WO2014199954A1 - イムノクロマト診断キット - Google Patents

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WO2014199954A1
WO2014199954A1 PCT/JP2014/065243 JP2014065243W WO2014199954A1 WO 2014199954 A1 WO2014199954 A1 WO 2014199954A1 JP 2014065243 W JP2014065243 W JP 2014065243W WO 2014199954 A1 WO2014199954 A1 WO 2014199954A1
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WO
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particles
diagnostic kit
cellulose
colored
sample pad
Prior art date
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PCT/JP2014/065243
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English (en)
French (fr)
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厚志 堀井
祥之 塩見
貴之 小川
武志 松瀬
杉野　真紀
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Asahi Kasei Corp
Original Assignee
Asahi Kasei Fibers Corp
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Publication date
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Priority to US14/896,519 priority patent/US9863944B2/en
Priority to JP2015522769A priority patent/JP6053927B2/ja
Priority to EP14810458.1A priority patent/EP3009840B1/en
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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54386—Analytical elements
    • G01N33/54387—Immunochromatographic test strips
    • G01N33/54388—Immunochromatographic test strips based on lateral flow

Definitions

  • the present invention relates to an immunochromatographic diagnostic kit including a sample pad for in vitro diagnostics, and more particularly to a lateral flow type immunochromatographic diagnostic kit.
  • a sandwich method As a measurement principle of the immunochromatography measurement method, there are a method called a sandwich method and a method called a competition method. As a measurement format, there are methods called a flow-through type and a lateral flow type.
  • Various substances can be detected as test substances in the specimen.
  • a typical example is measurement of detecting an antigen by a sandwich method, and the following operations are sequentially executed.
  • An antibody that specifically binds to an antigen as a test target substance is immobilized on a predetermined portion of a chromatographic medium such as a nitrocellulose membrane, and a test line (hereinafter referred to as “TL”) is placed at an arbitrary position on the chromatographic medium.
  • TL test line
  • the labeled substance is captured by the antibody immobilized on the chromatographic medium at the reaction site via the antigen, and diagnosis by the immunochromatographic diagnostic kit is performed by detecting the signal of the labeled substance.
  • diagnosis by the immunochromatographic diagnostic kit is performed by detecting the signal of the labeled substance.
  • a general diagnosis is a qualitative diagnosis in which only the presence or absence of an antigen is examined, but in recent years, a quantitative diagnosis can also be performed by visually or mechanically detecting the intensity of the signal.
  • Patent Document 1 reports that it is possible to speed up diagnosis time by using a specific cellulose-based nonwoven fabric for a sample pad that is a portion where a specimen sample containing a test target substance is dropped. Yes. Patent Document 1 also mentions the liquid absorption speed and developability, but there is no specific diagnosis time data, and no mention is made of a combination with specific coloring particles as in the present invention. Furthermore, no mention is made of the arrangement of the sample pad and the conjugate pad. Furthermore, the following Patent Document 2 reports that it is possible to speed up the diagnosis time by devising the structure of the diagnostic kit. For example, in the hCG assay, the determination is made in the shortest 2 minutes and 35 seconds. ing.
  • Patent Document 4 discloses a semi-quantitative test method using immunochromatography, and it is described that the antigen concentration and the intensity of the test result signal can be made proportional within a certain range of antigen concentration. Has been. However, quantification in immunochromatography, in addition to the fact that the antigen concentration is proportional to the strength of the test result signal in a range of antigen concentrations, the reproducibility of the results, that is, the same strength signal when measuring the same concentration of antigen. It is generally said that such reproducibility is still not sufficient. Furthermore, the following Patent Document 5 discloses an immunochromatographic diagnostic kit using fluorescent particles as colored particles. Cellulose particles are used as examples of the colored particles, and cellulose nonwoven fabric is used as an example of the sample pad. None of them are specifically mentioned. Furthermore, the arrangement of the sample pad and the conjugate pad is not devised. Of course, the effect of the combination of the sample pad and the coloring particles as in the present invention is not described.
  • JP 2012-108031 A Japanese Unexamined Patent Publication No. 7-55809 International Publication No.WO2011 / 062157 Specification International Publication No.WO2006 / 080438 Specification International Publication No.WO2013 / 151066 Specification
  • the problem to be solved by the present invention is to provide an immunochromatographic diagnostic kit capable of more rapid diagnosis, high analytical sensitivity, and excellent reproducibility of test results. .
  • the present inventors diligently studied to solve the above-mentioned problems, and as a result of repeated experiments, they used particles having a large color and a large particle diameter as color-developing particles, and a non-woven fabric made of specific regenerated cellulosic fibers was used as a sample pad. Using these in combination, it was surprisingly surprising that it was possible to speed up diagnosis and improve analytical sensitivity, and also to realize excellent reproducibility of test results, and completed the present invention. It is a thing.
  • the present invention is as follows.
  • the average particle diameter is 100 to 1000 nm
  • the color intensity is 1.0 to 10.0
  • 10 to 90% by weight of the particle weight is derived from cellulose
  • 90 to 10% by weight is derived from the coloring component
  • a non-woven fabric made of regenerated cellulosic fibers having a basis weight of 10 to 150 g / m 2 and a thickness of 0.07 to 1.00 mm.
  • An immunochromatographic diagnostic kit comprising a sample pad for in vitro diagnostics.
  • the immunochromatography diagnostic kit includes a predetermined coloring particle as a labeling substance, and uses a nonwoven fabric made of a predetermined regenerated cellulose fiber as a sample pad, thereby speeding up diagnosis and improving analytical sensitivity. Furthermore, the reproducibility of the inspection results is excellent.
  • the present inventors can unexpectedly speed up the diagnostic time, improve the analysis sensitivity, and improve the reproducibility of the test. It is an invention made based on this.
  • Patent Document 3 it has been found that colored particles having a large particle size and a high coloring intensity have high analytical sensitivity even when used alone.
  • the diagnosis time can be shortened to some extent by such high analysis sensitivity.
  • the immunochromatography diagnostic kit is composed of various porous structures such as a chromatographic medium, colored particles having a large particle diameter may interfere with the pores of the porous structure and hardly flow. If particles with a slow flow are generated, the diagnosis time may be delayed.
  • the diagnosis time could be further shortened by facilitating the flow of colored particles having a large particle diameter.
  • the unit per unit time supplied to the conjugate pad containing the colored particles It has been found that the diagnostic time can be shortened by increasing the flow rate to facilitate the flow of the colored particles contained in the conjugate pad.
  • a chemical such as a surfactant may be added to the sample pad to facilitate the flow of the colored particles.
  • the sample pad of the present invention instantly absorbs the dropped specimen, so that the conjugate pad or chromatographic medium is used.
  • a drug for facilitating the flow of the colored particles can always be provided at a constant concentration. For this reason, it becomes easy for the colored particles to flow without interfering with the pores of the porous structure.
  • the concentration of the drug for facilitating the flow of the colored particles may not be constant, and clogging of the particles may occur.
  • all these colored particles can contribute to the inspection.
  • the analysis sensitivity has been improved, the test reproducibility has been improved, and the arrangement of the sample pad and conjugate pad can be devised to make these effects more prominent. I also found what I can do.
  • the “colored particle” in the present invention refers to a particulate substance that is insoluble in water, a buffer solution or the like and carries a pigment or a dye.
  • the material constituting the particles is not particularly limited, but examples of such colored particles include metal colloid particles such as gold colloid, platinum colloid, silver colloid and selenium colloid, styrene latex such as polystyrene latex, and acrylic acid latex.
  • Colored latex particles colored, etc. colored silica particles colored silica composed of a three-dimensional structure composed of silicon atoms and oxygen atoms, colored cellulose particles colored with cellulose, colored particles formed by directly coloring colored components such as carbon black , Magnetic particles, and the like.
  • the color-developing particles may be fluorescent particles.
  • Colored cellulose particles are preferred because of easy adjustment of particle characteristics such as particle diameter adjustment, color density adjustment, color type adjustment, particle surface condition adjustment and the like. Since cellulose has a large amount of hydroxyl groups, it has high hydrophilicity and excellent dispersion stability, and can contain a large amount of coloring components.
  • the method for producing colored particles is not particularly limited.
  • a method of first shaping particles and supporting coloring components such as pigments and dyes, a method of molding particles and supporting smaller colored particles such as metal colloids and pigments, dyes, dyes, pigments and metal colloids when molding particles A coloring method such as a method of adding and molding together is also included.
  • the particles are first shaped and colored components such as pigments and dyes because of easy adjustment of particle characteristics such as particle diameter adjustment, color density adjustment, color type adjustment, particle surface condition adjustment, etc.
  • a method of supporting is preferable.
  • dye is preferable from the ease of carrying
  • the “type of dye” is not particularly limited. Dyes such as reactive dyes, direct dyes, metal-containing dyes, acid dyes, basic dyes, disperse dyes, sulfur dyes, vegetable dyes, naphthol dyes, and fluorescent dyes can be used. Of course, any dye may be combined.
  • a reactive dye that is covalently bonded to a hydroxyl group of cellulose is particularly preferable from the viewpoint of retaining a large amount of dye and stability.
  • the “cellulosic particle molding method” is not particularly limited. Examples include a method of physically refining natural cellulose with a ball mill or a high-pressure homogenizer, a method of chemically treating and refining with natural acid or alkali, a method of dissolving cellulose once in its good solvent and forming into particles. It is done. Alternatively, cellulose particles may be prepared by dissolving derivatized cellulose, forming the particles into particles, and returning the derivatized substituents to hydroxyl groups. Furthermore, these molding methods may be combined.
  • the “type of cellulose” is not particularly limited, and regenerated cellulose, purified cellulose, natural cellulose, cellulose derivatized with the above, cellulose in which a derivatized substituent is returned to a hydroxyl group, and the like can be used. .
  • regenerated cellulose purified cellulose, natural cellulose, cellulose derivatized with the above, cellulose in which a derivatized substituent is returned to a hydroxyl group, and the like.
  • a method in which it is once dissolved in a good solvent and formed into particles is preferred, and the type of cellulose is preferably regenerated cellulose.
  • the “type of good solvent for dissolving cellulose” is not particularly limited, and copper ammonia solution, viscose solution, N-methylmorpholine, various types Various good solvents that can dissolve cellulose, such as an ionic liquid, can be used. Among these, a copper ammonia solution is preferable from the viewpoint of adjusting the particle diameter and adjusting the particle shape. Further, the method for forming the dissolved cellulose into particles is not particularly limited. In the present invention, a method by phase separation was selected.
  • the “average particle diameter” of the colored particles refers to the volume average median diameter measured by the dynamic light scattering method, and the volume average median diameter is in the range of 100 to 1000 nm.
  • the average particle diameter is in this range, the surface area of the particles is large, and therefore, when used as an immunochromatography diagnostic kit, TL becomes darker, that is, analysis sensitivity becomes higher. If the average particle size is too small, the surface area may be reduced, resulting in a decrease in analytical sensitivity or particle aggregation. From the above points, the particle diameter is preferably 200 nm or more, and more preferably 300 nm or more.
  • the particle diameter is preferably 800 nm or less, more preferably 600 nm or less.
  • the average particle diameter described here is an average value to the last, and a part of particle diameter distribution may remove
  • volume average is used for particle size evaluation.
  • too large particles in an immunochromatography diagnostic kit are clogged with chromatographic media such as nitrocellulose. This is because the effect is reflected even if it exists in
  • chromatographic media such as nitrocellulose.
  • the volume average there are various methods for expressing the particle diameter, such as number average and area average. Of course, if the representation is different, the value of the particle diameter also changes. In the present invention, the volume average is adopted.
  • Color intensity is a value that defines the color intensity of the particles.
  • the method of measuring the value is to prepare a pure water dispersion of colored particles of known concentration, measure the visible absorbance using an integrating sphere in the range of 400 to 800 nm with an optical path length of 10 mm, and obtain the peak of the obtained absorbance curve.
  • the reason for performing visible absorbance measurement using an integrating sphere for measuring the color density of particles is that the color density of particles dispersed in a liquid can be measured most accurately.
  • a method of measuring the color density of particles there is a method of measuring a solid obtained by drying particles with a colorimeter or the like, but such a method cannot accurately measure the color density of particles.
  • metal colloids and the like have different color tones and maximum wavelengths depending on the particle diameter, and the dry aggregated state cannot accurately reflect the color density of the state dispersed in the liquid. Further, even when the particles are dispersed in the liquid at the same particle concentration, the color density becomes light when aggregation occurs.
  • the reason for using an integrating sphere when performing visible absorbance measurement is to remove the influence of scattering of the particles themselves.
  • Ordinary visible absorbance measurement is a method of measuring transmitted light, which reflects not only the absorption by colored components but also the effect of scattering of the particles themselves on the incident light.
  • gold colloids generally used in immunochromatography may have a particle diameter of 40 nm to 60 nm, and sometimes 100 nm, but in any case, the particle diameter is small, so there is almost no influence of scattered light.
  • polystyrene latex particles have a large particle size and are clearly affected by scattered light.
  • visible absorbance measurement using an integrating sphere is employed in order to more accurately reflect the color density of the particles themselves when the particle diameters and particle materials are different.
  • the “color intensity” is 1.0 to 10.0.
  • the larger this value the darker the color of the particles, and the higher the sensitivity of analysis when used as an immunochromatographic diagnostic kit.
  • the larger the value the better.
  • Use a darker dye For example, it is possible to adopt a method that makes it easier for the dye to enter.
  • the upper limit is preferably 7.0 or less, and more preferably 5.0 or less.
  • the lower the value the lower the analytical sensitivity when used as an immunochromatography diagnostic kit, so the lower limit is preferably 1.5 or more, and more preferably 2.0 or more.
  • the ratio of the coloring components of the coloring particles refers to the ratio of the coloring components in the total weight of the coloring particles. For example, when 1.0 g of colored particles is composed of 0.2 g of cellulose and 0.8 g of a coloring component, the ratio of the coloring component is 80% by weight. The ratio of the coloring component of the color developing particles is preferably 10 to 90% by weight. When it is within this range, the analytical sensitivity is high when used as an immunochromatography diagnostic kit. In addition, when particles obtained by dyeing cellulose with a dye are used as the colored particles, it is possible to impart appropriate hydrophobicity to the cellulose by holding the dye in this range in the cellulose, and it is specific to an object to be detected such as an antibody.
  • the substance to be bound can be retained by adsorption.
  • the ratio of the coloring component is small, sufficient color intensity cannot be obtained, and the analytical sensitivity becomes low when used as an immunochromatographic diagnostic kit.
  • the lower limit is preferably 20% by weight or more, and more preferably 30% by weight or more.
  • the ratio of the coloring component exceeds 90% by weight, it is preferably 85% by weight or less, more preferably 80% by weight or less from the economical viewpoint.
  • the hydrophobicity is too strong, aggregation or non-specific reaction may occur.
  • the “calculation method of the ratio of the coloring component of the colored particles” can be calculated from the weight change before and after the coloring.
  • an operation of separating the colored component from the particle can be performed, and the colored component or particle can be isolated and calculated.
  • cellulose particles are dyed with a reactive dye
  • it can be calculated by cutting the covalent bond between cellulose and dye with acid or alkali, and collecting the cellulose particles by centrifugation. It can also be calculated by decomposing only cellulose using cellulase.
  • the proportion of components derived from cellulose in the color developing particles is preferably 90 to 10% by weight. Within this range, the dispersion stability of the cellulose particles can be maintained.
  • the lower limit of the cellulose-derived component of the colored particles is more preferably 15% by weight or more, particularly preferably 20% by weight or more, and the upper limit is more preferably 80% by weight or less. Particularly preferably, it is 70% by weight or less.
  • Particle refers to a structure having a long diameter (L) and a short diameter (D) that are close in length and close to a sphere. Specifically, it refers to a structure having an L / D ratio represented by L ⁇ D of 1.0 to 3.0. When the L / D ratio is within this range, clogging is less likely to occur when used as an immunochromatography diagnostic kit, more preferably 1.0 to 2.0, still more preferably 1.0 to 1.5, and most preferably 1. 0.0 to 1.3. As a measuring method, an electron microscope image of the particles is taken, the major axis (L) and minor axis (D) of 100 particles are measured, and the average value of the 100 particles is calculated.
  • Regenerated cellulosic fiber refers to a fiber mainly composed of regenerated cellulose.
  • regenerated cellulose include cupra, lyocell, and rayon.
  • Regenerated cellulosic fibers are preferable as a material constituting a sample pad, and more preferably cupra and lyocell, because they are highly hydrophilic and excellent in liquid absorbency due to the influence of orientation and surface molecular state when forming fibers. Especially preferred is cupra.
  • These specific regenerated cellulose fibers may be composed of 100%, but they may be mixed and used.
  • nonwoven fabric made of regenerated cellulose fiber refers to a non-woven fabric made of the regenerated cellulose fiber.
  • a non-woven fabric By using a non-woven fabric, the structure can be easily formed, and it is excellent in handling such as being rollable.
  • the form of the nonwoven fabric either a short fiber nonwoven fabric or a long fiber nonwoven fabric may be used, but a continuous long fiber nonwoven fabric is more preferable because it is excellent in water absorbency and also has fewer dropped fibers.
  • synthetic fibers may be mixed within a range that does not impair the hydrophilicity. In that case, the content of the regenerated cellulosic fibers is 50% by weight or more in area ratio.
  • the synthetic fiber is not particularly limited as long as the desired physical properties of the sample pad are satisfied.
  • polyolefin-based, polyester-based, polyamide-based, and acrylic-based synthetic fibers may be used, and one or more of these may be used. Also good. These may be subjected to binder use or entanglement treatment as required.
  • the basis weight of the nonwoven fabric made of regenerated cellulosic fibers is 10 to 150 g / m 2 .
  • the basis weight can be changed as appropriate depending on the size of the sample pad, the amount of sample fluid, the type of test, etc. However, if the basis weight is within this range, the balance between the absorption of the sample fluid and the deployment to the conjugate pad will be good, After rapid absorption, the analyte can be quickly delivered to the conjugate pad.
  • a nonwoven fabric with a fabric weight that is too low has a small thickness or a high porosity, resulting in poor movement of the sample liquid inside the sample pad and spreadability to the conjugate pad.
  • the lower limit of the basis weight is preferably 15 g / m 2 or more, more preferably 20 g / m 2 or more, and particularly preferably 25 g / m 2 or more.
  • the nonwoven fabric having a too high basis weight has a large thickness or a low porosity, so that the specimen liquid cannot permeate the sample pad well and the liquid slides on the sample pad.
  • the upper limit of the basis weight is preferably 120 g / m 2 or less, more preferably 100 g / m 2 or less.
  • the thickness of the nonwoven fabric made of regenerated cellulose fibers is 0.07 to 1.00 mm.
  • the thickness can be changed as appropriate depending on the size of the sample pad, the amount of sample liquid, the type of test, etc., but if the thickness is within this range, the balance between the absorption of the sample liquid and the deployment to the conjugate pad will be good, and the sample will be removed. After rapid absorption, the analyte can be quickly delivered to the conjugate pad. If the thickness is too thin, the sample liquid cannot be received sufficiently. Moreover, handling becomes difficult in the manufacturing process of a diagnostic kit. From this viewpoint, the lower limit of the thickness is preferably 0.10 mm, and more preferably 0.20 mm. On the other hand, if the thickness is too thick, the sample liquid is retained too much, which is not preferable. From this viewpoint, the upper limit of the thickness is preferably 0.80 mm or less, and more preferably 0.70 mm or less.
  • the “bulk density of the nonwoven fabric composed of regenerated cellulose fibers” is preferably 0.06 to 1.00 g / cm 3 .
  • the bulk density can be changed as appropriate depending on the size of the sample pad, the amount of specimen liquid, the type of test, etc. However, if the bulk density is within this range, the balance between the specimen liquid absorption and the deployment to the conjugate pad will be good. After rapid absorption of the specimen, the specimen can be quickly supplied to the conjugate pad. If the bulk density is too low, the voids in the fiber will be high, so that the movement of the sample liquid inside the sample pad and the developability to the conjugate pad will deteriorate.
  • the lower limit of the bulk density is preferably 0.07 g / cm 3 , more preferably 0.10 g / cm 3 .
  • the upper limit of the bulk density is preferably 0.70 g / cm 3 or less, more preferably 0.50 g / cm 3 or less.
  • the “number of fallen fibers” is calculated by putting a 25 cm ⁇ 25 cm sample in 300 ml of pure water, allowing to stand for 2 minutes, and filtering the remaining liquid from the sample with black filter paper (ADVANTECNO131). This refers to the number of shed fibers having a size of 100 ⁇ m or more per unit square meter counted and measured with a video microscope after being dried for 12 hours at 20 ° C. and 65% RH.
  • the number of shed fibers is preferably less than 5000 / m 2 , more preferably less than 4000 / m 2 , and still more preferably less than 3000 / m 2 .
  • the number of shed fibers exceeds 10,000 / m 2 , the fibers easily fall off, and depending on the type of the test solution, the shed fibers may collect at the interface between the sample pad and the conjugate pad, impairing the spreadability. In addition, the yield is deteriorated by contaminating the periphery of the production line during production, which is not preferable. Since the number of fallen fibers is preferably smaller, the lower limit is 1 / m 2 or more.
  • the “sample pad” in the present invention is a portion that first receives a sample to be measured in immunochromatography.
  • sample pads include cellulose filter paper, paper, glass fiber, glass fiber, acrylic fiber, nylon fiber, various fabrics, etc.
  • regenerated cellulose fiber as described above.
  • the nonwoven fabric which consists of is used. Nonwoven fabric made of regenerated cellulose fibers is excellent in liquid absorbency, so that the specimen can be quickly absorbed and transferred to the conjugate pad.
  • the flow rate per unit time supplied to the conjugate pad is increased, and the colored particles contained in the conjugate pad are more early. It becomes easy to be released and the diagnosis time can be shortened.
  • medical agent for making a color particle easy to flow can always be supplied with a fixed density
  • a nonwoven fabric made of regenerated cellulosic fibers as long as it does not adversely affect the above physical properties and does not affect the antigen-antibody reaction or antibody stability.
  • Various chemicals and powders may be contained in the resin, or a part of cellulose may be derivatized.
  • the agent to be impregnated include surfactants, proteins, antibodies, resins, water-soluble polymers, antibacterial agents, preservatives, antioxidants, and the like.
  • Examples of the derivatization of cellulose include carboxymethylation, carboxyethylation, primary amination, secondary amination, tertiary amination, quaternary amination, and oxidation.
  • the sample pad may be pretreated as necessary.
  • a treatment such as preliminarily containing a buffer solution, a surfactant, a protein, a reagent for trapping impurities in the specimen sample, an antiseptic, an antibacterial agent, an antioxidant, a hygroscopic agent, and the like may be performed.
  • the shape of the sample pad is not particularly limited.
  • the sample pad size (length through which the liquid flows) is about 10 to 25 mm in consideration of the connection from the sample liquid and the diagnosis time. It is preferable that the width (perpendicular to the liquid flow) is larger than the width of the conjugate pad. If the width is too narrow, there is a possibility that the test solution may wrap around from the end of the sample pad.
  • the “immunochromatography diagnostic kit” in the present invention is a method for simply detecting the presence or absence of a test target substance in various specimens.
  • Types of the diagnostic kit include a lateral flow type and a flow through type. Although it will not specifically limit if color developing particles and a sample pad are used, Preferably it is a lateral flow type. Further, among the lateral flow types, there are a dipstick type and a cassette type, but these types are not particularly limited.
  • the configuration of the diagnostic kit is not particularly limited, and any configuration may be used as long as it is generally used in the field.
  • the types of members other than the conjugate pad (b) and the sample pad (a) containing antibody-sensitized coloring particles are not particularly limited as long as they are used in this field.
  • the “conjugate pad” is a pad containing a conjugate containing colored particles, and contains, for example, colored particles bound to an antibody that binds to a substance to be examined. Although it does not specifically limit as a raw material of a conjugate pad, A general glass fiber or resin fiber etc. can be used.
  • resin fibers polyolefin fibers such as polyethylene, polyester fibers, polyamide resins, acrylic resins, and composite fibers of these resin fibers can be preferably used, but are not limited thereto. Absent.
  • resin fiber is preferable.
  • resin fibers a material that is hydrophobic to some extent is more preferable from the viewpoint of ease of release of the colored particles. If the hydrophobicity is too high, it may be used after pretreatment with a surfactant or the like. More preferably, a polyethylene fiber conjugate pad is pretreated with a surfactant.
  • the sample pad coverage is preferably 50 to 100% with respect to the conjugate pad.
  • the coverage indicates how much the sample pad covers the upper area of the conjugate pad. For example, 0% when the sample pad does not overlap the upper part of the conjugate pad, and 100% when the sample pad is completely covered.
  • this coverage is often 50% or less.
  • the overlap of the sample pad is 5 mm with respect to the length of the conjugate pad of 15 mm, and the coverage is 33%.
  • the coverage is 0%.
  • the specimen supplied to the sample pad is transferred to the conjugate pad and further transferred to the chromatographic medium.
  • the coverage is low, the specimen is transferred to the chromatographic medium without being sufficiently supplied to the downstream side of the conjugate pad in the portion not in contact with the sample pad, and as a result, the particle size as in the present invention is reduced. For large colored particles, release from the conjugate pad may be delayed.
  • the lower limit of the preferred coverage is 60%, more preferably 70%, more preferably 80%, and particularly preferably 90%.
  • the downstream side of the sample pad may float from the conjugate pad. This is because the sample pad adhered to the mount cannot follow the shape of the conjugate pad and jumps up.
  • a method of suppressing there are a method of placing an immunochromatography kit in a casing and suppressing it by a part of the casing, and a method of using a transparent sheet having an adhesive surface. The optimum degree of suppression depends on the structure of the immunochromatography diagnostic kit and cannot be generally stated.
  • the most downstream portion of the sample pad is set to -5 to the total thickness of each immunochromatography diagnostic kit member. It is preferable to adjust to +2 mm.
  • the position of the most downstream portion of the sample pad changes depending on the coverage of the sample pad. For example, the most downstream portion (h) when the coverage is 100% is shown in FIG. 2, and the most downstream portion (i) when the coverage is 50% is shown in FIG. 2 and 3 are merely examples and do not limit the present invention in any way.
  • the total thickness of each immunochromatography diagnostic kit member is, for example, that the sample pad, conjugate pad, chromatographic medium, and mount overlap each other at the most downstream portion of the sample pad in FIG.
  • the total thickness is preferably +1 mm or less, more preferably the total thickness + 0 mm or less.
  • the total thickness of the members is preferably -3 mm or more, more preferably -1 mm or more.
  • FIG. 4 illustrates a case where the thickness is adjusted using the housing (j).
  • the casing is composed of an upper part and a lower part, and the thickness can be adjusted by adjusting the clearance.
  • FIG. 4 is merely an example and does not limit the present invention.
  • the “diagnostic method” using the immunochromatographic diagnostic kit in the present invention refers to various diagnoses performed using the immunochromatographic diagnostic kit.
  • the diagnostic object is not particularly limited, and can be used for various diagnostic tests such as human, animal, food, plant, and other environmental tests.
  • a sample is collected from the test subject, and if necessary, it is pre-treated, such as extraction and filtration, dripped onto the sample pad, waits for a predetermined time from the start of the test, The diagnosis result is judged from the color development depending on the presence or absence.
  • the present invention is not limited to this procedure, and the same procedure and principle can also be used for diagnosis.
  • extra foreign matters and contaminants can be removed by filtering the specimen sample in advance, so that further rapid diagnosis and improved diagnostic accuracy can be expected.
  • a specimen obtained by subjecting the specimen to dilution treatment with a specimen treatment liquid that has been adjusted to a predetermined composition may be dripped.
  • the purpose of using the sample treatment solution is to make it easier to react with the antigen in the sample, to decompose the impurities in the sample, to trap the impurities in the sample, and to suppress non-specific reactions Addition of a component that facilitates the flow of the colored particles, a component that improves the visibility when the colored particles are appropriately aggregated and captured on the test line, and the like.
  • a buffer solution As an example, a buffer solution, a surfactant, a protein, an inorganic salt, a water-soluble polymer, a reducing agent, a chelating agent, and the like may be added.
  • nonionic surfactants various water-soluble amino acids, proteins, inorganic salts, water-soluble polymers, and the like. Specific component types and amounts added vary depending on the test target and the type of antibody used. Examples of nonionic surfactants include poly (oxyethylene) alkyl ether, poly (oxyethylene) octylphenyl ether, Examples include poly (oxyethylene) nonylphenyl ether.
  • water-soluble amino acids examples include asparagine, aspartic acid, alanine, arginine, isoleucine, glycine, glutamine, glutamic acid, cysteine, serine, tyrosine, tryptophan, threonine, valine, histidine, proline, phenylalanine, methionine, lysine, leucine, etc.
  • proteins include casein, skim milk, casein degradation products, bovine serum albumin, fish gelatin, and the like.
  • the inorganic salt compounds that generate alkali metal ions such as sodium, potassium, and lithium are preferable.
  • water-soluble polymer polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, polyvinyl pyrrolidone, carboxymethyl cellulose, and other cellulose derivatives are preferable. These components are not only added to the sample treatment solution, but may be added in advance to a sample pad, a conjugate pad, a chromatographic medium (nitrocellulose membrane), or the like.
  • the target that can be diagnosed with the immunochromatography diagnostic kit of the present invention is not particularly limited, but specific examples include the following: cancer marker, hormone, infection, autoimmunity, plasma protein, TDM, coagulation / line Soluble, amino acid, peptide, protein, gene, cell, and the like.
  • CEA AFP, ferritilin, ⁇ 2 micro, PSA, CA19-9, CA125, BFP, elastase 1, pepsinogen 1 and 2, fecal occult blood, urinary ⁇ 2 micro, PIVKA-2, urinary BTA, insulin E3, HCG, HPL, LH, HCV antigen, HBs antigen, HBs antibody, HBc antibody, HBe antigen, HBe antibody, HTLV-1 antibody, HIV antibody, HIV antigen, HIV virus gene, toxoplasma antibody, syphilis, ASO, A Type influenza antigen, type A influenza antibody, type B influenza antigen, type B influenza antibody, rota antigen, adenovirus antigen, rota adenovirus antigen, group A streptococcus, group B streptococcus, candida antigen, CD fungus, cryptolocus antigen Vibrio cholerae, Neisseria meningitidis antigen, E.
  • the colored particles need to carry a substance that specifically binds to an object such as an antibody, but the carrying method is not particularly limited.
  • a substance that specifically binds to an object such as an antibody
  • the carrying method is not particularly limited.
  • support by physical adsorption, support by covalent bond, support by a combination thereof, and the like can be mentioned.
  • the type and amount of the substance to be supported are not particularly limited.
  • Antibodies are the most common and preferred as the type of substance to be supported.
  • supporting by physical adsorption is preferable from the viewpoint of ease
  • supporting by covalent bond is preferable from the viewpoint of stability and performance.
  • the chromatographic medium used in the immunochromatographic diagnostic kit is not particularly limited, and various commonly used chromatographic media can be used. More specifically, a nitrocellulose membrane can be mentioned. Commercially available nitrocellulose membranes are classified according to the time required to move a certain distance called a flow rate, and the faster the flow rate, the larger the pore size. In the present invention, a membrane having a large pore diameter is preferred because the specimen moves quickly and the colored particles are not easily clogged.
  • a specific flow rate is preferably a film faster than 120 sec / 4 cm, more preferably a film faster than 100 sec / 4 cm, and still more preferably a film faster than 90 sec / 4 cm.
  • Cellulose linter is dissolved in a good solvent for cellulose.
  • a copper ammonia solution prepared by a known method is used as a good solvent.
  • an organic solvent + water + ammonia mixed system is mainly used as the coagulation liquid. While the coagulation liquid is stirred, the prepared copper ammonia cellulose solution is added for coagulation. Further, by neutralizing and regenerating by adding sulfuric acid, a slurry containing the desired cellulose particles can be obtained.
  • the slurry is acidic due to the residual of the acid used for the regeneration, and further contains impurities such as ammonium salts generated by neutralization, and therefore requires an operation for purification to a cellulose dispersion composed of cellulose particles and a medium.
  • this purification operation uses repeated centrifugation, decantation, and dilution with a dispersion medium liquid. Since the cellulose particles in the obtained cellulose particle dispersion may be aggregated in the course of the purification operation, in this case, a dispersion treatment by shearing or the like can be performed.
  • a high-pressure homogenizer is used as means for applying shear.
  • Method for coloring cellulose particles Sodium sulfate and a reactive dye are added to the obtained aqueous dispersion of cellulose particles, and the temperature is raised to an appropriate temperature in a thermostatic bath while stirring with a magnetic stirrer. After heating, sodium carbonate is added as an alkali to start dyeing.
  • a slurry containing the objective dyed cellulose particles can be obtained after a predetermined time. At this time, since the slurry is alkaline and further contains sodium sulfate, unreacted dye, etc., an operation for purification to a dyed cellulose particle dispersion comprising dyed cellulose particles and a medium is required.
  • a dyed cellulose particle dispersion is obtained. Since the cellulose particles in the obtained dyed cellulose particle dispersion liquid may aggregate in the course of the purification operation, in this case, a dispersion treatment by shearing or the like can be performed.
  • a high-pressure homogenizer is used as means for applying shear. Thereafter, various physical properties of the obtained colored cellulose particles are measured.
  • the single fineness and the strength of the nonwoven fabric can be changed.
  • the fiber arrangement to be sprinkled onto the net is changed evenly in 3 to 10 steps in the phase of the Sin curve in 3 to 10 layers.
  • a cellulosic nonwoven fabric having a very uniform fiber arrangement can be obtained.
  • a multilayer nonwoven fabric having such a uniform fiber arrangement has a uniform fiber gap and uniform average pore diameter as a nonwoven fabric. If a nonwoven fabric having such a uniform pore size is densified, it is thin and dense. A nonwoven fabric having a uniform pore size is obtained.
  • the shape of the spinning funnel is preferably a rectangular shape, and the length of the spinning funnel to be flowed down is preferably 100 to 400 mm, and the slit width of the flow down outlet is preferably 2 to 5 mm.
  • the diameter of the stock solution discharge hole of the spinning nozzle is preferably 0.1 to 0.5 mm, and the shape is preferably a round shape.
  • the web after lamination is made by regenerating cellulose in a web state by a method described in, for example, Japanese Patent No. 787914 and Japanese Patent No.
  • the obtained nonwoven fabric can be obtained as a dried or wound product. Since the process from spinning to winding is performed in a series of steps, the fibers are connected continuously without being cut. Thereafter, various physical properties of the obtained regenerated cellulose continuous long fiber nonwoven fabric are measured.
  • a dispersion of colored cellulose particles adjusted to a predetermined concentration is prepared, a buffer solution and an antibody are added, and the mixture is stirred for a certain period of time while adjusting the temperature, so that the antibodies are adsorbed on the colored cellulose particles.
  • the colored cellulose particles are blocked by adding a blocking agent and stirring for a certain time while adjusting the temperature.
  • a blocking agent various blocking agents can be used according to the composition of the substance to be examined, the specimen, or a solution for diluting it.
  • the casein used in the present invention is particularly preferable for blocking colored cellulose particles.
  • Centrifugation is performed to wash the colored cellulose particles after antibody adsorption and blocking, the supernatant liquid containing excess antibody and blocking agent is separated from the precipitated particles, and the supernatant liquid is removed by decantation.
  • a liquid such as a buffer solution is added to the settled particles, and if necessary, a dispersion treatment is performed using ultrasonic waves. Washing by a series of operations such as sedimentation by centrifugation, removal of supernatant, and addition of liquid is performed as many times as necessary to prepare a dispersion containing a predetermined concentration of particles subjected to antibody adsorption and blocking.
  • Proteins, surfactants, sugars such as sucrose and trehalose are added to this dispersion as needed, and a certain amount of the resulting solution is applied to a polyethylene conjugate pad and dried to adjust the detection reagent-containing part. If necessary, apply a buffer solution, surfactant, protein, reagent for trapping impurities in the specimen, antiseptic, antibacterial agent, antioxidant, hygroscopic agent, etc. to the regenerated cellulose continuous long-fiber nonwoven fabric and dry it. And prepare a sample pad. Further, a chromatographic medium made of a nitrocellulose porous membrane in which an antibody is immobilized at a predetermined position, and an absorbent pad made of cellulose filter paper for absorbing the specimen are prepared.
  • the immunochromatography diagnostic kit is prepared by fixing them on a backing sheet having an adhesion site called a backing sheet and cutting it into a predetermined size.
  • a nanotrack particle size distribution measuring apparatus UPA-EX150 dynamic light scattering type manufactured by Nikkiso Co., Ltd. was used.
  • a measurement sample a sample having 0.01% by weight of colored particles and 99.99% by weight of pure water was used.
  • the number of integrations was 30 times, the measurement time per measurement was 30 seconds, and the median diameter was defined as the average particle diameter using a volume average particle size distribution.
  • the CV value was calculated using the standard deviation and the average particle size of the particle size distribution obtained by 30 times of integration.
  • JASCO V-650 an ultraviolet-visible near-infrared spectrophotometer manufactured by JASCO (optical system: single monochromator, Zellnitana mount, double beam system, light source: deuterium lamp (190 to 350 nm), halogen lamp (330 ⁇ 900 nm)) was used in which an integrating sphere unit ISV-722 manufactured by the same company was attached.
  • concentration so that the colored particles are 0.01% by weight and pure water is 99.99% by weight using an aqueous dispersion or dried particles of colored particles of any concentration using distilled water as the dispersion medium. We used what we did.
  • a non-woven fabric having an area of 0.5 m 2 or more is dried at 105 ° C. until a constant weight is reached, then left in a constant temperature room at 20 ° C. and 65% RH for 16 hours or more, and the weight is measured. The weight was measured (unit: g / m 2 ).
  • a negative specimen was prepared by adjusting 66 mM, pH 7.4 PBS containing 1 wt% BSA. 120 ul of a negative sample was dropped onto the sample dropping part of the diagnostic kit, and the TL color intensity after 15 minutes was measured with an immunochromatographic reader. This measurement was performed 5 times, and if the average value of the obtained values was 5 mABS or less, it was determined that there was no false positive. The reason why the 5 mABS is used here is that there is an individual difference, but if it is 5 mABS or less, the presence of TL cannot be visually confirmed.
  • Example 1 [Preparation of antibody-sensitized colored cellulose particles] 120 ⁇ l of 1.0% by weight of colored cellulose particles 1 (average particle size 352 nm, coloring intensity 2.9 ABS, coloring component ratio 49%) prepared by a known method was put in a 15 ml centrifuge tube, and further tris buffer (50 mM). , PH 7.0) and 240 ⁇ l of 0.1% anti-hCG- ⁇ mouse antibody (manufactured by Fitzgerald, 10-C25C) were added, and the mixture was stirred by vortexing for 10 seconds. Then, it put into the dryer adjusted to 37 degreeC, and left still for 120 minutes.
  • borate buffer 50 mM boric acid, PH 10.0
  • SSH ultrasonic disperser
  • centrifugation at 10,000 g was performed for 15 minutes to settle the sensitized particles, and then the supernatant was removed.
  • 0.6 g of sucrose manufactured by Wako Pure Chemical Industries, 196-00015
  • 0.8 g of 1.0 wt% casein blocking solution were added, and a borate buffer solution (50 mM boric acid, PH 10.0) was used.
  • the weight was adjusted to 4.0 g, 0.03% by weight of antibody-sensitized colored cellulose particle dispersion was prepared, and treated with an ultrasonic disperser for 10 seconds.
  • a polyethylene conjugate pad (Pall, 6613) was dipped in a large excess of 0.05% by weight Tween-20 (Sigma Aldrich, T2700), and after removing excess liquid, it was dried at 50 ° C. for 60 minutes. I let you. Subsequently, it was cut into a shape having a height of 10 mm and a length of 300 mm. Subsequently, 1020 ⁇ l of 0.03% by weight antibody-sensitized colored cellulose particle dispersion was applied evenly using a micropipette and dried at 50 ° C. for 60 minutes.
  • Regenerated cellulose continuous long-fiber nonwoven fabric 1 prepared by a known method (weight per unit: 57.2 g / m 2 , thickness: 0.52 mm, bulk density: 0.11 g / cm 3 , number of shed fibers: 2.0000) After impregnating with PBS buffer (66 mM, PH 7.4) containing 2.0 wt% BSA (Sigma Aldrich, A7906) and 2.0 wt% Tween-20, the excess liquid was removed. It was dried at 50 ° C. for 60 minutes. Subsequently, it was cut into a shape having a height of 20 mm and a length of 300 mm.
  • PBS buffer 66 mM, PH 7.4
  • BSA Sigma Aldrich, A7906
  • a nitrocellulose membrane (manufactured by Millipore, SHF0900425) was cut into a shape having a height of 25 mm and a length of 300 mm.
  • a liquid application apparatus Musashi Engineering Co., Ltd., 300DS
  • 0.1 ⁇ l / mm of PBS solution 66 mM, PH 7.4
  • 0.1 wt% anti-hCG- ⁇ mouse antibody MedixBiochemical, 6601
  • a PBS solution (66 mM, PH 7.4) containing 0.1% by weight of anti-mouse-rabbit antibody (Daco, Z0259) was applied to a 12 mm high portion at a rate of 0.1 ⁇ l / mm. Subsequently, it was dried at 37 ° C. for 30 minutes.
  • Example 2 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 2 (average particle size 588 nm, colored intensity 2.7 ABS, colored component ratio 45%), and the performance was evaluated. did. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 3 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 3 (average particle size 790 nm, colored intensity 2.6 ABS, colored component ratio 42%), and the performance was evaluated. did. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 4 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 4 (average particle size 185 nm, colored intensity 3.4 ABS, colored component ratio 61%), and the performance was evaluated. did. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 5 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 5 (average particle size 394 nm, coloring intensity 4.8 ABS, coloring component ratio 75%), and the performance was evaluated. did. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 6 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 6 (average particle size 332 nm, colored intensity 1.5 ABS, colored component ratio 32%), and the performance was evaluated. did. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 7 The non-woven fabric used for the sample pad is a regenerated cellulose continuous long-fiber non-woven fabric 2 (weight per unit area 72.0 g / m 2 , thickness 0.08 mm, bulk density 0.90 g / cm 3 , number of fallen fibers 1.1 thousand).
  • An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 8 The nonwoven fabric used for the sample pad is a regenerated cellulose continuous long-fiber nonwoven fabric 3 (weight is 50.3 g / m 2 , thickness is 0.75 mm, bulk density is 0.07 g / cm 3 , and the number of fallen fibers is 2.1 thousand).
  • An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 9 The non-woven fabric used for the sample pad is a regenerated cellulose continuous long-fiber non-woven fabric 4 (weight per unit: 17.9 g / m 2 , thickness 0.13 mm, bulk density 0.14 g / cm 3 , number of fallen fibers 1.000)
  • An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • the nonwoven fabric used for the sample pad is a regenerated cellulose continuous long fiber nonwoven fabric (weight 61.5 g / m 2 ) and a polyester nonwoven fabric (weight 32.0 g / m 2 ).
  • an immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the thickness was 0.30 mm, the bulk density was 0.31 g / cm 3 , and the number of shed fibers was 0.9000), and the performance was evaluated. . The results are shown in Table 1 below.
  • Recycled cellulose short fiber nonwoven fabric 1 (weight per unit: 49.2 g / weight) is obtained by kinocross method, which is one of the dry airlaid nonwoven fabric manufacturing methods, in which cupra ammonium fiber is cut into a fiber length of 30 mm and dispersed and laminated with a hydrophilic binder in the air.
  • m 2 , thickness of 0.24 mm, bulk density of 0.21 g / cm 3 , and the number of fallen fibers of 105,000 were prepared, and the immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that it was used as a sample pad. Were prepared and their performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 12 Using lyocell fiber as the fiber to be used, regenerated cellulose short fiber nonwoven fabric 2 (weight per unit: 61.3 g / m 2 , thickness: 0.50 mm, bulk density: 0.12 g / cm 3 , number of fallen fibers: 8. (9,000) was prepared, and an immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that it was used as a sample pad, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 13 Recycled cellulose short fiber nonwoven fabric 3 (weight per unit: 31.7 g / m 2 , thickness: 0.19 mm, bulk density: 0.17 g / cm 3 , dropping fiber number: 10.
  • An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that it was used as a sample pad, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • Example 1 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 7 having a small particle size (average particle size 69 nm, color developing intensity 2.8 ABS, coloring component ratio 48%), Its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below. As is apparent from the results shown in Table 1, when the average particle diameter of the colored particles was small, the line was colored for more than 1 minute, the diagnosis time was slow, and the analytical sensitivity was low.
  • Example 2 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored cellulose particles 8 having a large particle size (average particle size 1017 nm, color developing intensity 2.4 ABS, ratio of colored component 41%), Its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below. As is clear from the results shown in Table 1, when the average particle size of the colored particles is large, the diagnosis time is somewhat late, the results are not reproducible, and false positives occur because the particles are clogged. Furthermore, the conjugate pad and the nitrocellulose membrane were colored.
  • Example 3 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were colored latex particles (average particle size 351 nm, colored intensity 0.4 ABS, the ratio of the colored component is unknown), and its performance was evaluated. .
  • the results are shown in Table 1 below. As is apparent from the results shown in Table 1, when the colored particles were latex, the colored intensity of the particles was low, the diagnosis time was slow, and the analytical sensitivity was also low.
  • Example 4 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were gold colloid (average particle size 63 nm, colored intensity 2.3 ABS), and the performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below. As is apparent from the results shown in Table 1, when the colored particles were gold colloid, the particle size was small, the diagnosis time was slow, the analytical sensitivity was low, and the reproducibility of the results was poor.
  • Example 5 Except that the sample pad is a regenerated cellulose continuous long-fiber non-woven fabric 5 having a low basis weight (9.1 g / m 2 , weight 0.12 mm, bulk density 0.08 g / cm 3 , number of shed fibers 2.9 thousand).
  • An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • Table 1 When the basis weight of the non-woven fabric made of regenerated cellulose fiber used for the sample pad is low, some of the diagnostic liquids leaked from the diagnostic kit and some of the liquids were not supplied to the conjugate pad. The particle release was bad. For this reason, some diagnostic kits have a slow diagnosis time, low analytical sensitivity, and the reproducibility of the results is poor. In addition, handling during wetness was poor and difficult to handle at the pretreatment stage of the sample pad.
  • the sample pad is a regenerated cellulose continuous long-fiber nonwoven fabric 6 having a large basis weight and a large thickness (a basis weight of 170 g / m 2 , a thickness of 1.09 mm, a bulk density of 0.16 g / cm 3 , and a number of shed fibers of 2.9000). Except for this, an immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below.
  • the sample pad itself may retain a certain amount of liquid, or the release of particles from the conjugate pad will be poor, and the diagnosis time will It was slow and the reproducibility of the results was poor. Furthermore, the conjugate pad and the nitrocellulose membrane were colored.
  • Example 7 Except that the sample pad is thin regenerated cellulose continuous long-fiber nonwoven fabric 7 (57.2 g / m 2 in basis weight, 0.05 mm in thickness, 1.14 g / cm 3 in bulk density, and 1.0000 dropped fibers).
  • An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below. When the fiber nonwoven fabric made of regenerated cellulose used for the sample pad is thin, the bulk density is high and the liquid absorption rate is poor, and the flow rate per unit time is not sufficient. Was slow and the reproducibility of the results was poor. Furthermore, the conjugate pad and the nitrocellulose membrane were colored.
  • Example 8 Similar to Example 1 except that the sample pad is a short pulp nonwoven fabric 1 (weight per unit: 68.0 g / m 2 , thickness: 0.16 mm, bulk density: 0.43 g / cm 3 , number of shed fibers: 92,000)
  • An immunochromatography diagnostic kit was prepared by the method described above and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below. When using short fiber nonwoven fabric for the sample pad, the hydrophilicity of the fiber itself is low and the flow rate per unit time is insufficient. It was bad too. Furthermore, the conjugate pad and the nitrocellulose membrane were colored.
  • the sample pad is a pulp short fiber nonwoven fabric 2 (commercially available sample pad for immunochromatography, basis weight 179.0 g / m 2 , thickness 0.48 mm, bulk density 0.37 g / cm 3 , and number of dropped fibers 11.1 thousand) Except for the above, an immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 1 below. When using short fiber nonwoven fabric for the sample pad, the hydrophilicity of the fiber itself is low and the flow rate per unit time is insufficient. It was bad too. Furthermore, the conjugate pad and the nitrocellulose membrane were colored.
  • Example 10 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were the gold colloid used in Comparative Example 4 and the sample pad was the pulp short fiber nonwoven fabric 2 used in Comparative Example 9, and the performance was evaluated. did. The results are shown in Table 1 below. In this combination, the diagnosis time was very slow, the analytical sensitivity was low, and the reproducibility of the results was poor.
  • Example 11 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the colored particles were the colored latex particles used in Comparative Example 3, and the sample pad was the pulp short fiber nonwoven fabric 2 used in Comparative Example 9, and the performance was measured. evaluated. The results are shown in Table 1 below. In this combination, the diagnosis time was very slow, the analytical sensitivity was low, and the reproducibility of the results was poor.
  • Example 1 the color intensity is very high and the color intensity is stabilized quickly. This is an effect of combining the predetermined coloring particles and the predetermined sample pad according to the present invention, and it can be said that the particles are released from the conjugate pad at an earlier stage.
  • Example 1 Comparative Example 4, and Comparative Example 9, when performance was evaluated under exactly the same conditions except that the hCG system was changed to an influenza system, the same effect as that of the hCG system was confirmed in the influenza system.
  • Example 14 The immunochromatography diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the sample pad coverage was 70% by setting the sample pad to a length of 17 mm, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 2 below.
  • Example 15 An immunochromatographic diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the sample pad length was 15 mm, so that the coverage of the sample pad with respect to the conjugate pad was 50%, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 2 below.
  • Example 12 An immunochromatography diagnostic kit was prepared in the same manner as in Example 1 except that the sample pad coverage was 20% by changing the length of the sample pad to 12 mm, and its performance was evaluated. The results are shown in Table 2 below.
  • the immunochromatography diagnostic kit according to the present invention is capable of rapid diagnosis, has high analytical sensitivity, and is excellent in reproducibility of test results, so that it can be suitably used as a diagnostic agent.

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Abstract

　迅速な診断が可能であり、分析感度が高く、さらに、検査結果の再現性にも優れるイムノクロマト診断キットの提供。平均粒子径が１００～１０００ｎｍであり、発色強度が１．０～１０．０であり、粒子の重量の１０～９０重量％がセルロース由来、かつ、９０～１０重量％が着色成分由来である発色粒子を含むコンジュゲートを含有するコンジュゲートパッドと、目付が１０～１５０ｇ／ｍ２であり、かつ、厚みが０．０７～１．００ｍｍである再生セルロース系繊維からなる不織布から構成される体外診断薬用サンプルパッドとを、含むイムノクロマト診断キット。

Description

イムノクロマト診断キット
　本発明は、体外診断薬用サンプルパッドを含むイムノクロマト診断キット、より詳しくは、ラテラルフロー型のイムノクロマト診断キットに関する。
技術背景
　近年、ウィルスや細菌等の病原体感染の有無、妊娠の有無、癌マーカーの有無、食品中の特定原材料や残留農薬などの有害物質の有無などの様々な検査を短時間で行う簡易検査試薬や診断薬、診断キットが開発されている。これらはそれぞれの検査対象物質と、検査対象物質に特異的に反応する物質による特異的反応が利用される。特に、抗原と抗体による抗原抗体反応を用いる免疫学的測定法は、イムノクロマト測定法、比濁免疫測定法、酵素免疫測定法、化学発光測定法、放射免疫測定法、表面プラズモン共鳴を用いる測定法など、多くの測定法が開発されている。そしてこれらの測定法は病院、診療所などでの病気などの検査や、食品会社などでの食物検査などに利用されている。中でもイムノクロマト測定法は、特別な設備、機器、知識を必要とせず操作も簡便で安価であり、迅速な診断が可能であるという特徴から非常に多くの検査が実施されている。近年では妊娠検査薬やＨＩＶ検査薬などは一般薬局で市販され一般消費者でも測定できるようになり、更には検査対象物質の有無を検査する定性検査だけでなく量を測定する定量検査などもできるようになってきている。
　イムノクロマト測定法の測定原理としては、サンドイッチ法と呼ばれる方法や競合法と呼ばれる方法がある。また、測定形式としては、フロースルー型やラテラルフロー型と呼ばれる方法がある。検体中の検査対象物質としては様々な物質を検出することができるが、典型的な例としてはサンドイッチ法により抗原を検出する測定があり、以下のような操作が順次実行される。
　（１）検査対象物質である抗原に特異的に結合する抗体をニトロセルロース膜などのクロマトグラフ媒体の所定の部位に固定化し、クロマトグラフ媒体の任意の位置にテストライン（以下「ＴＬ」という。）と呼ばれる反応部位を形成する。
　（２）酵素、発色粒子、蛍光発色粒子、磁性粒子などの標識物質に、検査対象物質と特異的に結合する抗体を担持させた検出試薬を調製し、コンジュゲートパッドなどに検出試薬を塗布乾燥し、検出試薬含有部を形成させ、前記クロマトグラフ媒体と組み合わせてイムノクロマト診断キットを形成する。
　（３）抗原を含む検体そのもの、又はそれを任意の液体で希釈した溶液を前記イムノクロマト診断キットの所定の位置に、例えば、サンプルパッドに滴下し、抗原と検出試薬をクロマトグラフ媒体上に展開させる。
　これらの操作によって、反応部位においてクロマトグラフ媒体上に固定化された抗体に、抗原を介して標識物質が捕捉され、標識物質の信号を検出することでイムノクロマト診断キットによる診断を行う。一般的な診断は抗原の有無のみを検査する定性診断だが、近年ではその信号の強度を目視あるいは機械で検出することで定量診断を行うこともできる。
　イムノクロマト測定法には診断時間の迅速化というニーズがある。これは検査の待ち時間を短縮するためである。このニーズを達成するための一般的な手法としては、クロマトグラフ媒体の孔径を調整し検体の移動速度を速くする方法がある。
　また、以下の特許文献１には、検査対象物質を含む検体試料を滴下する部分であるサンプルパッドに特定のセルロース系繊維不織布を用いることで、診断時間の迅速化が可能なことが報告されている。特許文献１には、吸液速度や展開性についても触れられているが、具体的な診断時間のデータはなく、本願発明のような特定の発色粒子との組み合わせについては全く言及されていない。更にサンプルパッドとコンジュゲートパッドの配置の工夫についても言及されていない。
　さらに、以下の特許文献２には、診断キットの構造などを工夫することで、診断時間の迅速化が可能なことが報告されており、例えば、ｈＣＧアッセイにおいて最短２分３５秒で判定を行っている。
　また、イムノクロマト測定法の別のニーズとして分析感度の向上がある。これは、より少ない検査対象物質でも検出できることを意味する。本願発明者らは、以下の特許文献３において、発色粒子として色が濃く粒子径の大きいセルロース粒子を用いることで分析感度の向上が可能なことを報告している。しかしながら、色が濃く粒子径の大きい発色粒子を用いることで迅速な診断を可能にしているものの、具体的な診断時間のデータはなく、本願発明のような特定のサンプルパッドとの組み合わせについては全く言及されていない。
　このように、一般的に診断時間の迅速化と分析感度の向上はトレードオフの関係にあり、それらを両立することには非常に大きなニーズがある。
　また、以下の特許文献４には、イムノクロマトを用いた半定量の試験方法が開示されており、ある範囲の抗原濃度において、抗原濃度と検査結果の信号の強さを比例させることができることが記載されている。しかしながら、イムノクロマトにおける定量は、ある範囲の抗原濃度において、抗原濃度と検査結果の信号の強さが比例することに加え、結果の再現性、すなわち同じ濃度の抗原を測定した時に同じ強さの信号が得られることが理想であるが、かかる再現性は未だ十分ではないと一般に言われている。
　さらに、以下の特許文献５には、蛍光粒子を発色粒子として用いたイムノクロマト診断キットが開示されており、発色粒子の素材としてセルロース粒子が、サンプルパッドの素材としてセルロース不織布がそれぞれ一例として挙げられているが、いずれも具体的には何も述べられていない。更にサンプルパッドとコンジュゲートパッドの配置についての工夫もなされていない。当然ながら、本願発明のようなサンプルパッドと発色粒子の組み合わせによる効果も記載されていない。
特開2012-108031号公報 特開平7-55809号公報 国際公開第WO2011/062157号明細書 国際公開第WO2006/080438号明細書 国際公開第WO2013/151066号明細書
　かかる従来技術に鑑み、本発明が解決しようとする課題は、より迅速な診断が可能であり、分析感度が高く、かつ、検査結果の再現性にも優れたイムノクロマト診断キットを提供することである。
　本発明者らは、前記課題を解決すべく鋭意検討し、実験を重ねた結果、発色粒子として色が濃く粒子径の大きい粒子を用い、特定の再生セルロース系繊維からなる不織布をサンプルパッドに用い、それらを組み合わせて使用することで、予想外に驚くべき、診断の迅速化と分析感度の向上が可能であり、更に検査結果の再現性にも優れることを見出し、本発明を完成するに至ったものである。
　すなわち、本発明は以下の通りのものである。
　［１］平均粒子径が１００～１０００ｎｍであり、発色強度が１．０～１０．０であり、粒子の重量の１０～９０重量％がセルロース由来、かつ、９０～１０重量％が着色成分由来である発色粒子を含むコンジュゲートを含有するコンジュゲートパッドと、目付が１０～１５０ｇ／ｍ２であり、かつ、厚みが０．０７～１．００ｍｍである再生セルロース系繊維からなる不織布から構成される体外診断薬用サンプルパッドとを、含むイムノクロマト診断キット。
　［２］前記再生セルロース系繊維がキュプラアンモニウムレーヨン繊維を主成分とするものである、前記［１］に記載のイムノクロマト診断キット。
　［３］前記再生セルロース系繊維が連続長繊維である、前記［１］又は［２］に記載のイムノクロマト診断キット。
　［４］前記再生セルロース系繊維からなる不織布の脱落繊維数が５０００個／ｍ２未満である、前記［１］～［３］のいずれかに記載のイムノクロマト診断キット。
　［５］前記着色成分が反応性染料である、前記［１］～［４］のいずれかに記載のイムノクロマト診断キット。
　［６］前記コンジュゲートパッドに対する前記体外診断薬用サンプルパッドの被覆率が５０～１００％である、請求項１～５のいずれか１項に記載のイムノクロマト診断キット。
　本発明に係るイムノクロマト診断キットは、所定の発色粒子を標識物質として含み、かつ、所定の再生セルロース系繊維からなる不織布をサンプルパッドとして用いることで、診断の迅速化と分析感度の向上がなされ、更に検査結果の再現性にも優れたものとなっている。
　本発明は、本発明者らが、所定の発色粒子と、所定のサンプルパッドを組み合わせることで、予想外に驚くべき診断時間の迅速化、分析感度の向上、検査の再現性向上が可能であること見出し、これに基づきなされた発明である。特許文献３に開示されるように、粒子径が大きく発色強度が高い発色粒子は、単独の使用でも分析感度は高くなることが判明している。また、かかる高い分析感度により診断時間の短縮もある程度は可能である。しかしながら、イムノクロマト診断キットはクロマトグラフ媒体などの様々な多孔構造体から構成されるため、粒子径の大きい発色粒子は多孔構造体の孔と干渉し流れにくくなることがある。流れが遅い粒子が発生した場合、診断時間が遅くなるおそれもある。本発明者らは、粒子径の大きい発色粒子をより流れやすくすることによって、診断時間を更に短縮できるのではないかと考えた。かかる仮説の下、実験を重ねた結果、再生セルロース系繊維からなり、嵩密度が低く、厚みが薄い不織布をサンプルパッドに用いることで、発色粒子を含むコンジュゲートパッドに供給される単位時間当たりの流量を増大させて、コンジュゲートパッドに含まれる発色粒子を流れやすくすることによって、診断時間の短縮が可能であることを見出した。サンプルパッドには発色粒子を流れやすくするために界面活性剤などの薬剤を添加することがあるが、本願発明のサンプルパッドは滴下された検体を瞬時に吸収するため、コンジュゲートパッドやクロマトグラフ媒体に発色粒子を流れやすくするための薬剤を常に一定濃度で提供することができる。このため発色粒子が多孔構造体の孔に干渉することなく流れやすくなる。一般的なサンプルパッドでは、発色粒子を流れやすくするための薬剤の濃度が一定にならず、粒子の詰まりなどが発生する可能性があるが、これらの効果により全ての発色粒子が検査に寄与できるようになる結果、分析感度も向上し、更に検査の再現性をも向上させることに成功し、更にサンプルパッドとコンジュゲートパッドの配置を工夫することで、これらの効果をより顕著にすることができることも見出した。
本発明の一実施形態としてのイムノクロマト診断キットの断面図である。 本発明の一実施形態としてのイムノクロマト診断キットの断面図であり、コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率が１００％の時の、サンプルパッドの最下流部分（ｈ）を指す図である。 本発明の一実施形態としてのイムノクロマト診断キットの断面図であり、コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率が５０％の時の、サンプルパッドの最下流部分（ｉ）を指す図である。 本発明の一実施形態としてのイムノクロマト診断キットの断面図であり、コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率が１００％であり、筐体（ｊ）中にセットした状態を指す図である。 本発明のイムノクロマト診断キットを用い一定濃度の陽性検体を検査した際の検査結果の信号強度（ＴＬの発色強度）とその経時変化（分）との関係を示すグラフである。
　以下、本実施形態について詳細に説明する。
　本発明における「発色粒子」とは、水、緩衝液などに不溶性であり、色素や染料等が担持された粒子状物質を指す。粒子を構成する素材は特に限定されないが、このような発色粒子としては、例えば、金コロイド、白金コロイド、銀コロイド、セレンコロイドなどの金属コロイド粒子、ポリスチレンラテックス等のスチレン系ラテックスやアクリル酸系ラテックス等を着色した着色ラテックス粒子、ケイ素原子及び酸素原子からなる３次元構造体からなるシリカを着色した着色シリカ粒子、セルロースを着色した着色セルロース粒子、カーボンブラックなどの着色成分をそのまま粒子化した発色粒子、磁性粒子、などが挙げられる。また、前記発色粒子は蛍光発光性粒子でもかまわない。粒子径の調整、色の濃さの調整、色の種類の調整、粒子表面状態の調整などの粒子の特徴の調整のしやすさから、着色セルロース粒子が好ましい。セルロースは大量の水酸基を有するため、親水性が高く分散安定性に優れ、着色成分を大量に含有することができる。
　「発色粒子の製造方法」は特に限定されない。粒子をまず成形し、色素、染料などの着色成分を担持させる方法、粒子を成形し、金属コロイドや顔料などのより小さい発色粒子を担持させる方法、粒子の成形時に色素、染料、顔料、金属コロイドなどの着色成分も一緒に加えて成形する方法などが挙げられる。中でも粒子径の調整、色の濃さの調整、色の種類の調整、粒子表面状態の調整などの粒子の特徴の調整のしやすさから、粒子をまず成形し、色素、染料などの着色成分を担持させる方法が好ましい。また、担持させる着色成分としては、担持の容易さから染料が好ましい。
　着色成分として染料を用いる場合、「染料の種類」は特に限定されない。反応染料、直接染料、含金染料、酸性染料、塩基性染料、分散染料、硫化染料、植物染料、ナフトール染料、蛍光染料などの染料を用いることができる。もちろん任意の染料を組み合わせても構わない。中でも粒子にセルロースを用いる場合には、セルロースの水酸基と共有結合で結合する反応性染料が、大量に染料を保持できる点や安定性の面から特に好ましい。
　セルロース粒子をまず成形しその後着色成分を担持させる場合、「セルロース粒子の成形方法」は特に限定されない。天然のセルロースをボールミルや高圧ホモジナイザーで物理的に微細化する方法、酸やアルカリなどで化学的に処理し微細化する方法、セルロースをその良溶媒に一度溶解させ粒子状に成形する方法などが挙げられる。また誘導体化されたセルロースを溶解、粒子状に成形し、誘導体化された置換基を水酸基に戻してセルロース粒子を調製してもよい。更にそれらの成形方法を組み合わせてもよい。また「セルロースの種類」も特に限定されるものではなく、再生セルロース、精製セルロース、天然セルロース、前記が誘導体化されたセルロース、誘導体化された置換基を水酸基に戻したセルロースなどを用いることができる。中でも粒子径の調整、粒子形状の調整などの点から良溶媒に一度溶解させ粒子状に成形する方法が好ましく、セルロースの種類としては再生セルロースが好ましい。
　セルロースをその良溶媒に一度溶解させ粒子状に成形する場合、「セルロースを溶解させる良溶媒の種類」も特に限定されるものではなく、銅アンモニア溶液、ビスコース溶液、Ｎ－メチルモルホリン、各種のイオン性液体などセルロースを溶解することのできる様々な良溶媒を用いることができる。中でも粒子径の調整、粒子形状の調整などの点から銅アンモニア溶液が好ましい。また、溶解させたセルロースを粒子に成形する方法も特に限定されるものではない。本発明では相分離による方法を選択した。
　発色粒子の「平均粒子径」とは、動的光散乱法で測定した場合の体積平均メジアン径を指し、体積平均メジアン径が１００～１０００ｎｍの範囲にある。平均粒子径がこの範囲にあると、粒子の表面積が大きいためにイムノクロマト診断キットとして用いる場合にＴＬがより濃くなる、すなわち分析感度が高くなる。平均粒子径が小さすぎると表面積が小さくなり分析感度が下がったり、粒子の凝集が起こったりする場合がある。以上の点から粒子径は２００ｎｍ以上が好ましく、より好ましくは３００ｎｍ以上である。粒子径が大きすぎるとニトロセルロースなどのクロマトグラフ媒体の孔に詰まることで本来検査後には白くなるはずの部分が着色し検査結果の判断に悪影響を及ぼしたり、検出限界が悪くなったりする場合がある。以上の点から粒子径は８００ｎｍ以下が好ましく、より好ましくは６００ｎｍ以下である。なお、ここで述べている平均粒子径はあくまで平均値であり、粒子径分布の一部が上記範囲から外れていても構わない。
　粒子径の評価に体積平均を用いる理由として、イムノクロマト診断キットにおいてあまりに大きな粒子はニトロセルロースなどのクロマトグラフ媒体に詰まってしまうが、体積平均であれば大きい粒子ほど影響が大きくなるので大きい粒子が僅かに存在するだけでもその影響が反映されるためである。粒子径の評価方法としては体積平均以外にも、数平均、面積平均など様々な表し方がある。当然ながら表し方が異なると粒子径の値も変わってくるが、本発明では体積平均を採用する。
　「発色強度」とは、粒子の色の濃さを定義した値である。その値の測定方法は、濃度既知の発色粒子の純水分散液を調製し、光路長１０ｍｍとして、４００～８００ｎｍの範囲で積分球を用いた可視吸光度測定を行い、得られた吸光度曲線のピーク値（ＡＢＳ）を測定し、得られた値を発色粒子の重量パーセントで割り返し、発色粒子０．０１重量％辺りの吸光度に換算した値として定義する。例えば、調製した発色粒子の濃度が０．００４５％であり、吸光度曲線のピーク値が１．０であった場合、その発色強度は（１×０．０１）÷０．００４５＝２．２となる。
　粒子の色の濃さの測定に積分球を用いた可視吸光度測定を行う理由として、液体に分散した状態の粒子の色の濃さを最も正確に測定できるためである。粒子の色の濃さを測る方法としては、粒子を乾燥させて得られた固体を測色計などで測定する方法もあるが、このような方法では粒子の色の濃さを正確に測定できない。例えば、金属コロイドなどは粒子径に応じて色調や最大波長が異なり、乾燥した凝集状態は液体に分散した状態の色の濃さを正確に反映できない。また、液体中に同じ粒子濃度で分散させても凝集が発生すると色の濃さは薄くなる。更に、可視吸光度測定を行う際に積分球を用いる理由は、粒子自体の散乱による影響を除去するためである。通常の可視吸光度測定は透過光を測定する方法であり、入射光に対し着色成分による吸収だけでなく粒子自体の散乱による影響も反映されてしまう。例えば、イムノクロマトに一般的に使われる金コロイドは、粒子径が４０ｎｍ～６０ｎｍ、時には１００ｎｍのものが用いられる場合もあるがいずれも粒子径が小さいため散乱光の影響はほとんどない。それに対しポリスチレンラテックス粒子は粒子径が大きく明らかに散乱光の影響が大きい。上記のような理由から、粒子径や粒子素材が違う場合に粒子自体の色の濃さをより正確に反映するために、積分球を用いた可視吸光度測定を本発明では採用する。
　本発明における「発色強度」は１．０～１０．０である。この値が大きいほど粒子の色の濃さが濃く、イムノクロマト診断キットとして用いる場合に分析感度が高い。もちろん値が大きければ大きいほどよく、色の濃い染料を利用する、染色回数を増やす、スペーサーとして何らかの化合物を介して連結させる、粒子の非晶領域を増やし染料が入り込みやすくする、粒子を多孔性にして染料が入り込みやすくする、などの方法を採用することができる。しかしながら、経済性を考慮すると上限は７．０以下が好ましく、より好ましくは５．０以下である。また、値が小さいほどイムノクロマト診断キットとして用いた場合に分析感度が低下するため、下限は１．５以上が好ましく、より好ましくは２．０以上である。
　「発色粒子の着色成分の割合」とは、発色粒子の全重量における着色成分の割合を指す。例えば、発色粒子１．０ｇが０．２ｇのセルロースと０．８ｇの着色成分から構成される場合、その着色成分の割合は８０重量％である。発色粒子の着色成分の割合は１０～９０重量％が好ましい。この範囲にあるとイムノクロマト診断キットとして用いる場合に分析感度が高い。また、発色粒子としてセルロースを染料で染色した粒子を用いる場合、セルロースにこの範囲の染料を保持させることでセルロースに適度な疎水性を付与することができ、抗体などの被検出物に特異的に結合する物質を吸着により保持することができる。もちろん吸着による保持だけでなく、着色セルロース粒子にカルボキシル基やアミノ基などを導入し、共有結合により被検出物に特異的に結合する物質を保持することも可能である。着色成分の割合が少ない場合は、十分な発色強度を有することができず、イムノクロマト診断キットとして用いる場合に分析感度が低くなる。また、発色粒子としてセルロースを染料で染色した粒子を用いる場合、着色成分の割合を増やすことで被検出物に特異的に結合する物質も増える場合もある。この観点から下限は２０重量％以上が好ましく、より好ましくは３０重量％以上である。着色成分の割合が９０重量％を超えても特に問題はないが、経済的な面から考えると８５重量％以下が好ましく、より好ましくは８０重量％以下である。また、あまりに疎水性が強すぎると凝集や非特異反応などが発生する場合もある。
　「発色粒子の着色成分の割合の算出方法」としては、着色前後の重量変化から算出することができる。また、重量変化からの算出が困難な場合は、着色成分を粒子から分離する操作を行い着色成分又は粒子を単離し算出することができる。例えば、セルロース粒子を反応性染料で染色した場合、酸やアルカリなどでセルロースと染料の共有結合を切断し、遠心分離によりセルロース粒子を回収することで算出することができる。また、セルラーゼを用いセルロースだけを分解することで算出することもできる。
　「発色粒子のセルロース由来成分の算出方法」は、前記の発色粒子の着色成分の割合から計算できる。すなわち、「発色粒子のセルロース由来成分の割合」＝１００％－（発色粒子の着色成分の割合）の計算式によって計算できる。発色粒子のセルロース由来成分の割合は９０～１０重量％が好ましい。この範囲にあると、セルロース粒子の分散安定性が維持できる。また、前記着色成分の割合で記載した理由により、発色粒子のセルロース由来成分の下限としては１５重量％以上がより好ましく、特に好ましくは２０重量％以上であり、上限は８０重量％以下がより好ましく、特に好ましくは７０重量％以下である。
　「粒子」とは、長径（Ｌ）と短径（Ｄ）の長さが近く形状が球に近い構造体を指す。具体的にはＬ÷Ｄで表されるＬ／Ｄ比が１．０～３．０である構造体を指す。Ｌ／Ｄ比がこの範囲にあるとイムノクロマト診断キットとして用いる場合に目詰まりを起こしにくくなり、より好ましくは１．０～２．０、更に好ましくは１．０～１．５、最も好ましくは１．０～１．３である。測定方法としては粒子の電子顕微鏡画像を撮影し、１００個の粒子の長径（Ｌ）と短径（Ｄ）を測定し、その１００個の平均値を算出する。
　「再生セルロース系繊維」とは、主に再生セルロースからなる繊維を指す。再生セルロースとしては、キュプラ、リヨセル、レーヨンなどが挙げられる。再生セルロース系繊維は、繊維を形成する際の配向や表面の分子状態の影響で非常に親水性が高く、吸液性に優れるため、サンプルパッドを構成する素材として好ましく、更に好ましくはキュプラ、リヨセルであり、特に好ましくはキュプラである。これら特定の再生セルロース繊維１００％で構成されていてもいいが、混ぜて用いてもよい。
　「再生セルロース系繊維からなる不織布」とは、前記再生セルロース系繊維からなる不織布を指す。不織布とすることで構造を容易に成形でき、ロール状で巻き取ることができるなどのハンドリングにも優れる。不織布の形態としては短繊維不織布、長繊維不織布のいずれでもいいが、連続長繊維不織布は吸水性に優れ、更に脱落繊維も少ないことからより好ましい。また、形態安定性や吸液速度をコントロールするために、親水性を損なわない範囲で合成繊維を混ぜてもよいが、その場合は再生セルロース系繊維の含有量が面積率で５０重量％以上であることが好ましい。合成繊維としては、サンプルパッドの所望の物性を満足すれば特に限定されないが、例えば、ポリオレフィン系、ポリエステル系、ポリアミド系、アクリル系の合成繊維が挙げられ、これらの一種又は二種以上を用いてもよい。これらは必要に応じてバインダーの使用や、交絡処理などを行ってもよい。
　「再生セルロース系繊維からなる不織布の目付」は１０～１５０ｇ／ｍ２である。目付は、サンプルパッドの大きさや検体液量、検査種類等により適宜変えることができるが、目付がこの範囲にあると検体液の吸収とコンジュゲートパッドへの展開のバランスが良好になり、検体を迅速に吸収した後に、検体を迅速にコンジュゲートパッドに供給できる。目付が低すぎる不織布は、厚みが薄く又は空隙率が高く、検体液のサンプルパッド内部の移動とコンジュゲートパッドへの展開性が悪くなる。この観点から目付の下限は好ましくは１５ｇ／ｍ２以上であり、より好ましくは２０ｇ／ｍ２以上であり、特に好ましくは２５ｇ／ｍ２以上である。また、目付が高すぎる不織布は、厚みが厚く又は空隙率が低く、検体液がサンプルパッドに上手く浸透できずサンプルパッドの上を液が滑ってしまう。この観点から目付の上限は、好ましくは１２０ｇ／ｍ２以下であり、より好ましくは１００ｇ／ｍ２以下である。
　「再生セルロース系繊維からなる不織布の厚み」は、０．０７～１．００ｍｍである。厚みは、サンプルパッドの大きさや検体液量、検査種類等により適宜変えることができるが、厚みがこの範囲にあると検体液の吸収とコンジュゲートパッドへの展開のバランスが良好になり、検体を迅速に吸収したのちに、検体を迅速にコンジュゲートパッドに供給できる。厚みが薄すぎると検体液を十分に受け取ることができなくなる。また診断キットの製造工程において取扱いが難しくなる。この観点から厚みの下限は、好ましくは０．１０ｍｍであり、より好ましくは０．２０ｍｍである。また、厚みが厚すぎると検体液を保持しすぎてしまうため好ましくない。この観点から厚みの上限は、好ましくは０．８０ｍｍ以下であり、より好ましくは０．７０ｍｍ以下である。
　「再生セルロース系繊維からなる不織布の嵩密度」は０．０６～１．００ｇ／ｃｍ３が好ましい。嵩密度は、サンプルパッドの大きさや検体液量、検査種類等により適宜変えることができるが、嵩密度がこの範囲にあると、検体液の吸収とコンジュゲートパッドへの展開のバランスが良好になり、検体を迅速に吸収した後に、検体を迅速にコンジュゲートパッドに供給できる。嵩密度が低すぎると繊維内の空隙が高くなるため、検体液のサンプルパッド内部の移動とコンジュゲートパッドへの展開性が悪くなる。この観点から嵩密度の下限は好ましくは０．０７ｇ／ｃｍ３であり、より好ましくは０．１０ｇ／ｃｍ３である。また、嵩密度が高すぎると、繊維が密集しすぎて、検体液がサンプルパッドに上手く浸透できず、サンプルパッドの上を液が滑ってしまう。この観点から嵩密度の上限は好ましくは０．７０ｇ／ｃｍ３以下、より好ましくは０．５０ｇ／ｃｍ３以下である。
　「脱落繊維数」は、純水３００ｍｌに２５ｃｍ×２５ｃｍのサンプルを入れ、２分間静置後、サンプルを取り出した残りの液を黒色濾紙（ＡＤＶＡＮＴＥＣＮＯ１３１）で濾過し、濾過後の濾紙を恒温室（２０℃、６５％ＲＨ）に１２時間入れて乾燥した後、ビデオマイクロスコープにてカウント、測定した単位平方メートル当たりの、大きさ１００μｍ以上の脱落繊維の数をいう。本発明においては、脱落繊維数は、好ましくは５０００個／ｍ２未満であるが、より好ましくは４０００個／ｍ２未満、更に好ましくは３０００個／ｍ２未満である。脱落繊維数が１０，０００個／ｍ２を超えると繊維が脱落しやすくなり、検査液の種類によってはサンプルパッドとコンジュゲートパッドの界面に脱落繊維が集まってしまい、展開性を阻害してしまうし、また、製造時に生産ライン周辺を汚染してしまうことによる歩留まりの悪化を招いてしまうため、好ましくない。脱落繊維数は小さい方が好ましいので、下限としては１個／ｍ２以上である。
　図１中（ａ）で示すように、本発明における「サンプルパッド」とは、イムノクロマトにおいて測定対象である検体を最初に受け取る部分である。一般的なサンプルパッドとしては、セルロース濾紙、紙、ガラス繊維、グラスファイバー、アクリル繊維、ナイロン繊維、各種織物、などが挙げられるが、本発明では、サンプルパッドとして、前出の通り再生セルロース系繊維からなる不織布を用いる。再生セルロース系繊維からなる不織布は吸液性に優れるため検体を素早く吸収しコンジュゲートパッドに検体を移行させることができる。更に、再生セルロース系繊維からなる不織布の構造を前出の構造にすることで、コンジュゲートパッドに供給される単位時間当たりの流量が増大し、コンジュゲートパッドに含まれている発色粒子がより初期にリリースされやすくなり診断時間の短縮が可能となる。また、発色粒子を流れやすくするための薬剤を常に一定濃度で供給することができ、発色粒子が詰まることなく流れやすくなる。しかもその結果、ほぼ全ての粒子が検査に寄与できるようになるため分析感度も向上し、検査の再現性も向上させることができる。逆にコンジュゲートパッドに含まれている発色粒子が初期にリリースされない場合、診断時間が遅くなる。更にコンジュゲートパッドから、ほぼ全ての発色粒子がリリースされない場合、分析感度が低下し、検査の再現性も悪くなる。
　本発明において、サンプルパッドの親水／撥水性、吸水倍率のコントロールのため、上記物性に悪影響を及ぼさず、抗原抗体反応や抗体の安定性に影響しない範囲であれば、再生セルロース系繊維からなる不織布に各種薬剤や紛体を含有させたり、セルロースの一部を誘導体化したりしてもよい。含浸させる薬剤の一例としては、界面活性剤、タンパク質、抗体、樹脂、水溶性高分子、抗菌剤、防腐剤、酸化防止剤、などが挙げられる。また、セルロースの誘導体化の一例としては、カルボキシメチル化、カルボキシエチル化、１級アミノ化、２級アミノ化、３級アミノ化、４級アミノ化、オキシ化、などが挙げられる。
　本発明において、サンプルパッドは、必要に応じて前処理を行っても構わない。例えば、緩衝液、界面活性剤、タンパク、検体試料中の夾雑物をトラップする試薬、防腐剤、抗菌剤、酸化防止剤、吸湿剤、などを予め含ませるなどの処理を行っても構わない。また、サンプルパッドの形状は特に限定されないが、例えば、サンプルパッドのサイズとして、長さ（液が流れる長さ）は、検体液からの結びつき性や診断時間を考慮すると１０～２５ｍｍ程度であることが好ましく、幅（液の流れに対して垂直）は、コンジュゲートパッドの巾より大きければ問題はない。幅が狭すぎるとサンプルパッドの端部より検査液が回り込んでしまう可能性がある。
　本発明における「イムノクロマト診断キット」とは、様々な検体中の検査対象物質の有無を簡便に検出するものである。当該診断キットの種類としては、ラテラルフロー式やフロースルー式がある。発色粒子やサンプルパッドを用いるものであれば特に限定されないが、好ましくはラテラルフロー式である。また、ラテラルフロー式の中でも、ディップスティックタイプとカセットタイプがあるが、それらのタイプは特に限定されない。診断キットの構成は、特に限定されるものではなく、当該分野で一般的に用いられる構成であればいずれでも構わない。抗体感作発色粒子を含むコンジュゲートパッド（ｂ）とサンプルパッド（ａ）以外の部材の種類は、当該分野で用いられるものであれば特に限定されず、例えば、図１に示す（ｅ）クロマトグラフ媒体、（ｆ）吸収パッド、及び（ｇ）台紙が挙げられる。また、必要に応じそれら部材を一部省いていてもかまわない。構造の例としては特許文献１の図１に記載されているような構造が挙げられる。本願明細書に添付する図１はあくまで例であり、本願発明を何ら限定するものではない。
　「コンジュゲートパッド」とは、発色粒子を含むコンジュゲートを含有するパッドであり、例えば、検査対象物質に結合する抗体と結合した発色粒子を含有するものである。コンジュゲートパッドの素材としては特に限定されないが、一般的なガラス繊維又は樹脂繊維等を用いることができる。樹脂繊維としては、ポリエチレン等のポリオレフィン系や、ポリエステル系、ポリアミド系、アクリル系などの樹脂繊維、及びこれらの樹脂繊維の複合繊維を好適に使用することができるが、これらに限定されるものではない。作業環境から考えると樹脂繊維製が好ましい。樹脂繊維製の中でも、発色粒子のリリースのしやすさの観点から考えると、ある程度疎水性の素材であることがより好ましい。疎水性が高すぎる場合は界面活性剤などで前処理して用いても構わない。ポリエチレン繊維製のコンジュゲートパッドを界面活性剤で前処理したものがより好ましい。
　好ましい実施形態においては、コンジュゲートパッドに対して、サンプルパッドの被覆率が５０～１００％であることが好ましい。ここで、被覆率とは、コンジュゲートパッドの上部面積に対して、サンプルパッドがどれだけの割合で、覆い被さっているかを示す。例えば、コンジュゲートパッドの上部にサンプルパッドが全く重なっていない場合は０％、完全に覆い被さっている場合は１００％となる。算出方法は、コンジュゲートパッドとサンプルパッドの重なっている部分の面積（Ａ）と、コンジュゲートパッド全体の面積（Ｂ）を求めて、以下の式から算出する。
　　　被覆率（％）＝重なっている部分の面積（Ａ）／全体の面積（Ｂ）×１００
　一般的なイムノクロマト診断キットにおいて、この被覆率は５０％以下のものが多い。例えば、特許文献１では、コンジュゲートパッドの長さ１５ｍｍに対しサンプルパッドの重なりが５ｍｍであり、被覆率は３３％になる。また、特許文献５に至っては被覆率は０％である。通常のイムノクロマト診断キットにおいて、サンプルパッドに供給された検体はコンジュゲートパッドに移行し、更にクロマトグラフ媒体に移行する。ここで被覆率が低いとサンプルパッドと接触していない部分のコンジュゲートパッドの下流側に検体が十分に供給されないままクロマトグラフ媒体に検体が移行してしまい、その結果本願発明のような粒子径が大きい発色粒子の場合はコンジュゲートパッドからのリリースが遅くなる場合がある。そこで、本願発明では被覆率を５０％～１００％にすることにより、コンジュゲートパッドの下流側にも素速く検体を供給し、発色粒子のリリースを早くすることができる。リリース性を高めるために好ましい被覆率の下限は６０％であり、更に好ましくは７０％であり、より好ましくは８０％であり、特に好ましくは９０％である。
　他方、本願発明のようにコンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率を高くした場合、イムノクロマト診断キットの構成によってはサンプルパッドの下流側がコンジュゲートパッドから浮いてしまうことがある。これは台紙に接着されたサンプルパッドが、コンジュゲートパッドの形に追従できず、跳ね上がってしまうことが原因である。この問題を解決するため、サンプルパッドの最下流部分を抑える構造にすることが好ましい。抑える方法としては、イムノクロマトキットを筐体に入れ筐体の一部で抑える方法や、接着面を備えた透明なシートを用いる方法などがある。最適な抑えの程度についてはイムノクロマト診断キットの構造に依存するため一概には言えないが、例えば、一つの目安としてサンプルパッドの最下流部分を、各イムノクロマト診断キット部材の厚みの総和の－５～＋２ｍｍに調整することが好ましい。サンプルパッドの最下流部分とは、サンプルパッドの被覆率によって位置は変わる。例えば、被覆率１００％の場合の最下流部分（ｈ）を図２に、被覆率５０％の場合の最下流部分（ｉ）を図３に示す。図２、３はあくまで例であり、本願発明を何ら限定するものではない。また、各イムノクロマト診断キット部材の厚みの総和とは、例えば、図２におけるサンプルパッドの最下流部分には、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、クロマトグラフ媒体、及び台紙が重なっており、これら部材の厚みの和を意味する。サンプルパッドの最下流部分の厚みの総和が、イムノクロマト診断キット部材の厚みの総和＋２ｍｍを超えると、サンプルパッドがコンジュゲートパッドから浮いてしまい、コンジュゲートパッド中の着色セルロース粒子が十分にリリースされない場合があるため、好ましくは厚みの総和＋１ｍｍ以下、より好ましくは厚みの総和＋０ｍｍ以下である。一方、サンプルパッドの最下流部分の厚みの総和が、イムノクロマト診断キット部材の厚みの総和の－５ｍｍ以下になってしまうと、コンジュゲートパッドやクロマトグラフ媒体を圧縮しすぎるため、発色粒子が展開時に目詰まりを起こしてしまう可能性があるため、好ましくは、部材の厚みの総和－３ｍｍ以上、より好ましくは－１ｍｍ以上である。図４には筐体（ｊ）を用いて厚み調整を行った場合を例示する。一般的に筐体は上部と下部からなり、このクリアランスを調整することで厚み調整を行うことができる。図４はあくまで一例であり、本願発明を何ら限定するものではない。
　本発明におけるイムノクロマト診断キットを使用する「診断方法」とは、イムノクロマト診断キットを用いて行われる様々な診断を指す。診断対象は特に限定されるものではなく、人用、動物用、食品用、植物用、その他環境検査など様々な診断対象の検査に用いることができる。一般的な診断の手順では、検査対象から検体試料を採取し、必要であればそれを抽出やろ過などの前処理を行い、サンプルパッドに滴下し、検査開始から所定時間待ち、検査対象物質の有無によって異なる発色より診断結果を判断する。もちろんこの手順に限定されず、同じような手順、原理の診断にも用いることができる。好ましいのは、検体試料を予めろ過しておくことで余分な異物や夾雑物を除去でき、それによりより一層の診断の迅速化や、診断精度の向上が期待できる。
　本発明において、検体を直接サンプルパッドに滴下する方法以外に、予め所定の組成に調整しておいた検体処理液で検体を任意の倍率に希釈処理したものを滴下してもかまわない。検体処理液を使う目的としては、検体中の抗原を反応しやすくするための成分、検体中の夾雑物を分解する成分、検体中の夾雑物をトラップする成分、非特異的な反応を抑える成分、発色粒子を流れやすくする成分、発色粒子を適度に凝集させテストラインに捕捉された際の視認性を向上させる成分、などの添加が挙げられる。一例としては、緩衝液、界面活性剤、タンパク質、無機塩、水溶性高分子、還元剤、キレート剤、等を添加してもよい。特に本願発明のような発色粒子を用いる場合、非イオン性界面活性剤や、各種水溶性アミノ酸、タンパク質、無機塩、水溶性高分子、などの添加が好ましい。具体的な成分の種類や添加量は検査対象や用いる抗体の種類によっても異なるが、非イオン性界面活性剤の一例としては、ポリ（オキシエチレン）アルキルエーテル、ポリ（オキシエチレン）オクチルフェニルエーテル、ポリ（オキシエチレン）ノニルフェニルエーテルなどが挙げられる。水溶性アミノ酸の一例としては、アスパラギン、アスパラギン酸、アラニン、アルギニン、イソロイシン、グリシン、グルタミン、グルタミン酸、システイン、セリン、チロシン、トリプトファン、トレオニン、バリン、ヒスチジン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、リシン、ロイシンなどが挙げられる。タンパク質の一例としては、カゼイン、スキムミルク、カゼイン分解物、牛血清アルブミン、フィッシュゼラチン、などが挙げられる。無機塩としては、ナトリウム、カリウム、リチウム、などのアルカリ金属イオンを生じる化合物が好ましい。水溶性高分子としては、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシメチルセルロース、その他セルロース誘導体などが好ましい。またこれらの成分は検体処理液に加えておくだけでなく、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、クロマトグラフ媒体（ニトロセルロース膜）などに予め加えておいても構わない。
　本発明におけるイムノクロマト診断キットで診断できる対象は特に限定されるものではないが、具体例としては以下のものが挙げられる：癌マーカー、ホルモン、感染症、自己免疫、血漿蛋白、ＴＤＭ、凝固・線溶、アミノ酸、ペプチド、蛋白、遺伝子、細胞、などが挙げられる。より具体的には、ＣＥＡ、ＡＦＰ、フェリチリン、β２マイクロ、ＰＳＡ、ＣＡ１９－９、ＣＡ１２５、ＢＦＰ、エラスターゼ１、ペプシノーゲン１・２、便潜血、尿中β２マイクロ、ＰＩＶＫＡ－２、尿中ＢＴＡ、インスリン、Ｅ３、ＨＣＧ、ＨＰＬ、ＬＨ、ＨＣＶ抗原、ＨＢｓ抗原、ＨＢｓ抗体、ＨＢｃ抗体、ＨＢｅ抗原、ＨＢｅ抗体、ＨＴＬＶ－１抗体、ＨＩＶ抗体、ＨＩＶ抗原、ＨＩＶウィルス遺伝子、トキソプラズマ抗体、梅毒、ＡＳＯ、Ａ型インフルエンザ抗原、Ａ型インフルエンザ抗体、Ｂ型インフルエンザ抗原、Ｂ型インフルエンザ抗体、ロタ抗原、アデノウィルス抗原、ロタ・アデノウィルス抗原、Ａ群レンサ球菌、Ｂ群レンサ球菌、カンジダ抗原、ＣＤ菌、クリプトロッカス抗原、コレラ菌、髄膜炎菌抗原、顆粒菌エラスターゼ、ヘリコバクターピロリ抗体、Ｏ１５７抗体、Ｏ１５７抗原、レプトスピラ抗体、アスペルギルス抗原、ＭＲＳＡ、ＲＦ、総ＩｇＥ、ＬＥテスト、ＣＲＰ、ＩｇＧ，Ａ，Ｍ、ＩｇＤ、トランスフェリン、尿中アルブミン、尿中トランスフェリン、ミオグロビン、Ｃ３・Ｃ４、ＳＡＡ、ＬＰ（ａ）、α１－ＡＣ、α１－Ｍ、ハプトグロビン、マイクロトランスフェリン、ＡＰＲスコア、ＦＤＰ、Ｄダイマー、プラスミノーゲン、ＡＴ３、α２ＰＩ、ＰＩＣ、ＰＡＩ－１、プロテインＣ、凝固第Ｘ３因子、ＩＶ型コラーゲン、ヒアルロン酸、ＧＨｂＡ１ｃ、その他の各種抗原、各種抗体、各種ウィルス、各種菌、各種アミノ酸、各種ペプチド、各種蛋白質、各種ＤＮＡ、各種細胞、各種アレルゲン、各種残留農薬、各種有害物。
　本発明において、発色粒子は、抗体などの被検出物に特異的に結合する物質を担持する必要があるが、その担持方法は特に限定されない。例えば、物理的な吸着による担持、共有結合による担持、それらの組み合わせによる担持などが挙げられる。担持する物質の種類や量も特に限定されない。担持する物質の種類としては抗体が最も一般的であり好ましい。また、担持する方法としては、容易さの観点からは物理的な吸着による担持が、安定性や性能などの観点からは共有結合による担持が好ましい。
　本発明において、イムノクロマト診断キットに用いられるクロマトグラフ媒体は特に限定されるものではなく、一般的に用いられる様々なクロマトグラフ媒体を用いることができる。より具体的にはニトロセルロース膜が挙げられる。市販品のニトロセルロース膜はフローレートと呼ばれる一定距離を移動するために必要な時間によって分類されるが、このフローレートが早い膜ほど孔径が大きい。本発明では孔径が大きい膜のほうが検体の移動が速く発色粒子も詰まりにくいために好ましい。具体的なフローレートとしては１２０ｓｅｃ／４ｃｍより速い膜が好ましく、より好ましくは１００ｓｅｃ／４ｃｍより速い膜であり、更に好ましくは９０ｓｅｃ／４ｃｍより速い膜である。
　以下、セルロース粒子の作製方法、セルロース粒子の着色方法、再生セルロース連続長繊維不織布の作製方法、イムノクロマト診断キットの作製方法、などの一例を記載する、もちろん、本発明はそれらによって何ら限定されるべきではない。
〔セルロース粒子の作製方法〕
　セルロースリンターをセルロースの良溶媒に溶解させる。本発明では良溶媒として公知の方法で調製した銅アンモニア溶液を用いる。そして凝固液としては有機溶媒＋水＋アンモニア混合系を主に用いる。この凝固液を攪拌しながら、調製しておいた銅アンモニアセルロ－ス溶液を加えて凝固を行う。さらに硫酸を加え中和、再生を行うことで、目的のセルロ－ス粒子を含有したスラリーを得ることができる。この際スラリーは再生に用いた酸の残留により酸性であり、さらに中和で発生したアンモニウム塩などの不純物を含んでいるため、セルロース粒子と媒体からなるセルロース分散液へと精製する操作が必要となる。本発明ではこの精製操作として遠心分離－デカンテーション－分散媒液体による希釈の処理の繰り返しを用いる。得られたセルロース粒子分散液中のセルロース粒子は、精製操作の過程において凝集する場合もあるので、この場合は剪断などによる分散処理を行うことができる。本発明では剪断を与える手段としては高圧ホモジナイザーを用いる。
〔セルロース粒子の着色方法〕
　得られたセルロース粒子の水分散体に対し、硫酸ナトリウム、反応性染料を加え、マグネティックスターラーで撹拌しながら恒温槽で適温に昇温する。昇温後にアルカリとして炭酸ナトリウムを加え染色を開始する。所定時間経過後に目的の染色セルロース粒子を含有したスラリーを得ることができる。この際スラリーはアルカリ性であり、さらに、硫酸ナトリウム、未反応の染料などを含んでいるため、染色セルロース粒子と媒体からなる染色セルロース粒子分散液へと精製する操作が必要となる。前記同様に遠心分離による精製を行い、染色セルロース粒子分散液を得る。得られた染色セルロース粒子分散液中のセルロース粒子は、精製操作の過程において凝集する場合もあるので、この場合は剪断などによる分散処理を行うことができる。本発明では剪断を与える手段としては高圧ホモジナイザーを用いる。その後、得られた着色セルロース粒子の各種物性を測定する。
〔再生セルロース連続長繊維不織布の作製〕
　異物を除去し、重合度を調整したコットンリンターを銅アンモニウム溶液に溶解させた原液を、細孔（原液吐出孔）を有した紡糸口金（紡口）から押し出し、水と共に漏斗内を落下させ、脱アンモニアさせることにより原液を凝固させつつ、延伸を行い、ネット上へ振り落としウェブ形成させる。この際、ネットを進行させながら進行方向と垂直方向へ振動させることにより、ネットへ振り落とされる繊維はＳｉｎカーブを描くことになる。紡糸時の延伸は１００～５００倍が可能であり、紡糸漏斗の形状と、その中を流下させる紡糸水量を変えることにより、延伸倍率の調整が任意に可能である。延伸倍率を変えることにより、単繊度や不織布の強度を変えることが可能である。不織布のウェブ形成において、繊維配列の均一性を得る上で、ネットへ振り落とされる繊維配列を、Ｓｉｎカーブの位相を層単位で、３～１０段階で均等に変え、３～１０層の積層ウェブとすることで、極めて均一な繊維配列を有するセルロース系不織布を得ることができる。この様な均一な繊維配列を有する多層構造不織布は、繊維間隙が均一で、不織布としての平均孔径が揃っており、このような均一な孔径を有する不織布を緻密化すれば、薄く、緻密でしかも均一な孔径を有する不織布が得られる。また、紡糸水量や温度を変化させることにより、原液内に微量残留する低分子量セルロース、いわゆるヘミセルロースをコントロールすることも可能である。また、ネットの進行速度、振動幅を制御することにより、繊維配列方向を制御し、不織布としての強度や伸度等をコントロールすることが可能である。
　紡糸漏斗の形状としては、矩形型が好ましく、流下させる紡糸漏斗の長さは１００～４００ｍｍ、流下出口のスリット幅は２～５ｍｍが好ましい。紡口の原液吐出孔の直径は０．１～０．５ｍｍが好ましく、形状は丸型が好ましい。また、不織布の均一性を確保する意味から、ウェブを積層して不織布化することが好ましく、その積層枚数は３～１０枚が好ましい。積層後のウェブを、例えば、特許第７８７９１４号公報、特許第８７７５７９号公報に記載の方法により、ウェブ状態でセルロースを再生させた、精練したりした後、高圧水流により繊維交絡させ不織布を製造する。この際に意匠性を付与するために不織布に穴や凹凸をつけたりすることが高圧水流の条件や不織布の下及び／又は上に配置されるネットの柄によって可能となる。得られた不織布は乾燥、巻き取り品として得ることができる。紡糸から巻き取りまでが一連の工程で成されるため繊維が切断されずに連続的に繋がっているので連続長繊維不織布という。その後、得られた再生セルロース連続長繊維不織布の各種物性を測定する。
〔イムノクロマト診断キットの作製方法〕
　所定の濃度に調整した着色セルロース粒子の分散液を準備し、緩衝液、抗体を加え、温度調整を行いながら一定時間撹拌し、着色セルロース粒子に抗体を吸着させる。一定時間撹拌後、更にブロッキング剤を加え温度調整を行いながら一定時間撹拌することで、着色セルロース粒子のブロッキングを行う。ブロッキング剤としては、検査対象物質や検体又はそれを希釈する溶液の組成などに応じ様々なブロッキング剤を用いることができる。本発明で用いたカゼインは、着色セルロース粒子のブロッキングに特に好ましい。抗体吸着＆ブロッキング後の着色セルロース粒子を洗浄するため、遠心分離を行い、余剰な抗体とブロッキング剤が含まれた上澄み液と沈降した粒子を分離し、上澄み液をデカンテーションにて除去する。沈降した粒子に緩衝液などの液体を加え、必要に応じ超音波などで分散処理を行う。この遠心分離による沈降、上澄みの除去、液体の添加という一連の操作による洗浄を必要回数行い、抗体吸着＆ブロッキングを行った粒子を所定の濃度含有した分散液を調整する。この分散液に必要に応じタンパク質、界面活性剤、スクロースやトレハロースなどの糖を加え、得られた溶液をポリエチレン製のコンジュゲートパッドに一定量塗布し、乾燥させ、検出試薬含有部を調整する。また再生セルロース連続長繊維不織布に必要に応じ緩衝液、界面活性剤、タンパク、検体試料中の夾雑物をトラップする試薬、防腐剤、抗菌剤、酸化防止剤、吸湿剤、などを塗布し、乾燥させ、サンプルパッドを調製する。更に所定の位置に抗体を固定化したニトロセルロース多孔膜製のクロマトグラフ媒体、検体を吸収するためのセルロース濾紙製の吸収パッドを調製する。それらをバッキングシートと呼ばれる接着部位を有する台紙に固定化し、所定のサイズに裁断することでイムノクロマト診断キットを作製する。
　以下、本発明を実施例により更に詳しく説明するが、本発明はこれらの実施例のみに限定されるものではない。また、特に記載のない全ての操作は温度２３℃、相対湿度５５％ＲＨの環境下で行った。
〔発色粒子の平均粒子径測定〕
　装置としては日機装社製のナノトラック粒度分布測定装置ＵＰＡ－ＥＸ１５０（動的光散乱式）を用いた。測定サンプルとして、発色粒子が０．０１重量％、純水９９．９９重量％のサンプルを用いた。測定条件としては積算回数を３０回、１測定辺りの測定時間を３０秒とし、体積平均の粒子径分布を用いそのメジアン径を平均粒子径とした。また、３０回の積算によって得られた粒度分布の標準偏差と平均粒子径を用いＣＶ値を算出した。
〔発色粒子の発色強度測定〕
　装置としては日本分光社製の紫外可視近赤外分光光度計ＪＡＳＣＯ　Ｖ－６５０（光学系：シングルモノクロメータ、ツェルニターナマウント、ダブルビーム方式　光源：重水素ランプ（１９０～３５０ｎｍ）、ハロゲンランプ（３３０～９００ｎｍ））に同社製の積分球ユニットＩＳＶ－７２２を取り付けた装置を用いた。測定するサンプルは、任意の濃度の発色粒子の水分散液又は乾燥粒子を、分散媒として蒸留水を用いて発色粒子が０．０１重量％、純水９９．９９重量％になるよう濃度を調整したものを使用した。この濃度調整した水分散液を、光路長１０ｍｍの石英セル（容量：３．５ｍＬ　光路幅：１０ｍｍ）に２．５ｍＬ加え、この石英セルを紫外可視近赤外分光光度計のサンプルフォルダにセットし、その後、測定を実施した。得られた吸光度ピークのうち、４００～８００ｎｍ可視光範囲での最大値（ＡＢＳ）を発色強度とした。
〔発色粒子の着色成分の割合の算出〕
　所定回数の着色操作を行った後の発色粒子の重量と、着色前の粒子の重量から計算し算出した。例えば、１．０ｇのセルロース粒子を着色し、２．５ｇの着色セルロース粒子を得た場合の着色成分は２．５ｇ－１．０ｇ＝１．５ｇとして計算した。この場合の着色成分の割合は１．５ｇ÷２．５ｇ×１００＝６０．０重量％となる。
〔発色粒子のセルロース由来成分の割合の算出〕
　前記の通り、「発色粒子のセルロース由来成分の割合」＝１００％－（発色粒子の着色成分の割合）の計算式によって計算した。
〔発色粒子のＬ／Ｄ比測定〕
　装置としては日本電子株式社製の走査型電子顕微鏡ＪＳＭ-６７００を用いた。発色粒子が０．０１重量％、純水９９．９９重量％のサンプルを雲母板に滴下し、１０秒経過させることで発色粒子を雲母板上に吸着させ、キムワイプで余分な液体を吸い取り乾燥させた。得られた雲母板をプラチナでコーティングし、電子顕微鏡測定用のサンプルを調製した。加速電圧１．６ｋＶ、測定倍率５万倍で観測を行い、粒子画像が１００個以上になるように必要枚数の画像を撮影し、それぞれの粒子の長径（Ｌ）と短径（Ｄ）を測定し、粒子１００個のＬ／Ｄの平均値を算出した。
〔不織布の厚みの測定〕
　ＪＩＳ－Ｌ１０９６準拠の厚み試験にて荷重を１．９６ｋＰａとして測定した（単位はｍｍ）。
〔不織布の目付の測定〕
　０．５ｍ２以上の面積の不織布を、１０５℃で一定重量になるまで乾燥後、２０℃、６５％ＲＨの恒温室に１６時間以上放置してその重量を測定し、不織布の単位面積当たりの重量を測定した（単位はｇ／ｍ２）。
〔不織布の嵩密度の測定〕
　前記の不織布の単位面積当たりの重量を厚みで割り返すことで算出した（単位はｇ／ｃｍ３）。
〔不織布の脱落繊維数の測定〕
　純水３００ｍｌに２５ｃｍ×２５ｃｍのサンプルを入れ２分間静置した。サンプルを取り出した残りの液を黒色濾紙（ＡＤＶＡＮＴＥＣ ＮＯ１３１）で濾過し、濾過後の濾紙を恒温室（２０℃、６５％ＲＨ）に１２時間入れて乾燥した後、ビデオマイクロスコープにて大きさ１００μｍ以上の脱落繊維数の個数を測定した（単位は個／ｍ２）。
〔イムノクロマト診断キットの診断時間の測定〕
　５ｍｍ幅にカットしたイムノクロマト診断キットをプラスチックのハウジングに入れた。得られたハウジング入りの診断キットを、浜松ホトニクス社製のイムノクロマトリーダーＣ１００６６－１０を用い測定した。用いる粒子の色に応じて装置の設定を行った。検査対象物質にはヒト絨毛性ゴナドトロピン（以下「ｈＣＧ」という。）を用い、ｈＣＧを、１重量％の牛血清アルブミン（以下「ＢＳＡ」という。）を含む６６ｍＭ、ＰＨ７．４のリン酸緩衝液（以下「ＰＢＳ」という。）で希釈し、ｈＣＧ濃度が１０ｍＩＵ／ｍｌの陽性検体を調製した。この陽性検体１２０μｌを診断キットのサンプル滴下部に滴下し、以降２０秒毎にイムノクロマトリーダーで測定を行い、ＴＬの経時変化を測定した。ここで２０秒毎とした理由は、測定１回につき２０秒弱が必要なためである。イムノクロマトリーダーで得られるＴＬの発色強度（単位はｍＡＢＳ）が２０ｍＡＢＳ以上になった時間を測定した。ここで２０ｍＡＢＳとした理由は、個人差もあるが２０ｍＡＢＳ以上になれば目視でもＴＬの存在を確認できるからである。この測定を５回行い、平均の時間を診断時間とした。
〔イムノクロマト診断キットの再現性の測定〕
　前記同様に１２０ｕｌの陽性検体を診断キットのサンプル滴下部に滴下し、１５分経過後のＴＬの発色強度をイムノクロマトリーダーで測定した。この測定を２０回行い、得られた値の平均値をＴＬ強度、その標準偏差をＴＬ強度標準偏差とした。再現性を表す指標％ＣＶは下記式（１）により算出した：
　　　％ＣＶ＝ＴＬ強度標準偏差／ＴＬ強度×１００・・・式（１）
〔イムノクロマト診断キットの偽陽性の測定〕
　１重量％ＢＳＡを含む６６ｍＭ、ＰＨ７．４のＰＢＳを調整し陰性検体を調製した。１２０ｕｌの陰性検体を診断キットのサンプル滴下部に滴下し、１５分経過後のＴＬの発色強度をイムノクロマトリーダーで測定した。この測定を５回行い、得られた値の平均値が５ｍＡＢＳ以下であれば偽陽性はないと判断した。ここで５ｍＡＢＳとした理由は、個人差もあるが５ｍＡＢＳ以下であれば目視ではＴＬの存在が確認できないからである。
〔イムノクロマト診断キットの検出限界の測定〕
　ｈＣＧ濃度を３．２０ｍＩＵ／ｍｌ、１．６０ｍＩＵ／ｍｌ、０．８０ｍＩＵ／ｍｌ、０．４０ｍＩＵ／ｍｌ、０．２０ｍＩＵ／ｍｌ、０．１０ｍＩＵ／ｍｌ、０．０５ｍＩＵ／ｍｌ、０．０２５ｍＩＵ／ｍｌと段階的に薄くしていった陽性検体を調製した。前記同様に１２０μｌを診断キットのサンプル滴下部に滴下し、１５分経過後のＴＬの発色強度をイムノクロマトリーダーで測定した。この測定を各濃度で５回行い、得られた値の平均値が陰性検体を測定した時の値＋２０ｍＡＢＳ以上の場合は陽性判定、以下の場合は検出限界以下と見なした。この陽性判定が得られる下限のｈＣＧ濃度を検出限界とした。
［実施例１］
［抗体感作着色セルロース粒子の調製］
　既知の方法で調製した１．０重量％の着色セルロース粒子１（平均粒子径３５２ｎｍ、発色強度２．９ＡＢＳ、着色成分の割合４９％）１２０μｌを１５ｍｌの遠心管に入れ、更にトリス緩衝液（５０ｍＭ、ＰＨ７．０）を２４０μｌ、０．１％の抗ｈＣＧ-αマウス抗体（Ｆｉｔｚｇｅｒａｌｄ社製、１０-Ｃ２５Ｃ）を１２０μｌ加え、ボルテックスで１０秒撹拌した。続いて３７℃に調整した乾燥機内に入れ１２０分間静置した。続いて１．０重量％のカゼイン（和光純薬工業社製、０３０－０１５０５）を含有するブロッキング液（１００ｍＭホウ酸、ＰＨ８．５）を１４．４ｍｌ加え、更に３７℃の乾燥機内で６０分間静置した。続いて遠心分離機（クボタ商事社製、６２００）と遠心分離ローター（クボタ商事社製、ＡＦ－５００８Ｃ）を用い、１０，０００ｇの遠心を１５分間行い、感作粒子を沈降させた後に上澄みを除去した。続いてホウ酸緩衝液（５０ｍＭホウ酸、ＰＨ１０．０）を１４．４ｍｌ加え、超音波分散機（エスエムテー社製、ＵＨ－５０）で１０秒間処理した。続いて１０，０００ｇの遠心を１５分間行い、感作粒子を沈降させた後に上澄みを除去した。続いてスクロース（和光純薬工業社製、１９６－０００１５）を０．６ｇ、１．０重量％のカゼインブロッキング液を０．８ｇ加え、ホウ酸緩衝液（５０ｍＭホウ酸、ＰＨ１０．０）を用い重量を４．０ｇに調整し、０．０３重量％の抗体感作着色セルロース粒子分散液を調整し、超音波分散機で１０秒間処理した。
〔コンジュゲートパッドへの抗体感作着色セルロース粒子の含浸および乾燥〕
　ポリエチレン製コンジュゲートパッド（Ｐａｌｌ社製、６６１３）を大過剰の０．０５重量％のＴｗｅｅｎ－２０（シグマアルドリッチ社製、Ｔ２７００）に浸漬し、余分な液を取り除いた後に５０℃で６０分乾燥させた。続いて高さ１０ｍｍ、長さ３００ｍｍの形状にカットした。続いてマイクロピペットを用い０．０３重量％の抗体感作着色セルロース粒子分散液１０２０μｌを均等に塗布し、５０℃で６０分乾燥させた。
〔再生セルロース連続長繊維不織布サンプルパッドの前処理〕
　既知の方法で調整した再生セルロース連続長繊維不織布１（目付５７．２ｇ／ｍ２、厚み０．５２ｍｍ、嵩密度０．１１ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数２．０千個）を、大過剰の２．０重量％のＢＳＡ（シグマアルドリッチ社製、Ａ７９０６）と２．０重量％のＴｗｅｅｎ－２０を含有するＰＢＳ緩衝液（６６ｍＭ、ＰＨ７．４）に含浸し、余分な液を取り除いたのちに５０℃で６０分乾燥させた。続いて高さ２０ｍｍ、長さ３００ｍｍの形状にカットした。
〔捕捉抗体塗布ニトロセルロース膜の調製〕
　ニトロセルロース膜（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製、ＳＨＦ０９００４２５）を高さ２５ｍｍ、長さ３００ｍｍの形状にカットした。液体塗布装置（武蔵エンジニアリング社製、３００ＤＳ）を用い、０．１重量％抗ｈＣＧ-βマウス抗体（ＭｅｄｉｘＢｉｏｃｈｅｍｉｃａ社製、６６０１）を含むＰＢＳ溶液（６６ｍＭ、ＰＨ７．４）を０．１μｌ／ｍｍの割合で高さ７ｍｍの部分に塗布した。続いて０．１重量％の抗マウス-ウサギ抗体（Ｄａｃｏ社製、Ｚ０２５９）を含むＰＢＳ溶液（６６ｍＭ、ＰＨ７．４）を０．１μｌ／ｍｍの割合で高さ１２ｍｍの部分に塗布した。続いて３７℃で３０分乾燥させた。
〔イムノクロマト診断キットの調製〕
　バッキングカード（Ａｄｈｅｓｉｖｅｓ　Ｒｅｓｅｒｃｈ社製、ＡＲ９０２０）に、調整した捕捉抗体塗布ニトロセルロース膜、吸収パッド（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製、Ｃ０８３）、抗体感作着色セルロース粒子を含有したコンジュゲートパッド、再生セルロース連続長繊維不織布サンプルパッドを、図１のようなレイアウトで張り合わせた。続いて裁断機にて５ｍｍの幅にカットし、幅５ｍｍ、高さ６０ｍｍのイムノクロマト診断キットを得た。
〔イムノクロマト診断キットの性能評価〕
　得られたイムノクロマト診断キットの性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例２］
　発色粒子が着色セルロース粒子２（平均粒子径５８８ｎｍ、発色強度２．７ＡＢＳ、着色成分の割合４５％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例３］
　発色粒子が着色セルロース粒子３（平均粒子径７９０ｎｍ、発色強度２．６ＡＢＳ、着色成分の割合４２％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例４］
　発色粒子が着色セルロース粒子４（平均粒子径１８５ｎｍ、発色強度３．４ＡＢＳ、着色成分の割合６１％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例５］
　発色粒子が着色セルロース粒子５（平均粒子径３９４ｎｍ、発色強度４．８ＡＢＳ、着色成分の割合７５％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例６］
　発色粒子が着色セルロース粒子６（平均粒子径３３２ｎｍ、発色強度１．５ＡＢＳ、着色成分の割合３２％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例７］
　サンプルパッドに用いる不織布が再生セルロース連続長繊維不織布２（目付７２．０ｇ／ｍ２、厚み０．０８ｍｍ、嵩密度０．９０ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数１．１千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例８］
　サンプルパッドに用いる不織布が再生セルロース連続長繊維不織布３（目付５０．３ｇ／ｍ２、厚み０．７５ｍｍ、嵩密度０．０７ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数２．１千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例９］
　サンプルパッドに用いる不織布が再生セルロース連続長繊維不織布４（目付１７．９ｇ／ｍ２、厚み０．１３ｍｍ、嵩密度０．１４ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数１．５千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例１０］
　サンプルパッドに用いる不織布が再生セルロース連続長繊維不織布（目付６１．５ｇ／ｍ２）とポリエステル不織布（目付３２．０ｇ／ｍ２）をウォータジェットで水流交絡させた複合不織布（目付９２．５ｇ／ｍ２、厚み０．３０ｍｍ、嵩密度０．３１ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数０．９千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例１１］
　キュプラアンモニウム繊維を繊維長３０ｍｍにカットし、空気中に親水性バインダーと共に分散し積層させる、乾式エアレイド不織布の製法の一つであるキノクロス法にて、再生セルロース短繊維不織布１（目付４９．２ｇ／ｍ２、厚み０．２４ｍｍ、嵩密度０．２１ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数１０．５千個）を調製し、それをサンプルパッドに用いること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例１２］
　用いる繊維としてリヨセル繊維を用い、実施例１１と同様の方法で再生セルロース短繊維不織布２（目付６１．３ｇ／ｍ２、厚み０．５０ｍｍ、嵩密度０．１２ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数８．９千個）を調製し、それをサンプルパッドに用いること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
［実施例１３］
　用いる繊維としてレーヨン繊維を用い、実施例１１と同様の方法で再生セルロース短繊維不織布３（目付３１．７ｇ／ｍ２、厚み０．１９ｍｍ、嵩密度０．１７ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数１０．０千個）を調製し、それをサンプルパッドに用いること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。
〔実施例１～１３の説明〕
　実施例１～１３においてはいずれも、粒子径が大きく発色強度が高い所定の発色粒子と、嵩密度が低く厚みが薄い所定の再生セルロース系繊維からなる不織布のサンプルパッドを併用することにより、以下の表１に示すように、発色が早く、１分以内に線が発色し、診断時間が短く、分析感度が高く、結果の再現性に優れるイムノクロマト診断キットを得ることができた。
［比較例１］
　発色粒子が粒子径の小さい着色セルロース粒子７（平均粒子径６９ｎｍ、発色強度２．８ＡＢＳ、着色成分の割合４８％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。表１に示す結果から明らかなように発色粒子の平均粒子径が小さい場合、１分を超えて線が発色し、診断時間が遅く、分析感度も低かった。
［比較例２］
　発色粒子が粒子径の大きい着色セルロース粒子８（平均粒子径１０１７ｎｍ、発色強度２．４ＡＢＳ、着色成分の割合４１％）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。表１に示す結果から明らかなように発色粒子の平均粒子径が大きい場合は粒子が詰まるためか、診断時間がいくぶん遅く、結果の再現性が悪く、偽陽性も発生した。更にコンジュゲートパッドやニトロセルロース膜が着色していた。
［比較例３］
　発色粒子が着色ラテックス粒子（平均粒子径３５１ｎｍ、発色強度０．４ＡＢＳ、着色成分の割合は不明）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。表１に示す結果から明らかなように発色粒子がラテックスの場合は粒子の発色強度が低く、診断時間が遅く、分析感度も低かった。
［比較例４］
　発色粒子が金コロイド（平均粒子径６３ｎｍ、発色強度２．３ＡＢＳ）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。表１に示す結果から明らかなように発色粒子が金コロイドの場合は粒子径が小さく、診断時間が遅く、分析感度も低く、結果の再現性も悪かった。
〔比較例１～４の説明〕
　実施例１～１３と比較例１～４との間の比較から明らかなように、発色粒子の粒子径が最適範囲にない場合や、発色強度が低い場合である比較例１～４においては、検査時間、分析感度、結果の再現性、偽陽性の有無などを全て兼ね備える診断キットを提供することはできなかった。
［比較例５］
　サンプルパッドが目付の低い再生セルロース連続長繊維不織布５（目付９．１ｇ／ｍ２、厚み０．１２ｍｍ、嵩密度０．０８ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数２．９千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。サンプルパッドに用いる再生セルロース系繊維からなる不織布の目付が低い場合、いくつかの診断キットは検体液の一部が診断キット上から漏れてしまい、コンジュゲートパッドに十分な液量が供給されなかったために粒子のリリースが悪かった。そのためいくつかの診断キットは診断時間が遅く、分析感度が低く、その影響で結果の再現性も悪かった。また、サンプルパッドの前処理の段階で湿潤時のハンドリングが悪く扱いにくかった。
［比較例６］
　サンプルパッドが、目付が大きく、厚みが厚い再生セルロース連続長繊維不織布６（目付１７０ｇ／ｍ２、厚み１．０９ｍｍ、嵩密度０．１６ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数２．９千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。サンプルパッドに用いる再生セルロース系繊維からなる不織布の目付が大きく、厚みが厚い場合、サンプルパッド自体がある程度の液量を保持してしまうためかコンジュゲートパッドからの粒子のリリースが悪く、診断時間が遅くなり、結果の再現性も悪かった。更にコンジュゲートパッドやニトロセルロース膜が着色していた。
［比較例７］
　サンプルパッドが厚みの薄い再生セルロース連続長繊維不織布７（目付５７．２ｇ／ｍ２、厚み０．０５ｍｍ、嵩密度１．１４ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数１．０千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。サンプルパッドに用いる再生セルロース系からなる繊維不織布の厚みが薄い場合、嵩密度が高く吸液速度が悪くなり単位時間当たりの流量が十分でないためかコンジュゲートパッドからの粒子のリリースが悪く、診断時間が遅くなり、結果の再現性も悪かった。更にコンジュゲートパッドやニトロセルロース膜が着色していた。
［比較例８］
　サンプルパッドがパルプ短繊維不織布１（目付６８．０ｇ／ｍ２、厚み０．１６ｍｍ、嵩密度０．４３ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数９．２千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。サンプルパッドにパルプ短繊維不織布を用いた場合、繊維自体の親水性が低く単位時間当たりの流量が十分でないためかコンジュゲートパッドからの粒子のリリースが悪く、診断時間が遅くなり、結果の再現性も悪かった。更にコンジュゲートパッドやニトロセルロース膜が着色していた。
［比較例９］
　サンプルパッドがパルプ短繊維不織布２（市販のイムノクロマト用サンプルパッド、目付１７９．０ｇ／ｍ２、厚み０．４８ｍｍ、嵩密度０．３７ｇ／ｃｍ３、脱落繊維数１１．１千個）であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。サンプルパッドにパルプ短繊維不織布を用いた場合、繊維自体の親水性が低く単位時間当たりの流量が十分でないためかコンジュゲートパッドからの粒子のリリースが悪く、診断時間が遅くなり、結果の再現性も悪かった。更にコンジュゲートパッドやニトロセルロース膜が着色していた。
〔比較例５～９の説明〕
　実施例１～１３と比較例５～９との間の比較から明らかなように、サンプルパッドに用いる再生セルロース系繊維からなる不織布の目付や厚みが所定範囲外である場合や、再生セルロース系繊維以外の繊維からなる場合には、表１に示すように、診断時間、分析感度、結果の再現性、偽陽性の有無などを全て兼ね備える診断キットを提供することはできなかった。
［比較例１０］
　発色粒子が比較例４で用いた金コロイド、サンプルパッドが比較例９で用いたパルプ短繊維不織布２であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。この組み合わせの場合、診断時間は非常に遅く、分析感度は低く、結果の再現性も悪かった。
［比較例１１］
　発色粒子が比較例３で用いた着色ラテックス粒子、サンプルパッドが比較例９で用いたパルプ短繊維不織布２であること以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調製し、その性能を評価した。結果を以下の表１に示す。この組み合わせの場合、診断時間は非常に遅く、分析感度は低く、結果の再現性も悪かった。
〔実施例１、比較例４、比較例９、比較例１０のＴＬ経時変化の比較〕
　実施例１、比較例４、比較例９、比較例１０で実施したイムノクロマト診断キットの診断時間の測定の結果を用い、ＴＬの発色強度の経時変化を比較した。その結果を図５に示す。図５から明らかなように、発色粒子に金コロイドを用いた比較例４、比較例１０はサンプルパッドの影響をあまり受けない。また、特定の発色粒子を用いたもののサンプルパッドに市販品のイムノクロマトサンプルパッドを用いた比較例９はある程度の時間が経過した後も緩やかに発色強度が増大している。これはサンプルパッドの吸液速度が十分ではなく、単位時間当たりの検体液の流量が少ないため、コンジュゲートパッドから発色粒子がリリースされ続けているためである。それに対し実施例１では発色強度が非常に高く、かつ発色強度が早く安定化している。これは本発明の奏する所定の発色粒子と所定のサンプルパッドを組み合わせた効果であり、より早い段階でコンジュゲートパッドから粒子がリリースされていることを裏付けるものといえる。
　実施例１、比較例４、比較例９において、ｈＣＧ系をインフルエンザ系に変更した以外は全く同じ条件で性能を評価したところ、インフルエンザ系においてもｈＣＧ系と同様の効果が確認できた。
〔コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率の影響〕
〔実施例１４〕
　サンプルパッドを長さ１７ｍｍにすることでコンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率を７０％とした以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調整し、その性能を評価した。結果を以下の表２に示す。
〔実施例１５〕
　サンプルパッドの長さを１５ｍｍにすることでコンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率を５０％とした以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調整し、その性能を評価した。結果を以下の表２に示す。
〔比較例１２〕
　サンプルパッドの長さを１２ｍｍにすることでコンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率を２０％とした以外は実施例１と同様の方法でイムノクロマト診断キットを調整し、その性能を評価した。結果を以下の表２に示す。
　表２に記載の結果から明らかなように、コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率を変えると、発色時間は変わらないが、結果の再現性が劣る場合があった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　本発明に係るイムノクロマト診断キットは、迅速な診断が可能であり、分析感度が高く、さらに、検査結果の再現性にも優れるため、診断薬として好適に利用可能である。
　（ａ）　　サンプルパッド
　（ｂ）　　抗体感作発色粒子を含むコンジュゲートパッド
　（ｃ）　　検出部Ａ（ＴＬ）
　（ｄ）　　検出部Ｂ（コントロールライン）
　（ｅ）　　クロマトグラフ媒体
　（ｆ）　　吸収パッド
　（ｇ）　　台紙
　（ｈ）　　コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率が１００％の時の、サンプルパッドの最下流部分
　（ｉ）　　コンジュゲートパッドに対するサンプルパッドの被覆率が５０％の時の、サンプルパッドの最下流部分
　（ｊ）　　筐体

Claims (6)

  1. 　平均粒子径が１００～１０００ｎｍであり、発色強度が１．０～１０．０であり、粒子の重量の１０～９０重量％がセルロース由来、かつ、９０～１０重量％が着色成分由来である発色粒子を含むコンジュゲートを含有するコンジュゲートパッドと、目付が１０～１５０ｇ／ｍ２であり、かつ、厚みが０．０７～１．００ｍｍである再生セルロース系繊維からなる不織布から構成される体外診断薬用サンプルパッドとを、含むイムノクロマト診断キット。
  2. 　前記再生セルロース系繊維がキュプラアンモニウムレーヨン繊維を主成分とするものである、請求項１に記載のイムノクロマト診断キット。
  3. 　前記再生セルロース系繊維が連続長繊維である、請求項１又は２に記載のイムノクロマト診断キット。
  4. 　前記再生セルロース系繊維からなる不織布の脱落繊維数が５０００個／ｍ２未満である、請求項１～３のいずれか１項に記載のイムノクロマト診断キット。
  5. 　前記着色成分が反応性染料である、請求項１～４のいずれか１項に記載のイムノクロマト診断キット。
  6. 　前記コンジュゲートパッドに対する前記体外診断薬用サンプルパッドの被覆率が５０～１００％である、請求項１～５のいずれか１項に記載のイムノクロマト診断キット。
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