ES2198151T3 - Hongo mucorales para emplear en la preparacion de productos alimenticios. - Google Patents
Hongo mucorales para emplear en la preparacion de productos alimenticios.Info
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Abstract
Un procedimiento para la preparación de una sustancia proteínica comestible, apropiada para su utilización en un producto alimenticio, que comprende células fúngicas, comprendiendo dicho procedimiento: a. fermentar células fúngicas del orden Mucorales en un líquido acuoso contenido en un recipiente fermentador, comprendiendo el líquido una fuente de nitrógeno (N) asimilable y un fuente de carbono (C) asimilable, y mezclar el líquido y las células durante la fermentación; b. reducir el contenido de RNA de las células fúngicas por debajo de 4, 0% en peso (%p); c. antes o después de (b), retirar al menos parte del agua de la mezcla de células fúngicas y líquido acuoso, y d. procesar las células fúngicas para obtener una sustancia comestible.
Description
Hongo Mucorales para emplear en la
preparación de productos alimenticios.
El presente invento se refiere a la preparación
de sustancias comestibles (proteínicas) utilizando células fúngicas
del orden Mucorales y a la utilización de estas sustancias
en productos alimenticios, en particular en sustitutivos de
carne.
La carne animal se considera una parte importante
de la dieta de los humanos, no sólo debido a las vitaminas y
nutrientes que proporciona, sino también debido a su sabor
(particularmente al cocinarla) y, de forma importante, a su
textura. Sin embargo, un creciente número de personas están optando
por dietas vegetarianas/vegetarianas estrictas, en ninguna de las
cuales se incluye la carne o los productos derivados de la carne.
Dichas dietas pueden deberse a un número de factores, pero
normalmente se deben a falta de gusto por la carne (bien por su
textura o por su sabor) o a consideraciones éticas o morales (por
ejemplo, la opinión de que resulta un error matar animales para
alimentar humanos).
El desplazamiento hacia dietas
vegetarianas/vegetarianas estrictas se ha incrementado en los
últimos años debido a la aparición de la BSE (Encefalopatía
Espongiforme Bovina), también conocida como ``enfermedad de las
vacas locas'', un enfermedad que afecta al sistema nervioso de las
vacas y que se piensa que es el resultado de alimentar al ganado
con partes de oveja infectadas con una enfermedad similar conocida
como ``encefalopatía espongiforme ovina''. La BSE se ha relacionado
con una condición de los humanos conocida como CJD (enfermedad de
Creutzfeldt-Jacob).
Aparte de determinados hongos comestibles (por
ejemplo champiñones), se conocen alimentos proteínicos que
contienen hongos. Un ejemplo es la comida fermentada tradicional de
Indonesia, tempeh. Normalmente, se prepara por fermentación del
hongo Rhizopus sobre semillas de soja (y sus partes) que
actúan como sustrato sólido húmedo. Las semillas (u otro sustrato
vegetal) se inoculan con el hongo y se dejan fermentar durante 24 a
36 horas. Las semillas se unen por medio de la proteína fúngica del
micelio producida, para obtener un producto firme que a
continuación puede cortarse en láminas antes de comerlo
(normalmente no se lleva a cabo ningún otro procesado adicional
antes del consumo). De este modo, los hongos se utilizan para
hidrolizar un sustrato de lo contrario no comestible y, aparte de
perder de manera inherente mucho sabor o aroma, el tempeh es
relativamente seco y carece de la textura fibrosa y jugosa asociada
a la carne. Los hongos representan sólo una pequeña cantidad del
producto y por ello el contenido de la proteína fúngica es bajo. Por
ello no es un sustituto de la carne no resulta particularmente
apetecible, al menos para los occidentales.
En los últimos años se ha propuesto un número de
sustitutivos comestibles de la carne. Las compañías americanas y
japonesas comercializan productos basados en la soja, en particular
la soja sometida a extrusión, pero éstos no tienen un sabor o una
textura particularmente similar a la de la carne, de hecho tanto la
soja como el gluten pueden tener un sabor ``a caducado'' o
astringente.
Los documentos
GB-A-2007077 y US 4265915
(Maclennan/BioEnterprises) proponen un proceso similar a la
preparación del tempeh, salvo que en vez de semillas de soja el
sustrato sólido es un alimento que contiene almidón tal como sagú,
cereales o patatas. No obstante, un prerrequisito de estos productos
alimenticios (y el tempeh) es que los alimentos sólidos o
ingredientes son necesarios como sustrato para los microorganismos
de la fermentación. El documento US 3.885.048 (Liggett) también se
refiere a un producto alimenticio fermentado que se prepara
utilizando un sustrato a base de almidón sólido.
Más recientemente, los trabajadores han propuesto
la producción de sustancias que contienen proteínas comestibles
utilizando la proteína del micelio producida por el hongo
Fusarium graminearum. Estas sustancias se han utilizado de
manera creciente como sustitutivas de la carne, y se incluyen en
los productos alimenticios comercializados en el Reino Unido y otros
países europeos. El documento WO 97/36996
(Gist-Brocades B.V.) se refiere a gránulos de
biomasa microbiana seca, a partir de los cuales pueden extraerse
compuestos interesantes tales como ácidos grasos
poli-insaturados.
De acuerdo con un primer aspecto del invento, se
proporciona un proceso para la preparación de una sustancia
comestible (por ejemplo proteínica), apropiada para su uso en un
producto alimenticio que comprende células fúngicas, que
comprende:
- a.
- fermentar células fúngicas del orden Mucorales en un líquido acuoso contenido en un recipiente de fermentación, comprendiendo el líquido una fuente nitrógeno asimilable (N) y una fuente de carbono asimilable (C), y mezclar (y preferiblemente airear) el líquido y las células durante la fermentación;
- b.
- reducir el contenido de RNA de las células fúngicas por debajo de 4,0% en peso (% en peso);
- c.
- antes o después de (b), retirar al menos parte del agua de la mezcla de células fúngicas y líquido acuoso; y
- d.
- procesar las células fúngicas para obtener una sustancia comestible.
Mediante la utilización de hongos
Mucorales (no tóxicos) (por ejemplo los utilizados en los
productos alimenticios fermentados asiáticos) resulta posible
evitar cualquier micotoxina que puedan producir otros organismos
(por ejemplo la técnica anterior). De esta forma, puede reducirse o
evitarse la identificación sistemática de organismos que sean
seguros desde el punto de vista de su inclusión en los productos
alimenticios. Esto significa que los productos preparados por el
invento son más adecuados para la ingestión o para su utilización
en productos alimenticios. En general, los organismos
Mucorales no producen micotoxinas (o lo hacen en cantidades
insignificantes o no detectables), aspecto claramente ventajoso,
dado que estos organismos se incorporan a los productos
alimenticios, lo que puede significar que las técnicas de procesado
pueden ser más eficaces ya que no es necesario eliminar las
micotoxinas. Esto puede solucionar el problema que se presenta con
los organismos Fusarium que pueden producir micotoxinas no
deseadas (Desjardins et al, Microbiological Reviews,
57(3): 595-604, Septiembre de 1993).
Las micotoxinas que aquí se anticipan son las de
tipo aflatoxina, mevinolina, terreina y tricotecenos (éstos últimos
producidos por algunas especies Fusarium). Resulta
improbable que se permita el empleo de un hongo que produzca
cualquiera de estas micotoxinas en la producción de alimentos,
incluso en el caso de que el fabricante lleve a cabo etapas para
eliminar las micotoxinas. Por tanto, es particularmente importante
escoger hongos que no produzcan estas micotoxinas en ninguna etapa
del proceso.
Una ventaja de la utilización de hongos
Mucorales es existe una variedad relativamente amplia de
microorganismos disponibles, dependiendo de las características de
la sustancia proteínica que se deseen. Esto puede permitir
diferentes características físicas (tales como naturaleza fibrosa, o
sensación en la boca) o características químicas (sabor, etc). Se
ha comprobado que los hongos utilizados en el presente invento
confieren propiedades similares a las de la carne mejoradas, por
ejemplo una textura más fibrosa y/o jugosa. Asimismo, estos hongos
pueden variar en cuanto a textura y jugosidad y por tanto pueden
ser utilizados en una amplia gama de productos alimenticios. Por
tanto, escogiendo el microorganismo, es posible proporcionar
distintas características deseadas de acuerdo con el producto
alimenticio a preparar (empleando diferentes técnicas de
procesado). Además, diferentes microorganismos pueden conferir
diferentes colores, y ya que resulta posible preparar una sustancia
de color blanco, también se pueden preparar sustancias que tengan
distintos colores, tales como del amarillo al marrón o incluso de
aspecto verde, lo que puede resultar deseable para determinados
productos alimenticios.
Los hongos pueden ser de la familia
Choanephoracea, tal como los del género Blakeslea o
Gilbertella, por ejemplo de las especies Blakeslea
trispora o Gilbertella persicaria. Las otras tres
familias incluidas en el orden Mucorales son
Cunninghamellaceae, Mortierellaceae (tal como los hongos del
género Mortierella, y en particular las especies de
Mortierella alpina) y, especialmente, Mucoraceae.
Normalmente, los hongos apropiados son comestibles (y digeribles)
por los humanos o animales.
Hongos preferidos son los saprofíticos (esto es,
hongos simples) en vez de los parasíticos (que son mas complejos).
Normalmente, se prefieren los hongos ``simples'' porque están mejor
adaptados hacia un crecimiento en forma de hifas, mientras que los
organismos parasíticos se concentran en tomar nutrientes
procedentes de sus organismos anfitriones.
Preferiblemente, las células fúngicas son del
género Rhizopus, Rhizomucor, Mucor o Mortierella
perteneciendo todas ellas a la familia Mucoraceae. Hongos
apropiados del género Rhizopus, Mucor o Rhizomucor
incluyen Rhizopus stolonifer, Rhizopus miehei, Rhizopus
pusillus, Rhizopus oligosporus y, en particular, Rhizopus
oryzae, Mucor biemalis y Mucor rouxii; y Rhizomucor
meihei. Otras cepas celulares preferidas incluyen las del
género Absidia o Phycomyces, tales como Absidia
psedocylindrospora o Phyzcomyces blakesleeanus.
Los hongos preferidos pueden tener una pared
celular que comprende, o contiene fundamentalmente, quitina y
chitosàn. Las paredes celulares pueden contener uno o más de las
azúcares glucosamina (tales como D-glucosamina) y/o
fucosa, tales como L-fucosa, y pueden estar
considerablemente libres de galactosa.
Preferiblemente, los hongos utilizados en el
presente invento no tienen tabique, a diferencia de los del grupo
Fusarium. Además, los hongos preferidos para su utilización
en el invento tienen ramificación, de nuevo a diferencia de los
organismos Fusarium que presentan escasa o nula ramificación
(en la hifa). De hecho, la técnica implica la utilización de
mutantes sin ramificación
(EP-A-0.123.434). La hifa de los
hongos utilizados en el invento puede tener un diámetro de 1 a 20
\mum, tal como de 2 a 10 \mum, y de forma óptima de 2 a 8
\mum.
El hongo puede ser de origen natural, puede haber
sido escogido utilizando técnicas conocidas para la lograr
determinadas propiedades deseadas, o puede ser el resultado de
ingeniería genética.
Generalmente se emplearán hongos del orden
Mucorales, son también del grupo perfecti (en otras
palabras, no pertenecen a la clase imperfecti), que son
capaces de reproducirse sexualmente. Los hongos utilizados en el
invento también pueden ser filamentosos.
Como se apreciará, el proceso del primer aspecto
es una fermentación líquida, en otras palabras el líquido acuoso
(por ejemplo una disolución) sirve como medio de cultivo. Esto
contrasta con los procesos de la técnica anterior en los que los
hongos se cultivan sobre un sustrato sólido, siendo dicho sustrato,
por ejemplo, arroz, semilla de soja o productos que contienen
almidón tales como cereales o patatas. En el invento, el proceso de
fermentación líquida de (a) se lleva a cabo preferiblemente en
ausencia de un sustrato sólido, tal como el que es en sí mismo un
producto alimenticio (esto incluye no sólo material vegetal o
leguminosas sino también carne y almidón sólido natural o sustancias
que contienen hidratos de carbono tales como cereales, semillas de
soja, semillas de sésamo o harina).
De esta forma, un segundo aspecto del presente
invento se refiere a una sustancia comestible (por ejemplo
proteínica), apropiada para su uso en un producto alimenticio, que
comprende células fúngicas del orden Mucorales que tienen un
contenido de RNA inferior a 4,0% en peso. Esta sustancia puede
prepararse mediante un proceso del primer aspecto. Puede ser biomasa
o torta de filtración, o dicha biomasa o torta de filtración que
haya sido molida o volteada.
Un tercer aspecto del presente invento se refiere
a un proceso para la preparación de un producto comestible (con
textura) que comprende añadir uno o más componentes comestibles a
una sustancia comestible proteínica que comprende células fúngicas
del orden Mucorales que tienen un contenido de RNA inferior
a 4.0% en peso y (si es necesario) conferir textura a la mezcla.
Un tercer aspecto también incluye un proceso para
la preparación de un producto comestible (con textura) que
comprende mezclar no o más componente(s) comestibles con una
sustancia comestible proteínica que comprende células fúngicas del
orden Mucorales que tienen un contenido de RNA inferior a
4.0% en peso y conferir textura para formar un producto, en el cual
al menos el 5% son células fúngicas en una base en peso de materia
seca.
Preferiblemente, las células fúngicas permanecen
sanas (o la totalidad) no sólo durante el proceso de fermentación,
sino también durante las etapas posteriores del procesado,
incluyendo la eliminación de agua, la reducción del contenido de
RNA y cualquier proceso para conferir textura. De esta forma, la
sustancia (o producto con textura) contendrá células fúngicas sanas
(y no muertas), y durante la mayoría, si no todas, de las etapas de
preparación de la sustancia o del producto, se llevarán a cabo
etapas para minimizar el daño y la lisis de las células o de las
membranas celulares. No obstante, durante el procesado algunos
compuestos pueden abandonar la célula (de forma que la membrana
celular puede sufrir ciertas ``fugas''). Por supuesto, se pretende
que el proceso del invento implique la eliminación de parte del RNA
(y si es necesario también el agua) de las células fúngicas.
La sustancia (y con ello también el producto con
textura) contiene la proteína fúngica producida por las células
fúngicas. Normalmente, esta proteína es intracelular y/o se
encuentra dentro de la membrana celular. Pueden estar presentes
proteínas extracelulares, pero éstas se eliminan a menudo durante el
procesado (por ejemplo la eliminación de agua, dado que la proteína
extracelular puede estar presente en el líquido acuoso). De esta
forma, la sustancia proteínica, por ejemplo la biomasa, puede ser
una que se prepare mediante el proceso del primer aspecto.
Preferiblemente, la sustancia proteínica tiene al
menos 40%, por ejemplo al menos 50% o incluso 60% o más de células
fúngicas. No obstante, estas cantidades pueden ser mucho mayores y
las células pueden constituir al menos 70%, tal como al menos 80%,
y de forma óptima al menos 90% ó 95% de la sustancia proteínica (en
peso de materia seca). Con un contenido tan elevado del células
fúngicas es posible obtener una sustancia (y, posteriormente un
producto con textura) que sea más jugosa, fibrosa y de mejor sabor.
Incluso después del proceso para conferir textura, el producto
comestible resultante (por ejemplo, con textura) puede tener un
contenido de células fúngicas igual al citado para la sustancia
proteínica. Estos porcentajes se basan en el peso de las células en
la materia seca, en otras palabras primero se seca la sustancia o
producto y, sobre la base de la materia seca obtenida, se calcula
el porcentaje (en peso) de esa materia que representan las células
fúngicas.
Por tanto, la sustancia puede consistir
esencialmente sólo de células fúngicas (que pueden incluir la
proteína producida por (por ejemplo en el interior) esas células).
Durante la fermentación, por tanto, normalmente no habrá extracción
o aislamiento de ningún compuesto(s) o sustancia(s) en
particular bien contenidas en o bien producidas por los hongos como
las células fúngicas. De hecho, en los procesos del invento, es
preferible que el RNA (o cualquiera de sus productos de degradación
o compuestos no deseados durante el procesado) sea el único
compuesto(s) que se retire de las células. La proteína
extracelular puede retirarse por lavado de las células y de esta
forma puede no estar presente.
La sustancia proteínica del tercer aspecto y el
producto con textura del cuarto aspecto son comestibles en el
sentido de que pueden incluirse en un producto alimenticio o de que
son compatibles con la utilización en alimentos. Aunque la
sustancia proteínica puede comerse como tal, la intención es que
ésta es, de hecho, un intermedio en la preparación del producto con
textura.
La sustancia proteínica puede tener, como único
material comestible, las células fúngicas y por tanto puede no
estar presente, aparte de en las células fúngicas, en las
sustancias comestibles. No obstante, a continuación distintos
componentes comestibles pueden mezclarse con o añadirse a la
sustancia proteínica del tercer aspecto para producir el producto
con textura del cuarto aspecto. En la preparación del producto
alimenticio, puede añadirse un componente(s)
adicional(es) al producto con textura.
De esta forma, un cuarto aspecto del presente
invento es el producto con textura. Este resulta adecuado para su
inclusión en un producto alimenticio (puede ser comestible, y
digerible de forma adecuada, bien por humanos o por animales) y
puede comprender células del orden Mucorales que bien tengan
un contenido de RNA inferior a 4,0% en peso o en las que al menos
el 40% del producto (en peso de materia seca) sean células
fúngicas. El porcentaje de células fúngicas (en peso de materia
seca) puede ser el mismo que el mencionado anteriormente para la
sustancia proteínica (del segundo aspecto). No obstante, dado que
el producto del cuarto aspecto puede prepararse añadiendo un
componente(s) comestible(s) a la sustancia proteínica
del segundo aspecto, debe notarse que el contenido de células
fúngicas del primero normalmente es menor que el del segundo. El
producto con textura puede comprender pellets, gránulos o láminas,
y puede prepararse mediante un proceso que implique la extrusión (y
por tanto puede ser un producto extruido), puede comprender una
masa, una pasta o trozo similar a la carne, o puede tener forma
cilíndrica (tal como enrollar la sustancia si está en forma de
lámina).
Un quinto aspecto del presente invento se refiere
a un proceso para la preparación del producto alimenticio, que
comprende formar un producto alimenticio con, o incluyéndolo en un
producto alimenticio ya existente, una sustancia comestible de
acuerdo con el segundo aspecto (por ejemplo preparada mediante un
proceso del primer aspecto) o un producto con textura del cuarto
aspecto (tal como el preparado mediante un proceso del tercer
aspecto). Esto puede suponer añadir uno o más componentes
comestibles adicionales bien a ala sustancia o bien al producto, o
puede comprender un proceso posterior para conferir textura. Por
tanto, este proceso incluye no sólo la preparación de un producto
alimenticio utilizando bien la sustancia o el producto, sino que
también supone la complementar un producto alimenticio bien con la
sustancia o bien con el producto.
De esta forma, el producto alimenticio
proporciona un sexto aspecto del presente invento. Esto puede
comprender bien la sustancia del segundo aspecto o el producto del
cuarto aspecto. El producto alimenticio se prepara mediante un
proceso del quinto aspecto.
El producto alimenticio puede ser salchichas,
empanada, hamburguesa, productos para untar, piensos o puede
incluir composiciones farmacéuticas comestibles tales como
comprimidos.
Preferiblemente, el producto alimenticio
comprende al menos 5%, por ejemplo al menos 8 ó 10%, y de forma
óptima 15 ó 20% de células fúngicas (en peso de materia seca). El
contenido fúngico puede ser tan elevado como el descrito para el
producto con textura, pero dado que el producto alimenticio puede
estar preparado a partir de ese producto el contenido fúngico puede
ser menor, por ejemplo las células fúngicas pueden únicamente
constituir al menos el 25 ó 30% del producto alimenticio (de nuevo,
basado en cálculo en peso de materia seca).
El proceso de fermentación del primer aspecto se
lleva a cabo de forma adecuada en un recipiente de fermentación
adaptado para contener el líquido acuoso, tal como una cuba, y este
recipiente puede estar presurizado. También puede estar adaptado
para permitir el aporte continuo o continuado de las fuentes de
carbono y/o nitrógeno asimilable. Por tanto, preferiblemente la
etapa (a) y las etapas posteriores se llevan a cabo de forma
aséptica. Aunque la fermentación puede ser un proceso continuo, con
retirada o recogida regular de las células fúngicas (y de la
proteína que las acompaña), el proceso puede ser un proceso por
tandas si se desea, tal como un proceso por tandas de alimentación
repetida (una o más adiciones de C y/o fuentes después de que la
fermentación haya comenzado). De esta forma, el proceso de
fermentación puede pararse o detenerse, y pueden retirarse las
células fúngicas del recipiente, antes de que comience otra
fermentación o una fermentación fresca.
De manera adicional, el recipiente puede estar
adaptado para llevar a cabo, o permitir que se lleve a cabo, la
aireación y/o mezcla de las células y el líquido, tal como la
agitación de la disolución que puede lograrse por medios
mecánicos.
Las fuentes de carbono y nitrógeno pueden
proporcionarse en composiciones separadas. Esto es debido a que las
diferentes fuentes pueden estar sujetas a diferentes condiciones de
esterilización, y además de esta forma se permite una variación en
las cantidades relativas de carbono y nitrógeno durante la
fermentación.
Las fuentes de carbono y/o nitrógeno pueden
aportarse (o añadirse) por separado, o aportarse de forma
simultánea, a aportarse en forma de preparación combinada. De esta
forma, pueden estar presentes en la misma composición (si se
estimase necesario) que es preferiblemente un líquido. Las fuentes
de C y/o N pueden añadirse (al recipiente de fermentación) bien
antes de añadir las células fúngicas (al recipiente), en otras
palabras antes de inocular, o bien durante la fermentación.
Si el aporte es continuado (o intermitente), es
preferible que para cada instante del aporte (por ejemplo ``dosis''
o adiciones) la adición de ambas fuentes de carbono y/o nitrógeno
sea la misma.
Relaciones de C:N (en peso) preferidas son al
menos de 6:1, pero pueden variar de 10:1 a 150:1, tal como de 15:1
a 50:1, y de forma óptima de 25:1 a 40:1.
Para el aporte continuado, preferiblemente el
tiempo durante el cual se aportan las fuentes de nitrógeno y/o
carbono es mayor que el tiempo durante el cual no se aportan. De
esta forma, durante la fermentación el aporte es ventajoso durante
al menos 50% del tiempo. Si el aporte de una o ambas fuentes es
intermitente, entonces debe haber al menos 2, preferiblemente al
menos 5, y de forma óptima al menos 10 adiciones al líquido acuoso
de la fuente de nitrógeno y/o carbono. Para aporte continuo o
adiciones posteriores es preferible que la relación C:N en las
fuentes se mantenga (aproximadamente) en la misma relación que
cuando comenzó la fermentación.
Las fuentes de carbono y/o nitrógeno pueden ser
fuentes complejas, o compuestos individuales o aislados. Se
prefieren las fuentes no complejas (estas pueden tener o producir
menos micotoxinas) y por eso en los dos últimos casos éstas pueden
añadirse con un alto grado de pureza, y pueden ser sustancias
químicas comunes (o disponibles a nivel comercial). Preferiblemente,
ambas fuentes de C y/o N son no sólidas, y de manera apropiada
ambas son líquidas.
Fuentes de nitrógeno adecuadas incluyen amoníaco
e iones amonio. La ventaja aquí es que el amoníaco puede actuar
como regulador de pH. Este puede aportarse en forma de sal de
amonio, tal como nitrato, sulfato o fosfato o en forma de iones de
amonio por sí mismos, por ejemplo una disolución acuosa de hidróxido
de amonio.
También pueden utilizarse otras fuentes de
nitrógeno inorgánico, tales como nitrato de sodio, urea o un
aminoácido tal como asparagina o glutamina.
Otras fuentes complejas incluyen hidrolisatos de
levaduras, levaduras primarias, harina de semilla de soja,
hidrolisatos de caseína, levaduras, extracto de levadura o salvado
de arroz.
La fuente de carbono puede comprender (fuentes
complejas tal como) maltodextrina, harina de avena, molasas, aceite
vegetal (por ejemplo de semilla de soja), extracto de malta o
almidón. Fuentes de carbono preferidas
(no-complejas) incluyen hidratos de carbono o
azúcares, tales como fructosa, maltosa, sacarosa, xilosa, manitol,
glucosa, lactosa, citrato, acetato, glicerol o etanol.
Las fuentes de nitrógeno y/o carbono preferidas
son las solubles en agua o miscibles en agua.
De manera adicional, el líquido acuoso puede
contener otras sustancias que contribuyan en la fermentación, por
ejemplo agentes quelantes (por ejemplo ácido cítrico), agentes
anti-espumantes (por ejemplo aceite de soja),
vitaminas (por ejemplo tiamina y/o riboflavina), cualesquiera
metales catalíticos (por ejemplo, metales de las tierras raras
tales como magnesio o calcio, o zinc o hierro y/o otros metales
tales como cobalto o cobre), fósforo (por ejemplo fosfato) y/o
azufre (por ejemplo sulfato). Preferiblemente, el líquido acuoso
tiene un bajo contenido en azufre, por ejemplo menos de 3,0 g,
preferiblemente menos de 2,0 g o 1,0 g, de azufre por litro de
líquido acuoso.
Preferiblemente, se controlan el pH, la
temperatura y/o el contenido de oxígeno (del líquido acuoso)
durante la fermentación. Esto puede consistir en mantener el pH, la
temperatura y/o el contenido de O_{2} constantes o dentro de un
intervalo deseado. En este sentido, el recipiente de fermentación
puede tener sensores de pH, temperatura y/o contenido de
O_{2}.
El pH del líquido acuoso durante la fermentación
puede estar entre 2 y 8, tal como entre 3 y 7, y de forma óptima
entre 4 y 6.
La temperatura del líquido acuoso durante la
fermentación no es un aspecto particularmente crítico, puede estar
entre 20 y 50ºC, tal como entre 25 y 40ºC, y de forma óptima entre
30 y 35ºC.
Es importante que exista mezcla durante la
fermentación. En otras palabras, que el líquido acuoso y las
células fúngicas se mezclen o agiten de manera adecuada. Esto puede
conseguirse si se proporciona aireación, en otras palabras
burbujeando aire en el líquido acuoso. Esto puede satisfacer el
requisito adicional de proporcionar oxígeno a las células fúngicas:
de esta forma la fermentación es preferiblemente aerobia.
Otro medio de agitación o mezcla incluye la
agitación, por ejemplo, utilizando una rueda de paletas. Esta puede
ser de diseño de flujo axial o puede diseñarse con el fin de que se
produzca el desplazamiento radial del medio acuoso hacia el
exterior de la rueda de paletas (como una turbina). Incluso si no
existe agitación, es preferible que se proporcione oxígeno a los
hongos durante la fermentación, y por ello la aireación resulta
ventajosa (por ejemplo burbujeando aire, O_{2} u otro gas que
contenga oxígeno). La aireación puede ser de 0,1 a 2,0, tal como de
0,5 a 1,0 vvm.
Una de las ventajas de la aireación y/o agitación
es que el contenido de oxígeno del líquido acuoso puede mantenerse
relativamente elevado. Este puede ser de al menos 105, tal como al
menos 15%, y de forma óptima de al menos 20% (en términos de
saturación de aire). Esto permite un proceso de formación más
eficaz, y de esta forma puede dar como resultado un contenido más
rápido o más elevado de células fúngicas y/o de proteína fúngica.
Esto resulta particularmente ventajoso para las células fúngicas
utilizadas en el invento porque estas son suficientemente robustas
para permitir tolerar la agitación y/o mezcla durante la
fermentación. No obstante, esto no siempre es posible con células
fúngicas (las más sensibles) del grupo Fusarium, dado que la
técnica muestra la utilización de fermentadores aéreos, que carecen
de agitadores mecánicos, con tales organismos. De esta forma, con
la mayoría de organismos Mucorales no se requiere el uso de
equipamiento caro, tal como fermentadores aéreos, desarrollado para
otros organismos (menos robustos), lo que significa que la
sustancia comestible puede producirse de forma más barata.
La fermentación puede durar de 1 a 12 días, tal
como de 2 a 6 ó de 7 a 10 días, y de forma óptima de 2 a 4 días.
Una fermentación más corta tiende en sí misma hacia un proceso de
fermentación por tandas, en vez de continuo.
Una vez que ha finalizado la fermentación, o se
ha parado, puede retirarse el agua de la combinación de células
fúngicas y el líquido circundante producido. En la técnica, esta
combinación de líquido acuoso y células fúngicas se denomina
normalmente ``caldo''. Durante la fermentación el recipiente debe
contener únicamente este caldo, y éste es de manera preferible
enteramente líquido (y por tanto debe evitarse cualquier material
sólido). Las células pueden lavarse, tal como con un líquido acuoso
por ejemplo agua, antes o después de esta etapa de eliminación de
agua, y si se desea una de ellas o ambas pueden dar como resultado
la separación de las células de la materia extracelular (por
ejemplo la proteína). Si fuese preciso, el proceso para eliminar
los gránulos (dispersión o minimización de cualquier gránulo en el
líquido) puede llevarse a cabo antes de eliminar el agua (por
ejemplo mediante tratamiento por ultrasonidos o mediante mezcla por
corte).
Preferiblemente, la eliminación de agua se hace
por medios mecánicos o mediante técnicas mecánicas. Estas incluyen
diferentes técnicas de separación sólido-líquido
tales como desecado mecánico, filtración, centrifugación
(preferida), sedimentación (en otras palabras, se deja depositar el
material por gravedad), calentamiento o secado.
Tras este desecado el contenido de agua puede ser
de 50 a 90%, tal como 60 a 87%, y de forma óptima de 75 a 85%.
Después de este desecado (opcional), a
continuación el contenido de RNA de las células fúngicas puede
reducirse por debajo de 4% en peso. Esto puede conseguirse por
métodos químicos y/o físicos. El método preferido es la
utilización, y de esta forma aprovechamiento, de una o más enzimas
que ya se encuentran en el interior de las células fúngicas para
digerir el RNA. Esto puede dar lugar a que algunas moléculas de RNA
(pequeñas) (o sus productos de degradación) pasen a través, y con
ello salgan, de la membrana celular. De manera apropiada, los
nucleótidos (no deseados) del interior de la célula se fragmentan
en 2, 3 y 5 nucleótidos; de esta forma puede ser que estos
nucleótidos sean transportados a través de la membrana celular.
Asimismo el desecado también puede eliminar otros compuestos no
deseados durante el procesado posterior, tales como glucosa (por
ejemplo debido a tratamiento térmico posterior).
Un método preferido para eliminar el RNA es el
tratamiento térmico, en otras palabras calentar las células
fúngicas. Esto puede tener dos efectos. En primer lugar, la célula
se hace más permeable, permitiendo la salda del RNA y otras
moléculas. También puede aumentar la actividad de las nucleasas,
tales como RNAasas, en el interior de las células fúngicas. Otra
ventaja es que dicho tratamiento térmico puede inactivar algunas
enzimas no deseadas del interior de las células fúngicas. De manera
alternativa o al mismo tiempo pueden proporcionarse o añadirse
(ribo)nucleasas y/o RNAasas, en vez de confiar en las
enzimas del interior de las células.
Por tanto, la técnica preferida para la reducción
del RNA implica la transferencia del RNA del interior al exterior
de la célula fúngica, por ejemplo al interior de un líquido acuoso
circundante (por ejemplo el caldo). Posteriormente las células
pueden separarse o ser retiradas de este líquido acuoso.
Si se utiliza el tratamiento térmico para la
reducción del RNA, las células fúngicas pueden calentarse hasta una
temperatura de 40 a 80ºC, preferiblemente de 50 a 70ºC, y de manera
óptima de 55 a 65ºC. Esto puede ser durante un tiempo de 20 a 50
minutos, preferiblemente de 25 a 40 minutos, y de forma óptima de 25
a 35 minutos. La temperatura del tratamiento térmico para permitir
la reducción del RNA y el período de tiempo durante el cual se
mantiene esta temperatura pueden ser importantes. Si la temperatura
es demasiado baja, puede que las enzimas del interior de las
células que reducen el RNA no se activen. De manera similar, si la
temperatura es demasiado elevada, entonces se producirá la
desnaturalización o por el contrario la inactivación de dichas
enzimas. Por tanto, es necesario que se alcance un equilibrio, y
que se escoja una temperatura entre estos dos extremos. De este
modo, preferiblemente, las condiciones son aquellas en las se
produce la activación de la enzima(s) del interior de las
células o en las que se permite a ésta(s) la reducción del
contenido de RNA de dichas células. Puede que el simple hecho de
elevar la temperatura desde, por ejemplo, 30 a 100ºC no sea
suficiente, porque al hacer eso puede que las células no duren lo
suficiente a una temperatura intermedia que permita a las enzimas
del interior reducir el contenido de RNA. De esta forma,
dependiendo del organismo en cuestión, se escogen una temperatura y
un tiempo con el fin de que tenga lugar la reducción del RNA:
aunque existen descripciones anteriores acerca del calentamiento de
células fúngicas, estas condiciones pueden no ser adecuadas para
llevar a cabo la reducción del RNA (ya que bien la temperatura o
bien el tiempo durante el cual se mantiene esa temperatura no
permitan la reducción de contenido de RNA por parte de las enzimas
del interior de las células).
Otro método para la eliminación del RNA consiste
en someter a las células fúngicas a un pH ácido o alcalino. Si se
proporciona un pH ácido, éste puede ser de 3 a 4,5, tal como de 3,5
a 4,2. Este tratamiento ácido puede durar de 15 a 120 minutos, tal
como 30 a 60 minutos. Si fuese necesario, puede combinarse con el
tratamiento térmico, tal como de 40 a 60ºC, tal como de 50 a 60ºC.
Ácidos apropiados incluyen ácidos inorgánicos tales como ácido
clorhídrico, ácido fosfórico, ácido nítrico y/o ácido sulfúrico.
También puede utilizarse un fungicida para matar las células, en
vez de o además de los métodos mencionados.
Si se proporciona un pH alcalino, éste puede ser
desde un pH 8 a 12, tal como de 9 a 11, y de forma óptima a un pH
de 8 a 10. El agente alcalino puede proporcionarse en forma de
amoníaco, óxido de metales de las tierras alcalinas, hidróxidos o
carbonatos. El tratamiento alcalino puede durar el mismo tiempo que
se ha especificado para el tratamiento ácido, y de manera opcional
también puede ir acompañado de tratamiento térmico como se ha
descrito para el tratamiento ácido. No obstante, en algunos casos
una temperatura menos elevada puede resultar más apropiada, por
ejemplo de 40 a 80ºC, tal como de 60 a 70ºC, y de manera óptima de
62 a 68ºC.
Las células fúngicas pueden someterse a ambos
tratamientos ácido y alcalino, cualquiera de los cuales puede
combinarse con el tratamiento térmico. Preferiblemente, la
reducción del RNA es un proceso de una etapa. La disolución ácida o
alcalina empleada para entrar en contacto con las células fúngicas
puede descartarse, reutilizarse o reciclarse.
Si fuese necesario, la eliminación del RNA puede
estar seguida de pasterización o tratamiento por choque térmico.
Esto puede suponer temperaturas particularmente elevadas, tal como
100 a 150ºC ó 40 a 120ºC, y de manera óptima 130 a 140ºC ó 40 a
60ºC. Esto sólo puede durar 30 a 200 segundos, tal como 80 a 120
segundos. Para los intervalos de temperaturas más elevados: puede
ser de 5 a 120, por ejemplo de 20 a 50 minutos para las
temperaturas más bajas. Este tratamiento por choque térmico puede
proporcionarse después del tratamiento ácido y/o alcalino.
De esta forma, para la eliminación del RNA puede
llevarse a cabo el tratamiento térmico y/o pasterización además del
calentamiento. Esto puede resultar necesario si la eliminación del
RNA no mata todas las células. De manera alternativa, esta etapa
podría entenderse como la esterilización o inactivación de las
proteínas o enzimas no deseados, por ejemplo proteasas, lipasas,
amilasa, fosfolipasas y/o lipoxigenasas. Esta etapa (como con la
reducción del RNA) puede llevarse a cabo tanto si las células
fúngicas se encuentran todavía en el líquido acuoso (por ejemplo el
caldo, por ejemplo mientras se encuentran todavía en el recipiente
de fermentación) como si (preferiblemente) han sido sometidas a una
o más etapas de eliminación de agua. Aquí, el tratamiento térmico
puede bien reducir el contenido de agua y/o hacer que las células
fúngicas sean más insolubles en agua.
Independientemente de la técnica(s) de
reducción del contenido de RNA que se emplee, es deseable que las
células fúngicas permanezcan íntegras, o enteras, en otras palabras
que no experimenten lisis. De esta forma, las células deben estar
íntegras pero no vivas (por ejemplo muertas o no ser viables).
Tras la reducción del RNA, las células fúngicas
tienen un contenido de RNA inferior a 4,0 ó 2,0%, tal como de 0,1 a
2,0%, preferiblemente de 0,5 a 1,5%. De manera óptima, el contenido
de RNA es de 0,4 a 0,8%. Estos porcentajes están basados en peso
seco de las células. De esta forma, las células con un contenido de
RNA reducido puede presentar un contenido inferior al que presentan
los hongos de origen natural o los hongos utilizados en el proceso
de fermentación (etapa (a) del primer aspecto).
La proteína producida puede localizarse en
diferentes partes de la célula fúngica. Puede representar hasta
30%, tal como hasta 40% y de manera óptima hasta 50% de la propia
célula fúngica (basado en peso seco). La proteína fúngica puede
estar en el interior de la célula (intracelular) o en el interior de
la pared celular. La primera puede incluir dos ``tipos'' de
proteínas diferentes, por ejemplo proteínas estructurales (las
relacionadas con el DNA; ribosomas, membranas etc) y proteínas
catalíticas (por ejemplos enzimas). Los proteínas de la pared
celular incluyen no sólo las que están en el interior o forman parte
de la pared celular, sino también pueden estar fuera de la pared
celular pero permanecer enlazadas a ella. Esto es contrario a lo
que sucede con las proteínas segregadas (por ejemplo
extracelulares) que no están enlazadas a la pared, y que
normalmente son descartadas o frecuentemente se pierden durante el
procesado. A continuación, el material que contiene las células
fúngicas puede someterse, si es necesario, a una etapa (posterior)
de eliminación de agua, o desecado. Preferiblemente, esto reduce el
contenido de agua hasta 50-90%, tal como
60-85%, y de forma óptima 75-85%.
Esto puede ser después de uno o más tapas de enjuague o lavado
(por ejemplo con agua, por ejemplo agua del grifo). El material
resultante puede tener un contenido de materia seca de 10 a 40%,
preferiblemente de 15 a 35%, y de forma óptima de 20 a 30%.
Preferiblemente, el líquido eliminado contiene el
RNA, los productos de degradación del RNA y cualquier otra
sustancia no deseada eliminada a partir de las células o
transferida del interior al exterior de las células, en la
etapa(s) previa de reducción del RNA o calentamiento. Los
procedimientos para la eliminación de agua aquí son los mismos que
los descritos para la etapa anterior opcional de eliminación que
sigue a la fermentación. No obstante, en esta etapa se prefiere la
filtración, tal como filtración a vacío.
En esta etapa del proceso, es posible haber
producido la sustancia proteínica que es el objeto del tercer
aspecto del invento. Puede estar en forma (por ejemplo acuosa) de
pasta, biomasa o torta de filtro. Puede llevarse a cabo un
procesado posterior, en particular un proceso para conferir textura,
por ejemplo utilizando métodos mecánicos, con el fin de producir el
producto con textura (proteínico) del cuarto aspecto. Otras
técnicas de procesado pueden incluir tratamiento químico, físico
y/o enzimático.
Uno o más componentes comestibles pueden añadirse
o mezclarse con la sustancia del segundo aspecto. Estos pueden ser
para añadir textura y/o sabor. Componentes preferidos incluyen
hidrocoloides, por ejemplo pectina, almidón, carragenina o
alginato. Esto puede ser antes o después de la etapa(s) de
procesado mecánico tal como molienda, desmenuzado, corte, amasado
y/o homogeneización.
También se contemplan como proteínas, por ejemplo
la proteína de la leche tal como caseína, ovoproteína tal como
albúmina de huevo o los propios huevos (yema y/o clara de huevo),
proteínas vegetales tales como soja, o proteínas de cereales, tales
como gluten, o enzimas (por ejemplo proteasas,
fosfodiesterasas).
Otros componentes comestibles incluyen
potenciadores del sabor tales como sal, azúcar, IMP y/o GMP (aunque
en este caso es preferible que la cantidad de RNA no exceda la
mencionada anteriormente para las células fúngicas), agentes
aromatizantes tales como especias, hierbas, proteínas (por ejemplo
de 2 a 5% tal como proteína de la leche, por ejemplo caseína, una
proteína vegetal, una ovoproteína, por ejemplo albúmina),
hidrocoloides (por ejemplo de 5 a 20% tal como pectina,
carragenina, agar, xantán, gellan, ácidos galactourónico o
manurónico o sus sales), agentes formadores de gel (tales como
albúmina de huevo, proteína de suero lácteo y alginato),
polisacáridos (tales como de 0 a 10%, por ejemplo almidón o
pectina), agentes colorantes, material vegetal (cebollas,
zanahorias, soja, guisantes, judías o cereales tales como trigo,
avena, cebada) y agentes emulsionantes. También puede incluir
aromatizantes similares a la carne, tal como aromatizantes de
ternera, cerdo o aves de corral (pollo o pavo) u otros productos no
cárnicos. Pueden proporcionarse componentes adicionales para
mejorar el sabor (propiedades organolépticas), la fijación de agua,
la fijación de grasas, las propiedades emulsionantes, la textura, el
volumen, la viscosidad, el sabor, aroma y/o el color (colorantes,
carotenoides, etc.). Puede incluirse albúmina de huevo para mejorar
la capacidad para batir, el color o como agente de fijación de
otras proteínas. Puede usarse yema de huevo para emulsionar,
conferir color o sabor. Puede utilizarse proteína de soja para
fijar el agua, fijar las grasas o para mejorar la textura. También
puede incluirse gelatina para la mejorar la formación de gel.
Proteína de la leche o sus sales para la fijación de agua o grasas,
sabor o textura y gluten de trigo para la fijación de agua, textura
o sabor. Por tanto, puede utilizarse el producto proteínico
comestible para reemplazar o puede proporcionarse junto con uno o
más de los siguientes: proteínas vegetales, clara de huevo,
gelatina, agentes espumantes proteínicos comestibles y proteínas de
la leche. También pueden incluirse materiales fibrosos (por
ejemplos vegetales tales como cebollas).
El proceso de texturización pretende proporcionar
al producto una textura similar a la de la carne y/o una sensación
en la boca similar a la de la carne. De esta forma, puede tener un
aspecto fibroso o similar al de la carne.
Preferiblemente, la texturización es por uno o
más medios mecánicos. Estos incluyen molienda, desmenuzado, picado,
formación de rebanadas, corte (por ejemplo en bolas, rebanadas o
capas), amasado, formación de capas, estiramiento, formación de
láminas y/o extrusión. Preferiblemente, puede tener como resultado
la alineación de las proteínas fúngicas dando lugar a fibras, lo que
puede contribuir a dar al producto el aspecto similar al de la
carne.
No obstante, el proceso de texturización puede
comprender métodos físicos, por ejemplo calentamiento y/o
congelación. Ambas técnicas pueden también dar como resultado la
posterior eliminación de agua. En particular, la congelación puede
contribuir a la alineación de las células fúngicas dando lugar a un
aspecto fibroso.
El moldeado mecánico puede incluir colocar la
mezcla de células fúngicas y del componente(s) comestible en
un molde u otro recipiente de forma deseada, y a continuación
enfriar (tal como congelar) y/o calentar (por ejemplo de 70 a
100ºC, para provocar la formación de un gel, por ejemplo) mediante
diferentes métodos tales como vaporización, cocción y/o fritura. Si
es necesario puede aplicarse presión. A continuación, el material
puede sacarse del molde o recipiente, y puede retener la forma de
dicho recipiente.
El producto moldeado por ejemplo puede presentar
formas de animales, pájaros o pescados, letras del alfabeto,
números, etc que pueden se particularmente apropiadas para los
productos alimenticios destinados a niños.
El producto con textura también puede presentar
forma de polvo seco, que puede incluirse en un producto alimenticio
para mejorar la sensación en la boca o para aumentar la
viscosidad.
Un proceso de texturización particularmente
preferido implica la granulación, por ejemplo para producir
partículas granulares. Antes de cualquier texturización, las
células fúngicas combinadas y la proteína fúngica pueden tener un
contenido medio de agua de 15 a 85%. Después de la texturización
(por ejemplo granulación), los gránulos resultantes pueden tener un
contenido medio de agua inferior a 30%, por ejemplo menos de 20%, y
de manera opcional menos de 10%.
Preferiblemente, la granulación se logra mediante
extrusión. Se prefiere ésta porque las condiciones de extrusión
pueden ajustarse para minimizar la disgregación de las células
fúngicas. Por tanto, la extrusión puede llevarse a cabo sin calor,
por ejemplo de 15 a 85ºC. Durante la extrusión, los gránulos pueden
formarse de manera natural, cayendo por su propio peso (a partir de
la hilera para estirar, tal como por gravedad) o se puede utilizar
un cortador, tal como una cuchilla rotatoria, para cortar los
largos cordones de ``espaguetti'' producidos por la extrusión.
Después de la extrusión, los gránulos preferiblemente tienen un
contenido de agua menor de 15%, tal como menos de 10%, y de forma
óptima de 3 a 7%. Los gránulos pueden tener un diámetro de 0,3 a 10
mm, tal como de 0,7 a 5 mm, y de forma óptima de 1 a 3 mm.
De esta forma, la extrusión puede utilizarse para
formar productos alargados similares a los ``spaghetti'' (éstos
pueden ser cilíndricos y/o de corte transversal circular), cuando
se hace pasar el producto a través de una hilera para estirar (por
ejemplo, con orificios circulares o cuadrados). No obstante, pueden
formarse por ejemplo láminas o capas haciendo pasar (por ejemplo
utilizando la extrusión) el producto a través de una o más ranuras.
También pueden prepararse estas formas mediante la utilización de
una o más superficies móviles, tal como un rodillo(s) o un
cilindro(s). Éstos pueden moverse en la misma dirección o en
sentido de rotación inverso y pueden ser una, dos o hasta cinco
superficies.
Por tanto, el producto proteínico puede tener
varias formas. Por ejemplo, puede tener forma de bolas, por ejemplo
bolas de carne, masas, láminas, gránulos, producto extraído,
rebanadas o puede tener forma de capas. Estas formas pueden estar
secas o congeladas. El producto puede incluirse en el producto
alimenticio sin procesado adicional. Pueden reconocerse como bolas
en el producto alimenticio, y pueden tener el aspecto de la
carne.
De esta forma, pueden incluirse en los productos
alimenticios como sustitutos de la carne, y productos alimenticios
que se contemplan incluyen pasteles, comidas para preparación en
microondas, aperitivos salados, salchichas, empanadas,
hamburguesas, productos para untar y paté, polvo seco (por ejemplo
para sopas).
El producto con textura puede tener forma de
pellets o gránulos, y éstos también pueden secarse o congelarse.
Pueden adaptarse para deshidratación antes de su consumo. Estos
productos pueden incluirse en sopas o salsas. El producto (por
ejemplo pellets o gránulos) puede incluirse en hamburguesas o
salchichas con un aglutinante (por ejemplo comestible). La
solicitud de patente Internacional nº. PCT/EP99/02795 presentada el
26 de Abril de 1999 en nombre de Gist-brocades B.V.
describe un proceso apropiado de preparación de salchichas así como
una máquina para hacer salchichas.
Por tanto, un proceso particularmente preferido
del presente invento puede comprender:
- 1.
- fermentar células fúngicas del orden Mucorales, por ejemplo en un líquido acuoso contenido en un recipiente de fermentación, comprendiendo el líquido fuentes de carbono y nitrógeno asimilable. El líquido y las células pueden mezclarse y/o airearse durante la fermentación y, si fuese necesario, puede llevarse a cabo un proceso para eliminar las pellets.
- 2.
- eliminar opcionalmente el agua, por ejemplo eliminar el líquido, o el agua, del líquido acuoso, preferiblemente utilizando técnicas mecánicas tal como filtración, centrifugación (por ejemplo una o dos), sedimentación y/o secado;
- 3.
- reducir el contenido de RNA de las células fúngicas, por ejemplo mediante tratamiento(s) físico, químico y/o enzimático, pero preferiblemente mediante tratamiento térmico por ejemplo de 60 a 75ºC durante 25 a 35 minutos;
- 4.
- tratar térmicamente, pasteurizar o matar las células o en caso contrario (por ejemplo químicamente) inactivar las proteínas no deseadas o las enzimas del interior de las células fúngicas;
- 5.
- opcionalmente, eliminar el agua (por ejemplo si no se ha hecho en la etapa 2), de forma que se proporcione la sustancia comestible (por ejemplo proteínica);
- 6.
- añadir uno o más componentes comestibles a las células fúngicas (o a la sustancia comestible);
- 7.
- texturizar las células fúngicas (bien antes (por ejemplo molienda o desmenuzado) o después (por ejemplo amasado o extrusión) de la adición del componente comestible en la etapa 6), por ejemplo utilizando el procesado mecánico;
- 8.
- someter a las células fúngicas a tratamientos físicos tal como calentamiento (por ejemplo cocción, vaporización, fritura) y/o congelación, o en caso contrario eliminar el agua;
- 9.
- opcionalmente antes o después de la etapa 8, conferir forma y/o en caso contrario procesar mecánicamente (si fuese necesario) para dar un producto texturizado; y
- 10.
- incluir o procesar el producto comestible en un producto alimenticio o complementar un producto alimenticio con el producto.
El producto alimenticio puede comprender un
producto comestible texturizado bien del cuarto aspecto o
susceptible de preparación mediante un proceso del tercer aspecto.
Como cabe esperar, el producto alimenticio puede contener, además
de las células fúngicas, uno o más ingredientes o componentes
comestibles adicionales o ingredientes. Éstas pueden ser las mismas
que las descritas anteriormente con relación al producto
proteínico.
El producto texturizado puede incluirse en el
producto alimenticio como tal, en otras palabras puede ser
utilizado simplemente para complementar un producto alimenticio ya
existente o puede utilizarse en la preparación de un producto
alimenticio. Puede calentarse primero para generar mejor sabor o
para dorar el producto.
Productos alimenticios preferidos incluyen
comidas fáciles de preparar o ya preparadas, o comidas para
preparación en microondas, hamburguesas, pasteles, empanadas,
salchichas y sopas. El producto puede utilizarse como sustituto de
carnes tales como cerdo, ternera, aves de corral, caza, jamón,
ternero o incluso pescado.
Por supuesto, los productos alimenticios están
destinados para consumo humano, aunque también se contemplan
productos alimenticios para animales, en particular mascotas (tales
como perros y gatos), tal como productos alimenticios enlatados, o
para animales de granja (cerdos, vacas, ovejas, etc).
Pueden incluirse otros alimentos como componentes
o ingredientes, por ejemplo arroz y pasta.
Las características y propiedades preferidas de
un aspecto del invento son aplicables a otro aspecto con los
cambios necesarios.
A continuación se describirá el invento, a modo
de ejemplo, haciendo referencia a los Ejemplos adjuntos, que se
proporcionan únicamente con fines ilustrativos y no se consideran
como limitantes.
Ejemplo comparativo
1
Es preciso que el microorganismo sea de calidad
alimenticia y que la sustancia contenga proteínas ``de valor''.
Preferiblemente, deben estar presentes los nutrientes esenciales
como en la carne. Las morfología/estructura de la biomasa tiene que
ser apropiada para producir un producto enriquecido con
micro-proteínas con un ``bocado'' y una sensación
organoléptica propia de productos similares a la carne.
Los Ejemplos demuestran que es posible preparar
alimentos fúngicos a partir de hongos Mucorales y que,
dentro del orden Mucorales, se prefieren las familias más
``primitivas''.
Las ventajas de los hongos Mucorales
incluyen:
- 1.
- escasa o nula producción de micotoxinas;
- 2.
- producción simple y barata de biomasa; buena proliferación hacia concentraciones elevadas en medios transparentes (formados por sales, una fuente de N compleja bien definida y glucosa u oligosacáridos);
- 3.
- son aceptables los procedimientos de procesado aguas-abajo para los productos alimenticios; y
- 4.
- buena calidad del producto final.
En los experimentos en matraz, se realizaron
ensayos con varias cepas celulares de Choanephoraceae,
Mucoraceae y Mortierellaceae de las familias
Mucorales, para comprobar su proliferación celular en medios
simples y transparentes.
Se ensayó la proliferación en diferentes medios
que incluían los dos medios semi-definidos:
| Compuesto | Concentración |
| Extracto de levadura o peptona | 5 g/kg |
| Glucosa | 30 g/kg |
| Fosfato de potasio | 0,10 M |
| Sulfato de amonio | 0,1 M |
| Sulfato de magnesio | 1,25 mM |
| Sulfato de cinc | 0,03 mM |
| Sulfato de manganeso | 0,2 mM |
| Cloruro de hierro | 0,09 mM |
| Sulfato de cobre | 0,03 mM |
Los componentes se disolvieron en agua
desionizada, y se esterilizaron durante 20 minutos a 120ºC: la
glucosa se esterilizó por separado. El pH después de la
esterilización fue de 6,0.
Los experimentos se llevaron a cabo en matraces
erlenmeyer (100/500 ml). La inoculación tuvo lugar con una
suspensión de esporas preparada recientemente haciendo proliferar
las cepas durante varios días sobre una superficie de agar de
malta, lavando las esporas de la superficie y almacenándolas en un
congelador. Los erlenmeyer se incubaron entre 25 y 35ºC durante 2 a
4 días en un agitador orbital (con un recorrido de 2,5 cm a 250
rpm).
Se ensayaron las siguientes cepas:
| Especies | familia | fuente |
| Blakeslea trispora | Choanephoraceae | CBS 130.59 |
| Gilbertella persicaria | Choanephoraceae | CBS 247.59 |
| Absidia pseudocylindrospora | Mucoraceae | CBS 100.2 |
| Phycomyces blakesleeanus | Mucoraceae | CBS 226.92, |
| NRRL 1555 | ||
| Rhizopus oryzae* | Mucoraceae | Propia cepa clínica* |
| Mucor hiemalis | Mucoraceae | CBS 242.35 |
| Rhizomucor miebei* | Mucoraceae | Propia cepa clínica* |
| Mucor rouxii | Mucoraceae | CBS 416.77 |
| Mortierella alpina* | Mortierellaceae | Propia cepa clínica* |
* Las cepas están disponibles a nivel comercial,
por ejemplo a partir de CBS (Central Bureau loor Schimmelcultures,
Delft, The
Netherlands).
Todas las cepas proliferaron bien durante varios
días, normalmente en forma mezclada a partir tanto del micelio
filamentoso como de pellets. En todos los casos se pudo obtener al
menos 5 g de biomasa/litro de caldo durante el curso de la
incubación, medidos filtrando la biomasa y pesándola tras secado
durante 24 horas a 105ºC sobre un papel de filtro
pre-pesado. Se comprobó la presencia de pellets de
manera visual.
Ejemplo comparativo
2
Como parte del proceso a escala, todas las cepas
del Ejemplo 1 se sometieron a experimentos de fermentador a escala
de laboratorio. El objetivo era ensayar su proliferación en medios
simples, proliferación hacia una concentración elevada de biomasa
que permita una proliferación y unos procedimientos de escala
posteriores adecuados para la inclusión en un producto
alimenticio.
La configuración experimental fue la siguiente,
comenzando por la preparación del inóculo.
Se preparó la suspensión de esporas como se ha
descrito en el Ejemplo anterior. Con esta suspensión de esporas se
inició un cultivo de inóculo, empleando un medio basado en harina
de semilla de soja para facilitar el crecimiento de las hifas
(harina de soja 15 g/kg, extracto de levadura 5 g/kg,
K_{2}HPO_{4} 1g/kg glucosa. H_{2}O 20g/kg). El medio se
esterilizó durante 45 minutos a 120ºC en matraces erlenmeyer a pH
6. Tan pronto como se alcanzó la proliferación total, el cultivo
fue transferido a un fermentador de laboratorio, que contenía un
medio que se preparó empleando los siguientes componentes:
| Componente | Concentración (g/kg) |
| Extracto de levadura | 1 |
| Glucosa | 20 |
| Sulfato de amonio | 6 |
| Sulfato de magnesio \cdot 7 H_{2}O | 2 |
| Cloruro de calcio | 0,5 |
| Monofosfato de potasio | 3 |
| Sulfato de cinc \cdot 7 H_{2}O | 0,0144 |
| Sulfato de hierro \cdot 7 H_{2}O | 0,15 |
| Sulfato de manganeso \cdot 1 H_{2}O | 0,0228 |
| Sulfato de cobre \cdot 5 H_{2}O | 0,0024 |
| Sulfato de cobalto \cdot 7 H_{2}O | 0,0038 |
| Tiamina HCl | 0,004 |
| Ácido nicotínico | 0,002 |
Todos los compuestos se disolvieron en agua
desionizada y se mezclaron, excepto la glucosa y el fosfato que se
prepararon por separado. El pH se ajustó a 6,0 ó 4,5 empleando
NaOH, y el medio se esterilizó en el fermentador durante 45 minutos
a 121ºC en un autoclave. Tras una esterilización durante 20 minutos
a 120ºC, se añadieron la disolución de glucosa y la disolución de
fosfato, la primera tras acidificar a pH 5 con ácido fosfórico.
Después del medio de partida se proporcionó un
producto alimenticio de hidratos de carbono que consistió en
glucosa a una concentración de 500 g/kg. La preparación fue la
descrita para la disolución de glucosa del medio de partida.
El fermentador estaba equipado con controles de
temperatura, pH y espuma. Para ajustar el pH, se utilizaron
disoluciones de amoníaco y ácido sulfúrico. Se midieron la
concentración de oxígeno disuelto y la composición del gas liberado.
El cultivo se aireó empleando 1 volumen de aire por cada volumen de
caldo por minuto. Se mezcló intensamente utilizando turbinas
Rushton y deflectores. El producto alimenticio de glucosa se aplicó
con un caudal entre 1 y 5 g de glucosa/kg de caldo/hora y comenzó
cuando la concentración de glucosa en el caldo había disminuido
hasta una concentración inferior a 5 g/kg.
Se tomaron 2 muestras cada 24 horas para el
análisis por separado de las concentraciones de sustrato no
utilizado, biomas y sub-productos. También se llevó
a cabo el examen microscópico.
Se escogieron las siguientes cepas, ensayadas de
este modo en matraces para los experimentos en fermentadores a
escala de laboratorio:
Rhizopus oryzae, Mortierella alpina, Blakeslea
trispora, Gilbertella persicaria y Absidia
pseudocylindrospora.
En todos los casos la biomasa se acumuló hasta
concentraciones de 20 a 50 g/kg en 80 horas de cultivo.
De esta forma, todas las cepas mostraron
capacidad para producir biomasa en un medio simple y a bajo coste
cuando se sometió el proceso a escala.
Ejemplo comparativo
3
De acuerdo con los procedimientos dados en el
Ejemplo 1, se cultivaron varios microorganismos en matraces de
agitación. Se examinó la morfología de la biomas por métodos
microscópicos de luz. La Tabla 1 muestra las características
encontradas. La morfología de los organismos Mucorales fue
diferente a la de las especies Fusarium.
| Cepa | Ramificada |
| Fusarium graminearum (ahora | |
| reclasificada como F. venenatum, IMI | No |
| 145425) | |
| Mortierella alpina | Si |
| Gilbertella persicaria | Si |
| Rhizopus oryzae | Si |
| Absidia pseudocylindrospora | Si |
Ejemplos 4 y 5 y Ejemplos comparativo
6
En el Ejemplo 4, se utilizaron fermentadores a
escala de laboratorio para cultivar tres microorganismos
(Absidia pseudocylindropora, Gilbertella persicaria y
Mortierella alpina) de acuerdo con los procedimientos
descritos en el Ejemplo 2 y se emplearon las mismas condiciones para
cultivar Fusarium venenatum (Ejemplo comparativo 6).
En el Ejemplo 5, se cultivó Rhizopus
oryzae en un a escala de producción (para más detalles véase
Ejemplo 8: se utilizó una parte del caldo para el análisis
siguiente).
Con el fin de preparar primero una torta de
filtración de biomasa, se empleó el siguiente procedimiento de
recuperación:
\bullet centrifugación y lavado de la biomasa
(para eliminar los componentes del medio en exceso como la
glucosa);
\bullet tratamiento térmico a 65ºC para reducir
la actividad enzimática y para reducir el RNA;
\bullet tratamiento térmico a 90ºC para
pasteurizar el caldo;
\bullet filtración sobre filtros prensa de
laboratorio, incluyendo lavado con agua del grifo; y
\bullet envasado y almacenamiento.
Centrifugación. Se centrifugaron porciones de 1
litro de biomasa en un centrifugador Beckmann (tipo
J-6M/E) durante 5 minutos a 5000 rpm. Se decantó el
sobrenadante y se descartó. La bolita se
re-suspendió en agua del grifo y se
re-centrifugó. De nuevo se decantó el sobrenadante.
La bolita lavada se re-suspendió en agua del
grifo.
Tratamiento térmico (reducción del RNA): se
calentó el caldo a 65ºC y se mantuvo a esta temperatura durante 30
minutos.
Tratamiento térmico (para matar las enzimas):
después de calentó el caldo a 90ºC y se mantuvo a esta temperatura
durante 30 minutos.
Filtración: el caldo caliente se filtró en un
filtro prensa de 2 litros (de tipo Seitz Enzinger Noll, Alemania)
equipado con un paño filtrante de polipropileno a una presión
inicial de 50 KPa (0,5 bares).
La torta resultante se lavó con volúmenes de agua
del grifo. Después de lavar la torta se secó con aire a 200 KPa (2
bares) durante 5 minutos. Se recogió la torta para posterior
tratamiento. Se analizaron la materia seca, el RNA, las proteínas
brutas (Kjeldahl-N) y las grasas de la torta. Las
Tablas 2 y 3 muestran los datos resultantes del análisis.
| Ejemplo | Cepa | Volumen | Torta | Materia | Proteínas | Grasas | RNA |
| inicial | total | seca de | (Nx6,25)% | (%) | (g/Kg) | ||
| (ml) | (g) | la torta (%) | |||||
| 4 | Mortierella alpina | 3250 | 282 | 26 | 13,0 | 4,46 | 2,85 |
| 4 | Gilbertella persicaria | 3700 | 1135 | 15,3 | 5,3 | 2,54 | 0,77 |
| 4 | Absidia | 3400 | 284 | 20,6 | 9,9 | 3,44 | 4,45 |
| pseudocylindrospora | |||||||
| 4 | Gilbertella persicaria | 2940 | 349 | 16,5 | 7,2 | 2,07 | 3,68 |
| 5 | Rhizopus orzyae | 10000 | 682 | 16,1 | 6,9 | 1,95 | 4,82 |
| 6 (comp) | Fusarium graminearum | 3500 | 552 | 24,6 | 16,1 | 2,12 | 13,1 |
| Ejemplo | Cepa | Proteínas | Grasas | RNA |
| (% peso/peso) | (% peso/peso) | (% peso/peso) | ||
| 4 | Mortierella alpina | 50,0 | 17,1 | 1,1 |
| 4 | Gilbertella persicaria | 34,6 | 16,6 | 0,50 |
| 4 | Absidia | 48,1 | 16,7 | 2,1 |
| pseudocylindrospora | ||||
| 4 | Gilbertella persicaria | 43,6 | 12,5 | 2,2 |
| 5 | Rhizopus orzyae | 43,3 | 12,2 | 0,3 |
| 6 (comp) | Fusarium graminearum | 65,5 | 8,6 | 5,3 |
Se sometieron a escala las fermentaciones de la
cepa Rhizopus orzyae utilizadas en el Ejemplo 2 en un
fermentador de planta piloto con un volumen de trabajo de 3 m^{3}
a partir de las condiciones descritas en el Ejemplo 4. Tras la
fermentación, se enfrió el caldo a 5-10ºC y se
recolectó.
Se centrifugó una parte del caldo (100 litros) en
un separador de discos Westfalia NA7 tras diluir con agua del grifo
hasta 500 litros. La centrifugadora estaba equipada con 4 boquillas
de pulverización de 1 mm de diámetro cada una. Se obtuvieron dos
corrientes de líquidos. Se descartó el sobrenadante (400 litros) y
se retuvo una corriente de concentrado que contenía la biomas
(células fúngicas). Se diluyó el concentrado al volumen original
con una disolución de K_{2}HPO_{4} 100 mM.
La mezcla se re-centrifugó y se
descartó el sobrenadante.
A continuación, la biomas concentrada y lavada se
calentó a 65ºC durante 30 minutos. Después se calentó la biomasa
concentrada a 90-95ºC y se mantuvo a esa
temperatura durante 30 minutos.
Parte del caldo resultante (1,35 m^{3}) se
filtró en un filtro prensa de membrana Schule con un área de
filtración de 6 m^{2} y a una presión de 30-200
KPa (0,3-2 bares). La torta de filtro obtenida se
lavó con agua del grifo (5- 10ºC). Se escurrió la torta de filtro
mediante membranas a una presión de 600 KPa (6 bares). Esto dio
como resultado 73 kg de torta de filtro con un contenido de materia
seca de 24,8%.
Ejemplo
8A
Se llevaron a cabo tres fermentaciones de
producción de la cepa de Rhizopus oryzae utilizada en el
Ejemplo 2 en un fermentador de producción estándar con un volumen
de trabajo de 30 m^{3}. El fermentador contaba con control de pH,
una turbina Rushton de velocidad ajustable, aporte de aire, control
de espuma y control de temperatura. Durante la recogida se mataron
los microorganismos producidos y el contenido de RNA se redujo
calentando la biomasa a 50-55ºC con vapor directo
en presencia de 1g/l de ácido benzoico a pH 4,5-5,0.
Tras alcanzar los 50-55ºC, el caldo se enfrió por
debajo de 20ºC. Se transfirió el caldo a otro recipiente, se diluyó
con agua del grifo fría y a continuación se enfrió a
4-6ºC. Posteriormente, el caldo frío se filtró en
filtro prensa de membrana Schenk con un volumen de torta de trabajo
de 2,5 m^{3} y se lavó la torta con 20 m^{3} de agua del grifo
fría. La torta se escurrió aplicando agua a presión en un sistema
de membrana (400 a 900 Kpa (4-9 bares)). Se retiró
la torta del filtro prensa y parte de ella se desmenuzó, se
empaquetó en bolsas y se congeló en frío a una temperatura entre
-15 y -20ºC. Parte de la biomasa congelada se cortó en partículas
que tenían un tamaño entre 1 y 3 mm y se tomaron dos o tres
muestras de cada una de las tres fermentaciones para realizar el
siguiente análisis (Tabla 4).
| Presión de | % de materia | |||
| Fermentación Nº | Muestra Nº | escurrido | Torta total (kg) | seca |
| (Kpa)* | (peso/peso) | |||
| 1 | 1 | 900 (9) | 362 | 50-55 |
| 1 | 2 | 900 (9) | 383 | 50-55 |
| 2 | 1 | 400 (4) | 385 | 45-50 |
| 2 | 2 | 400 (4) | 404 | 42-46 |
| 2 | 3 | 400 (4) | 437 | 42-46 |
| 3 | 1 | 400 (4) | 449 | 42-46 |
| 3 | 2 | 400 (4) | 392 | 36-40 |
| * Entre paréntesis se proporcionan los valores en bares. |
Posteriormente, se analizaron las muestras
químicamente (RNA, proteínas brutas (como
Kjeldahl-N), grasas, micotoxinas y otros
componentes) con los siguientes resultados (Tabla 5).
| Fermentación Nº - Muestra Nº | |||||
| 1-1 | 1-2 | 2-2 | 2-3 | 3-1 | |
| Materia seca (%) | 52,1 | 52,1 | 42,5 | 42,9 | 41,1 |
| Ceniza (%) | 1,6 | 1,6 | 1,3 | 1,1 | 1,8 |
| Fibras brutas totales (%) | 30,1 | 30,1 | 27,4 | 27,5 | 27,0 |
| Proteína (como Nx6,25) (%) | 43,2 | 43,2 | 39,7 | 40,1 | 43,3 |
| Grasas totales (%) | 12,7 | 12,7 | 16,8 | 16,8 | 12,2 |
| RNA (mg/kg) | 4222 | nd | 1132 | nd | 2518 |
| RNA (%) | 0,4 | nd | 0,1 | nd | 0,3 |
| Hidratos de carbono | 12,5 | 12,5 | 14,9 | 14,5 | 15,8 |
| % calculado de aminoácidos | 26,11 | nd | 23,90 | nd | 25,13 |
| totales | |||||
| % calculado de grasas totales | 11,9 | nd | 15,7 | nd | 11,5 |
| Micotoxina (\mug/kg) | |||||
| Aflatoxina B1 | < 2,0 | < 2,1 | < 2,3 | < 2,3 | < 2,4 |
| Aflatoxina B2 | < 2,0 | < 2,1 | < 2,3 | < 2,3 | < 2,4 |
| Aflatoxina G1 | < 2,0 | < 2,1 | < 2,3 | < 2,3 | < 2,4 |
| Aflatoxina G2 | < 2,0 | < 2,1 | < 2,3 | < 2,3 | > 2,4 |
| Ocratoxina A | < 2,0 | < 2,1 | < 2,3 | < 2,3 | < 2,4 |
| Toxina T2 | < 200 | < 210 | < 230 | < 230 | < 240 |
| Zearaleona | < 20 | < 2,1 | < 23 | < 23 | < 24 |
| [nd = no realizado] |
Composición de
aminoácidos
| Fermentación Nº - Muestra Nº | |||
| Aminoácidos (%) | 1-1 | 2-2 | 3-1 |
| Metionina | 0,56 | 0,52 | 0,54 |
| Lisina | 1,92 | 2,06 | 2,07 |
| Cisteina | 0,44 | 0,35 | 0,36 |
| Asparagina (ácido) | 2,99 | 2,55 | 2,51 |
| Treonina | 1,52 | 1,39 | 1,44 |
TABLA 6
(continuación)
| Fermentación Nº - Muestra Nº | |||
| Aminoácidos (%) | 1-1 | 2-2 | 3-1 |
| Leucina | 2,15 | 2,10 | 2,17 |
| Isoleucina | 1,38 | 1,42 | 1,44 |
| Serina | 1,50 | 1,25 | 1,31 |
| Glutamina | 3,20 | 2,69 | 2,87 |
| Glicina | 1,25 | 1,13 | 1,24 |
| Alanina | 1,55 | 1,49 | 1,65 |
| Valina | 1,67 | 1,75 | 1,70 |
| Tirosina | 1,13 | 1,06 | 1,12 |
| Fenilalanina | 1,34 | 1,23 | 1,36 |
| Histidina | 0,67 | 0,61 | 0,68 |
| Arginina | 1,36 | 1,04 | 1,14 |
| Prolina | 1,04 | 0,83 | 0,97 |
| Triptófano | 0,44 | 0,43 | 0,46 |
Ejemplo
8B
Se secó la biomasa cortada en forma de partículas
restante del Ejemplo 8A en porciones de 30-50 kg en
un desecador de lecho fluido Aeromatic T4 con un área de placa de
base de 0,26 m^{2}, por medio de aire a una temperatura de
\hbox{55-65ºC}. El secado concluyó a
una temperatura de lecho de 38-40ºC. Las muestras de
biomasa seca presentaron los siguientes contenidos de materia seca
(Tabla 8).
| Fermentación Nº | Muestra Nº | Contenido de materia seca (%) |
| 2 | 2 | 93,2 |
| 3 | 1 | 95,5 |
Ejemplos 9A, 9B y
9C
Se molió y desmenuzó la torta de filtración del
Ejemplo 8A en porciones de aproximadamente 25 kg por medio de un
mezclador de alto corte Lödige durante 5 minutos. Se añadió 1 kg de
albúmina de huevo (Ejemplo 9A) a la torta desmenuzada y se amasó la
mezcla. Se repitió el procedimiento con un poco de agua y especias,
mezclándolas primero con la albúmina de huevo (Ejemplo 9B).
Mediante el equipo de estiramiento, se formaron
láminas de 1 mm con la mezcla.
Las láminas se calentaron a 80ºC en un horno
ventilado o túnel. Se formaron capas con las láminas, se enrollaron
con la forma de un ``rollo suizo'' y se congeló el rollo a -20ºC
empleando dióxido de carbono líquido.
Se repitió el mismo procedimiento sustituyendo la
albúmina de huevo por 1 kg de pectina (Ejemplo 9C).
Ejemplos 10A a
D
Se añadieron aditivos colorantes y productos para
potenciar el sabor (especias, verduras y cebollas) a la biomasa de
los Ejemplos 8A y 8B. A continuación, se homogeneizó la mezcla en
un amasador y a partir de la mezcla homogeneizada se formaron
hamburguesas, se pasteurizaron y se empaquetaron. Se repitieron
ambos procedimientos mezclando primero la albúmina de huevo con
agentes potenciadores del sabor.
Ejemplos 11A a
D
Se añadieron aditivos colorantes, especias y
verduras (cebollas) a la biomasa de los Ejemplos 8A y B. Se
homogeneizó la mezcla en un amasador. Se extruyó la mezcla
homogeneizada en un tubo continuo (con objeto de formar el interior
de las salchichas) al tiempo que se produjo la
co-extrusión de un material formador de piel
(vegetal) utilizando un sistema continuo para preparar salchichas
(Store). Se repitieron los dos procedimientos mezclando primero la
albúmina de huevo con los aditivos colorantes y las especias.
Ejemplos 12A y
B
Se molió y desmenuzó la torta de filtración del
Ejemplo 8A en porciones de aproximadamente 25 kg mediante un
mezclador de alto corte Lödige durante 5 minutos. Se añadió 1 kg de
albúmina de huevo a la torta desmenuzada y se amasó la mezcla. Se
extruyó la mezcla amasada con un dispositivo de extrusión de
hélices con una hilera para estirar con orificios de 1 mm. La
fracción extruida se transportó mediante una cinta y se secó en un
desecador de lecho fluidizado (temperatura de aire de 50ºC) para
formar gránulos. Para el Ejemplo 12B, se utilizó pectina en vez de
albúmina en la misma cantidad.
Ejemplos 13A a
D
Se mezcló un lote de 25 kg de la fracción
extruida de cada uno de los Ejemplos 12A y B con 60 kg de agua del
grifo. Se añadieron a esta mezcla los aditivos utilizados en el
Ejemplo 10 (tanto con albúmina como sin ella), se amasó la mezcla y
se formaron hamburguesas, se pasteurizaron, se empaquetaron y se
congelaron.
Ejemplos 14A a
D
Se mezcló un lote de 25 kg de la fracción
extruida de cada uno de los Ejemplos 12A y B con 60 kg de agua del
grifo. Se añadieron a esta mezcla los aditivos utilizados en el
Ejemplo 11 (tanto con albúmina como sin ella) y se formaron
salchichas a partir de la mezcla como se ha descrito en el Ejemplo
11.
Ejemplos 15A a
B
Se añadieron aditivos colorantes y productos para
potenciar el sabor (especias, verduras y cebollas) a 25 kg de
biomasa de cada uno de los Ejemplos 8A y 8B. Se añadió 1 kg de
fibras vegetales (fibras de celulosa con una longitud media de
fibra de 300-1000 \mum) a la mezcla y se
homogeneizó en un amasador. Se formaron hamburguesas a partir de la
mezcla homogeneizada, se empaquetaron, se pasteurizaron y se
congelaron.
Ejemplos 16A a
B
Se añadieron aditivos colorantes, especias,
verduras y cebollas a la biomasa (25 kg) de cada uno de los
Ejemplos 8A y B. Se añadió 1 kg de fibras vegetales (fibras de
celulosa de una longitud media de fibra de 300-1000
\mum) a la mezcla resultante y se homogeneizó en un amasador. Se
extruyó la mezcla homogeneizada para formar salchichas mediante la
co-extrusión con una piel vegetal como se ha
descrito en el Ejemplo 11.
\newpage
Ejemplos 17A a
B
Se molió y desmenuzó la torta de filtración de
los Ejemplos 8A y B en porciones de aproximadamente 25 kg mediante
un mezclador de alto corte Lödige durante 5 minutos. Se añadió una
mezcla de 1 kg de albúmina de huevo y 1 kg de fibras vegetales
(fibras de celulosa con un longitud media de fibra de
300-1000 \mum) a la mezcla desmenuzada. Se amasó
la mezcla y a continuación se extruyó en un dispositivo de
extrusión de hélices con una hilera para estirar con orificios de 1
mm. La fracción extruida se transportó con una cinta y se secó en
un desecador de lecho fluidizado (temperatura de aire de 65 a 80ºC),
para formar gránulos. A continuación, éstos se añadieron a una sopa
y se secaron para formar sopa en polvo (que por rehidratación forma
sopa).
Ejemplos 18A a
B
Se mezcló un lote de 25 kg de la fracción
extruida seca de los Ejemplos 17A y B con 60 kg de agua del grifo.
Se añadieron a la mezcla los aditivos descritos en el Ejemplo 15,
se amasó la mezcla y se utilizó para preparar hamburguesas como se
ha descrito en el Ejemplo 15.
Ejemplos 19A a
B
Se mezcló un lote de 25 kg de la fracción
extruida seca de los Ejemplos 17A y B con 60 kg de agua del grifo.
Se añadieron a la mezcla los ingredientes descritos en el Ejemplo
16, se amasó la mezcla y se utilizó para formar salchichas como se
ha descrito en el Ejemplo 16.
Ejemplos 20 a 35 y Ejemplos Comparativos 36 a
38
Se preparó una masa mezclando y cortando la
biomasa preparada en los Ejemplos 4 y 5 en un procesador de
alimentos a escala de laboratorio (Braun Combi de tipo 700). Se
añadieron agua y diferentes ingredientes comestibles (en las
cantidades dadas anteriormente) y se mezclaron con la biomasa en el
procesador de alimentos. Se colocó la masa en moldes (empanadas o
hamburguesas) o se utilizó para rellenar tripas (salchichas).
Se calentaron las masas con forma a 80ºC
(temperatura interna de la masa) tanto por vaporización
(empanadas), cocción en un baño de agua (salchichas) o fritura
(mini-hamburguesas). A continuación se enfriaron los
productos a 4-7ºC durante 2 horas y se mantuvieron
durante 1 semana en un congelador a -20ºC.
Se prepararon las siguientes formulaciones de
masa (los datos están en gramos).
| Ingrediente | Empanadas | Mini-hamburguesa | Salchicha |
| Biomasa (25% de peso seco, 75% de | |||
| agua)* | 53 | 53 | 53 |
| Agua* | 35 | 35 | 35 |
| Proteína de suero lácteo | 2,0 | 2,0 | |
| Albúmina de huevo | 6 | 2,0 | 2,0 |
| Almidón de patata | 1,0 | 0,5 | |
| Extracto de malta | 0,5 | 0,2 | |
| Dextrosa | 0,4 | 0,5 | |
| Aromatizante de ternera | 1,0 | 0,5 | |
| Aromatizante de cerdo | 0,5 |
TABLA 8
(continuación)
| Ingrediente | Empanadas | Mini-hamburguesa | Salchicha |
| Aromatizantes (mezcla de pimienta negra, | |||
| nuez moscada, cilantro y ajo en polvo | 0,5 | ||
| Aceite de soja | 4,55 | 4,55 | 5,3 |
| Pectina | 0,55 | ||
| Aromatizante de pollo | 1 |
*Nota: la cantidad de agua en la biomasa obtenida
de las diferentes fermentaciones varió de tal forma que la relación
de materia seca: agua se ajustó de forma que en todos los casos
estuvieran presentes 13-14 g de biomasa seca y
\hbox{39-40 g} de
agua.
En algunos casos se añadió pectina extra:
- Empanadas: Mortierella, 1,5 g por cada 101 g de masa;
- Salchichas: Mortierella, 1,5 g por cada 101 g de masa; y
- Hamburguesas: Mortierella, 2,5 g por cada 102 g de masa.
Se apreciaron varias propiedades físicas que se
muestran en las Tablas 9 a 11. Se utilizaron los productos
alimenticios de Rhizopus oryzae como valores de referencia
(por eso los valores son cero) y se establecieron comparaciones
para los otros productos alimenticios (+ significa más, - significa
menos). En cuanto a la granulometría, + significa más granular (es
decir menos fibroso).
Ejemplos 20 a
25
| Biomasa | Color de la | Masa | Estructura: | Jugosidad | Firmeza |
| Empanada | granulometría | ||||
| Rhizopus oryzae | Crema/marrón claro | Firme | 0 | 0 | 0 |
| Mortierella alpina | Marrón claro | Húmeda | + + + | + + | - - |
| Absidia | |||||
| Pseudocylindrospora | Gris oscuro | Húmeda | + + + | + + | - - |
| Gilbertella persicaria | Marrón claro | Firme | + + | + | + |
| Gilbertella persicaria | Marrón claro | Firme | + + | + | - |
\newpage
Ejemplos 26 a
30
| Biomasa | Color de la | Masa de | Estructura: | Jugosidad | Firmeza |
| salchicha | la salchicha | granulometría | |||
| Rhizopus oryzae | Crema/marrón claro | Firme | 0 | 0 | 0 |
| Mortierella alpina | Marrón claro | Húmeda | + + + | + + | - - - |
| Absidia | |||||
| Pseudocylindrospora | Gris oscuro | Húmeda | + + + | + + | - - |
| Gilbertella persicaria | Marrón claro | Firme | + | + | + |
| Gilbertella persicaria | Marrón claro | Firme | + | + | + |
Ejemplos 31 a
35
| Biomasa | Color de la | Masa | Estructura: | Jugosidad | Firmeza |
| mini-hamburguesa | granulometría | ||||
| Rhizopus oryzae | Crema/marrón claro | Firme | 0 | 0 | 0 |
| Mortierella alpina | Marrón claro | Húmeda | + + + | + + | - - |
| Absidia | |||||
| Pseudocylindrospora | Gris oscuro | Húmeda | + + + | + + | - - |
| Gilbertella persicaria | Marrón claro | Firme | + + | + | + |
| Gilbertella persicaria | Marrón claro | Firme | + + | + | - |
Como resulta aparente, pueden prepararse
diferentes productos alimenticios con distintas texturas utilizando
distintos organismos del grupo Mucorales. A modo de
comparación, se prepararon empanadas, salchichas y
mini-hamburguesas (Ejemplos 36 a 38) utilizando la
misma receta anterior pero empleando biomasa de Fusarium
graminearum. Los tres productos fueron de color negro.
Claims (16)
1. Un procedimiento para la preparación de
una sustancia proteínica comestible, apropiada para su utilización
en un producto alimenticio, que comprende células fúngicas,
comprendiendo dicho procedimiento:
- a.
- fermentar células fúngicas del orden Mucorales en un líquido acuoso contenido en un recipiente fermentador, comprendiendo el líquido una fuente de nitrógeno (N) asimilable y un fuente de carbono (C) asimilable, y mezclar el líquido y las células durante la fermentación;
- b.
- reducir el contenido de RNA de las células fúngicas por debajo de 4,0% en peso (%p);
- c.
- antes o después de (b), retirar al menos parte del agua de la mezcla de células fúngicas y líquido acuoso, y
- d.
- procesar las células fúngicas para obtener una sustancia comestible.
2. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que el líquido y el fermentador están
desprovistos de un sustrato insoluble (para las células).
3. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 1 ó 2, en el que las células fúngicas constituyen al
menos 60% de la sustancia proteínica (en base de materia seca) o
las células fúngicas constituyen al menos 70% de la sustancia.
4. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que las
células fúngicas son del género Rhizopus o
Gilbertella.
5. Una sustancia proteínica comestible,
apropiada para ser utilizada en un producto alimenticio, que
comprende células fúngicas del orden Mucorales que tienen
un contenido de RNA inferior a 4,0% en peso.
6. Una sustancia comestible de acuerdo con la
reivindicación 5, que puede producirse mediante un procedimiento de
acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4.
7. Una sustancia comestible de acuerdo con la
reivindicación 5 ó 6, que es biomasa o torta de filtración
(opcionalmente molida y/o desmenuzada).
8. Un procedimiento para la preparación de un
producto texturizado comestible, que comprende mezclar uno o más
componente(s) comestibles con una sustancia proteínica
comestible que comprende células fúngicas del orden
Mucorales que tienen un contenido de RNA inferior a 4,0% y
texturizar mecánicamente la mezcla.
9. Un procedimiento para la preparación de un
producto texturizado comestible, que comprende mezclar uno o más
componente(s) comestibles con una sustancia proteínica
comestible que comprende células fúngicas del orden
Mucorales que tienen un contenido de RNA inferior a 4,0% en
peso y texturizar para formar un producto, en el que al menos el 5%
son células fúngicas (en peso de materia seca).
10. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 8 ó 9, en el que la sustancia proteínica es según la
reivindicación 5 ó 6 o se prepara mediante un proceso de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4.
11. Un producto texturizado comestible, apropiado
para ser utilizado en un producto alimenticio, en el que al menos
40% en peso son células fúngicas del orden Mucorales (en
peso de materia seca) que tienen un contenido de RNA inferior a
4,0%.
12. Un producto de acuerdo con la reivindicación
11, que comprende pellets, gránulos, una lámina, o es un producto
de extrusión, masa, rollo, pasta o trozo similar a la carne.
13. Un producto texturizado de acuerdo con la
reivindicación 11 ó 12, que puede producirse mediante un
procedimiento de acuerdo con una de las reivindicaciones 8 a
10.
14. Un procedimiento para la preparación de un
producto alimenticio que comprende formar un producto alimenticio,
o incluir en un producto alimenticio ya existente, una sustancia
comestible de acuerdo con las reivindicaciones 5 a 7 o un producto
texturizado de acuerdo con la reivindicación 11, 12 ó 13.
15. Un producto alimenticio que comprende bien
una sustancia proteínica de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 5 a 7 o bien un producto comestible de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 11 a 13 o se puede
producir mediante un procedimiento de acuerdo con la reivindicación
14.
\newpage
16. Un producto alimenticio de acuerdo con la
reivindicación 15, que es una salchicha, empanada, hamburguesa,
productos para untar, paté, pienso, comprimido, pastel, aperitivos
salados o comida para preparar en el horno.
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