DD252000A1 - Verfahren zur mikrobiellen herstellung von gibberellinsaeure - Google Patents
Verfahren zur mikrobiellen herstellung von gibberellinsaeure Download PDFInfo
- Publication number
- DD252000A1 DD252000A1 DD29341486A DD29341486A DD252000A1 DD 252000 A1 DD252000 A1 DD 252000A1 DD 29341486 A DD29341486 A DD 29341486A DD 29341486 A DD29341486 A DD 29341486A DD 252000 A1 DD252000 A1 DD 252000A1
- Authority
- DD
- German Democratic Republic
- Prior art keywords
- solid substrate
- fusarium moniliforme
- gibberellic acid
- microbial production
- culture
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 12
- IXORZMNAPKEEDV-UHFFFAOYSA-N gibberellic acid GA3 Natural products OC(=O)C1C2(C3)CC(=C)C3(O)CCC2C2(C=CC3O)C1C3(C)C(=O)O2 IXORZMNAPKEEDV-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims abstract description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims abstract description 9
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 title claims abstract description 9
- 229930191978 Gibberellin Natural products 0.000 title description 2
- 239000003448 gibberellin Substances 0.000 title description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 title 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims abstract description 30
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims abstract description 19
- 241000233732 Fusarium verticillioides Species 0.000 claims abstract description 12
- 239000005980 Gibberellic acid Substances 0.000 claims abstract description 8
- IXORZMNAPKEEDV-OBDJNFEBSA-N gibberellin A3 Chemical compound C([C@@]1(O)C(=C)C[C@@]2(C1)[C@H]1C(O)=O)C[C@H]2[C@]2(C=C[C@@H]3O)[C@H]1[C@]3(C)C(=O)O2 IXORZMNAPKEEDV-OBDJNFEBSA-N 0.000 claims abstract description 8
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 8
- 238000005273 aeration Methods 0.000 claims description 3
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 claims description 3
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 abstract description 11
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 abstract description 11
- 239000003630 growth substance Substances 0.000 abstract description 2
- 241000209094 Oryza Species 0.000 description 5
- 235000007164 Oryza sativa Nutrition 0.000 description 5
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 5
- 235000009566 rice Nutrition 0.000 description 5
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 4
- 241000209219 Hordeum Species 0.000 description 4
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 4
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 4
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 4
- XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N Ethyl acetate Chemical compound CCOC(C)=O XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 3
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 3
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 2
- 240000008042 Zea mays Species 0.000 description 2
- 235000005824 Zea mays ssp. parviglumis Nutrition 0.000 description 2
- 235000002017 Zea mays subsp mays Nutrition 0.000 description 2
- 235000021329 brown rice Nutrition 0.000 description 2
- 150000001722 carbon compounds Chemical class 0.000 description 2
- 235000005822 corn Nutrition 0.000 description 2
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 241000235349 Ascomycota Species 0.000 description 1
- 235000007319 Avena orientalis Nutrition 0.000 description 1
- 244000075850 Avena orientalis Species 0.000 description 1
- 101100117387 Catharanthus roseus DPAS gene Proteins 0.000 description 1
- 235000007340 Hordeum vulgare Nutrition 0.000 description 1
- 244000062793 Sorghum vulgare Species 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 231100000676 disease causative agent Toxicity 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 235000019713 millet Nutrition 0.000 description 1
- 229910017464 nitrogen compound Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000002830 nitrogen compounds Chemical class 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- 238000004809 thin layer chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000009423 ventilation Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Gibberellinsaeure. Es ist das Ziel der Erfindung, ein Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Gibberellinsaeure zu entwickeln, bei dem mit einem Festsubstrat-Naehrmedium oekonomisch relevante Gibberellinsaeure-Konzentrationen erreicht werden fuer den Einsatz als Wachstumsregulator an Pflanzen. In der Erfindung werden geeignete Fermentationsbedingungen fuer Fusarium moniliforme SHELD. m567 auf pflanzlichen Festsubstrat-Fermentationsmedien zur Produktion von Gibberellinsaeure beschrieben.
Description
Anwendungsgebiet der Erfindung
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Gibberellinsäure. Gibberellinsäure kann als Wachstumsregulator bei Pflanzen eingesetzt werden.
In bisher beschriebenen Verfahren wird Gibberellinsäure = GA in mikrobiellen Submerskulturen hergestellt, indem die zunächst eingeleitete aktive Wachstumsphase der Mikroorganismen unterbrochen wird, wenn ein erforderlicher Bestandteil des Nährmediums, z. B. Stickstoff oder Kohlenstoff, aufgebraucht ist. Die anschließende Phase der GA-Bildung wird durch allmähliche Zufütterung unter Vermeidung hemmender Konzentrationen von Kohlenstoff-Verbindungen positiv beeinflußt (BORROW, A. et al. [1958/1963] DPAS 1 150 348; zusammenfassende Literaturübersicht bei BRUECKNER, B. und BLECHSCHMIDT, D. [1986], J. Basic. Microbiol. im Druck). Die vorhandenen Patente befassen sich ausschließlich mit der fermentativen Bildung von GA in Flüssigmedien. Nachteilig bei diesen Verfahren ist ein Fermentationsregime mit der Notwendigkeit einer Zufütterung nach unterbrochener Wachstumsphase und die erforderliche GA-Isolierung aus großem wäßrigem Flüssigkeitsvolumen. Bei Untersuchungen über den Einfluß komplexer Nährsubstrate auf die Gibberellinbildung von Fusarium moniliforme SHELD. wurde die höchste GA-Bildung auf festem Reissubstrat in Standkulturen mit 10 g und 100 g Substrat in einer Konzentration von 1 500-2500 mg GA/kg Substrat halbquantitativ dünnschichtchromatographisch ermittelt (FOCKE, J. et al. [1967], Biol. Zbr. 86, 509-519). Diese Ausbeuten sind für eine industrielle GA-Produktion unzureichend.
Ziel der Erfindung ist es, ein Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von GA zu entwickeln, bei dem mit einem Festsubstrat-Nährmedium ökonomisch relevante GA-Konzentrationen erreicht werden.
Aufgabe der Erfindung ist es, ein einfaches Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von GA durch Anwendung der Festsubstratfermentation zu erhalten. Im Gegensatz zu den bisher beschriebenen Submerskulturen von Ga bildenden Pilzen mit der Notwendigkeit einer Substrat-Zufütterung nach unterbrochener Wachstumsphase sollen dabei Bedingungen geschaffen werden, die ein mikrobielles Wachstum mit allmählicher Freisetzung zunächst überwiegend polymer gebundener Kohlenstoff- und Stickstoff-Verbindungen gestatten. Damit soll unter Umgehung einer dosierten Zufütterung von Kohlenstoffverbindungen der GA-Gehalt im Nährmedium erhöht werden, um günstige Voraussetzungen für die präparative Gewinnung von GA zu schaffen. Erfindungsgemäß wurde die Aufgabe dadurch gelöst, daß der Stamm m567 von Fusarium moniliforme SHELD. oder eine seiner Selektanten oder Mutanten in einem Festsubstrat kultiviert wird. Fusarium moniliforme SHELD. ist die imperfekte Form von Giberella fujikuroi (SAW.)WR., einem Ascomyceten, dem Erreger der „rosaroten Kolbenfäule" von Mais und der „Bakanae-Krankheit" von Reis. Der Pilz scheidet bei Wachstum auf Reis-Metabolite aus, die zu einem übersteigerten Längenwachstum der Pflanzen führen. Der Stamm ist beim Zentralinstitut für Mikrobiologie und experimentelle Therapie, Jena, der AdW der DDR unter der Bezeichnung hinterlegt.
Die Fermentation erfolgt unter aeroben Bedingungen in einem Festsubstrat-Nährmedium aus vorbehandelten Bestandteilen von Früchten unterschiedlicher Pflanzen als C- und N-Quelle in einem Temperatur-Bereich von 20°C bis 35°C, vorzugsweise von 25°C bis 29°C und einem Feuchtigkeitsgehalt von 35% bis 60%, vorzugsweise von 40% bis 50%. Die als Festsubstrat-Fermentation durchzuführenden Hauptkulturen werden mit einer 3 Tage alten Vorkultur beimpft. Als Impfmaterial für die Vorkultur dienen Mycel-Agarstücke.
Im Gegensatz zu den bisher durch Festsubstrat-Fermentation von Fusarium moniliforme SHELD. bei 14tägiger Kulturzeit erzielten Konzentrationen von 1 500-2500 mg GA/kg Substrat werden mit dem Stamm m567 unter den gewählten Bedingungen bei 14- bis 20tägiger Kulturzeit Konzentrationen von durchschnittlich 8000 mg GA/kg Festsubstrat erreicht. Im Gegensatz zu den bisher gewählten Bedingungen erfolgt die Fermentation als Standkultur oder in rotierenden Gefäßen unter Belüftung, so daß im Gegensatz von bisher eingesetztem 10 g und 100 g Substrat jetzt mindestens 500 g Substrat eingesetzt werden können. Im Gegensatz zu den Befunden, daß nur mit Reis höchste GA-Biidung möglich ist, können vorbehandelte Bestandteile von Früchten auch anderer Pflanzen, wie Gerste, Hirse, Mais, Hafer, vorzugsweise Gerstengraupen, an Stelle von Reis eingesetzt werden. GA wird aus dem Medium in einer im Prinzip bekannten Weise isoliert (SCHARCH, I. [1976], Dissertation MLU Halle [S.]).
Ausführungsbeispiele
Die Fermentation erfolgt mit einer Selektante des Stammes.Fusarium moniliforme SHELD. m567. Mit 2 ml einer 3 Tage alten Vorkultur (Saccharose/NHaNCyFlussigmedium als Schüttelkultur) wird das Festsubstrat-Medium angeimpft. Vorbereitung des Festsubstrat-Mediums: In 500 ml Enghals-Standkolben werden 20 g Naturreis mit 16 ml H2O versetzt, 1 h gequollen und 25 min im Autoclaven bei 1210C erhitzt. Die Kultur erfolgt bei 29°C, wobei der GA-Gehalt bis zum 20. Tag nach dem Animpfen ansteigt: Kulturzeit in Tagen: 10 14 18-20
mg GA/kg Substrat: 1 990 5 310 6 310 7 550
Die Analysenwerte sind Durchschnittswerte aus jeweils 3 Einzelkolben-Analysen. Die Analysen erfolgen in bekannter Weise (BU'LOCK, J. D. et al. [1974] Trans. Br. mycol. Soc. 62, 377-389; SCHARCH, I. [1976], Dissertation MLU Halle [S.]) nach Extraktion mit Essigsäureethylester durch Fluoreszensmessung.
Die Fermentation erfolgt mit einer Selektante des Stammes Fusarium moniliforme SHELD. m567. Mit 2 ml einer 3 Tage alten Vorkultur (Saccharose/NH4NOrFlüssigmedium als Schüttelkultur) wird das Festsubstrat-Medium angeimpft. Vorbereitung des Festsubstrat-Mediums: In 500 ml Weithals-Standkolben werden 20 g Gersten-Graupen mit 18 ml H2O versetzt, 1 h gequollen und 25 min im Autoclaven bei 121 °C erhitzt. Die Kultur erfolgt bei 290C, wobei der GA-Gehalt nach 15 Tagen Kulturzeit 8240 mg/kg Substrat beträgt.
Die Fermentation erfolgt mit einer Selektante des Stammes Fusarium moniliforme SHELD. m567. Mit 10 ml einer 3 Tage alten Vorkultur (Saccharose/NH4NO3-Flüssigmedium als Schüttelkultur) wird das Festsubstrat-Medium angeimpft. Vorbereitung des Festsubstratmediums: In einer 5-l-Glasflasche werden 500 g Naturreis mit 260 ml H2O 1 h gequollen und 25 min im Autoclaven bei 1210C erhitzt. Die Kultur erfolgt bei 29°C unter Rotation der Glasflasche und Belüftung mittels steriler Luft, wobei der GA-Gehalt der Kultur nach 24 Tagen Kulturzeit 7950 mg/kg Substrat beträgt.
Die Fermentation erfolgt mit einer Selektante des Stammes Fusarium moniliforme SHELD. m567. Mit 10 ml einer 3 Tage alten Vorkultur (Saccharose/NH4N03-Flüssigmedium als Schüttelkultur) wird das Festsubstrat-Medium angeimpft. Vorbereitung des Festsubstrat-Mediums: In einer 5-l-Glasflasche werden 500 g Gerstengraupen mit 260 ml H2O 1 h gequollen und 25 min im Autoclaven bei 121 °C erhitzt. Die Kultur erfolgt bei 29°C unter Rotation der Glasflasche und Belüftung mittels steriler Luft, wobei der GA-Gehalt der Kultur nach 14 Tagen Kulturzeit 8230 mg/kg Substrat beträgt.
Claims (4)
1. Verfahren zur mikrobiellen Herstellung von Gibberellinsäure, gekennzeichnet dadurch, daß der Stamm Fusarium moniliforme SHELD. m567 oder eine seiner Selektanten oder Mutanten in einem Festsubstrat-Nährmedium kultiviert wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, gekennzeichnet dadurch, daß Fusarium moniliforme SHELD. m567 unter aeroben Bedingungen in einem Festsubstrat-Nährmedium aus vorbehandelten Bestandteilen von Früchten unterschiedlicher Pflanzen bei 20-35°C, vorzugsweise bei 25-29°C und einem Feuchtigkeitsgehalt von 35-60%, vorzugsweise von 40-50% kultiviert wird.
3. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 und 2, gekennzeichnet dadurch, daß die Kulturzeit 14-20 Tage beträgt.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 und 2, gekennzeichnet dadurch, daß Fusarium moniliforme SHELD. m567 unter Rotation und Belüftung kultiviert wird.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD29341486A DD252000A1 (de) | 1986-08-01 | 1986-08-01 | Verfahren zur mikrobiellen herstellung von gibberellinsaeure |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD29341486A DD252000A1 (de) | 1986-08-01 | 1986-08-01 | Verfahren zur mikrobiellen herstellung von gibberellinsaeure |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DD252000A1 true DD252000A1 (de) | 1987-12-02 |
Family
ID=5581662
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DD29341486A DD252000A1 (de) | 1986-08-01 | 1986-08-01 | Verfahren zur mikrobiellen herstellung von gibberellinsaeure |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DD (1) | DD252000A1 (de) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2008062447A3 (en) * | 2006-09-15 | 2008-12-11 | Reliance Life Sciences Pvt Ltd | Improved process for gibberellic acid production with fusarium moniliforme strains |
-
1986
- 1986-08-01 DD DD29341486A patent/DD252000A1/de not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2008062447A3 (en) * | 2006-09-15 | 2008-12-11 | Reliance Life Sciences Pvt Ltd | Improved process for gibberellic acid production with fusarium moniliforme strains |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE2757826C2 (de) | Verfahren zur Durchführung von biochemischen Reaktionen mit Hilfe von Mikroorganismen | |
| DE68927103T2 (de) | Verfahren zur herstellung von gamma- und delta-lactonen | |
| DE69228438T2 (de) | Mikrobielles Verfahren zur Herstellung von Trans-4-hydroxy-L-Prolin | |
| EP0196628B1 (de) | Ein neues Ansamycin-Antibiotikum, ein mikrobielles Verfahren zu seiner Herstellung und seine Verwendung als Arzneimittel | |
| DE3525411C2 (de) | ||
| CA2025678C (en) | Natural delta-lactones and process of the production thereof | |
| DD252000A1 (de) | Verfahren zur mikrobiellen herstellung von gibberellinsaeure | |
| DE3739017C2 (de) | Mycobacterium-roseum sp. nov. NCAIM B(P) 000339 und Verfahren zur mikrobiologischen Herstellung von 9alpha-(Hydroxy)-4-androsten-3,17-di-(on) | |
| JPH0286785A (ja) | γ―イロンの製造方法 | |
| DE68924991T2 (de) | 2-Pyranon-Derivat und Verfahren zu dessen Herstellung. | |
| JPS6010718B2 (ja) | メイタンシノ−ル,メイタナシンおよびメイタンシノ−ル・プロピオネ−トの製造法 | |
| DE3706838C2 (de) | Neue, physiologisch aktive Substanz, die einen Aldose-Reduktaseinhibitor darstellt, und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
| JPS60126091A (ja) | γ−リノレン酸含量の高い脂質成分の製造方法 | |
| DE69001554T2 (de) | Polyzyklische Verbindungen und deren Herstellung. | |
| DE2921052C2 (de) | ||
| DE19740030A1 (de) | Ampullosporin, Verfahren zu dessen Herstellung und dessen Verwendung | |
| DE1617803A1 (de) | Ein bisher unbekanntes Antibioticum sowie ein Verfahren zu dessen Herstellung | |
| DD244566A5 (de) | Verfahren zur herstellung von 1-methyl-1,4-androstadien-3,17-dion | |
| DE1903162A1 (de) | Gaerungsverfahren zur Herstellung von Aminosaeuren | |
| AT269363B (de) | Verfahren zur Herstellung eines Produktionsstammes einer Claviceps purpurea (Fr.) Tul.-Kultur zur Erzeugung von Mutterkornalkaloiden | |
| AT233168B (de) | Verfahren zur Herstellung des Antibiotikums ZN-6 und seiner Salze | |
| DD251574A1 (de) | Verfahren zur herstellung von aklanonsaeure | |
| DD215800A1 (de) | Verfahren zur herstellung von induktoren der zytodifferenzierung | |
| EP0189430B1 (de) | Verfahren zur herstellung von festuclavin | |
| CN117417255A (zh) | 来源于植物内生真菌的十氢化萘衍生物及制备方法与应用 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| ENJ | Ceased due to non-payment of renewal fee |