CS164591A3 - Process for preparing beta-hydroxy-alpha aminoacids - Google Patents

Process for preparing beta-hydroxy-alpha aminoacids Download PDF

Info

Publication number
CS164591A3
CS164591A3 CS911645A CS164591A CS164591A3 CS 164591 A3 CS164591 A3 CS 164591A3 CS 911645 A CS911645 A CS 911645A CS 164591 A CS164591 A CS 164591A CS 164591 A3 CS164591 A3 CS 164591A3
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
aldehyde
carbon atoms
formula
alkyl
hydroxy
Prior art date
Application number
CS911645A
Other languages
English (en)
Inventor
Marvin Joseph Miller
Original Assignee
Univ Notre Dame Du Lac
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Notre Dame Du Lac filed Critical Univ Notre Dame Du Lac
Publication of CS164591A3 publication Critical patent/CS164591A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1003Transferases (2.) transferring one-carbon groups (2.1)
    • C12N9/1014Hydroxymethyl-, formyl-transferases (2.1.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C229/00Compounds containing amino and carboxyl groups bound to the same carbon skeleton
    • C07C229/02Compounds containing amino and carboxyl groups bound to the same carbon skeleton having amino and carboxyl groups bound to acyclic carbon atoms of the same carbon skeleton
    • C07C229/04Compounds containing amino and carboxyl groups bound to the same carbon skeleton having amino and carboxyl groups bound to acyclic carbon atoms of the same carbon skeleton the carbon skeleton being acyclic and saturated
    • C07C229/24Compounds containing amino and carboxyl groups bound to the same carbon skeleton having amino and carboxyl groups bound to acyclic carbon atoms of the same carbon skeleton the carbon skeleton being acyclic and saturated having more than one carboxyl group bound to the carbon skeleton, e.g. aspartic acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/08Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Catalysts (AREA)
  • Diaphragms For Electromechanical Transducers (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Description

Způsob přípravy ,6 -hydroxy- -aminokyselin^“*———. ,L.
Oblast techniky
Vynález se týká způsobu přípravy β-hydroxy-«/.-aminoky-selin, Zvláště se týká enzymatického způsobu přípravy -hyd-roxy- -aminokyselin v podstatě v L-erytroformě.
Dosavadní stav techniky β-hydroxy- 4- -aminokyseliny mají četná použití včetněpoužití jakožto meziproduktů pro přípravuβ -laktamových an-tibiotik. Příkladně se uvádí Mattingly P.G., Miller M.J.z J.Org Chem. Soc. 1980, 46, str. 1557 a Miller M.J. a kol., J,Amen. Chem. SOc. 1980, 102, str. 7026. Jsou známy četné che-mické způsoby pro přípravu $ -hydroxy- oL -aminokyselin, a/v- šak většina těchto způsobů má četné nedostatky. Jsou nedos-tatečně obecné, řízení stereochemie je špatné, vyžadují chi-ráiní pomo,cné prostředky nebo vedou primárně k produkci threo/nebo syn/ isomerů.
Enzymatické způsoby mají některé výrazné přednosti před způsoby chemickými. Například se mohou provádět ve vodném pro-středí za mírných podmínek a často stereoselektivně. Enzym,používaný při způsobu podle vynálezu,je znám obecně jako aldo-lasa. Jednou takovou aldolasou je serinhydroxymethyltransfe-rasa /SHMT/, Schirch L. Adv. Snzymol. Relat. Areas Mol. Biol.1982, 53, str. 83 a Schirch L., Gross T.J. Biol. Chem. 1968,243, 5651. Přírodními biologickými úlohami aldolas je přenosjednouhlíkových jednotek na serin nebo ze šeřinu a retroaldo-lové štěpení -hydroxy-ζλ. -aminokyselin, jako threoninu aallo-threoninu za generace aldehydu a glycinu.
Aldolasy jsou všudypřítomné v rostlinách, bakteriích av živočiších, na,příklad v semenáčcích kukuřice, v semenáč-cích fazolí a v králičích játrech. Způsob podle vynálezu jezaložen na použití serinhydroxymethyltransferasy /SHMT/ pro přípravu za mírných podmínek - 2 - kyselinových prekursorů pro β -laktamová antibiotika. Při způsobu se v mnoha případech získá ^/^-hydroxyaminokyselina v L-erythro isomerní formě, která je žádoucí diestereomerní formou prekursorů ^-lektamových antibiotik.
Podstata vynálezu
Podstatou přípravy aminokyselin obecného vzorce I + h3n
/1/
o-— kde znamená R alkenylovou skupinu ; s 2 až 6 atomy uhlíku, alkynylo-vou skupinu s 2 až 6 atomy uhlíku, alkylovou skupinus 1 až 6 atomy uhlíku substituovanou esterifikovou kar-boxyskupinou, alkoxyskupinou s 1 až 4 atomy uhlíku, atomemfluoru, chloru nebo bromu, kyanoskupinau,hydroxyskupinou,alkanoyloxyskupinotx s 1 až 4 atomy uhlíku, fenylovou sku-pinou, furylovou skupinou, nebo benzyloxyskupinu, feny-lovou skupinu nebo furylovou skupinu,
spočívá podle vynálezu v tom, že se mísí při teplotě přibliž-ně 30 °C až přibližně 55 °C ve vodném roztoku o hodnotě pHpřibližně 5,5 až přibližně 9 aldehyd obecného vzorce II RCHO /11/ kde R má shora uvedený význam a glycin se serinovou hydroxy-methyltransferasou v přítomnosti pyridoxal-5 -fosfátu. S výhodou se reakce provádí při teplotě 37 °C. °akožtoaldehydu obecného vzorce II se používá například alifatické-ho aldehydu jako acetaldehydu mebo butanalu nebo se použí-vá aromatického aldehydu jako 2-furfuralu. Způsobem podle - 3 - vynálezu se převádí ester jantarového semialdehydu na monoes- ter kyseliny β-hydroxy- -aminoadipové.
Poměrné množství glycinu a aldehydu obecného vzorce IIse může měnit, zdá se však, že se produkt získá ve vyšším vý-těžku, když se moužije ekvimolárního množství. Množství pou-žitého enzymu závisí na míře čistoty enzymu, jelikož jakéko-liv nečistoty účinnost enzymu ovlivňují.
Hodnota pH reakčního prostředí se pufruje na hodnotupH přibližně 5,5 až přibližně 9 v případě většiny substrátů,s výhodou na hodnotu 7,0 až přibližně 8,0. Fosfátové pufryjsou vhodné pro dosahování žádané hodnoty pH. 0©ko v případě jiných enzymatických reakcí kofaktory mo-hou ovlivňovat substrátovou specificitu enzymu a účinnost en-zymu při katalyzování reakce daného substrátu. Důležitýmfaktorem pro serinhydroxymethyltransferaau při způsobu pod-le vynálezu je pyridoxal-5*-fosfát♦ Jiné faktory vedle PLP,ktey se může přidat, mají příznivý vliv na výtěžek produk-tu získaného za použití některých substrátů. Například ky-selina tetrahydrofolová podporuje účinnost enzymu při konver-zi pyruvaldehydu jakožto substrátu. Také metavanadát působíjakožto kofaktor pro konverzi téhož aldehydu.
Ve shora uvedeném obecném vzorci I je /j-hydroxy-< -aminokyselina, připravovaná způsobem podle vynálezu, ve for-mě vnitřní soli. !^ato forma soli se očekává při hodnotě pHpři způsobu podle vynálezuzavšak za jiných podmínek může ky-selina být také v neiontové formě obecného vzorce
OH j H2N - CH - CH - Ri
. COOH kde R má shora uvedený význam.
Aldehyd obecného vzorce II, používaný při způsobu po-dle vynálezu, může mít přímý nebo rozvětvený alkylový řetě-zec, nebo to může být alkenylaldehyd nebo alkynylaldehyd nebo aromatický nebo heterocyklický aldehyd. Aldehyd může býtsubstituován skupinami, vybranými ze souboru zahrnujícího na-příklad alkoxyskupinu jako methoxyskupinu nebo ethoxyskupinu;esterifikovanou karboxyskupinu jako alkylestery s 1 až 4 ato-my uhlíku v alkylovém podílu karboxyskupiny; kyanoskupinu;hydroxyskupinu; acylovanou hydroxyskupinu, jako formyloxysku-pinu, acetoxyskupinu, propionoxyskupinu nebo butyloxyskupi-nu; atom halogenu jako fluoru nebo chloru; halojgenalkylo-vou skupinu jako trifluormethylovou nebo chlormethylovou sku-pinu; nebo alifatický aldehyd může obsahovat oxoskupiny,například aldehydem obecného vzorce II může být ketoaldehydnapříklad 4-oxopentanal nebo pyruvaldehyd. Aromatický alde-hyd nebo heterocyklický aldehyd může být podobně substituo-ván na aromatickém nebo heterocyklickény jádru nebo na ja-kémkoliv alkylovém nebo alkenylovém podílu. Jakožto příkladyalkylaldehydů, alkenylaldehydů a alkynylaldehydů obecnéhovzorce II, kterých se může při způsobu podle vynálezu pou-žít, se uvádějí acetaldehyd, propionaldehyd, butyraldehyd,valeraldehyd, methylester semialdehydu jantarového, jantaro-vý semialdehyd benzylester, 4-hydroxyvaleraldehyd, methyles-ter gLutarsemialdehydu, pyruvaldehyd, 0-formyl-4-hydroxyva-leraldehyd, 3-fluorvaleraldehyd, 5-chlorvaieraldehyd, 2-chlorpropionaldehyd, propargylaldehyd a alkenaldehydy o-becného vzorce 0 0 I* « RC - CH = CH - R*f H - C - CH2 - GHg - CH = CH - R* kde znamená R* atom vodíku nebo alkylovou skupinu s 1 až 4atomy uhlíku, jako je třeba akrolein, krotonaldehyd a 4-pen-tenal·. «Jakožto příklady aromatických a heterocyklických alde-hydů obecného vzorce II, použitelných při způsobu podle vy-nálezu se uvádějí benzaldehyd, tolualdehyd, 3-fenylpropion-aldehyd, 2-fenylpropionaldehyd, furfural, 2-/2-furyl/acetal-dehyd, 3-furylakroIein, 3-fenylekrolein, 2-thiofenaldehyd, 3-/2-thienyl/akrolein, 3-/methylfenyl/akrolein a podobnéaromatické aldehydy. - 5 - S výhodou se při způsobu podle vynálezu používá aldehyčUobecného vzorce II, kde znamená R alkenylovou skupinu s 2až 6 atomy unlíku, alkynylovou skupinu s 2 až 6 atomy uhlí-ku nebo alkylovou skupinu s 1 až 6 atomy uhlíku substituo-vanou esterifikovanou karboxyskupinou, alkanoxyloxyskupinkus 1 až 4 atomy uhlíku nebo alkylovou skupinu s 1 až 6 ato-my uhlíku substituovanou arylalkoxyskupinou.
Zde používaným výrazem alkenylovou skupina s 2 až 6 a-tomy uhlíku se; míní uhlovodíková skupina s přímým nebo s roz-větveným řetězcem, jako je například skupina ethenylová, pro-penylová, butenylová, pentenylová a hexenylová skupina; "al-kynylovou skupinou" se míní uhlovodíková skupina s přímý# ne-bo rozvětveným řetězcem, jako je skupina ethynylová, propymy-lová, butynylová, pentynylová a hexynylová.
Alkylovou skupinou s 1 až 6 atomy uhlíku substituovanouesterifikovanou karboxyskupinou se míní alkylová skupina spřímým nebo s rozvětveným řetězcem substituovaná esterifi-kovanou karboxyskupinou, přičemž esterovým podílem je skupinaalkylová s 1 až 4 atomy uhlíku, fenylová, benzylová substitu-ovaná benzylová skupina, jako je skupina p-methoxybenzylo-vá., methylbenzylová, p-nitrobenzylová, difenylmethylová ne-bo- jakákoliv jiná běžná karboxyl: ' chránící skupina. Jakož- to příklady takových skupin se uvádějí skupina ethoxykarbonylmethylová, 2-/methoxykarbonyl/ethylová, 3-/terc.-butoxy-karbonyl/propylová, 3-/benzyloxykarbonyl/butylová, 5”/4—methoxybenzyloxykarbonyl/hexylová a podobné alkylové skupiny, sub-stituované esterifikovanými karboxyskupinami. Výrazem "alkylová skupina s 1 až 6 atomy uhlíku, substi-tuovaná alkoxyskupinou s 1 až 4 atomy uhlíku" se vždy mínímethoxymethylová skupina, 2-ethoxyethylová skupina, 4-tere.-butoxypentylová skupina, 3-isopropoxypentylové skupina, 2-ethoxyhexylová skupina a podobné skupiny. Výrazem alkylováskupina s 1 až 6 atomy uhlíku substituované atomem fluorunebo chloru" se vždy míní skupiny jako 2-fluorethylová sku-pina, 4—chlorbutylová skupina, 5—chlorpentylová skupina, - 6 - skupina chlormethylová, fluormethylová, 3-chlor-4-methylfe-nylová a podobné skupiny; výrazem "alkylová skupina s 1 až 6atomy uhlíku,substituované kyanoskupinou" se zde vždy mínískupiny jako skupina kyanmethylová, 2-kyanethýlové, 4-kyan-butylovó, 3-kyanbutylová, 5-kyanhexylová a podobné skupi-ny» výrazem "alkylová skupina s 1 až 6 atomy uhlíku,sub-stituované hydroxyskupinou" se zde vždy míní skupiny jakoskupina hydroxymethylovó, 2-hydroxymethylová, 4-hydroxybuty-lová, 3-hydroxypropylová, 3-hydroxyhexylovó a podobné skupinyvýrazem čélkylová skupina s 1 až 6 atomy uhlíku, substituo-nanó alkanoyloxyskupinou s 1 až 4 atomy uhlíku” se zde vždymíní skupina, jako je skupina 2-acetoxyethylová, 2-formyloxy-ethylovó, 3-acetoxypropylová, 4-propionoxybutylovó a podob-né skupiny; a výrazem "alkylová skupina s 1 až 6 atomy uhlíkusubstituovaná arylalkoxyskupinou" se zdá vždy míní benzyloxy-methylová , difenylmethoxymethylová, 4-benzyloxybutylová, 2-/4-methoxybenzyloxy/ethylová, 3-difenylmethoxypropylováskupina a podobné skupiny.
Obzvláště výhodnými aldehydy obecného vzorce II pro způ-sob podle vynálezu jsou aldehydy obecného vzorce II, kde zna-mená R alkenaldehyd obecného vzorce 0 ti
HC - 0¾ - CH2 - CH = CH - R jak shora definováno, nebo R znamená alkylovou skupinu s 1až 4 atomy uhlíku, substituovanou esterifikovanou karboxy-skupinou nebo alkenoyloxyskupinu. Jakožto příklady takovýchskupin se uvádí skupina 2-/methoxykarbonyl/ethylové, 2-/ben-zyloxykarbonyl/ethylová, 3-/e:thoxykarbonyl/propylová, 2-formyloxyethylová a 2-acetoxyethylová skupina.
Aldehydy obecného vzorce IIRCHO kde R má shora uvedený význam, jsou všechny o sobě známýmisloučeninami obchodně dostupnými nebo přepravitelnými o so-be známými způsoby. - 7 - Výhodný způsob přípravy podle vynálezu zahrnuje použitíaldehydu obecného vzorce II, kde znamená R 2-/esteri£ikova-ný karboxy/ethylovou skupinu, 2-kyanethylovou skupinu, 2-esterifikovany< karboxy/ethynylovou skupinu, 2-/esterifiko-vený karboxy/vinylovou skupinu, 3-/esterifikovaný karboxy/-propylovou skupinu, 2-formyloxyethylovou skupinu, 2-acet-oxymethylovou skupinu, 3-formyloxypropylovou skupinu nebo 3-acatoxypropylovou skupinu, přičemž esterovým podílem es-terifikované karboxyskupiny je alkylový podíl s 1 až 4 ato-my uhlíku, například skupina methylbvá, ethylová nebo terč.-butylová; podíl fenylový, benzylový, difenylmethylový, tri-tylový, nebo substituovaný benzylový, například skupina 4-methoxybenzylová nebo 4-nltrobenzylová. Jakožtó obzvláštěvýhodný aldehyd pro způsob podle vynálezu se uvádí sernial-dehydester kyselina jantarové. Jiným obzvláště výhodným al-dehydem je semialdehydester kyseliny glutarové.
Reakce probíhá podle následujícího schéma: RCČjH, + N^Cř^COOH R - CH/OH/ - GH /nHj/COO” kde R má shora uvedený význam.
Jak shora uvedeno, serinfeydroxymethyltransferasa jezískatelná z četných zdrojů. Třemi takovými zdroji jsou krá-ličí játra /LaVerne Schirch a Merle Mason, J. Biol. Chem. sv.237, číslo 8, srpen, 1962/, semenáčky kukuřice /Mssuda T.,a kol., Agric. Biol.· Chem. 1986, 50, 2763/ &amp; semenáčky faso-lí /Rao, D.N. a Rao N.A., Plant Physiol., 1982, 69, 11/. V následující tabulce I jsou uvedeny representativní al-dehydové substráty, které se převádějí způsobem podle vyná-lezu na ^-hydroxy-ýC -aminokyseliny za použití SHMT fcedvou zdrojů. Konverse substrátu podle tabulky I se provádíinkubováním substrátu a glycinu s SHMT za podmínek způsobupřípravy. Četné používané pracovní podmínky jsou společnévšem substrátům a jsou dále podrobně popsány. Jsou všakmožné také výjimky, na které bude upozorněno v každém pří-padě.
Inkubováni se provádí v 10 mM fosfátovém pufru, při - 8 - hodnotě ρϋ 7,3, přičemý pufr obsahuje pyridoxal-5'-fosfátv koncentraci přibližně 80 /UM. Pro nejlepší výsledky se ·všchny roztoky připravují z destilované a deionizované vody.Konverze se provádí při teplotě přibližně 37 °C v zatavenémikroodstředivkové fiole o obsahu 500 ^ul z polypropylenupři konstantní teplotě vodné lázně. Eiola se chrání přěd ~světlenu s výjimkou, kdy se vyjímá z vodní lázně pro vyjmutíalikvotu pro analýzu. V případě všech konverzí se provádíslepá enzymová inkubace paralelně s SEEMT inkubací. Celkovýobjem inkubační směsi je zpravidla přibližně 200 /ul. In-kubace v případě slepém zkoušky se provádí stejně jako inku-bace směsi s tou jedinou výjimkou, že enzym není obsažen.
ND
Tabulka I
Aldehydové /RCHO/ substráty pro SHM.T
Aldehyd /RCHO/ Enzym1 R = králičí játra -cr3 + -C^CÍ^CH-j + -C^CÍ^CC^CILj . -CBgCE^COg/Cí^/2 -co2r -Cí^CH^CHgCOgC^ -C/O/CH32
-CHgCHgCí^OCHO -CH^OCÍ^C^ 2-furyl 2-/2_furyl/ethyl
Kukuřičné demenáčky +
KB + +
KB + +
NB
ND + = konverze,
znamená nezjistitelnou konverzi, NB znamená nestanoveno 2/ v případě králičích jater je obsažen SHMT VO^" a v pří-padě kukuřice SHMT je přítomen tetrahydrodolát
Způsob se může monitorovat pro výrobu (b -hy&amp;rtyxy- d. -amonkyseliny odstraněním aliquotů z inkubační směsi, občas azkoušením vzorků HPLC chromátogrsdickým děleníma fluores-cenční detekcí o-ftalaldehydu odvozených isoindolů všech pri-márních sloučenin obsažených ve směsi. Zkušební postup po-psal Jones B-N.., Gilligan J.P., J. C^rom. 1983, 266, 471;
Hones B.N.., a .kol., J. L|q. Chrom. 1981, &amp;, 565 a Simins Jr., S.S. a kol., J. Am. Cuem. SJc. 1976, 98, 7098. Analýza HPLCjak inkubační směsi tak slepé zkoušky umožňuje stanovit kte-ří pík nebo které píky chromatogramů se mohou přičítat en-zymovým produktům.
Způsob podle vynálezu se provádí přidáním aldehydu k puf-rovanému roztoku glycinu obsahujícího PLP a jiný kodaktor apak smíšením roztoku s pudrovaným roztokem enzymu. Nebo pud-rovaný roztok, obsahující P&amp;P^ glycinu a roztok enzymu sesmísí a pak se přidá aldehyd. Je rovněž možné přidávat enzy-mový roztok do roztoku aldehydu a glycinu v přítomnosti PLPobsahujícího pudru.
Není řfcutné, aby aldehyd, obecného vzorce RCHO byl dokona-le roupuštěn v roztoku, k tomu, aby probíhal konversní proces.Aldehydy, které jsou toliko částečně rozpustné ve vodném re-akcním prostředí, mohou také sloužit jako enzymový substrát.
Způsob podle vynálezu, kdy aldehyd obecného vzorce RCHOje alifatickým aldehydem /například atom uhlíku vázaný nakarbonylovou skupinu aldehydové dunkce je nasycen, CH^/poskytuje přednostně L-erythro diastereomer tf\-hydroxy- Qy -aminokysliny nebo esteru,Jestliže je však aldehydový sub-strát aromatický /mapříklad atom uhlíku , vázaný na karbo-ny 1 aldehydové funkce je částí aromatického systému/, získáse produktjjak v threo tak v erythro formě vždy ve stejnémmnožství. Například benzaldehydová formfc. jak threo tak eryt.-hro isomerů β -fenylserinu.
Jakožto příklady/¾-hydroxy-^-aminokyselin, získaných 10 způsobem podle vynálezu, se uvádějí /3-fenylserin, β -/2-furyl/serin, fy-hydroxy- -eminoadipová kyselina, -hyd-roxy- -aminohexanoová kyselina, 0-hydroxy- ^-amino-ip -formyloxyhexanoová kyselina, (J-hydroxy- <?L -amino- -oxo-valerová kyselina, β -hydroxy- flU-amino- -fenylmáselná ky-selina, -hydroxy- qú.-aminoheptanoová kyselina, β-hydroxy-^-amino- uj -/2_furyl/pentanoová kyselina a podobné amino-kyseliny. Při výhodném provádění způsobu podle vynálezu se inkubu-je^ester semialdehydu jantarové kyseliny, například alkyl-ester s 1 až 4 atomy uhlíku, jako methylester nebo isopro-pylester s glycinem a s SHMT ve fosfátovém pufru v přítom-nosti PLP, čímž se získá poloester β -hydroxy- -aminoadi-pové kyseliny ve formě L-erythroisomeru. Při jiném výhodnémprovedení způsobu podle vynálezu se inkubuje ester semial-dehydu kyseliny glutarové, například methylester, se SHMTza vzniku poloesteru /S-hydroxy- &amp; -aminopimelová kyseliny. λ v
Shora uvedená provedení vynálezu objasňuje, následujícíschéma: 0
SHMT R1 OO/CH^CHO + ^NCi^COOH :> O OH NIL· .. i i
R10C-/CH2/n-CH-CH-C00H kde zanmená R^ skupinu alkylovou s 1 až 4 atomy uhlíku, fe-nylovou, benzylovou, difenylmethylovou, 4-methoxybenzylovounebo 4-nitrobenzylovou a n číslo 2 nebo 3.
Vynález se dálé týká aminokyseliny, Ú-hydroxy-©U -ami-noadipové kyseliny, jejích mono a di R^ esterů a solí obec-ného vzorce r ooc-ch2-ch2-ch/oh/ch/nh2/coor1 ' kde R.| má shora uvedený význam a R^ znamená atom vodíku ne-bo má stejný význam jako R. ,J-'ato aminokyselina se způsobempodle vynálezu získá v L-erythroformě. Soli dikyseliny nebo - 0 - její monoester se mohou připr&amp;vit o sobě známým způsobem.J-akové soli zahrnují soli s alkalickým kovem, jako jsousoli sodné a draselné, soli s kovem alkalické zeminy, jakojsou soli vápenatá a amoniové soli a aminové soli, jako jsousoli získané s benzylaminem, dibenzylaminem, cyklohexylami-nem, dicyklohexylaminem a alkylprimárními a sekundárními a-miny, přičemž alkylový podíl obsahuje 1 až 4 atomy uhlíku,například s methylaminem, ethylaminem, diethylaminem, di-/n-butyl/aminem, ethanolaminem, diethanolaminem, dipropanol-amihem. a podobné soli. Takové soli jsou užitečné pro izola-ci a čištění dikyseliny nebo jejího monoesteru a vytvářejístálé formy pro skladování aminokyselin. Připravují se takékyselé adiční soli s aminokyselinou a s jejím esterem. Tako-vé soli se vytvářejí s kyselinami, které jsou silnější nežkyselé skupiny karboxylové kyseliny aminokyseliny. Jakožtopříklady takových kyselin se uvádějí kyselina chlorovodíko-vá, kyselina bromovodíková, kyselina sírová, kyselina fosfo-rečná a kyseliny sulfonové, jako je kyselina toluensulfono-vá, naftalensulfonová, methansulfonová a n-butansulfonovákyselina. jejich esterů se vztahuje na monoestery a diestery,kde R^ má stejný význam, jako shora uvedeno v reakčním schéma.Jakožto příklady takových esterů se uvádějí monomethylester,monoethylester, dimethylester, diethylester, terč.-butyl-ester a di-terc.-butylester, benzylester, 4-methoxybenzyl-ester a dibenzylester.
Způsob/podle /vynálezu připravené -hydroxy- o( - /ami-nokyseliny jsou užitečnými meziprodukty pro důležité ^-lak-tamové sloučeniny. Produkty se převádějí o sobě známými způ-soby na fa -laktamové sloučeniny, které jsou užitečné propřípravu o sobě známých antibiotikových sloučenin. Napřík-lad /J-hydroxy- dC-aminokyseliny se převádějí na hydroxya-mátové deriváty a pak se cyklizují na 3-amino-4-substituova-H-é. -laktamové sloučeniny podle následujícího reakčníhoschéma: - 12 -
OH t H7N - CH - CH -Ro□ I c. c - o"
II o R1 ONH2 ->
OH »
HglL - CH - CH - RÓ - NH - OR,
It '
O
A
A
kde R má shora uvedený význam u obecného vzorce I a R^ zna-mená alkylovou skupinu, alkanoylovou skupinu nebo aralkylo-vou skupinu. Vytvoření hydroxyamátu a cyklizace hydroxyamátuna /3-laktam se provádí způsobem, který popsal Miller M. J.,Tetrahedron Lett., 1987, 28, 6257 a Kolasa T. a Miller M.J.,Tetrahedron Lett., 1987, 28, 1861·.
Nebo se fa -hydroxy- -aminokyseliny mohou převádět naN-/substituované methyl/azetidinony, jako popsal Miller M.3.,americký patentový spis číslo 4 595532. Dále se aminokyseli-nové produkty mohou převádět na N-/fosfonomethyl/azetidinonyzpůsobem, který popsal Miller M.J., americký patentový spisčíslo 4 820815. Následující způsoby přípravy a příklady praktického pro-vedení vynález objasňují, nijak jej však neomezují. Příklady provedení vynálezu Příprava serinhydroxymethyltransferasy z kukuřičných semenáč-ků Všechny následující operace se provádějí při teplotě 4°C.. Promyté 5 až 7 dní staré kukuřičné semenáčky se homo-genizují v Waringově mísiči ve 100 mM roztoku monohydrogen-fosfátu draselného obsahujícího 1 mM disodiumethylendiamin- 13 tetraacetát /EDTA/, 1 mM dithiothreitol a 1 25 ^uM pyridoxal-5 -fosfát. Směs obsahuje přibližně 960 g semenáčků na litrsměsi. Homogenát se zfiltruje plátnem na sýr a filtrát se vy-srání síranem amonným. Bílkovina se vysráží 35 až 50% amo-niumsulfátem po odstředění při 13800 x g po 40 minut, roz-pustí se v 10 mM fosfátovém pufru při hodnotě 7,8 obsahují-cím 125 /UM pyridoxal-5'-fosfáty v 1mM EDTA. Roztok se dia-lyzuje a zkoncentruje na 5 až 15 mg bílkoviny/ml v témžepufru v nepřítomnosti EDTA. Zkouška na aldosuvou aktivitubílkoviny sestává z kopulovaného systému mezi aldosou kataly-zovaného retroaldol L-allothreoninu s NADH /redukovaná formanikotinamidadenindinekleotidu/a redukcí vzniklého acetaldehy-du; kvasinkovou alkoholdehydrogenasou /ADH/. Specifická aktivi-ta je; 78 milijednotek/mg bílkovin. Jedna jednotka enzymové ak-tivity je definována jakožto množství enzymu potřebné způso-bit změnu optické jednotky hustoy /při 340 nm/ za minuty přiteplotě místnosti v přítomnosti ADH, 120 mM L-allothreoninu, 1 25 /UM PLP a 120 ^uM NADH ve 100 mM fosfátového pufru připH 7,5.
Nepoužitá SHMT se skladuje bučí v lyofilizované formě ne-bo ve zmrazené formě s 10 % glycerolu. V následujících příkladech praktického provedení, pokudnení jinak uvedeno, je pufrovým systémem 10 mM fosforečnandraselný, při hodnotě pH 7,3 a obsahuje pyridoxal-5'-fosfát/PLP/ v koncentraci přibližně 80 ^uM. Všechny roztoky se při-pravují v destilované deionizované vodě.
Inkubování enzymem se provádí při teplotě 37 v zata-vené fiole mikroodstředivky o obsahu 500 ^ul z polypropylenuve vodní lázni o konstantní teplotě.
Retenční doba, uváděná v příkladech se mění občas přiHPLC analýze v důsledku malých obměn takových faktorů, jako jesloupec, rovnováha, pufr a podobně. V následujících příkladech používaná SHMT je získána z krá-ličích jater /L. Schirch- supra/. 14 Příklad 1 Příprava threoninu Připraví se roztok glycinu /34 mM/ v PLP obsahujícím fos fátovém pufru a přidá se dostatečné množství čerstvě desti- lovaného acetaldehydu, aby byla koncentrace rovněž 34 mM. Při přidání do enzymového roztoku je koncentrace každého substrá- tu 17 mM.
Poztok SHMT /0,1 mg/ ve 200 yUl standardního fosfátové-ho pufru se vnese do 2 ml skleněné fioly. Přidá se stejný ob-jem substrátového roztoku a fiola se utěsní kaučukovou zátkoua měděným drátem ke snížení ztrát acetaldehydu na minimum.Tato fiola a enzymový slepý roztok se inkubují při teplotě37 °C.
Odeberou se slikvoty /10 ^ul/ 50 yul mikrolitrovcu stří-kačmcu při době inkubace 1,0; 2,$; 3,0; 4,0 a 20,5 hodin aanalyzují se HPLC.
Chromatogram ukazuje hlavní pík pro 1-erythrc isomerpři 21,9 minutách retenční doby a malý pík pro threoisomer;Identita aminokyselin produkovaných se potrvzuje současnýmvstřiknutím autentického obchodně dostupného threoninovéhoisomeru. Příklad 2 pC-Amino- -hydroxykaproová kyselina
Substrátový roztok se připraví rozpuštěním glycinu/25,5 mg, 0,340 mmol/ a n-butenalu /25,3 mg, 0,351 mmol/v 10 ml standardního fosfátového pufru, čímž se získá 34mM a 35 mM koncentrace obou jednotlivých substrátů.
Roztok SHMT /0,1 mg/ ve 100 /Ul pufru se vnese do 0,5ml polypropylenové fioly. Jiných 100 yul pufru bez enzymuse vnese do jiné fioly a do každé fioly se vnese 100 /Ulsubstrátového roztoku.
Odeberou se alikvotní roztoky z enzymového a ze slepé- ho roztoku po inkubaci 1,0; 3,0; 7,25; a 21 hodin a analy- «WSSKBcmStSKÍE? ' - 15 - lyžují se HPLC.
Ne chrcmětogramu se pozorují dva píky produktu, velkýpři 25,7 min a malý při 24,3 min. Píky odpovídají pikům au-tentického, racemického produktu. Autentický produkt se při-praví racemicky prováděnou aldolovou reakcí na měděném kom-plexu glycinu, S. Akebari a kol., Archives of Biochemistry andDiophysics 1959, 83, 1 a J.P. Greenstein a M.Winitz, “Che-mistry of Amino Acids" /Chemie aminokyselin/, John Wiley andSons, New York, 1961, sv. 3, str. 2249 až 2250. Příklad 3
Monomethylester kyseliny z^-amino- 3-hydroxyadipové
Glycin /13,3 mg, 0,177 mmol/ a methylester semieldehy-du kyseliny jantarové /20 mg, 0,172 mmol/ se rozpustí v 5,0ml pufru, čímž se získá 35 mM a 34 mM koncentrace příslušnýchlátek. Používaný aldehyd při této zkoušce je prost dimethyl-sulfoxidu, jakkoliv předšlé inkubace s tímto aldehydem vždyzahrnovaly nečistoty /zbylé po syntéze ozonolyzou sloučeninyvzorce CB2=CH-CH2CH2-COO-CH3 následovanou zpracováním dimethylsulfoxidem/.
Do roztoku*SHMT /0,1 mg/ ve 100 ^ul pufru se přidá 100yUl substrátové směsi. Alikvoty se odeberou po době inkuba-ce 0,5; 1,0; 2,0; 3,0; a 24 hodin. Pík produktu /L-erythro/ se pczoruje při t^ 22,5 minuta dosahuje svého maxima při dvou hodinách. V průběhu počátečních dvou hodin se objevuje malý novýpík při HPLC analýze s retenční dobou přibližně 8 minut. V průběhu 24 hodinové periody tento pík roste v intenzitězatímco píky odpovídající výchozímu glycinu a methylesterukyseliny cL-amino- β-hydroxyadipové ubývají. Po 24 hodi-nách je poměr nového píku k píku glycinu a esteru 38 : 47 * 15. Struktura sloučeniny, odpovídající novému píku, stano-vena jako L-erythro- 0Ú amino- yj-hydroxyadipové kyselina 16 - /R= C^-CÍ^-CC^H/ nezávislou syntézou a současným vstřiknutím autentického pro-duktu s produktem připraveným enzymaticky. Cftemická syntézaautentického produktu se provádí aldolovou kondenzací methyl-esteru semieldehydu jantarové kyseliny s enolátem boru chi-rálního oxazinu /Reno, D.S., Loth B.T., Miller M.J. Tetra-hedron Lett. 1990, 31, 827/ následovanou odstraněním chrání-cích skupin a hydrolyzou na žádanou sloučeninu.
Vytvářením této matečné aminokyseliny v průběhu enzy-matické syntézy probíhá hydrolyzou počátečně produkovanéhomethylesteru aminokyseliny. Jelikož má produkt přídavně ioni-zovanou skupinu karboxylové kyseliny, není substrátem proenzymatickou reversní aldolovou kondenzaci; proto se nový a-minokyselinový produkt /L-erythro- οζ -amino- $ -hydroxyadi-pová kyselina/ akumuluje. Jakožto dikarboxylová kyselina ami-nokyselinový produkt se může vyčistit z reakčni směsi ione-xovou chromatografií /Greenstein J.P., Wimitz M., "Chemis-try of the Amino Acids” /Chemie aminokyselin/, svazek 2,str.. 1452 až 1460, Wiley, New York, N.Y, 1961/ Přiklad 4 řdonoisopropylester kyseliny j^-amino- y2>-hydroxyedipové
Glycin /26,2 mg, 0,348 mmol/ se rozpustí v 10,0 mlpufru a is.oprópylesteri semialdehydu kyseliny jantarové/34 mg/ /obsahující dimethylsulfoxid jakožto nečistotu za-vlečenou z jeho přípravy/ se přidá. Přítomnost dimethyl-sulfoxidu při inkubaci nemá nepříznivého vlivu na enzymnebo na průběh reakce. Koncentrace aldehydu v pufru popřihlédnutí k přítomnému dimethylsulfoxidu je 18 mmolární.Plčáteční koncentrace glycinu a aldehydu v inkubační smě-si je 17,4 mM a 9 mM.
Substrátová směs /100 yul/ se vnese do roztoku SHMT/0,1 mg/ v 100 /Ul pufru a do slepé zkoušky.
Alikvoty se odeberou po době inkubace 0,5; 1,0; 2,0; 17 - 4,0; 6,0; 17,25; 25 a 52 hodin a zkouší se HPLC. Hlavní píkproduktu /L-erythro/ se objeví při T^25 minut v průběhu0,5 hodin a roste k maximu za 2 až 4 hodiny. Příklad 5
Monomethylester kyseliny ^C-amino- β -hydroxypimelové
Methylester semialdehydu kyseliny glutarové, použitý při té-to inkubaci, obsahuje dimethylsulfoxid v množství, vyjádřenémpoměrem 1 : 1. Dimethylsulfoxid je vedlejším produktem z pří-pravy aldehydu ozonolyzou 1-methoxycyklopentenu, kt§rá zahr-nuje při zpracování dimethylsulfoxid /Oline D.L.J., Russel,C.G., Tetrahedron 1980, 36, 1399/. Substrátový roztok se při-praví rozpuštěním glycinu /25,6 mg, 0,341 mmol/ a směsi al-dehydu/dimethylsulfoxidu /66,7 mg/ v 10,0 ml pufru k dosa-žení koncentrace glycinu a aldehydu 34,1 a přibližně 25 mM.
Enzymový roztok sestává z 0,1 mg SHMT rozpuštěného ve40 /ul pufru raději než 100 /ul. Přidá se substrátový roz-tok/40 yul/ do enzymu a zároveň slepý roztok se inkubujíjako obvykle. Odebírají se alikvoty /10 /ul/ po 0,5; 1,0; 1,5; 2,0; 3,©; 4,0 a 17,0 hodinách. Po 0,5 hodinách se ob-jeví enzymem produkovaný pík v HPLC při 23,7 min odpovída-jící žádanému produktu a příslušející přibližně 20% výtěž-ku. Druhý, malý enzymem navozený pík se objeví při retenčnídobě 22,3 minut, což může odpovídat menšímu množství threoisomeru. Příklad 6 .ρ^,-Amino— $ -hydroxy- J^-oxovalerová kyselina
Glycin /25,5 mg, 0,340 mmol/ a aldehyd pyrohroznový/61,1 mg 49% /hmotnostně/ roztoku, 0,327 mmol aldehydupyrohroznového/ se rozpustí v 1 ml pufru při hodnotě pH 7,2 na koncentraci. 34 mM /glycin/ a 32,7 mM /aldehyd py-rohroznový/ v zásobním roztoku. Přidá se metavanadátosdný /1,5 mg 90% čisté sloučeniny, Aldrich/. Po přibližně 18 - min 30v'dojde k rozpuštění, čímž se získá koncentrace 1,11 mM.
Do enzymového roztoku /0,1 mg SHMT v 80 ^ul/ se přidá80 /UL substrátového roztoku. Odejmou se alikvoty /10 yul/po inkubační době 0,5} 1,0; 2,0; 3,0; 5,0; 29 a 53 hodin.
Aminokyselinová analýza HPLC indikuje novou aminokyse-linu s Retenční dobou 8,5 minut. K potvrzení, že jde o žáda-nou aminokyselinu se připraví autentický racemický materiálpostupem s glycinátem mědi. £ak se rozpustí 4,23 g glyciná-tu měSnatého /20 mmol/ v '10 ml 9M vodného roztoku hydroxidudraselného. Přidá se aldehyd pyrohroznový /16,2 ml hmotnost-ně %0% roztoku ve vodě, což odpovídá 7,0 g, 9,71 mmol alde-hydu/. Po 5,25 hodinách se přidá 3M hydroxid amonný /40 ml/do vzniklého hnědého roztoku a rozpouštědla se odpaří, čímžse získá hnědý olej. O-,ej se vede sloupcem Dowex-50 /+NH^forma/, eluuje se vodou, čímž se získá polovyčištěná amino-kyselina. Příklad 7 g(.-Amino- fy -hydroxy-6-formyloxyhexanoová kyselina
Aldehyd při této inkubaci opět obsahuje značné množstvídimethylsulfoxidu ze své přípravy ozonolyzou dihydropyranunásledovanou zpracováním dimethylsulfoxidem. Do 10,0 mlpufru se přidá 0-formyl-4-hydroxybutanal /39,5 mg, přib-ližně 0,20 mmol, připouštějící dimethylsulfoxid/ a glycin/25,5 mg, 0,340 mol/. Přidá se substrátový roztok /40 ^ul/ do enzymového roz-toku /0,1 mg SHMT v 40 /Ul/ a do slepého roztoku. Koncen-trace obou substrátů v inkubační směsi je 17 mM /glycinu/ a10 mM /aldehydu/. Alikvoty /10 /Ul/ se pak odebírají poinkubační době 0,5; 1,0; 2,0; 3,® 7,0; a 24 hodin. Z prvního alikvotu, odebraného po 0,5 hodin, se po-tvrzují dvě nové aminokyseliny. Malý pík se objevuje po15,6, minutách právě po glycinovém píku. Glycinu patří vel-ký, ostrý pík při 22,5 minutách. %l3 hodiny, 22,5 minutovýpík, odpovídající očekávané aminokyselině, dosahuje maxima - 19 - při přibližně 10 % glycinového píku a pak pomalu klesá, za-tímco pík při 15,6 min pomalu zvyšuje intenzitu. Aminokyse-lina, etluovaná při 15,6 min je produktem pomalé hydrolyzyformátového esteru v reakčním prostředí. Struktura odpoví-dá £ -amino-hydroxy-6-hydroxyhexanoové kyselině. Příklad 8 -Penylserin
Používaný pufrový roztok obsahuje PLP v 160 ^uM koncen-traci místo 80 /UM. Benzaldehyd se destiluje bezprostředněpřed použitím. Pufrový roztok se deoxygenuje probublávánimdusíku^ před přidáním substrátu. Tato deoxygenace se provádíproto, aby se snížilo nebezpečí oxdidace benzaldehydu v roz-toku. V. 10,0 ml pufru se rozpustí glycin /25,4 mg, 0,338 mmol/a benzaldehyd /35 /ul, 0,3^4 mmol/. Tento roztok /100 /ul/se přidá do 100 yul SHMT roztoku /0,1 mg enzymu/. Alikvotyse odebírají po inkubaci 1,0; 5,25 a 7,0 hodin.
Dva píky produktu se jeví na chromatogramu, větší při24,8 min a menší při 23,7 min. Směs; produktu při tétozkoušce se porovnává s autentickým racemickým, obchodně do-stupným p-fenylserinem. Píky z obou směsí přesně souhlasí.Také při sro vnávání souhlasu s autentickým threo-/5 -fenyl-serinum je menší pík podporován se zřetelem na pozdější pík.Tyto výsledky indikují, že enzym vytváří dvojice enantiome-rů aromatických aminokyselin avšak podporuje vytvořeníerythroisomerů.
Příklad S ť^-Amino-^ hydroxy- ..^-/2-furyl/propionová kyselina Při tomto příkladu používaný 2-furfural se připravujedvěma destilacemi na uhličitanu sodném se druhou destilaciv prostředí dusíku. Destilovaný aldehyd se skladuje předpoužitím, vysuší se v prostředí dusíku a chrání se před 20 světlem.
Substrátový roztok se připraví rozpuštěním glycinu /14,0mg, 0,186 mmol/ a formaldéhydu /15,5 /Ul, 0,187 mmol/ v puf-ru. /10,0 ml/. Jestliže se 360 yul tohoto roztoku přidá doroztoku enzymu /0,2 mg SHMT ve 40 /Ul/, je koncentrace kaž-dého substrátu 17 mM.
Odeberou se alikvoty /10 /Ul/ za 1,0; 2,0; 49; 5,0; 18, 24, 72 a 114 hodin» V průběhu jedné hodiny se produku-jí dvě nové aminokyseliny, jak se zjistí HPLC analýzou. Většípík odpovídá jednomu isomeru a má retenční dobu 21 až 22 mi-nut, zatímco menší pík /více než 50 % většího píku/ odpoví-dá jinému /threo/ isomeru a má retenční dobu 19 až 20 min. Příklad 10 ^-Amino- /$ -hydroxy- -/2-furyl/valerová kyselina
Substrátový roztok se připraví rozpuštěním glycinu /25,5mg, 0,340 mmol·/ a aldehydu /46,3 mg, 0,373 mmol/ v 10,0 mlpufru.' Aldehyd /kapalina/ se rozpustí v průběhu přibližně 15minut. Přidá se substrátový roztok /100 /Ul/ do roztoku enzy-mu /0,1 mg SHMT ve 100 yUl pufru/ a inkubuje se při teplotě37 °C. Odeberou se alikvotní podíly po 0,55; 1, 2, 4,25; 8a 21 hodinách. Za půl hodiny se vytvoří pík s retenční dobou 21,3 min podle HPLC analyzy, indikující přibližně 3% konver-zi- glycinu na aldolový produkt. Příklad 11 Získá se ^C-amino--hydroxyhex-5-ynoové kyselinashora popsanými inkubečními způsoby za použití propargyl-aldehydu. Příklad 12 Získá se 5^-amino- b -hydroxyhex-5-enoová kyselina - 21 shora popsanými inkubačními způsoby za použití allylaldehy- du. Příklad 13 Získá se íC-amino-y^ -hydroxypent-4-enoová kyselinashors popsanými inkubačními způsoby za použití akroleinu. Příklad 14 Získá se OÍ-amino- β -hydroxy-^/"-kyanovalerová kyse-lina za použití shora popsaných inkubačních způsobů a fl? -kyanopropionaldehydu.
Průmyslová využitelnost Výhodný enzymatický způsob přípravy ^-hydroxy- -a-minokyselin, který je možno provádět ve vodném prostředí zamírných podmínek a stereoselektivně. JUDr. Otakar ŠVORČÍKadvskáí

Claims (9)

  1. - 22 PATENTOVÉ NÁROKY
    1 . Způsob přípravy -hydroxy- -aminokyseliny,něho vzorce I ~i!vď] Hýf OH I -jH. k /1/ ΛΛ3Γ0Ο V,AZ3TyMÁA OHdavyn t 6 (A ,'S 0 aiS5fl O kde znamená R
    skupinu alkenylovou s 2 až 6 atomy uhlíku, alk nylovous 2 až 6 atomy uhlíku, alkylovou s 1 až 6 atomy uhlíkusubstituovanou esterifikovanou karboxyskupinou, alkoxy-skupinou s 1 až 4 atomy uhlíku, atomem fluoru, chlorunebo bromu, kyanoskupinou, hydroxyskupinou, alkanoyl-oxyskupinou s 1 až 4 atomy uhlíku, fenylovou skupinou,furylovou skupinou nebo benzyloxyskupinou, nebo zna-mená fenylovou nebo furylovou skupinu, vyznačený tím, že se mísí při teplotě přibližně 30 ež přib-ližně 55 °G ve vodném roztoku při hodnotě pH přibližně 5,5až přibližně 9 aldehyd obecného vzorce II RCHO //// kde R má shora uvedený význam a glycin se serinhydroxy-methyltransferasou v přítomnosti pyridoxa^-5 * -fosfátu.
  2. 2. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím , že se používá aldehydu obecného vzorce II, kde znamená R alkenylovou sku-pinu s 2 až 6 atomy uhlíku, alkynylovou skupinu s 2 až 6atomy uhlíku nebo alkylovou skupinu s 1 aŽ 6 atomy uhlíkusubstituovanou esterifikovou karboxyskupinou, alkanoyloxy-skupinou s 1 až 4 atomy uhlíku nebo alkylovou skupinou sub-stituovanou arylalkoxyskupinou. - 23 -
  3. 3. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se používáaldehydu obecného vzorce II, kde znamená R alkylovou skupi- * , nu s 1 až 4 atomy uhlíku, substituovanou esterifikovanou * karboxyskupinou nebo alkenoyloxyskupinou s 1 až 4 atomy uhlí- ,
  4. 4. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se používáaldehydu obecného vzorce II, kterým je o w R3 00-/01^/ CHO kde znamená R^ alkylovou skupinu s 1 až 4 atomy uhlíku, sku-pinu benzylovou, difenylmethylovou, 4-methoxybenzylovou nebo 4-nitrobenzylovou a n 2 nebo|3. 5«. Způsob podle bodu 4, vyznačený tím, že aldehydem obec-ného vzorce II je methylester semialdehydu kyseliny jantarové.
  5. 6. Způsob podle bodu 4, vyznačený tím, že aldehydem obec-ného vzorce II je^methylester semialdehydu kyseliny glutarové.
  6. 7. Způsob podle bodu 1, vyznačený tím, že se používá al-dehydu obecného vzorce II, kde znamená R alkylovou skupinu a 1 až 6 atomy uhlíku, substituovanou esterifikovanou kar-boxy skupinou, alkanoyloxyskupinou s 1 až 4 atomy uhlíku,fenylovou skupinou, furylovou skupinou nebo benzyloxysku-pinou.
  7. 8. Způsob podle bodu 7, vyznačený tím, že připravovaná * i^-amino- /3 -hydroxykyselina je L-erythrodiastereomer.
  8. 9. Sloučenina v L-erythrodiastereomerní formě obecnéhovzorce OH KHq i i R 0C/0/-CH2_CH2-CH-CH-C/0/0R1 .kde znamená r a Rsj ' na sobě nezávisle atom vodíku nebo skupinu alky-lovou s 1 až 4 atomy uhlíku, benzylovou, 4-methyl- - 24 - benzylovou, 4-nitrobenzylovou a difenylmethylovou a její soli s alkalickým kovem, s kovám alkalické zeminy,amoniové a aminové a v případě, kdy R^ a R^ znamenají vždyatom vodíku také její adiční soli s kyyelinami.
  9. 10. Sloučenina podle bodu 9, kde znamená R^ alkylovouskupinu s 1 až 4 atomy uhlíku.
CS911645A 1990-06-04 1991-05-31 Process for preparing beta-hydroxy-alpha aminoacids CS164591A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US53284590A 1990-06-04 1990-06-04

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS164591A3 true CS164591A3 (en) 1992-01-15

Family

ID=24123416

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS911645A CS164591A3 (en) 1990-06-04 1991-05-31 Process for preparing beta-hydroxy-alpha aminoacids

Country Status (20)

Country Link
EP (1) EP0460883B1 (cs)
JP (1) JPH0787989A (cs)
KR (1) KR920000701A (cs)
CN (1) CN1058046A (cs)
AT (1) ATE147785T1 (cs)
AU (1) AU637705B2 (cs)
CA (1) CA2043761A1 (cs)
CS (1) CS164591A3 (cs)
DE (1) DE69124143T2 (cs)
DK (1) DK0460883T3 (cs)
ES (1) ES2099135T3 (cs)
FI (1) FI912626A7 (cs)
GR (1) GR3022558T3 (cs)
HU (1) HU212925B (cs)
IE (1) IE911879A1 (cs)
IL (1) IL98312A0 (cs)
NO (1) NO912120L (cs)
NZ (1) NZ238342A (cs)
YU (1) YU97891A (cs)
ZA (1) ZA914201B (cs)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0628638A3 (en) * 1993-05-25 1995-09-06 Lilly Co Eli Process for the preparation of 2-amino-3-hydroxy-carboxylic acids.
JP4032441B2 (ja) * 1995-08-30 2008-01-16 味の素株式会社 L−アミノ酸の製造方法
CN1062603C (zh) * 1996-01-31 2001-02-28 中国科学院大连化学物理研究所 酶法生产d-对羟基苯甘氨酸的膜反应方法
CA2234412C (en) * 1997-06-09 2008-09-02 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Method for producing optically active compound
WO2003090918A1 (en) 2002-04-26 2003-11-06 China Petroleum & Chemical Corporation Downflow catalytic cracking reactor and use thereof
DE102007020246B4 (de) 2007-04-24 2012-12-27 Schott Ag Metallkolloidgefärbte oder farblose Glaskeramik und in eine metallkolloidgefärbte oder farblose Glaskeramik umwandelbares farbloses Glas
US20160326157A1 (en) * 2014-01-06 2016-11-10 President And Fellows Of Harvard College Monobactams and methods of their synthesis and use
EP3630798B1 (en) * 2017-05-27 2022-11-23 Enzymaster (Ningbo) Bio-Engineering Co., Ltd. Engineered aldolase polypeptides and their applications in synthesis of beta-hydroxy-alpha-amino acids
CN114657221A (zh) * 2020-12-22 2022-06-24 安徽华恒生物科技股份有限公司 一种d-泛酸的制备方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3871958A (en) * 1972-03-04 1975-03-18 Ajinomoto Kk Biological method of producing serine and serinol derivatives
JPS59109187A (ja) * 1982-11-19 1984-06-23 ジェネックス・コーポレイション L−セリンの酵素的合成方法

Also Published As

Publication number Publication date
DK0460883T3 (da) 1997-07-14
CA2043761A1 (en) 1991-12-05
EP0460883A2 (en) 1991-12-11
ES2099135T3 (es) 1997-05-16
KR920000701A (ko) 1992-01-29
GR3022558T3 (en) 1997-05-31
ZA914201B (en) 1993-02-24
FI912626L (fi) 1991-12-05
IL98312A0 (en) 1992-06-21
FI912626A7 (fi) 1991-12-05
AU7814691A (en) 1991-12-05
FI912626A0 (fi) 1991-05-31
ATE147785T1 (de) 1997-02-15
DE69124143T2 (de) 1997-05-22
EP0460883A3 (en) 1992-11-19
NO912120D0 (no) 1991-06-03
IE911879A1 (en) 1991-12-04
DE69124143D1 (de) 1997-02-27
EP0460883B1 (en) 1997-01-15
CN1058046A (zh) 1992-01-22
YU97891A (sh) 1994-01-20
HU212925B (en) 1996-12-30
HUT61597A (en) 1993-01-28
HU911854D0 (en) 1991-12-30
NZ238342A (en) 1993-10-26
JPH0787989A (ja) 1995-04-04
AU637705B2 (en) 1993-06-03
NO912120L (no) 1991-12-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2637821A1 (en) Process for the preparation of optically active chiral amines
Rando Mechanism of the irreversible inhibition of γ-aminobutyric acid-α-ketoglutaric acid transaminase by the neurotoxin gabaculine
OZAKI et al. Regulation of the TCA and glyoxylate cycles in Brevibacterium flavum: II. Regulation of phosphoenolpyruvate carboxylase and pyruvate kinase
Soda et al. L-lysine-. alpha.-ketoglutarate aminotransferase. I. Identification of a product,. DELTA. 1-piperideine-6-carboxylic acid
Silverman et al. Mechanism of inactivation of. gamma.-aminobutyric acid-. alpha.-ketoglutaric acid aminotransferase by 4-amino-5-halopentanoic acids
CS164591A3 (en) Process for preparing beta-hydroxy-alpha aminoacids
Laber et al. Mechanisms of interaction of Escherichia coli threonine synthase with substrates and inhibitors
US3871958A (en) Biological method of producing serine and serinol derivatives
KR100810169B1 (ko) 아스파르테이트를 사용하여 효소적 아미노기 전달반응에의해 엘-포스피노트리신을 제조하는 방법
Bearne et al. Glutamate. gamma.-semialdehyde as a natural transition state analog inhibitor of Escherichia coli glucosamine-6-phosphate synthase
Chase et al. A coenzyme A analogue, desulpho-coA; preparation and effects on various enzymes
NO166083B (no) Analogifremgangsmaate ved fremstilling av terapeutisk aktive pyridazodiazepinderivater.
EP1897956A1 (en) Process for preparation of optically active amines by optical resolution of racemic amines employing a bacterial omega-transaminase
EP0175312B1 (en) Process for preparing optically active hydantoins
CS224638B2 (en) Method of enzymetic cleavage d,l-2-amino-4-methylphosphinebutyric acid
US5266468A (en) Process for preparing β-hydroxy-α amino acids
CZ20003223A3 (cs) Způsob enzymatického dělení enantiomerů 3(R)- a 3(S)-hydroxy-1-methyl-4(2,4,6-trimethoxyfenyl)-1,2,3,6-tetrahydropyridinu, popřípadě esterů karboxylových kyselin
Bailey et al. Synthesis of 4a-hydroxytetrahydropterins and the mechanism of their nonenzymic dehydration to quinoid dihydropterins
Gamini Kannangara et al. Biosynthesis of Δ-aminolevulinate in greening barley leaves: Glutamate 1-semialdehyde aminotransferase
Guibé-Jampel et al. Enantioselective hydrolysis of racemic diesters by porcine pancreatic lipase
TRINCHANT et al. Lactate dehydrogenase from Rhizobium. Purification and role in indole metabolism
Westerik et al. Aspartic-β-Semialdehyde: A Potent Inhibitor of Escherichia coli l-Asparaginase
Fulston et al. Clavulanic acid biosynthesis; the final steps
NAM et al. Enzymatic synthesis of phenoxymethylpenicillin using Erwinia aroideae enzyme
NZ225806A (en) Process for the resolution of dialkylphosphinoyl hydroxy acetic acid esters, the acid so obtained, and plant growth control compositions containing it