryotic cells. In all cases, the virus gene encoding the viral glycoprotein pG (Anderson et al, 1996; Lorensen et al., 1998; Boudinot et al., 1998; Lorensen et al., 2000; Lorenzen et al., 2005; Lorenzen et al., 2002; McLauchlan et al., 2003; Purcell et al., 2004; Takano et al., 2004; Vesely et al., 2004)
  • IPNV Infectious Pancreatic Necrosis Virus
  • the mechanism of incorporation of the DNA vaccine has been an important research topic given the need to develop methods of mass immunization that can be used in aquaculture.
  • Cationic liposomes are submicroscopic lipid vesicles, which contain phospholipids organized in bilayers, whose positive charge allows them to complex with negatively charged DNA. For this reason synthetic lipids in mixture, such as DOPE, DOTAP, DOPE: DOTAP or DOTAP: Cholesterol (Huang and Li, 1997), have become a successful alternative to vehicle plasmidial vaccines in aquaculture (Rumoren et al., 2002) .
  • Fernandez-Alonso et al. (1999) developed the first model to monitor in vivo the expression of recombinant proteins by vaccination by immersion of rainbow trout fry (0.2-0.5 g) in water containing the plasmidial vaccine complexed with the DOTAP liposome.
  • the designed vaccine contained within its sequence the reporter gene of the green fluorescent protein (GFP), allowing the authors to quantify the emission of fluorescence in caudal fins of the fry, after immersion treatment. Fluorescence was detected between 2-3 days after exposure with the plasmidial vaccine and up to 10 days post-treatment.
  • GFP green fluorescent protein
  • Zapata A.G. (nineteen ninety six). Cells and tissues of the immune system of fish. The fish immune system: organism, pathogen, and environment. Ed Akira Chiva. Alberto Varas, 278. • Tatner M.F. (1985). The migration of labeled thymocytes to the peripheral lymphoid organs in the rainbow trout, salmo gairdneri, Richardson. Dev. Comp. Immunol., 9: 85-91.
  • the primers used in this invention correspond to two novel sequences of 26 and 22 bp 0 • Sl 5 'TAAAGAAGGCATTCAACCGGGAGA 3' direction (26)
  • the present invention seeks protection against a different pathogen; b) The sequences involved are different, since they derive from a different epitope; c) The immunogenic proteins used are different, for this reason the primers are diverse; 5 d) The comment application also does not advance towards the use of a liposome as a device for the inclusion of an active substance with a molecular basis, so that a nutritional formulation containing a device for the transfer of a drug of a molecular nature is not reached. 0 Based on the foregoing, and in the absence of other applications, the use and purpose of the primers to generate a coding sequence for a peptide with immunogenic capacity is novel. 2. Search related to the Plasmid used:
  • the commercial plasmid for cloning the insert is pcDNA4 / HisMax TOPO (Invitrogen, Carlsban, CA, USA). Regarding this point, initiatives have been found that disclose the use of this cloning vector, the most relevant example of which is patent application WO2006003100.
  • This application protects the expression of a vector that codes for a glutamate receptor, for which the pcDNA4 / TO expression vector (Invitrogen, Carlsban, CA, USA) was used by adding a nucleotide sequence that codes for a member of the receptor group of group I mGluRs, in particular the human mGluRIa receptor.
  • the application WO2006003100 differs greatly from the present invention, having in common only the fact that the same cloning vector is used, but in a different way.
  • the request of the world office protects the use of the plasmidial vector for the cloning of a glutamate receptor and the substances that modulate them.
  • the present application wishes to use the mammalian cloning system in fish.
  • the cloned sequence is not related to mammalian receptors, but to a viral protein, the virus being a fish pathogen.
  • E. coli strain JM-109 Promega derived from Escherichia coli K-12 is widely used as a host.
  • the main inventions that have used this vector and that are related in some way to the present application are discussed below:
  • the Russian invention patent application RU2208637 discloses the preparation of a construct for treating patients with diabetes mellitus. To do this, the gene is introduced to a bacterial vector generating the new bacterial strain, which was called E. coli JM 109 / pPINS07.
  • the protected method includes an extensive protocol for the isolation of a recombinant protein contained in the so-called inclusion bodies.
  • the advantages of this procedure, among others, are the reduction of sample preparation time compared to existing technologies, and the genetic engineering associated with the preparation of genes for the production of human insulin is complex. An increase in the production of hybrid protein is indicated in the Russian application.
  • strain E. coli JM 109 has been used as a host that allows plasmid amplification, which is widely recognized in the art for the use of E. coli strain.
  • the novel aspect of our invention patent application is the use of the amplifying strain of a viral peptide sequence belonging to a microorganism that is host to fish and not humans.
  • the drug, composition and route of administration have unsuspected and novel advantages over existing vaccines.
  • the sequence has not been disclosed or recognized previously in the art, moreover, cloning in the bacterial strain E. coli JM-109 is just one stage of a broad procedure that ends by the generation of a DNA vaccine, which It is contained in a liposomal vehicle and will generate immunogenic response against pathogenic organisms.
  • Liposomes serve as vehicles that carry the pharmaceutical formulation, facilitating the protection and incorporation of the active substance.
  • the complex Plasmid-liposome hereinafter Lipoplex, is added to a food formulation for fish in the process for the manufacture of food.
  • the food formulation is ingested and the active substance absorbed in the luminal area of the intestine of the white organism, then being expressed in the area and other tissues, generating a protective immune response.
  • Japanese patent application JP2000295994 solves the problem of xylitol production through molecular techniques.
  • the Japanese application discloses a method comprising transforming E. coli with a gene that codes for the enzyme xylitol dehydrogenase contained in a plasmid vector, subsequently the transformed microorganism acquires the ability to generate xylitol from D-xylulose.
  • Japanese patent application JP2000295994 shows notable differences with the present invention patent application. Among them we can highlight that the Japanese application does not claim a particular Escherichia coli line as is the E. coli JM-109 line, but only in a generic form. For now, the product under patent is for human use. Finally, the sequences, use, product, method, route, are very diverse to what it is desired to claim in the present invention patent application.
  • the production of imitating strains inhibiting plaque formation is the problem solved by the Japanese invention JP2000083665.
  • the process disclosed in the Japanese application is aimed at obtaining the glucosyl transferase I gene from Streptococcus downei.
  • the gene is amplified through the PCR technique, using 30pb primers based on the GTF-I gene, the generated amplicon is ligated into an expression vector and then transformed by E. coli JM-109 bacteria. Subsequently, it is cultured The recombinant strain, the glucosyl transferase enzyme is isolated and extracted from the supernatant.
  • the Japanese invention patent application is not related to the invention patent application that is to be protected herein, since the unit of invention in both inventions is completely different.
  • the patent application JP2000050869 discloses obtaining a new plasmid with autonomic replication capacity in E. coli, specifically, E. coli JM-109.
  • This plasmid is useful for use as a gender-specific vector Gluconobacter sp.
  • the vector was isolated from the strain Glucobacter oxydans IFO 3171.
  • the Japanese patent is not related to the present invention patent application, despite the disclosure of the use of E coli strain JM-109 in the specification, the Bacterial genus and its use is widely claimed by the Japanese proposal and only in generic form, without a particular strain that houses the plasmidial construct. The use of the strain in our initiative is at a specific level the strain E.
  • the Russian invention patent application RU2143492 discloses the development of a new recombinant plasmid, which expresses the leader peptide that is bound to the IgG-domain of the "A" proinsulin, human-cloned system, the plasmid generated in the Russian invention. It is the pRRproins.
  • Proinsulin is prepared by a procedure that involves the cultivation of E. coli strain JM-109-pRRproins (recombinant strain), then the isolation of inclusion bodies, solubilization, ion exchange chromatography, trypsin proteolysis should be used and other enzymes, to achieve insulin isolation.
  • the Russian invention patent application RU2143492 the only characteristic that it shares with the present invention is the use of E. coli strain and transformation with a plasmid to generate a product. That is, use the strain as a vector, aspect widely conceived in the state of the art. However, the use is always related to human genes and not as the present invention that wishes to use it to clone proteins that will be expressed in animals. In addition, the sequences involved, the primers and the use are very different. In all the applications analyzed, the unit of invention subscribes only to the culture of the strain transformed by a plasmid or other vector and to the isolation of the product, under different protocols.
  • the unit of invention in the present invention patent application is considerably broader, since one step of the process is cloning, through the bacterial strain, but whose plasmid carries information for a viral protein (VP2) of the attacking pathogen Fish Subsequently, the plasmid containing the cloned sequence is isolated, to be encapsulated in a cationic liposome.
  • This complex liposome-plasmid
  • This complex will serve as a vehicle for transfer and pharmaceutical formulation for the administration of active ingredients to animals in culture.
  • a completely new and inventive technology has been developed through an industrial process that includes the supply of the vaccine in the form of a food ration, since this vaccine has been included in the food. Aspects that do not consider any of the documents in the art, alone or as a whole.
  • Russian application RU2130071 discloses a method of preparing hirudin HVl.
  • the process is carried out by transforming a recombinant strain of E.coli JM-109 (BP-32266) with a secretion vector pMTS HVl or pMKS HVl. Once the strain was transformed, the final products were cultured and then the final products were isolated from the culture medium or the periplasmic space.
  • the constructed plasmid contains three main elements: a DNA fragment encoding the alkaline phosphatase, the HVl hirudin fragment combined with the Accl site and the gene that determines ampicillin resistance as a genetic marker. The system shows how to reduce bleeding due to its use.
  • the Russian invention patent application presents several important differences with the present invention patent application, since the cloned gene has no similarity to the gene that is to be amplified in the bacteria.
  • the bacterial strain is the same, neither the plasmid nor the gene have similarities, despite the fact that the purpose by definition is the same, that is, it is a cloning vector.
  • the Russian application RU2130071 has another function biological and only claim the bacterial strain transformed from E. coli strain JM-109 as a plasmid host and a related isolation process. In both cases the use and concept of those used in the present invention patent application is different.
  • Japanese application JP2084195 discloses a process for the production of proteins in high quantity.
  • the process is based on the transformation of host microorganisms of a vector, which has the particularity of carrying a DNA fragment encoding a liver protein incorporated into a plasmid.
  • liver is macerated and treated directly with enzymes.
  • the segments encoding human polypoprotein (HAPE) or similar to HAPE are isolated by traditional techniques.
  • the E. coli DNA is then treated with restriction enzymes, obtaining a signal sequence or codon for both DNA. Once the codons are obtained, a tandem structure is generated, all linked to an expression vector.
  • the vector has the peculiarity of presenting a Tac promoter and a ribosome binding domain.
  • the cloned gene has no similarity to the gene that is desired to clone in the vector bacterium in the present invention patent application, since it is not human, although the bacterial strain is the same, neither the plasmid nor the gene they have similarities, since from the biological point of view using the same cloning vector, but with a different cloned gene, it represents an absolute difference, although the purpose at this stage is the same, which is the use of a vector of cloning Therefore, the difference in the use of the plasmid and its nucleotide sequences remains.
  • the unit of invention in the present invention patent application is much broader, since one step of the process to be claimed is the cloning of a viral epitope through a host bacterium.
  • the peptide sequence to be cloned is a 725 bp polypeptide, which is part of the VP2 protein of a viral pathogen, the IPNV virus that attacks fish.
  • the bacteria is transformed with the plasmid that contains the sequence to be cloned, then it is cultured and finally treated to extract the plasmid, which after purification will be encapsulated in a cationic liposome. This is not used in any of the inventions discussed above.
  • This Lipoplex complex (liposome-plasmid) will serve as a vehicle for a DNA sequence capable of generating immune response in fish.
  • Applying this technology to immunize fish is only one application of the technology.
  • the important thing about the present invention, as a completely new and inventive technology, is that through it, drugs can be supplied to fish and other organisms in the form of a food ration, aspects that none of the documents in the art consider on their own. or as a whole.
  • the DOTAP liposome was used in the present invention patent application as a transfer vehicle and also as a complexing and stabilizing element. The most important initiatives are discussed below.
  • the patent application WO9807408 protects the use of cationic liposomes that have been developed as delivery or assignment system for biologically active reagents.
  • the liposome structure contemplates one or more internalized active substances or agents between two bilamellar liposomes. This structure protects the agent inside.
  • the system has high efficiency in the transfer "in vivó". The highest expression of the polypeptide was achieved in the stomach, while expression in several organs and tissues is increased.
  • the comment application claims the production of the liposome by means of heat, subsequent addition of a cholesterol molecule, sonication, extrusion of the lipid components sequentially through a reduced porosity filter.
  • the invention patent application in comment claims the use of liposomes as molecule vehicles, it does it in a generic way.
  • the use given to liposomes in this initiative is associated with cholesterol molecules, which would help.
  • the complex formulation does not use cholesterol in its formulation or adjuvants, the sequences are novel and the use is distinctive.
  • the generation of the complex is a stage that inserts a global process, the preparation is called lipoplex, which does not contain cholesterol and whose sequence codes for an epitope of a viral protein.
  • the present invention is not designed to have a biological activity per se, like all the initiatives that will be discussed in point 4.
  • the invented formulation is different, due to that the liposome is a vehicle that is oriented to the expression of a sequence that will generate a response in the immune system of fish, not human applications, cosmetological and / or pharmaceutical, as all the applications that will be studied below.
  • the patent application WO9810748 protects a method of using cationic liposomes and the manufacturing process.
  • the method of use is based on their dehydration and rehydration technology. To do this, you must first collect target cells, which are cultured and subsequently transfected outside the body where they are expected to have therapeutic action. Then they are introduced to the organism so that they have "in vivo" action.
  • the aforementioned patent application claims the content of the liposomes as polynucleotides encoding a polypeptide.
  • the information introduced to the liposome is double stranded DNA or mRNA, whose function is to produce an immune response in the individuals where they are administered.
  • the worldwide application claims the polynucleotide, particularly its genetic structure, so it must have a promoter sequence and optionally sequence of ribosome junctions.
  • the cationic component of the liposome is a glyceride.
  • the manufacturing process of the liposomes is claimed as a process that comprises a series of stages, which in summary are: A dehydration stage, followed by a rehydration stage, to then generate microfluidization and extrusion.
  • the patent application of the world patent office WO9810748 claims the route of administration of the liposome-polynucleotide complex, which can be intramuscularly, subcutaneously, intravenously or intraperitoneally with "pharmaceutically acceptable" excipients.
  • composition claimed in the patent application US2005249794 protects several types of liposomes, among which is the DOTAP liposome.
  • the US patent application claims the use of liposomes that encapsulate oligonucleotides. These substances have the function of stimulating cytokine secretion. Oligonucleotides improve the immune response in treated mammals, however the US request does not establish the nature of the oligonucleotides used, nor does a specific sequence to generate an immune response in white organisms.
  • the US application protects the generation of the specific immune response to antigens claimed therein, since the administration of an antigen molecule in association with lipid particles is responsible for that response.
  • the oligonucleotide nucleic acid may contain a cationic lipid, states the US request, however this must be phosphodiester or phosphothiolate, may or may not be a sequence complementary to the genome human, containing a motif such as CpG, or it may contain a palindromic sequence, that is, it is a generalization by functionality.
  • the US application claims a formulation containing an oligonucleotide with a CpG motif whose residues bind to the phosphodiester and a lipid as an adjuvant.
  • the lipid has a PEG or PAO type structure or a ganglóside.
  • This composition is contained in a liposome.
  • US patent application US2005249794 claims a series of liposomes that can be used to yield the formulation, among them is DOTAP. In the case of our initiative, only the DOTAP liposome plus the nucleotide was used, but this nucleotide encodes a viral peptide, which is a host of salmonids and whose expression takes place in enteric cells.
  • the liposome is incorporated into a formulation to generate fish feed, according to a very defined protocol.
  • the liposome is used in fish, since the DOTAP liposome is intended for human use, not in all mammals.
  • the food manufacturing process in generic form - with the introduction of substances that can be absorbed through enteric transfer to organisms other than humans.
  • US2003220284 relates to a composition that uses the DOTAP liposome, cholesterol and a viral nucleotide molecule.
  • the nucleotide is circular DNA of a recombinant adenovirus.
  • This formulation is a therapeutic carrier to neutralize the immune response against human gastric cancer.
  • a method for determining the regression or progression of cancer in a patient is disclosed by US patent application US2002168662.
  • the procedure is based on the detection and identification of the Sp 17 molecule as an antigenic test. For this, a sample of the patient, previously diagnosed with cancer, is tested. In the sample, the expression level of a nucleic acid molecule encoding the Spl7 protein is determined, then the normal expression level is compared with the expression level of the Spl7 molecule in the patient. The variation between them will indicate the progression or regression of the cancer.
  • the invention patent application of the world patent office WO9527508 discloses a composition for generating an immune response in mammals to a given antigen.
  • the composition comprises the antigen trapped in a liposome (DOTAP) and integrated with an adjuvant (ISCOM).
  • DOTAP liposome
  • ISCOM adjuvant
  • the composition can be administered by several routes, including intradermal, intranasal, intratracheal, oral, rectal and via douche.
  • the antigen is derived from an organism involved in an infection of the skin, respiratory tract, genitourinary tract or other mucosal surface.
  • the microorganism can be viruses, bacteria, mycoplasma or fungi.
  • the invention application WO9527508 expands the field of invention, not defining the pathogen to which it can attack, nor the sequences used, does not define pathway of administration, much less a formulation. It only defines the final function of a supposed composition that uses the DOTAP liposome as a vehicle. However, the application WO9527508 defines as active principle the antigen itself, not the sequences that would eventually produce that antigen. In addition, the composition disclosed by the application of the world patent office WO9527508 must incorporate the use of ISCOM as an adjuvant.
  • the DOTAP-nucleotide complex of the formulation claimed by the present invention patent application is not only a process step, but rather, an encapsulation vehicle of a novel food formulation. Unlike all previous requests, which are inventions related to the use of DOTAP, they all claim the direct use of the pharmaceutical complex, that is, directly the complex with the adjuvant generates the response under various methods, that is, biological activity. It is direct, then the liposome-active principle complex is used. In the patent applications of the invention discussed above, the liposome-molecule and adjuvant complex (all claim adjuvants) have the same biological function, and more importantly, biological activity. Only some initiatives claim the generation of immune response in the white organism, usually immune response against cancer.
  • the first difference lies in the nature of the sequences used, secondly, the purpose of using the plasmid, thirdly, the use of the bacterial strain to transform it with a plasmid not previously disclosed in the art for transformation and cloning in this strain, and then, to introduce the plasmid into a vehicle, which although it is widely conceived in the prior art, such as the use of the plasmid as a vehicle ; for gene therapy in men, a novel use is being disclosed in the present application, the use of the vehicle plus a DNA sequence as a vaccine for immunization of animals.
  • the unit of invention is extended, since apart from the five products listed above, the process is claimed by the use of liposome, but the use in fish under the present is novel.
  • This complex, liposome-plasmid will serve as a vehicle that contains a DNA vaccine inside and that, in addition, depending on a completely new and unsuspected technology will be supplied to fish in the form of food ration, aspects that none of the documents considered art alone or as a whole.
  • the invention offers great advantages over traditional vaccination systems.
  • This invention discloses a vaccine that is safe, since there is no reversal problem, such as attenuated microorganism vaccines. It does not cause harmful side effects, as with some adjuvants.
  • An effective protection against the challenge of virulent pathogenic strains has been demonstrated, in addition to having great stability due to its administration and transfer vehicle.
  • the invention is designed to generate long lasting protection.
  • the patent application GB2308367 discloses the use of a protein that has immunosuppressive activity.
  • the protein was isolated from Aeromonas sp., It is non-hemolytic in nature, characterized by a molecular weight of 30 KDa and has no enzymatic activity.
  • the protein has the peculiarity that suppresses the cellular immune response and can be used in vaccine formulations, especially to immunize fish, particularly salmonids against furunculosis.
  • the differences with the present invention are basic in terms of the concept used, and wide in relation to the manufacturing process.
  • the UK request does not mention the route of administration, nor the final composition of the vaccine, it only mentions the objective and that "it can be used in formulations or vaccines for fish".
  • US patent application US5939073 discloses the isolation of a viral strain that causes pancreatic diseases in fish.
  • the vaccine has the inactivated virus as an active ingredient, and the associated diagnostic kit is also protected.
  • the diagnosis is based on finding an antibody that is specifically detected for the virus in the fish sample tested.
  • the antibody has a detectable label.
  • the method comprises the sampling of the fish, the reaction with a reagent and subsequent detection of the amount of virus in the sample.
  • the application claims other procedures related to viral detection in specific tissues. The differences are wide, first the US patent application uses attenuated viruses and not nucleic acid sequences, the vaccine has no effect for the same virus (IPNV), in the present invention patent application a specific formulation is claimed for The pathogen to protect.
  • IPNV infectious virus
  • the invention US5914260 describes a new virus that causes pancreatic fish disease, particularly in Atlantic salmon.
  • the method of virus isolation is disclosed, also the use of the viral strain or derived proteins and / or polypeptides as vaccines.
  • the diagnostic kit is disclosed but not protected. Only the viral strain is claimed.
  • the differences with the present invention patent application are wide. The method, use, sequences, procedure, characteristics discordant with the present invention are not discussed in depth.
  • a vaccine against infectious salmon anemia (ISA) virus is disclosed under the Norwegian priority and presented by the world patent office of invention WO0072878.
  • the invention is related to the development of a vaccine against the ISA virus, which is developed from viral DNA sequences encoding immunogenic proteins isolated from the viral capsid.
  • the diagnostic kit for the detection of viral nucleic acid sequences is also disclosed.
  • the vaccine is characterized by including a DNA sequence that encodes a viral protein.
  • the differences with the present invention patent application are wide.
  • the patent application WO0072878 does not have the same sequences or similar functionality, in addition the plasmid for cloning the sequence does not show any connection with that used in the present invention.
  • the invention of the world patent office did not use liposome or describe any formulation. The process is outside the inventive field, since it is not named in the worldwide invention patent application.
  • European patent application EP1094069 protects a formulation, whose main element is a nucleic acid sequence that encodes a structural protein of the virus, the microorganism studied was the infectious salmon anemia virus.
  • Protein isolation SP-I
  • the composition of the vaccine is simple, it comprises the nucleic acid or protein sequence plus an "acceptable" carrier.
  • the kit is claimed for diagnosis, the principle is based on classical immunological aspects, antibodies that recognize this protein (SPl) detect a nucleic acid or a protein (SP-1) in the sample.
  • US patent applications US2005164176 and US20055261227 disclose the use of various nucleic acid sequences or peptides for vaccine preparation and immunization of fish against the ISA virus.
  • the vaccines are based on the fact that the sequences are derived from the virus or synthesized in an analogous way, the sequences are translated into a peptide, the peptide is part of the vaccine, since in the application North American criteria is applied that proteins are the generating surface of viral antigen response.
  • the use of a vaccine against ISAV is reported, and the incorporation of a specific peptic sequence in a vaccine is protected by both initiatives.
  • the vaccine as a pharmaceutical form, the diagnostic kit and the cell containing the composition (transformant) are protected.
  • the fish vaccine disclosed by US application US2005226895 protects the generation of immunity against Piscirickettsia salmonis, in salmonids, through a pharmaceutical formulation that contemplates nucleotide or peptide sequences as an active ingredient and a carrier, as well as the case of applications US2005164176 and US20055261227, which disclose the same inventive unit, with the exception of the sequences.
  • the present invention apart from the differences related to sequences, transfer and formulation, presents differences in the microorganism, cloning vector, the use of a plasmid that has been used mainly to clone human and non-animal DNA, and introduce the formulation in a transfer carrier such as the cationic liposome DOTAP. Differences regarding the food manufacturing process that will contain the plasmidial vaccine persist.
  • the invention US200423580 discloses a vaccine against ISAV. Antigenic polypeptides or nucleic acid molecules that encode them were isolated, generating a vaccine whose active ingredient is the nucleic acid molecule, also constituted by a carrier.
  • the US patent application discloses that adjuvant molecules are involved in the formulation, the diagnostic kit is also claimed.
  • the present invention in addition to the differences in sequences, assignment and formulation, presents differences regarding the process and the route of administration.
  • Applications US2004146860, WO03 / 035680, CA2321437, WO01166569, WO0149712 and US69119083 are vaccines against the ISAV virus.
  • All applications indicate the same purpose as the protection of a sequence, either peptide or nucleotide, as an active ingredient of the pharmaceutical formulation. All formulations are based on the sequence encoding a polypeptide that binds to an antibody obtained from an animal infected with ISAV.
  • the diagnostic kit is also claimed in some invention patent applications.
  • the present invention has profound differences. The first big difference is the active principle, since the sequences are different and distinctive, since they are from a different virus such as the IPNV virus, in addition to the differences in the sequences that occur in the recombinant plasmid and the transfer made through of a cationic liposome, differences that define a new pharmaceutical composition. The great differences are maintained with the transfer process that includes the oral route in a food formulation.
  • Application WO2003 / 101482 A3 discloses the formulation of a fish vaccine, which comprises antigenic material derived from one or more fish pathogens in association with liposome, and optionally includes other therapeutic compounds.
  • the vaccine can be used to immunize or for therapeutic treatments against the pathogens of this fish.
  • the invention also claims the method of preparation, administration and storage of the liposomal vaccine.
  • the worldwide application claims the use of liposomes to generate a vaccine against IPNV, the described sequences are not related, neither are the primers nor the expressed peptide sequence.
  • a composition must be claimed for its components, but in the worldwide application it is not established which part of it is specifically the DOTAP cationic liposome.
  • the claimed composition has a specific use for a specific species of fish, different from the one to be protected in the present patent application.
  • the pharmaceutical composition of the global application is composed of the active substance, which can be a nucleotide sequence of the IPNV virus, a "liposome", but without describing which of the existing ones, one or more classes of lipids are ambiguously indicated, one or more bioactive agents, one or more adjuvants, bioactive agents, and a "pharmaceutically acceptable” carrier. That is, the composition to be claimed does not bear any relation to the worldwide patent application, although it seems tangentially related. In addition, the manufacturing process is clearly different and the worldwide application does not explain how the active ingredient will be transferred to the fish. What the global application states is that the product is the result of the liposome formulation, however in our patent application the product is a food formulation that contains a vaccine, specifically for the infectious pancreatic necrosis virus, being able to use The same technology for other pathogens.
  • the present invention has the purpose of protecting a process and a product.
  • the process allows formulating a veterinary pharmaceutical composition developed through molecular biology techniques and consisting of a type of DNA vaccine against pathogenic viruses to be included in the food of organisms in culture systems.
  • the product to be protected is the pharmaceutical composition mentioned above, whose main characteristic is that it can be administered orally - without manipulation of each individual - to animals that are in mass production systems.
  • the invention contemplates claiming a process for the manufacture of a DNA vaccine against a viral pathogen.
  • This vaccine is applied in fish, particularly salmonids, and is designed for aquaculture centers.
  • the invention consists of several stages, ranging from the isolation of a genetic sequence coding for a viral polypeptide component to the industrial escalation of the process.
  • the process consists in the vehicularization of this formulation with a palatable excipient, so that individuals eagerly ingest the food that contains a vaccine, which is absorbed enterically by the fish and has pharmacological action in various tissues of the fish.
  • the formulation to be protected is designed to be administered orally, the pharmaceutical formulation being part of the food, whose active ingredient is the genetic sequence of interest, which is contained in a plasmid, which in turn is complexed by a liposome.
  • the invention is intended to claim a process that can be applied to the manufacture of foods containing vaccines to immunize any type of organisms. In this case, it was applied to the aquaculture industry, but it can be a process applicable to the poultry, swine, horse, goat industry, among others. The invention is described below.
  • IPNv Infectious Pancreatic Necrosis virus
  • the Birnaviridae family whose genome is bisegmented, double stranded RNA, where the smallest sub-genomic segment (segment B) encodes an RNA-dependent enzyme-RNA polymerase (VP1), while the major segment (segment A) encodes the polyprotein NH 2 - VP 2 - VP 4 - VP 3 -COO " , where VP2 and VP3 are structural proteins and VP4 a viral protease responsible for self-processing by proteolysis through which are generated sequentially precursor intermediates, which then give rise to the mature functional components.
  • VP2 that is totally or partially exposed in the outermost layer of the viral capsid
  • VP3 which is the one that interacts with VPl, so he believes that it is on the inner side of the capsid
  • VP4 the protease responsible for self-processing (Duncan and Dobos ,, 1986;
  • the first step is to obtain the genetic material of the pathogen, in this case RNA or DNA.
  • RNA is necessary for the amplification of the sequences encoding the segment of a protein with proven immunogenic activity.
  • IPNV virus which attacks salmonids
  • complementary DNA encoding a region of the "A" subunit of the VP2 protein was amplified. To do this, it was infected with the IPN virus confluent monolayers of Chinook CHSE-214 salmon embryonic cells (ATCC 1681). After a period of post-infection, the total RNA was extracted using Trizol (Invitrgen). To isolate the viral RNA from the cells, the QIAamp kit (Qiagen) was applied, purely obtaining the viral RNA.
  • the second step is to obtain the amplified nucleotide sequence.
  • the RNA primers were first constructed and then complementary DNA (cDNA), all through a reverse polymerase reaction and reaction in polymerase chain
  • cDNA complementary DNA
  • the primers used can be seen in Figure 1. These allowed to selectively amplify and clone the information encoding a particular epitope of subunit two of the capsid protein of the DPN virus
  • the amplified nucleotide sequence was from segment "A" of D? NV, whose origin is around 250 bp from the amino terminal end.
  • Vr299 a bioinformatic sequence analysis of the following serotypes was considered: Vr299, Ja-ATCC, C2, Ab, ASV, Sp and He, corresponding to the six genogroups described for this virus.
  • the serotype Vr299 was taken as a reference given its prevalence in Chile. Alignment and homology analyzes were performed through the Gen Bank database and a nucleotide sequence alignment program (BLAST or DNAman). The analyzes showed a homology of the amplified sequence of the viral genome greater than 85% in relation to the rest of the D? NV serotypes.
  • a protocol was adapted to perform reverse amplification (RT-PCR) from total and viral RNA.
  • the cDNA of the viral genomic region of interest is used as tempering for subsequent PCR amplification.
  • Two antisense primers S2 and S2p were evaluated, designed to hybridize with a specific sequence of subunit A of the D? N virus and generate the complementary DNA strand.
  • Figure 2 shows the scheme of amplification of the immunogenic sequence from viral RNA, which was amplified with the following primers:
  • the fragments obtained by PCR were visualized on agarose gels and quantified by spectrophotometry. Subsequently, the 608 and 725 bp amplicons were purified by ethanol precipitation.
  • Figure 3 shows the sequence of the genomic region of 725 bp coding for the immunogenic viral peptide of the VP2 protein of D? NV generated for this initiative, whose Sequencing was performed at the Biotechnology Center, of the Faculty of Science of the University of Chile.
  • the third step of the process is the formation of the plasmidial construct and insertion into the expression vector.
  • the mammalian expression vector pcDNA4 / HisMax TOPO allows insertion of the amplification product with high efficiency.
  • the viral promoter used is cytomegalovirus (CMV) and a translation enhancer, which was used to obtain a high range of expression.
  • CMV cytomegalovirus
  • this polypeptide is expressed together with the N-terminal end of Xpress® and a histidine residue (Invitrogen Life Technologies®).
  • the plasmidial construct comprises the coding sequence for the desired polypeptide, which is housed in the plasmid pcDNA4 / HisMaxTOPO.
  • This plasmidial construct was called pcDNA-VP2.
  • the bacterial strain Escherichia coli JM-109 was used, which was transformed with known amounts of the insert of interest. Bacterial clones that possess the plasmid were isolated, after propagation of the recombinant strain in liquid cultures using selective pressure (kanamycin and ampicillin).
  • E. coli JM-109 bacteria in culture media with selection pressure indicates the recipient strains of genetic material. To ensure the maintenance of the transformed bacteria, they were grown in a reactor, in Luria Bertani medium, for 4 hours and then stored in glycerol at -80 0 C.
  • Plasmid purification was performed after the culture of the bacteria.
  • the "Quantum prep. Plasmid Miniprep” Biorad kit was used for laboratory analysis.
  • the "QIAGEN Plasmad Mega” kit was used for scaling, which allows plasmid purification from volumes greater than 500 ml of bacterial cultures.
  • CHSE-214 subcnfluent monolayers were transfected, after which extractions of plasmidial DNA and total RNA with Trizol were performed at different post-transfection times.
  • PCR was performed to obtain the amplified product defined according to the pair of primers selected. The presence of 725 bp amplicons in 1% agarose gels indicated that the cell line was able to incorporate the plasmid with the insert.
  • RT-PCR assays were performed to amplify from IPNV messenger RNA present in the sample, as shown in Figure 5, which shows an agarose gel that checks the amplification of the viral insert from the plasmid pcDNA-VP2 from transfected cell cultures.
  • Figure 5 shows the amplification of the insert from the plasmid pcDNA-VP2 isolated from transfected cell cultures.
  • Plasmid DNA and messenger RNA were extracted from CHSE-214 cells (lanes 4 and 5). 725 bp fragments (lanes 1, 2 and 3) amplified by PCR were obtained from the plasmidial vector. 0 corresponds to the molecular weight marker, in "A” is the migration point of the total RNA of the sample and in "B” the plasmid. It can be seen that after digesting with restriction enzymes a nucleotide fragment of similar length to that expected is obtained. Also, obtaining the plasmid evidences the incorporation of this in the cell line.
  • the present invention discloses a new bacterial cell line that contains an inducible expression vector consisting of the genetically constructed plasmid.
  • This line corresponds to E. coli strain JM-109, which was transformed with the plasmid shown in figure 4, plus the insert shown in figure 3, constituting the recombinant strain Escherchia coli JM-109 (pcDNA-VP2).
  • the recombinant plasmid obtained contains the information necessary for the synthesis of the polypeptide of interest, that is, part of subunit 2 of the IPNV virus capsid protein. After transformation, the bacteria incorporate the vector and are able to amplify this genetic component.
  • this plasmidial construct (pcDNA-VP2) is administered orally, in a formulation determined, it will generate an immune response in the white organism, specifically in the fish.
  • the plasmid also has an ampicillin marker gene.
  • the recombinant strain E. coli JM-109 (pcDNA-VP2) was deposited in the Belgian Coordinated Collection of Microorganisms (BCCM), whose accession number is LMBP 5333.
  • plasmid after being cloned, is isolated and complexed to a cationic liposome (DOTAP), generating a complex called "Lipoplex".
  • DOTAP cationic liposome
  • Lipoplex induces the synthesis of immunogloblobulins by itself, although this is a stage of the invention.
  • the problem solved by this initiative, through the use of DOTAP liposome, is to achieve a non-direct transformation procedure, where the target cells express the polypeptide encoded by the plasmid with a high transfection rate.
  • lipoplex samples in relation to DNA: DOTAP 1: 4, were subjected to centrifugation and subsequent resuspension in water, and then loaded onto agarose gels .
  • the estimation of the DNA concentration was performed by densitometric analysis. On the left the molecular weight marker.
  • Lane 1 42 ng plasmidial DNA in MEM.
  • Lane 2 Resuspended plasmidial extract after MEM treatment and centrifugation.
  • Lane 3 Lipoplex 42 ng plasmid in MEM. Lane 4: resuspended in MEM after centrifugation of Lipoplex.
  • Lane 5 DOTAP at 170 ng in MEM.
  • Lipoplex alone can induce an immune response, as a DNA vector that is encapsulated or complexed in a cationic liposome (DOTAP).
  • DOTAP cationic liposome
  • the vaccine is introduced into the food, that is, the nucleotide sequence of the IPN virus is carried by the plasmid and formulated with the fish base food.
  • the food is digested in the digestive tract and the vaccine is released in the intestine of the individual.
  • Pharmaceutical composition liposome-DNA
  • This response is a consequence of the cellular incorporation of the viral genetic sequence, which will generate the expression of the viral peptide.
  • the cell by exhibiting a polypeptide sequence unknown to the host, will induce the immune response, and therefore, protection against infection by the agent that contains the sequence on its surface or viral capsid.
  • Figure 6 presents the results of the structural stability evaluation of the plasmidial vaccine.
  • CHSE-214 cell cultures were transfected according to experimentally optimized conditions and processed at 6.12, 24 hours, obtaining the plasmid and messenger RNA (a). From the messenger RNA, the 725pb insert of IPNV was amplified by RT-PCR (b)
  • the administration of this vaccine means facilitating the vaccination process and also the possibility of selecting the optimal stage of vaccination depending on the species of fish in culture. It is possible to determine the stage in which the fish are more susceptible to the pathogen, or it is possible to induce the response and effective resistance based on the behavior and kinetics of each condition in a given crop species.
  • the invention also presents ecological benefits, since applying an efficient alternative for the eradication of pathogens introduced to our country helps to mitigate the indiscriminate use of antibiotics with proven adverse effect on the environmental microfauna.
  • the experimental results set as a condition the incorporation of Lipoplex in an aqueous solution that should be in a range between 0 and 50%, more specifically 0 to 25% by weight of the food.
  • the use of an atomizer was also defined as a spray element to achieve the homogeneous coating of food particles.
  • the process chain is designed for any type of production process that generates food for animal production centers. However, this process only discloses the process related to the manufacture of food whose method of administration is pellet, so it will be generic.
  • the raw materials with which the base food is formulated are ground in a first stage.
  • Granulometry is previously determined based on environmental regulations and international standards.
  • the process that gives rise to the finished product is initiated by the formulation of the diet, for which each of the inputs that make up the specific diet of the animal is dosed, through batch operations of mixing the powder and batch components of oiled In the batch, the quantity of extruded pellets that must be dosed with liquid products, and special ingredients that can be dosed via liquid inputs, such as specific vaccines, depending on the target organism, is programmed.
  • the ingredients and additives are heavy and mixed, achieving adequate proportionality and homogenization of the dry powdered components of the diet.
  • the base food is the vehicle to add the Lipoplex complex, whose addition process can be done through two mechanisms: 1.- Vacuum spray and 2.- Simple spray
  • the process of incorporating the vaccine into the food is carried out in a batch process with two feeding routes, one dry (a) and one liquid (b).
  • the dry route consists of dosing a predefined amount of base food in the form of pellets on a pesometer, which is poured into an oiler-mixer with vacuum.
  • a vacuum When applying a vacuum, it is possible to generate a lower pressure inside the oiler than the atmospheric pressure, so that when depressurizing it is forced into the air so that it leaves both the free space of the oiler and from inside the pellets together with part of the oil olein of lower melting point already present in the food.
  • the liquid route operates in parallel and in two stages, where two tanks are available, maintaining in one of them the pre-dosed Lipoplex according to the caliber and the amount of base food that was programmed in the oil batch.
  • the vaccine is added by fine spraying under vacuum and mixing conditions to ensure adequate impregnation of all pellets.
  • the vacuum is then slowly released allowing the entry of air so that it can return to atmospheric pressure, thus facilitating that the vaccine that is initially on the surface with part of the free oil is pushed through the air into the pellets.
  • the fish oil that is pre-weighed in the second tank is also finely applied by spraying under mixing conditions, dragging any remaining vaccine that could have remained in the piping.
  • top coating allows to cover the entire surface of each of the pellets minimizing the direct exposure of the active ingredients on the surface of the food.
  • This second option of incorporating the vaccine into food is developed by two feeding routes, one dry (a) and another liquid (b).
  • the dry route consists of classifying a predefined amount of base feed in the form of pellets on a pesometer, which are incorporated into a rotary mixer of variable angle and variable speed. This system allows, based on the rotation, to obtain a uniform mixing of the pelletized food. The number of revolutions must be adjusted between 5 and 50 rpm and the angle of position with respect to the horizontal between 10 ° and 35 ° to achieve a homogeneous mixing cycle. Then proceed to carry out the liquid route.
  • the liquid route operates in conjunction with the mixer and consists only of a sprinkler connected to a dispenser, which is preprogrammed according to the size and quantity of base food.
  • the impregnation that occurs is instantaneous since the spheronized food is highly hygroscopic, which is why it will efficiently absorb the liquid sprayed by the sprinkler
  • the mixer is rotated 180 ° to be located at the entrance base of the pre-bagged hopper.
  • a discharge valve will allow the total bach prepared to be dropped by gravity to the hopper that directly feeds the weighing and packaging equipment.
  • Drying and cooling It is a physical process that allows you to adjust the amount of water required by the final product. Then the product is cooled, avoiding risks associated with microbiological degradation at high temperatures. The process ends with the packaging, whose purpose is to package the product according to technical specifications.
  • the process ends with the packaging, whose purpose is to package the product according to a series of specifications.
  • the basic foods for different organisms considered to vehicle the oral vaccine are presented in different sizes and nutritional composition according to their requirements and the stage of the productive cycle in which they are at the time of treatment.
  • the present application solves several problems of the technique, such as the mass vaccination of individuals, in this case of juveniles or juveniles, obviating their manipulation, with the stress that implies, as well as operational benefits related to the easy administration of the oral vaccine , high stability and simple storage.
  • the CHSE-214 cell monolayers were cultured at 80% subconfluence. Cells were cultured in MEM, sodium 2.2 g / L and fetal bovine serum (FBS) bicarbonate 2.5%, at a temperature of 20 0 C for a period of 4 to 14 days in plates of twelve wells. The cells were then washed with PBS and prepared for incorporation of the plamidial construct (pcDNA-VP2) complexed with the DOTAP Iiposome.
  • FBS fetal bovine serum
  • aliquots of DNA and DOTAP were added in MEM medium. They were then mixed and incubated for 30 minutes. Transfection was performed by adding each mixture to a total volume of 0.5 ml of MEM on monolayers cell phones. After the predetermined incubation times for transfection (MEM plus SFB 5%), the plasmid was extracted.
  • Plasmid extraction from the CHSE-214 cell line was performed according to the protocol described for Trizol (Invitrogen Life Technologies), which generally considers the removal of the MEM medium with 5% fetal bovine serum, washing the cells with PBS, addition of a reagent volume, incubation for 5 minutes at room temperature, addition of chloroform and subsequent centrifugation at 12000 g for fifteen minutes. Of the two faces formed, the upper aqueous phase contains RNA and the plasmid, while the lower phase contains genomic DNA.
  • the extracted plasmid was precipitated with isopropyl alcohol, centrifuged and washed with 70% ethanol. Finally, the solvent was evaporated and the sample was resuspended in sterile deionized water.
  • the plasmidial DNA sample was loaded on a 1% agarose gel, stained with ethidium bromide (0.5 ug / ml) and visualized in 260 nm transilluminator. Migration profiles in the gel revealed the total integrity of the plasmid. Densitometric analyzes indicated for the different times studied 11.65; 13, 65 and 461ng of plasmidial vaccine respectively. As an additional test, a 725 bp fragment was amplified from the mRNA by RT-PCR, obtaining the desired amplification product (725 bp) in the three evaluation times.
  • Table N ° 1 Base food required to vehicle the oral vaccine.
  • the therapeutic dose is established based on the feeding rate (SFR) of the fish, which in turn is expressed as% by weight of the biomass to be treated.
  • SFR feeding rate
  • Plasmid concentrations in the food have been determined based on a pre-established SFR so that the vaccine is administered homogeneously with a single dose in the food according to size. This ensures delivery of a dose that covers the minimum plasmid requirement under conditions of low SFR. If during the administration of the food with vaccine the fish present a higher SFR to the preset, the quantity of food to be delivered is adjusted by supplying food with and without vaccine.
  • the dose of vaccine and SFR for the different food sizes is detailed in Table No. 3.
  • Table N ° 3 Therapeutic Dose based on Pre-Established Feeding Rate.
  • Table 4 contains the size specifications for spherical micropellets, and Table 5 contains similar specifications for cylindrical pellets.
  • Table N ° 4 Size specifications for spherical micropellets.
  • the in vivo test was carried out with fry separated by ponds according to doses and controls. The fry were fed for 7 days with the vaccine formulation. Samples were then obtained for times of 0.15, 45, 60 days post vaccine feeding. The Allpharma Alphajet 1000 vaccine was selected as a positive control, administered intraperitoneally to a group of fry after 45 days of the experience.
  • the expression kinetics of the reporter gene was studied through blood sampling during days 0, 15 and 45 of the beginning of the experimental trial.
  • the ELISA assays allowed us to determine the estimation of the immune response, in which the immune response was determined against the antigenic heterologous protein in order to find antibody against DPNV in the plasma sample of fish immunized with the plasmidial vaccine.
  • the assay considered the performance of an indirect ELISA, detecting the level of total antibodies by reading absorbance at 450 nm of the product generated by the reaction of
  • TMB Tetramethylbenzidine
  • PBS / Twenn 20 0.05%. It was blocked with PBS / Tween 20 0.05% plus 5% skim milk for Ih at room temperature. It was washed again and incubated with dilutions of Ab Salmon Ab (1: 100, 1: 200, 1: 400, 1: 800, 1: 1600) in PBT / Tween 20 0.05% 2 hours at room temperature. Subsequently a 1: 3000 dilution of goat anti-mouse IgG antibodies conjugated to peroxidase in PBS / 0.05% Tween 20 was added for one hour at room temperature.
  • multiwell plates were incubated with the IPN virus l * 10 5 PFU / ml, then added plasma in pre-established dilution (1:16) and carried out each of the steps described to indirectly determine This class of molecules.
  • the results obtained for the lmg / Kg PV dose indicated statistically significant differences with a 90% interval between the control and the fish fed with the plasmidial vaccine 45 days after the food formulation containing the plasmidial vaccine was administered.

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Abstract

Proceso, uso, método y formulación de inclusión de vacunas de ácido desoxirribonucleico (ADN) en composiciones alimenticias para animales en cultivo, particularmente en sistemas acuícolas.

Description

MEMORIA DESCRIPTIVA
Estado del Arte:
VACUNAS ADN EN PECES
Dentro de las enfermedades infecciosas que afectan a los peces en cultivo, los virus representan la mayor causa de pérdidas económicas. Las vacunas ADN se han ensayado principalmente contra los grupos de virus: Rhabdovirus (VHSV y IHNV) y Birnavirus (IPNV).
Los Rhabdovirus constituyen el principal grupo de virus patógenos de salmónidos. Son virus de ácido ribonucleico (ARN) envuelto, con una cubierta extensa de lípidos complejos rodeando la nucleocápside. Las partículas virales tienen forma de bastón (rhabdo significa bastón) y miden del orden de 70 nm de diámetro y 175 nm de largo (Microbiología de Brock y Madigan). Entre los rhabdovirus producen dos enfermedades importantes: La septicemia hemorrágica viral (VHSV) y Necrosis Hematopoyética Infecciosa (IHNV).
A la fecha, los resultados más exitosos en vacunación ADN en salmónidos se han obtenido contra los rabdovirus: virus de la septicemia hemorrágica viral (VHSV) y virus de Necrosis Hematopoyética Infecciosa (IHNV), los cuales constituyen ampliamente las dos patologías víricas de mayor impacto mundial en el cultivo de peces.
Estas vacunas ADN se basan principalmente en plásmidos aislados de E. coli, diseñados para la expresión transitoria en células eucariontes. En todos los casos se inserta el gen del virus codificante de la glicoproteína viral pG (Anderson et al, 1996; Lorensen et al, 1998; Boudinot et al., 1998; Lorensen et al., 2000; Lorenzen et al., 2005; Lorenzen et al., 2002; McLauchlan et al., 2003; Purcell et al., 2004; Takano et al., 2004; Vesely et al., 2004)
También utilizando la glicoproteína viral (pG) se han desarrollado vacunas ADN efectivas para otros rhabdovirus de menor incidencia y más restringidos, tanto en cuanto a su distribución geográfica, como a las especies que afectan, tales como el Hirame rhabdovirus HIRR (Takano et al, 2004) y el Snakkehead rhabdovirus SHRV (Kim et al, 2000). Diferentes estudios han demostrado que estas vacunas son altamente efectivas frente a una variedad de condiciones ambientales, especies de salmónidos, estadios del ciclo vital de los peces y diferentes cepas virales (Corbeil et al, 2000, Garver et al, 2005, Kurath et al., 2001, LaPatra et al, 2000, Lorenzen et al, 1999, Lorenzen et al, 2001, Traxler et al, 1999).
Experimentos de dosis-respuesta han demostrado que la inyección intramuscular simple en el rango de nanogramos de ADN plasmidial es suficiente para inducir una respuesta inmune protectiva contra Septicemia Hemorrágica Viral (VHS) y contra Necrosis Hematopoyética Infecciosa (IHN) en alevines de trucha arcoiris (Corbeil et al, 2000, Lorenzen et al, 2000).
Estudios realizados con Salmón Atlántico utilizando una vacuna plasmidial codificante de la poliproteína completa del Virus de la Necrosis Pancreática Infecciosa (IPNV) expresada a partir del segmento A de ARN del virus, han demostrado que altos niveles de protección se consiguieron tras su administración (Mikalsen et al, 2004). Una protección relativamente menor se ha observado al inmunizar salmón coho con plásmidos de alta expresión que contienen secuencias antígenicas de Pisciricketsia salmonis (Miquel et at., 2003). El 2005 se evaluó una vacuna ADN contra la bacteria Mycobacterium marine, en base a un plásmido codificante del antígeno Ag85A, el cual indujo protección en róbalo rayado (striped bass).
Método de administración de la vacuna:
El mecanismo de incorporación de la vacuna ADN ha constituido un importante tema de investigación dada la necesidad de desarrollar métodos de inmunización masiva que puedan ser empleados en acuicultura.
La vía de administración de vacunas ADN que ha resultado más efectiva es la inyección intramuscular. Sin embargo, en la práctica, las limitaciones en el tamaño de los peces a inmunizar así como el costo adicional de la vacunación se presentan como problemas sin respuesta a la fecha.
La ruta idónea de administración para peces en una piscicultura cerrada es por baño o inmersión En este marco, las rutas de administración basadas en inmersión han sido evaluadas en orden a mejorar la aplicación práctica y masiva de la vacunación ADN y extenderla a peces más jóvenes (Corbeil et al., 2000, Fernández-Alonso et al., 1998).
Debido a que no hay captura directa de ADN por parte de peces sumergidos en agua que contiene el plásmido desnudo disuelto, se han evaluado exitosamente medios físicos o químicos que optimizan la incorporación de la vacuna plasmidial por inmersión, tales como el uso de ultrasonido de baja frecuencia (Fernández- Alonso et al., 2001) y el choque hiperosmótico (Huising et al., 2003)
Para inducir o favorecer la captura del ADN por peces mediante inmersión, actualmente se evalúan métodos basados en: i) Complejos ADN-liposomas ii) Inmersión o toma oral de ADN microencapsulado.
Los liposomas catiónicos son vesículas lipídicas submicroscópicas, que contienen fosfolípidos organizados en bicapas, cuya carga positiva les permite formar complejos con el ADN cargado negativamente. Por este motivo lípidos sintéticos en mezcla, como el DOPE, DOTAP, DOPE:DOTAP o DOTAP:Colesterol (Huang and Li, 1997), se han convertido en una alternativa exitosa para vehiculizar vacunas plasmidiales en acuicultura (Rumoren et al., 2002).
Al respecto, Fernandez- Alonso et al. (1999) desarrollaron el primer modelo para monitorear in vivo la expresión de proteínas recombinantes mediante vacunación por inmersión de alevines de trucha arcoiris (0,2-0,5 g) en agua conteniendo la vacuna plasmidial complejada con el liposoma DOTAP. Para lograr un monitoreo eficiente la vacuna diseñada contenía dentro de su secuencia el gen reportero de la proteína fluorescente verde (GFP), permitiendo a los autores cuantificar la emisión de fluorescencia en aletas caudales de los alevines, posterior al tratamiento por inmersión. La fluorescencia se detectó entre 2-3 días luego de exposición con la vacuna plasmidial y hasta 10 días post-tratamiento.
Recientemente, Rumoren et al. (2004) estudiaron la expresión en distintos órganos de una vacuna plasmidial formulada con liposoma. La administración del plásmido incluyendo el gen marcador de la luciferasa, a través de diferentes rutas (intraperitoneal, intramuscular, intravenosa, inmersión o anal), arroja una mayor expresión de la luciferasa mediante utilización del complejo vacuna-liposoma, en relación a otros mecanismos de administración.
Bibliografía:
• Anderson E.D., Mourich D. V., Fahrenkrug S.C., LaPatra S., Shepherd J. and Leong J.A. (1996). Genetic immunization of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) against infectious hematopoietic necrosis virus. Motee. Mar. Biol. Biotechnoi, 5(2): 114-122.
• Lorensen N. & Lorenzen E., Einer-jensen K., Heppell J., Wu T. and davis H.L. (1998). Protective immunity to VHS in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) following
DNA vaccination. Fish Shellfish Inmunol., 8:261-270.
• Boudinot P., Blanco M. de Kinkelin P. and Benmansour A. (1998).Combined DNA immunization with the glycoprotein gene of viral hemorrhagic septicaemia virus and infectious hematopoietic necrosis virus induced double-specific pretective immunity and non- specific response in rainbow trout. Virology, 249(2): 297-306
• Lorenzen E., Einer.Jensen K., Martinussen T., LaPatra S.E. and Lorenzen N. (2000). DNA vaccination of rainbow trout against viral hemorrhagic septicemia virus: a dose- response and time-course study. J. aquat. Anim. Hlth., 12(3): 167-180
• Lorenzen E., Lorenzen N. Einer.Jensen K., Brudeseth B. and Evensen O. (2005). Time course study of in situ expression of antigens following DNA vaccination against VHS in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) fry. Fish Shellfish Immunoi, 19(1): 27-41.
• Lorenzen E., Lorenzen N. Einer.Jensen K. and LaPatra S.E. (2002). DNA vaccines as a tool for analyzing the protective immune response against rhabdoviruses in rainbow trout. Fish Shellfish Immunoi., 12: 439-453. • McLauchlan PE., Collet B., Ingerslev E., Secombes C.J., Lorenzen N. and Ellis A.E. (2003) DNA vaccination against viral haemorrhagic septicaemia (VHS) in rainbow trout: size, dose, route of injection and duration of protection - early protection correlates with Mx expression. Fish. Shellfish Immunoi., 15(1): 39-50.
• Purcell M.K., Kurath G. graver K.A., Herwin R.P. and Winton J.R. (2004). Quantitative expression profiling of immune response genes in rainbow trout following infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) infection or DNA vaccination. Fish. Shellfish Immunoi., 17(5): 447-462. • Vesely T., Pokorova D., Einer-Jensen K. and Lorenzen N. (2004). DNA vaccination of small carp (Cyprinus carpió) against SVCV: the protective effect depends on temperatura. In Book of Abstract, 6ώ International Symposium on Fish Immunology. 26-27 May, Turku, Finland, 43. • Takano T., Iwahori A., Hirhono I. and Aoki T. (2004). Development of a DNA vaccine against hirame rhabdovirus and analysis of the expression of inmine-related genes after vaccination. Fish. Shellfish Immunol., 17(4): 367-374.
• Kim C.H., Johnson M.C., Drennan B.E., Simón E., Thomann E. & Leong J.A.C. (2000) The role of CpG dinucleotides in DNA vaccines. Trenes Microbiol. 6: 23-27. • Corbeil S., LaPatra S.E., Anderson E.D. and Kurath G. (2000). Nanogram quantities of a DNA vaccine protect rainbow trout fry against heterologous strains of infectious hematopoietic necrosis virus. Vaccine, 18(25): 2817.2824.
• Garver K. A., LaPatra S.E. and Kurath G. (2005). Efficacy of infectious haematopoietic nacrosis (IHN) virs DNA vaccine in Chinook (Oncorynchus tshawytschá) and sockeye (Oncorynchus nerka) salmón. Dis aquat. Organisms, 64(1): 13-22.
• Kurath G., Corbeil S., Anderson E.D. and LaPatra S. (2001). Efficacy of a DNA vaccine against infectious haematopoietc necrosis virus. BuIl. Nati. Res. Inst. Aquacult., 5:27- 33.
• LaPatra S.E., Corbeil S., Jones G.R., Shewmaker W.D. and Kurath G. (2000). The dose-dependent effect on protection and humoral response to a DNA vaccine against infectious hematopoietic necrosis to (IHN) virus in subyearling rainbow trout. J. Aquat. Anim. Hlth., 12(3): 181-188.
• Lorenzen N., Lorenzen E., Einer-Jensen K., Heppell J. and Davis H.L. (1999). Genetic vaccination of rainbow trout against viral haemorrhagic septicaemia virus: small amounts of plasmid DNA protect against a heterologous serotype. Virus Res., 63(1-2): 19-25.
• Lorenzen N., Lorenzen E. and Einer-Jensen K. (2001). Immunity of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) following DNA vaccination of rainbow trout at an early like-stage. Fish Shellfish Immunol, 11(7): 585-591.
• Traxler G.S., Anderson E., LaPatra S.E., Richard J., Shewmaker B. and Kurath G. (1999). Naked DNA vaccination of Atlantic Salmón Salmo salar against IHNV. Dis. Aquat.
Organisms, 38(3): 183-190. • Corbeil S., LaPatra S.E., Anderson E.D. and Kurath G. (2000). Nanogram quantities of a DNA vaccine protect rainbow trout fry against heterologous strains of infectious hematopoietic necrosis virus. Vaccine, 18(25): 2817.2824.
• Lorenzen E., Einer.Jensen K., Martinussen T., LaPatra S.E. and Lorenzen N. (2000). DNA vaccination of rainbow trout against viral hemorrhagic septicemia virus: a dose- response and time-course study. J. Aquat. Anim. HUh., 12(3): 167-180
• Mikalsen A.B., Torgensen J., Alestrom P., Hellemann A., Koppang E. and Rimstad E. (2004). Protection of Atlantic salmón Salmo salar against infectious pancreatic necrosis virus after DNA vaccination. Dis. Aquat. Organisms, 60(1): 11-20. • Miquel A., Muller L, Ferrer P., Valenzuela P.D. and Burzio L.O. (2003). Inmunoresponse of Coho salmón immunized with a gene expression library from Pisciricketsia salmonis. Biol. Res., 36(3-4): 313-323.
• Pasnik DJ. and Smith S.A. (2005). Inmunogenic and protective effects of a DNA vaccine for Mycobacterium marinum. Fish. Vet. Inmunol. Inmunopathol., 103(3-4): 195-206. • Corbeil S., Kurath G. and LaPatra S.E. (2000). Fish DNA vaccine against infectious haematopoietc necrosis virus: efficacy of various routes of immunization. Fish Shellfish immunol., 10(8): 711-723.
• Fernández-Alonso M., Alvarez F., Estepa A., Blaco R. and CoIl J.M. (1999). A model to study fish DNA immersion vaccination by using the green fluorescent protein. J. Fish Dis., 22(3): 237-241.
• Fernández- Alonso M., Rocha A. and CoIl J.M. (2001). DNA vaccination by immersion and ultrasound to trout viral haemorrhagic septicaemia virus. Vaccine, 19(23-24): 3067-3075.
• Romoren K., Thu BJ. , Smistad G. & Evensen O. (2002) Immersion delivery of plasmid DNA. I. A study of the potentials of a liposomal delivery system in rainbow trout
(Oncorhynchus mykis) fry. J. Controlled Releas,. 85(l-3):203-213.
• Romoren K., Thu BJ., Smistad G. & Evensen O. (2002). Immersion delivery of plasmid DNA. II. A study of the potentials of a liposomal delivery system in rainbow trout {Oncorhynchus mykis) fry. J. Controlled Reléase, 85(l-3):215-225. • Huising M.O., Guichelaar T., Hoek C, Verburg-van Kemenade B.M.L, Flik G., Savelkoul H.F.J. and Rombout J.H.W.M. (2003). Increased efficacy of immersion vaccination in fish with hyperosmotic ptrtreatment. Vaccine, 21:4178-4193. • Tucker C.M., Endo M., Hirono I. and Auki T. (2000). Assesment of DNA vaccine potencial for juvenile Japanese flounder Paralichthys olivaceus, throut the introduction of repórter genes by particle bombardment and histopathology. Vaccine, 19(7-8):801-809.
• Fernández-Alonso M., Alvarez F., Estepa A., Blaco R. and CoIl J.M. (1998). Vacunas ADN en acuicultura. AquaTIC 4, http://aquatic.unizar.es/N7art40 l/DNA_vac.htm
• Kurath G., Corbeil S., Anderson E.D. and LaPatra S. (2001). Efficacy of a DNA vaccine against infectious haematopoietc necrosis virus. BuIl. Nati. Res. Inst. Aquacult. 5:27- 33.
• Lorenzen E., Einer.Jensen K., Martinussen T., LaPatra S.E. and Lorenzen N. (2000). DNA vaccination of rainbow trout against viral hemorrhagic septicemia virus: a dose- response and time-course study. J. Aquat. Anim. HUh., 12(3): 167-180
• LaPatra S.E., Corbeil S., Jones G.R., Shewmaker W.D. and Kurath G. (2000). The dose-dependent effect on protection and humoral response to a DNA vaccine against infectious hematopoietic necrosis to (HN) virus in subyearling rainbow trout. J. Aquat. Anim. Hlth. 12(3): 181-188.
• Lorenzen N., Lorenzen E. and Einer-Jensen K. (2001). Immunity of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) following DNA vaccination of rainbow trout at an early like-stage. Fish Shellfish Immunol. 11(7): 585-591.
• Sommerset L, Lorenzen E., Lorenzen H., Bleie H. and Nerland A.H. (2003). A DNA vaccine direct against a rainbow trout rhabodovirus induces early protection against a nodavirus challenge in turbot. Vaccine. 21(32): 4661-4667.
• Lorenzen N.E., Lorenzen K., Einer-Jensen and LaPatra S.E. (2002b). Immunity induced shortly after DNA vaccination of rainbow trout against rhabdovirus protects against heterologous virus but no against bacterial pathogens. Devel. Comp. Immunol., 26(2): 173- 179.
• Chiller J.M., Hofkins H.O. and Weiser R.S. (1969). Antibody response in rainbow trout (Salmo gairdneή). JJ. Studies on the kinetics of development of antibody producing cells and on complement and natural hemolysis. J. Immunol., 102: 1202-1207.
• Boudinot P., Blanco M. de Kinkelin P. and Benmansour A. (1998).Combined DNA immunization with the glycoprotein gene of viral hemorrhagic septicaemia virus and infectious hematopoietic necrosis virus induced double-specific protective immunity and non- specific response in rainbow trout. Virology, 249(2): 297-306 • Lorenzen E., Lorenzen N. Einer.Jensen K. and LaPatra S.E. (2002a). DNA vaccines as a tool for analyzing the protective immune response against rhabdoviruses in rainbow trout. Fish Shellfish Inmunol., 12: 439-453.
• Purcell M.K., Kurath G., Garver K.A., Herwig R.P. and Winton J.R. (2004). Quantitative expression profiling of immune response genes in rainbow trout following infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) infection or DNA vaccination. Fish Shellfish Immunol, 17(5): 447-462.
• Takano T., Iwahori A., Hirhono I. and Aoki T. (2004). Development of a DNA vaccine against hirame rhabdovirus and analysis of the expression of immune-related genes after vaccination. Fish. Shellfish Immunol. 17(4): 367-374.
• Traxler G.S., Anderson E., LaPatra S.E., Richard J., Shewmaker B. and Kurath G. (1999). Naked DNA vaccination of Atlantic Salmón Salmo salar against IHNV. Dis. Aquat. Organisms, 38(3): 183-190.
• Kanellos T., Sylvester. I.D., Ambali A.G., Howard CR. and Rusell P.H (1999a). The safety and longevity of DNA vaccines for fish. Immunology, 96(2): 307-313.
• McLauchlan PE., Collet B., Ingerslev E., Secombes C.J., Lorenzen N. and Ellis A.E. (2003). DNA vaccination against viral haemorrhagic septicaemia (VHS) in rainbow trout: size, dose, route of injection and duration of protection - early protection correlates with Mx expression. Fish. Shellfish Immunol. 15(1): 39-50. • Boudinot P., Blanco M. de Kinkelin P. and Benmansour A. (1998).Combined DNA inmunization with the glycoprotein gene of viral hemorrhagic septicaemia virus and infectious hematopoietic necrosis virus induced double-specific protective immunity and non-specific response in rainbow trout. Virology. 249(2): 297-306
• Grace M.F. and Manning MJ. (1989). Histogenesis of the lymphoid organs in rainbow trout, salmo gairdneri. Dev. Comp. Immunol., 4: 255-264.
• Tatner M.F. and Manning MJ. (1983). Growth of the lymphoid organs in rainbow trout, salmo gairdneri, from one to 15 months of age. Journal Zoology hondón. 199:503-520.
• Castillo A., Sánchez C, Domínguez J., Kaatari S.L. and Villena AJ. (1993). Ontogeny of IgM and IgM-bearing cells in rainbow trout. Dev. Comp. Immunol., 17:419-424. • Tatner M.F. and Manning MJ. (1985). The ontogenic development of the reticulo endothelial system in rainbow trout, salmo gairdneri, Richardson. J. Fish. Dis., 8:35-41. • Ellis A.E. (1988). Ontogeny of the immune system in teleost fish. Fish vaccination. Ed.A.E.Ellis, Academic Press, 20-31.
• Zapata A.G. (1996). Cells and tissues of the immune system of fish. The fish immune system: organism, pathogen, and environment. Ed Akira Chiva. Alberto Varas, 278. • Tatner M.F. (1985). The migration of labelled thymocytes to the peripheral lymphoid organs in the rainbow trout, salmo gairdneri, Richardson. Dev. Comp. Immunol., 9:85-91.
• Johnsom K.A., Flynn J.K. and Amend D.F. (1982). Onset of immunity in salmonid fry vaccinated by direct immersion with yersinia ruchen and Vibrio anguillarum bacterins. Journal ofFish Diseases, 5:197-205. • Johnsom K.A., Flynn J.K. and Amend D.F. (1982). Duration of immunity in salmonids vaccinated by direct immersion with yersinia ruckeri and Vibrio anguillarum bacterins. Journal ofFish Diseases, 5:207-212.
• Perrie, Y. Obrenovic, M, McCarthy, D. and Gregoriadis, G. (2002). Liposome- mediated DNA vaccination via the oral route. Journal ofLiposome Research 12, 185-197 • Fernández-Alonso M., Alvarez F., Estepa A., Blaco R. and CoIl J.M. (1999). A model to study fish DNA immersion vaccination by using the green fluorescent protein. J. Fish Dis., 22(3): 237-241.
• Rumoren K., Thu B. J., Evensen O. Expression of luciferase in selected organs following delivery of naked and formulated DNA to rainbow trout {Oncorhynchus mykis) by differents routs of administration. Fish Shellfish immunology, 16: 251-264.
ESTADO DE LA PROPIEDAD INDUSTRIAL
Se realizó una búsqueda por las principales bases de datos de las oficinas de patentes del mundo. Esta búsqueda se clasificará en seis partes fundamentales, indicando en cada caso cual fue el criterio utilizado. Las primeras cuatro búsquedas fueron relacionadas a elementos puntuales en la invención, en tanto las dos últimas búsquedas se encuentran vinculadas con el proceso de fabricación de la vacuna e inclusión en una formulación alimenticia:
1. Cebadores utilizados;
2. Plásmido utilizado;
3. Cepa bacteriana E. coli JM- 109 ; 4. Construcción del liposoma DOTAP;
5. Vacunas ADN para peces;
6. Proceso de Formulación con ADN u otros elementos de interés.
S 1. Búsqueda relacionada con los cebadores:
Los cebadores utilizados en esta invención corresponden a dos secuencias novedosas de 26 y 22 pb 0 • Sl 5' TAAAGAAGGCATTCAACCGGGAGA 3' sentido (26)
• S2 5' CCCCTTGGCTCCGAGCGTTGCT 3' antisentido (22)
La búsqueda relacionada a secuencias utilizadas para inducir inmunidad en peces es muy limitada, existiendo contadas solicitudes que han protegido iniciativas similares. 5 La solicitud US2003147909, de prioridad chilena, divulga un procedimiento para purificar la proteína CHAP, la que presenta actividad inmunogénica y fue aislada desde salmón coho infectado con la bacteria Piscirickettsia salmonis. Esta solicitud, presentada en Chile bajo el número CL2086-01, no se encuentra relacionada con la presente invención por varios motivos, a saber:
a) La presente invención busca una protección frente a un patógeno distinto; b) Las secuencias involucradas son diferentes, ya que derivan de un epítope distinto; c) Las proteínas inmunogénicas utilizadas son diferentes, por esta razón los cebadores son diversos; 5 d) La solicitud en comento tampoco avanza hacia la utilización de un liposoma como dispositivo de inclusión de un principio activo de base molecular, por lo que no se llega a una formulación nutricional que contenga un dispositivo de cesión de un fármaco de naturaleza molecular. 0 Por lo expuesto, y no existiendo otras solicitudes, la utilización y el propósito de los cebadores para generar una secuencia codificante para un péptido con capacidad inmunogénica es novedoso. 2. Búsqueda relacionada con el Plásmido utilizado:
El plásmido comercial para clonar el inserto es el pcDNA4/HisMax TOPO (Invitrogen, Carlsban, CA, USA). Respecto a este punto, se han encontrado iniciativas que divulgan la utilización de este vector de clonamiento, cuyo ejemplo más relevante es la solicitud de patente de invención WO2006003100. Esta solicitud resguarda la expresión de un vector que codifica para un receptor de glutamato, para lo cual se utilizó el vector de expresión pcDNA4/TO (Invitrogen, Carlsban, CA, USA) adicionando una secuencia nucleotídica que codifica para un miembro del grupo de receptores del grupo I mGluRs, en particular el receptor humano mGluRIa. En la solicitud de patente de invención en comento se busca resguardar la expresión inducida por tetraciclina del vector que codifica para un receptor de glutamato metabotrópico humano del grupo I. Esta solicitud también resguarda la línea celular hospedadora (T-Rex-293), el método para reconocer un agonista y otros compuestos que tiene la capacidad de modular la actividad del mismo receptor, así como el uso de las células transgénicas.
La solicitud WO2006003100, difiere en gran medida de la presente invención, teniendo en común sólo el hecho de que se utiliza el mismo vector de clonamiento, pero en una forma diversa. La solicitud de la oficina mundial resguarda la utilización del vector plasmidial para el clonamiento de un receptor de glutamato y las sustancias que los modulan. En cambio la presente solicitud desea utilizar el sistema de clonamiento de mamíferos en peces. Por otra parte, y a mayor abundamiento, la secuencia clonada no guarda ninguna relación con receptores de mamíferos, sino con una proteína viral, siendo el virus un patógeno de peces.
3. Búsqueda relacionada con la cepa E coli JM- 109 :
La cepa de E. coli JM- 109 (Promega) derivada de Escherichia coli K- 12 es utilizada ampliamente como hospedador. A continuación se discuten las principales invenciones que han utilizado este vector y que se encuentran relacionadas en algún sentido con la presente solicitud:
La solicitud de patente de invención rusa, RU2208637 divulga la preparación de un constructo para tratar pacientes con diabetes mellitus. Para ello, el gen es introducido a un vector bacteriano generando la nueva cepa bacteriana, la cual fue denominada E. coli JM 109/pPINS07. El método resguardado incluye un extenso protocolo del aislamiento de una proteína recombinante contenida en los denominados cuerpos de inclusión. Las ventajas de este procedimiento, entre otras, son la reducción del tiempo de preparación de muestras respecto de las tecnologías existentes, además la ingeniería genética asociada a la preparación de genes para la producción de insulina humana es compleja. En la solicitud rusa se señala un incremento en la producción de proteína híbrida.
Cabe señalar que tanto en la solicitud en comento, como en la invención propuesta en la presente solicitud, la cepa E. coli JM 109 ha sido utilizada como hospedador que permite amplificar plásmidos, lo que es ampliamente reconocido en el arte para el uso de la cepa de E. coli. El aspecto novedoso de nuestra solicitud de patente de invención es el uso de la cepa amplificador de una secuencia peptídico viral perteneciente a un microorganismo que es huésped de peces y no de humanos.
Por otro lado, las solicitudes que pudieren estar relacionadas, sin excepción, reivindican la extracción del producto de esta cepa, sin llegar a generar una composición farmacéutica. Existen otras iniciativas que resguardan una formulación farmacéutica distintiva. Estas formulaciones contienen un principio activo obtenido por técnicas similares al procedimiento que se desea reguardar, es decir a través de técnicas de clonamiento. Sin embargo la mayoría de estas invenciones están vinculadas al hombre o bien a peces, pero generalmente son vacunas de patógenos diferentes, utilizando epítopes diferentes al utilizado en la presente solicitud de patente de invención. En la presente solicitud se llegó mucho más allá que la extracción de un plásmido, una proteína o un polipéptido híbrido. Si bien se aisló el producto clonado, este producto se trató posteriormente para generar una composición y cuyo principio activo es la secuencia polipeptídica clonada. El fármaco, la composición y la vía de administración presentan insospechadas y novedosas ventajas por sobre las vacunas existentes. La secuencia no ha sido divulgada ni reconocida con anterioridad en el arte, más aun, el clonamiento en la cepa bacteriana E. coli JM- 109 es sólo una etapa de un procedimiento amplio que termina por la generación de una vacuna de ADN, la cual se encuentra contenida en un vehículo liposomal y generará repuesta inmunogénica contra los organismos patógenos. Los liposomas sirven de vehículos que portan la formulación farmacéutica, facilitando la protección e incorporación del principio activo. El complejo plásmido-liposoma, en adelante Lipoplex, se adicionan a una formulación alimenticia para peces en el proceso para la fabricación del alimento. Una vez administrado, el formulado alimeticio es ingerido y el principio activo absorbido en la zona luminar del intestino del organismo blanco, siendo luego expresado en la zona y otros tejidos, generando una respuesta inmunológica protectora. Estos aspectos no tan sólo gozan de novedad en el arte sino que también otorgan a nuestra iniciativa gran inventiva.
La solicitud de patente de invención japonesa JP2000295994 resuelve el problema de la producción de xylitol a través de técnicas moleculares. La solicitud japonesa divulga un método que comprende transformar E. coli con un gen que codifica para la enzima xylitol deshidrogenasa contenida en un vector plasmidal, posteriormente el microorganismo transformado adquiere la capacidad de generar xylitol a partir de D-xylulosa. La solicitud de patente de invención japonesa JP2000295994 muestra diferencias notables con la presente solicitud de patente de invención. Entre ellas podemos destacar que la solicitud japonesa no reivindica una línea particular Escherichia coli como lo es la línea E. coli JM- 109, sino que sólo en forma genérica. Por lo pronto el producto bajo patente es de uso humano. Finalmente las secuencias, uso, producto, método, vía, son muy diversas a lo que se desea reivindicar en la presente solicitud de patente de invención.
La producción de cepas imitantes inhibiendo la formación de placas es el problema solucionado por la invención japonesa JP2000083665. El proceso divulgado en la solicitud japonesa tiene como fin la obtención del gen glucosyl transferasa I de Streptococcus downei. El gen se amplifica a través de la técnica de PCR, empleando cebadores de 30pb basados en el gen GTF-I, el amplicón generado se liga en un vector de expresión para luego transformar la bacteria E. coli JM- 109. Posteriormente, se cultiva la cepa recombinante, se aisla y extrae la enzima glucosyl transferasa desde el sobrenadante. La solicitud de patente de invención japonesa no guarda relación con la solicitud de patente de invención que se desea proteger en el presente documento, ya que la unidad de invención en ambas invenciones es completamente distinta. Los procesos reivindicados en ambas solicitudes ofrecen una solución al estado de la técnica diverso, no obstante, la generación masiva del gen y su aislamiento es un procedimiento similar en biología molecular, pero cuya concepción biológica es diferente. En consecuencia, los cebadores utilizados son diferentes y el protocolo de cultivo ofrece profundas discrepancias. Estas solicitudes de patentes de invención sólo comparten aspectos globales, como son la utilización de la misma cepa E. coli JM- 109, pero la cepa recombinante obtenida es otra, además del gen aislado que no guarda relación en cuanto a la secuencia o a la utilización final de éste. En la solicitud japonesa la unidad de invención es la producción de una enzima con actividad biológica, en la presente solicitud de patente de invención la unidad inventiva es el desarrollo de un proceso de fabricación de alimento para animales en cautiverio. El proceso debe permitir la adición de sustancias farmacéuticamente activas, todas las sustancias son producidas a través de técnicas de ADN recombinante.
La solicitud de patente de invención JP2000050869 divulga la obtención de un nuevo plásmido con capacidad de replicación autonómica en E. coli, específicamente, E. coli JM- 109. Este plásmido es útil para ser utilizado como vector específico del género Gluconobacter sp. El vector fue aislado desde la cepa Glucobacter oxydans IFO 3171. La patente japonesa no guarda ninguna relación con la presente solicitud de patente de invención, a pesar de ser divulgada la utilización de la cepa de E coli JM- 109 en la memoria descriptiva, el género bacteriano y su utilización es reivindicada en sentido amplio por la propuesta japonesa y sólo en forma genérica, sin una cepa en particular que aloje el constructo plasmidial. La utilización de la cepa en nuestra iniciativa es a nivel específico la cepa E. coli JM- 109, la que es utilizada en la etapa de producción masiva del plásmido, pero es una etapa dentro de las etapas del proceso global, proceso que se desea reivindicar. Tanto las secuencias nucleotídicas como el concepto, uso y proceso no guardan ninguna relación con la solicitud de patente de invención japonesa.
La solicitud de patente de invención rusa RU2143492 divulga el desarrollo de un nuevo plásmido recombinante, el cual expresa el péptido líder que está unido al dominio IgG-de la proinsulina "A", sistema clonado a nivel humano, el plásmido generado en el invento ruso es el pRRproins. La proinsulina es preparada por un procedimiento que involucra el cultivo de la cepa de E. coli JM- 109 -pRRproins (cepa recombinante), posteriormente se debe recurrir al aislamiento de los cuerpos de inclusión, solubilización, cromatografía de intercambio iónico, proteólisis con tripsina y otras enzimas, para conseguir el aislamiento de insulina. Al igual que todas las invenciones anteriormente discutidas, la solicitud de patente de invención rusa RU2143492 la única característica que comparte con la presente invención es la utilización de la cepa E. coli y la trasformación con un plásmido para generar un producto. Es decir, utiliza la cepa como vector, aspecto ampliamente concebido en el estado de la técnica. Sin embargo, el uso siempre es relacionado con genes humanos y no como la presente invención que desea utilizarla para clonar proteínas que serán expresadas en animales. Además, las secuencias involucradas, los cebadores y el uso son muy diferentes. En todas las solicitudes analizadas la unidad de invención se suscribe solamente al cultivo de la cepa transformada por un plásmido u otro vector y al asilamiento del producto, bajo diferentes protocolos. La unidad de invención en la presente solicitud de patente de invención es considerablemente más amplia, ya que una etapa del proceso es el clonamiento, a través de la cepa bacteriana, pero cuyo plásmido porta información para una proteína viral (VP2) del patógeno que ataca a peces. Posteriormente se aisla el plásmido que contiene la secuencia clonada, para ser encapsulado en un liposoma catiónico. Este complejo (liposoma-plásmido) servirá de vehículo de cesión y formulación farmacéutica para la administración de principios activos a animales en cultivo. Además, a través de un proceso industrial se ha desarrollado una tecnología completamente novedosa e inventiva que comprende el suministró de la vacuna en forma de ración alimenticia, ya que esta vacuna ha sido incluida en el alimento. Aspectos que no considera ninguno de los documentos en el arte, por si solos o en su conjunto.
La solicitud rusa RU2130071 divulga un método de para preparar hirudina HVl. El proceso es llevado a cabo mediante la transformación de una cepa recombinate de E.coli JM- 109 (BP- 32266) con un vector de secreción pMTS HVl o pMKS HVl. Una vez transformada la cepa, se cultivó y luego se aislaron los productos finales desde el medio de cultivo o el espacio periplásmico. El plásmido construido contiene tres elementos principales: un fragmento de ADN que codifica para la fosfatasa alcalina, el fragmento hirudina HVl combinado con el sitio Accl y el gen que determina la resistencia a la ampicilina como marcador genético. El sistema muestra como mejora el disminuir hemorragias gracias a su uso. La solicitud de patente de invención rusa presenta varias e importantes diferencias con la presente solicitud de patente de invención, ya que el gen clonado no presenta similitud con el gen que se desea amplificar en la bacteria. En la presente solicitud de patente de invención, no obstante que la cepa bacteriana es la misma, ni el plásmido ni el gen presentan similitudes, a pesar el que el propósito por definición sea el mismo, es decir, que es un vector de clonamiento. Debemos considerar que el clonamiento es solo una etapa dentro del proceso que se desea proteger, lo que no es menor, si se considera que se desea reivindicar un proceso de múltiples etapas. Al igual que todas las solicitudes anteriores, la solicitud rusa RU2130071 tiene otra función biológica y sólo reivindican la cepa bacteriana transformada a partir de la cepa E. coli JM- 109 como hospedador del plásmido y un proceso de aislamiento relacionado. En ambos casos es diferente el uso y concepto de los utilizados en la presente solicitud de patente de invención.
La solicitud japonesa JP2084195 divulga un proceso para la producción de proteínas en alta cantidad. El proceso se basa en la transformación de microorganismos hospederos de un vector, que tiene la particularidad de llevar incorporado en un plásimido un fragmento de ADN que codifica una proteína hepática. Para iniciar el proceso se macera hígado y se trata directamente con enzimas. Los segmentos codificantes de la polipoproteína humana (HAPE) o similares a HAPE son aislados por técnicas tradicionales. Luego se trata el ADN de E. coli con enzimas de restricción, obteniendo una secuencia o codón de señal para ambos ADN. Una vez obtenidos los codones se genera una estructura en forma de tándem, todos unidos a un vector de expresión. El vector presenta la peculiaridad de presentar un promotor Tac y un dominio de unión a ribosomas. Obtenido el cons tracto pOFAapoE, se transforma una cepa bacteriana por incorporación de estos componentes, por ejemplo la cepa E coli JM- 109, la cual en condiciones de transformante produce la polipotroteína E humana. La proteína es excretada en el medio en el que se cultiva el microorganismo. La solicitud de patente de invención japonesa presenta varias diferencias con la presente solicitud de patente de invención. Por ejemplo, el gen clonado no presenta similitud con el gen que se desea clonar en la bacteria vector en la presente solicitud de patente de invención, ya que no es humano, si bien la cepa bacteriana es la misma, ni el plásmido ni el gen presentan similitudes, por cuanto desde el punto de vista biológico utilizar el mismo vector de clonamiento, pero con un gen clonado diferente, representa una diferencia absoluta, no obstante que el propósito en esta etapa sea el mismo, que es la utilización de un vector de clonamiento. Por tanto, subsiste la diferencia en la utilización del plásmido y sus secuencias nucleotídicas.
Si bien en la iniciativa japonesa se utiliza la cepa de E. coli JM- 109 como vector, las secuencias utilizadas en la solicitud de patente de invención que se desea reivindicar no son humanas, no así todas las solicitudes analizadas. Además, el clonamiento es una etapa común para todas las solicitudes, es decir, utilizar la cepa bacteriana como vector es un aspecto ampliamente conocido en el estado de la técnica, pero el uso siempre es relacionado con genes humanos y no animales. Además las secuencias involucradas, los cebadores y el uso son considerablemente diferentes, por cuanto en todas las solicitudes analizadas la unidad de invención se suscribe solamente al cultivo de la cepa transformada por un plásmido u otro vector ADN y posterior asilamiento del producto bajo diferentes protocolos. La unidad de invención en la presente solicitud de patentes de invención es mucho más amplia, ya que una etapa del proceso que se desea reivindicar es el clonamiento de un epítope viral por intermedio de una bacteria hospedadora. La secuencia peptídica que se desea clonar es un polipéptido de 725 pb, la cual es parte de la proteína VP2 de un patógeno viral, el virus IPNV que ataca a peces. La bacteria es transformada con el plásmido que contiene la secuencia a clonar, luego es cultivada y finalmente tratada para extraer el plásmido, el que posteriormente a la purificación será encapsulado en un liposoma catiónico. Esto no es utilizado en ninguna de la invenciones anteriormente discutidas. Este complejo Lipoplex (liposoma-plásmido) servirá de vehículo de una secuencia de ADN con capacidad de generación de respuesta inmune en peces. Aplicar esta tecnología para inmunizar peces, es sólo una aplicación de la tecnología. Lo importante de la presente invención, como una tecnología completamente novedosa e inventiva, es que por medio de ésta se podrá suministrar fármacos a peces y otros organismos en forma de ración alimenticia, aspectos que no considera ninguno de los documentos en el arte por si solos o en su conjunto.
4. Búsqueda relacionada con el uso de liposoma DOTAP:
El liposoma DOTAP fue utilizado en la presente solicitud de patente de invención como vehículo de cesión y además como complejante y elemento estabilizador. A continuación se discuten las iniciativas más importantes.
La solicitud de patente de invención WO9807408 resguarda la utilización de liposomas catiónicos que han sido desarrollados como sistema de entrega o cesión para reactivos biológicamente activos. La estructura del liposoma contempla uno o más sustancias o agentes activos internalizados entre dos liposomas bilamelares. Esta estructura protege el agente en su interior. El sistema presenta alta eficiencia en la cesión "in vivó". La más alta expresión del polipéptido fue lograda en el estómago, mientras que se incrementa la expresión en varios órganos y tejidos. La solicitud en comento reivindica la producción del liposoma por medio de calor, posterior adición de una molécula de colesterol, sonicación, extrusión de los componentes lípidos en forma secuencial a través de filtro de porosidad reducida. Si bien la solicitud de patente de invención en comento reivindica el uso de los liposomas como vehículos de moléculas, lo hace en forma genérica. Además, el uso que se le otorga a los liposomas en esta iniciativa está asociado a moléculas de colesterol, las cuales serían coadyudantes. En la solicitud de patente de invención propuesta la formulación del complejo no utiliza colesterol en su formulación ni coadyudantes, las secuencias son novedosas y el uso es distintivo. En nuestra iniciativa la generación del complejo es una etapa inserta un proceso global, el preparado es denominado lipoplex, que no contiene colesterol y cuya secuencia codifica para un epítope de una proteína viral. La presente invención no esta concebida para que tenga una actividad biológica per se, como todas las iniciativas que serán discutidas en el punto 4. A diferencia de todos las solicitudes de patente de invención agrupadas en este punto, la formulación inventada es diferente, debido a que el liposoma es un vehículo que esta orientado a la expresión de una secuencia que generara una respuesta en el sistema inmune de peces, no aplicaciones en humanos, de tipo cosmetológicas y/o farmacéuticas, como todas las solicitudes que se estudiarán a continuación.
La solicitud de patente de invención WO9810748 resguarda un método de utilización de liposomas catiónicos y el procedimiento de fabricación. El método de uso esta basado en la tecnología de deshidratación y rehidratación de éstos. Para ello primero se deben colectar células dianas, las cuales son cultivadas y posteriormente transfectadas fuera del organismo donde se espera que tengan acción terapéutica. Luego son introducidas al organismo para que tengan acción "in vivo". La solicitud de patente de invención comentada reivindica el contenido de los liposomas como polinucleótidos codificantes para un polipéptido. La información introducida al liposoma es doble hebra de ADN o mARN, cuya función es producir una respuesta inmune en los individuos donde son administrados. La solicitud mundial reivindica el polinucleotido, particularmente su estructura genética, así este debe presentar una secuencia promotora y opcionalmente secuencia de uniones a ribosomas. Además, el componente catiónico del liposoma es un glicérido. El procedimiento de fabricación de los liposomas es reivindicado como un proceso que comprende una serie de etapas, que resumidamente son: Una etapa de deshidratación, seguida de un etapa de rehidratación, para luego generar una microfluidización y extrusión. Finalmente la solicitud de patente de invención de la oficina mundial de patentes WO9810748 reivindica la vía de administración del complejo liposoma-polinucleotido, la que puede ser por vía intramuscular, subcutánea, intravenosa o intraperitoneal con excipientes "farmacéuticamente aceptables". En la solicitud Mundial WO9810748 se presentan profundas diferencias con la presente solicitud de patente de invención, las cuales comprenden procedimiento de fabricación del complejo liposomas-nucleótido, así como también las sustanciales diferencias en uso y aplicación de los liposomas, aunque el concepto global en el uso de los liposomas es el mismo, y en consecuencia, nuestra solicitud de patente de invención adolecería de novedad, sin embargo, en el procedimiento exhiben diversas diferencias. Entre ellas destaca la utilización de liposomas para generar respuesta inmune "in vivo", sin necesidad de extraer células del individuo, lo cual no esta reivindicado ni divulgado por alguna iniciativa similar, tampoco presente en la solicitud mundial WO9810748, iniciativa que claramente reivindica un procedimiento que implica la extracción de células que deben ser cultivadas y luego transfectadas, para luego, mediante algún método sofisticado, reincorporadas al individuo, donde generarán la acción terapéutica.. Mayor aún es la inventiva relacionada con la presente solicitud, debido a que el procedimiento que se desea resguardar en la presente formulación no utiliza coadyuvantes, y la vía de administración es diferente a la reivindicada en la solicitud de patente de invención mundial, discrepancias que enfatizan la novedad e inventiva de la presente solicitud de patente de invención.
La composición reivindicada en la solicitud de patente de invención US2005249794 resguarda varios tipos de liposomas, entre los cuales se encuentra el liposoma DOTAP. La solicitud de patente de invención estadounidense reivindica la utilización de liposomas que encapsulan oligonucleotidos. Estas sustancias tienen la función de estimular la secreción de citoquinas. Los oligonucleotidos mejoran la respuesta inmune en mamíferos tratados, sin embargo la solicitud norteamericana no establece la naturaleza de los oligonucleotidos utilizados, tampoco una secuencia específica para generar una respuesta inmune en los organismos blancos. La solicitud norteamericana resguarda la generación de la respuesta inmune específica a antígenos reivindicados en ella, ya que la administración de una molécula de antígeno en asociación con partículas de lípidos son los responsables de dicha respuesta. Un aspecto importante de la solicitud de patente de invención estadounidense se relaciona con las secuencias reivindicadas, ya que la composición reivindicada contiene una secuencia no especificada en los oligonucleotidos. El ácido nucleico del oligonucleótido puede contener un lípido catiónico, señala la solicitud norteamericana, sin embargo éste debe ser fosfodiester o fosfotiolato, puede ser o no una secuencia complementaria al genoma humano, conteniendo un motivo tal como CpG, o puede contener una secuencia palindrómica, es decir, es una generalización por funcionalidad.
La solicitud estadounidense reivindica una formulación que contiene un oligonucleótido con un motivo CpG cuyos residuos se unen a los fosfodiester y un lípido como coadyuvante. El lípido presenta una estructura tipo PEG o PAO o un ganglósido. Esta composición esta contenida en un liposoma. La solicitud de patente de invención estadounidense US2005249794 reivindica una serie de liposomas que pueden utilizarse para ceder la formulación, entre ellos se encuentra el DOTAP. El caso de nuestra iniciativa solo se utilizó el liposoma DOTAP más el nucleótido, pero este nucleótido codifica para un péptido viral, el cual es huésped de salmónidos y cuya expresión tiene lugar en células entéricas. En todas las iniciativas que hemos estudiado el liposoma es directamente introducido al organismo blanco, sin embargo, la gran diferencia de la presente invención es que el liposoma es incorporado a una formulación para generar alimento de peces, según un protocolo muy definido. Ninguna solicitud similar, menciona que el liposoma sea utilizado en peces, ya que el liposoma DOTAP está concebido para ser utilizado humanos, no en todos los mamíferos. Aun así existen iniciativas que reivindican su utilización en sistemas mamíferos superiores, pero ninguna iniciativa relaciona el proceso de fabricación de alimentos -en forma genérica- con la introducción de sustancias que puedan ser absorbidas a través de cesión entérica a otros organismos diferente de los humanos.
El método protegido en la solicitud de patente de invención estadounidense US2003220284 se relaciona con una composición que utiliza el liposoma DOTAP, colesterol y una molécula de nucleótido viral. El nucleótido es ADN circular de un adenovirus recombinante. Esta formulación es un carrier terapéutico para neutralizar la respuesta inmune frente al cáncer gástrico humano. La solicitud norteamericana presenta amplias diferencias con la solicitud de patente de invención que se desea proteger, ya que la formulación, método, procedimiento y uso son distintos a lo que se desea reivindicar en la presente solicitud de patente de invención. No discutiremos a fondo las diferencias debido a que son profundas y no se ve afectada la unidad de invención de la presente iniciativa.
El procedimiento para la transfección de células tumorales con vectores no virales y posterior irradiación, es reivindicado por la solicitud de patente de invención española ES2224836. El liposoma utilizado es el DOTAP y la etapa de irradiación es posterior a la utilización de este vector. Las expresiones de las células transfectadas generan el factor de crecimiento de colonias de granulocitos (GM-CSF). Se describe el uso de las células transfectadas en el campo de la terapia génica y su uso como medicamento antitumoral.
La solicitud española presenta diferencias de concepto con nuestra iniciativa, por ejemplo, en el proceso de formulación así como en el uso de la tecnología inventada exhiben diferencias a nivel macromolecular. Ambas iniciativas tienen en común únicamente la utilización de liposoma como vector de cesión, pero tanto el plásmido como la información y la metodología utilizada presentan profundas diferencias, uso y propósito.
Un método para determinar la regresión o progresión del cáncer en un paciente es divulgado por la solicitud de patente de invención estadounidense US2002168662. El procedimiento se basa en la detección e identificación de la molécula Sp 17 como un test antigénico. Para ello se ensaya una muestra del paciente, previamente diagnosticado con cáncer. En la muestra se determina el nivel de expresión de una molécula de ácido nucleico que codifica para la proteína Spl7, luego se compara el nivel de expresión normal con el nivel de expresión de la molécula Spl7 en el paciente. La variación entre ellas indicará la progresión o regresión del cáncer.
Tanto el procedimiento como el concepto de la invención presentan severas diferencias con la presente invención. No se discutirán las divergencias por estar alejado del campo de la invención, siendo una unidad inventiva completamente distinta.
La solicitud de patente de invención de la oficina mundial de patentes WO9527508 divulga una composición para generar una respuesta inmune en mamíferos a un antígeno determinado. La composición comprende el antígeno atrapado en un liposoma (DOTAP) e integrado con un coadyuvante (ISCOM). La composición puede ser administrada por varias vías, incluidas las intradermal, intranasal, intratraqueal, oral, rectal y por medio de douche. El antígeno es derivado de un organismo involucrado en una infección de la piel, tracto respiratorio, tracto genitourinario u otra superficie mucosa. Además el microorganismo puede ser virus, bacteria, micoplasma o fungi. La solicitud de invención WO9527508 amplía el campo de invención, no definiendo el patógeno al cual puede atacar, tampoco las secuencias utilizadas, no define vía de administración ni mucho menos una formulación. Solamente define la función final de una supuesta composición que utilice como vehículo el liposoma DOTAP. Sin embargo, la solicitud WO9527508 define como principio activo el antígeno mismo, no las secuencias que eventualmente produciría ese antígeno. Además la composición divulgada por la solicitud de la oficina mundial de patentes WO9527508 debe incorporar la utilización de ISCOM como coadyuvante. Las diferencias son amplias, primero en composición, ya que nuestra solicitud implica que el principio activo no es el antígeno mismo incluido en la formulación, sino que una secuencia que genere una parte de la molécula, la que a su vez al ser expresada en diversos tejidos generará una respuesta inmune contra el agente patógeno, diferencia fundamental en términos biológicos.
Se debe destacar que el complejo DOTAP-nucleótido de la formulación reivindicada por la presente solicitud de patente de invención, no es sólo una etapa del proceso, sino, más bien, un vehículo de encapsulación de una novedosa formulación alimenticia. A diferencia de todas las solicitudes anteriores, las cuales son invenciones relacionadas con la utilización de DOTAP, todas reivindican la utilización directa del complejo farmacéutico, es decir, directamente el complejo con el coadyuvante generan la respuesta bajo diversos métodos, es decir, la actividad biológica es directa, luego el complejo liposoma-principio activo es utilizado. En las solicitudes de patente de invención discutidas anteriormente el complejo liposoma-molécula y coadyuvante (todas reivindican coadyuvantes) tienen la misma función biológica, y más importante aún, actividad biológica. Solo algunas iniciativas reivindican la generación de respuesta inmune en el organismo blanco, generalmente repuesta inmune contra cáncer. Sin embargo, los procedimientos y los usos derivados de cada formulación son diferentes, consecuentemente se reivindican como parte del método y en el procedimiento. En ambos casos, ya sea procedimiento y/o uso, persisten diferencias, ya que la presente solicitud de patente de invención dista de todas por concepto utilizado, ya que no presenta actividad biológica directa y el protocolo aplicado, si bien se utilizan elementos similares, por ejemplo la utilización del vector de cesión, las secuencias utilizadas en la presente invención no son humanas, a diferencia de TODAS las solicitudes anteriormente expuestas. En otras palabras, el principio activo de la formulación es diferente. Además, el proceso que se desea reivindicar es distinto, al incluir el vehículo de cesión (liposoma-ADN) en una formulación alimenticia para animales. No así todas las solicitudes analizadas, la primera diferencia radica en la naturaleza de las secuencias utilizadas, en segundo lugar, el propósito de la utilización del plásmido, en tercer lugar, la utilización de la cepa bacteriana para transformarla con un plásmido no antes divulgado en el arte para la transformación y clonamiento en esta cepa, y luego, introducir el plásmido en un vehículo, que si bien es ampliamente concebido en el estado de la técnica, como es la utilización del plásmido como vehículo ;para terapia génica en hombres, en la presente solicitud se está divulgando un novedoso uso, la utilización del vehículo más una secuencia de ADN como vacuna para inmunización de animales. La unidad de invención se amplía, ya que aparte de los cinco productos enunciados anteriormente, el proceso es reivindicable por la utilización del liposoma, pero el uso en peces bajo el presente es novedoso. Este complejo, liposoma-plásmido servirá de vehículo que contiene en su interior una vacuna ADN y que, además, en función de una tecnología completamente novedosa e insospechada será suministrada a peces en forma de ración alimenticia, aspectos que no considera ninguno de los documentos en el arte por si solos o en su conjunto.
La invención ofrece grandes ventajas sobre los sistemas tradicionales de vacunación. Esta invención divulga una vacuna que es segura, ya que no existe el problema de reversión, como las vacunas de microorganismos atenuados. No provoca efectos secundarios nocivos, como ocurre con algunos coadyuvantes. Se ha demostrado una protección eficaz contra el desafío de cepas patógenas virulentas, además de poseer gran estabilidad por su forma de administración y vehículo de cesión. La invención esta concebida para generar una protección de larga duración.
5. Búsqueda de Solicitudes relacionadas a la confección de vacunas para peces:
La solicitud de patente de invención GB2308367 divulga el uso de una proteína que presenta actividad inmunosupresora. La proteína fue aislada desde Aeromonas sp., es de naturaleza no hemolítica, caracterizada por un peso molecular de 30 KDa y no presenta actividad enzimática. La proteína presenta la peculiaridad que suprime la respuesta inmune celular y puede ser utilizada en formulaciones para vacunas, especialmente para inmunizar peces, particularmente salmónidos en contra de furunculosis. Las diferencias con la presente invención son básicas en cuanto al concepto utilizado, y amplias en relación al proceso de fabricación. En primer lugar, la solicitud del Reino Unido no menciona la vía de administración, ni la composición final de la vacuna, sólo menciona el objetivo y que "puede ser utilizada en formulaciones o vacunas para peces". En ningún caso la solicitud inglesa menciona el cómo o la forma de vacunación de los peces o la formulación específica para ello, la vía es ignorada completamente en la solicitud inglesa. Distinto es el caso de nuestra solicitud de patente de invención, donde la unidad de invención persigue específicamente el objetivo de protección de un proceso, el cual contempla el resguardo de etapas novedosas, las cuales presentan insospechadas ventajas en si mismas y además es novedosa en cuanto a los procesos existentes. Además cada etapa en particular presenta productos excepcionales. Uno de los productos, finales, es la vacuna para peces, cuya formulación, mecanismo de cesión, vía y formulación se apartan ostensiblemente de la unidad de invención de la solicitud inglesa, firmemente definidas en la presente solicitud de patente de invención.
La solicitud de patente de invención estadounidense US5939073 divulga el aislamiento de una cepa viral que produce enfermedades pancreáticas en peces. La vacuna presenta como principio activo el virus inactivado, además se resguarda el kit de diagnostico asociado. El diagnóstico se basa en encontrar un anticuerpo que se detecte en forma específica al virus de la muestra del pez evaluado. El anticuerpo tiene un marcador detectable. El método comprende la toma de muestra del pez, la reacción con un reactivo y posterior detección de la cantidad de virus en la muestra. La solicitud reivindica otros procedimientos relacionados a la detección viral en tejidos específicos. Las diferencias son amplias, primero la solicitud de patente de invención estadounidense utiliza virus atenuados y no secuencias de ácidos nucleicos, la vacuna no tiene efecto para el mismo virus (IPNV), en la presente solicitud de patente de invención se reivindica una formulación específica para el patógeno a proteger. La solicitud norteamericana no utiliza o menciona plásmidos, cepas o liposomas y su cesión no está vinculada a una formulación alimenticia para el virus que se desea proteger.
La invención US5914260 describe un nuevo virus que causa enfermedad pancreática peces, particularmente en salmón atlántico. El método de aislamiento del virus es divulgado, asimismo el uso de la cepa viral o las proteínas y/o polipéptidos derivados como vacunas. El kit de diagnóstico es divulgado pero no resguardado. Solamente la cepa viral es reivindicada. Las diferencias con la presente solicitud de patente de invención son amplias. No se discute a profundidad el método, uso, secuencias, procedimiento, características discordantes con la presente invención. Una vacuna contra el virus de la anemia infecciosa del salmón (ISA) es divulgado bajo la prioridad Noruega y presentación de la oficina mundial de patentes de invención WO0072878. La invención está relacionada con el desarrollo de una vacuna contra el virus ISA, la cual se desarrolla a partir de secuencias de ADN viral que codifican proteínas inmunogénicas aisladas a partir de la cápside viral. El kit de diagnóstico para la detección de secuencias de ácidos nucleicos virales también es divulgado. La vacuna es caracterizada por incluir una secuencia de ADN que codifica para una proteína viral. Las diferencias con la presente solicitud de patente de invención son amplias. La solicitud de patente de invención WO0072878 no presenta las mismas secuencias ni funcionalidad similar, además el plásmido para clonar la secuencia no presenta ninguna vinculación con el utilizado en la presente invención. Finalmente, la invención de la oficina mundial de patentes no utilizó liposoma ni describe formulación alguna. El proceso está fuera del campo inventivo, ya que no se nombra en la solicitud de patente de invención mundial.
La solicitud de patente de invención europea EP1094069 resguarda una formulación, cuyo elemento principal es una secuencia de ácido nucleico que codifica para una proteína estructural del virus, el microorganismo estudiado fue el virus de de la anemia infecciosa de salmón. El aislamiento de proteína (SP-I), el uso para la diagnosis o propósitos de vacuna y reactivos son reivindicados en la inventiva europea. La composición de la vacuna es simple, comprende la secuencia de ácido nucleico o proteína más un carrier "aceptable". El kit es reivindicado para diagnosis, el principio se basa en aspectos inmunológicos clásicos, los anticuerpos que reconocen esta proteína (SPl) detectan un ácido nucleico o una proteína (SP- 1) en la muestra. Las diferencias con la presente solicitud de patente de invención son amplias desde la secuencia, el vector de clonamiento el vehículo o carrier, la presencia de plásmido y liposomas en la formulación farmacéutica, y el proceso de fabricación de la vacuna en su integridad no es afectado ni en novedad ni en nivel inventivo por las solicitudes anteriormente discutidas.
Las solicitudes de patente de invención norteamericanas US2005164176 y US20055261227 divulgan el uso de diversas secuencias de ácidos nucleicos o péptidos para la preparación de vacunas e inmunización de peces contra el virus ISA. Las vacunas se basan en que las secuencias son derivadas del virus o bien sintetizadas en forma análoga, las secuencias son traducidas a un péptido, el péptido forma parte de la vacuna, ya que en la solicitud norteamericana se aplica el criterio que las proteínas son la superficie generadora de respuesta antigénica viral. De esta forma, en ambos casos se divulga el uso de una vacuna en contra de ISAV, y la incorporación de una secuencia péptica específica en una vacuna es resguardada por ambas iniciativas. Además, es resguardada la vacuna como forma farmacéutica, el kit de diagnóstico y la célula que contiene la composición (transformante). Las diferencias con la presente solicitud son amplias, desde las secuencias, el vector, el plásmido y el organismo utilizado. Los aspectos compartidos solamente se refieren a el concepto de vacuna ADN o de un poli nucleótido incluido, pero aún así persisten importantes diferencias como el vehículo de transformación o de cesión o la formulación misma son profundamente divergentes. Otro aspecto no menor es el propósito, diverso al propósito concebido en la presente patente de invención. Nótese no hemos hablado del proceso, ya que la vacuna es un producto de un proceso que es novedoso e inventivo, que será reivindicado en la presente solicitud de patente de invención.
La vacuna para peces divulgada por la solicitud americana US2005226895 resguarda la generación de inmunidad en contra de Piscirickettsia salmonis, en salmónidos, a través de una formulación farmacéutica que contempla las secuencias nucleotídicas o peptídicas como principio activo y un carrier, al igual que el caso de las solicitudes US2005164176 y US20055261227, las cuales divulgan la misma unidad inventiva, con la salvedad de las secuencias. La presente invención, aparte de la diferencias relativas a las secuencias, la cesión y formulación, presenta diferencias en el microorganismo, vector de clonamiento, la utilización de un plásmido que se ha utilizado principalmente para clonar ADN de humanos y no de animales, e introducir la formulación en un carrier de cesión como es el liposoma catiónico DOTAP. Persisten las diferencias referentes al proceso de fabricación de alimento que contendrá la vacuna plasmidial.
La invención US200423580 divulga una vacuna contra el ISAV. Se asilaron polipéptidos antigénicos o moléculas de ácidos nucleicos que los codifican, generando una vacuna cuyo principio activo es la molécula de ácido nucleico, además constituida por un carrier. La solicitud de patente de invención norteamericana divulga que en la formulación intervienen moléculas de coadyuvantes, el kit de diagnostico también es reivindicado. La presente invención, además de la diferencias en las secuencias, cesión y formulación, presenta diferencias referentes al proceso y la vía de administración. Las solicitudes US2004146860, WO03/035680, CA2321437, WO01166569, WO0149712 y US69119083 son vacunas contra el virus ISAV. Todas las solicitudes señalan el mismo propósito que es la protección de una secuencia, ya sea peptídica o nucleotídica, como principio activo de la formulación farmacéutica. Todas las formulaciones se basan en la secuencia que codifica para un polipéptido que se une a un anticuerpo obtenido desde un animal infectado con ISAV. El kit de diagnostico también es reivindicado en algunas solicitudes de patente de invención. La presente invención presenta profundas diferencias. La primera gran diferencia es el principio activo, ya que las secuencias son distintas y distintivas, pues son de un virus distinto como es el virus IPNV, además de la diferencias en las secuencias que se presentan en el plásmido recombinante y la cesión efectuada a través de un liposoma catiónico, diferencias que definen una nueva composición farmacéutica. Se mantienen las grandes diferencias con el proceso de cesión que incluye la vía oral en una formulación alimenticia.
Las solicitudes KR2003078807, CA2407301 y CA2381708 proponen una vacuna contra Piscirickettsia salmonis. Al igual que el conjunto de patentes anteriores, las solicitudes agrupadas en este punto se relacionan con la presente invención sólo porque todas son vacunas para peces y cuya sustancia activa es de naturaleza híbrida o molecular, formulaciones que generan una respuesta inmune por la cesión de secuencias nucleotídicas o polipeptídicas después de la vacunación del pez. Las diferencias con la presente solicitud de patente de invención son amplias, las composiciones son discordantes, en la etapa de clonamiento son diferentes vectores que intervienen, la cesión se realiza por otras vías e intervienen otros agentes. En resumen, no se han encontrado formulaciones para vacunas ADN contra el virus IPNV que sean similares a la composición que se desea reivindicar en la presente solicitud de patente de invención.
La solicitud WO2003/101482 A3 divulga la formulación de una vacuna para peces, fines que comprende el material antigénico derivado de uno o más patógenos del pez en asociación con liposoma, y opcionalmente incluye otros compuestos terapéuticos. La vacuna puede ser usada para inmunizar o para tratamientos terapéuticos en contra de los patógenos de este pez. La invención también reivindica el método de preparación, administración y almacenamiento de la vacuna liposomal. A pesar que la solicitud mundial reivindica la utilización de liposomas para generar una vacuna contra IPNV, las secuencias descritas no guardan relación, como tampoco los cebadores ni la secuencia peptídica expresada. Una composición debe ser reivindicada por sus componentes, pero en la solicitud mundial no se establece qué parte de ella es específicamente el liposoma cationico DOTAP. Además la composición reivindicada tiene un uso especifico para una especie determinada de pez, diferente a la que se desea resguardar en la presente solicitud de patente de invención. La composición farmacéutica de la solicitud mundial está compuesta por el principio activo, que puede ser una secuencia nucleotídica del virus IPNV, un "liposoma", pero sin describir cuáles de los existentes, se indica ambiguamente una o más clases de lípidos, uno o más agentes bioactivos, uno o más adyuvantes, agentes bioactivos, y un carrier "farmacéuticamente aceptable". Es decir, la composición que se desea reivindicar no guarda ninguna relación con la solicitud de patente de invención mundial, aunque parezca tangencialmente relacionada. Además, el proceso de fabricación es claramente distinto y la solicitud mundial tampoco explica cómo va a ser cedido el principio activo al pez. Lo que establece la solicitud mundial es que el producto es resultado de la formulación con liposoma, sin embargo en nuestra solicitud de patente de invención el producto es una formulación alimenticia que contiene una vacuna, específicamente para el virus de la necrosis pancreática infecciosa, pudiéndose utilizar la misma tecnología para otros patógenos.
En Chile solo existe una sola solicitud de patente de invención asociada a la formulación de vacunas ADN para peces. La solicitud de patente de invención titulada "vacunas de ADN y de péptidos contra la infección por caligid copepod en peces que comprende un antígeno y un adyuvante, diluyente o vehículo farmacéuticamente aceptables y secuencias de ADN y proteínas de los antigenos". Las diferencias con la presente solicitud son amplias, desde las secuencias, el plásmido, el hospedador bacteriano y el organismo utilizado. Los aspectos compartidos solamente se refieren el concepto de vacuna ADN o de un polinucleótido incluido, pero aún así persisten importantes diferencias como por ejemplo el vehículo de transformación o de cesión y la formulación misma son profundamente divergentes. Otro aspecto no menor es el propósito, diverso al propósito concebido en la presente patente de invención. Nótese que no hemos discutido acerca del proceso, ya que la vacuna es un producto final de un proceso que es novedoso e inventivo, el cual será reivindicado en la presente solicitud de patente de invención. 6. Búsqueda de Solicitudes relacionadas a la confección de una formulación alimenticia para peces que contenga una vacuna ADN:
No se encontraron documentos coincidentes bajo este criterio de búsqueda, por lo que resulta novedoso y de gran inventiva el proceso que se desea reivindicar.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención tiene como propósito la protección de un proceso y un producto. El proceso permite formular una composición farmacéutica veterinaria desarrollada a través de técnicas de biología molecular y que consiste en un tipo de vacuna ADN contra virus patógeno para ser incluida en el alimento de organismos en sistemas de cultivo. El producto a proteger es la composición farmacéutica antes señalada, cuya principal característica es que puede ser administrada en forma oral -sin manipulación de cada individuo- a animales que se encuentren en sistemas de producción masivos.
En esta solicitud se trabajó en sistemas acuícolas y más específicamente sobre patógenos de peces. La invención contempla reivindicar un proceso para la fabricación de una vacuna ADN frente a un patógeno viral. Dicha vacuna es aplicada en peces, particularmente salmónidos, y está concebida para centros acuícolas. La invención consta de varias etapas, que van desde el aislamiento de una secuencia genética codificante de un componente polipeptídico viral hasta el escalamiento industrial del proceso. El proceso consiste en la vehículización de esta formulación con un excipiente palatable, de tal forma que los individuos ávidamente ingieran el alimento que contiene una vacuna, la cual es absorbida en forma entérica por los peces y tiene acción farmacológica en diversos tejidos del pez.
La formulación a proteger está concebida para ser administrada en forma oral, siendo parte del alimento la formulación farmacéutica, cuyo principio activo es la secuencia genética de interés, la cual está contenida en un plásmido, que a su vez se encuentra complejada por un liposoma.
La invención está prevista para reivindicar un proceso que puede ser aplicado a la fabricación de alimentos que contengan vacunas para inmunizar cualquier tipo de organismos. En este caso, se aplicó a la industria acuícola, pero puede ser un proceso aplicable a la industria avícola, porcina, equina, caprina, entre otras. A continuación se describe la invención.
Producción de virus, proteínas y cebadores.
El virus de la Necrosis Pancreática Infecciosa (IPNv) es un virus de la familia Birnaviridae cuyo genoma es bisegmentado, de doble cadena de ARN, donde el segmento sub-genómico más pequeño (segmento B) codifica para una enzima ARN-dependiente-ARN polimerasa (VPl), mientras que el segmento mayor (segmento A) codifica la poliproteína NH2- VP2- VP4- VP3-COO", donde VP2 y VP3 son proteínas estructurales y VP4 una proteasa viral encargada del autoprocesamiento por proteólisis mediante el cual se generan secuencialmente precursores intermediarios, que luego dan origen a los componentes maduros funcionales. Estos son VP2 que está expuesta total o parcialmente en la capa más externa de la cápside viral; VP3, que es la que interacciona con VPl, por lo que se cree que está en la cara interna de la cápside; y VP4, la proteasa responsable del autoprocesamiento (Duncan y Dobos,,1986; Duncan et α/. 1991).
El primer paso es la obtención del material genético del patógeno, en este caso ARN o ADN. El ARN es necesario para la amplificación de las secuencias que codifican para el segmento de una proteína con actividad inmunogénica probada. En el caso del virus IPNV, que ataca a salmónidos, se amplificó ADN complementario codificante de una región de la subunidad "A" de la proteína VP2. Para ello se infectó con el virus IPN monocapas confluentes de células embrionarias de salmón Chinook CHSE- 214 (ATCC 1681). Transcurrido un periodo de postinfección, se extrajo el ARN total utilizando Trizol (Invitrgen). Para aislar el ARN viral de las células se aplicó el kit QIAamp (Qiagen), obteniendo en forma pura el ARN viral.
El segundo paso es la obtención de la secuencia nucleotídica amplificada. Para ello, luego de ser definida la secuencia genética codificante de la proteína viral que contiene la región antigénica de interés, se construyeron los cebadores de ARN en primera instancia y posteriormente ADN complementario (ADNc), todo mediante una reacción de polimerasa inversa y reacción en cadena de polimerasa. Los cebadores empleados se pueden ver en la figura n° 1. Estos permitieron amplificar y clonar en forma selectiva la información que codifica para un epítope en particular de la subunidad dos de la proteína de la cápside del virus DPN. En el caso particular del virus IPN, la secuencia nucleotídica amplificada fue del segmento "A" de D?NV, cuyo origen está alrededor de los 250 pb desde el extremo amino terminal. Para este estudio se consideró un análisis bioinformático de secuencias de los siguientes serotipos: Vr299, Ja-ATCC, C2, Ab, ASV, Sp y He, correspondientes a los seis genogrupos descritos para este virus. Se tomó como referencia el serotipo Vr299 dada su prevalencia en Chile. Los análisis de alineación y homología se realizaron a través de la base de datos de Gen Bank y un programa de alineamiento de secuencias nucleotídicas (BLAST o DNAman). Los análisis arrojaron una homología de la secuencia amplificada del genoma viral superior al 85% en relación al resto de los serotipos de D?NV.
Se adecuó un protocolo para realizar la amplificación reversa (RT-PCR) a partir del ARN total y viral. El ADNc de la región genómica viral de interés es utilizado como templado para la posterior amplificación por PCR. Se evaluaron dos cebadores antisentido S2 y S2p, diseñados para hibridar con una secuencia específica de la subunidad A del virus D?N y generar la hebra de ADN complementaria.
Una vez obtenido el ADNc, se amplificó la secuencia con diferentes combinaciones de cebadores: La figura n° 2 muestra el esquema de amplificación de la secuencia inmunogénica desde ARN viral, la que fue amplificada con los siguientes cebadores: Sentido : Sl SIp Fragmento de 608pb (cebadores SIp y S2p)
Antisentido : S2 S2p Fragmento de 725pb (cebadores Sl y S2)
Combinación Tamaño de amplicón (pb)
Slp y S2p 608 Sl y S2 725
Los fragmentos obtenidos por PCR fueron visualizados en geles de agarosa y cuantificados por espectrofotometría. Posteriormente se procedió a purificar por precipitación con etanol los amplicones de 608 y 725 pb.
La figura n° 3 muestra la secuencia de la región genómica de 725 bp codificante del péptido viral inmunogénico de la proteína VP2 de D?NV generada para esta iniciativa, cuya secuenciación fue realizada en el Centro de Biotecnología, de la Facultad de Ciencias de la Universidad de Chile.
El tercer paso del proceso es la formación del constructo plasmidial e inserción al vector de expresión. El vector de expresión de mamíferos pcDNA4/HisMax TOPO permite la inserción del producto de amplificación con elevada eficiencia. El promotor viral utilizado es el citomegalovirus (CMV) y un potenciador de la traducción, el que fue empleado para obtener un alto rango de expresión. Con el fin de detectar y purificar el polipéptido generado a partir de los productos de PCR, este polipéptido es expresado junto al extremo N-terminal de Xpress® y a un residuo de histidina (Invitrogen Life Technologies®).
El constructo plasmidial comprende la secuencia codificadora para el polipéptido deseado, la cual está alojada en el plásmido pcDNA4/HisMaxTOPO. Este constructo plasmidial se denominó pcDNA-VP2. Para amplificar este vector se utilizó la cepa bacteriana Escherichia coli JM- 109, la cual fue transformada con cantidades conocidas del inserto de interés. Los clones bacterianos que poseen el plásmido fueron aislados, tras propagación de la cepa recombinante en cultivos líquidos aplicando presión selectiva (kanamicina y ampicilina). Se confirmó la inserción del gen y su correcta orientación en el plásmido tras comparar los patrones de corte generados por la enzima de restricción Pvu II, con el inserto y sin él, y al ampliar con cebadores específicos del plásmido pcDNA4/HisMaxTOPO la región de múltiple clonamiento. En la figura n° 4, se aprecia en detalle la región de multiclonamiento del vector pdDNA4/HisMaxTOPO.
La presencia de colonias de bacterias E. coli JM- 109 en medios de cultivo con presión de selección indica a las cepas receptoras de material genético. Para asegurar la mantención de las bacterias transformadas, estas se cultivaron en un reactor, en medio Luria Bertani, por 4 horas y luego se almacenaron en glicerol a -800C.
La purificación del plásmido se realizó con posterioridad al cultivo de la bacteria. Para análisis de laboratorio se utilizó el kit "Quantum prep. Plasmid Miniprep" de Biorad. Para escalamiento se utilizó el kit "QIAGEN Plasmad Mega", el cual permite la purificación de plásmido a partir de volúmenes superiores a 500 mi de cultivos bacterianos. Para determinar si las células de peces son capaces de incorporar el plásmido pcDNA-VP2 clonado y si este se encuentra en condiciones de expresar el inserto de la porción de la proteína viral VP2 del virus IPNV, se procedió a transfectar monocapas subcnfluentes CHSE- 214, luego de lo cual se realizaron extracciones de ADN plasmidial y ARN total con Trizol a diferentes tiempos de postranafección.
A partir del ADN plasmidial aislado se realizó PCR para obtener el producto amplificado definido de acuerdo al par de cebadores seleccionados. La presencia de amplicones de 725 pb en geles de agarosa al 1% indicó que la línea celular fue capaz de incorporar el plásmido con el inserto. Del ARN total extraído del cultivo celular se realizaron ensayos de RT-PCR para amplificar a partir de ARN mensajero presente en la muestra, la secuencia de VP2 de IPNV, como consta en figura n° 5, la cual muestra un gel de agarosa que comprueba la amplificación del inserto viral desde el plásmido pcDNA-VP2 a partir de cultivos celulares transfectados. La figura n° 5 muestra la amplificación del inserto desde el plásmido pcDNA-VP2 aislado desde cultivos celulares transfectados. Se extrajo el ADN plasmidial y el ARN mensajero desde las células CHSE-214 (carril 4 y 5). Se obtuvieron fragmentos de 725 pb (carriles 1, 2 y 3) amplificados por PCR a partir del vector plasmidial. 0 corresponde al marcador de peso molecular, en "A" se encuentra el punto de migración del ARN total de la muestra y en "B" el plásmido. Se puede constatar que tras digerir con enzimas de restricción se obtiene un fragmento nucleotídico de similar longitud al esperado. Asimismo, la obtención del plásmido evidencia la incorporación de este en la línea celular.
Selección de vehículo.
La presente invención divulga una nueva línea celular bacteriana que contiene un vector de expresión inducible consistente en el plásmido construido genéticamente. Esta línea corresponde a la cepa E. coli JM- 109, la cual fue transformada con el plásmido que se muestra en la figura n° 4, más el inserto mostrado en la figura n° 3, constituyendo la cepa recombinante Escherchia coli JM- 109 (pcDNA-VP2). El plásmido recombinante obtenido contiene la información necesaria para la síntesis del polipéptido de interés, es decir, parte de la subunidad 2 de la proteína de la cápside del virus IPNV. Tras la transformación, las bacterias incorporan el vector y son capaces de amplificar este componente genético. Al ser administrado este constructo plasmidial (pcDNA-VP2) por vía oral, en una formulación determinada, generará un respuesta inmune en el organismo blanco, específicamente en el pez. El plásmido también presenta un gen marcador de ampicilina. La cepa recombinante E. coli JM- 109 (pcDNA-VP2) fue depositada en Belgian Coordinated Collection of Microorganisms (BCCM), cuyo n° de acceso es LMBP 5333.
Un aspecto importante de esta invención es que el plásmido, luego de ser clonado es aislado y complejado a un liposoma catiónico (DOTAP), generando un complejo denominado "Lipoplex". El Lipoplex induce la síntesis de inmunogloblobulinas por si solo, aunque esta es una etapa de la invención.
El problema que resuelve la presente iniciativa, a través de la utilización de liposoma DOTAP, es conseguir un procedimiento de transformación no directo, donde las células dianas expresen el polipéptido codificado por el plásmido con una alta tasa de transfección.
En relación a la cuantificación del ADN contenido en el complejo "lipoplex", cabe señalar que las muestras de lipoplex, en relación ADN:DOTAP 1:4, fueron sometidas a centrifugación y posterior resuspensión en agua, para luego ser cargadas en geles de agarosa.
La estimación de la concentración de ADN fue realizada mediante análisis densitométrico. A la izquierda el marcador de peso molecular.
Carril 1: ADN plasmidial 42 ng en MEM.
Carril 2: Resuspención del extracto plasmidial posterior al tratamiento con MEM y centrifugación.
Carril 3: Lipoplex 42 ng de plásmido en MEM. Carril 4: resuspención en MEM posterior a la centrifugación de Lipoplex.
Carril 5: DOTAP a 170 ng en MEM.
Carril 6: Solo MEM.
El lipoplex por si sólo puede inducir una respuesta inmune, como vector de ADN que se encuentra encapsulado o complejado en un liposoma catiónico (DOTAP). La vacuna es introducida al alimento, es decir, la secuencia nucleotidica del virus IPN es portada por el plásmido y formulada con el alimento base de peces. El alimento es digerido en el tracto digestivo y la vacuna es liberada en el intestino del individuo. La composición farmacéutica (liposoma-ADN) genera la respuesta terapéutica requerida. Esta respuesta es consecuencia de la incorporación celular de la secuencia genética viral, la cual generará la expresión del péptido viral. La célula, al exhibir una secuencia polipeptídica desconocida por el huésped, inducirá la respuesta inmune, y por ende, la protección a la infección por el agente que contenga la secuencia en su superficie o cápside viral.
La figura n° 6 presenta los resultados de la evaluación de estabilidad estructural de la vacuna plasmidial. Se transfectaron cultivos celulares de CHSE-214 de acuerdo a las condiciones optimizadas experimentalmente y se procesaron a las 6,12, 24 horas, obteniéndose el plásmido y el ARN mensajero (a). A partir del ARN mensajero se amplificó por RT-PCR el inserto de 725pb de IPNV(b)
La administración de esta vacuna, particularmente a peces, en forma de alimento, supone facilitar el proceso de vacunación y así mismo la posibilidad de seleccionar la etapa óptima de vacunación dependiendo de la especie de peces en cultivo. Se puede determinar la etapa en que los peces se encuentren más susceptibles al patógeno, o bien, es posible inducir la respuesta y resistencia efectiva sobre la base del comportamiento y cinética de cada afección en una especie de cultivo determinada.
La invención además presenta beneficios ecológicos, ya que el aplicar una alternativa eficiente de erradicación de agentes patógenos introducidos a nuestro país se contribuye a mitigar el uso indiscriminado de antibióticos con demostrado efecto adverso sobre la microfauna ambiental.
Descripción del proceso para la fabricación del Alimento Base.
1) Formulación, dosificación y mezclado:
Los resultados experimentales fijaron como condición la incorporación del Lipoplex en una solución acuosa que debe encontrarse en un rango entre 0 y 50%, más específicamente 0 a 25% en peso del alimento. Se definió además la utilización de un atomizador como elemento de aspersión para alcanzar el recubrimiento homogéneo de las partículas del alimento. La cadena del proceso esta concebida para cualquier tipo de proceso productivo que genere alimentos para centros de producción animal. Sin embargo en la presente solicitud sólo se divulga el proceso relacionado con la fabricación de alimentos cuya forma de administración es de pellet, por lo que será genérico.
Las materias primas con las cuales se formula el alimento base son molidas en una primera etapa. La granulometría es determinada previamente en base a normativa medioambiental y estándares internacionales.
El proceso que da origen al producto terminado es iniciado por la formulación de la dieta, para lo cual se dosifican cada uno de los insumos que componen la dieta específica del animal, a través de operaciones batch de mezclado de los componentes en polvo y batch de aceitado. En el batch se programa la cantidad de pellets extruídos que deben dosificarse con los productos líquidos, e ingredientes especiales que pueden ser dosificados vía insumos líquidos, como vacunas específicas, dependiendo del organismo blanco.
En las etapas de dosificación y mezclado los ingredientes y aditivos son pesados y mezclados, logrando una adecuada proporcionalidad y homogenización de los componentes secos en polvo de la dieta.
2) Extrusión.
En esta etapa se acondicionan los ingredientes ya mezclados por medio de agua, aceite y/o aditivos vía aceite y presión. La presión es ejercida por un tornillo sin fin en el barril del extrusor. Existe una lámina o matriz perforada ubicada al final del barril, el cual permite dar forma cilindrica, más dos unidades de esferonización. Esta etapa permite dar forma final a los micro-pellets con bordes redondeados similar a la micro cápsula. La extrusión húmeda permite la gelatinización parcial de los carbohidratos, además de la texturización de las proteínas aportadas por los diferentes insumos de la dieta, para de esta manera obtener la consistencia y el aglutinamiento de los pellets base, con la forma y apariencia física adecuada requerida para cada tipo de producto. 3) Descripción del método de adición del Lipoplex en el alimento base.
Como ya se ha indicado, el alimento base es el vehiculo para adicionar el complejo Lipoplex, cuyo proceso de adición puede realizarse a través de dos mecanismos: 1.- Aspersión al vacío y 2.- Aspersión simple
L- Aspersión al vacío:
El proceso de incorporación de la vacuna al alimento se desarrolla en un proceso por batch con dos vías de alimentación, una seca (a) y una líquida (b).
a) La vía seca consiste en dosificar en un pesómetro una cantidad predefinida de alimento base en forma de pellets, los cuales son vertidos a un aceitador-mezclador con vacío. Al aplicar vacío se permite generar en el interior del aceitador una presión más baja que la presión atmosférica, de modo que al despresurizar se fuerza al aire para que salga tanto del espacio libre del aceitador como desde el interior de los pellets junto con parte de la oleína del aceite de menor punto de fusión ya presente en el alimento.
b) La vía líquida opera en paralelo y en dos etapas, en donde se dispone de dos depósitos manteniendo en uno de ellos el Lipoplex pre-dosificado de acuerdo al calibre y a la cantidad de alimento base que fue programado en el batch de aceitado. En una primera etapa se adiciona la vacuna mediante una fina aspersión bajo condiciones de vacío y mezclado para asegurar una adecuada impregnación de todos los pellets. A continuación se libera lentamente el vacío permitiendo el ingreso de aire para que se pueda retornar a la presión atmosférica, facilitando así que la vacuna que está inicialmente en la superficie con parte del aceite libre sea empujado por el aire hacia el interior de los pellets. En una segunda etapa, a presión atmosférica normal, el aceite de pescado que está pre-pesado en el segundo depósito es aplicado también finamente por aspersión bajo condiciones de mezclado arrastrando consigo cualquier remanente de vacuna que pudiese haber quedado en el piping. Este proceso llamado top coating permite recubrir toda la superficie de cada uno de los pellets minimizando la exposición directa de los principios activos en la superficie del alimento. Una vez incorporada la vacuna en el alimento y recubierto este último con aceite, el equipo aceitador-mezclador gira en 180° para posicionarse en la boca de entrada de la tolva de pre- ensacado. Una vez posicionado el aceitador-mezclador en el modo de descarga se abre la válvula de mariposa del equipo dejando caer por gravedad todo el batch preparado a la tolva que alimenta directamente al equipo de pesaje y envasado. Más detalles del proceso se pueden ver en el diagrama de flujo adjunto de las figuras n°7 y n°8
2.- Aspersión simple:
Esta segunda opción de la incorporación de la vacuna al alimento, al igual que la anterior, es desarrollada por dos vías de alimentación, una seca (a) y otra liquida (b).
a) La vía seca consiste en clasificar en un pesómetro una cantidad predefinida de alimento base en forma de pellets los cuales son incorporadas a un mezclador tipo paila rotativa de ángulo y velocidad variable. Este sistema permite, en base a la rotación, obtener un mezclado uniforme del alimento pelletizado. El número de revoluciones debe graduarse entre 5 y 50 rpm y el ángulo de posición con respecto a la horizontal entre 10° y 35° para lograr un ciclo de mezclado homogéneo. A continuación se procede a efectuar la vía liquida.
b) La vía líquida opera en conjunto con el mezclador y consiste solamente en un aspersor conectado a un dosificador, el cual es preprogramado de acuerdo al calibre y cantidad de alimento base. La impregnación que se produce es instantánea ya que el alimento esferonizado es altamente higroscópico, motivo por el cual absorberá eficientemente el liquido rociado por el aspersor
Una vez incorporada la vacuna al alimento base por medio de los aspersores, el mezclador se gira en 180° para ubicarse en la base de entrada de la tolva de pre-ensacado. Una válvula de descarga permitirá dejar caer por gravedad el total del bach preparado a la tolva que alimenta directamente el equipo de pesaje y envasado.
4) Secado y enfriado. Es un proceso físico que permite ajustar la cantidad de agua requerida por el producto final. Luego el producto es enfriado, evitando riesgos asociados a degradación microbiológica a temperaturas altas. El proceso termina con el envasado, cuyo objeto es empaquetar el producto de acuerdo a especificaciones técnicas.
5) Envasado.
El proceso termina con el envasado, cuyo objeto es empaquetar el producto de acuerdo a una serie de especificaciones.
Los alimentos base para diferentes organismos considerados para vehiculizar la vacuna oral se presentan en diversos tamaños y composición nutricional acorde a los requerimientos de ellos y a la etapa del ciclo productivo en que se encuentren al momento de hacer el tratamiento.
La presente solicitud resuelve varios problemas de la técnica, como son la vacunación masiva de individuos, en este caso de alevines o juveniles, obviando su manipulación, con el estrés que ello implica, así como beneficios operacionales relacionados con la fácil administración de la vacuna oral, alta estabilidad y sencillo almacenamiento.
Ejemplos de aplicación
A.- Evaluación de la capacidad de expresión "in vitro" del inserto del gen VP2
Las monocapas de células CHSE-214 fueron cultivadas a un 80% de subconfluencia. Las células fueron cultivadas en medio MEM, bicarbonato de sodio 2,2 g/L y suero bovino fetal (SBF) al 2,5%, a una temperatura de 200C por periodo de 4 a 14 días en placas de doce pocilios. Luego las células fueron lavadas con PBS y preparadas para la incorporación del constructo plamidial (pcDNA-VP2) complejado con el Iiposoma DOTAP.
Como se mencionó en la memoria descriptiva, se agregaron alícuotas de ADN y DOTAP en medio MEM. A continuación se mezclaron y fueron incubados por 30 minutos. La trasfección se realizó agregando cada mezcla a un volumen total de 0,5 mi de MEM sobre monocapas celulares. Una vez transcurrido los tiempos de incubación prefijados para la transfección (MEM más SFB 5%), se procedió a la extracción del plásmido.
La extracción plasmidial a partir de la línea celular CHSE-214 se realizó de acuerdo al protocolo descrito para Trizol (Invitrogen Life Technologies), el cual considera en términos generales el retiro del medio MEM con suero fetal bovino 5%, lavado de las células con PBS, adición de un volumen del reactivo, incubación por 5 minutos a temperatura ambiente, adición de cloroformo y posterior centrifugación a 12000 g por quince minutos. De las dos faces formadas, la fase acuosa superior contiene ARN y el plásmido, mientras que la fase inferior contiene ADN genómico.
El plásmido extraído se precipitó con alcohol isopropílico, centrifugándose y lavándose con etanol al 70%. Finalmente se evaporó el solvente y se resuspendió la muestra en agua estéril desionizada. La muestra de ADN plasmidial fue cargada en un gel de agarosa al 1%, teñido con bromuro de etidio (0,5 ug/ml) y visualizada en transiluminador a 260 nm. Los perfiles de migración en el gel revelaron la total integridad del plásmido. Los análisis densitométricos indicaron para los diferentes tiempos estudiados 11,65; 13 ,65 y 461ng de vacuna plasmidial respectivamente. Como prueba adicional se amplificó fragmento de 725 pb a partir del ARNm mediante RT-PCR, obteniéndose el producto de amplificación deseado (725 pb) en los tres tiempos de evaluación.
Ejemplo de proceso y formulación del alimento.
Se formuló alimento peletizado para salmones de cultivo en agua dulce, cuyos resultados se presentan a continuación.
El detalle de la composición de estos alimentos base así como su recomendación de uso son indicados en la Tabla N° 1. Las recomendaciones de uso se encuentran descritas en la Tabla
N° 2.
Tabla N° 1: Alimento base requerido para vehiculizar la vacuna oral.
Figure imgf000041_0001
Figure imgf000042_0001
Ingredientes seleccionados en la formulación :
Harina pescado, aceite pescado y/o aceite vegetal, sub-productos de molinería de trigo y maíz, concentrado de peptonas, gluten de trigo y maíz, harina de krill, premezclas de vitaminas y sales, minerales, concentrado proteico de soya, trigo, betaína y nucleótidos.
Tabla N° 2: Recomendaciones de uso del alimento.
Figure imgf000042_0002
Dosis Terapéutica.
La dosis terapéutica se establece en función de la tasa de alimentación (SFR) de los peces, que a su vez se expresa como % en peso de la biomasa a tratar. Las concentraciones de plásmido en el alimento se han determinado en base a un SFR preestablecido de modo que la vacuna se administre homogéneamente con una dosis única en el alimento según calibre. De esta forma se asegura la entrega de una dosis que cubre el requerimiento mínimo de plásmidos bajo condiciones de un bajo SFR. Si durante la administración del alimento con vacuna los peces presentan un mayor SFR al preestablecido, se ajusta la cantidad de alimento a entregar suministrando alimento con y sin vacuna. La dosis de vacuna y SFR para los distintos calibres de alimento se detalla en la Tabla N° 3. Tabla N° 3 : Dosis Terapéutica basada en Tasa de Alimentación Pre-Establecida.
Figure imgf000043_0001
La Tabla n° 4 contiene las especificaciones de tamaño para los micropellets esferonizados, y la Tabla n° 5 contiene similares especificaciones para pellets cilindricos.
Tabla N° 4: Especificaciones de tamaño para micropellets esferonizados.
Figure imgf000043_0002
Tabla N° 5: Especificaciones de tamaño para pellets cilindricos.
Figure imgf000043_0003
Ejemplo de Evaluación del potencial inmunogénetico de la Vacuna:
Se realizó una experiencia para determinar la efectividad de la vacuna formulada en el alimento base. La administración de la vacuna oral fue suficiente para generar la respuesta inmune en peces ensayados, cuya resistencia a la cepa patógena fue comprobada en bioensayos de desafío.
Se inmunizaron 5000 alevines Salmón salar de 5g a través de la ingesta de la vacuna oral. El esquema de dosificación incluyó la elaboración de un alimento maestro, el cual fue diluido para alcanzar los diferentes niveles deseados con alimento.
El ensayo in vivo se desarrolló con alevines separados por estanques de acuerdo a dosis y controles. Los alevines se alimentaron durante 7 días con el formulado vacunal. Luego se obtuvieron muestras para tiempos de 0,15, 45, 60 días post alimentación con vacuna. La vacuna Alphajet 1000 de Allpharma se seleccionó como control positivo administrándose por vía intraperitoneal a un grupo de alevines tras transcurrir 45 días de iniciada la experiencia.
La cinética de expresión del gen reportero fue estudiada a través de la obtención de muestras de sangre durante los días 0, 15 y 45 de iniciado el ensayo experimental. Los ensayos de ELISA permitieron determinar la estimación de la respuesta inmune, en que se determinó la respuesta inmune frente a la proteína heteróloga antigénica con tal de encontrar anticuerpo contra DPNV en muestra de plasma de peces inmunizados con la vacuna plasmidial.
El ensayo consideró la realización de un ELISA indirecto, detectando el nivel de anticuerpos totales mediante la lectura de absorbancia a 450 nm del producto generado por la reacción de
TMB (Tetrametilbenzidina) en presencia de H2O2 y peroxidasa. Se cubrieron 96 pocilios con diluciones seriadas de plasma (1, 1:2, 1:4, 1:16) incubado por 4h.a 15°C, luego de lavar con
PBS/Twenn 20 0.05%. Se bloqueo con PBS/Tween 20 0.05% más 5% de leche descremada por Ih a temperatura ambiente. Nuevamente se lavó y se procedió a incubar con diluciones de Ab anti Salmón (1:100, 1:200, 1:400, 1:800, 1:1600) en PBT/Tween 20 0.05% 2 horas a temperatura ambiente. Posteriormente se adicionó una dilución 1:3000 de anticuerpos de cabra anti IgG de ratón conjugado con peroxidasa en PBS/Tween 20 0.05% por una hora a temperatura ambiente.
Finalmente se adicionó una dilución 1:3000 de anticuerpo de cabra anti HgG de ratón conjugado con peroxidasa en PBS/Tween 20 0.05% dos horas a temperatura ambiente. Luego de lavar se agregó TMB esperando 20 minutos a temperatura ambiente para observar una coloración, la reacción se detuvo con H2SO4 IN y se cuantificó el producto generado por lectura de Absorbancia a 450 nm en un lector para placas de ELISA.
Para la detección de anticuerpos específicos se incubaron placas multipocillos con el virus IPN l*105 UFP/ml, para luego adicionar plasma en dilución preestablecida (1:16) y llevar a cabo cada uno de los pasos descritos para determinar en forma indirecta de esta clase de moléculas. Los resultados obtenidos para la dosis lmg/Kg PV indicaron diferencias estadísticamente significativas con un intervalo del 90% entre el control y los peces alimentados con la vacuna plasmidial a 45 días de administrada la formulación alimenticia que contenía la vacuna plasmidial.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN, CARACTERIZADO porque contempla las siguientes etapas:
a. Síntesis de cebadores para amplificar secuencias de ADN; b. Formación del constructo plasmidial pcDNA-VP2 en base al plásmido pcDNA4/HisMaxTOPO que contiene clonada la secuencia genética de la figura n° 2. c. Transfección de un microorganismo con el plásmido recombinante pcDNA-VP2. En este caso, transfección de la cepa bacteriana E.coli JM- 109, constituyendo la cepa recombinante E.coli JM- 109 (pcDNA-VP2) d. Cultivo en reactor de la cepa recombinante E coli JM- 109 (pcDNA-VP2); e. Purificación del constructo plasmidial pcDNA-VP2 f. Formación de complejo plásmido pcDNA-VP2 y liposoma DOTAP, denominado Lipoplex g. Asperción/mezclado e integración del complejo Lipoplex a la composición alimenticia denominada alimento base, constituyendo la vacuna oral o formulado vacunal h. Envasado del alimento que contiene a la vacuna ADN
2. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de amplificación por PCR con cebadores se amplifica una región genética codificante de una porción de la proteína VP2 de la capside del virus IPNV.
3. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque la etapa de amplificación con cebadores genera una secuencia nucleotídica de 725 pb, parte de la proteína VP2.
4. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de formación de constructo plasmidial se utilizó el plásmido pcDNA4/HisMaxTOPO, generando el plásmido recombinante resguardado bajo el tratado de Budapest con el nombre pcDNA-VP2 y cuyo número de depósito internacional asignado es LMBP 5333.
5. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de transfección se utiliza como receptora a la cepa bacteriana E coli JM- 109, generando la cepa recombinante resguardada bajo el tratado de Budapest con el nombre E. coli JM- 109 (pcDNA-VP2), cuyo numero de deposito internacional asignado es LMBP 5333.
6. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque la etapa de Aislamiento y purificación del plásmido recombinante pcDNA-VP2 se realiza a través de lisis alcalina y sucesivas etapas de filtración y ultrafiltración;
7. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de formación del complejo plásmido pcDNA-VP2-liposoma, denominado Lipoplex, se utiliza específicamente el liposoma DOTAP.
8. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e integración del complejo lipoplex, la incorporación de la vacuna al alimento se puede desarrollar en operación batch, de acuerdo a dos opciones de proceso, que incluyen, ambas, una vía de alimentación seca y una vía líquida.
9. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e integración del complejo lipoplex al alimento base, de acuerdo a la primera opción de adición de la vacuna, en la vía de alimentación seca, el alimento base, en forma de pellets, es vertido a un aceitador-mezclador bajo condiciones de vacío.
10. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e
2 integración del complejo lipoplex al alimento base, de acuerdo a la primera opción de adición de la vacuna, la vía líquida opera paralelamente a la vía seca a través de dos etapas. Estas se basan en dos depósitos, mantieniendo en uno de ellos el lipoplex pre-dosificado de acuerdo al calibre, y en el otro depósito la cantidad de alimento base que fue programada previamente en el batch de aceitado.
11. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e integración del complejo lipoplex al alimento base, de acuerdo a la primera opción de adición de la vacuna, la vía líquida opera en paralelo y en dos etapas. En la primera etapa se adiciona la vacuna mediante una fina aspersión bajo condiciones de vacío y en la segunda etapa, a presión atmosférica normal, se aspersa aceite de pescado pre-pesado en el segundo depósito.
12. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e integración del complejo lipoplex al alimento base, de acuerdo a la segunda opción de adición de la vacuna, la incorporación se puede desarrollar en operación batch a través de dos vías de alimentación, que incluyen una vía seca y una vía líquida.
13. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e integración del complejo lipoplex al alimento base, de acuerdo a la segunda opción de adición de la vacuna, en la vía seca se clasifica en un pesometro una cantidad pre-definida de alimento base, en forma de pellets, el cual es incorporado a un mezclador tipo paila rotativa de ángulo y velocidad variable.
14. Un proceso para producir alimento para animales que incluye una vacuna ADN según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque en la etapa de asperción/mezclado e integración del complejo lipoplex, de acuerdo a la segunda opción de adición, la vía líquida opera en paralelo con la operación de mezclado y consiste en un sistema de aspersión conectado a un dosificador pre-programado de acuerdo al calibre y cantidad de alimento base.
15. Un proceso para generar una composición farmacéutica según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque se genera una vacuna ADN incluida en la formulación alimenticia, en forma de pellet, cuyo efecto terapéutico es prevenir infecciones contra patógenos de origen viral en organismos acuáticos.
16. Un proceso para generar una composición farmacéutica según reivindicaciones 1 y 15, CARACTERIZADO porque se genera una vacuna ADN incluida en la formulación alimenticia, la cual es suministrada en forma oral, previniendo infecciones causadas específicamente por el virus IPN.
17. Un proceso para generar una composición farmacéutica según reivindicaciones 1, 15 y 16, CARACTERIZADO porque se genera una vacuna ADN incluida en la formulación alimenticia y cuya formulación es la siguiente:
a. Principio activo: Constructo plamsidial pcDNA-VP2; b. Liposoma DOTAP; c. Excipientes que presentan propiedades nutricionales para el individuo.
18. Una composición farmacéutica según reivindicaciones 1 a 17, CARACTERIZADA porque es una vacuna ADN de administración oral cuyos excipientes son proteínas, lípidos, carbohidratos, sales minerales y vitaminas.
19. Una composición farmacéutica según reivindicaciones 1 a 18, CARACTERIZADA porque es una vacuna ADN de administración oral cuyos excipientes presentan la siguiente composición promedio (g / Kg );
Proteína Cruda 530
Lípidos (analizado por hidrólisis acida) 200
Cenizas 100
Fibra Cruda 8 Extracto No Nitrogenado 77
20. Una composición farmacéutica según reivindicaciones 1 a 19, CARACTERIZADA porque es una vacuna ADN de administración oral y cuyos excipientes presentan los
4 V siguientes Ingredientes más utilizados en la formulación; Harina de pescado, aceite de pescado y/o aceite vegetal, sub-productos de trigo y maíz concentrado de peptonas, gluten de trigo y maíz, harina de krill, premezclas de vitaminas y sales minerales, concentrado proteico de soya, trigo, betaína y nucleótidos
21. Un vector de expresión según reivindicación 1, CARACTERIZADO porque porta la secuencia nucleotídica que es divulgada en la figura n° 3.
22. Un vector de expresión según reivindicacines 1 y 21, CARACTERIZADO porque porta la secuencia nucleotidica de 725 pb codificante para una secuencia de la proteína viral.
23. Un vector de expresión según reivindicaciones 1, 21 y 22, CARACTERIZADO porque porta la secuencia nucleotidica de 725 pb codificante de una secuencia de la proteína viral, en que dicha secuencia es específica de la subunidad mayor de la proteína de VP2 de la cápside del virus IPN.
24. Una célula transformada de E coli JM- 109 según reivindicación 1 CARACTERIZADA porque porta el constructo plásmidial pcDNA-VP2, divulgado en la figura n° 4, y cuyo número de deposito internacional es LMBP 5333.
25. Una célula hospedadora CARACTERIZADA porque pertenece a la línea celular CHSE- 214 y contiene un vector de expresión a partir del virus IPN, el cual forma parte del plásmido pcDNA4-VP2.
26. Una célula hospedadora según reivindicación 25, CARACTERIZADA porque la línea celular CHSE- 214 contiene un vector de expresión a partir del vius IPN y del plásmido pcDNA-VP2 y es capaz de sintetizar una secuencia polipeptídica relacionada con la proteína viral VP2.
27. Uso de bacterias acorde a reivindicación 1, CARACTERIZADO porque permite la expresión funcional del plásmido pcDNA-VP2.
28. Un polipéptido CARACTERIZADO porque su secuencia forma parte la proteína estructural VP2 y proporciona inmunidad contra el virus DPN.
29. Un polipéptido según reivindicación 28, CARACTERIZADO porque corresponde a la expresión de una secuencia divulgada en la figura n° 2.
30. Un vector de expresión pcDNA-VP2 según reivindicación 4, CARACTERIZADO porque es amplificado en una bacteria transformada de E coli JM- 109 y en la cual, la secuencia divulgada en la figura n° 3 es utilizada como vacuna en organismos acuáticos, específicamente en peces y, particularmente, en salmónidos.
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109125740A (zh) * 2017-06-28 2019-01-04 四川大学 一种新型的肿瘤疫苗及其用途
WO2021099667A1 (es) 2019-11-19 2021-05-27 Instituto Nacional De Investigación Y Tecnología Agraria Y Alimentaria (Inia) Plásmido codificante para el receptor del factor de activación de células b (baff-r) y usos del mismo en el tratamiento y prevención de enfermedades inflamatorias en peces
CN116693132A (zh) * 2023-07-26 2023-09-05 浙江省海洋水产养殖研究所 一种基于营养平衡的海水养殖循环水水处理方法

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101464310B1 (ko) * 2012-06-29 2014-11-21 녹십자수의약품(주) 바이러스성 출혈성 패혈증 불활화 백신
US10043371B2 (en) 2016-10-18 2018-08-07 International Business Machines Corporation Aquatic epidemic alert methods and systems
CN108041264A (zh) * 2017-11-30 2018-05-18 浦江县昂宝生物技术有限公司 含有鳖甲活性多肽的饲料添加剂制备方法

Citations (30)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0284195A (ja) 1988-05-31 1990-03-26 Mitsubishi Kasei Corp 天然型ヒトアポリポプロテインｅ様蛋白質の産生方法
WO1995027508A1 (en) 1994-04-12 1995-10-19 The Minister For Agriculture For The State Of New South Wales Composition for use in raising an immune response
GB2308367A (en) 1995-12-22 1997-06-25 Scottish Salmon Growers Ass Non-haemolytic protein, ex. Aeromonas sp., having cellular immunosuppressive (CIF) activity but lacking glycerophospholipid cholesteryl acyltransferase (GCAF)
WO1998007408A1 (en) 1996-08-19 1998-02-26 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Novel liposome complexes for increased systemic delivery
WO1998010748A1 (en) 1996-09-13 1998-03-19 The School Of Pharmacy Liposomes
US5780448A (en) * 1995-11-07 1998-07-14 Ottawa Civic Hospital Loeb Research DNA-based vaccination of fish
RU2130071C1 (ru) 1995-11-23 1999-05-10 Джапан Энерджи Корпорейшн Вектор секреции для получения гирудина hv1 (варианты), рекомбинантный штамм escherichia coli - продуцент гирудина hv1 и способ его получения
US5914260A (en) 1994-10-18 1999-06-22 Akzo Nobel, N.V. Fish pancreatic disease virus
RU2143492C1 (ru) 1998-07-23 1999-12-27 Навашин Петр Сергеевич Рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный белок - предшественник инсулина человека (варианты), штамм бактерий e.coli - продуцент гибридного белка - предшественника инсулина человека (варианты), способ получения инсулина человека
JP2000050869A (ja) 1998-08-11 2000-02-22 Ajinomoto Co Inc グルコノバクター属細菌由来プラスミド及びベクター
JP2000083665A (ja) 1998-09-10 2000-03-28 Lion Corp ムタンの製造方法
JP2000295994A (ja) 1999-02-09 2000-10-24 Ajinomoto Co Inc キシリトールの製造法
WO2000072878A1 (en) 1999-05-31 2000-12-07 Genomar As Vaccine against isa virus
CA2321437A1 (en) 1999-10-18 2001-04-18 Akzo Nobel N.V. Dna encoding structural protein-1 of infectious salmon anaemia virus and uses thereof
WO2001049712A2 (en) 2000-01-07 2001-07-12 Akzo Nobel N.V. Vaccine against isav (infectious salmon anaemia virus)
WO2001066569A1 (en) 2000-03-08 2001-09-13 The University Court Of The University Of Aberdeen Viral antigen and vaccine against isav (infectious salmon anaemia virus)
WO2002038770A1 (en) * 2000-11-11 2002-05-16 The University Court Of The University Of Aberdeen Yeast derived vaccine against ipnv
US20020168662A1 (en) 2001-02-26 2002-11-14 Lim Seah H. Sperm protein 17 for the diagnosis and treatment of cancer
CA2381708A1 (en) 2001-08-27 2003-02-27 Universidad Catolica De Valparaiso Immunogenic protein against piscirickettsia salmonis
WO2003035680A1 (en) 2001-10-19 2003-05-01 Akzo Nobel N.V. Infectious salmon anaemia virus vaccine
RU2208637C1 (ru) 2002-04-16 2003-07-20 Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Способ получения генно-инженерного инсулина человека
KR20030078807A (ko) 2002-03-30 2003-10-08 주식회사 알엔에이 양식 연어류 바이러스에 대한 복합 ｄｎａ 및 단백질백신의 개발과 백신 처리 방법의 최적화
US20030220284A1 (en) 2002-02-22 2003-11-27 Patricia Yotnda Delivery of adenoviral DNA in a liposomal formulation for treatment of disease
WO2003101482A2 (en) 2002-05-31 2003-12-11 Genesis Group Inc. Liposome vaccine formulations for fin-fish
CA2407301A1 (en) 2000-03-11 2004-03-18 Novartis Ag Hsp60 sequence from piscirickettsia salmonis
US20040146860A1 (en) 1999-08-07 2004-07-29 Steven Griffiths Nucleic acid and amino acid sequences of infectious salmon anaemia virus and their use as vaccines
ES2224836A1 (es) 2003-02-06 2005-03-01 Asac Pharmaceutical International Sa Procedimiento de transfeccion de celulas con vectores no virales e irradiacion.
US20050226895A1 (en) 2000-03-11 2005-10-13 Nathalie Simard Sequences from piscirickettsia salmonis
US20050249794A1 (en) 1999-08-27 2005-11-10 Semple Sean C Compositions for stimulating cytokine secretion and inducing an immune response
WO2006003100A1 (en) 2004-06-25 2006-01-12 Janssen Pharmaceutica N.V. Functional screening assay

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2003529550A (ja) * 1999-10-01 2003-10-07 リポクセン テクノロジーズ リミテッド リポソーム封入されたｄｎａ経口ワクチン
US7303881B2 (en) * 2004-04-30 2007-12-04 Pds Biotechnology Corporation Antigen delivery compositions and methods of use
ES2247942B1 (es) * 2004-08-27 2006-10-01 Instituto Nacional De Investigacion Y Tecnologia Agraria Y Alimentaria (Inia) Construccion genica, vector y vacuna adn para la vacunacion de animales acuaticos.

Patent Citations (37)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0284195A (ja) 1988-05-31 1990-03-26 Mitsubishi Kasei Corp 天然型ヒトアポリポプロテインｅ様蛋白質の産生方法
WO1995027508A1 (en) 1994-04-12 1995-10-19 The Minister For Agriculture For The State Of New South Wales Composition for use in raising an immune response
US5914260A (en) 1994-10-18 1999-06-22 Akzo Nobel, N.V. Fish pancreatic disease virus
US5939073A (en) 1994-10-18 1999-08-17 Akzo Nobel N.V. Fish pancreatic disease virus
US5780448A (en) * 1995-11-07 1998-07-14 Ottawa Civic Hospital Loeb Research DNA-based vaccination of fish
RU2130071C1 (ru) 1995-11-23 1999-05-10 Джапан Энерджи Корпорейшн Вектор секреции для получения гирудина hv1 (варианты), рекомбинантный штамм escherichia coli - продуцент гирудина hv1 и способ его получения
GB2308367A (en) 1995-12-22 1997-06-25 Scottish Salmon Growers Ass Non-haemolytic protein, ex. Aeromonas sp., having cellular immunosuppressive (CIF) activity but lacking glycerophospholipid cholesteryl acyltransferase (GCAF)
WO1998007408A1 (en) 1996-08-19 1998-02-26 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Novel liposome complexes for increased systemic delivery
WO1998010748A1 (en) 1996-09-13 1998-03-19 The School Of Pharmacy Liposomes
RU2143492C1 (ru) 1998-07-23 1999-12-27 Навашин Петр Сергеевич Рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный белок - предшественник инсулина человека (варианты), штамм бактерий e.coli - продуцент гибридного белка - предшественника инсулина человека (варианты), способ получения инсулина человека
JP2000050869A (ja) 1998-08-11 2000-02-22 Ajinomoto Co Inc グルコノバクター属細菌由来プラスミド及びベクター
JP2000083665A (ja) 1998-09-10 2000-03-28 Lion Corp ムタンの製造方法
JP2000295994A (ja) 1999-02-09 2000-10-24 Ajinomoto Co Inc キシリトールの製造法
WO2000072878A1 (en) 1999-05-31 2000-12-07 Genomar As Vaccine against isa virus
US20050261227A1 (en) 1999-08-07 2005-11-24 Steven Griffiths Nucleic acid and amino acid sequences of infectious salmon anaemia virus and their use as vaccines
US20050164176A1 (en) 1999-08-07 2005-07-28 Steven Griffiths Nucleic acid and amino acid sequences of infectious salmon anaemia virus and their use as vaccines
US6919083B1 (en) 1999-08-07 2005-07-19 Novartis Ag Nucleic acid and amino acid sequences of infectious salmon anaemia virus and their uses as vaccines
US20040146860A1 (en) 1999-08-07 2004-07-29 Steven Griffiths Nucleic acid and amino acid sequences of infectious salmon anaemia virus and their use as vaccines
US20050249794A1 (en) 1999-08-27 2005-11-10 Semple Sean C Compositions for stimulating cytokine secretion and inducing an immune response
CA2321437A1 (en) 1999-10-18 2001-04-18 Akzo Nobel N.V. Dna encoding structural protein-1 of infectious salmon anaemia virus and uses thereof
EP1094069A1 (en) 1999-10-18 2001-04-25 Akzo Nobel N.V. DNA encoding structural protein-1 of infectious salmon anaemia virus and uses thereof
WO2001049712A2 (en) 2000-01-07 2001-07-12 Akzo Nobel N.V. Vaccine against isav (infectious salmon anaemia virus)
WO2001066569A1 (en) 2000-03-08 2001-09-13 The University Court Of The University Of Aberdeen Viral antigen and vaccine against isav (infectious salmon anaemia virus)
CA2407301A1 (en) 2000-03-11 2004-03-18 Novartis Ag Hsp60 sequence from piscirickettsia salmonis
US20050226895A1 (en) 2000-03-11 2005-10-13 Nathalie Simard Sequences from piscirickettsia salmonis
WO2002038770A1 (en) * 2000-11-11 2002-05-16 The University Court Of The University Of Aberdeen Yeast derived vaccine against ipnv
US20020168662A1 (en) 2001-02-26 2002-11-14 Lim Seah H. Sperm protein 17 for the diagnosis and treatment of cancer
US20030147909A1 (en) 2001-08-27 2003-08-07 Universidad Catoolica De Valparaiso Highly immunogenic protein against the intracelluar pathogen agent Piscirickettsia salmonis, which affects salmon culture, amino acid and nucleic acid sequences of said protein and its application in the development of useful methods for the prevention and diagnosis of diseases caused by said pathogen
CA2381708A1 (en) 2001-08-27 2003-02-27 Universidad Catolica De Valparaiso Immunogenic protein against piscirickettsia salmonis
US20040253580A1 (en) 2001-10-19 2004-12-16 Stephane Villoing Infectious salmon anaemia virus vaccine
WO2003035680A1 (en) 2001-10-19 2003-05-01 Akzo Nobel N.V. Infectious salmon anaemia virus vaccine
US20030220284A1 (en) 2002-02-22 2003-11-27 Patricia Yotnda Delivery of adenoviral DNA in a liposomal formulation for treatment of disease
KR20030078807A (ko) 2002-03-30 2003-10-08 주식회사 알엔에이 양식 연어류 바이러스에 대한 복합 ｄｎａ 및 단백질백신의 개발과 백신 처리 방법의 최적화
RU2208637C1 (ru) 2002-04-16 2003-07-20 Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Способ получения генно-инженерного инсулина человека
WO2003101482A2 (en) 2002-05-31 2003-12-11 Genesis Group Inc. Liposome vaccine formulations for fin-fish
ES2224836A1 (es) 2003-02-06 2005-03-01 Asac Pharmaceutical International Sa Procedimiento de transfeccion de celulas con vectores no virales e irradiacion.
WO2006003100A1 (en) 2004-06-25 2006-01-12 Janssen Pharmaceutica N.V. Functional screening assay

Non-Patent Citations (52)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ANDERSON E.D. ET AL.: "Genetic immunization of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) against infectious hematopoietic necrosis virus", MOLEC. SEA. BIOL. BIOTECHNOL., vol. 5, no. 2, 1996, pages 114 - 122, XP002087052
ARANDA M., REYES M., RAMIREZ C.: "Transfeccion de la linea celular of salmon CHSE-214 usando un liposoma no comercial", ARCH. MED. VET., vol. 39, no. 2, 2007, pages 173 - 178, XP008133733, Retrieved from the Internet <URL:http://www.mingaonline.uach.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0301-732X2007000200013&Ing=es&nrm=iso> *
BOUDINOT P. ET AL.: "Viral Combined DNA immunization with the glycoprotein gene of hemorrhagic septicaemia virus and infectious hematopoietic necrosis virus induced double-specific protective immunity and nonspecific response in rainbow trout", VIROLOGY, vol. 249, no. 2, 1998, pages 297 - 306
BOUDINOT P. ET AL.: "Viral Combined DNA inmunization with the glycoprotein gene of hemorrhagic septicaemia virus and infectious hematopoietic necrosis virus induced double-specific protective immunity and nonspecific response in rainbow trout", VIROLOGY, vol. 249, no. 2, 1998, pages 297 - 306
CHILLER J.M.; HOFKINS H.O; WEISER R.S.: "Antibody response in rainbow trout (Psalm gairdnen). II. Studies on the kinetics of development of antibody producing cells and on complement and natural hemolysis", J. IMMUNOL., vol. 102, 1969, pages 1202 - 1207
CORBEIL S. ET AL.: "Nanogram quantities of to DNA vaccine protect rainbow trout fry against heterologous strains of infectious hematopoietic necrosis virus", VACCINE, vol. 18, no. 25, 2000, pages 2817 - 2824, XP004203571, DOI: doi:10.1016/S0264-410X(00)00078-5
CORBEIL S.; KURATH G.; LAPATRA S.E: "Fish DNA vaccine against infectious haematopoietc necrosis virus: efficacy of various routes of immunization", FISH SHELLFISH IMMUNOL., vol. 10, no. 8, 2000, pages 711 - 723
ELLIS A.E.: "Fish vaccination", 1988, ACADEMIC PRESS, article "Ontogeny of the immune system in teleost fish", pages: 20 - 31
FERNANDEZ-ALONSO M. ET AL., VACCINES DNA IN AQUICULTURE, 1998, Retrieved from the Internet <URL:aquatic.unizar.es/N °/art401/DNA_vac.htm>
FERNANDEZ-ALONSO M. ET AL.: "To model to study fish DNA immersion vaccination by using the green fluorescent protein", J. FISH DIS., vol. 22, no. 3, 1999, pages 237 - 241
FERNANDEZ-ALONSO M.; ROCHA A.; COLL J.M.: "Viral DNA vaccination by immersion and ultrasound to trout haemorrhagic septicaemia virus", VACCINE, vol. 19, no. 23-24, 2001, pages 3067 - 3075, XP004234177, DOI: doi:10.1016/S0264-410X(01)00046-9
GARVER K.A.; LAPATRA S.E; KURATH G.: "Efficacy of infectious haematopoietic nacrosis (IHN) virs DNA vaccine in Chinook (Oncorynchus tshawytscha) and sockeye (Oncorynchus nerka) salmon", DIS AQUAT. ORGANISMS, vol. 64, no. 1, 2005, pages 13 - 22
GRACE M.F; MANNING M.J.: "Histogenesis of the lymphoid organs in rainbow trout, psalm gairdneri", DEV. COMP. IMMUNOL., vol. 4, 1989, pages 255 - 264, XP025944595, DOI: doi:10.1016/S0145-305X(80)80029-2
HUISING M.O. ET AL.: "Increased efficacy of immersion vaccination in fish with hyperosmotic ptrtreatment", VACCINE, vol. 21, 2003, pages 4178 - 4193, XP004462817, DOI: doi:10.1016/S0264-410X(03)00497-3
JOHNSOM K.A.; FLYNN J.K; AMEND D.F.: "Duration of immunity in salmonids vaccinated by direct immersion with yersinia ruckeri and Vibrio anguillarum bacterins", JOURNAL OF FISH DISEASES, vol. 5, 1982, pages 207 - 212
JOHNSOM K.A.; FLYNN J.K; AMEND D.F.: "Onset of immunity in salmonid fry vaccinated by direct immersion with yersinia ruckeri and Vibrio anguillarum bacterins", JOURNAL OF FISH DISEASES, vol. 5, 1982, pages 197 - 205
K., THU B.J.: "Evensen rumor Or. Expression of luciferase in selected organs following delivery of naked and formulated DNA to rainbow trout (Oncorhynchus mykis) by differents routs of administration", FISH SHELLFISH IMMUNOLOGY, vol. 16, pages 251 - 264
K.; THU B.J.: "Evensen rumor Or. Expression of luciferase in selected organs following delivery of naked and formulated DNA to rainbow trout (Oncorhynchus mykis) by differents routs of administration", FISH SHELLFISH IMMUNOLOGY, vol. 16, pages 251 - 264
KANELLOS T. ET AL.: "The safety and longevity of DNA vaccines for fish", IMMUNOLOGY, vol. 96, no. 2, 1999, pages 307 - 313
KIM C.H. ET AL.: "The role of CpG dinucleotides in DNA vaccines", TRENDS MICROBIOL., vol. 6, 2000, pages 23 - 27
KURATH G. ET AL.: "Efficacy of to DNA vaccine against infectious haematopoietc necrosis virus", BULL. NATL. HEAD OF CATTLE. INST. AQUACULT, vol. 5, 2001, pages 27 - 33
KURATH G. ET AL.: "Efficacy of to DNA vaccine against infectious haematopoietc necrosis virus", BULL. NATL. HEAD OF CATTLE. INST. AQUACULT., vol. 5, 2001, pages 27 - 33
LABUS M.B. ET AL.: "Antigenic comparison of a truncated form of VP2 of infectious pancreatic necrosis (IPN) virus expressed in four different cell types", FISH & SHELLFISH IMMUNOLOGY, vol. 11, 2001, pages 203 - 216, XP002194213 *
LAPATRA S.E. ET AL.: "Humoral The dose-dependant effect on protection and response to DNA vaccine against infectious hematopoietic necrosis to (IHN) virus in subyearling rainbow trout", J. AQUAT. ANIM. HLTH, vol. 12, no. 3, 2000, pages 181 - 188
LAPATRA S.E. ET AL.: "Humoral The dose-dependant effect on protection and response to DNA vaccine against infectious hematopoietic necrosis to (IHN) virus in subyearling rainbow trout", J. AQUAT. ANIM. HLTH., vol. 12, no. 3, 2000, pages 181 - 188
LORENSEN N. ET AL.: "Protective immunity to VHS in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) following DNA vaccination", FISH SHELLFISH INMUNOL., vol. 8, 1998, pages 261 - 270
LORENZEN E. ET AL.: "DNA vaccines for ace to tool analyzing the protective immune response against rhabdoviruses in rainbow trout", FISH SHELLFISH IMMUNOL., vol. 12, 2002, pages 439 - 453
LORENZEN E. ET AL.: "DNA vaccines for ace to tool analyzing the protective immune response against rhabdoviruses in rainbow trout", FISH SHELLFISH INMUNOL., vol. 12, 2002, pages 439 - 453
LORENZEN E. ET AL.: "Time course study of in situ expression of antigens following DNA vaccination against VHS in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) fry", FISH SHELLFISH IMMUNOL., vol. 19, no. 1, 2005, pages 27 - 41, XP004751023, DOI: doi:10.1016/j.fsi.2004.10.009
LORENZEN E. ET AL.: "Viral DNA vaccination of rainbow trout against hemorrhagic septicaemia virus: to dose- response and Time-course study", J. AQUAT. ANIM. HLTH., vol. 12, no. 3, 2000, pages 167 - 180, XP008053496
LORENZEN E. ET AL.: "Viral DNA vaccination of rainbow trout against hemorrhagic septicemia virus: to dose- response and Time-course study", J. AQUAT. ANIM. HLTH., vol. 12, no. 3, 2000, pages 167 - 180, XP008053496
LORENZEN N. ET AL.: "Viral Genetic vaccination of rainbow trout against haemorrhagic septicaemia virus: small amounts of plasmid DNA protect against to heterologous serotype", VIRUS HEAD OF CATTLE., vol. 63, no. 1-2, 1999, pages 19 - 25
LORENZEN N.; LORENZEN E.; EINER-JENSEN K.: "Viral Immunity of haemorrhagic septicaemia (VHS) following DNA vaccination of rainbow trout AT an early like-stage", FISH SHELLFISH IMMUNOL., vol. 11, no. 7, 2001, pages 585 - 591
MCLAUCHLAN EP. ET AL.: "Viral DNA vaccination against haemorrhagic septicaemia (VHS) in rainbow trout: size, dose, route of injection and duration of protection - early protection you corelate with MX expression", FISH. SHELLFISH IMMUNOL., vol. 15, no. 1, 2003, pages 39 - 50
MIKALSEN A.B. ET AL.: "Protection of Atlantic salmon Psalm to salar against infectious pancreatic necrosis virus to after DNA vaccination", DIS. AQUAT. ORGANISMS, vol. 60, no. 1, 2004, pages 11 - 20
MIQUEL A. ET AL.: "Inmunoresponse of Coho salmon immunized with to gene expression library from Pisciricketsia salmonis", BIOL. HEAD OF CATTLE., vol. 36, no. 3-4, 2003, pages 313 - 323
PASNIK D.J; SMITH S.A.: "Inmunogenic and protective effects of to DNA vaccine for Mycobacterium marinum", FISH. VET. INMUNOL. INMUNOPATHOL., vol. 103, no. 3-4, 2005, pages 195 - 206
PERRIE ET AL.: "Oral Liposome- mediated DNA vaccination via the route", JOURNAL OF LIPOSOME RESEARCH, vol. 12, 2002, pages 185 - 197, XP055206801, DOI: doi:10.1081/LPR-120004792
PURCELL M.K. ET AL.: "Quantitative expression profiling of immune response genes in rainbow trout following infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) infection or DNA vaccination", FISH SHELLFISH IMMUNOL., vol. 17, no. 5, 2004, pages 447 - 462
PURCELL M.K. ET AL.: "Quantitative expression profiling of immune response genes in rainbow trout following infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) infection or DNA vaccination", FISH. SHELLFISH IMMUNOL., vol. 17, no. 5, 2004, pages 447 - 462
ROMOREN K. ET AL.: "Immersion delivery of plasmid Mrs I. To study of the potentials of to liposomal delivery system in rainbow trout (Oncorhynchus mykis) fry", J. CONTROLLED RELEAS., vol. 85, no. 1-3, 2002, pages 203 - 213
ROMOREN K. ET AL.: "Immersion delivery of plasmid Mrs II. To study of the potentials of to liposomal delivery system in rainbow trout (Oncorhynchus mykis) fry", J. CONTROLLED RELEASE, vol. 85, no. 1-3, 2002, pages 215 - 225
SOMMERSET I. ET AL.: "To DNA vaccine direct against to rainbow trout rhabodovirus you induce early protection against to nodavirus challenge in turbot", VACCINE, vol. 21, no. 32, 2003, pages 4661 - 4667
TAKANO T. ET AL.: "Development of to DNA vaccine against hirame rhabdovirus and analysis of the expression of immune-related genes to after vaccination", FISH. SHELLFISH IMMUNOL., vol. 17, no. 4, 2004, pages 367 - 374
TAKANO T. ET AL.: "Development of to DNA vaccine against hirame rhabdovirus and analysis of the expression of inmine-related genes to after vaccination", FISH. SHELLFISH IMMUNOL., vol. 17, no. 4, 2004, pages 367 - 374
TATNER M.F; MANNING M.J.: "Growth of the lymphoid organs in rainbow trout, psalm gairdneri, from one to 15 months of age", JOURNAL ZOOLOGY LONDON., vol. 199, 1983, pages 503 - 520
TATNER M.F; MANNING M.J.: "The ontogenic development of the endothelial reticulum system in rainbow trout, psalm gairdneri, Richardson", J. FISH. DIS., vol. 8, 1985, pages 35 - 41
TRAXLER G.S. ET AL.: "Naked DNA vaccination of Atlantic Salmon Psalm to salar against IHNV", DIS. AQUAT. ORGANISMS, vol. 38, no. 3, 1999, pages 183 - 190, XP008123310
TUCKER C.M. ET AL.: "Assesment of DNA vaccine potential for juvenile Japanese to flounder Paralichthys olivaceus, throut the introduction of to reporter genes by particle bombardment and histopathology", VACCINE, vol. 19, no. 7-8, 2000, pages 801 - 809
VESELY T. ET AL.: "Book of Abstract, 6th International Symposium on Fish Immunology", 26 May 2004, article "DNA vaccination of small carp (Cyprinus carpio) against SVCV: the protective effect depends on temperature", pages: 43
ZAPATA A.G.: "The fish immune system: organism, pathogen, and environment", 1996, ALBERTO VARAS, article "Cells and tissues of the immune system of fish", pages: 278
ZAPATA A.G.: "The fish immune system: organism, pathogen, and environment", 1996, article "Cells and tissues of the immune system of fish", pages: 278

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109125740A (zh) * 2017-06-28 2019-01-04 四川大学 一种新型的肿瘤疫苗及其用途
WO2021099667A1 (es) 2019-11-19 2021-05-27 Instituto Nacional De Investigación Y Tecnología Agraria Y Alimentaria (Inia) Plásmido codificante para el receptor del factor de activación de células b (baff-r) y usos del mismo en el tratamiento y prevención de enfermedades inflamatorias en peces
CN116693132A (zh) * 2023-07-26 2023-09-05 浙江省海洋水产养殖研究所 一种基于营养平衡的海水养殖循环水水处理方法

Also Published As

Publication number Publication date
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CA2687208A1 (en) 2008-07-03
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JP2010514412A (ja) 2010-05-06

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de las Heras et al. Immunogenic and protective effects of an oral DNA vaccine against infectious pancreatic necrosis virus in fish
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