DD283303A7 - Immunologisches nachweisverfahren fuer spezifische autoantikoerper - Google Patents
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Abstract
Die Erfindung betrifft ein immunologisches Bestimmungsverfahren, nach dem epitop- bzw. antigenspezifische Autoantikoerper im Serum und anderen Koerperfluessigkeiten auch in Gegenwart hoher Immunglobulinkonzentration bestimmt werden koennen, ohne dasz das Antigen jemals isoliert bzw. dessen Struktur aufgeklaert wurde. Erfindungsgemaesz wird dies durch die Anwendung monoklonaler Antikoerper erreicht, die in ihrer spezifischen Antigenbindung durch Serumantikoerper gleicher Spezifitaet kompetitiv gehemmt werden, d. h. nur bei Praevalenz des fraglichen Antikoerpers im Serum wird der monoklonale Antikoerper nicht oder in geringem Masze gebunden. Um seine Verdraengung zu messen, wird entweder der monoklonale Antikoerper selbst markiert oder dieser von einem anderen markierten Antikoerper als Antigen konzentrationsabhaengig gebunden und damit nachgewiesen. Anwendungsgebiet ist die klinische Chemie.{Autoantikoerper, eptiospezifisch, antigenspezifisch; biologische Fluessigkeiten; monoklonale Antikoerper; Markierung; kompetitive Hemmung; Verdraengungsmessung}
Description
Die Erfindung betrifft ein immunologisches Bestimmungsverfahren zum Nachweis diagnostisch bedeutsamer Autoantikörper vorwiegend in menschlichem, aber auch in tierischem Blutserum und anderen Körperflüssigkeiten.
Der Nachweis spezifischer Autoantikörper kann bisher nur durch Verwendung der isolierten reinen Antigene vorgenommen werden. Entweder wird das Antigen selbst mit einer Indikatorsubstanz, z. B. mit einem Enzym oder radioaktiven Isotop markiert und dessen Bindung durch Antikörper nach Abtrennung vom freien Antigen direkt gemessen (H. Keilacker, I. Rjasanowski, M.Ziegler, D. Michaelis, K.-P. Woltanski, W. Besch: Insulin antibodies in juveline diabetes mellitus correlations to diabetic stability, insulin requirement and duration of insulin treatment. Horm. Meta. Res. 14 [1984], 227) oder das Antigen wird an einer Festphase (z.B. Sepharose oder Plaste) immobilisiert. Nach erfolgter Inkubation mit der Probe, meistens Serum, werden dann die über das Antigen an der Festphase spezifisch gebundenen Antikörper als Antigen mittels eines markierten zweiten Antikörpers nachgewiesen (M. Koch, C. Frangois-Go rard, F. Sodoyez-Goffaux, J.-C. Sodoyez: Semi-quantitative assessment of anti-insulin total IgG and IgG subclasses in insulin-immunized patients using a highly sensitive immunochemical micromethod. Diabetologia 29 [1986], 720). Hierbei ist die Verhinderung der unspezifischen Immunglobulinbindung oft sehr problematisch, wodurch die Empfindlichkeit und Zuverlässigkeit des Antikörpernachweises herabgesetzt wird. Dies trifft auch für den Nachweis von Antikörpern gegen zell- bzw. gowebsgebundene Antigene wie an Mikroorganismen, an isolierten Zellen (M.Ziegler, B.Ziegler, P.Heinke, I. Rjasanowski: Titre determination of autoantibodies [IGSA] against beta cell surface antigens. Fresenius Z.Analyt. Chem.330 [1988], 354) oder an Gewebeschnitten zu (H. Gleichmann, G. F.Bottazzo: Progress toward standardization of cytoplasmie iclet cellantibody assay. Diabetes 36 [1987], 578).
Nach den bisherigen Nac.iweisverfahren ist die Antigenspezifität des Autoantikörpernachweises nur mit Hilfe des reinen Antigens möglich, vorausgesetzt, das Antigen läßt sich markieren oder an eine Festphase immobilisieren, ohne seine Immunreaktivität einzubüßen.
Steht als Target nur ein t rimplexer Antigenpool zur Verfugung, z. B. ein Organextrakt oder Zellsuspensionen mit unterschiedlichen Zelltypen, so werden alle bindenden Antikörper erfaßt, unabhängig von ihrer diagnostischen Relevanz. Zusätzlich werden die unspezifisch gebundenen Immunglobuline mitbestimmt.
Das Ziel der b'i findung ist ein zuverlässiges Verfahren zum Nachweis und zur quantitativen Bestimmung spezifischer, diagnostisch relevanter Autoantikörper mit geringem technischen Aufw& id.
und anderen Körperflüssigkeiten Lei gleichzeitiger Umgehung der unspezifischen Bindung der Immunglobuline der Testprot e anzugeben, wobei die Struktur und Stoffklasse der Antigene, mit denen die monoklonalen Antikörper reagieren, noch unbekannt sein können.
werden erfindungsgemäß in vorteilhafter Weise durch Anwendung monoklonaler Antikörper behoben, die z. B. nach der diagnostischen Relevanz hinsichtlich I uer Antigenspezifität aufgrund der kompetiven Inhibition ihrer Antigenbindung durch polygonale Antikörper von Patienten; eren mit bestimmten Krankheitsbildern ausgewählt wurden.
durch das an eine Festphase immobilisierte komplexe Antigengemisch nur epitopspezifisch gebunden werden und durch
beispielsweise mit menr jhlichen Seren oder anderem Probenmaterial, in ihrer Bindung reduziert oder komplett inhibiert werden, abhängig von der Prävalenz und Konzentration der polyklonalen Antikörper mit identischer Epitopspezifität in der Testprobe.
eingesetzt wird. Andernfalls wird der antigengebundene spezifisch«, monoklonale Antikörper durch einen, diesen monoklonalen
auch geeignet, um für immobilisierte reine Antigene epitopspezifische Autoantikörper nachzuweisen.
Das erfindungsgemäße Verfahren soll nachstehend näher erläutert werden. Erfindungsgemäß sollen spezifische Autoantikörper beispielsweise gegen Betazellen beim insulinabhängigen (Typ 1) Diabetes mellitus und gegen Schilddrüsenantigene bei Basedow-Patienten nachgewiesen werden
I.Beispiel
In jede Vertiefung einer 96-Mikrotesiplatte werden 50000 Zellen als Targetantigenpräparat einer insulinproduzierenden Ratteninsulinom-Zellinie pipettiert und eingetrocknet. In 20 Vertiefungen werden jeweils 50μΙ Kontrollseren gesunder Spender und in die übrigen 50 μΙ Serum von frisch-manifestierten Typ-1 -Diabetikern jeweils als Dreitachbestimmung pipettiert. Nach 1 h Vorinkubation bei Raumtemperatur werden von einem murinen monoklonalen Betazell-Antikörper 50μΙ In jedes Reaktionsgefäß hinzupipettiert. Nach gründlichem Vermischen wird nochmals 3h bei Raumtemperatur inkubiert. Die komplette Platte wird entleert und zweimal gewaschen. Zum Nachweis des gebundenen monoklonalen Betazeil-Antikörpers werden ΙΟΟμΙ eines mit Peroxidase markierten Antikörpers gegen Mausimmunglobulin hinzugegeben. Nach 90min Inkubation wird die Platte entleert, gewascher, und zur Farbentwicklung 30 min bei Raumtempera' - ~!t 100 μΙ o-Phenyldiamin/H2O2 inkubiert und mit 100μ11 mol/l H2SO4 gestoppt. Die Farbextinktion wird bei 492 nm im SUMAt. -System gemessen. Serumproben, die eine Verminderung der Extinktion auf weniger als x- 3D der Kontrollseren verursachen, werden als Autoantikörper-positiv gewertet.
2. Beispiel
Eine Inselzellsuspension mit 5 x 104 Zellen in 50μΙ Zellkulturmedium werden 1 h mit 50pm Serum von Kontrollpersonen bzw. frischmanifestierten Typ-1-Diabetikern in einem Proberöhrchen inkubiert. Nach Zugabe von 50μΙ eines monoklonalen Betazeil-Oberflächen-Antikörpers und weiterer Inkubation für 2 h bei Raumtemperatur werden die Zellen zweimal gewaschen und mit Fluoresceinisothiocyanat markierten Autoantikkörpern gegen Mausimmunglobulin inkubiert und gewaschen. Die Zellen werden auf Objektträger übertragen und der prozentuale Anteil der Oberflächenfluoreszenz-positiven Zellen werden am Fluoreszenzmikroskop ausgezählt.
Serumproben, die eine Verminderung auf weniger als x- 3SD fluoreszierenden Zellanteil der Kontrollseren verursachen, werden als Autoantikörper-positiv gewertet.
3. Beispiel
Glasröhrchen werden am Boden mit Ratteninsulinomzellen überzogen und 50μΙ eines murinen monoklonalen Betazellen-Antikörpers in Zellkulturmedium und 50μΙ Serum von Kontrollpersonen bzw. frischmanifestierten Typ-1-Diabetikern werden über Nacht bei 4°C inkubiert. Nach Abgießen der Überstände und Waschen der Zellen werden diese nochmals 30min mit 100μΙ mJ-Anti-Mausimmunglobulin bei Raumtemperatur inkubiert.
Nach dem Waschen wird die gebundene Radioaktivität im Gamma-Counter gemessen. Serumproben, die eine Verminderung der Radioaktivität auf weniger als x-3 SD der Kontrollserumproben verursachen, werden als Autoantikörper-positiv gewertet.
4. Beispiel
Mikrotiterplatten werden mit Schilddrüsenmembranen als Targetantigenpräparat beschichtet. In 20 Vertiefungen werden jeweils 50μΙ Kontrollseren gesunder Blutspender und in die übrigen 50 μΙ Serum von Patienten mit immunogener Schilddrüsenerkrankung jeweils als Dreifachbestimmung pipettiert. Nach 1 h Vorinkubation bei Raumtemperatur werden 50μΙ
eines murinen monoklonalen Schilddrüsenantikörpers in jedes Reaktionsgefäß hinzupipettiert. Nach gründlichem Vermischen wird nochmals 3h bei Raumtemperatur inkubiert. Die komplette Platte wird entleert und gewaschen. Zum quantitativen Nachweis der Bindung bzw. der Verdrängung der monoklonalen Antikörper werden diese, wenn sie selbst nicht markiert sind, durch die indirekte Methode mit einem POD-markierten Antikörper gegen Mausimmunglobulin mit der üblichen Farbentwicklung (siehe Beispiel 1) sichtbar gemacht.
Serumproben, die eine Verminderung der Extinktion auf weniger als χ - 3SD der Kontrollseren verursachen, werden als Autoantikörper-positiv gewertet.
Claims (7)
1. Immunologischer Nan! iweisverfahren für spezifische Autoantikörper im Blutserum oder anderen Körperflüssigkeiten, dadurch gekennzeichnet, daß diese Autoantikörper durch eine Vorinkubation mit komplexem Antigenpräparat und anschließende oder gleichzeitige Inkubation mit einem monoklonalen Indikatorantikörper diesen monoklonalen Antikörper in seiner spezifischen Bindung an das Antigenpräparat inhibieren.
2. Immunologisches Nachweisverfahren für spezifische Autoantikörper nach Anspruch 1, dadurch gekonnzeichnet, daß mit der gleichen komplexen Antigenpräparation aus einem polyklonalen Antikörperpool in getrennten Reaktionsgefäßen mit unterschiedlichen monoklonalen Antikörperpopulationen mit unterschiedlicher Epitopspezifität der Nachweis erfolgt.
3. Immunologisches Nachweisverfahren für spezifische Autoantikörper nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als komplexe Antigenpräparate ungereinigte Organextrakte oder Zellsuspensionen, Mikroorganismen oder Gewebedünnschnitte mit unterschiedlichen Zelltypen verwendet werden.
4. Immunologisches Nachweisverfahren für spezifische Autoantikörper nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Vorinkubation vorzugsweise 1 Stunde und die Inkubation mit dem monoklonalen Antikörper vorzugsweise 3 Stunden erfolgen.
5. Immunologisches Nachweisverfahren für spezifische Autoantikörper nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die relevante Antikörperpopulation in der Testprobe direkt durch Verdrängung der Bildung des markierten monoklonalen Antikörpers nachgewiesen wird, wobei es keine speziesabhängige Beschränkung in der Anwendung dieses Verfahrens gibt.
6. Immunologisches Nachweisverfahren für spezifische Autoantikörper nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß die Inhibition der Bindung der spezifischen monoklonalen Antikörper durch einen markierten zweiten Antikörper, der gegen die Immunglobuline der Herkunftsspezies der monoklonalen Antikörper gerichtet ist, nachweisbar ist, wobei die Testprobe und der monoklonale Antikörper nicht gleicher Spezies sein darf.
7. Immunologisches Nachweisverfahren für spezifische Autoantikörper nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Autoantikörper gegen jede antigene Struktur, unabhängig von der Stoffklasse, bestimmbar sind.
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