CZ253395A3 - Method of controlled activation and degradation of factor vii during purification process - Google Patents

Method of controlled activation and degradation of factor vii during purification process Download PDF

Info

Publication number
CZ253395A3
CZ253395A3 CZ952533A CZ253395A CZ253395A3 CZ 253395 A3 CZ253395 A3 CZ 253395A3 CZ 952533 A CZ952533 A CZ 952533A CZ 253395 A CZ253395 A CZ 253395A CZ 253395 A3 CZ253395 A3 CZ 253395A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
fvii
buffer
nacl
activation
degradation
Prior art date
Application number
CZ952533A
Other languages
English (en)
Inventor
Tony Jorgensen
Anders H Pedersen
Original Assignee
Novo Nordisk As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Novo Nordisk As filed Critical Novo Nordisk As
Publication of CZ253395A3 publication Critical patent/CZ253395A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6437Coagulation factor VIIa (3.4.21.21)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12Y304/21021Coagulation factor VIIa (3.4.21.21)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Catalysts (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Oblast techniky
Tento vynález se týká způsobu regulované aktivace a degradace faktoru VII během jeho čištění.
Dosavadní stav techniky
Koagulační faktor VII (FVII) je serinová proteasa závislá na vitaminu K, která hraje klíčovou roli ve vnější cestě srážení krve. Je syntetizován v játrech a sekretován do krve, kde obíhá jako jednořetězový glykoprotein (zymogen) s molekulovou hmotností kolem 50 000. Ve své aktivní formě, FVlIa, tato proteasa katalyzuje aktivaci dvou jiných koagulačních faktorů ze skupiny serinových proteas závislých na vitaminu K, faktoru IX (FIX) a faktoru X (FX).
Aktivovaný FX (FXa) pak převádí protrombin na trombin. Trombin pak převádí fibrinogen na fibrin, hlavní složku sraženiny.
t>
Faktor VII se může čistit z plasmy a aktivovat na faktor Víla způsoby popsanými Brožem a Majerusem: J. Biol, Chem. 255(4). 1242 (1980) a Hednerem a Kisielem: J. Clin. Invest. 7i, 1836 (1983).
Faktor Vila se může vyrábět technologií rekombinantní DNA kultivováním savčích buněk transfektovaných DNA sekvencí kódující faktor VII v příslušném mediu, isolováním připraveného proteinu a aktivováním tohoto proteinu na faktor VIIA (viz evropská patentová přihláška č. 86302855.1).
Faktor Víla se může používat pro léčení pacientů, kteří mají vyvinuté inhibitory na faktor VIII (Hedner U. a Kisiel W.:
J. Clin. Invest. 71. 1836 (1983) a pro léčení pacientů trpících poruchami krvácení, jako jsou poruchy krevních destiček včetně trombocytopenie, von Willebrandova choroba a další, typicky se vyskytující v případech se silnými poškozeními tkáně (evropská patentová přihláška č. 86309197.1).
Během čištění hovězího proteinu, pocházejícího z plasmy (Radcliffe a Nermerson: J. Biol. Chem. 250. 338 (1975) a lidského rekombinantního proteinu (Thim a spol.: Biochemistry 27, 7785 (1988), byl FVII aktivován na formu o dvou řetězcích hydrolýzou vazby Argl52-Ile153. Aktivace FVII se velmi zvýší adsorpcí na anexech (diethylaminoethylovou skupinou nebo trimethylaminoethylovou skupinou modifikované oolymerní gelové matrice) (A.H.Pedersen a spol.: Biochemistry 28, 9331 (1989).). Mechanismům, kterým se aktivace FVII zvýší, není znám. Vedle aktivace se část molekul FVIIa autodegradací štěpí primárně v polohách 290 a/nebo 315 (E.M.Nicolaisen a spol.: FEBS Lett. 317, 245 (1993).). Tyto degradační produkty jsou neaktivní molekuly a jejich výskyt v prostředku faktoru Vila povede k nižší specifické aktivitě konečného prostředku. A dále, množství a povaha degradačních produktů se může měnit od jedné várky produktu k jiné, takže se získávají prostředky s proměnlivým obsahem biologicky aktivního faktoru Vila. Obsah degradačních produktů v konečném prostředku může spustit imunní systém pacienta. Další podání pak vede k alergickým reakcím, které mohou mít v horších případech smrtelný průběh. U pacientů se mohou také vyvinout vysoké titry protilátek proti faktoru Vila, což způsobuje, že následující léčení je obtížné nebo neúčinné.
Pro přípravu vyčištěného FVIIa produktu s nízkým obsahem degradačních produktů je podstatné kontrolovat aktivaci a zabraňovat degradaci během procesu čištění a během následného zpracování. Na rozdíl od FVIIa ve formě jediného řetězce je FVII resistentní nebo mnohem méně náchylný ke štěpení v těžkém řetězci. Může být tedy výhodné čistit FVII v jeho formě jediného řetězce.
Účelem tohoto vynálezu je tedy získat způsob čištění FVII, při kterém se lze vyhnout aktivaci a degradaci nebo při kterém l2e aktivaci a degradaci udržet na přijatelné nízké úrovni a získat tak homogenní produkt o vysoké čistotě, který pak lze v dalším stupni dále aktivovat na FVIIa ve vysokých výtěžcích. Získá se tak jendotný a homogenní produkt s vysokou specifickou aktivitou.
Je známo, že zinečnaté ionty inhibují amidolytickou a proteolytickou aktivitu rekombinantního FVIIa (Pedersen A.H. a spoi.: Thrombosis and Haemostasis 65, 528 (1991).). Překvapivě bylo nyní zjištěno, že přidání zinečnatých iontů lze použít ke kontrole autoaktivace FVII a k zabránění degradace FVII/FVIIa během čištění chromatografiemi na koloně.
Podstata vynálezu
Ve svém nejširším aspektu se tento vynález týká způsobu regulování aktivace a degradace FVII během čištění, při čemž se roztok faktoru VII podrobí četnýmchromatograf ickým čistícím. stupňům, při čemž Zn** jsou přítomny alespoň v jednom čistícím stupni.
V užším aspektu se tento vynález týká způsobu regulované aktivace a degradace FVII, při čemž se roztok FVII nanese na několik anexových a imunoafinitních kolon.
Ve výhodném uspořádání podle tohoto vynálezu se roztok FVII nanese na chromátografické kolony v následujícím pořadí: 1) anex, 2) imunoafitnitní kolona, 3) anex, 4) anex, při čemž Zn** jsou přítomny alespoň v prvních dvou stupních.
Obr.*l ilustruje aktivaci FVII v přítomnosti anexových kolon s různými koncentracemi Zn+*.
Obr. 2 ilustruje aktivaci rFVlI na rFVIIa během schémat čištění obsahujících v jednom nebo více čistících stupních Zn** v pufru.
Podmínky pro schéma A až E jsou uvedeny v tabulce I, výsledky jsou uvedeny v tabulce II.
Obr. 3 ilustruje degradaci FVIIa během schémat čištění obsahující Zn+* v pufru v jednom nebo více čistících stupních.
Podmínky pro schémata A až E jsou uvedeny v tabulce I, výsledky jsou uvedeny v tabulce II.
Před předložením vynálezu může být užitečné porozumět definicím některých pojmů, které se zde dále používají.
Pojem FVII zahrnuje FVII isolovaný z. plasmy nebo připravený technologií rekorabinantní DNA. Zahrnuje také allelové varianty, které mohou existovat a vyskytovat se od jednoho jednotlivce k druhému, a FVII proteiny modifikované delecemi a/nebo substitucemi zbytků aminokyselin, které po aktivaci mají stejnou nebo v podstatě stejnou biologickou aktivitu na srážení krve jako endogenní lidský FVIIa.
Pojem FVII podle shora uvedené definice zahrnuje také FVII proteiny s variacemi ve stupni a umístění glykosylace a/nebo jiných posttranslačních modifikací podle zvolených hostitelských buněk a podmínek kultivace, jestliže je exprimován technologií rekombinantní DNA.
Pojem biologická aktivita FVIIa se vyznačuje zprostředkováním srážení krve vnější cestou.
FVIIa aktivuje FX na FXa, který dále převádí protrombin na trombin a tím iniciuje tvorbu fibrinové sraženiny.
Pojem regulovaná aktivace a degradace zahrnuje proces aktivace a degradace FVII během Čištění podle zamýšlených regulovaných změn daného parametru (v tomto případě jde o pří5 tomnost Zn4‘).
V nepřítomnosti Žn** se parametry procesu čistění musí upravit podle současně probíhající aktivační a degradační reakce. V přítomnosti Zn** je možné regulovat tyto reakce nezávislým optimalizováním čištění a aktivace.
Lidský FVII se s výhodou exprimuje v transfektovaných savčích buňkách ledvin křečka BHK (Baby Hamster Kidney), jak je popsáno v evropské patentové přihlášce č. 86302855.1. Kultivační medium obsahující FVII a proteiny stimulující růst buněk se před chromatografickým čištěním oddělí od těchto buněk odstřelováním a filtrací.
Pro čištění se FVII adsorbuje na různých typech chromatograf ických matric, jako jsou : katexy, anexy, imunoafitnitní matrice, cheláty kovů, matrice afinitní na barviva, matrice s hydrofobními interakcemi a afinitní matrice s iroobilizovanými bio-specifickými ligandy. Mechanismus, kterým se FVII adsorbuje na různé matrice, je různý, a tedy vliv Zn++ na aktivaci FVII může být různý, ale stále ještě významný během adsorpce na různé typy chromatografických matric.
Zinečnatá sůl se může přidat k jednomu nebo více roztokům eluátu a pufrů používaných pro ekvilibraci a eluci. Zinečnatou solí může být jakákoliv rozpustná zinečnatá sůl, jako je octan zinečnatý, citran zinečnatý, chlorid 2inečnatý nebo,síran zinečnatý.
Koncentrace Zn*+ je mezi 10 μΜ a 1 mM, s výhodou mezi 20μΜ a lmM, výhodněji mezi 40μΜ a lmM.
Následné aktivace vyčištěného FVII na FVIIa se může dosáhnout použitím FXIIa, jak popsali Hedner a Kiesel (J. Clin. Invest. 71, 1836 (1983).) nebo jinými proteasami, které mají trypsinu podobnou specifičnost (Kiesel a. Fujikawa: Behring Inst. Mitt. 73., 29 (1983).). FVII se může aktivovat také v pří6 tomnosti polymemích makromolekul, jako je polylysin, struktur matric, substituovaného agarosového gelu nebo membrán.
Příklady provedeni vynálezu
Pokusná část
Schéma čištění pro čištění a aktivaci rFVXI na rFVIIa se provádí následujícími čtyřmi po sobě jdoucími chromatografickýrai stupni: stupeň 1 = anex, stupeň 2 = imunoafinitní chromatografie, stupeň 3 = anex, stupeň 4 ~ anex.
Experimentální čištění se provádí tak, že některá schémata obsahují přidání zinečnaté soli ke všem pufrům jednoho nebo více chromatografických stupňů, jak je to uvedeno v tabulce I.
‘ Í
Experimentální podmínky jsou popsány v příkladech 2 až 4.
Referenční pokus (E) byl prováděn jako v příkladu 2 až na to, Že nebyl přidán octan zinečnatý. .«
Tabulka I
schéma čištění chromatografický stupeň
1 2 3 4
A - + + +
B - + + -
' C - + - -
E (ref.pok.)
+/- znamená přítomnost nebo nepřítomnost zinečnaté soli v pufru
Eluát každého stupně byl testován na stupeň FVII aktivace (% FVII) a na obsah FVIla degřadačních produktů. Konverse FVII na formu FVIIa se dvěma řetězci byla měřena standardní polyakrylamidovou elektroforesou (PAGE) v dodecylsulfátu sodném (SDS) za redukčních podmínek v kombinaci s obarvením Coomassie modří a kvantitativním vyhodnocením laserovou densitometrií.
Obsah degradačních produktů FVIIa byl kvantitativně vyhodnocen vysokoúčinnou kapalinovou chromatografií na obrácených fázích (RP-HPLC) na koloně oxidu křemičitého s navázanými butylovými skupinami v lineárním acetonitrilovém gradientu.
Výsledky z pokusů prováděných v podstatě tak, jak je to popsáno v příkladech, jsou uvedeny v tabulce II a dále na obr. 2 a 3. Z obr. 2 je zřejmé, Že v přítomnosti zinečnatých iontů (čáry A, B a C) během imunoafinitního stupně (stupeň 2) a anexových stupňů (stupeň 3 a 4) (čáry A a B) vůbec nedochází nebo dochází jen k velmi omezené aktivaci rFVII.
Naproti tomu dochází k rozsáhlé aktivaci ve stupni 2 (čára E) a ve stupni 3 a 4 (čáry B, C a E) v nepřítomnosti zinečnatých iontů.
Je také zřejmé, že interakce zinečnatých iontů s FVII/ /FVIIa působící inhibiční efekt aktivace FVII, je reversibilní, neboť po odstranění zinečnatých iontů navázáním jako komplex s nadbytkem EDTA, se FVII během následujících stupňů čištění aktivuje (čáry B a C).
Ve stupni 1 v nepřítomnosti zinečnatých iontů zřetelně nedochází k žádné aktivaci. Může to být proto, že koncentrace FVII na koloně je mnohem nižší.
Eluát stupně 1, který byl používán ve všech pokusech, obsahoval méně než 1 % FVIIa.
Tabulka II - *
pokus stupně čištění Zn4* % FVII % degradovaného FVIIa
(SDS-PAGE) (RP-HPLC)
A+B 2 + 94 0
3 + 92 0
A 4 + 89 <2
B 4 - 18 3,6
C 2 + 99 <2
3 - 69 <2
4 - 2 5,0
E 2 - 46 3,9
3 - 19 4,6
4 4 8,0
Příklad 1
Inhibice aktivace FVII během navázání na anex '
Vliv Zn++ na aktivaci FVII byl testován v pokusu, v němž se vyčištěný FVII adsorbuje na matrici Q-sepharosy FF v přítomnosti různých koncnetrací Zn+*. 500 μς FVII se inkubuje s 50 μΐ Q-sepharosy FF V 800 μΐ pufru (lOmM Tris, 50mM NaCl, 2mM CaCl2) s různými koncentracemi octanu zinečnatého v l,5ml zkumavkách. Po 1 h a po 2 h se odstřelováním usadí matrice á supernatant se odstraní. Přidá se 800 μΐ pufru (lOmM Tris, 50 mM NaCl, 25 mM CaCl2, pH 8,0), směs se promíchá a po odstřeáování se odeberou a analyzují se SDS-PAGE na FVII/FVIIa vzorky supernatantu.
Výsledky (obr. 1) ukazují, že v nepřítomnosti Zn++ se 55 % FVII aktivuje na FVIIa během lha více než 90 % se aktivuje po 2 hodinách.
V přítomnosti 10 μΜ Zn** se po 1 h aktivuje pouze 25 % a po 2 h pouze 73 %.
, V přítomnosti Zn** v koncentracích nad 40μΜ nebyla po 2 h pozorována žádná aktivace.
Z tohoto pokusu je zřejmé, že Zn** v koncetracích ΙΟμΜ až ΙΟΟμΜ má inhibiční účinek na aktivaci FVII v přítomnosti anexu. Je možné, že Zn** má vliv na aktivaci FVII při všech koncentracích Zn** v celém rozmezí od pod ΙΟμΜ do lmM.
Zdá se, že měněním koncentrace Zn** je možné regulovat rychlostní konstantu aktivace FVII a že vysoké koncentrace Zn** v podstatě chrání FVII před aktivací a tedy před degradací.
Příklad 2
Čištění a aktivace rFVII na rFVIIa byla prováděna následujícími čtyřmi chromatografickými stupni:
Stupeň 1:
Iontová síla kultivačního media obsahujícího rFVII se zředěním upraví pod 10 mS/cm. Toto medium se nanese na kolonu s Q-seoharosou předem ekvilibrovanou pufrem A: lOmM trihydroxymethýlaminomethan (Tris), 150mM NaCl, pH 8. Po stupni promývání 175mM NaCl ve stejném pufru se rFVII eluuje pufrem B: lOmM Tris, 150mM NaCl, 25mM CaCla, pH 8.
Stupeň 2:
Roztok eluátu obsahující 104 mg/1 rFVII byl upraven na konečné složení: lOmM Tris, 1M NaCl, 25mM CaCla, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5 a nanesen na kolonu se sepharosou s imobilizovanou anti-FVII monoklonální protilátkou. Kolona s protilátkou byla předem ekvilibrována pufrem C: lOmM Tris, lOOmM NaCl, 20mM CaCla, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5. Tato kolona se pak promývá lOmM Tris, 2M NaCl, 20mM CaCla, 70μΜ octanem zinečným, pH 7,5, následuje pufr C. Potom se eluuje rFVII/rFVIIá pufrem obsahují10 cím 75mM Tris, 30mM citran sodný, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5.
Stupeň 3:
Eluát se ihned nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem: lOmM Tris, 150mM NaCl, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6. Kolona se promývá stejným pufrem. rFVII/rFVIIa se eluuje lineárním gradientem od pufru A do pufru D: lOmM Tris, 500mM NaCl, 70μΜ octan 2inečnatý, pH 8,6.
Stupeň 4:
Frakce, která obsahuje rFVII/rFVIIa, se zředěním upraví tak, aby iontová síla byla pod 10 mS/cm a ihned se nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem: lOmM glycylglycin, 150mM NaCl, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6. Po promytí pufrem: lOmM glycylglycin, 175mM NaCl, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6, a pufrem E: lOmM glycylglycin, lOOmM NaCl, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6, se rFVII/rFVIIa eluuje lineárním gradientem od pufru E k pufru: lOmM glycylglycin, lOOmM NaCl, 15mM CaCls, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6. Rychlost průtoku byla 1 objem/h.
Vyčištěný prostředek rFVHa měl následující vlastnosti: obsah rFVIIa: 345 mg/1 měřeno UF spektroskopií (OD 280),? obsah cizích proteinů: <1 % hmot. podle RP-HPLC, obsah rFVII: 89 % hmot. podle SDS PAGE a obsah degradačnich produktů rFVIIa: <2 % hmot. podle RP-HPLC.
Příklad 3
Čištění a aktivace rFVII na rFVIIa se provádí následující chromatograf ickými stupni:
Stupeň 1:
Iontová síla kultivačního media obsahujícího rFVII se zředěním upraví pod 10 mS/cm. Toto medium se nanese na kolonu s
Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem A: lOmM trihydroxymethyIaminomethan (Tris), 150mM NaCl, pH 8. Po stupni promýváni
175mM NaCl ve stejném pufru se rFVII eluuje pufrem B: lOmM
Tris, 150mM NaCl, 25mM CaCl2, pH 8.
Stupeň 2:
Roztok eluátu obsahující 104 mg/1 rFVII byl upraven na konečné složeni: lOmM Tris, 1M NaCl, 25mM CaCl2, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5, a nanesen na kolonu se sepharosou s imobilizovanou anti-FVII monoklonální protilátkou. Kolona s protilátkou byla předem ekvilibrována pufrem C: lOmM Tris, lOOmM NaCl, 20mM CaCl2, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5. Tato kolona se pak promývá lOmM Tris, 2M NaCl, 20mM CaCl2, 70μΜ octanem zinečným, pH 7,5, následuje pufr C. Potom se rFVII/rFVIIa eluuje pufrem obsahujícím 75mM Tris, 30mM citran sodný, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5.
Stupeň 3:
Eluát se ihned nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem: lOmM Tris, 150mM NaCl, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6. Kolona se promývá stejným pufrem. rFVII/rFVIIa se eluuje lineárním gradientem od pufru A do pufru D: lOmM Tris, 500mM NaCl, 70μΜ octan zinečnatý, pH 8,6.
Stupeň 4:
Frakce, která obsahuje rFVII/rFVIIa, se upraví tak, aby obsahovala 2mM ethylendiamintetraoctovou kyselinu (EDTA), zředěním se upraví tak, aby iontová síla byla pod 10 mS/cm a ihned se nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem: lOmM glycylglycin, 150raM NaCl, pH 8,6. Po promytí pufrem: lOmM glycylglycin, 175mM NaCl, pH 8,6 a pufrem E: lOmM glycylglycin, lOOmM NaCl, pH 8,6, se rFVII/rFVIIa eluuje lineárním gradientem od pufru E k pufru: lOmM glycylglycin, lOOmM NaCl, 15mM CaCl2, pH 8,6. Rychlost průtoku byla 1 objem/h.
Vyčištěný prostředek rFVIIa měl následující vlastnosti: obsah rFVIIa: 492 mg/1 měřeno UF spektroskopií (OD 280), obsah cizích proteinů: <1 % hmot. podle RP-HPLC, obsah rFVII: 18 % hmot. podle SDS PAGE a obsah degradačních produktů rFVIIa: 3,6 % hmot. podle RP-HPLC.
Příklad 4
Čištění a aktivace rFVII na rFVIIa se provádí následujícími čtyřmi chromatografickými stupni.
Stupeň 1:
Iontová síla kultivačního media obsahujícího rFVII se zředěním upraví pod 10 mS/cm. Toto medium se nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem A: lOmM trihydroxymethylaminomethan (Tris), 150mM NaCI, pH 8. Po stupni promývání 175mM NaCI ve stejném pufru se rFVII eluuje pufrem B: lOmM Tris, 150mM NaCI, 25mM CaCl2, pH 8.
Stupeň 2:
Roztok eluátu obsahující 104 rag/1 rFVII byl upraven na konečné složení: lOmM Tris, IM NaCI, 25mM CaCl2, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5, a nanesen na kolonu se sepharosou s imobilizovanou anti-FVH monoklonální protilátkou. Kolona s protilátkou byla předem ekvilibrována pufrem C: lOmM Tris, 100mM NaCI, 20mM CaCla, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5. Tato kolona se pak promývá lOmM Tris, 2M NaCI, 20mM CaCls, 70μΜ octanem zinečným, pH 7,5, následuje pufr C. Potom se rFVII/rFVIIa eluuje pufrem obsahujíjcím 75mM Tris, 30mM citran sodný, 70μΜ octan zinečnatý, pH 7,5.
Stupeň 3:
Eluát se upraví tak, aby obsahoval 2mM EDTA a ihned se nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem: lOmM Tris, 150mM NaCI, pH 8,6. Kolona se promývá stejným pufrem. rFVII/rFVIIa se eluuje lineárním gradientem od pufru A do pufru D: lOmM Tris, 500mM NaCI, pH 8,6.
Stupeň 4:
Frakce, která obsahuje rFVII/rFVIIa, se zředěním upraví tak, aby iontová síla byla pod 10 mS/cm a ihned se nanese na kolonu s Q-sepharosou předem ekvilibrovanou pufrem: lOmM glycylglycin, 150mM NaCI, pH 8,6. Po promytí pufrem: lOmM glycylglycin, 175mM NaCI, pH 8,6, a pufrem E: lOmM glycylglycin, lOOmM NaCl, pH 8,6, se rFVII/rFVlla eluuje lineárním gradientem od pufru E k pufru: lOmM glycylglycin, lOOmM NaCl, 15mM CaCl2, pH 8,6. Rychlost průtoku byla 1 objem/h.
Vyčištěný prostředek rFVIIa měl následující vlastnosti: obsah rFVIIa: 1,2 mg/1 měřeno UF spektroskopií (OD 280), obsah cizích proteinů: <1 % hmot. podle RP-HPLC, obsah rFVII: 1 % hmot. podle SDS PAGE a obsah degradačních produktů rFVIIa: 6,7 % hmot. podle RP-HPLC.

Claims (7)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob regulované aktivace a degradace faktoru VII během čištění, vyznačující se tím, že roztok faktoru VII se podrobí několika chromatografickým čistícím stupňům, při čemž Zn” je přítomen alespoň v jednom z těchto čistících stupňů.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se • t í m, že roztok faktoru VII se nanese,na několik anexových nebo imunoafinitních chromatografických kolon.
  3. 3. Způsob podle nároku 1 až 2 , vyznačující se t í m, že Zn” je přítomen ve formě rozpustné zinečnaté soli.
  4. 4. Způsob podle nároku 1 až 3 , vyznačující se t í m, Že Zn” je přítomen v koncentraci od 10 μΜ do 1 mM,
  5. 5. Způsob podle nároku 4, vyznačující se t í m, že Zn” je přítomen v koncentraci od 20 μΜ do 1 mM.
  6. 6. Způsob podle nároku 4, vyznačující se tím, že Zn” je přítomen v koncentraci od 40 μΜ do 1 mM.
  7. 7. Způsob podle nároku 2, vyznačující se tím, že roztok faktoru VII se nanese na chromatografické kolony v následujícím pořadí: a) anexová, b) imunoafinitní, 3) anexová, 4) anexová kolona a že Zn” je přítomen alespoň ve dvou stupních.
CZ952533A 1993-03-31 1994-03-24 Method of controlled activation and degradation of factor vii during purification process CZ253395A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK93382A DK38293D0 (da) 1993-03-31 1993-03-31 Fremstilling af proteiner

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ253395A3 true CZ253395A3 (en) 1996-01-17

Family

ID=8092871

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ952533A CZ253395A3 (en) 1993-03-31 1994-03-24 Method of controlled activation and degradation of factor vii during purification process

Country Status (16)

Country Link
US (1) US5700914A (cs)
EP (1) EP0691984A1 (cs)
JP (1) JPH08508264A (cs)
CN (1) CN1039231C (cs)
AU (1) AU677309B2 (cs)
CA (1) CA2159313A1 (cs)
CZ (1) CZ253395A3 (cs)
DK (1) DK38293D0 (cs)
FI (1) FI954649A0 (cs)
HU (1) HUT72712A (cs)
IL (1) IL109164A0 (cs)
NO (1) NO953883L (cs)
PL (1) PL310887A1 (cs)
TW (1) TW278079B (cs)
WO (1) WO1994022905A1 (cs)
ZA (1) ZA941956B (cs)

Families Citing this family (27)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19538716A1 (de) * 1995-10-18 1997-04-24 Behringwerke Ag Verfahren zur Quantifizierung von aktiviertem Gerinnungsfaktor VII (FVIIa)
DE19538715A1 (de) 1995-10-18 1997-04-30 Behringwerke Ag Verfahren zur Reinigung von Faktor VII und aktiviertem Faktor VII
NZ507557A (en) 1998-05-06 2003-10-31 Genentech Inc Protein purification by ion exchange chromatography
AT408613B (de) * 1998-06-17 2002-01-25 Immuno Ag Pharmazeutisches faktor vii-präparat
CA2739933A1 (en) 2000-02-11 2001-08-16 Bayer Healthcare Llc Factor vii or viia-like molecules
EP1458408B1 (en) 2001-12-21 2009-04-15 Novo Nordisk Health Care AG Liquid composition of factor vii polypeptides
US20040009918A1 (en) * 2002-05-03 2004-01-15 Hanne Nedergaard Stabilised solid compositions of modified factor VII
CN1671410B (zh) 2002-06-21 2010-05-12 诺和诺德医疗保健公司 因子ⅶ多肽的稳定化固体组合物
CN101818137A (zh) * 2003-03-18 2010-09-01 诺和诺德医疗保健公司 生产含有gla残基的丝氨酸蛋白酶的方法
US7897734B2 (en) 2003-03-26 2011-03-01 Novo Nordisk Healthcare Ag Method for the production of proteins
RU2364609C2 (ru) 2003-05-23 2009-08-20 Ново Нордиск Хелт Кэр Аг Стабилизация белка в растворе
EP1641487B1 (en) 2003-06-25 2012-02-29 Novo Nordisk Health Care AG Liquid composition of factor vii polypeptides
WO2005002615A1 (en) 2003-07-01 2005-01-13 Novo Nordisk Health Care Ag Liquid, aqueous pharmaceutical composition of factor vii polypeptides
JP5653572B2 (ja) 2003-08-14 2015-01-14 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アクチェンゲゼルシャフト 第vii因子ポリペプチドの液状水性医薬組成物
JP4874806B2 (ja) 2003-12-01 2012-02-15 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アクチェンゲゼルシャフト 液体因子vii組成物のウイルス濾過
CN1917861B (zh) * 2003-12-19 2012-03-21 诺和诺德医疗保健公司 因子vii多肽的稳定化固体组合物
EP2360171A1 (en) * 2004-12-23 2011-08-24 Novo Nordisk Health Care AG Reduction of the content of protein contaminants in compositions comprising a vitamin K-dependent protein of interest
PT1841863E (pt) * 2005-01-14 2010-10-25 Bayer Healthcare Llc Método para a purificação de factor vii
US20070129298A1 (en) * 2005-07-22 2007-06-07 Maxygen Holdings, Ltd. In-solution activation of factor vii
WO2007073486A2 (en) * 2005-12-20 2007-06-28 Duke University Methods and compositions for delivering active agents with enhanced pharmacological properties
US20130172274A1 (en) 2005-12-20 2013-07-04 Duke University Methods and compositions for delivering active agents with enhanced pharmacological properties
US8841255B2 (en) 2005-12-20 2014-09-23 Duke University Therapeutic agents comprising fusions of vasoactive intestinal peptide and elastic peptides
CN102131516B (zh) 2008-06-27 2016-03-16 杜克大学 包含弹性蛋白样肽的治疗剂
CN103539852B (zh) * 2012-07-12 2015-08-12 上海泰龙生物医药科技有限公司 一种从细胞培养液中分离纯化重组人凝血八因子的方法
EP2687595B1 (en) 2012-07-19 2018-05-30 Laboratoire Français du Fractionnement et des Biotechnologies Method for purifying transgenic factor VII
CN104736133B (zh) 2012-10-17 2020-07-10 宝洁公司 用于递送口腔护理活性物质的条带以及施用口腔护理活性物质的方法
EP3560946B1 (en) * 2016-12-22 2022-02-02 KM Biologics Co., Ltd. Chromatographic method for collecting blood coagulation factor vii with high yield

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4981952A (en) * 1988-10-04 1991-01-01 Eli Lilly And Company Method for the purification of vitamin K-dependent proteins

Also Published As

Publication number Publication date
CA2159313A1 (en) 1994-10-13
US5700914A (en) 1997-12-23
HUT72712A (en) 1996-05-28
FI954649L (fi) 1995-09-29
TW278079B (cs) 1996-06-11
AU6423994A (en) 1994-10-24
NO953883D0 (no) 1995-09-29
ZA941956B (en) 1994-09-30
CN1121723A (zh) 1996-05-01
EP0691984A1 (en) 1996-01-17
FI954649A7 (fi) 1995-09-29
FI954649A0 (fi) 1995-09-29
AU677309B2 (en) 1997-04-17
IL109164A0 (en) 1994-06-24
CN1039231C (zh) 1998-07-22
HU9502846D0 (en) 1995-12-28
WO1994022905A1 (en) 1994-10-13
DK38293D0 (da) 1993-03-31
NO953883L (no) 1995-11-28
PL310887A1 (en) 1996-01-08
JPH08508264A (ja) 1996-09-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ253395A3 (en) Method of controlled activation and degradation of factor vii during purification process
AU740753C (en) Improved methods for processing activated protein C
Wasley et al. PACE/furin can process the vitamin K-dependent pro-factor IX precursor within the secretory pathway.
Stenflo Structure and function of protein C
US20080214462A1 (en) FIX-Mutant Proteins for Hemophilia B Treatment
Josic et al. Preparation of vitamin K-dependent proteins, such as clotting factors II, VII, IX and X and clotting inhibitor protein C
AU2008209986A1 (en) FVIII-independent FIX-mutant proteins for hemophilia A treatment
PL191778B1 (pl) Analog czynnika X Δ , rekombinowany kwas nukleinowy, wektor, komórka, kompozycje i ich zastosowania oraz sposób wytwarzania kompozycji
US6958322B1 (en) Factor X analog with an improved ability to be activated
RU2167936C2 (ru) Способ минимизации деградации активированного протеина с (варианты), стабилизированная композиция активированного протеина с
US5510248A (en) Stable recombinant meizothrombin-like polypeptides
AU769144B2 (en) Improved methods for processing activated protein C
AU4409399A (en) Human protein c polypeptide
CZ373799A3 (cs) Zlepšené způsoby zpracování aktivovaného proteinu C
Hung Structural-functional Studies of the Non-enzymatic Domains of Prothrombin
Carter Structural-Functional Relationships in the Human Thrombin A-Chain
Su Localization of ligand-binding exosites in the catalytic domain of FXIa and determination of the roles of calcium and the heavy chain of FXIa in fix activation by FXIa
EP1557463A1 (en) Improved methods for processing activated protein C
Boskovic Studies of prothrombinase-catalyzed activation of bovine prothrombin.
SK124699A3 (en) Activated vitamin k-dependent blood factor and method for the production thereof
HK1219285A1 (en) Purification method for vitamin k dependent proteins by anion exchange chromatography
HK1219285B (en) Purification method for vitamin k dependent proteins by anion exchange chromatography