ES2197492T3 - Derivados de oligosacaridos y procedimiento para su preparacion. - Google Patents

Derivados de oligosacaridos y procedimiento para su preparacion.

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Masato Nagaoka
Hideyuki Shibata
Itsuko Kimura
Shusuke Hashimoto
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Abstract

Derivado de oligosacáridos seleccionado de entre el grupo que consta de las siguientes fórmulas: **FORMULA** en las que "n¿ = 2 a 20.

Description

Derivados de oligosacáridos y procedimiento para su preparación.
Campo de la invención
La presente invención se refiere a un derivado de oligosacáridos y a un procedimiento para su preparación. Más específicamente, la invención se refiere a un derivado de oligofucosa u oligoramnosa, que es efectivo para la prevención y tratamiento de la inflamación y ulceración en la mucosa de órganos gástricos tales como el estómago y el duodeno.
Antecedentes de la invención
Los agentes convencionales contra la úlcera incluyen aquellos para controlar la secreción de jugos gástricos, tales como bloqueantes de H_{2} e inhibidores de la bomba de protones. Para el fin de un tratamiento terapéutico activo de la gastritis y de las células de la mucosa gástrica, recientemente se ha estudiado el uso de prostaglandinas o de factores de crecimiento de fibroblastos básicos. Estos agentes farmacéuticos, por un lado, ejercen efectos terapéuticos eficaces. Por otro lado, sin embargo, estos agentes farmacéuticos provocan potencialmente el comienzo de la úlcera, específicamente la aparición de úlcera de la que es responsable una especie bacteriana específica, la Helicobacter pylori. Por lo tanto, se subraya que las úlceras gástricas se deberían tratar esencialmente, incluyendo la desinfección de la especie bacteriana (Masahiro Asaka, ``Helicobacter pylori and disorders of gastric mucosal membrane'' Sentan-Igaku-Sha (Top Medicine Press), 1 julio 1995).
Se ha sabido adicionalmente que las células microbianas de ciertas especies de bifidobacterias o bacterias del ácido láctico, y los polisacáridos u oligosacáridos preparados a partir de estas células microbianas, Phaeophyceae Chordariales nemacystus o lechuga verde (Monostroma nitidum), son efectivos no sólo en la prevención de la ulceración sino también en la promoción de su curación, y de este modo son útiles como agentes contra la úlcera (documentos JP-A-6-247861; JP-A-7-138166). Estos polisacáridos y oligosacáridos comprenden principalmente fucosa y/o ramnosa. Específicamente, el fucoidano, un polímero de fucosa, ejerce efectos para prevenir la formación de la úlcera y para promover la curación de la ulceración, y adicionalmente ejerce una acción para inhibir la adhesión de H. pylori. No obstante, estos polisacáridos y oligosacáridos per se no son satisfactorios en términos de su actividad contra la úlcera. Además, es difícil recuperar estos polisacáridos y oligosacáridos en estados homogéneos, incluyendo la homogeneidad de sus pesos moleculares.
Sumario de la invención
Es un objeto principal de la invención proporcionar un derivado de oligosacáridos que tiene mayor homogeneidad y mayores efectos contra la úlcera que aquellos de los polisacáridos convencionales anteriormente mencionados, y otro objeto de la presente invención es proporcionar un procedimiento para producirlo.
Según una realización de la presente invención, se proporciona un derivado de oligosacárido representado por la siguiente fórmula general:
Y_{1}-OCH(CH_{2}NHR)_{2}
en la que Y_{1} representa una oligofucosa con un número de polimerización de 2 a 20, en la que los grupos hidroxilo pueden estar parcialmente modificados o no en la forma de éster de sulfato, y R representa un grupo fenilo, un grupo alquilfenilo superior, un grupo alquilo superior o -(CH_{2})_{n}-NHX en la que n es un número entero de 1 a 10 y X representa un grupo alcanoilo superior o un grupo alquilamino con o sin sustituyentes.
Según otra realización de la presente invención, se proporciona también un derivado de oligosacáridos representado por la siguiente fórmula general:
Y_{2}-OCH(CH_{2}NHR)_{2}
en la que Y_{2} representa una oligoramnosa con un número de polimerización de 2 a 20, en la que los grupos hidroxilo pueden estar parcialmente modificados o no en la forma de éster de sulfato, y R representa un grupo fenilo, un grupo alquilfenilo superior, un grupo alquilo superior o -(CH_{2})_{n}-NHX en la que n es un número entero de 1 a 10 y X representa un grupo alcanoilo superior o un grupo alquilamino con o sin sustituyentes.
Estos derivados de oligosacáridos tienen diversas propiedades, incluyendo un excelente efecto contra la úlcera.
La presente invención también proporciona un procedimiento para producir un derivado de oligosacáridos que comprende las etapas de convertir el residuo de azúcar en el extremo reductor de la oligofucosa u oligoramnosa a un grupo aldehído mediante degradación oxidativa, generar una base de Schiff permitiendo que el grupo aldehído reaccione con al menos una de las alquilaminas y alilaminas correspondientes, y reducir la base de Schiff para obtener un derivado de oligosacárido.
Es decir, en el procedimiento según la presente invención, el fucoidano (polisacárido de fucosa) o ramnano (polisacárido de ramnosa) se modifica en un oligosacárido (un oligómero que comprende alrededor de 3 a 20 moléculas de fucosa o ramnosa) mediante tratamiento con ácido, y entonces el oligosacárido se somete a oxidación con peryodato, reacción con las aminas correspondientes, y tratamiento reductor.
Según otro aspecto de la invención, se proporciona un inhibidor para H. pylori que comprende el derivado de oligosacáridos, principalmente derivado de oligofucosa y/o derivado de oligoramnosa según la presente invención.
Según aún otro aspecto de la presente invención, se proporciona un agente para prevenir y tratar terapéuticamente la úlcera gástrica, comprendiendo dicho agente al derivado de oligosacáridos, principalmente derivado de oligofucosa y/o derivado de oligoramnosa según la presente invención.
Según una realización de la presente invención, el procedimiento para producir un derivado de oligosacáridos comprende las siguientes etapas 1 a 8.
Etapa 1: Usando métodos de extracción conocidos, se extraen polisacáridos de algas marinas (tales como Phaeophyceae Chordariales nemacystus, Hydrilla, Fucus, y Monostroma nitidum) que contienen fucoidano, ramnano o sulfato de ramnano.
Etapa 2: Los polisacáridos recuperados se disuelven en una disolución de ácido clorhídrico o trifluoroacetato de alrededor de 0,075 N a 0,1 N; la mezcla se calienta a 100ºC durante 10 a 20 minutos, para modificar los polisacáridos en la forma de oligosacáridos. Tras el tratamiento, la mezcla de reacción resultante se neutraliza con hidróxido sódico, seguido de adición de NaBH_{4} para neutralizar la mezcla para el tratamiento reductor a temperatura ambiente o 4ºC durante 16 horas.
Etapa 3: La disolución de los oligosacáridos en forma de alditol, según se recupera mediante los procedimientos de la etapa 2, se desala mediante diálisis (un peso molecular de fraccionamiento de 500) o electrodiálisis, o usando una resina de intercambio iónico.
Etapa 4: A la disolución recuperada en la etapa 3 se añade metaperyodato de sodio para reacción en una vasija sumergida en un baño de hielo durante alrededor de una hora. Aquí, un oligosacárido en una estructura tal que los azúcares, excepto los azúcares en los extremos reductores o los extremos no reductores, nunca se oxidan, por ejemplo (1 \rightarrow 3) oligosacárido, se puede someter satisfactoriamente a la reacción durante un mayor período de tiempo. A la disolución de la reacción se añade etilenglicol en un volumen en exceso al ácido peryódico, para reacción adicional durante alrededor de una hora. La disolución resultante se somete a desalazón de la misma manera como en la etapa 3. Mediante el procedimiento, se puede recuperar un derivado de oligosacáridos (en el estado líquido) con un grupo aldehído en el extremo.
Etapa 5: Se añade ácido acético a la disolución procedente de la etapa 4 hasta una concentración final de 0,5 M, que se somete a reacción a temperatura ambiente durante 20 horas. La disolución de la reacción se dializa frente a una membrana de diálisis de un peso molecular de fraccionamiento de 500; la disolución del residuo de diálisis interna se liofiliza para recuperar un oligosacárido objetivo. Adicionalmente, la fracción de oligosacárido se puede desalar mediante diálisis. Como alternativa, la fracción de oligosacárido se puede fraccionar y desalar mediante cromatografía en una columna de carbón activo y filtración en gel para preparar la fracción de un peso molecular apropiado.
Etapa 6: La fracción de oligosacárido recuperada en la etapa 5 se disuelve en una disolución acuosa que contiene 40% a 50% de propanol, seguido de adición de alquilaminas o alilaminas, para reacción a 45ºC durante 2 horas, para preparar una base de Schiff. En este caso, se puede usar satisfactoriamente como disolvente cualquier sustancia (dimetilsulfóxido, dimetilformamida), capaz de disolver oligosacáridos y alquilaminas. Entonces, se puede seleccionar cualquier alquilamina y cualquier alilamina, sin limitación específica, para uso en la reacción; dándose preferencia a anilinas con o sin sustituyentes, y alquilaminas superiores con o sin sustituyentes, en las que los sustituyentes incluyen, por ejemplo, grupos alquilo, grupos alcanoilamino y grupos alquilamino.
Etapa 7: Se añade trimetilamina de Volan a la disolución recuperada en la etapa 6, para reducir la base de Schiff a 45ºC durante 20 horas. Se pueden usar apropiadamente agentes reductores que satisfagan el fin (por ejemplo, dimetilamina de Volan, NaCNBH_{4}, NaBH_{4}, etc.), además de trimetilamina de Volan.
Etapa 8: Tras la terminación de la reducción en la etapa 7, se separa el disolvente mediante destilación por medio de un evaporador y similar; repartiendo subsiguientemente la disolución resultante en una disolución mezcla de cloroformo:metanol:agua = 2:1:1, y se recoge la fase acuosa resultante. Enjuagando la fase acuosa en cloroformo y liofilizando la fase acuosa, se puede recuperar un derivado de oligosacárido que comprende un complejo de oligosacárido-alquilamina. Dependiendo de las propiedades de la alquilamina, se pueden seleccionar y usar disolventes apropiados para el reparto y la extracción.
Se verifica que el derivado de oligosacáridos según la presente invención ejerce el efecto de inhibir la adhesión de H. pylori como una especie bacteriana causante de la úlcera gástrica, y el efecto de tratar terapéuticamente la úlcera inducida por ácido acético.
Según la presente invención, el agente farmacéutico para prevenir y tratar terapéuticamente la úlcera gástrica se puede preparar en formas de dosificación farmacéuticas seleccionadas apropiadamente, que se pueden administrar en una cantidad seleccionada apropiadamente. Sin embargo, generalmente, el agente farmacéutico se mezcla con un vehículo farmacéuticamente aceptable en estado líquido o sólido, seguido de adición de disolventes, dispersantes, emulsionantes, tampones, estabilizantes, excipientes, aglutinantes, disgregantes, y lubricantes y similares, y la mezcla resultante se formula como comprimidos, gránulos, polvos, formulaciones en polvo, cápsulas y similares para uso. La dosis del agente farmacéutico oscila apropiadamente de alrededor de 0,1 a 10 mg/kg, preferiblemente de 0,3 a 3 mg/kg, para la mayoría de los adultos, por día.
Breve descripción de los dibujos
La Fig. 1 muestra un diagrama de RMN ^{13}C de derivado dodecilanilínico de oligofucosa (OFDAD);
La Fig. 2 muestra un diagrama de IR de derivado dodecilanilínico de oligofucosa (OFDAD); y
La Fig. 3 muestra un diagrama de flujo de los procedimientos para inducir úlcera con ácido acético.
Mejor modo para llevar a cabo la invención
Ejemplo 1
(Preparación de derivado de oligofucosa) (1-1) Extracción de fucoidano y preparación de oligosacárido de fucosa
Se suspendió Cladosiphon okamuranus Tokida desalada en agua desionizada, a una relación de 1 kg de las algas por un litro de agua desionizada. La suspensión se ajustó a pH 2 usando ácido clorhídrico. La suspensión resultante se calentó y se extrajo a 100ºC durante 10 minutos, para filtrar y recuperar las algas a través de una gasa; el filtrado se centrifugó a 9.000 rpm durante 60 minutos para desechar las materias insolubles.
El sobrenadante resultante se neutralizó usando NaOH, seguido de adición de metaperyodato de sodio hasta una concentración final de 0,2 M, para descomponer el ácido algínico contaminado, y la reacción subsiguiente en la oscuridad durante 20 horas; y entonces se añadió etilenglicol a la mezcla de reacción para terminar la reacción. Se añadió borohidruro de sodio a la disolución resultante hasta una concentración final de 0,2 M, para una reacción a temperatura ambiente durante 16 horas. La disolución se concentró mediante ultrafiltración (peso molecular de fraccionamiento de 5.000), y subsiguientemente se dializó. Usando ácido clorhídrico, la disolución del residuo de diálisis interna se ajustó a pH 2 y se trató con calefacción a 100ºC durante 10 minutos. La disolución resultante se dializó y se liofilizó para recuperar fucoidano (4 g/1 kg de algas húmedas).
El fucoidano se disolvió hasta una concentración final de 200 mg/ml, seguido de adición de ácido clorhídrico (o ácido trifluoroacético) hasta una concentración final de 0,075 a 0,1 M. La mezcla resultante se calentó a 100ºC durante 10 minutos, y entonces se enfrió hasta temperatura ambiente. La disolución se neutralizó con NaOH, seguido de adición de NaBH_{4} a una relación de 200 mg por un gramo de fucoidano, para reacción a 4ºC durante 20 horas. La disolución de la reacción se ajustó a pH 6 usando ácido acético, y se desaló mediante un aparato de electrodiálisis (Microacilyzer™ con una membrana AC220; fabricado por Asahi Chemicals, Co.). Tras desalar, se añadió NaIO_{4} a la disolución de la muestra hasta una concentración de 0,2 M para reacción en una vasija sumergida en un baño de hielo durante una hora. Se añadió a la disolución de la reacción etilenglicol en una cantidad correspondiente a 2 equivalentes de peryodato, para reacción subsiguiente en la vasija sumergida en el baño de hielo durante una hora. La disolución de la reacción se dializó a través de una membrana de diálisis con un peso molecular de fraccionamiento de 500 (fabricada por Spectrum Co.); la disolución del residuo de diálisis interna resultante se liofilizó para recuperar una muestra de oligosacárido (con un peso molecular medio de alrededor de 1.000 a 3.000, o un grado medio de polimerización de 8 a 14).
(1-2) Oxidación de oligosacárido de fucosa con ácido peryódico
Se añadió NaIO_{4} a 100 ml de una disolución al 2% de un oligosacárido de fucosa hasta una concentración final de 0,2 M, para reacción en la vasija sumergida en el baño de hielo durante una hora. Se añadió un volumen igual de etilenglicol a la disolución de la reacción, para reacción en la vasija sumergida en el baño de hielo durante una hora. La disolución de la reacción resultante se cargó en una columna de 500 ml empaquetada con carbón activo (carbón activo para cromatografía; fabricado por Wako Pure Chemicals, Co., Ltd.); y entonces, se eluyeron las materias no adsorbidas en 3 litros de agua. Se añadieron en la columna 3 litros de etanol al 35% para recuperar la fracción adsorbida. La fracción se concentró con un evaporador para recuperar un oligosacárido de forma aldehídica (con un rendimiento de alrededor de 25%).
(1-3) Reacción con aminas y reducción
Se disolvió el derivado aldehídico del oligosacárido según se ha producido anteriormente en (1-2) en n-propanol al 50% en agua hasta una relación final de 50 mg/ml, seguido de adición de dodecilanilina a una relación de 10 mg/ml, para reacción subsiguiente a 45ºC durante 2 horas; y se añadió después a la mezcla de reacción resultante un complejo de dimetilamina de Volan hasta una concentración final de 10 mg/ml durante 20 horas de reacción a 45ºC. La disolución de la reacción resultante se secó hasta un sólido a presión reducida. Tras añadir subsiguientemente al residuo sólido resultante una disolución de mezcla de cloroformo:metanol:agua = 2:1:1, se recogió la fase acuosa resultante, a la que se añadió un volumen igual de cloroformo para separación y enjuagado. El procedimiento se repitió dos veces. La fase acuosa resultante se liofilizó para recuperar el derivado dodecilanilínico de oligofucosa, OFDAD (con un rendimiento de alrededor de 64%). La estructura del derivado se determinó según la siguiente fórmula 1 en base a los resultados analíticos mediante análisis de metilación y RMN. Adicionalmente, los grupos hidroxilo en la posición 4 en los residuos de fucosa están parcialmente modificados como ésteres de sulfato. La Fig. 1 muestra un diagrama de RMN de ^{13}C de derivado dodecilanilínico de oligofucosa, OFDAD; y la Fig. 2 muestra un diagrama de IR de derivado dodecilanilínico de oligofucosa, OFDAD.
1
Se usaron alquilaminas tales como hexilanilina, anilina o laurilamina, en vez de dodecilanilina, para la reacción similar como en (1-3); la disolución de la reacción se separó de forma similar para recuperar derivados de oligofucosa tales como derivado hexilanilínico de oligofucosa (OFHAD) de la fórmula 2, derivado anilínico de oligofucosa (OFAN) de la fórmula 3, y derivado laurilamínico de oligofucosa (OF-LA) de la fórmula 4.
2
\newpage
Ejemplo 2
(Preparación de derivado de oligoramnosa) (2-1) Preparación de oligosacárido de ramnosa
Se suspendió en agua algas secas de lechuga brillante (Monostroma nitidum) de un volumen de 10 veces, y se calentó a 100ºC durante 2 horas para sumergir el sulfato de ramnano. La disolución resultante se centrifugó para desechar las materias sólidas, seguido de adición de etanol para precipitar y recoger polisacáridos, que entonces se disolvieron en agua; la disolución resultante se sometió a diálisis para eliminar componentes de bajo peso molecular; el sulfato de ramnano se recuperó en la disolución del residuo de diálisis interna resultante. Subsiguientemente, se añadió ácido clorhídrico a la disolución de residuo de diálisis interna que contiene sulfato de ramnano hasta una concentración final de 0,01 N, y la mezcla resultante se calentó a 100ºC para inducir la desulfuración. Después, la disolución resultante se dializó nuevamente para recuperar ramnano en la disolución del residuo de diálisis interna.
De la misma manera que para fucoidano descrito anteriormente, el ramnano se sometió a descomposición con ácidos débiles, reducción, y oxidación con peryodato, para recuperar un derivado de oligosacárido en forma de aldehído (con un peso molecular medio de alrededor de 1.000 a 1.500).
(2-2) Reacción con derivado de amina
La fracción se conjugó con dodecilanilina de la misma manera como se describe anteriormente, para recuperar un derivado dodecilanilínico de oligoramnosa (OR- DA) de la fórmula 5 (con un rendimiento de alrededor de 10%).
3
Se produjeron derivados distintos de los de las fórmulas 1 a 5, según se produjeron anteriormente en los Ejemplos 1 y 2, mediante el procedimiento anteriormente mencionado, según se enumera en las siguientes fórmulas 6 a 10.
4
5
Ejemplo 3
(Ensayo 1 de acción contra la úlcera)
Se analizó la acción de la dodecilanilina de oligofucosa, recuperada en el Ejemplo 1, contra la úlcera, para úlcera inducida por acetato. La Fig. 3 muestra un diagrama de flujo de los procedimientos para inducir úlcera con ácido acético. Los experimentos y la determinación de la eficacia se llevaron a cabo según se muestra en la Fig. 3. Se inyectaron directamente 30 \mul de ácido acético al 20% en los estómagos de ratas SD de 8 semanas en el día 1; en los días 2 a 9 se administró oralmente 1 ml de la disolución de muestra una vez por día a estas ratas. Durante la duración del ensayo se dio alimento y agua a voluntad.
Tras la dosis final, se dejó morir de hambre a estas ratas; y se les resecó los estómagos, que se fijaron en formalina. El índice de la úlcera se determinó midiendo el diámetro corto y el diámetro largo de cada lesión ulcerosa para examinar la relación de curación. Cuando se observó un efecto a un nivel de 5% de significancia o menos (p \leqq 0,05), comparado con un grupo de control, se determinó que el efecto era significativo. En este documento, la relación de curación, en %, se determinó según lo siguiente:
\text{relación de curación (%)} = 1 - \frac{\text{área de úlcera en un grupo de ensayo}}{\text{área de úlcera en grupo de control}} x 100
Los resultados se muestran a continuación en la Tabla 1.
TABLA 1
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|c|}\hline
  \+ Índice de la úlcera  \+ Relación de \\   \+ (media  \pm  SD) 
\+ curación (%) \\\hline  Grupo de control (11)  \+ 11,3  \pm  2,6 
\+ ---- \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 6,2  \pm  1,5 ^{*}   \+ 45,0
\\  0,1 mg/rata/día x 8 (10) \+ \+ \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 8,2
 \pm  4,7 ^{*}   \+ 27,8 \\  0,5 mg/rata/día x 8 (10) \+ \+ \\\hline
 Grupo de ensayo  \+ 6,7  \pm  2,9 ^{*}   \+ 41,4 \\  1,0
mg/rata/día x 8 (10) \+ \+
\\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
^{*}) p\leqq 0,05 comparada con el grupo de control.
Ejemplo 4
(Ensayo 2 de acción contra la úlcera)
Se realizó el ensayo similar de la acción contra la úlcera usando los derivados alquilamínicos de oligofucosa recuperados en el Ejemplo 1, en lugar de la disolución de ensayo anterior. Más específicamente, se usaron el derivado hexilanilínico de oligofucosa y el derivado laurilamínico de oligofucosa como las disoluciones de muestra, para los mismos procedimientos como en el Ejemplo 3, para examinar los efectos de la hexilanilina de oligofucosa y la laurilamina de oligofucosa contra la úlcera inducida por acetato.
Los resultados se muestran a continuación en las Tablas 2 y 3.
TABLA 2
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|c|}\hline
  \+ Índice de la úlcera  \+ Relación de \\   \+ (media  \pm  SD) 
\+ curación (%) \\\hline  Grupo de control (10)  \+ 11,6  \pm  4,3 
\+ ---- \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 7,5  \pm  2,8 ^{*}   \+ 35,5
\\  0,1 mg/rata/día x 8 (10) \+ \+ \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 8,4
 \pm  3,8 ^{*}   \+ 27,5 \\  0,3 mg/rata/día x 8 (10) \+ \+ \\\hline
 Grupo de ensayo  \+ 7,8  \pm  2,8 ^{*}   \+ 33,5 \\  1,0
mg/rata/día x 8 (10) \+ \+
\\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
^{*}) p \leqq 0,05 comparada con el grupo de control.
TABLA 3
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|c|c|c|}\hline
  \+ Índice de la úlcera  \+ Relación de \\   \+ (media  \pm  SD) 
\+ curación (%) \\\hline  Grupo de control  \+ 10,3  \pm  3,8  \+
---- \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 5,1  \pm  2,1 ^{*}   \+ 50,4 \\ 
0,5 mg/rata/día x 8 (7) \+ \+ \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 7,2
 \pm  3,6 ^{*}   \+ 30,3 \\  2,0 mg/rata/día x 8 (10) \+ \+ \\\hline
 Grupo de ensayo  \+ 9,9  \pm  4,8 ^{*}   \+ 4,6 \\  5,0 mg/rata/día
x 8 (10) \+ \+
\\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
^{*}) p \leqq 0,05 comparada con el grupo de control.
Ejemplo 5
(Ensayo 3 de acción contra la úlcera)
Para examinar el efecto del derivado dodecilanilínico de oligofucosa previniendo la úlcera inducida por NSAIDS y similares, se examinó su acción para analizar el efecto en la prevención de trastornos inducidos por indometacina.
En cuanto a sus procedimientos específicos, la dodecilanilina de oligofucosa disuelta en 1 ml de una disolución al 0,5% de carboximetilcelulosa se administró oralmente a ratas que fueron sometidas a ayuno durante 18 horas (alimento) y 2 horas (agua). Al grupo de control sólo se le administró la disolución de carboximetilcelulosa. Después de 2 horas de la dosificación de la muestra, se administró a estas ratas 1 ml de 50 mg/ml de indometacina, para inducir daños en la mucosa gástrica. Después de 2 horas de la inducción del daño, se resecaron los estómagos de estas ratas, que se fijaron en formalina, para medir la longitud y anchura de una lesión con daño (lesión hemorrágica), y determinar el área, calculando de ese modo la relación de supresión de la aparición del daño. De este modo, se evaluó el efecto de la dodecilanilina de oligofucosa para prevenir el daño gástrico inducido por indometacina. Los resultados se muestran a continuación en la Tabla 4.
TABLA 4
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|c|}\hline
  \+ Índice de la úlcera  \+ Relación de \\   \+ (media  \pm  SD) 
\+ sanación (%) \\\hline  Grupo de control  \+ 46,06  \pm  24,72  \+
---- \\\hline  Grupo de ensayo  \+ 25,33  \pm  14,57 ^{*}   \+ 45,0
\\  0,5 mg/rata/día x 8 (7) \+ \+ \\\hline  Grupo de ensayo  \+
19,23  \pm  14,67 ^{*}   \+ 58,2 \\  2,0 mg/rata/día x 8 (10) \+ \+
\\\hline  Grupo de ensayo  \+ 4,29  \pm  4,48 ^{*}   \+ 90,7 \\  5,0
mg/rata/día x 8 (10) \+ \+
\\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
^{*}) p \leqq 0,05 comparada con el grupo de control.
Ejemplo 6
(Examen de los efectos para inhibir la adhesión de H. Pylori, y para inhibir la proliferación)
La H. pylori ha estado atrayendo la atención en años recientes como una especie bacteriana causante de úlcera gástrica. Se sugiere que debido a que la frecuencia de la recidiva de úlcera gástrica es alta en pacientes infectados con la especie bacteriana pero baja en los pacientes tratados en un procedimiento desinfectante de la especie bacteriana usando dosis elevadas de antibióticos, la desinfección de la especie bacteriana o la profilaxis de la infección con la especie bacteriana es significativamente importante en términos de la prevención de la recidiva de la úlcera gástrica. En un sentido práctico, las pautas terapéuticas de la úlcera en países europeos y en los Estados Unidos de América enumeran la desinfección de la especie bacteriana; en Japón, también se demandará un efecto sobre la especie bacteriana de un agente terapéutico contra la úlcera a partir de ahora, debido a que la relación de la infección con la especie bacteriana aumenta con el transcurso del envejecimiento.
La especie bacteriana se puede desinfectar de forma efectiva mediante el tratamiento terapéutico con una dosis elevada de antibióticos e inhibidores de la bomba de protones, en combinación, pero se considera que se desarrolla esencialmente otro tratamiento terapéutico desde el punto de vista de la aparición de bacterias resistentes. En cuanto al mecanismo de la infección con la especie bacteriana, ésta se transfiere desde la capa de la mucosa gástrica vía el movimiento de flagelos a las células epidérmicas gástricas, en las que la bacteria reconoce específicamente y se adhiere al residuo de fucosa de las cadenas de azúcares tipo Louise b (Leb) en las células epidérmicas gástricas. Un informe advierte que el ácido siálico, la sulfatida y laminina están implicados en la adhesión de la bacteria, pero se considera que la fucosa funciona como un sitio de reconocimiento significativo para la adhesión específica sobre las células epidérmicas gástricas.
Se indica que el fucoidano derivado de Phaeophyceae Chordariales nemacystus no sólo ejerce los efectos contra la úlcera sino también inhibe el proceso de la adhesión. Debido a que se predijo que el derivado alquilamínico del oligosacárido podía servir para la prevención de la infección de H. pylori y de la recidiva de la úlcera gástrica, además de para la promoción de la curación de la úlcera, si el derivado alquilamínico de oligosacárido pudiera inhibir la adhesión de H. pylori, se examinó el efecto del mismo sobre la inhibición de la adhesión. Adicionalmente, también se examinó el efecto del mismo sobre la inhibición de la proliferación.
En cuanto a los procedimientos específicos, se oxidó con peryodato el extremo reductor de una cadena de azúcar tipo Leb, para preparar un oligosacárido con el extremo oxidativo resultante según el método de P. W. Tang, et al. (Biochem. Biophys. Res. Commun., Vol. 132, 1985, p. 474-480). El oligosacárido se conjugó con diaminohexano y se fijó subsiguientemente en una microplaca (Covalink Plate™; fabricada por NUNC Co.) para uso en la fijación de grupos amino. Se colocó en la placa H. pylori marcada con biotina, para reacción a temperatura ambiente durante una hora. Entonces, se dejó que el derivado dodecilanilínico de oligofucosa estuviera presente de forma apropiada concomitantemente. La disolución de la reacción se enjuagó en un tampón para eliminar las bacterias que nunca se adhieren.
Subsiguientemente, se añadió a cada pocillo 100 \mul de una disolución de estreptoavidina de 50 \mug/ml, para reacción a temperatura ambiente durante una hora, con lo que la estreptoavidina se unió selectivamente a las bacterias que permanecían en los pocillos. El exceso de estreptoavidina se eliminó por aclarado. Entonces se añadió a cada pocillo 100 \mul de una disolución de 2,5 \mug/ml de biotina marcada con peroxidasa. Tras la reacción a temperatura ambiente durante 30 minutos, se eliminó el exceso de la biotina marcada con la enzima. Mediante el procedimiento, la biotina marcada con la enzima se unió selectivamente a la bacteria biotinilada. Se detectó y se analizó la actividad de la enzima, añadiendo 100 \mul de una disolución sustrato (sistema de sustrato de peroxidasa ABTS; fabricado por KPL Co.) durante 10 minutos de reacción. El ensayo se realizó midiendo la absorbancia a una longitud de onda de 405 nm. Debido a que la absorbancia medida indica la cantidad de la bacteria que reconoce y se une a la cadena de azúcar de tipo Leb, la relación de la disminución de la absorbancia debido a la adición de dodecilanilina de oligofucosa indica la relación de la inhibición de la adhesión.
En la co-presencia del derivado dodecilanilínico de oligofucosa en un intervalo de 10 a 100 \mug/ml, el incremento del derivado dodecilanilínico de oligofucosa añadido disminuye la absorbancia, según se muestra a continuación en la Tabla 5, que da los resultados de la actividad de inhibición del derivado dodecilanilínico de oligofucosa sobre la adhesión de H. pylori a la cadena de azúcar de tipo Leb. De este modo, se indica que la unión entre H. pylori y la cadena de azúcar de tipo Leb está inhibida por el derivado dodecilanilínico de oligofucosa.
TABLA 5
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|c|c|}\hline
 Concentración de la muestra ( \mu g/ml)  \+ Absorbancia (a 405 nm)
\\\hline  0  \+ 1,015 \\  10  \+ 0,855 \\  100  \+ 0,486 \\  1000 
\+ 0,080
\\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
Subsiguientemente, se examinó el efecto de dodecilanilina de oligofucosa sobre la inhibición de la proliferación de H. pylori. Una cepa de aislado clínico de H. pylori6-34 (1,5 x 10^{8} CFU/ml), cultivada en un medio de cultivo de brucela que contiene \beta-ciclodextrina al 0,1%, se suspendió hasta un volumen de 100 \mul en 1 ml del mismo medio de cultivo, seguido de adición de 10 \mul de la disolución de muestra (dodecilanilina de oligofucosa), para cultivo durante 72 horas. El efecto se juzgó según lo siguiente: basándose en la turbidez (densidad óptica, OD 600 nm) de la disolución de muestra con respecto a la turbidez del grupo de control, se determinó mediante la siguiente fórmula la relación de la inhibición de la proliferación. En consecuencia, la relación de la inhibición de la proliferación fue 71,8%.
\text{Relación de inhibición de la proliferación (%)} = 1 - \frac{\text{turbidez de la disolución de muestra}}{\text{turbidez de grupo de control}} x 100
Como se ha descrito anteriormente, según la presente invención, se proporciona un agente farmacéutico que tiene una acción para promover la curación de la úlcera y una acción para inhibir la adhesión de H. pylori, y que es efectivo para la profilaxis y tratamiento terapéutico de la inflamación de la mucosa gástrica que progresa potencialmente a úlcera o cáncer. Una dosis muy baja de la sustancia anteriormente mencionada ejerce un efecto de curación de la úlcera gástrica, y un efecto de prevención del daño a la mucosa; y adicionalmente, la sustancia se puede preparar fácilmente como un oligosacárido más homogéneo que los polisacáridos en términos de propiedades fisicoquímicas y de actividad. Por tanto, la sustancia se puede usar fácilmente como un agente farmacéutico.

Claims (4)

1. Derivado de oligosacáridos seleccionado de entre el grupo que consta de las siguientes fórmulas:
6
7
en las que ``n'' = 2 a 20.
2. Procedimiento para la preparación de un derivado de oligosacáridos según la reivindicación 1, en el que dicho procedimiento comprende las etapas siguientes:
convertir el residuo de azúcar en el extremo reductor de oligofucosa u oligoramnosa a un grupo aldehído mediante degradación oxidativa;
generar una base de Schiff permitiendo que el grupo aldehído reaccione con al menos una de las alquilaminas y alilaminas correspondientes; y
reducir la base de Schiff para obtener un derivado de oligosacáridos.
3. Inhibidor para Helicobacter pylori, que contiene un derivado de oligosacáridos según la reivindicación 1.
4. Agente profiláctico o agente para el tratamiento terapéutico de la úlcera gástrica, que contiene un derivado de oligosacáridos según la reivindicación 1.
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