DD266800A5 - Verfahren zur herstellung von methylendioxyphenanthren- und stilbenderivaten - Google Patents

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L Subramanian
Klaus Goerler
Guenter Krumbiegel
M Hanack
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Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Methylendioxyphenanthren- und Stilbenderivaten. Erfindungsgemaess werden Verbindungen der allgemeinen Formel (I) hergestellt und deren pharmazeutisch vertraegliche Salze. In der Formel bedeuten: R1 ein H-Atom, Methoxy oder Ethoxy; R2 und R3 H-Atome oder zusammen eine aromatische C-C-Bindung. Formel (I)

Description

R1 für H oder OCH3 steht, mit einem Polysulfid zu einer Verbindung der Formel (I) denitriert und falls R1 für OCH3 steht, die OCH3-Gruppe gewünschtenfalls durch Ether-Spaltung in oine OH-Gruppe umwandelt.
Anwendungsgebiet der Erfindung
DIo Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Methylendioxyphonaithren- und Stilbondorivaton und Arzneimittel, die diese Verbindungen enthalten.
Die erfindungsgemäß hergestellten Verbindungen besitzen wertvollo pharmakologische Eigenschaften, insbesondere Immunstimulierende Wirkung und sind geeignet zur Prophyl»xe und Therapie von Infektionskrankheiten.
Charakteristik des bekannten Standes der Technik
Als immunostimuliorende Mittel bei Prophylaxe und Therapie von Infektionskrankheiten sind Aristolochiasäuren der Formel (II)
H2O
COOH
(M)
R » H, OCH.
bekannt, die eine phagozytosestelgernde und antivirlale Wirkung entfalten und die Heilerfolge bei Allgemoininfektionen erhöhen und auch erfolgreich zur Behandlung von Eiterungen und Geschwüren appliziert werden können. Bei pharmakologlschen Untersuchungen in höheren Dosisbereichen wurde jedoch kürzlich eine zellulüre Entartung am Vormagen bei der Ratte festgestellt, so daß In der Verabreichung dieser für die Behandlung an sich sehr wertvollen Wirkstoffe Zurückhaltung notwendig erscheint.
Ziel der Erfindung
Ziel der Erfindung ist die Bereitstellung neuer Verbindungen gleichor Wirkungsrichtung, welche die Nachteile bekannter Verbindungen nicht aufweisen.
Darlegung des Wesens der Erfindung
Der Erfindung lic gt die Aufgabe zugrunde, neue Verbindungen mit den gewünschton Eigenschaften und Verfahren zu ihrer Herstellung auf;ufinden. Überraschenderweise wurde gefunden, daß die Verbindungen der allgemeinen Formol (I)
worin Ri ein H-Atom, Methoxy oder Ethoxy bedeutet und R2 und R3 für je ein H-Atom stehen oder zusammen eine aromatische
C-C-Bindung symbolisieren, wobei in diesem lalle R< auch Hydroxyl bedeuten kann,
selbst bei sehr hoher Dosierung (gegenüber der in der Humantherapie üblichen Dosis von 1-1Opg/kg) bei Rauen (10mg/kg)weder makroskopisch noch histologisch Anzeichen einer Plattonepithelhyperplasie ergaben. Desgleichen wurden koinemutagenen Effekte festgestellt.
Sie eignen sich sehr gut zur Prophylaxe und Therapie von Infektionskrankheiten, da sie eine phagozytosostoigernde und
antivirale Wirkung entfalten.
Von diesen Verbindungen ist zwar das 1-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-mothoxy-phenanthren aus J. Nat. Products 46 (1983)
507ff., bekannt, von dem berichtet wird, daß es in Dosen von 90mg/kg (beim Kaninchen) abortiv und von 60 mg/kg (bei der
Maus) implantationshemmend wirkt. Eine immunstimulierende Wirkung desselben war danach nicht zu vermuten. Die Verbindungen der allgemeinen Formel (I) könnon hergestellt freien, indem man
6-Brom-piperonylbromid der Formel
- Br
mit Triphenylphosphin in oinem wasserfreien Lösungsmittel zu einem Phosphoniumsalz der Formel
Hi?C "
umsetzt,
letztere Verbindung mit Benzaldehyd', O-Methoxy-benzaldehyd oder ortho-Ethoxybenzaldehyd in Anwesenheit einer starken
Base zu einem Stilben der Formel
.0
umsetzt,
worin P · für H, OCH3 oder OC2H6 steht,
dieses Stilbenbromid entweder mit einem Metallcyanid, insbesondere Kupforcyanid, in einem polaren oprotlschon Lösungsmittel, insbesondere In Dimethylformamid, in das entsprechende Nitril umwandelt und dieses durch Hydrolyse in eine Säure der Formel (I) überführt
oder obiges Stilbenbromid mit n-Butyllithium und Kohlendioxid in eine Sau.^ der Formel (I) überführt
oDlges Stilbenbromid durch UV-Bestrahlung in das Phenanthrenderivat der Formel
üborführt und diese Verbindung mit einem Metallcyanld oder mit n-Butylllthlum und Kohlensäure in dor oben erwähnten Weise in eine Säure der Formel (I) überführt, und gewünschtenfalls eine Verbindung der Formel (I), bei der Rt und OCH3-Gruppc bedeutet durch Ether-Spaltung in eine Verbindung umwandelt, bei der Ri Hydroxyl bedeutet
eine f\'troverbindung der Formel:
R1 für H oder OCH3 steht, mit einem Polysulf id zu einer Verbindung der Formel (I) donitriort und falls R, für OCH3 steht, die OCHrGruppe gewünschtenfalls durch Ether-Spaltung in eine OH-Gruppe umwandelt.
BoI der Bromlerung des Piperonylalkohols verwendet man als Nledrigalkylcarbonsäure vorzugsweise Essigsäure.
Bei der Herstellung des Phosphoniumsalzes verwendet man als wasserfreies Lösungsmittel z. B. Benzol oder ein Alkylbenzol, vorzugsweise Toluol oder Xylol.
Bei der Kondensation des Phosphoniumsalzes verwendet man als starke Base z. B. ein Alkalimetallalkoholat, vorzugsweise Lithium-Methylat. Das dadurch erhältliche Stilben liegt zu 85% in derZ-Form und zu 16% In der Ε-Form vor. Die beiden Isomeren sind durch Behandlung mit Diethylether zu trennen. Die trans-Vorbindung geht in das Ether über; die gewünschte cis-Verbindung bleibt ungelöst.
Bei der UV-Bestrahlung des Stilbenbromids arbeitet man z. B. in einem Lösungsmittelgemisch aus absolutem THF und absolutem Cyclohexan im Mischungsverhältnis z. B. 1:12 unter Zusatz von Jod und Zufuhr von Stickstoff.
Für die Denitrierung verwondet man als Polysulfid vorzugsweise Ammoniumpolysulfid in schwach alkalischer wäßriger Lösung.
Die 8-Methoxy- bzw. 8-Ethoxyphenanthrenvorbindung (R2 und R3 bilden zusammen eine aromatische C-C-Bindung; R1 steht für Methoxy oder Ethoxy) können durch Ether-Spaltung in die entsprechenden 8-Hydroxyverbindungen überführt werden, beispielsweise durch Hydrolyse mit Pyridinhydrochlorid.
Die erfindungsgemäßen Mittel dienen zur Steigerung der Infektabwohr. So bewirken sie eine signifikante Aktivierung der Phagozytose von Leukozyten. Die erfindungsgemäßen Mittel sind deshalb zur Behandlung von Allgemeininfektionen, z. B. durch Mykobakterien oder Pneumokokken, und zur Behandlung von lokalen Infektionen brauchbar. Die erfindungsgemäßen Mittel sind auch anwendbar, wenn eine Depression der Phagozytose vorliogt, beispielsweise nach Anwendung von Corticosteroiden oder Zytostatika Durch Anwendung der erfindungsgemäßen Mittel ist die Phagozytosedeprossion wieder normalisiorbar.
Darüber hinaus wurde eine antivirale Wirkung der erfindungsgemäßen Mittel gefunden.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen wurden u.a. hinsichtlich ihrer makrophagenaktivierenden Wirkung untersucht. Als Parameter wurde din Stimulation von Monozyten und Makrophagen in der Bauchhöhle von Mäusen herangezogen.
Zur Darstellung einer gesteigerten chemotaktischen Einwanderung von Monozyten in die Bauchhöhle und die Differenzierung der Monozyten zu Makrophagen mit gesteigerter Fähigkeit zur Phagozytose ist eine intraperitoneale Applikation der Testsubstanz zweckmäßig.
Die Stimulation ist ein Prozeß, der eine bestimmte Zeit erfordert. Die Prüfung der Phagozytoseaktivität wurde daher als übliches pharmakologlsches Modell nach einer dreitägigen Vorbehandlung der Maust, mit den erfindungsgemäßen Verbindungen vorgenommen. In einigen Testgruppen wurde unmittelbar nach Substanzgabe die intraperitoneale Zellpopulation entnommen, um zu zeigen, daß die beobachtete Stimulation erst nach einer gewissen Inkubationszeit auftrat.
Substanzen und Materialien JIe zu prüfenden Substanzen wurden wäßrig gelöst 0,5 mg/ml und nach Bedarf verdünnt
NH4CI Tris-Puffer
NH4CI: 8,3 g/l
Tris[Tris-(hydroximethyl)- 4,119g/200mlpH = 7,65
amlnomethan):
Mischung: 1 Teil Tris + 9Teile NH4CI, auf pH 7,2 einstellen mit 2 N HCI
PBS/BSA
40,OgNaCI
1,OgKCI auf51 mit H2O auffüllen,
7,2 g Na2HPO4 x 2 H2O pH = 7,4
1,OgKH2PO4 + 0,2 g BSA = Albumin, Bovine (Sigma, No. A-9647) auf 100 ml PBS
«= Dulbecco's modified Eagle medium with L-Glutamlne ohne Phenolrot (Gibco, Cat No. 041-1885)
+ 5% FCS bzw. +5% FCS + 0,2% Heparin
= Foetales Kälberserum (Gibco, Cat No. 011-6290)
May-Grünwald-Lösung modifiziert (Merck, Art. 1424)
Hammelblut
Nr. 5,30.8.1984, MPI Freiburg
Antiserum
Anti-Hammelerythrozyten-Serum von Kaninchen Nr.308, IKA 468/6-11 Tage; 18.7.1C78, MPI Freiburg
Versuchstiere
Die Untersuchungen wurden mit 18 Wochen alten weiblichen Hybridmäusen (Balb/c x C57B16) F1 durchgeführt. Die Tiere wurden vor Beginn der Experimente 5 Tage lang an die l.aborbedingungen angepaßt. Sie erhielten pelletiertes Standardfutter für Ratten und Mäuse (Altromin Nr. 1324) und Leitungswasser ad libitum. Sie wurden mit einem Thioglycolat-Standard auf drei Makrophagenstimulierbarkeit geprüft und zeigten dabei gute Positiv-Reaktionen.
Dosierung und Applikation Die Substanzen wurden in wäßriger Lösung (0,5mg/ml) in den folgenden Dosen appliziert:
intraperitoneal: 20mcg/kg *
500mcg/kg B mg/kg
Die Verdünnung der Mutterlösung für die Applikation der verschiedenen Dosen bett ug bei 20mcg/kg 1 mcg/ml
500mcg/kg 25 mcg/ml
5 mg/kg 250 mcg/ml
davon jeweils 0,4 ml
Applikationsschema 1 Gruppe = 5 Mäuae
Vorbehandlung: a) 3 Applikationen an 3 aufeinanderfolgenden Tagen; am 4. Tag Gewinnung der Makrophagen. I)) Eine Applikation unmittelbar vor der Makrophagengewinnung.
Gewinnung der Mukrophagen-Zellsuspenslon und Phagozytose Testprinzip
Nach Applikation von immunologisch aktivierenden Substanzen werden in den Versuchstieren Makrophagen stimuliert unci Monozyten zur Differenzierung in Makrophagen veranlaßt. Die ausdifferenzierten, stimulierten Makrophagen sind auch nach Isolierung in der Luge, mit entsprechenden Antikörpern opsonierte Antigenstrukturen, in diesem Fall Hammelorythrozyten, in vitro zu phagozytioren. Die phagozytierten Erythrozyten sind mikroskopisch erkennbar.
Durchführung
Nach entsprechender Vorbehandlung werden die Mäuse durch Halswirbelfraktur getötet, Das Peritoneum wird freigelegt und 4 ml DMEM (5% foetales Kälberserum, 0,2% Heparin) werden intraperitoneals appliziert. Nach etwa 30see Massage werden 3 ml 7ell8uspension mit einer Spritze abgezogen und in einem Polypropylenröhrchen in ein Kältebad (O0C) gebracht'. Aus jeder Testgruppe wurde eine Maus zur Ermittlung der Zellkonzentration im Exsudat herangezogen; es wurde näherungsweise eine Konzentration um 4 x 106 Zellen/ml eingestellt.
Isolierung adhärenter Makrophagen:
Makrophagen und Monozyten werden aus der isolierten Zellpopulation dadurch selektiert, daß man sie auf Deckgläschon inkubiert; Makrophagen und Monozyten adhärieren hierbei, andere Zellen nicht. In Gewebekulturschalen mit 24 Näpfchen (Polystyrol, Fa. Costar) werden runde Dockgläschen gelegt und mit 0,25 ml DMEM (mit 5% foetalem Kälberserum) überschichtet.
Zur gleichmäßigen Verteilung der Zellen werden die Schalen auf oinon Schüttler gebracht, und in jodon Einsatz werden unter Schütteln (5min, etwa 200UPM) 0,25ml Zollsuspension pipettiert. Anschließend werden die Gewebekulturschalen 1 Stunde bei 370C und 8% CO2 im Brutschrank inkubiert. Nach der Inkubation werden die nicht adhärenten Zollen abgesaugt, danach zweimal mit 0,25ml DMEM (plus 5% foetales Kälberserum) gewaschen.
Opeonierun der Hammelerythrozyten:
1 ml Hammelblut wird zweimal mit 4 ml PBS/BSA gewaschen (Zentrifugieren, 10min, bei etwa 500xg). Das gewaschene Blut wird 1:50 mit PBS/BSA verdünnt. Das Antiserum gogen Hammelerythrozyten wird mit PBS/BSA 1:200 verdünnt. Verdünntes Hammelblut und verdünntes Antiserum wird 1:1 zusammengegeben und 1,5 Stunden unter schonendem Schütteln (etwa 80UPM) inkubiert.
Phagozytose:
In jedes Näpfchen der Gewebokulturschalen mit adhäronton Makrophagen auf den Deckgläschen wird 0,5ml opsonierte Erythrozytensuspeneion pipettiert. Die Schalen werden 20min bei 370C und 8% CO2 inkubiert. Danach worden die überschüssigen Erythrozyten abgesaugt und die Deckgläschen zweimal mit DMEM (0,5% FCS) gewaschen.
Zur Lyse nicht phagozytierter Erythrozyten werden diese mit jeweils 1 ml NH4CI-Trls-Puffor behandelt (es wurde eine Einwirkzeit von 3,75min als geeignet ermittelt). Noch Absaugen des Puffers wurden die Deckgläschen zweimal mit PBS/BSA gewaschen.
Phagozytosedarttollung (Flrbetechniken)
Nach Phagozytose werden Makrophagen nach Pappenheim noch einer kombinierten May-Grünwald-Giemsa-Mothode angefärbt. Die Färbung wird in den Näpfchen der Gewebekulturschalen ausgeführt.
— 5 min May-Grünwald konz., absaugen
— 3 min HjO bidest., mit H3PO4 min 85% auf pH7,0 eingestellt; absaugen
— 9 min Giesma-Lösung 1:40 verdünnt und vor Gebrauch filtriert; absaugen
— mit HjO dest. aus der Spritzflasche nachspülen
Die Zellkerne sind nach der Färbung rotviolett, das Zytoplasma helfblau. Die,phagozytierten Erythrozyten sind blaßrosa erkennbar. Nach Lufttrocknung werden die Mikroskop-Präparate mit „Eukitf auf Objektträgern festgeklebt (3 Präparate/Maus).
Mikroskopische Aufwertung
Von den drei Mikroskop-Präparaten einer Maus wurden zwei ausgezählt. Es wurde ein Zeiss-Mikroskop bei 10OOfacher Vergrößerung und ölimmersion verwendet. Das dritte Präparat wurde herangezogen, wenn das Ergebnis aus *wel Präparaten nicht eindeutig war. Pro Präparat wurden 300 Zellen gezählt und in Abhängigkeit von der Phagozytosoaktivität unterteilt in Klassen mit steigender Anzahl Erythrozyten/Makrophage.
Klaue Erythrozyten/Makrophage
1 0
2 1
3 2
4 3
5 4
6 5
7 β
8 7
9 8
10 9
11 10
12 11-20»
* FQr Berechnungen wurden angenommen, daß bei > 11 Erythrozyton/MPH die Verteilung In der Klause 12 einen Schwerpunkt um 12 Erythrozyten/Makrophage aufweist. Makrophagen der 12. Klasse traten relativ selten auf.
Datenverarbeitung und graphische Darstellungen
Die Auszählung der mikroskopischen Präparate wurde an einer Rechenanlage WANG LVP 2200 mit einem speziollen Eingabeprogramm ausgeführt, das die separate Erfassung dor Zählklassen erlaubte. Die Mittelung von Einzeldateien wurde mit dem Programm „MA1", die graphischen Darstellungen mit dem Programm „NPL" ausgeführt. Der Stimulationseffekt wurde für jede Testsubstanz und Dosis auf zwei Arten dargestellt:
1. Verteilung der Makrophagen auf die Klassen (Erythrozyten/Makrophage) in %, bezogen auf 300 Zellen als 100%. Hierbei gern auch die Anzahl der Makrophagen in die graphischo Darstellung ein, die keinen Erythrozyten phagozytiert hatten.
2. Verteilung der phagozytierten Erythrozyten (Anzahl der NPH in einer Klasse χ Anzahl der Ei ythrozyten/MPH) auf die Klassen in %, bezogen auf die Gesamtzahl der phagozytierten Erythrozyten als 100%. Hierbei bleibt die Zahl der Makrophagen, die keinen Erythrozyten phagozytiert hatten, unberücksichtigt.
Parameter Als Parameter der Makrophagenstimulation wurde die Steigerung dor Phagozytoseaktivität, ausgedrückt als Anzahl phagozytierter Erythrozyten pro Makrophage (= Klasse), betrachtet. Eine Stimulation zeigt sich in einer Abnahme der Makrophagen, die keine oder wenige Erythrozyten phagozytiort hatten und in einor Zunahme der Makrophagen mit mehroron Erythrozyten.
Ergebnisse MPH-Stlmulatlon durch 1-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-methoxy-phQnanthren (ί.μ./: Abb.1: 3 x 20mcg/kgi.p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen (x ± SEM)
a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in %
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20 -
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10
12
KLfISSE
Tabelle: 3 χ 20mcg/kgi.p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen
a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
1 Kl. Maus Maus Maus Maus x-quer SD SE MD
η 2 1 2 3 4 71,417 3,77 1,889 71,750
3 1,00 7ß,67 71,33 06,50 72,17 16,292 3,056 1,528 16,250
4 2,00 12,67 17,00 20,00 15,50 7,333 1,080 0,540 7,250
3,00 6,83 6,17 8,67 7,67 •^,875 0,644 0,322 2,917
4,00 2,17 3,33 3,50 2,50
Fortsetzung der Tabelle
6 Kl. Maus Maus Maus Maus 1 Kl. Maus Maus 0,0 Maus 0,0 "«»US 0,0 x-quor SD SE MD
η 6 1 2 3 4 2 1 2 34,8 3 37,5 4 31,2 1,167 0,408 0,204 1,167
7 5,00 0,67 1,67 1,17 1,17 3 1,00 • 0,0 25,3 32,5 30,9 0,468 0,583 0,292 .0,167
8 6,00 1,33 0,17 0,17 0,17 4 2,00 20,5 20,5 19,7 15,1 0,260 0,215 0,108 0,250
9 7,00 0,17 0,33 0,00 0,60 6 3,00 20,6 13,7 8,8 . 9,4 0,042 0,C83 0,042 0,000
10 8,00 0,00 0,00 0,00 0,17 6 4,00 13,6 1,7 1,6 1,7 0,042 0,083 C,042 0,000
11 9,00 0,17 0,00 0,00 0,00 · 7 5,00 t>,6 4,1 0,0 6,0 0,000 0,000 0,000 0,000
12 10,00 0,00 0,00 0,00 0,00 8 6,00 13,9 0,0 0,0 2,3 0,125 0,160 0,080 0,083
11,00 0,33 0,00 0,00 0,17 9 7,00 2,1 0,0 0,0 0,0 0,000 0,000 0,000 0,000
12,00 0,00 0,00 0,00 0,00 10 8,00 0,0 0,0 0,0 0,0
b) Verteilung der phagozytiorten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in % 11 9,00 2,8 0,0 0,0 3,4
12 10,00 0,0 0,0 0,0 0,0 x-quer SD SE MD
η 11,00 7,0 0,00 0,00 0,00 0,00
12,00 0,0 32,50 4,77 2,38 33,01
29,30 3,14 1,57 29,72
17,21 3,39 1,69 17,39
. 9,34 3,32 1,66 9,07
4,72 6,14 · 3,07 1,69
3,06 2,60 1,30 3,09
0,59 1,17 0,59 0,00
0,70 1,39 0,70 0,00
0,00 0,00 O1OO 0,00
2,68 3 1,66 1,68
0,00 0,00 0,00 · 0,00
Abb.2; 3 X 500mcg/kgi.p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen (x ± SEM)
a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in %
80 -
Kl.ftSSE
Tabelle: 3 χ 500mcg/kg i.p. MPH-Stimulation nach 3 Tagen
a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
1 Kl. Maus Maus Maus Maus Maus x-quor SD SE MD
η 2 1 ? 3 4 5 53,667 5,775 2,583 52,833
3 1,00 63,00 52,83 53,83 47,33 51,33 17,333 3,053 1,365 17,833
4 2,00 i3,00 19,67 20,50 17,83 15,67 12,267 2,893 1,294 12,167
5 3,00 0.00 11,03 13,33 16,'OO 12,17 6,667 1,523 0,681 6,000
β 4,00 5,00 6,00 5,83 7,83 8,67 4,333 0,979 0,438 4,333
7 5,00 4,33 3,83 3,00 5,00 6,50 2,433 0,630 0,282 2,667
6 6,00 2,83 2,83 1,33 2,50 2,67 1,333 0,500 0,224 1,167
9 7,00 1,17 1,33 0,83 1t17 2,17 0,633 0,183 0,082 0,500
10 8,00 0,83 0,50 0,50 083 0,50 0,733 0,384 0,172 0,667
11 9,00 1,17 0,67 0,17 1,00 0,67 0,100 0,149 0,067 0,000
12 10,00 0,00 0,17 0,33 0,00 0,00 0,433 0,190 0,085 0,500
11,00 0,67 0,33 0,17 0,50 0,50 0,067 0,091 0,041 0,000
12,00 0,00 0,00 0,17 0,00 0,17
b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in %
1 Kl. Maus 0,0 Maus 0,0 Maus 0,0 Maus 0,0 Maus 0,0 x-quer SD SE MD
η 2 1 12,5 2 17,B 3 20,3 4 13,5 6 11,9 0,00 0,00 0,00 0,00
3 1,00 15,3 21,0 26,4 24,3 18,5 15,13 3,60 1,61 13,54
4 2,00 14,4 16,0 17,3 17,8 19,8 21,11 4,41 1,97 21,04
5 3,00 16,6 13,6 11,9 15,2 16,7 17,0. 2,02 0,90 17,30
6 4,00 13,6 12,6 6,6 9,5 10,1 14,80 2,07 0,93 15,19
7 5,00 6,7 7,1 4,9 6,3 9,9 10,48 2,75 1,23 10,14
8 6,00 5,6 3,1 3,5 4,4 2,7 6,79 1,95 0,87 6,71
9 7,00 8,9 4,/ 1,3 6,1 4,1 3,85 1,17 0,52 3,46
10 8,00 0,0 1,3 3,0 0,0 0,0 5,03 2,79 1.25 4,74
11 9,00 6,4 3,0 . 1,6 3,8 3,8 0,86 1,31 0,59 0,00
12 · 10,00 0,0 XO 3,3 0,0 2,5 3,72 1,73 0,77 3,30
11,00 1,17 1,62 0,72 0,00
12,00
Abb.3; 3 χ 5 mg/kg I. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen (x ± SEM)
a) Verteilung von 300 Zellen auf dio Kiassen 1 bis 12 In %
E »ο Η
ν..
10
12
CLMSSE b) Vorteilung der phagozytl jrten F.rythrozyton auf die Klassen 1 bis 12 in %
ΐ 7- to H
Π γ—τ
8 8
12
Tabelle: 3x5 mg/kg i. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen
a) Verteilung von 300 Zellen auf dio Klassen 1 bis 12 In %
1 Kl. Maus Maus Maus Maus Maus x-quor SD SE MD
η 2 1 2 3 4 5 55,500 8,149 3,644 52,167
3 1,00 69,33 50,33 52,17 49,50 56,17 17,900 5,381 2,406 18,000
4. 2,00 9,83 16,17 18,00 23,33 22,17 11,500 2,389 1,068 11,500
5 3,00 8,00 12,17 11,50 14,67 11,17 6,933 0,925 0,414 5,833
6 4,00 4,83 7,17 5,83 6,50 5,33 3,933 1,539 0,688 3,000
7 5,00 2,83 6,00 6,17 2,67 3,00 2,400 1,018 0,455 2,000
8 6,00 2,00 2,33 4,17 1,83 1,67 1,067 0,990 0,443 0,667
9 7,00 0,67 2,67 1,33 0,50 0,17 0,400 0,435 0,194 0,333
10 8,00 0,67 1,00 0,00 0,33 0,00 0,600 0,435 0,194 0,667
11 9,00 0,67 1,17 0,83 0,17 0,17 0,267 0,149 0,067 0,167
12 10,00 0,33 0,17 0,50 0,17 0,17 0,233 0,253 0,113 0,167
11,00 0,17 0,67 0,17 0,17 0,00 0,267 0,253 0,113 0,167
12,00 0,67 0,17 0,33 0,17 0,00
b) Verteilung der phagozytlerton Erythrozyten auf dio Klasson 1 bis 12 in %
Kl. Maus Maus Maus Maus Maus
η· 12 3 4 5
xquor
SD
SE
1 1,00 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,00 0,00 0,00 0,00
2 2,00 10,6 11.4 14,1 22,2 26,2 16,88 6,94 3,10 14,12
3 3,00 17,1 17,2 18,0 27,9 26,4 21,32 6,35 2,39 16,04
4 4,00 15,6 1F,2 13,7 18,5 18,9 16,37 2,25 1,01 15,48
5 6,00 12,1 17,0 16,2 10,1 '4,2 13,92 2,83 1,27 14,17
6 6,00 10,7 8,2 16,3 8,7 9,8 10,76 3,26 1,46 9,84
7 7,00 4,3 11,3 6,3 2,9 1,2 5,18 3,90 1,75 4,27
8 8,00 6,0 4,9 0,0 2,? 0,0 2,43 2,43 1.11 2,22
9 9,00 5,7 0,6 5,2 1,3 1,6 4,07 2,47 1,11 5,23
10 10,00 3,2 1.1 3,5 1.4 1.8 2,20 1,10 0,49 1,77
11 11,00 1.8 4,7 1.3 1,6 0,0 1,88 1,73 0,77 1,58
12 12,00 14,2 2,4 5,2 3,2 0,0 5,00 5,49 2,46 3,17
DoslaabhSnglgkeit de· Stimulationseffekt·
Die Kontrollgruppen nach i.p. bzw. p.o. Gabe von phye. NaCI-Lösuny zeigen, daß die i. p. Applikation solbst bereits eine schwächt) Makrophagenaktivlerung bewirkt. Ein hoher Anteil Makrophagon hat zwei Erythrozyten phagozytiert, Ein Ansteigen der Makrophngon mit mehr als zwei Erythrozyten ist demnach als Substanzeffekt zu interpretieren, Die %-Summu der firythrozyton ab der 4. Klasse (Makrophagen mit 3 Erythrozyten und mohr) wurde daher zur Dosis in Relation gesetzt
Abb. 4: Abhängigkeit der %-Summo der Erythrozyten ab der 4. Klasse und darüber von der Dosis nach i. p. Gabe von 20mcg/kg, . 500mcg/kg und 5mg/kg. Dio Kontrolle liegt boi 45% ± 6% (x ± SEM). In der Abbildung ist der Boreich ± SEM und don Mittelwert durch die unterbrochene Linio angegebon.
SO -ι
►-* lü
Χ ft.
60 -
50
HO -
30
10
rrrrf— v 100
-i r TTT-; 1 r—ι ι ι ι ι η
1000 ' 10000
OQSIS iMCO/Kpl I.P./
Tabelle: Dosisabhängigknit der Makrophagen-Stimulation nach i. p. Gabe χ = Dosis (mcg/kg) y = %-Summe der phagozytierton Erythrozyten SEM = Standarderror of the moans
x-Werte
y-Werte
SE-Werte
20,0000
500,0000
5000,0000
38,2000 63,7600 61,8000
2,7800 3,3200 5,4200
Bewertung
Die Substanz bowirki eine Steigerung der Makrophagenaktivierung von 38% boi 20 mcg/kg auf 64% bei 500mcg/kg. Eine weitere Steigerung der Dosis; auf 5mg/kg führt zu einer geringfügigen Abschwächung '!er Stimulation. Die Makrophagonaktiviorung
verläuft im gewählten Dosisbereich nicht linear.
Die Testgruppe, die unmittelbar vor Makrophagengowinnung einmalig intraporitoneal appliziort wurde, demonstrierte, daß dio beobachteten Effekte* nur nach einer Inkubationszeit auftreten. Diosor Befund doutot darauf hin, daß die Substanz in vivo die für die Phagozytosestei(|orung verantwortlichen Mechanismen in Makrophagen induzierte.
-12- 266 800 Dieses deutet auf die folgenden Effekte:
1. Stimulation der Membranintornalislerungsrato
2. Steigerung der Fc-Rezeptorendlchte und/oder
3. Erhöhung der Mobilität der CSb-Rozoptoren.
Die anderen orfindungsgomäßen Verbindungen zoigon eine vergleichbare pharmokologischo Wirkung. Die Wirkung konnte mit anderen pharmakologlechen Modellen und klinisch bestätigt worden.
Ausftlhrungsbelspiele Die folgenden Beispiele erläutern die Herstellung der erfindurijsgomäßon Vorblndungon.
Beispiel 1: Herstellung von i-Carboxy-S^-mothylondloxy^'-methoxy-stilbon a) Darstellung von 6-Bromplppronylbromld
+ Br2
HOAo
CH2OH
CH2Br
(MG-152)
(MG-294)
Chemikalien: Plperony/alkohol (EGA-Chemle bzw. Aldrich) ·= 120g Brom 48ml in 120ml Essigsäure Essigsäure 240ml
In einem 1-1-3-Halsrundkolben, versehen mit Tropftrichter, Trockonrohr und Innenthermometer, wird Piporonylalkohol in Essigsäure vorgelegt und im Eisbad gekühlt. Zu diosor Lösung tropft man untor Rühren Brom, golöst in Essigsäure, langsam zu, so daß die Temperatur zwischen 15-250C bleibt. Das Reaktionsgemisch wird über Nacht stohongolassen, und die ausgefallenen Kristalle werden abgenutscht, mit Wasser gewaschen und aus Methanol umkristallisiort. Fp.:92-93°C Ausb.:174g,7B%
b) Darstellung dr.eTriphenylphospho'.\lumsalzes
,Ph)3P —
H0C
,0
-Br -CH2P(Ph)3Br'
(MG·-= 556)
;·; J-CH2Br
(MG = 29I)
Chemikalien: 6-Bromp'per >m /bromid 294g Triphenylphosphin 262g Toluol
In einem 3-1-3-Halsrundkolben, versehen mit Rückflußkühlor und KPG-Rühror, werden 6-Brompiperonylbromid und Triphenylphosphin vorgelegt und in absolutem Toluol unter Rühren gelöst. Das Reaktionsgemisch wird untor Rühren 2 Stunden erhitzt und 2". Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Das gebildete Triphenylphosphoniumsalz wird abgeni'tscht, mit wenig Toluol gowasch jn und Im Exsikkator getrocknet, Ausbeute: 500g, 95%
III. Darstellung des Stllbenderlvatos
o-
Br
CH2P(Ph)3Br
(MG-556)
CH3O-OHC
(MG= 136)
-^- OCH3 (MG -333)
Chemikalien: Lithium (Draht)
Methanol (absolut) Trlphenylphosphoniumsnlz o-Anisaldehyd Dimethylformamid (absolut)
Reaktionsvorschrift:
Kleingeschnittenes Lithium (0,98g, 0,14g atom) wird zu unter Stickstoff vorgelegtem absoluten Methanol (30ml) zugegoben. Nach Beendigung der Reaktion tropft man diese Lösung innerhalb von 2,5 Stunden in eine bei 90°C gerührte Lösung aus Triphenylphosphonlumsalz (76,96g, 0,14mol) und o-Anisaldohyd (17,U8g, 0.1?mol), gelöst in absolutem Dimethylformamid (200ml). Die Reaktionslösuno wird eine weitere Stunde boi 90°C gerührt. Nach Abkühlung auf Raumtemperatur wird das Reaktionsgemisch in Wasser (700ml) eingegossen und der Niederschlag abfiltriert und getrocknet. Das gotorcknete Produkt wird im Soxhlett mit Petrolether (30 bis 5O0C) extrahiert, bis der Rückstand in dor Hülse kein Stilben mehr enthält (DC; Kieselgel; CH2CI2). Der Petrolethor wird unter Vakuum eingeengt und der Rückstand (64,82g Gemisch) aus Ethanol umkristallisert. (Hierdurch wird der größte Teil der Verunreinigung bzw. des nicht umgesetzten Produktes abgotronnt.) ^ Der ausgefallene Niederschlag (31,13g) wird In Ether (300ml) aufgeschlämmt und 2 Stunden gekocht (= Trennung dos eis· und trans-Gemisches). Nach Abkühlung wird der Feststoff abfiltriert und getrocknet. Ausbeute: 23,87 g (52%) reine Cis-Verbindung — geprüft durch DC, NMR
Schmolzpunkt: 1120C
d) Herstellung von 1-Cyano<M-methylendloxy-2'-methoxy-stilbon
Cu (CN)/DMR^
OCHr
(MG= 33 ι) I (MG= 277)
Chemikalien: Kupfer(ll)cyanld N,N-Dlmethylformamid
Eine Mischung aus dem vorgetrockneten Stilbenbromid (3g), KupferflU-cyanld (4g) und Dimethylformamid (30ml) wird für 8-12h unter Rückfluß gekocht, bis kein Bromid im DC (Dichlormethan-Petrolother [1:2)) mehr nachweisbar ist. Nach Abkühlung wird das Reaktionsgemisch in eine Lösung von Elsen(lll)-chlorid (4g), HCI (1 ml) und Wasser (10ml) gegeben und das Reaktionsgemisch auf 70°C für 20 Minuten gehalten. (Abzug: HCN-Entwickiungl). Danach wird das abgekühlte Reaktionsgemisch mit Chloroform (5 χ 40ml) extrahiert, mit Wasser (2 χ 20 ml) gewaschen und über Calciumchlorid getrocknet. Nach Entfernung des Lösungsmittels wird der Rückstand aus Ethanol umkristallisiert. Ausbeute: 2,0g (70%)
e) Hydrolyse H^oH ι / ^OCH3 Stilbeniiäurenitril gemäß Formel NaOH H2CC ι Ü (MG /COOH
de» Nitrile zum Endprodukt ^^γ-' CN \.^'\ NaOIi I \ (MG= 2 77) > ί ^pCH3
C Chemikalien: j = 296)
Stilbensäureniiril (1 g) wird in möglichst wenig Ethanol (30 bin 50ml) unter Erwärmen gelöst und mit Natriumhydroxidlosung versetzt (10g in 15ml H2O). Das Reaktionsgemsich wird unter kräftigem Rückfluß gekocht, bis das DC (Ether) kein Cyanid mehr nachweist (18-2Oh). Das Ethanol wird unter Vakuum abgezogen und zu dem Rückstand Wasser (50-10OmI) zugegeben. Die wäßrige Phase wird mit Ethei (2 x 30ml) extrahiert und mit 6N HCI neutralisiert. Der ausfallende flockige Niederschlag bleibt meist als Kolloid in der Lösung. Die Lösung wird kurz erwärmt und 24 Stunden stehengelassen.
Df» koagulierte Niederschlag wird abgonutscht und aus Ethanol umkristallisert. Ausbouto: 0,53g (60%)
Beispiel 2:
Herstellung von i-Carboxy-ä^-methylendloxy-ä'-mothoxy-stllben durch Umwandlung des Stllbenbromlds In die Stilbensaure
s Br
>' OCH3
1 . n-BuLi:/Ether
2. CO2
3. HCl
Chemikalien: StilbenbromiclgomäßFormel 17,44g(0,05mol) n-Bull (1,55 molar) 40 ml (0,061 mol)
Ether 180ml
Das Stilbenbromid wird in absolutem Ether gelöst und unter Stickstoff auf -720C gekühlt. In diese Reaktionslösung wird vorsichtig n-Buli eingespritzt und nach Zugabe innerhalb von 1 h auf Raumtemperatur erwärmt. Die Lösung wird dann sofort auf festes COj gegeben, über Nacht reagieren lassen. Nach Zugabe von Wasser und der Phasentrennung wird die wäßrige Phase mit Ether (2 x 100ml) extrahiert. DIo vereinigten wäßrigen Phasen werden im Eisbad gekühlt und mit konzentrierter HCI angesäuert.
Der ausgefallene Niederschlag wird abgenutscht und mit viel Wasser neutralgewaschen, Nach 2- bis 3moligem Aufkochen mit Wasser (zur Entfernung von Buttersäure, die aus n-Buli stammt) wird das Rohprodukt aus
EtOH/H2O umkristallislort.
Ausbeute: 9,16g (58,7%) Fp.: 199,50C
Das entsprechende Stilbenbromid kpnn gemäß Beispiel 1, Stufen a bis c, erhalten werden.
Beispiels: Herstellung von i-Carboxy^-methylendloxy-e-methoxy-phenanthren
a) Photochemische Umwandlung des Stllbender!vates In das entsprechende Phenanthrenderlvat
-Br
HoC
OCH-,
(MG ~333)
(MG-331)
Chemikalien: Stilbenbromid (cis-Verbindung) 1,2,3,4-Tretrahydro-9-fluorenon Cyclohexan Jod
cls-Stilbenbromld (3,3g, 0,01 mol) wird in absolutem 1,2,3,4-Tetrahydro-9-fluoronon (100ml) gelöst. Diese Lösung wird mit absolutem Cyclohoxun (1200ml) verdünnt und mit Jod (1,7 g) versetzt. Die Lösung wird unter Stickstoffeinleitung mit einer Labortäuchlampo mit Kühlrohr des Typs TQ150 (Hanau) 12 bis 14 Tage beleuchtet. Die Reaktion wird mit DC (CH2CI2/PE 30 bis 50°C C1:2) kontrolliert. Die organische Phase mit wäßriger Thiosulfat-Lösung (3 x 300ml) ausschütteln, um das überschübsige Jod zu entfernen. Nach dem Trocknen über MgSO* wird die organische Phase einrotiert. Das Rohprodukt wird au&Petrolether bei 60 bis 9O0C umkristallisiert
Ausbeute: 1,55g (47% der Theorie)
b) Herstellung von i-Cyano-S.^methylendloxy-e-methoxy-phonanthren aus dem Phonanthrenbromld Umwandlung des Phenanthrenuromids zum Nitril
-CN
-Br "- -
HoC
Cu (CN)/DMF/^
OCI-l·
OCH-
(MG =277)
(MG = 331)
Chemikalien: Phenanthrenbromid gemäß Formel Kupter;i!)cyaniil N,N-Dimethylformamid
Eine Mischung aus dem vorgotrockneten Phenanthrenbromid (3g), Kupfer(ll)-cyanid (4g) und Dimethylformamid (3OmI) wird für 8 bis 12 Sturden unter Rückfluß gekocht, bis kein Bromid im DC (Dichlormethan-Peirolether (1:2)) nachweisbar ist. Nach Abkühlung wird das Reaktionsgomisch in eine Lösung von Eisen(lll)-chlprid (4g), HCI (1 ml) und Wasser (1OmI) gegeben und das Reaktionsgemisch auf 70°C für 20min gehalten (Abzug: HCN-Entwicklungl). Danach wird das abgekühlte Reaktionsgemisch mit Chlorofotm(5 x 40ml)extrahiert,mitW<isser(2 χ 2OmI) gewaschen und über Calciumchlorid getr^rknot. Nach Entfernung des Lösungsmittels wird der Rückstand aus Ethanol umkristallisiert
Ausbeute: 2,0g (70%); Fp.: 215fC
c) hydrolyse des Phenanthrensfiurenitrlls zur PhenanthrensSure
CN j
,0-
COOH
NaOH
OCHn
(MG = 277)
Chemikalien: Phenanthrensäurenitril gemäß Formel NaOH
Phenantrensäurenitril (1 g) wird in möglichst wenig Ethanol (30 bis 50 ml) unter Erwärmen gelöst und mit Natriumhydroxidlösunrj versetzt (10g in 15ml H2O). Das Reaktionsgemisch wird unter kräftigem Rückfluß gekocht, bis des DC (Ether) kein Cyanid mehr nachweist (18 bis 20 Stunden). Das Ethanol wird un'or Vakuum abgezogen und zu dem Rückstand Wasser (50 bis 100ml) zugegeben. Die wäßrige Phase wird mit Ether (2 χ 30ml) extrahiert und mit 6N HCI neutralisiert. Der ausfallende flockige Niederschlag bleibt meist als Kolloid in der Lösung. Die Lösung wird kurz erwärmt und 24 Stunden stehengelassen.
Der koagulierte Niederschlag wird abgenutscht und aus Ethanol umkristallisiert
Ausbeute: 0,53g (50%)
Beispiel 4: Herstellunnvon 1-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-hydroxy-phenanthron
1,0g 1-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-methoxy-phonanthren wurde mit 2,0g Pyrldin-hydrochlorid im Ölbad bei 17O0C zum Schmelzen norracht und unter Begasung mit Stickstoff 1 Stunde auf dieser Temperatur gehalten. Nach dem Abkühlen wurde die erstarrte Masse mit 1015%iger HCI aufgenommen und 3x mit je 101 Chloroform extrahiort. Man vereinigte die Extrakte, wusch mit Wasser neutral und filtrierte zur Trocknung über silanislertes Filterpapier (WHATMAN 1 PS). Nach Abdampfen des Lösungsmittels bei 30cC am Rotationsverdampfer wurde das Gemisch1 aus Ausgangsmaterial und Hydrolysat zur Trennung verestert, indem mit einem Gemisch aus 2,51 Methanol und 0,11 konzentrierter H2SO1) 3 Stunden unter Rückfluß destilliert wurdo. Dann wurde In 10 ml Wasser eingegossen und die wäßrig-methanolische Phase 3 χ mit je 101 Diisopropylether ausgoschüttelt. Das organische Lösunosmittel wurde, nachdem mehrfach mit Wasser gewaschen worden war, mit 101 NaOH extrahiert, wobei der Methylester der 8-Methoxy-Verblndung in der organischen Schicht verblieb und die 8-Hydroxy-Verbindung unter
gleichzeitiger Esterhydrolyso in die wäßrige Phase überführt wurde. Nach Auswaschen mit frischem Diisopropylether wurde die alkalische Phase angesäuert und mehrfach mit Chloroform ausgeschüttelt.über Phasentronnpapior WHATMAN 1 PS getrocknet und das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer abgezogen. i-Carboxy-S^-mothylendioxy-e-hydroxy-phonanthren blieb eis dünnschichtchromatographisch einheitliche Verbindung in fester Form zurück. Fluoreszenz: (MeOH; Xn,,,,, nm): Anregung: 261,302,318, 329,358,377 Emission: 386,402 Ausbeute: Ö,714g (75%)
Beispiel 5: Herstellung von i-Carboxy-S^-mothylendloxy-e-mothoxy-phonanthren durch Roduktlon dor Nltr.ogruppe
5 g Aristolochiasäurelwerdenin 1 500 ml 1%iger wäßrlgor Natriumcarbonat-Lösung gelöst und anschließend in einem 5-l-Kolbon filtriert.
Zu dieser klaren Salzlösung fügt man 1 50GmI käufliche Ammoniumpolysulfid-Lösung hinzu. Das Roaktionsgemisch wird 2 Stunden boi Raumtemperatur (Abzugl)
gerührt und verschlossen über Nacht aufbewahrt. Im Anschluß daran gibt man 1500ml demin. Wasser hinzu und säuert tropfenweise unter Rühre/i mit etwa 550 ml konzentrierter Salzsäure das ReaktionegernlKoh nn. Das dabei entstehende Fällprodukt wird abfiltriert und mit Wasser
nachgewaschen. Die wäßrige Phase wird mit 1 500 ml Ethylacetat extrahiert. Dieses Ethylacetat setzt man zum Ausführen des Fällproduktes ein und wiederholtanschließend zweimal die Ausrührung mit |e
1 500 ml Ethylacetat. Die organischen Phasen worden vereinigt und zweimal mit je 500 ml Wasser gewaschen. Anschließend extrahiert man die Ethylacetat-Lösung viermal mit je 750 ml 2%lger wäßriger Natronlauge. Die organische Phase wird verworfen, die alkalisch-wäßrige Lösung mit konzentrierter
Salzsäure auf pH 4-3 eingestellt und dann wiederum viermal mit je
1000 ml Ethylacetat ausgeschüttelt. Die vereinigten organischen Phasen worden dreimal mit je
750 ml Wasser gewaschen. Die gewaschene organische Phase wird über Natriumsulfat getrocknet und anschließend nach Filtration im Vakuum zur Trockne gezogen 'Badtemperatur etwa 30 0C). Ausbeute: 3,1 g Fp.:285°C(Zer8.) Zur Reinigung wird dio Substanz aus Ethylacetat umkristalllsiort.

Claims (1)

  1. Patentanspruch:
    Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der allgemeinen Formel (I):
    COOH
    in der Ri ein Η-Atom, Methoxy oder Ethoxy bedeutet und R2, R3 für Η-Atome stehen oder zusammen eine aromatische C-C-Bindung bilden, wobei in diesem Falle R1 auch Hydroxyl bedeuten kann, und
    deron pharmazeutisch verträgliche Salze, dadurch gekennzeichnet, daß man 6 Brompiperonylbromid der Formel
    0 —
    CH2Br
    mit Triphemylphosphin in einem wasserfreien Lösungsmittel zu einem Phosphoniumsalz dor Formel
    H2C
    OH2P(Ph)3Br
    umsetzt, letztere Verbindung mit Benzaldehyd, O-Methoxybenzaldehyd oder ortho-Ethoxybenisldehyd in Anwesenheit einer starken Base zu einem Stilben der Formel
    umsfatzt, worin R1 für H, OCH3 oder OC2H5 steht, dieses Stilbenbromid entweder mit einem
    Metallcyanid, insbesondere Kupfercyanid, in einem polaren aprotischen Lösungsmittel, insbesondere in Dimethylformamid, in das entsprechende Nitril umwandelt und dieses durch Hydrolyse in eine
    Säure der Formel (I) überführt oder obiges Stilbenbromid mit n-Butyllithium und Kohlendioxid in einer Säure der Formel (I) überführt
    obiges Stilbenbromid durch UV-Bestrahlung in das Phenanthrenderivat der Formel
    überf Jhrt und diese Verbindung mit einem Metallcyanid oder mit n-ButyPithium und Kohlensäure in der oben erwähnten Weise in eine Säure der Formel (I) überführt und gowünschtenfalls eine Verbindung der Formel (I), bei der Ri eine OCHs-Gruppe bedeutet durch Ether-Spaltung in eine Verbindung umwandelt, bei der R1 Hycjroxyl bedeutet
    eine Nitroverbindung der Formel:
    €00H
DD86293892A 1985-08-28 1986-08-27 Verfahren zur herstellung von methylendioxyphenanthren- und stilbenderivaten DD266800A5 (de)

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