BRPI1006646A2 - composição imunogênica para vacina e kit para teste imunodiagnóstico de leishmaniose visceral - Google Patents

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BRPI1006646A2
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De Andrade Helida Monteiro
Costa Franco Miriam Maria Silva
Angelica Rosa Faria
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Univ Minas Gerais
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Abstract

COMPOSIçãO IMUNOGêNICA PARA VACINA E KIT PARA TESTE IMUNODIAGNóSTICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL. A presente invenção descreve uma composição imunogênica para vacina e teste imunodiagnóstico de Leishmaniose Visceral. Mais especificamente, a invenção compreende uma vacina e um kit para teste imunodiagnóstico de Leishmaniose, desenvolvidos através da identificação, produção e seleção de novos antígenos por meio de análise proteómica, bioinformática, síntese de peptídeos e imunoensaio. A alta especificidade desses antígenos possibilita a realização de uma vacina eficaz contra Leishmaniose e de um teste imunodiagnóstico mais eficiente para a Leishmaniose Visceral canina ou humana.

Description

COMPOSIÇÃO IMUNOGÊNICA PARA VACINA E KIT PARA TESTE IMUNODIAGNÓSTICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL
A presente invenção descreve uma composição imunogênica para vacina e teste imunodiagnóstico de Leishmaniose Visceral. Mais especificamente, a invenção compreende uma vacina e um kit para teste imunodiagnóstico de Leishmaniose, desenvolvidos através da identificação, produção e seleção de novos antígenos por meio de análise proteômica, bioinformática, síntese de peptídeos e imunoensaio. A alta especificidade desses antígenos possibilita a realização de uma vacina eficaz contra Leishmaniose e de um teste imunodiagnóstico mais eficiente para a Leishmaniose Visceral canina ou humana.
As Leishmanioses são doenças causadas por protozoários do gênero Leishmania (Ross R 1903. (1) Note on the bodies recently described by Leishman and Donovan and (2) Further notes on Leishman's bodies. Brit Med J 2:1261-1401), ordem Kinetoplastida. Agrupam-se no gênero cerca de 30 espécies, sendo aceito que aproximadamente 21 tenham a capacidade de infectar humanos (Herwaldt B 1999. Leishmaniasis. Lancet v.354, n.9185, p. 1191-1199; Ashford R 2000.The leishmaniasis as emerging and reemerging zoonoses. Int J Parasitol 30: 1269-1281). A doença ocorre em 88 países com aproximadamente 12 milhões de infectados e 350 milhões de pessoas sob risco de contrair a infecção (http://www.who.int/leishmaniasis/burden/en/).
Nos últimos 10 anos, regiões endêmicas têm se expandido e um considerável aumento no número de casos registrados da doença tem ocorrido em todo o mundo. Como a notificação da doença é compulsória em apenas 32 dos 88 países afetados pelas Leishmanioses, um grande número de casos não é contabilizado. De fato, considera-se que 2 milhões de novos casos (1,5 milhão para Leishmaniose Tegumentar e 500.000 para Leishmaniose Visceral) ocorram anualmente (http://www.who.int/leishmaniasis/burden/en/).
Dependendo da espécie de Leishmania e da resposta imune do hospedeiro, há várias manifestações clínicas da doença: Leishmaniose Cutânea, Mucocutânea, Difusa e Visceral. A Leishmaniose Visceral (LV), forma mais severa da doença, é uma antroponose na índia e África Central e uma zoonose na região do Mediterrâneo e nas Américas. A forma zoonótica da Leishmaniose Visceral (LV), causada por L. infantum (também denominada L chagasi), representa 20% da Ieishmaniose visceral humana mundial (100.000 casos anualmente) e sua incidência é crescente nas áreas urbanas e peri- urbanas dos trópicos (Dye C 1996.The Iogic of visceral leishmaniasis contrai. Am J Trop Med Hyg 55 (2): 125-30).
O cão desempenha um papel importante dentro da epidemiologia da Ieishmaniose visceral zoonótica, já que este tem sido considerado como o principal reservatório doméstico para a doença humana (Ashford D, David J, Freire M, David R, Sherlock I, Eulálio M, Sampaio, Badaro R 1998. Studies on contrai of visceral leishmaniasis: impact of dog contrai on canine and human visceral leishmaniasis in Jacobina, Bahia, Brazil. Am J Trop Med Hyg v.59, n.1: 53-7; Alvar J, Canavate C, Molina R, Moreno J, Nieto J 2004. Canine leishmaniasis. Adv Parasitol 57:1-88). A importância dos cães como reservatório é decorrente do contato freqüente e da proximidade com humanos, além do fato de o animal poder apresentar infecção assintomática, apesar da alta parasitemia na pele e nas vísceras (Madeira M, Schubach A, Schubach T, Leal C, Marzochi M 2004. Identification of Leishmania chagasi isolated from healthy skin symptomatic and asymptomatic dogs seropositive for leishmaniasis in the Municipality of Rio de Janeiro, Brazil. Braz J Infect Dis 8:440-444).
O cão constitui um excelente modelo para estudo da LV. Esta espécie é alvo das medidas de controle e apresenta semelhança das alterações clínicas e anatomopatológicas com a LV humana. O modelo experimental canino pode ser utilizado para testes de drogas, identificação de moléculas marcadoras da infecção e ainda identificação de antígenos para uso diagnóstico, prognóstico e/ou vacinai em humanos. Em suma, o progresso do conhecimento da LV canina (LVC) pode ajudar a prevenir e tratar a doença humana (Moreno J, Alvar J 2002. Canine leishmaniasis: epidemiological risk and the experimental model. Trends Parasito/, 18 (9): 399-05).
Nas áreas de ocorrência de LV, as medidas de controle incluem diagnóstico de caninos e humanos, para eliminação dos reservatórios e tratamento dos pacientes. Portanto, a precocidade do diagnóstico influencia no sucesso do tratamento e no controle da transmissão. Entretanto, o diagnóstico canino enfrenta uma série de dificuldades tendo em vista os métodos disponíveis.
Atualmente, existe grande variedade de testes para diagnóstico da LVC. Entretanto, cada um apresenta algum ponto negativo. A Reação de Fixação do Complemento e a Reação de Imunofluorescência Indireta, por exemplo, podem resultar em reações cruzadas com Doença de Chagas (DC) e Leishmaniose Tegumentar Americana (LTA). Já a reação de PCR tem uso limitado pelo alto custo e pouca adaptabilidade ao campo. O ensaio imunoenzimático (ELISA), com os antígenos atualmente utilizados, também demonstra reações cruzadas.
Para o imunodiagnóstico de casos humanos, a disponibilidade de testes é pequena. No mercado brasileiro, praticamente a única opção para uso em humanos, com boa sensibilidade e especificidade, é a RIFI (Reação de Imunofluorescência Indireta), que ainda não é ideal por apresentar possibilidade de reações cruzadas devido ao uso de antígeno bruto. Além disso, é um teste que exige treinamento técnico apurado, uma vez que a interpretação do resultado é subjetiva nos casos de baixos títulos de anticorpos anti-Leishmania. A execução da RIFI é mais laboriosa do que outros métodos sorológicos, não há possibilidade de automação e sempre irá requerer a aquisição de equipamento de alto custo (microcópio de imunofluorescência).
Considerando que a maioria dos métodos disponíveis possui desvantagens e que a ocorrência de reações cruzadas com outras infecções inviabiliza um diagnóstico correto, faz-se necessária a pesquisa de novos antígenos que permitam que a doença seja diagnosticada com maior segurança, sensibilidade e especificidade, tanto em cães quanto em humanos. Entre os diferentes métodos para o diagnóstico, ELISA é o mais utilizado devido ao seu baixo custo e facilidade de execução.
Com o objetivo de melhorar os testes imunodiagnósticos disponíveis, algumas metodologias vêm sendo desenvolvidas, como as descritas nos seguintes documentos de patentes: US 2010092938 - Novel and Practical Serological Assay for the Clinicai Diagnosis of Leishmaniasis1 US 2007134671 - Oligonucleotides for detection of Ieishmaniasis and methods thereof, US 5965142 - Polypeptides and methods for the detection of L. tropica infection, W09633414 - Compounds and methods for diagnosis of leishmaniasis, US 5942403 - Compounds and methods for the detection of t. cruzi infection, PI9610679-4 - Antígenos de Leishmania para uso na terapia e diagnose da Leishmaniose, PI9300775-2 - Processo de diagnóstico sorológico da Ieishmaniose visceral canina e/ou humana, WO 2005/063803 - Polypeptides for the diagnosis and therapy of leishmaniasis, WO 1996/033414 - Compounds and methods for diagnosis of leishmaniasis, WO 1989/001045 - Leishmania- specific antigens, process for preparing them, antigenic profiles containing these antigens and their application to the diagnosis of visceral leishmaniasis.
Estes documentos apresentam compostos que incluem polipeptídeos, contendo pelo menos uma parte imunogênica de pelo menos um antígeno de Leishmania, ou de uma variante deste, para serem usados em imunodiagnóstico de Leishmaniose. Os polipeptídeos neles descritos, porém, são diferentes dos utilizados na presente invenção e foram isolados por abordagens diferentes da utilizada na presente invenção. A presente invenção descreve a identificação, produção e seleção de novos antígenos por meio de análise proteômica, bioinformática, síntese de peptídeos e imunoensaio, permitindo a realização de um teste imunodiagnóstico mais específico e mais eficiente para a leishmaniose visceral canina ou humana.
Uma vez que a eficácia das medidas de controle da LV tem se mostrado inconsistente, a vacinação canina pode ser uma maneira efetiva de reduzir a transmissão (Gradoni L. 2001. An update on antileishmanial vaccine candidates and prospects for a canine Leishmania vaccine. Vet Parasitol 100 (1—2):87— 103). Os diferentes imunógenos candidatos para o desenvolvimento de vacinas incluem parasitos mortos, frações purificadas, antígenos recombinantes de Leishmania, além de DNA codificante de antígeno (Melby PC. 2002. Vaccination against cutaneous leishmaniasis: current status. Am J Clin Dermatol 3(8):557-70). No modelo canino, diferentes estratégias de vacina contra LV têm sido utilizadas. A vacinação com promastigotas mortas ou misturas indefinidas de antígenos induzem resposta imune celular e proteção parcial contra a infecção (Gradoni, 2001). O ligante de fucose manose (FML) purificado de L. donovani (Borja-Cabrera GP1 Correia Pontes NN1 da Silva VO, Paraguai de Souza E, Santos WR, Gomes EM, et al. Long Iasting protection against canine kala-azar using the FML-QuiIA saponin vaccine in an endemic area of Brazil (São Gonçalo do Amarante). Vaccine) e vários diferentes antígenos recombinantes, obtidos de proteínas purificadas, também conferem pelo menos proteção parcial contra infecção por L infantum em cães (Saldarriaga OA, Travi BL, Park W, Perez LE, Melby PC. 2006. Immunogenicity of a multicomponent DNA vaccine against visceral Ieishmaniasis in dogs Vaccine 24: 1928-1940.).
O desenvolvimento de vacinas contra este parasita é a principal meta da Organização Mundial de Saúde. Uns grandes números de estudos têm demonstrado que as diferentes formulações da vacina oferecem significante proteção contra Leishmania em uma grande variedade de modelos animais (Kedzierski L1 Zhu Y, Handman E. Leishmania vaccines: progress and problems. Parasitology. 2006, 133, S87-112.; Drummelsmith J, Brochu V, Girard I, Messier N1 Ouellette M. Proteome mapping of the protozoan parasite Leishmania and application to the study of drug targets and resistance mechanisms. Mol. Cell Proteomics. 2003, 2:146-55, de Oliveira Cl, Nascimento IP, Barrai A, Soto M, Barral-Netto M. Challenges and perspectives in vaccination against leishmaniasis. Parasitol. Int. 2009, 19. ). Atualmente, somente quatro vacinas estão licenciadas para uso: uma utilizada para humanos no Uzbesquistão, outra utilizada como imunoterapia no Brasil e duas vacinas para cães de uso profilático também no Brasil (Palatnik-de-Sousa CB. Vaccines for leishmaniasis in the fore coming 25 years. Vaccine. 2008 Mar 25,26(14):1709-24] Fernandes AP, Costa MMS, Coelho EA, Michalick MS, de Freitas E1 Melo MN, Luiz Tafuri W, Resende Dde M, Hermont V, Abrantes Cde F, Gazzinelli RT. Protective immunity against challenge with Leishmania (Leishmania) chagasi in beagle dogs vaccinated with recombinant A2 protein. Vaccine. 2008, 26, 5888-5895.).
Entretanto, a eficácia das vacinas permanece parcial, e, portanto é necessário o desenvolvimento de vacinas de grande eficácia. O desenvolvimento de vacinas para Leishmania é um grande desafio devido ao insuficiente conhecimento da patogenicidade e da complexidade da resposta imunológica necessária para proteção. Além disso, um pequeno número de antígenos de Leishmania tem sido testado como vacina, sugerindo que há ainda muitos antígenos potenciais para serem avaliados. (Matlashewski, G. Leishmania infection and virulence. Microbiol Immunol. 2001, 190, 37-42 El Fakhry Y, Ouellette M1 Papadopoulou Β. A proteomic approach to identify developmentally regulated proteins in Leishmania infantum. Proteomics. 2002, 2, 1007-1117; Dea-Ayuela MA, Rama-Iniguez S, Bolás-Fernández F. Proteomic analysis of antigens from Leishmania infantum promastigotes. Proteomics. 2006, 6:4187-4194; Chappuis F, Sundar S1 Hailu A, Ghalib H, Rijai S, Peeling RW, Alvar J, Boelaert M. Visceral leishmaniasis: what are the needs for diagnosis, treatment and control? Nat. Rev. Microbiol. 2007, 5, 873-882; de Oliveira Cl, Nascimento IP, Barrai A, Soto M, Barral-Netto M. Challenges and perspectives in vaccination against leishmaniasis. ParasitoL Int. 2009, 19; Herrera-Najera C, Pina-Aguilar R, Xacur-Garcia F, Ramirez-Sierra MJ, Dumonteil E. Mining the Leishmania genome for novel antigens and vaccine candidates. Proteomics. 2009 , 9:1293-301.).
Estudos proteômicos com Leishmania demonstraram a diferença de expressão protéica entre amastigotas e promastigotas e a possibilidade de utilização da "sorologia proteômica" como uma abordagem adequada para mapeamento da antigenicidade na leishmaniose. Recentemente, um estudo utilizando 2-DE de extrato de promastigotas de L. infantum, seguido de Western Blot com soro de coelhos imunizados e análise por EM1 permitiu a identificação de várias proteínas antigênicas relevantes (Dea-Ayuela M, Rama- Iniguez S, Bolás-Fernández F 2006. Proteomic analysis of antigens from Leishmania infantum promastigotes. Proteomics 6: 4187-4194). Numa abordagem semelhante, foram identificados vários antígenos de L. donovani utilizando soros e parasitos isolados de pacientes indianos, permitindo concluir que a abordagem proteoma-sorologia produz uma compreensiva e altamente resolvida representação da antigenicidade de L. donovani e da especificidade da resposta imune anti-leishmania em pacientes com LV (Forgber M, Basu R, Roychoudhury K, Theinert S, Roy S, Sundar S, Walden P 2006. Mapping the antigenicity of the parasites in Leishmania donovani infection by proteome serology. PLoS ONE 1:e40). Todos esses estudos utilizaram amastigotas de cultura axênica. A presente invenção demonstra a utilização do extrato protéico de promastigotas para identificação de antígenos que participarão da composição imunogênica para vacina contra Leishmaniose.
Vários documentos de patentes que demonstram o uso de polipeptídeos de Leishmania em composição imunogênica para vacina foram encontrados. Como exemplo, citam-se os seguintes: WO 2009143006 - Recombinant polyprotein vaccines for the treatment and diagnosis of leishmaniasis, WO 2007121184 - Compounds and methods for diagnosis and treatment of leishmaniasis, WO 2006110915 - Vaccine formulations for leishmania, US 2006073170 - Vaccine complex for preventing or treating leishmaniases, CA 2503932 - Polypeptides of leishmania major and polynucleotides encoding same and vaccinal, therapeutical and diagnostic applications thereof, WO 02098359 - Leishmania antigens for use in the therapy and diagnosis of leishmaniasis. Nenhum deles, porém, utiliza as mesmas proteínas e/ou peptídeos demonstrados na presente invenção, além de não demonstrarem o isolamento destes por análise proteômica. A presente invenção descreve a identificação, produção e seleção de novos antígenos por meio de análise proteômica, bioinformática e imunoensaio, permitindo a produção de uma vacina mais específica e mais eficiente para a leishmaniose visceral canina ou humana.
BREVE DESCRIÇÃO DAS FIGURAS
Figura 1 - Extratos protéicos de formas promastigotas de L. chagasi foram fracioandos por 2-DE usando tiras de 18 cm, pH 4-7 e SDS-PAGE a 12%. Os géis foram corados com comassie (A) ou transferidos para membranes de nitrocellulose (B, C e D) e incubados com soros de cães naturalmente infectados ou não infectados (E) e revelados com anti-lgG total (B e E) anti- IgGI (C) anti-lgG2 (D) conjugado com peroxidase. Os "spots" reconhecidos somente por animais infectados e identificados por EM (Espectrometria de Massa) estão destacados. Figura 2 - Para avaliar a reatividade de anticorpos aos peptídeos sintetizados nas membranas, foi calculada a intensidade relativa (IR) entre soros infectados e não infectados para o mesmo peptídeo. Foram considerados reativos os peptídeos com IR>2,0. As proteínas e as seqüências dos peptídeos estão mostrados na Tabela 2.
Figura 3 - Para avaliar a reatividade de anticorpos aos peptídeos sintetizados nas membranas, foi calculada a intensidade relativa (IR) entre soros infectados e não infectados para o mesmo peptídeo. Foram considerados reativos, peptídeos com IR>2,0. As proteínas e as seqüências dos peptídeos estão mostrados na Tabela 3.
DESCRIÇÃO DETALHADA DA TECNOLOGIA
Obtenção das Proteínas
Promastigotas de Leishmania chagasi (MCAN/BR/2000/BH400) foram cultivadas a 23°C em meio Schneider (Gibco BRL) suplementado com 10% de soro fetal bovino (Sigma), 200U de penicilina (Sigma), IOOMg de estreptomicina (Sigma). Essas formas foram utilizadas na fase exponencial de crescimento para extração de proteínas.
Para obtenção das proteínas os parasitas foram lavados 3 vezes no meio Schneider (Gibco BRL) com centrifugação a 200g por 5 minutos a 4 °C. O sedimento celular foi homogeneizado em um tampão de Iise (8M uréia, 2 M tiouréia, 4% CHAPS, 65 mM dithiothreitol - DTT, 40 mM Tris-base e coquetel de inibidor de protease da GE Healhtcere) na proporção de 500 μί. de tampão de Iise para 109 parasitas. As amostras foram incubadas por 1 hora à temperatura ambiente e centrifugadas a 20.OOOg por 15 minutos à temperatura ambiente. O sobrenadante (extrato protéico) foi mantido a -70°C. A proteína foi quantificada por 2D-Quant kit (GE Healthcare, USA) de acordo com as instruções do fabricante.
Eletroforese Bidimensional (2-DE)
Foi empregado o protocolo descrito anteriormente (Paba J, Santana JM, Teixeira AR, Fontes W, Sousa MV, Ricart CA. 2004. Proteomic analysis of the human pathogen Trypanosoma cruzi. Proteomics 4(4): 1052-9.), com que não foi transferido, mas corado por Coomassie colloidal- CBB G-250 (Neuhoff V, Arold N, Taube D, Ehrhardt W. Improved staining of proteins in polyacrylamide gels including isoelectric focusing gels with clear background at nanogram sensitivity using Coomassie Brilliant Blue G-250 and R-250. Electrophoresis. 1988 Jun;9(6):255-62.).
Géis corados e membranas provenientes do WB (Figura 1) foram digitalizados e a imagem analisada por programa de computador para serem normalizados e para identificar a posição das proteínas no gel reveladas no WB1 utilizando como referência os marcadores de ponto isoelétrico (pl) e de massa molecular (MM).
As imagens das membranas foram analisadas para seleção dos "spots" que são reconhecidos por soros de animais infectados, descartando-se aqueles que são reconhecidas por soros de animais não infectados (reações inespecíficas). Os "spots" selecionados como imunogênicos e sem reações inespecíficas nas fases aguda e crônica da infecção canina foram retirados dos géis para identificação por espectrometria de massa (EM = MS).
Digestão das Proteínas
Os "spots" selecionados foram retirados do gel manualmente. Cada spot foi colocado em um tubo de 1,5mL e lavado 3 vezes em 10ΟμΙ de bicarbonato de amônio a 25mM e 50% v/v de acetonitrila. Após secarem, os fragmentos do gel foram reidratados com 10μl de tripsina (Promega), a 20 ng/μΙ em 25mM de bicarbonato de amônio por 30 minutos a 4°C. O excesso da solução foi retirado e os pedaços de géis foram lavados com 10 μl da mesma solução sem adição de tripsina e deixados a 37°C por 16h. Os peptídeos extraídos foram lavados duas vezes, por 15 minutos, com 30μΙ de 50% acetonitrila/5% ácido fórmico. Em seguida, o material digerido por tripsina foi concentrado em SpeedVac (Savant) a um volume de aproximadamente 10μl e dessalinizados pela Zip- Tip® (C18 resina; P10, Millipore Corporation, Bedford1 MA). Os peptídeos foram eluídos da coluna em 50% acetonitrila/5% ácido fórmico e congelados a -20°C até o momento do uso. Espectrometria de Massa - MALDI-T0F-T0F
As amostras foram misturadas à matriz [10mg/mL de R-cyano-4- hydroxycinnamic acid (Aldrich, Milwaukee, Wl) em acetonitrila 50%/ácido trifluoracético 0,1%] e aplicadas na placa para análise no equipamento 4700 proteomics analyzer (Applied Biosystems, Foster City, CA). Ambos MS e MS/MS foram adquiridos com o laser neodymium-doped nyttrium aluminum garnet (Nd:YAG) com 200-Hz. Os espectros foram editados usando os programas FIexAnaIysis e Biotools.
Os "spots" foram identificados através de busca em banco de dados, realizada através do programa MASCOT (http//:www.matrixscience.com) e usando o banco de dados do National Center for Biotechnology (NCBI). Os parâmetros de busca foram: tolerância de desvio de massa molecular entre 100-200ppm, carbamidometilação, máximo de um sítio tríptico de corte não clivado e oxidação da metionina. Esse ensaio permitiu identificar 45 proteínas candidatas para uso em diagnóstico da LVC, inclusive na fase aguda da infecção. A Tabela 1 mostra apenas as 10, destas 45 proteínas, que foram utilizadas na composição imunogênica para vacina e kit para teste imunodiagnóstico de Ieishmaniose visceral. Tabela 1 - Proteínas de formas promastigotas de L. chagasi reconhecidas por soros caninos em WB com gel 2-DE e identificadas por espectrometria de massa (MS/MS), selecionadas para vacina e kit para teste imunodiagnóstico de Ieishmaniose visceral.
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Predição de epitopos
As seqüências de aminoácidos das 45 proteínas identificadas foram processadas usando duas abordagens distintas:
1) A localização de epitopos lineares de células B através de predição pelos softwares "BCPreds" (disponível em http-.//ailab.cs.iastate.edu/bcpreds/) e "ABCPred" (disponível em http://www.imtech.res.ΐη/Γθρήβνθ/θόορΓβάή, a partir de similaridade e alinhamento de seqüências, utilizando modelos matemáticos (Yang X, Yu X 2009. An introduction to epitope prediction methods and software. Rev Med Virol 19: 77-96). Após mapeamento in silico, os epitopos gerados por ambos os softwares foram comparados, para selecionar aqueles resultantes da sobreposição de predições dos dois softwares simultaneamente. Além disso, foi estabelecido que o tamanho desses peptídeos deveria estar entre 9 e 15 aminoácidos.
2) A localização de epitopos lineares de células B através de predição pelo Programa BEPIPRED, através de uma combinação de modelos matemáticos (Improved method for predicting linear B-cell epitopes. Jens Erik Pontoppidan Larsen, Ole Lund and Morten Nielsen. Immunome Research 2:2, 2006). Após o mapeamento in silico, os peptídeos com "score" maior que 2,0, foram selecionados para síntese.
Dessa forma, foram selecionados 180 peptídeos resultantes da sobreposição dos programas de predição "BCPreds" e "ABCPred" (dado não mostrado) e coincidentemente também 180 diferentes peptídeos resultantes da análise pelo programa BEPIPRED (dado não mostrado).
As seqüências identificadas no mapeamento indicam quais os peptídeos de cada proteína têm maior probabilidade de interagir com anticorpos. Deve ser ressaltado que diferentes peptídeos foram selecionados de uma mesma proteína. Estes foram sintetizados em duplicata, pelo método de Spot síntese descrito a seguir, e testados com pool de soros de cães infectados e não infectados por L. chagasi.
Síntese de Peptídeos em membrana de celulose: método de Spot síntese Os aminoácidos são depositados em volume mínimo (0,6 μΙ) com auxílio de um micropipetador automático, permitindo obter aproximadamente 50 nanomoles de peptídeo por ponto. A síntese múltipla é realizada em sintetizador (Abimed Spot Synthesis-ASP222) e o plano de distribuição dos aminoácidos bem como a determinação dos protocolos dos diversos peptídeos são definidos em programa de computação Multipeps (Molina F, Laune D, Gougat C, Pau B, Granier C 1996. Improved performances of Spot multiple peptide synthesis. PeptRes 9:151-155). Os grupamentos hidroxilas livres sobre a membrana de celulose são utilizados como pontos de ancoragem para a síntese do peptídeo. Esses grupamentos são conjugados através de ligação estável com 8 a 10 unidades de polietilenoglicol (PEG)1 objetivando afastar o peptídeo do suporte e conferir maior estabilidade na ligação do peptídeo à membrana.
A síntese do peptídeo inicia-se pelo C-terminal do último aminoácido da seqüência determinada. Com a desproteção do grupo ligado ao 9- fluorenilmetiloxicarbonila protetor (Fmoc), pela adição de piperidina (20% em Dimetilformamida - DMF), as funções aminas são recuperadas e podem ser visualizadas pela coloração azul com bromofenol.
Os aminoácidos são, em seguida, ativados por diisopropilcarbodiimida/1-hidroxibenzotriazol (DIC/HOBT) (150 μΙ para cada aminoácido) e depositados para reinicio de outro ciclo, sendo que os ativadores propiciam um rendimento de ligação variando de 74 a 87% por ciclo. A reposição de aminoácidos sempre começa com a arginina, por ser o aminoácido mais lábil, e cada aminoácido é depositado duas vezes por ciclo. As reações de ligação são monitoradas por mudança de coloração dos "spots', passando da cor azul ao verde-amarelado.
As funções NH2 livres, ou que não reagiram, são acetiladas (anidrido acético 10% em DMF) para evitar a formação de peptídeos irregulares ou outras ligações indesejáveis. O grupo protetor Fmoc do próximo aminoácido é novamente clivado, em meio básico pela piperidina, verificando a ligação pela coloração com bromofenol. Efetuam-se lavagens da membrana com metanol e secagem da mesma ao ar fresco. Em seguida, a membrana é realocada no sintetizador para outro ciclo.
Pelo método de Spot síntese, o tamanho do peptídeo construído é limitado a aproximadamente 15 aminoácidos (Laune L1 Molina F, Ferrières G, Villard S, Bès C1 Rieunier F1 Chardes T, Granier C 2002. Application of the Spot method to the Identification of peptides and amino acids from the antibodie paratope that contribute to antigen binding. J Immunol Method 267, 53-70), pois persistem dúvidas quanto à qualidade da ligação de peptídeos muito alongados ou grandes. Ao final da síntese, os grupos laterais inicialmente protegidos dos aminoácidos são desprotegidos pela adição de ácido trifluoracético (TFA) associado a diclorometano e trietilsilano. Finalmente, os peptídeos encontram- se fixados de maneira covalente à membrana.
A membrana construída contendo os diversos peptídeos pode ser analisada por imunoensaios de colorimetria. A capacidade dos peptídeos sintéticos de se ligarem com anticorpos é avaliada por ensaios imunológicos e estes podem ser reproduzidos várias vezes utilizando-se a mesma membrana, após regeneração da mesma (Frank R 1992. Spot-synthesis: an easy technique for the positionally addressable, parallel chemical synthesis on a membrane support. Tetrahedron 48: 9217-9232).
Imunoensaio
Para os ensaios sorológicos foram utilizados soros de cães com infecção por L. chagasi nas fases aguda e crônica, soros de animais livres dessa parasitose e ainda soros de cães portadores de Trypanosoma cruzi.
Os soros de cães em fase aguda da infecção por L. chagasi foram provenientes de animais com infecção experimental e foram coletados até 60 dias após a inoculação. Os soros de animais com LV1 T. cruzi (fase crônica) e de cães saudáveis foram obtidos a partir de soroteca.
Imunoensaio com peptídeos ligados à membrana
As membranas contendo os peptídeos sintéticos foram incubadas por aproximadamente 16 a 18 horas com solução de bloqueio [PBS pH7,4, Tween- 20 a 0,2%, sacarose a 4% e BSA a 5%] em temperatura ambiente. Após bloqueio, as membranas foram lavadas e incubadas com os soros testes por 120 min a temperatura ambiente. Após novas lavagens, o conjugado (anticorpos anti-lgG total, anti-lgG1, anti-lgG2 ou anti-lgM caninos conjugados com fosfatase alcalina) foi adicionado e mantido sob agitação por 120 minutos. Após três lavagens com PBS contendo Tween-20 a 0,2% e outras três subseqüentes com PBS sob agitação à temperatura ambiente, foi adicionado o substrato para fosfatase alcalina (5-bromo-4-cloro-3-indolilfosfato p-toluidina) e o cromógeno (cloreto de nitroblue tetrazólio) BCIP/ NBT, Promega. A reação, interrompida após três lavagens da membrana com água destilada, pode ser visualizada pela presença de um precipitado azulado sobre os peptídeos (spots) mais reativos (Frank, 1992).
A intensidade da cor foi calculada utilizando o software Image Master Platinum® (GE), comparando o perfil de reconhecimento de uma membrana incubada com pool de soros de cães não infectados, perante outra membrana, contendo os mesmos peptídeos, incubada com pool de soros de cães infectados. Desse modo, foi possível comparar a intensidade da cor, obtendo assim a razão entre soros infectados e não infectados. Definiu-se que apenas os "spots" com razão igual ou superior a 2 são considerados válidos. Esses "spots" foram produzidos novamente em Spot síntese para avaliação com soros individuais, tanto positivos quanto negativos.
Ao final dos ensaios imunológicos, as membranas foram documentadas e, em seguida, submetidas a um tratamento de regeneração, para sua reutilização. As membranas foram tratadas com DMF, reagente A (uréia 8M, 1% de SDS) e reagente B (ácido acético/etanol/água na proporção 60:30:10) para remover os complexos moleculares precipitados sobre os peptídeos.
EXEMPLO 1: SELEÇÃO DOS PEPTÍDEOS RECONHECIDOS ESPECIFICAMENTE ATRAVÉS DA COMPARAÇÃO DE SOROS POSITIVOS COM OS NEGATIVOS PARA LV
Após imunoensaio das membranas contendo os peptídeos sintetizados, foi realizada uma análise da intensidade relativa dos peptídeos, calculada pela razão entre a intensidade da cor da reação com soros positivos e negativos utilizando o programa de computador (Platinum 7.0). Dessa maneira, foi possível selecionar os peptídeos reconhecidos especificamente através da comparação de soros positivos com os negativos para LV (Tabelas 2 e 3).
Os 24 peptídeos descritos na Tabela 2 não apresentaram reação inespecífica (com soros não infectados) e nem reação cruzada com soro de cães infectados com T.cruzi. Esses peptídeos são correspondentes a 16 proteínas diferentes. A intensidade relativa dos peptídeos selecionados está demonstrada na Figura 2. Desse mesmo modo, outros 29 peptídeos (que reconheceram soro de cães infectados com L. chagasi, mas não soros de animais controle e nem infectados com T. cruzi) foram selecionados e estão descritos na Tabela 3. Esses peptídeos correspondem a 9 proteínas diferentes. A intensidade relativa dos peptídeos selecionados está demonstrada na Figura 3.
Esses resultados foram resumidos na Tabela 4.
Tabela 2: Proteínas mapeadas para epitopos B e peptídeos sintetizados utilizando sobreposição dos programas de predição "BCPreds" e "ABCPred". São mostrados apenas os peptídeos selecionados após imunoensaio.
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Tabela 3: Proteínas mapeadas para epitopos B e peptídeos sintetizados por apresentarem "score" maior que 2,0 utilizando o programa de predição "BEPIPRED". São mostrados apenas os peptídeos selecionados após imunoensaio.
<table>table see original document page 18</column></row><table> <table>table see original document page 19</column></row><table> Tabela 4 - Levantamento numérico das proteínas e peptídeos investigados até a seleção
<table>table see original document page 20</column></row><table>
Em síntese, foram selecionados 53 peptídeos sintéticos com potencial para diagnóstico sensível e específico da Ieishmaniose Visceral. Dentre esses 53 peptídeos, 35 pertencem a 9 diferentes proteínas hipotéticas, o que significa que são bastante promissores para novos testes diagnósticos, uma vez que essas proteínas hipotéticas ainda não haviam sido exploradas quanto a esse potencial.
EXEMPLO 2: EFICIÊNCIA DO TESTE IMUNODIAGNÓSTICO
Com o intuito de testar a eficiência do teste imunodiagnóstico, foi realizada nova síntese dos 24 peptídeos selecionados (Tabela 2) em membranas de celulose. Cada um desses peptídeos foi testado com diferentes soros caninos individuais, que possuíam variados títulos de anticorpos anti- Leishmania. Com as novas membranas também foi realizado mais uma vez o teste com soros caninos infectados por T. cruzi, para investigação de reação cruzada (Tabela 5). Tabela 5: Soros caninos individuais, com diferentes títulos de anticorpos, testados em imunoensaios envolvendo membranas de celulose contendo os 24 peptídeos selecionados.
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Foi possível observar que o perfil de reconhecimento de peptídeos foi variável entre os diferentes soros. Entretanto, houve alguns peptídeos que foram reconhecidos pela maior parte dos soros testados. Todos os 24 peptídeos testados foram reconhecidos por pelo menos um soro individual (Tabela 5). Pode-se verificar, portanto, que estes peptídeos possuem um grande potencial imunogênico.
EXEMPLO 3: AVALIAÇÃO DAS PROTEÍNAS MAIS PROMISSORAS PARA USO EM VACINA
Para avaliar, dentre as proteínas identificadas, quais seriam as mais promissoras para uso em vacina, todas foram mapeadas utilizando o programa NetCTL (www.cbs.dtu.dk/services/NetCTL). Esse programa é um algoritmo combinado para fazer predição de ligação a HLA classe I, clivagem pelo proteassoma e eficiência de transporte pelo TAP (transporter associated with antigen processing) simultaneamente nas seqüências de aminoácidos de uma dada proteína (Peters, B., Bulik S., Tampe, R., Endert, P.M.V. and Holzhutter, H.G. Identifying MHC class I epitopes by predicting the TAP transport efficiency of epitope precursors. J. Immunol. 2003, 171, 1741-1749.). Também foi avaliada a capacidade de cada proteína ligar a 10 diferentes supertipos de HLA (A1, A2, A3, A24, B7, B8, B27, B44, B58 e B62) por bioinformática. Dessa forma, foram selecionadas para serem utilizadas como antígenos em composições vacinais as proteínas que apresentam maior percentual de epitopos para HLA I e/ou maior capacidade de se ligarem a diferentes supertipos de HLA (Tabela 6).
Tabela 6 - Proteínas que, segundo mapeamento pelo programa NetCTL, apresentam maior percentual de epitopos para HLA I.
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Claims (10)

1. COMPOSTOS IMUNOGÊNICOS PARA LEISHMANIOSE VISCERAL, caracterizados por serem selecionados de um grupo que compreende ao menos uma das proteínas ou peptídeos representados pelas Seq ID N° 1 a 63.
2. COMPOSTOS IMUNOGÊNICOS PARA LEISHMANIOSE VISCERAL, de acordo com a reivindicação 1, caracterizados por gerarem resposta imune celular e/ou humoral.
3. KIT PARA TESTE IMUNODIAGNÓSTICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL, caracterizado por compreender pelo menos uma das proteínas ou peptídeos representados pelas Seq ID N0 1 a 63, ligados a um suporte.
4. KIT PARA TESTE IMUNODIAGNÓSTICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo suporte ser preferencialmente uma placa de microtitulação para ELISA ou uma membrana.
5. KIT PARA TESTE IMUNODIAGNÓSTICO DE LEISHMANIOSE VISCERAL, de acordo com as reivindicações 2 e 3, caracterizado por utilizar técnicas de imunodiagnóstico selecionadas do grupo compreendendo ELISA, Western blot, Dot blot e Imunocromatografia.
6. VACINA CONTRA LEISHMANIOSE, caracterizada por compreender pelo menos uma das proteínas representadas pelas Seq ID N0 56 a 63, ou parte destas, em combinação com pelo menos um adjuvante.
7. VACINA CONTRA LEISHMANIOSE, de acordo com a reivindicação 6, caracterizada pelo adjuvante ser selecionado de um grupo que compreende oligonucleotídeos cotendo CpG, agonistas de TLR, saponinas, AGPs ou uma combinação destes.
8. VACINA CONTRA LEISHMANIOSE, de acordo com as reivindicações 6 e 7, caracterizada por ser administrada em quantidade suficiente para induzir resposta imune protetora em mamífero.
9. VACINA CONTRA LEISHMANIOSE, de acordo com as reivindicações 6 a 8, caracterizada por ser administrada pelas vias intramuscular, subcutânea, oral ou parenteral.
10. VACINA CONTRA LEISHMANIOSE, de acordo com as reivindicações -6 a 9, caracterizada por ser para imunização, profilaxia ou tratamento de mamíferos com risco de contrair ou que sofrem de Leishmaniose.
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