CZ301662B6 - Kmen deltathyA Vibrio cholerae postrádající funkci genu thyA - Google Patents

Kmen deltathyA Vibrio cholerae postrádající funkci genu thyA Download PDF

Info

Publication number
CZ301662B6
CZ301662B6 CZ20004354A CZ20004354A CZ301662B6 CZ 301662 B6 CZ301662 B6 CZ 301662B6 CZ 20004354 A CZ20004354 A CZ 20004354A CZ 20004354 A CZ20004354 A CZ 20004354A CZ 301662 B6 CZ301662 B6 CZ 301662B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
gene
strain
thy
vibrio cholerae
thya
Prior art date
Application number
CZ20004354A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ20004354A3 (en
Inventor
Carlin@Nils
R. Lebens@Michael
Original Assignee
Crucell Sweden Ab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Crucell Sweden Ab filed Critical Crucell Sweden Ab
Publication of CZ20004354A3 publication Critical patent/CZ20004354A3/cs
Publication of CZ301662B6 publication Critical patent/CZ301662B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/24Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • C07K14/245Escherichia (G)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/28Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Vibrionaceae (F)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/43504Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates
    • C07K14/43536Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from worms
    • C07K14/43559Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from worms from trematodes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1003Transferases (2.) transferring one-carbon groups (2.1)
    • C12N9/1007Methyltransferases (general) (2.1.1.)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Electrical Discharge Machining, Electrochemical Machining, And Combined Machining (AREA)

Abstract

Kmen .DELTA.thyA Vibrio cholerae, který postrádá v chromosomu celý gen thyA, který má nukleotidovou sekvenci id. c. 1, a nebo kmen .DELTA.thyA Vibrio cholerae, který obsahuje v genu thyA deleci a soucasne inzerci nekódující DNA, a který je pripravitelný zpusobem, který zahrnuje kroky: poskytnutí thymin-dependentního kmene Vibrio cholerae, provedení místnecílené inzerce genu kanamycinové rezistence ve forme genového bloku Kan.sup.R.n. do PstI místa genu thyA, a delece 209 páru bází z genu thyA upstream od místa inzerce a 261 páru bází z genového bloku Kan.sup.R.n.. Výhodne kmen obsahuje jeden nebo nekolik episomálních autonomne se replikujících DNA elementu majících funkcní gen thyA, což umožnuje kmenu rust v rustovém médiu za neprítomnosti thyminu, pricemž jeden nebo nekolik episomálních autonomne se replikujících DNA elementu dále obsahuje strukturní gen kódující protein. Kódovaný protein je výhodne B-podjednotka tepelne labilního enterotoxinu E. coli (LTB) nebo 26 kD protein glutathion-S-transferázy ze Schistosoma japonicum (GST 26 kD).

Description

Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká kmenů Δ/ΛχΑ Vibrio cholerae a způsobů přípravy těchto kmenů. Vynález se zejména týká kmenu Vibrio cholerae, který byl zbaven genu z chromozómu, tj. thy A” kmenu Vibrio cholerae, který postrádá funkci genu thy A. Tento kmen obsahuje jeden nebo několik epizomálních autonomně se replikujících DNA elementů, jako jsou např. plazmidy, obsahujíio cích cizorodý gen thy A, např. gen z E. coli, který umožňuje kmenu růst v nepřítomnosti thyminu v kultivačním médiu, a případně obsahujících strukturní gen kódující homologní nebo heterologní protein. Vynález se dále týká nukleotidových sekvencí genů thy A a proteinů kódovaných těmito sekvencemi.
Dosavadní stav techniky
Exprese rekombinantních genů v bakteriální buňce se nejčastěji provádí tak, že se do hostitelské baktérie vnesou epizomální prvky schopné autoreplikace (např. plazmidy), které kódují strukturní gen pro požadovaný protein, který je řízen vhodným promotorem. Takové plazmidy jsou zpravidla udržovány pomocí vloženého genu pro selekční markér, který kóduje protein udělující rezistenci např. ke specifickému antibiotiku (jako je např. ampicilin, chloramfenikol, kanamycin, tetracyklin a další). V hostitelských buňkách se plazmidy udržují tím, že se odpovídající antibiotikum přidá do kultivačního média. Trvalé udržování plazmidů v hostitelském kmenu vyžaduje selekci užitím antibiotika, bez které by docházelo k segregaci a vzniku významného počtu buněk, které neobsahují plazmid a tudíž neexprimují požadovaný produkt. Avšak použití antibiotik při produkci rekombinantních proteinů je z mnoha důvodů nežádoucí. Kromě zjevného zvyšování nákladů je dodávání antibiotik do kultivačního média považováno za značně problematické při výrobě jakýchkoliv rekombinantních proteinů pro použití v humánní nebo veterinární medicíně.
K tomu jsou nejméně tři hlavní důvody. Za prvé, reziduální antibiotika mohou u vnímavých jedinců vyvolat silnou alergickou reakci. Za druhé, existuje možnost selekce bakterií rezistentních k antibiotiku v přirozené bakteriální flóře uživatelů daného proteinového produktu, a nakonec za třetí, DNA kódující rezistenci k antibiotiku by mohla být přenesena do vnímavých bakterií u jedince užívajícího daný proteinový produkt, čímž rezistence k antibiotiku v nežádoucí míře další baktérie.
Existují vynálezy, které se zabývají tímto problémem, a jedním z nich je využití genu par, který účinně usmrtí každou buňku, která neobsahuje kopii plazmidu po každém buněčném dělení [1].
Jiná patentová přihláška [2], která souvisí s předmětem předkládaného vynálezu, popisuje vynález založený na znalosti DNA sekvence thy A z E. coli. Původci vnesli do buněk gen thy A v plazmidu, ale užili hostitelský kmen, kterým byla spontánní mutanta thy A- selektovaná na základě rezistence k trimethoprimu. Takové mutanty však nejsou dobře definovány (nesou bodové mutace nebo malé delece) a mohou snadno divoký typ (tj. thy A+) s nepřijatelně vysokou frek45 věnci. To by vedlo buď k eliminaci plazmidu z hostitelské baktérie a tudíž ke ztrátě produkce nebo k nekonzistentní a nespolehlivé produkci požadovaného rekombinantního produktu. Kromě toho dalším problémem při selekci trimethoprimem je možnost, že výsledná závislost na thyminu vzniká důsledkem mutace v genu pro díhydrofolátreduktázu (folÁ) a tudíž pak není komplementována genem thy A obsaženým v plazmidu [3]. Řízení o této patentové přihlášce bylo navíc zastaveno, alespoň v Evropě.
Bylo ukázáno, že použití V. cholerae pro expresi rekombinantních genů je výhodnější než užití jiných prokaryotických expresních systémů dosud obecně užívaných, a sice proto, že rekombinantní produkty se tvoří ve velkých množstvích a jsou secemovány do kultivačního média, což usnadňuje následující kroky izolace a purifikace. To je odlišné od E. coli, kde se rekombinantní
-1 CZ 301662 B6 produkt zpravidla hromadí v periplazmatickém prostoru [4]. Jedním z důležitých faktorů, který je příčinou této vlastnosti, je gen eps ve V. cholerae [5].
Thymidylátsyntetáza kódovaná genem thyA z E.coli a jiných baktérii katalyzuje methylaci deoxy uridy latu (dIJMP) na deoxythymídylát (dTMP) a je nezbytným enzymem v biosyntéze deoxyribothymidintrifosfátu (dTTP) pro inkorporaci do DNA. V nepřítomnosti tohoto enzymu se baktérie stává závislá na vnějším zdroji thyminu, který je inkorporován do dTTP náhradní metabolickou dráhou zprostředkovanou geny deo [6].
io Spontánní mutanty thy A“ mohou být ihned izolovány na základě rezistence ktrimethoprimu. Toto antibiotikum inhibuje regeneraci tetrahydrofolátu z dihydrofolátu tvořeného při syntéze dTMP katalyzované thymidylátsyntetázou. Takže pokud jsou buňky thy A“, stanou se závislými na thyminu, ale v přítomnosti trimethoprimu již dále nespotřebovávají tetrahy drofo lát.
Podstata vynálezu
Předkládaný vynález je založen na nové nukleotidové sekvenci genu thy A z Vibrio cholera. Gen thy A je výhodně použit k udržování rekombinantních plazmidů, které se užívají k produkci rekombinantních proteinů ve K cholerae, a dále je tato sekvence užita pro vložení cizorodých genů do chromozómu V. cholerae selektovatelným a místně-specifíckým způsobem.
Jeden aspekt předkládaného vynálezu se týká způsobu přípravy kmenu thy A- Vibrio cholerae, který obsahuje krok místně-cílené mutageneze v chromozómu V. cholerae delecí a/nebo inzercí nukleotidů v lokusu genu thy A, který má v podstatě nukleotidovou sekvenci uvedenou zde jako sekvence id. č. 1 na obr. 1.
Termín „má v podstatě nukleotidovou sekvenci“ v předkládaném popisu a patentových nárocích zahrnuje nukleotidové sekvence, které obsahují nějaké přirozené či umělé prodloužení nebo zkrácení, nebo delece a adice, přičemž však nedochází k ovlivnění původní přirozené funkce této nukleotidové sekvence.
Další aspekt předkládaného vynálezu se týká /AyA'kmenu, kteiým je thyA kmen Vibrio cholerae postrádající funkční gen thy A. V tomto provedení vynálezu kmen Athy A Vibrio cholerae obsahuje jeden nebo několik autonomně se replikujících elementů DNA, které nesou funkci genu thy A, což dovoluje kmenu růst i v nepřítomnosti thyminu v kultivačním médiu. Ve výhodném provedení je autonomně se replikující DNA element plazmid.
V jiném výhodném provedení vynálezu Athy A kmen Vibrio cholerae podle vynálezu obsahuje v epizomálním autonomně se replikujícím prvku DNA, zejména plazmidu,. cizorodý gen thy A, E. coli.
Ve zvláště výhodném provedení vynálezu Athy A kmen Vibrio cholerae podle vynálezu obsahuje vjednom nebo několika epizomálních autonomně se replikujících DNA elementech, zejména plazmidech, kromě cizorodého genu thy A, jako je např. gen z E. coli, také strukturní gen kódující homologní nebo heterologní protein, jako je např. tepelně labilní B-podjednotka enterotoxinu E. coli (LTB) nebo glutathion-S-transferázový protein velikosti 26 kD (GST 26 kD) ze Schistosóma japonicum.
Třetí aspekt předkládaného vynálezu se týká úseku nukleotidové sekvence sousedící s 5'-koncem strukturního genu thy A z Vibrio cholerae, který má v podstatě nukleotidovou sekvenci id. č. 2 na obr. 2.
-2CZ 301662 B6
Čtvrtý aspekt předkládaného vynálezu se týká úseku nukleotidové sekvence sousedícího s3'koncem strukturního genu /Ary A z Vibrio cholerae, který má v podstatě nukleotidovou sekvenci id. č. 3 na obr. 3.
Nukleotidová sekvence id. č. 1 je užitečná pro vkládání cizorodých genů selektovatelným a místně cíleným způsobem do chromozómu V. cholerae a pro místně cílenou mutagenezí při přípravě kmenů thy A Vibrio cholerae.
Pátý aspekt předkládaného vynálezu se týká proteinu, „který je kódován nukleotidovou sekvencí genu thy A z Vibrio cholerae podle předkládaného vynálezu, jako je např. protein mající aminokyselinovou sekvenci id. č. 4 na obr. 4.
Šestý aspekt předkládaného vynálezu se týká proteinu, který je kódován nukleotidovou sekvencí úseku lemujícího 5-konec strukturního genu thy A z Vibrio cholerae podle vynálezu, jako je např. protein, který má aminokyselinovou sekvenci Íd. č. 5 na obr. 5.
Proteiny podle pátého a šestého aspektu předkládaného, jsou zvláště užitečné pro účely výzkumu potenciální cíle antimíkrobiální terapie.
Sedmý aspekt předkládaného vynálezu se týká vakcíny, která obsahuje jakožto imunizační složku Mhy A kmen V. cholerae podle vynálezu nebo thy A' kmen Vibrio cholerae připravený způsobem podle vynálezu. Vakcína je určena pro použití k profylaxi nebo k léčení cholery a případně i jiných infekčních nemocí, zvláště v případě, kdy použitý kmen byl metodami genového inženýrství modifikován tak, aby exprimoval cizorodé proteiny. Vakcína kromě imunizační složky obsahuje vehikulum, např, fyziologický roztok, a daiší složky obvykle užívané ve vakcínách jako jsou pufry a adjuvans. Vhodná vehikula, pufry a adjuvans a další složky jsou odborníkům známy a jsou popsány např. v Evropském lékopisu nebo Lékopisu USA.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1 ukazuje nukleotidovou sekvenci id. č. I genu thy A z Vibrio cholerae.
Obr. 2 ukazuje nukleotidovou sekvenci id. Č. 2, tj. sekvenci 5'-lemujícího úseku strukturního genu thy A z Vibrio cholerae.
Obr.3 ukazuje nukleotidovou sekvenci id. č. 3, tj. sekvenci 3'-lemujícího úseku strukturního genu thy A z Vibrio cholerae.
Obr. 4 ukazuje aminokyselinovou sekvenci id. č. 4, tj. sekvenci proteinu kódovaného strukturním genem thy A z Vibrio cholera.
Obr. 5 ukazuje aminokyselinovou sekvenci id. č. 5, tj. sekvenci proteinu kódovaného 5-lemujícím úsekem strukturního genu thy A z Vibrio cholera.
Obr, 6 ukazuje klonování fragmentu EcoRPHindffl, který obsahuje gen thy A z Vibrio cholerae, do pUC19.
Obr. 7 ukazuje srovnání produktů genu thy A z E. coli [16], V. cholerae a H. influenzae [17], které so demonstruje vysoký stupeň homologie mezi V. cholerae a H. influenzae, na rozdíl od E. coli.
Obr. 8 ukazuje inzerci bloku genu kanamycinové rezistence KanR do místa Pstl v genu thy A z Vibrio cholerae v pUC 19.
Obr. 9 ukazuje polymerázovou řetězovou reakci (PCR) pro fragmentu Zy/íZ-Kan s konci XbaL
-3CZ 301662 B6
Obr. 10 ukazuje ligaci fragmentu í/ryJ-Kan s konci Xbal do plazmidu pNQ705.
Obr. 11 ukazuje částečnou delecí genu thyA a počátku genu Kan Tf pNEB193.
Obr. 12 ukazuje štěpení Xbal, kterým byl vystřižen gen A/AryAKan z pNEB193 a ligaci do pDM4 naštěpeného Xbal.
Obr. 13 schematicky znázorňuje strategii kúplnému odstranění (úplné deleci) genu thyA io zVibrio cholerae.
Obr. 14 ukazuje vložení 5-úseku proti směru transkripce od genu thyA vpMT-SUICIDE a vytvoření pMT s 5prim.
Obr. 15 vložení 3'-úseku po směru transkripce (downstream) od genu thyA v pMT s 5prim a vytvoření ρΜΤΔ/AyA V. cholera.
Obr. 16 ukazuje expresní vektor pMT-eltB (thyA) použitý pro expresi LTB v V, cholerae JS 1569 MhyA.
Obr. 17 ukazuje expresní vektor pMT-GST (thyA) použitý pro expresi GST v V. cholerae JS 1569 Mhy A.
Příklady provedení vynálezu Strategie experimentů
Pro přípravu definovaných thy A mutant K cholerae, které mohou být užity jako vhodné produk30 ční kmeny pro přípravu rekombínantních proteinů kódovaných plazmidy, které jsou udržovány komplementací thyA bylo nejdříve potřeba klonovat a charakterizovat gen divokého typu a úseky lemující jeho 5 - a 3'-konec. Zvolená strategie byla taková, že nejdříve byl klonován gen thyA z V. cholerae do plazmidu, a to pomocí komplementace thy A auxotrofie kmenu E. coli K12.
Restrikční analýza a subklonovací experimenty byly provedeny proto, aby byl lokalizován strukturní gen thyA ve velkém fragmentu DNA, který byl nejdříve získán. Vhodný úsek obsahující gen thyA a úseky lemující jeho 5' - a 3- konec (5 - a 3'-lemuj ící úseky) byl pak sekvencován.
Pro ověření toho, že byl klonován a sekvencován skutečně gen thyA z V. cholerae bylo provede40 no srovnání se sekvencemi thyA z jiných organismů. Klonovaný gen byl navíc schopen komplementovat thy A fenotyp Vibrio cholerae získaný selekcí na rezistenci k trimethoprimu. Analýza sekvence této mutanty ukázala, že v genu, který byl identifikován jako gen thyA, obsahuje skutečně jednu nukleotidovou záměnu, kterou vzniká stop-kodon a tudíž gen poskytuje nefunkční zkrácený produkt.
Znalost sekvence genu thyA a úseků lemujících tento gen umožnila využít vhodné suicidální („sebevražedné“) vektory pro místně-cílenou mutagenezi. Byly zvoleny následující strategie:
a) inzerční inaktivace, so b) kombinace inzerční inaktivace a delece genu, a c) odstranění celého genu, které jsou dále podrobněji popsány:
-4CZ 301662 B6
a) Inzerční inaktivace genu thy A byla provedena vložením genového bloku KanR (se suicidálním vektorem pNQ705 [14]).
b) Delece úseku přibližné velikosti 400 bp byla provedena u kmenu nesoucího blok KanR, čímž byl odstraněn úsek velikosti asi 200 bp jak z genu thy A proti směru transkripce od místa inzerce, tak i z genu KanR rezistence ke kanamycinu, který tím byl inaktivován. Byl tak získán deletovaný gen thy A, kde delece byla v centrální Části genu, a pak následovala inzerce nekódujícího úseku DNA. Tento konstrukt byl vložen, do chromozómu V. cholerae pomocí suicidálního vektoru pDM4 výsledný kmen byl pojmenován JS 1569A/ZryAAKan.
10
c) Úplné odstranění genu thy A bylo provedeno vzájemnou ligací (spojením) úseků lemujících strukturní gen, přičemž byla věnována pozornost tomu, aby se nenarušily další otevřené čtecí rámce (narušení přilehlého genu Igt je také letální). DNA nesoucí delecí byla klonována nového suicidálního vektoru (PMT-SUICIDE-I) užitého k vložení sekvence do chromozó15 mu T. cholerae. Výsledný kmen byl pojmenován JS 1569A/AyA.
Pro expresi rekombinantních genů v těchto AthyA kmenech V. cholerae byly zkonstruovány dva expresní vektory. Každý obsahoval thy A gen z E. coli, replikační počátek z obecně užívaného víceúčelového vektoru pUC 19, promotor tac a terminátor transkripce trp A nezávislý na faktoru rhó. V jednom z těchto vektorů byl vložen také gen Iaclq, aby reguloval expresi z promotoru tac, který obsahuje také sekvenci lac operátoru. Do těchto plazmidů byly klonovány dva geny a byly exprímovány vnově vytvořených kmenech V. cholerae s delecí thy A, JS1569A//ryA. První gen kódoval B-subjednotku lidského tepelně zE. coli (LTB) (viz obr. 16) a druhý labilního enterotoxinu byl gen sj26 kódující glutathion-S-transferázu (GST) ze Schistosoma japonicum (viz obr. 17).
LTB je strukturně podobný B-podjednotce cholerického toxinu přirozeně produkovaného hostitelským kmenem a byl secemován do kultivačního média. Druhý protein je eukaryotického původu a pochází z asijské jatemí motolice. Sj26 GST exprimována ve vysoké hladině v E. coli a aku30 muluje se v cytoplazmě. Exprese obou rekombinantních proteinů byla vyhodnocena v případě LTB pomocí GM1 ELISA testu supematantu kultivačního média a v případě GST pomocí komerčně dostupného testu. Oba proteiny byly také analyzovány pomocí SDS-PAGE a westernovým přenosem.
Původ genu thy A
Gen thy A byl klonován z kmenu K cholerae JS 1569. Tento kmen pochází z kmenu V. cholerae Inaba 569B klasického biotypu (sbírka ATCC č. 25870). Kmen má deleci v genu ctxA [7] a byl modifikován tak, že získal rezistenci k rifampicinu [8].
Klonování fragmentu HindlII/EcoRI velikosti 1.4 kb obsahujícího gen thy A. z K cholerae
Chromozómová DNA připravená metodou užívající CTAB [9] byla úplně štěpena restrikčním enzymem HindlII. Naštěpená DNA byla ligována do obecně užívaného vektoru pBR322 (New
England Biolabs, lne., Beverly, MA, USA), který byl předtím štěpen HindlII a ošetřen alkalickou fosfatázou. Ligační směs byla elektroporací [10] vnesena do buněk kmenu E. coli HB 101, který byl feno typově thy A' (selektován na základě rezistence k trimethoprimu) a kultury byly naneseny na plotny s modifikovaným Syncase (MS) agarem [11], s přídavkem ampicilinu, ale neobsahovaly thymin. Takže transformanty byly selektovány jak na základě toho, že obsahovaly získaný plazmid, tak i na přítomnost funkčního genu thy A. Buňky byly izolovány tak, že buňky z jediné kolonie byly očkovací kličkou přeneseny na stejný typ agarových ploten a rostly pak na médiu MS s ampicilinem. Plazmidová DNA byla izolována užitím soupravy „Wizard minipreps“ (ProMega Corp. Madison Wis.) a pak naštěpena HindlII. Fragment o velikosti 10 až 12 kb byl izolován a tento klon byl nazván Thy A. B2.
•5CZ 301662 B6
Aby se zmenšila velikost fragmentu, byl plazmid naštěpen EcoRl a znovu spojen T4 li gázou.
Ligovaná DNA byla elektroporací opět vnesena do buněk kmenu E. coli popsaného výše za stejných selekčních podmínek pro růst transformant. Kolonie vzniklé z této transformace byly izolovány, jak bylo popsáno výše, a byla izolována plazmidová DNA, která byla analyzována dvojitým štěpením EcoRl a HindlIL Zůstal fragment DNA velikosti přibližně 1,4 kb, který umožňoval komplementovat thy A mutaci v hostitelském kmenu E. coli. Tento fragment byl klonován do plazmidu pUC19 (New England Biolabs), který byl naštěpen stejnými dvěma enzymy a ošetřen alkalickou fosfatázou. Po elektroporací byly transformanty z tohoto experimentu izolovány stejně jak bylo popsáno výše. Tento klon byl nazván thy A 1:2 (obr. 6).
io
Ověření fragmentu HindlII!EcoRl velikosti 1,4 kb obsahujícího gen thy A
Pro ověření toho, že fragment skutečně pocházel z chromozómu V. cholerae, byla DNA z kmenu JS 1569 úplně naštěpena HindlII a EcoRl společně s HindlIL Fragmenty DNA pak byly analy15 zovány elektroforézou na agarozovém gelu společně s klonem Thy A B2 naštěpeným HindlII a klonem thy A 1:2 naštěpeným EcoRl a HindlII. Po elektroforéze byla DNA přenesena na nylonovou membránu, imobilizována UV zářením a pak hybridizována (za stringentních podmínek) s fragmentem velikosti 1,5 kb vystřiženým z klonu thy A 1:2, který byl označen 32P dCTP užitím soupravy Multiprime kit od firmy Amersham.
Výsledky: Jak v chromozómové DNA štěpené; HindlII, tak klonu Thy A B2 štěpeném HindlII byl evidentní fragment velikosti přibližně 10 kb. Stejně tak v chromozómové DNA štěpené EcoRl!HindlII tak klonu thy A 1:2 štěpeném EcoRl!HindlII byl evidentní fragment velikosti přibližně 1,4 kb (data nejsou ukázána). To dokazuje, že klonovaný fragment pocházel z DNA
V. cholerae JS 1569.
Transformace J51569 thy A“ plazmidem thy A 1:2
Pro ověření toho, že klonovaný fragment EcoRl!HindlII podporuje růst V. cholerae fenotypu thyA-, mutanta závislá na thyminu JS 1569 (V. cholerae JS 1569 4.4) byla elektroporací transformována plazmidem thy A 1:2. Elektroporace a selektivní médium byly popsány výše. Mutanta JSI 569 4.4 nerostla na médiu MS bez přídavku thyminu.
Výsledky: Byly izolovány kolonie JS 1569 4.4, které rostly na médiu bez thyminu. Bylo ukázáno, že všechny nesly plazmid thy A 1:2, což podporuje předpoklad, že klonovaný fragment obsahuje gen thyA z K cholerae.
Sekvencování DNA z plazmidu Thy A 1:2
Plazmidová DNA byla sekvencována metodou využívající terminace syntézy řetězce dideoxynukleotidy [12], a sice pomocí sekvenační soupravy ABI PRISM™ Dye terminátor cycle sequencing kit (Perkin Elmer). Byly použity jak komerčně dostupné tak i vlastní oligonukleotidové primery. Sekvence DNA byla analyzována na automatickém sekvenačním zařízení ABI PRISM 373 (Perkin Elmer) a získaná data byla analyzována užitím softwaru AutoAssembler
Software Package (Perkin Elmer). Dále byla data analyzována vyhledáváním homologických sekvencí pomocí programu GCG [13].
Výsledky: Jako gen s nej lepší homologií byla nalezena thymidylátynthetáza z různých biologických druhů. Za povšimnutí stojí, že homologie s thymidylátsynthetázou zE. coli je velmi slabá (obr. 7).
-6CZ 301662 B6
Strategie pro deleci genu thyA z V. cholerae JSI569
Pro získání definovaných thy A mutant V. cholerae byly použity dvě strategie. První zahrnuje ínaktivaci genu thyA vložením genového bloku KanR a pak následnou parciální deleci genu thy A a genového bloku KanR.
Druhá strategie je zaměřena na úplnou deleci genu thyA z chromozómu V. cholerae pomocí nového suicidálního vektoru pMT SU1CIDE-1. Tento vektor obsahuje 5 - a 3-lemující úseky to genu thyA a také replikační počátek R6K a geny RP4 mob.
K nahrazení genu thyA kmenu JS 1569 bylo rozhodnuto použít na thyminu závislý J51569 4.4, neboť předběžné pokusy ukázaly, že je zde silná selektivní nevýhoda pri přechodu z divokého typu na thyminovou závislost, dokonce i za přítomnosti vysoké hladiny exogenního thyminu.
Inaktivace genu thyA inzercí genového bloku KanR
Zde strategie zahrnovala ínaktivaci genu thyA inzercí (vložením) genu rezistence ke kanamycinu do jedinečného místa Pstl v genu thyA ve formě genového bloku KanR (Pharmacia) (viz obr. 8).
Tento konstrukt byl amplifikován pomocí PCR (užitím systému Expand™ High Fidelity PCR, Boehringer Mannheim) s oligonukleotidovými primery, které vnesly do konstruktu konce Xbal, aby mohl být vložen do suicidálního plazmidů pNQ705 [14], který nesen jedinečné místo Xbal v genu rezistence k chloramfenikolu. Pro amplifikaci inzerčně inaktivovaného genu v PCR byly použity následující oligonukleotidové primery:
ThyA-10: 5»- GCT CTA GAG CCT TAG AAG GCG TGG TTC -3’, odpovídající nukleotidům 557 až 575 v sekvence id. č. 2 (obr. 2) s přidaným místem Xbal (tučně), a
ThyA-ll: 5'- GCT CTA GAG CTA CGG TCT TGA TTT ACG GTA T -3', odpovídající komplementární sekvenci nukleotidů 235 az 257 v sekvenci id. č. 2 (obr. 3) s přidaným místem, Xbal (tučně) (obr. 9 + 10) .
Výsledné plazmidy byly vneseny do E. coli S-l 7, které byly užity pro konjugaČní experimenty.
Jelikož recipientní kmen JS 1569 4.4 je rezistentní rífampicinu a senzitivní k chloramfenikolu adonorový kmen E,coli S-l7 je rezistentní jak k chloramfenikolu, tak kanamycinu, transkonjuganty byly selektovány na rezistenci k dvěma antibiotikům, rífampicinu a kanamycinu. Výsledné kmeny K cholerae budou však rezistentní také k chloramfenikolu, neboť celý plazmid bude na počátku vložen do chromozómu. Exkonjuganty, které inkorporovaly inaktivovaný gen thy A nesoucí genový blok KanR do chromozómu a ztratily plazmid pNQ705 pak mohou být selektovány z těch, které jsou citlivé k chloramfenikolu, ale zůstaly rezistentní ke kanamycinu.
Pro ověření inzerce genu rezistence ke kanamycinu do genu thy A byl celý gen thy A amplífikován pomocí PCR s oligonukleotidovými primery thyA-10 a /ÁyA-l 1, a velikost takto vznik40 lého fragmentu byla porovnána s velikostí nativního genu thy A. Byl nalezen očekávaný fragment velikosti 2,6 kb na rozdíl od nativního genu thy A velikosti 1,4 kb.
-ΊCZ 301662 B6
Výsledky: Exkonjuganty byly rezistentní ke kanamycinu a vnímavé ke chloramfeníkolu a když byly amplifikovaný pomocí PCR, ukázalo se, že mají do chromozómu vložený genový blok
KanR. Sekvencování amplifikovaného fragmentu ukázalo, že jediný defekt v genu byl způsoben inzercí genu rezistence ke kanamycinu. To ukazuje, že rekombinační událost, která vedla k inkorporaci inzerčně inaktivovaného genu do chromozómu, také eliminovala bodovou mutaci, která způsobovala, že recipientní kmen (JS 1569 4.4) byl závislý na thyminu. Růst získaných kmenů byl pozorován pouze, když bylo kultivační médium obohaceno thyminem (200 pg/ml).
io Částečná delece genu thy A. a genového bloku KanR
Pro další zajištění stálosti mutace thy A byl inzerčně inaktivovaný thy A subklonován jako Xbal fragment do plazmidu pNEB 193 ,(New England Biolabs). PCR primery byly navrženy tak, že došlo k delecí úseku 209 páru bází z genu thy A a 261 páru bází z genového bloku KanR.
Takže gen /AyA byl dále narušen a také gen rezistence ke kanamycinu byl inaktivován (tím, že byl odstraněn počáteční úsek kódující oblasti). Celkovým výsledkem tohoto postupu byl kmen nesoucí deletovaný gen thy A, který současně obsahuje inzerci nekódující DNA.
ThyA-14: 5’- GGG GGC TCG AGG GGC ACA TCA CAT GAA -3' ThyA-15: 5‘- CCC CCC TCG AGC GCC AGA GTT GTT TCT GAA -3'
Tučná písmena označují štěpné místo Xhol (obr. 11).
Po PCR amplifikaci byl získán fragment DNA obsahující celý plazmid s výjimkou deletované oblasti. Amplifikovaná DNA byla štěpena Xhol, self-lígována (konce jedné molekuly byly navzájem spojeny) a pak byla transformována do buněk kmenu E. coli HB 101. Kolonie pak byly selektovány na plotnách obsahujících ampicilin. Byly izolovány jednotlivé kolonie a znovu očkovací kličkou naneseny na plotny. DNA získaná minipreparací plazmidu z jednotlivých kolonií po štěpení restrikčními enzymy Xbal, Xhol, Hindffl a Rsal poskytla očekávaný restrikční vzorec.
Neúplný gen thy A nesoucí inaktivovaný gen rezistence ke kanamycinu byl z vektoru vyštěpen enzymem Xbal, purifikován a ligován do plazmidu pDM4 [15] (viz obr, 15). PDM4 je suicidální vektor odvozený zpNQ705 obsahující gen SacBR z Bacillus subtilis a modifikované vícečetné klonovací místo.
Po přenosu plazmidu pDM4 (A//íyAAKan) do buněk kmenu E. coli S—17 byly provedeny trans35 konjugační experimenty, V tomto případě byl kmen V, cholerae JS 1569 Z/iyAKan použit jako recipientní kmen. Konjugace byla provedena, jak bylo popsáno výše se selekcí na rezistenci k rifampicinu a chloramfeníkolu. Po růstu na tomto selekčním médiu byly kolonie dále selektovány na médiu obsahujícím 10% sacharózu bez přítomnosti chloramfeníkolu, Saeharóza indukovala gen sacBR, který kóduje enzym levansacharázu, který přeměňuje sacharózu na levan. Tato slou40 cenina je toxická pro většinu Gram-negativních organismů. Tímto způsobem byly usmrceny klony nesoucí sebevražedný plazmid a byly zachovány pouze exkonjuganty, které plazmid ztratíly·
Výsledky: byla selektována kolonie vnímavá k chloramfeníkolu a kanamycinu. PCR amplifikace úseku thy As primery ΓΛγΑ-ΙΟ a ThyA-11 potvrdila, že fragment „thy A Kan“ (2,6 kb) v chromozómu byl nahrazen fragmentem „Mhy A AKan“ (2,1 kb). Růst výsledného kmene byl pozorován pouze když do kultivačního média byl přidán thymin (200 pg/ml). Kmen byl pojmenován V. cholerae JSI569 A/AyAAKan,
-8CZ 301662 B6
Přímá delece genu Z/ry A z E cholerae
Pro tento experiment byly užity 5- a 3-lemující sekvence genu thy A. Byl zkonstruován nový suicidální vektor pMT SUICIDE-1 (obr. 14), který obsahuje replikační počátek R6K, gen mob z RP4, gen rezistence k chloramfenikolu a vícečetné klonovací místo z plazmidu Litmus (New England Biolabs). Byl připraven modifikovaný fragment, kde kódující oblast genu thy A byla nahrazena vícečetným klonovacím místem (odvozeným z Litmus 28) a byly ponechány jen úseky lemující 5'a 3-konec lokusu thy A V. cholerae (tzv. 5' a 3-lemující úseky). Takto vzniklý plazmid byl použit k vytvoření kmenu E cholerae, kde je odstraněn celý gen thy A.
o
Jako výchozí materiál pro tuto konstrukci byl použit plazmid pMT SUICIDE-l (poskytl M. Lebens, nepublikováno). Na základě 5' a 3'-lemujících ůseků lokusu thy A byly navrženy následující oligonukleotidové primery:
ThyA-33: 5'- GGA CTA GTG GGT TTC CTT TTT GCT AT -3', odpovídající nukleotidům 109 až 126 v sekvence id. č. 2 (obr.
2) (5-úsek oblasti thy A) se štěpným místem Spěl (označeno tučně) a
ThyA-34: 5'- CCC CGC TCG AGA CCC TAT TTT GCT GCT AC -3', odpovídající komplementární sekvenci bází 815 až 832 v sekvence id. č. 2 s připojeným štěpným místem Xhol (označeno tučně).
Tento pár oligonukleotidových primerů poskytuje v PCR fragment velikosti 743 baží odpovídající 5'-lemujícímu úseku genu thy A.
ThyK-31: 5'- CGG GGT ACC TGG CTT GAT GGG TTT TAT -3', odpovídající nukleotidům 22 až 39 v sekvence id. č. 3 {obr.
3) (3-lemující úsek lokusu thyA) se štěpným místem KpnI (uvedeno tučně), a
ThyA-32: 5'- GAA GGC CTT CGC CTC TGC TTG CGA CT -3', odpovídající komplementární sekvenci bází 731 až 749 v sekvence id. č. 3 se štěpným místem Stul (uvedeno tučně).
Tento pár oligonukleotidových primerů v PCR poskytuje fragment velikosti 746 baží odpovídající 3'-lemujíčímu úseku genu thy A.
-9CZ 301662 B6
Jako templát pro PCR byl použit preparát chromozómové DNA z f cholerae JSI569 (obr. 13).
Amplifikovaná DNA byla naštěpena vhodnými restrikčními enzymy a klonována do vektoru pMT-SUICIDE 1 (obr. 14 a 15), čímž byl vytvořen plazmid ρΜΤΔζΛχΑ V. cholerae, který obsahuje asi 700 bp dlouhý úsek upstream (proti směru transkripce) od 5 -konce genu thy A a stejně velký úsek downstream (po směru transkripce) od 3-konce genu thy A (tj. 5 - a 3'lemující úseky).
Tento plazmid byl vnesen do E. coli S17—1 a použit v konjugaěních experimentech jak bylo již io popsáno výše. Jako příjemce (recipient) byl použit kmen V. cholerae JSI569 4.4. Konjugace byla provedena na LB agaru s přídavkem rifampicinu, chloramfenikolu a thyminu. Exkonjugáty, které ztratily sebevražedný plazmid byly selektovány na základě vnímavosti k chloramfenikolu.
Výsledky: Kolonie vnímavé k chloramfenikolu a rezistentní k rifampicinu byly selektovány. PCR amplifikace thy A s primery TAyA-lO a ThyA-11 vedla ke vzniku velikosti 1,4 kb z nativního genu thy A a fragmentu velikosti 0,6 kb z genu Athy A. Tím bylo potvrzeno, že gen thy A byl v chromozómu deletován. Kromě toho 'tyto baktérie byly schopné růstu pouze na médiu s přídavkem thyminu. Tento kmen byl pojmenován V. cholerae J51569.
Exprese B-podjednotky teplotně labilního enterotoxinu z E. coli (LTB) a sj26 glutathion-Stransferázy (GST) ze Schistosoma japonicum ve V. cholerae JS1569 AthyA
Byly zkonstruovány expresní vektory, obsahující gen thy A z A. coli, replikační počátek z vektoru s vysokým kopií pUC19, promotor tac a terminátor transkripce trp A nezávislý na faktoru rhó.
V jednom z těchto dvou vektorů byl vložen gen /aclq, aby byla regulována exprese z promotoru tac, který obsahuje také sekvenci lac operátoru (obr. 16 a 17).
Exprese proteinu LTB v kmenu V. cholerae JSI569 AthyA
Expresní vektor ukázaný na obr. 16 byl eíektroporací vnesen do buněk V. cholerae JSI569 AthyA. Transformanty byly selektovány na MS-agaru. Jednotlivé kolonie byly namnoženy, aby bylo možné provést minipreparaci plazmidů, které pak byly ověřeny restrikční analýzou. Pro expresi byly transformanty kultivovány na, MS médiu při teplotě 37 °C v protřepávané kultuře. Kultivační médium pak bylo odebráno a testováno na přítomnost LTB testem GM1-ELISA.
Výsledky: V testu GM1-ELISA bylo zjištěno, že kultura vyprodukovala alespoň 300 pg/ml LTB. SDS-PAGE a westernový přenos se specifickými monoklonálními protilátkami dále že secernovaný protein byl LTB.
Exprese proteinu GST v kmenu K cholerae JSI569 AthyA
Gen sj26 glutathion-S-transferázy (GST) ze Schistosoma japonicum byl klonován do expresního vektoru uvedeného na obr. 17. Tento vektor je shodný s prvním vektorem, až na sekvenci genu faclq, která dovoluje regulovat expresi rekombinantního proteinu. Vektor byl eíektroporací vnesen do buněk V. cholerae JSI569 AthyA. Transformanty byly selektovány na MS-agaru. Jednotlivé kolonie byly namnoženy, aby bylo možné provést minipreparaci plazmidů, které pak byly ověřeny restrikční analýzou. Pro expresi byly transformanty kultivovány na MS médiu při teplotě 37 °C v protřepávané kultuře s přídavkem IPTG.
Výsledky: Rekombinantní protein byl nalezen v cytoplazmě V. cholerae SDS-PAGE a westernový přenos s monoklonálními protilátkami specifickými k GSM (Pharmacia BioTech, Uppsala) potvrdily, že byl exprimována skutečně GST. Hladinu exprese bylo obtížné stanovit, neboť GST protein byl exprimován intracelulámě, ale byla zhodnocena jako přibližně shodná s hladinou LTB.
- 10CZ 301662 B6
Použitá literatura
I. Molin, S., K. A. Gerdes. 1984. Stabilized plasmids. US Patent 4,760,022.
2. Morona, R., and S. R. Attridge. 1987. Non-antibiotic markér systém. EPC-A-0251579.
3. Green, J.M., Β. P. Nichols, and R. G. Matthews. 1996. Folate biosynthesis, reduction and polyglutamylation. In; F. C. Neidhardt, R. Curtiss III, J. L. Ingraham, E. C. C. Lin, Κ. B. Low, B. Magasanik, W. S. Reznikoff, M. Riley, M. Schaechter and Η. E. Umbarger (Eds.) Escherichia coli and Salmonella cellular and molecular biology. ASM Press Washington D.C. pp665-673.
4. Neill, R. J., Β. E, Ivins, and R. K. Holmes. 1983. Synthesis and secretion of the plasmidcoded heat-labile enterotoxin of Escherichia coli in Vibrio cholerae. Science. 221:289-290.
5. Sandkvist, Μ., M. Bagdasarian, S. P. Howard, and V. J. DiRita. 1995. Interaction between the autokinase EpsE and EpsL in the cytoplasmic membrane is required for extracellular secretion in
Vibrio cholerae. EMBO J, 14: 1 664-1 673.
6. Neuhard, J. and R. A. Kelln. 1996. Biosynthesis and conversions of pyrimidines. In: F. C. Neidhardt, R. Curtiss III, J. L. Ingraham, E. C. C. Lin, Κ. B. Low, B. Magasanik,
W. S. Reznikoff, M. Riley, M. Schaechter and Η. E. Umbarger (Eds.) Escherichia coli and Salmonella cellular and molecular biology. ASM Press Washington D.C. pp580-599.
7. Kaper, J. Β., H. Lockman, Μ. M. Baldini, and Μ. M. Levine. 1984. A recombinant live oral cholera vaccine. Biotechnology 2: 345-349.
8. Sanchez, J., and J. Holmgren. 1989. Recombinant systém for overexpression of cholera toxin B subunit in Vibrio cholerae as a basis for vaccine development. Proč. Nati. Acad. Sci. USA. 86: 481—485.
9. Wilson, K. 1994. Preparation of genomic DNA from Bacteria. In Current protocols in Biology (F.A. Ausubel, R. Brent, R.E. Kíngston, D.D. Moore, J. G. Seidman, J.A. Smith, and K. Struhl, eds.) pp, 2.4.1-2.4.2 John Wiley & Sons, New York.
10. Sheen, J. 1994. High-efficency transformation by electroporation. In Current protocols in
Molecular Biology (F.A. Ausubel, R. Brent, R.E. Kingston, D.D. Moore, J.G. Seidman,
J. A. Smith, and K. Struhl, eds.) pp. 1.8.4-1,8.5. John Wiley & Sons, New York.
11. Lebens, M., S. Johansson., J. Osek., M. Lindblad and J. Holmgren. 1993. Large-scale production of Vibrio cholerae toxin B subunits for use in oral vaccines. Biotechnology. 11: 1574—
1578.
12. Sanger, F., S. Nicklen, and A. R. Coulson. 1977. DNA sequencing with chainterminating inhibitors. Proč. Nati. Acad. Sci. USA 74: 5 463-5 467.
13. Program Manual for the Wisconsin Package. Version 8. September 1994. Genetics Computer
Group, 575 Science Drive, Madison Wisconsin.
14. Milion, D. L., A. Nordqvist, and H. Wolf-Watz. 1992. Cloning a metalloprotease gene involved in the virulence mechanism of Vibrio anguillarum J. Bacteriol. 174: 7235-7244.
15. Milton, D. L., R. 0'Toole, P. Hógstedt, and H. Wolf-Watz. 1996. Flagellin A is essential for the virulence of Vibrio anguillarum J. Bacteriol. 176: 1310—1319.
- 11 CZ 301662 B6
16. Belfort, M., G. Maley, J. Pedersen-Lane and F. Maley. 1983. Primary tnicture of the
Escherichia coli thyA gene and its thymidylate synthase product. Proč. Nati, Acad. Sci. USA 80:
4914-4918.
17. Fleischmann, R. D,, Adams, M. D., White, O., Clayton, R. A., Kirkness, E. F., Kerlavage,
A. R., Bult, C J., Tomb, J-F., Dougherty, B. A., Merrick, J. M., McKenney, K., Sutton, G., FitzHugh, W., Fileds, C. A., Gocayne, J. D., Scott, J. D., Shirely, R,, Liu, L.-L, Glodek, A., Kelley, J.M. Weidman, J. F., Phillips, C. A., Spriggs, T., Hedblom, E., Cotton, M. D., Utterback, T. R., Hanna, M. C., Nguyen, D. T., Saudek, D. M., Brandon, R. C., Fine, L. D., Fritchman, J. L,, io Fuhrmann, J, L,, Geoghagen N.S.M., Gnehm, C. L., McDonald, L. A., Smáli, K. V., Fraser, C. M., Smith, H. O., and J. C. Venter. 1995. Whole-genome random sequencing and assembly of
Haemophilus influenzae RD. Science 269: 496-512.

Claims (6)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    20 1. Kmen Mhy A Vibrio cholerae postrádající v chromozomu celý gen thyA, který má nukleotidovou sekvenci id. č. 1, nebo kmen AthyA Vibrio cholerae obsahující v genu thyA deleci a současně inzerci nekódující DNA, připravitelný způsobem, který zahrnuje kroky:
    poskytnutí thymin-dependentního kmene Vibrio cholerae, provedení místně-cílené inzerce genu kanamycinové rezistence ve formě genového bloku KanR do Pstl místa genu thyA, a delece 209 párů bází z genu thyA upstream od místa inzerce a 261 párů bází z genového bloku
    30 KanR, čímž se získá kmen AthyA.
  2. 2. Kmen A//ryA Vibrio cholerae podle nároku 1 obsahující jeden nebo několik episomálních
    35 autonomně se replikujících DNA elementů majících funkční gen thyA, což umožňuje kmenu růst v růstovém médiu za nepřítomnosti thyminu, přičemž jeden nebo několik episomálních autonomně se replikujících DNA elementů dále obsahuje strukturní gen kódující protein,
  3. 3. Kmen AthyA Vibrio cholerae podle nároku 2, kde episomální autonomně se replikující DNA
    40 element je plazmid.
  4. 4. Kmen AthyA Vibrio cholerae podle nároku 2, kde episomální autonomně se replikující DNA element obsahuje cizorodý gen thyA.
    45
  5. 5. Kmen AthyA Vibrio cholerae podle nároku 4, kde cizorodý gen thyA je gen z E. coli.
  6. 6. Kmen AthyA Vibrio cholerae podle nároku 2, kde kódovaný protein je vybrán z B-podjednotky tepelně labilního enterotoxinu Escherichia coli (LTB) a glutathion-S-transferázového 26 kD proteinu ze Schistosoma japonicum (GST 26 kD).
CZ20004354A 1998-05-26 1999-05-21 Kmen deltathyA Vibrio cholerae postrádající funkci genu thyA CZ301662B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE9801852A SE9801852D0 (sv) 1998-05-26 1998-05-26 Method of producing thy A-strains of Vibro cholerae, suck strains and their use

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ20004354A3 CZ20004354A3 (en) 2001-05-16
CZ301662B6 true CZ301662B6 (cs) 2010-05-19

Family

ID=20411459

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20004354A CZ301662B6 (cs) 1998-05-26 1999-05-21 Kmen deltathyA Vibrio cholerae postrádající funkci genu thyA

Country Status (17)

Country Link
US (1) US7261899B1 (cs)
EP (1) EP1080211B1 (cs)
AT (1) ATE474055T1 (cs)
AU (1) AU4499999A (cs)
BR (1) BR9910703B1 (cs)
CA (1) CA2329255C (cs)
CZ (1) CZ301662B6 (cs)
DE (1) DE69942579D1 (cs)
DK (1) DK1080211T3 (cs)
EE (1) EE05520B1 (cs)
HU (1) HUP0102310A3 (cs)
IS (1) IS2904B (cs)
NO (1) NO327856B1 (cs)
PL (1) PL197450B1 (cs)
RU (1) RU2265657C2 (cs)
SE (1) SE9801852D0 (cs)
WO (1) WO1999061634A1 (cs)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CU22661A1 (es) * 1997-12-30 2001-04-27 Cnic Ct Nac Investigaciones Nuevos candidatos vacunales de vibrio cholerae y método de obtención
SE9801852D0 (sv) * 1998-05-26 1998-05-26 Sbl Vaccin Ab Method of producing thy A-strains of Vibro cholerae, suck strains and their use
RU2193598C1 (ru) * 2001-07-26 2002-11-27 Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Штамм бактерий vibrio cholerae km 200 - продуцент холерного токсина и токсин - корегулируемых пилей адгезии
GB0121998D0 (en) 2001-09-11 2001-10-31 Acambis Res Ltd Attenuated bacteria useful in vaccines
RU2236455C1 (ru) * 2003-10-27 2004-09-20 Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Штамм бактерий vibrio cholerae км 168 - основа для конструирования живых вакцин против диарейных заболеваний, вызываемых патогенными штаммами v. cholerae о139
GB0325494D0 (en) * 2003-10-31 2003-12-03 Sbl Vaccin Ab Expression system
JP2010088301A (ja) * 2007-02-01 2010-04-22 Ajinomoto Co Inc L−アミノ酸の製造法
DK3503915T5 (da) * 2016-08-26 2024-09-02 Telesis Bio Inc Genetisk modificerede Vibro natriegen

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0251579A2 (en) * 1986-06-24 1988-01-07 Enterovax Research Pty. Ltd. Non-antibiotic marker system
US5470729A (en) * 1983-03-04 1995-11-28 University Of Maryland At Baltimore Method of isolating restriction fragment deletions in Vibrio cholerae, and products thereof
EP1080211A1 (en) * 1998-05-26 2001-03-07 Active Biotech AB Method of producing thy-a-deficient strains of vibrio cholerae, such strains and their use

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5399494A (en) * 1983-03-04 1995-03-21 The University Of Maryland System Vibrio cholerae strain CVD103Hgr, method of making same, and vaccines derived therefrom
GB2177097A (en) 1985-06-18 1987-01-14 Genencor Inc Stable maintenance of nucleic acid in recombinant cells
US5198343A (en) 1986-08-05 1993-03-30 Transgene, S.A. Method for expressing a heterologous protein in a dapD- mutant of E. coli and the strain obtained
IE892131A1 (en) * 1989-06-30 1991-01-02 Univ Cork Marker genes for genetic manipulation
CA2156191A1 (en) * 1993-02-22 1994-09-01 Stephen B. Calderwood Heterologous antigens in live cell vaccine strains
US5434065A (en) * 1993-05-06 1995-07-18 President And Fellows Of Harvard College In vivo selection of microbial virulence genes
MX9703017A (es) * 1994-10-24 1997-10-31 Texas A & M Univ Sys Inmunizacion oral con plantas transgenicas.
US6251866B1 (en) * 1997-08-05 2001-06-26 Watson Laboratories, Inc. Conjugates targeted to the interleukin-2 receptor
CU22661A1 (es) * 1997-12-30 2001-04-27 Cnic Ct Nac Investigaciones Nuevos candidatos vacunales de vibrio cholerae y método de obtención

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5470729A (en) * 1983-03-04 1995-11-28 University Of Maryland At Baltimore Method of isolating restriction fragment deletions in Vibrio cholerae, and products thereof
EP0251579A2 (en) * 1986-06-24 1988-01-07 Enterovax Research Pty. Ltd. Non-antibiotic marker system
EP1080211A1 (en) * 1998-05-26 2001-03-07 Active Biotech AB Method of producing thy-a-deficient strains of vibrio cholerae, such strains and their use

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
databaze EMBL, pristupovÚ cislo AJ006514, 5.6.1998 *
databaze EMBL, pristupovÚ cislo Y17135, 1.5.1998 *

Also Published As

Publication number Publication date
US7261899B1 (en) 2007-08-28
AU4499999A (en) 1999-12-13
NO20005950D0 (no) 2000-11-24
DE69942579D1 (de) 2010-08-26
IS2904B (is) 2014-10-15
WO1999061634A1 (en) 1999-12-02
BR9910703B1 (pt) 2014-10-29
HUP0102310A3 (en) 2003-10-28
CA2329255C (en) 2009-03-10
CA2329255A1 (en) 1999-12-02
PL344483A1 (en) 2001-11-05
HK1037206A1 (en) 2002-02-01
SE9801852D0 (sv) 1998-05-26
PL197450B1 (pl) 2008-03-31
EE200000686A (et) 2002-04-15
RU2265657C2 (ru) 2005-12-10
BR9910703A (pt) 2001-01-30
DK1080211T3 (da) 2010-10-18
EP1080211B1 (en) 2010-07-14
IS5724A (is) 2000-11-23
WO1999061634A9 (en) 2001-12-13
EP1080211A1 (en) 2001-03-07
CZ20004354A3 (en) 2001-05-16
HUP0102310A2 (hu) 2001-10-28
NO327856B1 (no) 2009-10-05
NO20005950L (no) 2001-01-25
EE05520B1 (et) 2012-02-15
ATE474055T1 (de) 2010-07-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2096529C (en) Recombinant avirulent salmonella antifertility vaccines
KR101947945B1 (ko) L-아미노산을 생산하는 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-아미노산의 생산방법
JP2003506007A (ja) 抗原送達用プラスミド維持系
ES2346442T3 (es) Mantenimiento de plasmido.
AU2002321644B2 (en) Bacterial vaccine
JP5966018B2 (ja) 改変ボルデテラ・パータシス株
JP2004236637A (ja) 多糖類生成に関与する遺伝子及びその利用
EP1322766A2 (de) Verfahren zur veränderung des genoms von corynebakterien
CZ301662B6 (cs) Kmen deltathyA Vibrio cholerae postrádající funkci genu thyA
JP2026503706A (ja) 産物製造のための発現システム
EP1368480B1 (de) Verfahren zur veränderung des genoms von gram-positiven bakterien mit einem neuen konditional negativ dominanten markergen
CN114630896B (zh) 由于yeeo基因失活而具有提高的芳香族氨基酸产生能力的菌株
CZ281078B6 (cs) Mikroorganismy ke stabilizaci plasmidů
JP2007505616A (ja) 非抗生物質耐性選択マーカー含有選択システム
CN112771168B (zh) 包含变体inc编码链的核酸分子
MXPA00011604A (en) Method of producing thy
HK1037206B (en) Method of producing thy-a-deficient strains of vibrio cholerae, such strains and their use
US20170335360A1 (en) Bacillus megaterium recombinant protein expression system
HK1101704B (en) Plasmid maintenance

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20150521