DK170992B1 - Immobiliserede enzymer samt fremstilling og anvendelse heraf - Google Patents

Immobiliserede enzymer samt fremstilling og anvendelse heraf Download PDF

Info

Publication number
DK170992B1
DK170992B1 DK483487A DK483487A DK170992B1 DK 170992 B1 DK170992 B1 DK 170992B1 DK 483487 A DK483487 A DK 483487A DK 483487 A DK483487 A DK 483487A DK 170992 B1 DK170992 B1 DK 170992B1
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
enzyme
preparation
immobilized
substituted phenyl
cells
Prior art date
Application number
DK483487A
Other languages
English (en)
Other versions
DK483487A (da
DK483487D0 (da
Inventor
Lawson William Powell
John Anthony Power
Original Assignee
Beecham Group Plc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from GB868622389A external-priority patent/GB8622389D0/en
Priority claimed from GB868623306A external-priority patent/GB8623306D0/en
Application filed by Beecham Group Plc filed Critical Beecham Group Plc
Publication of DK483487D0 publication Critical patent/DK483487D0/da
Publication of DK483487A publication Critical patent/DK483487A/da
Application granted granted Critical
Publication of DK170992B1 publication Critical patent/DK170992B1/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P41/00Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture
    • C12P41/006Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by reactions involving C-N bonds, e.g. nitriles, amides, hydantoins, carbamates, lactames, transamination reactions, or keto group formation from racemic mixtures
    • C12P41/009Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by reactions involving C-N bonds, e.g. nitriles, amides, hydantoins, carbamates, lactames, transamination reactions, or keto group formation from racemic mixtures by reactions involving hydantoins or carbamoylamino compounds
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/089Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/089Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • C12N11/091Phenol resins; Amino resins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/14Enzymes or microbial cells immobilised on or in an inorganic carrier
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/96Stabilising an enzyme by forming an adduct or a composition; Forming enzyme conjugates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

DK 170992 B1
Den foreliggende opfindelse angår et immobiliseret præparat til brug i fremstillingen af D(-)a-aminosyrer via en enzymatisk rute og angår især et præparat til brug i en fremgangsmåde til fremstilling af D(-)(substitueret phenyl)glyciner, 5 såsom D(-)(p-hydroxyphenyl)glycin, som anvendes som udgangsmateriale til fremstilling af antibiotikalt amoxycillin.
Det er kendt, for eksempel fra GB 1452591 og 1506067, at der findes mange enzymer, som er i stand til at omdanne 5-(substitueret phenyl)hydantoiner til D-a-aminosyrer. De mest 10 hensigtsmæssige enzymer fremstilles af bakterielle organismer, og GB 1534426 og 1564982 omhandler hydantoinase-producerende organismer, som kan hydrolysere 5-(substitueret phenyl)hydantoiner til D(-)N-carbamoyl-(substitueret phenyl)-glyciner. Derudover omhandler GB 1587116 en enzymatisk frem-15 gangsmåde til fremstilling af D-α-aminosyre ud fra 5-(substitueret phenyl)hydantoin.
Indenfor teknikkens stade er det velkendt, at immobiliseringen af en enzymproducerende celle eller af enzymet medfører en renere enzymbehandlingsvæske, og at dette er fordelagtigt 20 for efterfølgende ekstraktionsprocesser. GB 1564982 redegør for, at celler eller behandlede celler af hydantoinase-producerende organismer kan immobiliseres ved hjælp af almindelige metoder. I praksis er de immobiliserede systemer, der er fremstillet på denne måde, imidlertid ikke tilstrækkeligt 25 stabile til at give en kommerciel holdbar fremgangsmåde. Et kommercielt holdbart system skal kunne genbruges i et tilstrækkeligt antal enzymbehandlinger for at kunne dække omkostningerne ved dets fremstilling. Dette vil typisk være ca. 15 gange.
30 Det har overraskende vist sig, at tilstedeværelsen af en divalent metalion i sådant et immobiliseret enzymsystem giver stabilitet til præparatet, så det kan genanvendes.
I overensstemmelse hermed angår den foreliggende opfindelse et immobiliseret enzympræparat til brug i fremstillingen af DK 170992 B1 2 en D(-)(eventuelt substitueret phenyl)glycin eller et N-carbamoyl derivat deraf ud fra 5-(eventuelt substitueret phenyl) hydantoin, hvilket enzympræparat omfatter celler eller behandlede celler af en organisme, som producerer et hydan-5 toinaseenzym, der er i stand til at hydrolysere 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin, hvilke celler eller behandlede celler er immobiliseret i eller på en hensigtsmæssig bærer, eller et enzym, som stammer fra organismen, og som er adsor-beret på en positivt ladet polymerbærer eller kovalent bundet 10 til en funktionaliseret polymerbærer, sammen med en effektiv mængde af en stabiliserende divalent metalion valgt fra gruppen bestående af Mn++, Co++ og Ni++.
Den effektive mængde stabiliserende divalent metalion som beskrevet heri afhænger af den anvendte ion og kan variere 15 fra en spormængde, dvs. det som forbliver bundet til enzympræparatet, efter at et overskud af tilsat divalent metalion er blevet fjernet, til et niveau på, for eksempel, 2 mM, når enzympræparatet er suspenderet i et vandigt medium.
En særligt foretrukken divalent metalion er Mn++.
20 Ved udtrykket D(-)(eventuelt substitueret phenyl)glycin forstås i nærværende beskrivelse og krav D(-)phenylglycin og D(-)(mono-,di-eller tri-substitueret phenyl)glyciner. Hensigtsmæssige substituenter omfatter hydroxy, C(1.6)alkyl, Cji.gjalkoxy og halogen. Foretrukne D(-)(substitueret phe-25 nyl)glyciner er D(-)(p-hydroxyphenyl)glycin og D(-)(3,4-dihy-droxyphenyl)glycin.
Udtrykket 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin betegner i nærværende beskrivelse og krav 5-phenylhydantoin eller 5-(substitueret phenyl)hydantoin, hvori phenyl er substitueret 30 med op til tre grupper omfattende hydroxy, C(1.6)alkyl, C(1-6)alkoxy og halogen. Typiske eksempler er 5-(4-hydroxy-phenyl)hydantoin og 5-(3,4-dihydroxyphenyl)hydantoin.
DK 170992 B1 3
Udtrykket "immobiliseret enzympræparat" omfatter i nærværende beskrivelse og krav immobiliserede præparater af hele celler, sprængte celler eller cellefrit enzym. Enzymet kan være råt, delvist oprenset, eller oprenset. Fortrinsvis er det immobi-5 liserede enzympræparat et immobiliseret cellefrit enzympræparat .
Det foretrækkes, at organismen, fra hvilken hydantoinaseenzy-met vindes, er en mikroorganisme såsom en Bacillusstamme, Pseudomonasstamme, etc., der er kendt fra GB 1564982, 1587116 10 og 1534426, eller en anden hensigtsmæssig organisme såsom en Mycoplana-art.
Hensigtsmæssige bærere til immobilisering af celler eller behandlede celler er de, der traditionelt anvendes i den kendte teknik, såsom polymermatricer omfattende polyacryl-15 amid, polyurethan eller calciumalginat eller porøse organiske eller uorganiske materialer såsom pimpsten, aluminiumoxid og metalfolier.
Hensigtsmæssige positivt ladede polymerbærere til immobilisering af cellefri enzymer omfatter anionbytterharpikser og 20 polymerbærere såsom DEAE cellulose. Hensigtsmæssige funktio-naliserede polymerbærere omfatter substitueret polymethacryl-syrepolymer, der er funktionaliseret med aldehyd, og materialer såsom aluminiumoxid med høj massefylde, der er belagt med et polyethylenimin/glutaraldehydkompleks.
25 Hensigtsmæssige anionbytterharpikser omfatter stærke eller svage anionbytterharpikser, dog foretrækkes de sidste. Foretrukne anionbytterharpikser omfatter phenol- formaldehyd-anionbytterharpikserne Duolite A568 eller Duolite DS 17183 (fra Rohm og Haas Company), som er funktionaliseret med 30 sekundære aminer, polystyrenharpikser, som er funktionaliseret med tertiære aminer såsom Amberlite IRA 935, og Amberlite IRA 945 (fra Rohm og Haas Company) og Purolit A100. Andre hensigtsmæssige harpikser omfatter Amberlite IRA 901, som er polystyren funktionaliseret med kvaternære ammoniumioner, og DK 170992 B1 4
Lewatit OC 1037 (fra Bayer AG), som er polystyren funktiona-liseret med primære aminer. Polystyrenharpikser med funktionelle grupper af di-ethanoltypen, såsom Diaion EX-05 (fra Mitsubishi Chemical Industries), kan også anvendes.
5 Stabiliteten kan yderligere forbedres ved at krydsbinde præparatet in situ. for eksempel med en vandopløselig dialdehyd. Et foretrukket krydsbindingsmiddel er glutaraldehyd. I tilfælde af immobiliserede cellefri enzymer kan krydsbindingsmidlet med fordel anvendes i et niveau på under ca. 1%, 10 fortrinsvis på ca. 0,2%.
I et yderligere aspekt angår den foreliggende opfindelse en fremgangsmåde til fremstilling af en D(-)(eventuelt substitueret phenyl)glycin eller et N-carbamoyl derivat deraf ved hydrolyse af 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin ved 15 hjælp af et hensigtsmæssigt hydantoinaseenzym under udelukkelse af luft, hvilken fremgangsmåde er ejendommelig ved, at enzymet er givet i form af et immobiliseret enzympræparat indeholdende celler eller behandlede celler af en organisme, der fremstiller enzymet, hvilke celler eller behandlede 20 celler er immobiliseret i eller på en hensigtsmæssig bærer, eller et enzym, som stammer fra organismen, og som er adsor-beret på en positivt ladet polymerbærer eller kovalent bundet til en funktionaliseret polymerbærer, sammen med en effektiv mængde af en stabiliserende divalent metalion valgt fra 25 gruppen bestående af Mn++, Co++ og Ni++.
Det er væsentligt, at luft udelukkes under hydrolyseprocessen, og derefter mens det immobiliserede cellepræparat genvindes og genbruges. Det har vist sig, at indtrængning af luft fører til enzyminhibering, sandsynligvis pga oxidative 30 nedbrydelsesprodukter fra hydantoinen. Reaktionen udføres fortrinsvis i en atmosfære af nitrogen eller andre inerte gasser. Det foretrækkes, at nitrogen eller inert gas også bobles gennem reaktionsblandingen.
DK 170992 B1 5 I en foretrukken fremgangsmåde ifølge opfindelsen tilsættes yderligere mængder stabiliserende divalent metalion, fx i et niveau på 0,2-2 mM, fortrinsvis i et niveau på 0,5-1,0 mM, til reaktionsblandingen. Dette har til formål at minimere en-5 zymaktivitetsreduktionen under reaktionen.
Hydrolysereaktionen udføres fortrinsvis ved en pH på mindst pH 8, og især i området 8,5 til 9,5. En pH på ca. 9,0 foretrækkes. Dette kontrolleres under reaktiosforløbet, for eksempel ved tilsætning af alkali eller ved anvendelse af en 10 passende buffer. Reaktionen udføres normalt ved en temperatur i området fra 30 til 60°C, fortrinsvis 40 til 50°C i en periode på fra 6 til 48 timer, typisk 12 til 24 timer.
Det er hensigtmæssigt, at det immobiliserede enzympræparat bringes i kontakt med en vandig opslæmning af ca. 5 til 25% 15 (vægt/volumen) af den 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydan-toin, fortrinsvis 10 til 20% (vægt/volumen), især ca. 15% (vægt/volumen), sammen med 0,2 til 2, fortrinsvis ca. 0,5, mM, divalent metalion. Hydrolysereaktionen kan udføres i en omrørt tankreaktor eller i en søjlereaktor under udelukkelse 20 af luft.
Visse immobiliserede enzympræparater ifølge opfindelsen er i stand til at hydrolysere 5-(eventuelt substitueret phenyl)-hydantoin direkte til D(-)(eventuelt substitueret phenyl)-glycin. Sådanne enzympræparater kan typisk afledes fra mikro-25 organismer beskrevet i GB 1587116, især de, der tilhører slægten Pseudomonas.
Sædvanligvis vil de immobiliserede enzympræparater ifølge den foreliggende opfindelse imidlertid hydrolysere 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin til et mellemprodukt D(-)N-30 carbamoyl(eventuelt substitueret phenyl)glycin, som derefter kan hydrolyseres, hvis det ønskes, ved hjælp af kemiske eller enzymatiske metoder, til opnåelse af den tilsvarende D(-)-(eventuelt substitueret phenyl)glycin.
DK 170992 B1 6 Når det er ønskeligt at hydrolysere mellemproduktet D(-)N-carbamoyl(eventuelt substitueret phenyl)glycin ved hjælp af en kemisk metode, kan reaktionen praktisk udføres med salpetersyre som beskrevet af T. Ohashi et al. i Aoric. Biol.
5 Chem.. 1981, 4£(4), 831-838.
Hensigtsmæssige enzymatiske metoder til hydrolyse af D(-)N-carbamoyl (eventuelt substitueret phenyl)glyciner til D(-)-(eventuelt substitueret phenyl)glyciner omfatter carbamoyla-ser, som beskrevet, for eksempel, i GB 2022581.
10 De immobiliserede enzympræparater ifølge den foreliggende opfindelse kan lagres fugtige inden brug, fortrinsvis ved lave temperaturer såsom ca. 4°C og kan genbruges. Immobili -serede enzympræparater ifølge opfindelsen er med succes blevet anvendt mere end femten gange, og visse foretrukne 15 immobiliserede cellefri enzympræparater er blevet genbrugt fyrre gange eller mere.
I et yderligere aspekt angår den foreliggende opfindelse en fremgangmåde til fremstilling af et immobiliseret enzympræparat til brug i fremstillingen af en D(-)(eventuelt substi-20 tueret phenyl)glycin eller et N-carbamoyl derivat deraf, hvilken fremgangsmåde omfatter, at behandlede eller ubehandlede celler af en organisme, som producer en hydantoinase, der er i stand til at hydrolysere en 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin immobiliseres i eller på en hensigts-25 mæssig bærer, eller at et enzym, der stammer fra cellerne, bringes i kontakt med positivt ladet eller funktionaliseret polymerbærer i nærværelse af en effektiv mængde stabiliserende divalent metalion valgt fra gruppen bestående af Mn++,
Co++ og Ni++.
30 Metoder til immobilisering af de behandlede eller ubehandlede celler i eller på en hensigtsmæssig bærer i nærværelse af en effektiv mængde stabiliserende divalent metalion er analoge med de metoder, der normalt anvendes i den kendte teknik. Således kan de behandlede celler indlejres i hensigtsmæssige DK 170992 B1 7 bærere såsom polymermatricer omfattende polyacrylamid og polyurethan eller calciumalginat, eller de kan bindes kemisk til hensigtsmæssige bærere såsom porøse organiske eller uorganiske materialer omfattende pimpsten, alumini-umoxid og 5 metalfolier.
I et yderligere aspekt angår den foreliggende opfindelse en fremgangsmåde til fremstilling af et immobiliseret cellefri enzympræparat til brug i fremstillingen af en D(-)(eventuelt substitueret phenyl)glycin eller et N-carbamoyl derivat 10 deraf, hvilken fremgangsmåde omfatter, at et hydantoinase-enzym, der er i stand til at hydrolysere en 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin, fremstilles, at en opløsning af enzymet bringes i kontakt med en positivt ladet eller funktionaliseret polymerbærer i nærværelse af en effektiv 15 mængde af en stabiliserende divalent metalion valgt fra gruppen bestående af Mn++, Co++ og Ni++, hvorved et immobili-seret enzympræparat fremstilles, og at det immobiliserede enzympræparat skilles fra en vandig suspension af dette.
Hydantoinaseenzymet fremstilles fortrinsvis ved gæring af en 20 passende mikroorganisme i et hensigtsmæssigt gæringsmedium. Hensigtsmæssige mikroorganismer og dyrkningsmedier er de, der er velkendte af fagmanden, og eksempler herpå gives i GB 1564982, 1534426 og 1587116.
En foretrukken mikroorganisme er Bacillus brevis IFO 12333, 25 som kan dyrkes i det dyrkningsmedium, der er beskrevet i GB 1587116 eller i tilsvarende medier. Sådanne medier kan med fordel omfatte en enzyminducer såsom hydantoin eller DL-5-methyl-hydantoin og divalent metalioner omfattende Mn++,
Mg++, Co++ og Fe++, som er angivet at stimulere hydantoinase-30 produktion. I en foretrukken fremgangsmåde dyrkes Bacillus brevis i et næringspodningsmedium i en passende periode såsom 44 timer og dyrkes derefter i et gæringsmedium indeholdende det inducerende middel og hensigtsmæssige divalente metalioner ved ca. 25°C, idet en pH på 7 til 8 opretholdes i den 35 tidlige vækstfase. Gæringen er afsluttet efter ca. 44 timer.
DK 170992 B1 8
Cellerne høstes derefter, for eksempel ved centrifugering, og ødelægges derefter ved sonikering eller ved andre for fagmanden kendte teknikker for at frigive hydantoinasen. For delvis at oprense enzymet foretrækkes det at fælde nukleinsyrerne, 5 for eksempel ved tilsætningen af manganosulfat til en koncentration på 20mM. For at fælde de thermolabile proteiner opvarmes enzymet til en temperatur i området 50 til 65°C, fortrinsvis 55 til 60°C, i ca. 30 minutter efterfulgt af afkøling til 4°C. Enzymopløsningen kan derefter centrifugeres 10 for at fjerne celledebris og udfældet nukleinsyre og proteiner. Det foretrækkes, at enzymopløsningen ikke dialyseres før adsorptionen for at bevare den divalente metalion. I dette tilfælde er det ikke nødvendigt at tilføre yderligere divalent metalion til fremstilling af det immobiliserede 15 enzympræparat.
Til fremstilling af det immobiliserede cellefri enzympræparat blandes den delvist oprensede enzymopløsning med polymer-bæreren i nærværelse af hensigtsmæssige divalente metalioner. Enzymladningen skal optimiseres for hver type polymerbærer og 20 er typisk 3 til 7 enheder pr. gram bærer. Blandingen rystes ved ca. 25°C, indtil adsorption har fundet sted, for eksempel ca. 24 timer.
Polymerbæreren forberedes fortrinsvis til adsorption ved at blive vasket i saltopløsning og indstillet til ca. pH 8 til 25 9.
For at krydsbinde det immobiliserede cellefri enzympræparat er det ønskeligt at filtrere præparatet fra adsorptionopløsningen og at behandle den med en opløsning af krydsbindings-midlet ved en pH i området 8 til 9. Det krydsbundne præparat 30 kan derefter vaskes med destilleret vand og yderligere buffer, fortrinsvis indeholdende en hensigtsmæssig divalent metalion, inden fugtig opbevaring i forseglede beholdere, fortrinsvis ved lave temperatur såsom ca. 4°C.
Nogle eksempler er beskrevet i det følgende: DK 170992 B1 EKSEMPEL 1 9
Hydantoinaseenzym blev fremstillet ved bakterielle gæringer på følgende måde. 9 1 gæringsmedium indeholdende følgende komponenter blev fremstillet og indstillet til pH 7,0.
5 Gærekstrakt 200 g KH2P04 10 g K2HP04 10 g (NH4)2S04 50 g
MgS04 5 g 10 FeS04 0,1 g
MnS04 0,1 g
CaCl2 0,8 g
Antiskum 15 g
Mediet blev anbragt i en 12 liters fermentor og autoklaveret 15 i 60 minutter ved 121°C. Opløsninger af 20% (vægt/volumen) glucose og 2% DL 5-methylhydantoin blev steriliseret separat, og 500 ml af hver blev under sterile forhold sat til fermentoren.
Fermentoren blev podet med 300 ml af en podningskultur af 20 Bacillus brevis IFO 12333, der var dyrket på Tryptone Soya Broth i 44 timer ved 25°C. Gæringen blev holdt på 25°C og beluftet med 6 1/min. pH blev kontrolleret og holdt på 7,0 i 24 timer med HC1. Ammoniumhydroxid blev derefter anvendt til at hæve pH til 7,5. Efter 28 timer blev pH hævet til 8,0 og 25 fik derefter lov til at stige frit.
Gæringen fik lov til at fortsætte i 46 timer, hvorefter cellerne blev høstet ved centrifugering. Cellepellet blev resuspenderet i 1,25 1 0,2 M Tris/HCl buffer, pH 8,5. Cellerne blev derefter sonikeret for at frigive hydantoinasen til 30 opløsningen.
Delvis oprensning af enzymet blev udført som følger: nukleinsyrer blev udfældet ved tilsætningen af 20 mM MnS04, enzym- DK 170992 B1 10 opløsningen blev varmebehandlet ved 58°C i 30 minutter og derefter afkølet til 4°C. Efter opbevaring ved 4°C i 18 timer blev præparatet centrifugeret for at fjerne celledebris og udfældede nukleinsyre og proteiner. Præparatet blev analyse-5 ret for at bestemme hydantoinaseaktivitet. En suspension af 1% DL-5-(4-hydroxyphenyl)hydantoin i 0,2 M Tris/HCl buffer, pH 8,5 blev rystet ved 42°C, til mætning indtraf. En aliquot af enzympræparatet blev derefter tilsat, og dannelsen af D(-)N-carbamoyl(4-hydroxyphenyl)glycin blev fulgt ved HPLC.
10 En enhed hydantoinase er defineret som den mængde enzym, der kan omdanne 1 mM DL-5-(4-hydroxyphenyl)hydantoin til D(-)N-carbamoyl-(4-hydroxyphenyl)glycin på 1 time.
EKSEMPEL 2
Prøver af anionbytterharpiks, der var tilvejebragt fra kom-15 mercielle kilder, blev vasket i 1 time i 1 M NaCl og derefter ækvilibreret natten over i 0,2 M Tris HC1 buffer, pH 8,5. De ækvilibrerede harpikser blev isoleret ved filtrering og lagret, indtil de skulle bruges. Det delvist oprensede enzym, der var fremstillet som beskrevet i eksempel 1, blev anvendt 20 i immobiliseringsproceduren. Enzymet fik, ved at blande 10 ml enzymopløsning pr. gram (fugtig vægt) harpiks (3,5 -7,0 enheder/gram harpiks), lov til at adsorbere til harpikserne i 24 timer ved 25°C. Enzymharpikskomplekserne blev frafiltreret og behandlet med 1% glutaraldehyd ved pH 8,5. Efter 1 time 25 blev harpiksprøverne igen filtreret fra og vasket tre gange med destilleret vand. Til slut blev enzymharpikserne vasket med 0,2 M Tris/HCl buffer, pH 8,5 og lagret fugtige i forseglede beholdere ved 4°C.
Hvert enzymharpikskompleks, der var fremstillet på denne 30 måde, blev analyseret for at bestemme dets specifikke aktivitet som beskrevet i eksempel 1. Tabel 1 viser de specifikke aktiviteter, der blev opnået for en række kommercielle ion-bytterharpikser, der var behandlet på denne måde.
DK 170992 B1 11
M 4-J
<U y Φ m t| *i tr· 'tj T1 *-< <s σ> φ m ^ •h 712¾ veinxfæovOfnn
Dj MT;? *·«·»·*- v s s
U 8,5-¾ CSCN^^tNO^fO
m w rr <u JC --------- u 0)
4J
4J
>1 J3 J-t c- C L 0) \ 9 >! B "S in in in η έ1
"d N'n£inmN»HfHvOt},o ro C
C CC C».»-fc«-vv«.».CL O
10 wftaJvOvOtrtininro^f^o e jj ·η O <D <0
£ __________U H Q
&1 (Λ δ Ή id · ft rH J-j IT) Ih ft Φ οι S x δ -η τί & & „,-g t{ « cg4 ^ fe § δ M & « « g ^ · H o ft M $ ft 2j jj 1-1 g Q > 0) ro
rH 3 rH ft Ό I-D
<U -H Q Φ μ ft C _ C C (0 'Q O * Φ ° .5 .5 a a % I S I £2 . 8 •S ^ llIIIIISuSSi} U 3 OOOOOOO·^ ft tn in Φ L· <n ch m cn m ft Q .k ft * 5 1 1 Sr a ϊ O ----------S w u “ yt α )η 3 ή
Φ >, IC
g 3® S .¾
O rH C
rH 4H 0) -H <T3 O
♦H r—I Ih XI
•J -U *0 *0 UVh'JHU
« £ , £ j? ro .2 ft -h 5 *2 El λ £ < G ΌΌ P < 3 in E-ι D. H h O T3 ft 0 x 1 1 ·* s1 g ·§ ^ g poSSSSSS 8 <U -»3 s ? I Π U ^ 5 €
i. £ I-Hc—I4J4J+J.P4JZJ (U H <D
» S 88RS.S.S,RS.fSTJ 2 " δ ®5J_tftftftftft φ q >h ft u S isSsssJs 5^1 *» · ® ----------ΪΈ * *8 8
3 x ° ® · α S
> Φ Φ H
2 a, ft . u a: ft id d !n m η -η <c 3 u <u > ·* æ oj & qj r- m w et ro rH Æ<<m φ · φ ro Φ φ
r'QQOKKtsom ft X w Η G
ni rHvSonHMrHQ fc Airatno) 1 s h g p e s 1 ; k |$ -<H in WWÉ-<HHHfc·* O -C ro Φ Hft υ & ddslillsj 2« iiJ cu φ m 33522SHi-3 ih ίο 4J tn o -u d. x CaB4<i22jQ ΟΉΐη-Η-Ηα)
w Ξ y s S -2 H
o, ft Vj o φ
2 rHtNro'fl-mvor'QD
DK 170992 B1 12 EKSEMPEL 3 440 ml delvist oprenset enzymopløsning (aktivitet = 0,59 enheder/ml) som fremstillet i eksempel 1 blev sat til 40 g Duolite A568 harpiks. Blandingen blev rystet forsigtigt ved 5 25°C i 24 timer for at lade hydantoinasen adsorbere til bæreren. Enzymharpikskomplekset blev derefter udskilt ved filtrering og vasket tre gange med destilleret vand og til slut med 0,2 M Tris/HCl buffer, pH 8,5. Enzymharpiksen blev lagret fugtig i en forseglet beholder ved 4°C. Det immobili-10 serede enzym blev analyseret som beskrevet i eksempel 1, og dets specifikke aktivitet blev fundet at være 3,9 enheder/g.
200 g DL-5-(4-hydroxyphenyl)hydantoin og 0,23 g MnS04 blev sat til 1,8 1 destilleret vand i en beholder udstyret med en kappe. Nitrogengas blev boblet gennem blandingen. Suspensio-15 nen blev rystet, temperaturen holdt på 40°C og pH indstillet til 8,7 med ammoniumhydroxid. Da systemet var ækvilibreret, blev 150 enheder (38,5 g enzymharpikskompleks) hydantoinase tilsat. Reaktionen fik lov til at fortsætte i 24 timer, og pH blev holdt på 8,7 med ammoniumhydroxid under hele processen.
20 Efter 24 timer blev udbyttet af D(-)N-carbamoyl-(4-hydroxy-phenyl)glycin bestemt ved HPLC til at være 97%. Det ved denne proces dannede produkt blev isoleret ved almindelige metoder og fundet at være af høj optisk renhed.
Enzymharpiksen, der blev anvendt i denne proces, blev gen-25 brugt 50 gange ved at dekantere D(-)N-carbamoyl(4-hydroxyphe-nyl)glycinopløsningen i slutningen af reaktionen, idet man sørgede for, at enzymet forblev i en nitrogenatmosfære, og erstatte den med en frisk forudækvilibreret substratsuspension. Under disse enzymharpiksgenbrug gav omdannelsen til 30 D(-)N-carbamoyl(4-hydroxyphenyl)glycin udbytter på 95% eller mere.
EKSEMPEL 4 DK 170992 B1 13
Hydantoinaseenzymet blev også immobiliseret på UOP IPS - 100, en aluminiumoxidbaseret bærer, der er imprægneret med et høj molekylvægts polethylenimin-glutaraldehydkompleks. UOP IPS -5 100 er et kommercielt produkt fra UOP Inc, Des Plaines, Illi nois. 250 ml delvist oprenset enzymopløsning fremstillet som beskrevet i eksempel 1 (aktivitet = 0,23 enheder/ml) blev sat til 7,5 g UOP-bærer. Blandingen blev rystet forsigtigt ved 25°C i 18 timer. Det således dannede enzym-bærerkompleks blev 10 udskilt ved filtrering og blev derefter vasket med destilleret vand efterfulgt af 0,2M Tris/HCl buffer, pH 8,5. Det im-mobiliserede enzym blev analyseret under anvendelse af den i eksempel 1 beskrevne standardmetode og blev fundet at have en specifik aktivitet på 4,68 enheder/g. Det ikke-opløselig-15 gjorte enzym blev lagret fugtig i en forseglet beholder ved 4°C.
EKSEMPEL 5 800 liter hydantoinase-indeholdende celler af Bacillus brevis IFO 12333 blev dyrket under anvendelse af mediet beskrevet i 20 eksempel 1. Induceren, 5-methyl hydantoin, blev steriliseret i mediet, og metalionerne blev opløst i deioniseret vand og sat til mediet lige inden sterilisering. Glucose blev tilsat som en steril 40% (vægt/volumen) opløsning til opnåelse af en slutkoncentration på 1% (vægt/volumen). Mediet blev podet med 25 celler, der var dyrket i 36 timer ved 25°C i 12 rystede kolber, der hver indeholdt 400 ml Tryptone Soya Broth. Gæringen foregik ved 25°C under et tryk på 1,0 bar og en luftstrøm på 0,3 beholdervolumen/minut. pH blev holdt under 7,0 i de første 36 timer, hvorefter pH efter 36 timer og indtil høsten 30 efter 48 timer blev hævet til 7,5. Det endelige celleudbytte var 6,0% med en specifik aktivitet på 1,8 enheder/g.
Cellerne blev høstet under anvendelse af en afvandende centrifuge af typen Westphalia ("Westphalia desludging centrifuge"), og pH af den resulterende celleopslæmning (100 1) blev DK 170992 B1 14 hævet til pH 8,5 med ammoniakopløsning inden homogenisering i en APV Manton-Gaulin (K6) maskine. Homogenatet blev derefter fortyndet til 270 1 med blødgjort vand efterfulgt af tilsætning af MnS04,4H20 til 20 mM, idet pH blev holdt på 8,5-8,6 5 med ammoniakopløsning. Dette blev efterfulgt af varmebehandling ved 60°C i 1 time. Det flokkulerede homogenat blev derefter afkølet til 30°C og klaret ved passage gennem en afvandende centrifuge.
8,2 kg anionbytterharpiks Duolite A568, som var blevet vasket 10 med 1 M NaCl og indstillet til pH 8,5 med NH4OH i løbet af 1 time, blev sat til 130 liter klaret enzymopløsning med en aktivitet på 189 enheder/liter. Adsorption af enzymet til harpiksen fik lov til at foregå i løbet af 20 timer med omrystning, pH blev holdt på 8,5 med NH4OH. Harpiksen blev 15 derefter isoleret ved filtrering og sat til 100 liter 0,2% (vægt/volumen) glutaraldehydopløsning ved pH 8,5. Krydsbindingsprocessen foregik i løbet af 1 time med omrystning. Enzymharpiksen blev derefter isoleret ved filtrering og vasket med 0,05 M Tris/HCl buffer pH 8,5, der indeholdt 1 mM 20 MnS04, i løbet af 30 minutter. Der blev isoleret 8,6 kg enzymharpiks med en specifik aktivitet på 1,7 enheder/g.
EKSEMPEL 6 6,65 kg enzymharpiks med en aktivitet på 1,1 enheder/g, der var fremstillet ifølge metoden beskrevet i eksempel 5, blev 25 anvendt til at hydrolisere 9,75 kg DL-5-(4-hydroxyphenyl)-hydantoin i 65 liter blødgjort vand indeholdende 11 g MnS04. Hydrolysereaktionen blev udført i løbet af 23 timer ved 40°C og pH 9,3-9,5, og N2 blev boblet gennem blandingen for at udelukke ilt. Ved slutningen af reaktionen blev der målt et 30 udbytte af D(-)N-carbamoyl(4-hydroxyphenyl)glycin på 96,4%.
EKSEMPEL 7
Enzymharpiksen i eksempel 6 blev anvendt til at udføre 12 hydrolyser af 10% DL-5-(4-hydroxyphenyl)hydantoin med et

Claims (11)

1. Immobiliseret enzympræparat til brug i fremstillingen af et D(-)(eventuelt substitueret phenyl)glycin eller et N-25 carbamoylderivat deraf ud fra 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin, kendetegnet ved, at enzympræparatet omfatter celler eller behandlede celler af en organisme, som producerer et hydantoinaseenzym, der er i stand til at hydrolysere 5-(even-30 tuelt substitueret phenyl)hydantoin, hvilke celler eller behandlede celler er immobiliseret i eller på en hensigtsmæssig bærer, eller et enzym, som stammer fra organismen, og som DK 170992 B1 er adsorberet på en positivt ladet polymerbærer, eller kovalent bundet til en funktionaliseret polymerbærer, sammen med en effektiv mængde af en stabiliserende divalent metalion valgt fra gruppen bestående af Mn++, Co++ og Ni++.
2. Præparat ifølge krav l, kendetegnet ved, at det immobiliserede enzym er cellefrit.
3. Præparat ifølge krav l eller 2, kendetegnet ved, at enzymet er opnået fra en Bacil-10 lusstamme, Pseudomonasstamme eller Mycoplanastamme.
4. Præparat ifølge krav 3, kendetegnet ved, at enzymet er opnået fra Bacillus brevis IFO 12333.
5. Præparat ifølge et hvilket som helst af kravene 1 til 4, 15 kendetegnet ved, at den divalente metalion er Mn++.
6. Præparat ifølge et hvilket som helst af kravene 1 til 5, kendetegnet ved, at enzymet er bundet til bærereren ved krydsbinding.
7. Fremgangsmåde til fremstilling af en D(-)(eventuelt sub-20 stitueret phenyl)glycin eller et N-carbamoyl derivat deraf ved hydrolyse af 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin ved hjælp af et hensigtsmæssigt hydantoinaseenzym under udelukkelse af luft, kendetegnet ved, at enzymet er givet i form af et 25 immobiliseret enzympræparat indeholdende celler eller behandlede celler af en organisme, der fremstiller enzymet, hvilke celler eller behandlede celler er immobiliseret i eller på en hensigtsmæssig bærer, eller et enzym, som stammer fra organismen, og som er adsorberet på en positivt ladet polymer-30 bærer eller kovalent bundet til en funktionaliseret polymerbærer, sammen med en effektiv mængde af en stabiliserende DK 170992 B1 divalent metalion valgt fra gruppen bestående af Mn++, Co++ og Ni++.
8. Fremgangsmåde ifølge krav 7, kendetegnet ved, at det immobiliserede enzympræ-5 parat er et enzympræparat ifølge et hvilket som helst af kravene 2 til 6.
9. Fremgangsmåde ifølge krav 7 eller krav 8 til fremstilling af D(-)(4-hydroxyphenyl)glycin eller D(-)N-carbamoyl(4-hy-droxyphenyl)glycin.
10. Fremgangsmåde til fremstilling af et immobiliseret enzym præparat til brug i fremstillingen af et D(-)(eventuelt substitueret phenyl)glycin eller et N-carbamoyl derivat deraf, kendetegnet ved, at behandlede eller ubehandlede celler af en organisme, som producerer en hydantoinase, der 15 er i stand til at hydrolysere en 5-(eventuelt substitueret phenyl)hydantoin immobiliseres i eller på en hensigtsmæssig bærer, eller at et enzym, der stammer fra cellerne, bringes i kontakt med en positivt ladet eller funktionaliseret polymerbærer i nærværelse af en effektiv mængde af en stabiliserende 20 divalent metalion valgt fra gruppen bestående af Mn++, Co++ og Ni++.
11. Fremgangsmåde ifølge krav 10, kendetegnet ved, at det immobiliserede enzympræparat er cellefrit, hvilken fremgangsmåde yderligere omfatter, 25 at det immobiliserede enzympræparat skilles fra en vandig suspension af dette.
DK483487A 1986-09-17 1987-09-15 Immobiliserede enzymer samt fremstilling og anvendelse heraf DK170992B1 (da)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB868622389A GB8622389D0 (en) 1986-09-17 1986-09-17 Preparation
GB8622389 1986-09-17
GB8623306 1986-09-27
GB868623306A GB8623306D0 (en) 1986-09-27 1986-09-27 Preparation

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK483487D0 DK483487D0 (da) 1987-09-15
DK483487A DK483487A (da) 1988-03-18
DK170992B1 true DK170992B1 (da) 1996-04-15

Family

ID=26291302

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK483487A DK170992B1 (da) 1986-09-17 1987-09-15 Immobiliserede enzymer samt fremstilling og anvendelse heraf

Country Status (11)

Country Link
EP (1) EP0261836B1 (da)
JP (1) JPH0779696B2 (da)
AU (1) AU603827B2 (da)
CA (1) CA1298800C (da)
DE (1) DE3786511T2 (da)
DK (1) DK170992B1 (da)
ES (1) ES2058121T3 (da)
HK (1) HK1003230A1 (da)
IE (1) IE60591B1 (da)
NZ (1) NZ221808A (da)
PT (1) PT85718B (da)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5565344A (en) * 1990-12-07 1996-10-15 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for production of D-α-amino acids
ES2042409B1 (es) * 1992-04-10 1994-06-01 Control & Gestion Instr Procedimiento para la preparacion de d-aminoacidos o derivados de d-aminoacidos.
JP3996183B2 (ja) * 1994-06-24 2007-10-24 株式会社カネカ 複合固定化酵素調製物を用いたd−アミノ酸の製造方法
EP1616945B1 (en) * 1994-12-28 2007-11-21 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for producing D-N-carbamoyl-alpha-amino acids
US6461858B1 (en) * 1998-01-26 2002-10-08 Pharm-Eco Laboratories, Inc. Enzyme activated supports for enantiomeric separations
DE10130169A1 (de) * 2001-06-22 2003-01-09 Degussa Aktivierte rec-D-Hydantoinasen
WO2011003702A1 (en) * 2009-07-09 2011-01-13 Dsm Ip Assets B.V. Stabilized enzyme compositions

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CH596313A5 (da) * 1975-05-30 1978-03-15 Battelle Memorial Institute
IT1039757B (it) * 1975-07-10 1979-12-10 Snam Progetti Complessi enzimatici atti a trasformare idantoine raceme in am minoacidi otticamente attivi e loro applicazione
US4094741A (en) * 1976-02-04 1978-06-13 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for preparing D-(-)-N-carbamoyl-2-(phenyl or substituted phenyl)glycines
US4211840A (en) * 1977-06-08 1980-07-08 Ajinomoto Company, Incorporated Method for producing D-α-amino acid
GB2122621B (en) * 1982-06-25 1985-09-25 Uop Inc Enhanced immobilization of glucose isomerase

Also Published As

Publication number Publication date
JPS63185382A (ja) 1988-07-30
PT85718A (en) 1987-10-01
EP0261836B1 (en) 1993-07-14
JPH0779696B2 (ja) 1995-08-30
IE872497L (en) 1988-03-17
AU7843287A (en) 1988-03-24
PT85718B (pt) 1990-08-31
AU603827B2 (en) 1990-11-29
NZ221808A (en) 1989-02-24
DE3786511T2 (de) 1994-01-13
ES2058121T3 (es) 1994-11-01
EP0261836A1 (en) 1988-03-30
DK483487A (da) 1988-03-18
DK483487D0 (da) 1987-09-15
IE60591B1 (en) 1994-07-27
CA1298800C (en) 1992-04-14
DE3786511D1 (de) 1993-08-19
HK1003230A1 (en) 1998-10-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5283182A (en) Preparation of immobilized hydantoinase stabilized with divalent metal ions
SU1512488A3 (ru) Способ получени амида
WO1986007386A1 (en) Process for preparing optically active, organic compounds
HU226148B1 (en) Method for preparing 2-hydroxy 4-methylthio butyric acid using a nitrilase
JPH04504362A (ja) 酵素による7―アミノセフアロスポラン酸の製造
DK170992B1 (da) Immobiliserede enzymer samt fremstilling og anvendelse heraf
US4668625A (en) Process for preparing peptides
US4758518A (en) D-2-haloalkanoic acid halidohydrolase
JP3409353B2 (ja) アミド化合物の製造方法および使用される微生物
CN1035320A (zh) 酰基氨基酸外消旋酶,其生产方法及应用
US6630338B2 (en) Removing deacetylase contaminant from cephalosporin C acylase using cationic surfactant
HK1003230B (en) Immobilised enzyme preparation and its use
AU639494B2 (en) A process for preparing peroxycarboxylic acids using an enzyme catalyst
EP0383403A1 (en) Process for preparation of organic chemicals
JPWO1996000296A1 (ja) 複合固定化酵素調製物を用いたd−アミノ酸の製造方法
CN1129957A (zh) 用复合固相酶制品生产d-氨基酸的方法
US4492757A (en) Process for preparing L-threonine
EP0775748B1 (en) Preparation of D-alpha-amino acids, using bacteria transformed with the carbamoylase-hydantoinase operon
CN101253271A (zh) 光学活性α-羟基羧酸的制造方法
Chibata et al. Applications of immobilized enzymes and immobilized microbial cells for L-amino acid production
EP1057894A2 (en) Esterase genes and uses of the same
US5723321A (en) Process for preparing D-lysine
JP3392865B2 (ja) 固定化酵素調製物およびD―α―アミノ酸の製造法
JPH10286087A (ja) 固定化生体触媒
EP0352846B1 (en) Process for the preparation of biocatalysts with previously absent stereoselective enzyme activity

Legal Events

Date Code Title Description
B1 Patent granted (law 1993)
PUP Patent expired