ES2207638T3 - Derivados de guanina 06-substituida, un procedimiento para su preparacio y su utilizacion en el tratamiento de celulas tumorales. - Google Patents

Derivados de guanina 06-substituida, un procedimiento para su preparacio y su utilizacion en el tratamiento de celulas tumorales.

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ES2207638T3
ES2207638T3 ES94916373T ES94916373T ES2207638T3 ES 2207638 T3 ES2207638 T3 ES 2207638T3 ES 94916373 T ES94916373 T ES 94916373T ES 94916373 T ES94916373 T ES 94916373T ES 2207638 T3 ES2207638 T3 ES 2207638T3
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Thomas Brian Hamilton Mcmurry
Robert Stanley Mcelhinney
Joan Elizabeth Mccormick
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Abstract

DERIVADOS DE O 6 -HETARILALKILO- O NAFTILALKILGUANINA DE FORMULA (I) EN DONDE Y ES H, RIBOSILO, DEOXIRIBOSILO, O R''''XCHR'''''', EN DONDE X ES O O S, R'''' Y R'''''' SON ALKILO, O DERIVADOS SUSTITUIDOS DEL MISMO; R'' ES H, O ALKILO O HIDROXIALKILO; R ES (I) UN GRUPO CICLICO QUE TIENE AL MENOS UN ANILLO HETEROCICLICO DE 5 O 6 ELEMENTOS, OPCIONALMENTE CON UN ANILLO CARBOCICLICO O HETEROCICLICO UNIDO AL MISMO, CADA ANILLO HETEROCICLICO TENIENDO AL MENOS UN ATOMO ELEGIDO DE O, N O S, O UN DERIVADO SUSTITUIDO DEL MISMO; O (II) NAFTILO O UN DERIVADO SUSTITUIDO DEL MISMO; Y SALES FARMACEUTICAMENTE ACEPTABLES DEL MISMO, MUESTRAN LA CAPACIDAD DE REDUCIR LA ACTIVIDAD DE ALKILTRANSFERASA (ATASA) O{SUP,6}-ALKILGUANINA. SE DESCRIBE UN PROCESO PARA LA PREPARACION DE LOS COMPUESTOS. LOS COMPUESTOS TIENEN UTILIDAD EN COMBINACION CON AGENTES DE ALKILACION EN EL TRATAMIENTO QUIMIOTERAPEUTICO DE CELULAS TUMORALES.

Description

Derivados de la guanina O^{6}-substituida, un procedimiento para su reparación y su utilización en el tratamiento de células tumorales.
Campo técnico
La presente invención se refiere a derivados de la guanina substituidos en O^{6}, un procedimiento para su preparación y su utilización en el tratamiento de células tumorales. En particular, se refiere a derivados de guanina con substituyentes hetarilalquilos o naftilalquilos en la posición O^{6}, teniendo estos compuestos la capacidad de reducir la actividad O^{6}-alquilguanina-ADN alquiltransferasa (ATasa) en las células tumorales.
Antecedentes de la técnica
Se ha sugerido el empleo de derivados de alquil guanina substituidos en O^{6} con actividad reductora de la O^{6}-alquilguanina-ADN alquiltransferasa, con el fin de potenciar la efectividad de los agentes alquilantes quimioterapéuticos empleados para aniquilar células tumorales. Existe una evidencia creciente de que en las células de mamíferos los efectos tóxicos y mutagénicos de los agentes alquilantes son en gran medida una consecuencia de la alquilación en la posición O^{6} de la guanina del ADN. La reparación de la O^{6}-alquilguanina está mediada por la ATasa, una proteína de reparación que actúa sobre los residuos de guanina alquilada en O^{6} mediante la transferencia estequiométrica del grupo alquilo a un residuo de cisteína en el sitio activo de la proteína de reparación en un procedimiento de autoinactivación. La importancia de la ATasa en la protección de las células contra los efectos biológicos de los agentes alquilantes ha sido demostrado claramente al máximo mediante la transferencia y expresión de genes de ATasa clonados ó ADNc en células deficitarias de ATasa: esto confiere resistencia a una variedad de agentes, principalmente aquellos que metilan o cloroetilan el ADN. Mientras el mecanismo de aniquilación celular mediante la O^{6}-metilguanina en células deficitarias de ATasa no está todavía claro, el aniquilamiento mediante la O^{6}-cloroetilguanina tiene lugar a través de la formación reticular entre las cadenas de ADN en un residuo de citosina en la cadena opuesta por medio de un intermediario de etanoguanina cíclica, un proceso que es impedido por la eliminación del grupo cloroetilo mediada por ATasa, o por la formación de un complejo.
El empleo de la O^{6}-metilguanina y la O^{6}-n-butilguanina para reducir la actividad de la ATasa ha sido investigado (Dolan y col., Cancer Res., (1986) 46, pp. 4500; Dolan y col., Cancer Chemother. Pharmacol., (1989) 25, pp 103. Los derivados de la O^{6}-bencilguanina han sido propuestos para disminuir la actividad de la ATasa con el fin de convertir las células que expresan la ATasa más susceptibles a los efectos citotóxicos de los agentes cloroetilantes (Moschel y col., J. Med. Chem., 1992, 35, 4486). La patente U.S. 5 091 430 y la solicitud de patente internacional nº WO 91/13898 de Mosche y col., describen un método para reducir los niveles de O^{6}-alquilguanina-ADN alquiltransferasa en las células tumorales en un anfitrión, el cual método comprende la administración al anfitrión de una cantidad efectiva de una composición que contiene derivados de O^{6}-bencilados de guanina de la siguiente formula:
1
en donde Z es hidrógeno, o
2
y R^{a} es un grupo bencilo o un grupo bencilo substituido. Un grupo bencilo puede estar substituido en la posición orto, meta o para con un grupo substituyente como p. ej., halógeno, nitro, arilo, tal como fenilo o fenilo substituido, alquilo de 1 a 4 átomos de carbono, alcoxilo de 1 a 4 átomos de carbono, alquenilo de hasta 4 átomos de carbono, alquinilo de hasta 4 átomos de carbono, amino, monoalquilamino, dialquilamino, trifluormetilo, hidroxilo, hidroximetilo, y SO_{n}R^{b} en donde n es 0, 1, 2 ó 3, y R^{b} es hidrógeno, alquilo de 1 a 4 átomos de carbono o arilo. Mi-Young Chae y col., J. Med. Chem., 1994, 37, 342-347 -publicado después de la fecha de prioridad de la presente solicitud- describe ensayos sobre análogos de O^{6}-bencilguanina llevando grupos substituyentes crecientemente voluminosos sobre el anillo de benceno en la posición 9. El compuesto nº 6 descrito allí es el O^{6}-(2-piridilmetil)guanina, la cual en esta solicitud recibe el nombre de O^{6}-(2-picolil) guanina. Sin embargo, en los resultados y descripción en las páginas 342-343 del documento de Chae y col., el compuesto nº 6 no es destacado como de interés pero se le agrupa entre los "compuestos que permanecen" los cuales "presentan una actividad intermedia" (página 343 líneas 12-15 del texto). Los autores confirman sus primeras observaciones (J. Med. Chem., 1992, 35 4486) de que solamente los substituyentes alilo o bencilo en la posición O^{6} de la guanina inactivaron la ATasa eficientemente (página 343 líneas 21-23 del texto).
La O^{6}-bencilguanina tiene limitaciones en su empleo como inactivador de la ATasa. Es más estable de lo que sería deseable, dando como resultado un tiempo de larga supervivencia en el animal al cual ha sido administrada. Tiene un nivel de potencial toxicidad tanto sola como en combinación con agentes cloroetilantes lo cual es también indeseable y lo cual puede relacionarse con el tiempo de supervivencia.
Los compuestos de la presente solicitud presentan diferentes características de inactivación de la ATasa por la O^{6}-bencilguanina, y en algunos casos la actividad es hasta 8 veces mayor que la de la O^{6}-bencilguanina. Se han observado también diferentes semi-vidas y características de toxicidad. Por lo tanto, es un objeto de la presente invención el proporcionar nuevos compuestos útiles para la reducción de la actividad de la ATasa con el fin de potenciar los efectos de los agentes quimioterapéuticos tales como los agentes cloroetilantes o metilantes antitumorales.
Otro aspecto de la invención es el de proporcionar composiciones farmacéuticas que contienen compuestos que son útiles para reducir la actividad de la ATasa. Otro objeto de la presente invención es el de proporcionar un método para la reducción de la actividad de la ATasa en las células tumorales en un anfitrión.
Descripción de la invención
En consecuencia, la presente invención proporciona derivados de guanina O^{6}-substituidos, de fórmula I:
3
en donde
Y es H, ribosil, desoxirribosil, ó R''XCHR''', en donde X es O ó S, R'' y R''' son alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o derivados substituidos de los mismos que tienen una substitución con uno o más hidroxilo, alcoxilo de 1 a 20 átomos de carbono, amino, alquilamino de 1 a 20 átomos de carbono, amido o ureido.
R' es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono;
R es:
(i) un grupo cíclico que tiene por lo menos un anillo heterocíclico de 5 ó 6 miembros, opcionalmente con un anillo carbocíclico o heterocíclico fusionado con el mismo, el cual o cada anillo heterocíclico tiene por lo menos un heteroátomo escogido entre O, N ó S, ó un derivado substituido del mismo que tiene una substitución en el (los) anillo(s) heterocíclico(s) y/o el (los) anillo(s) carbocíclico(s) mediante uno o más alquilos de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''' en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n = 0, 1 ó 2, ó un grupo carboxilo o grupo éster de fórmula -COOR^{5} en donde R^{5} es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono; ó
(ii) naftilo o un derivado substituido del mismo que tiene la substitución con uno o más de un alquilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''', en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n=0, 1 ó 2, ó un grupo carboxilo o éster de fórmula -COOR^{5} en donde R^{5} es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono;
y las sales farmacéuticamente aceptables de los mismos.
La presente invención proporciona además derivados de O^{6}-alquilguanina de fórmula 1:
4
en donde:
Y es H, ribosil, desoxirribosil, ó R''XCHR''',
en donde X es O ó S, R" y R"' son alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o derivados substituidos de los mismos que tienen una substitución con uno o más hidroxilo, alcoxilo de 1 a 20 átomos de carbono, amino, alquilamino de 1 a 20 átomos de carbono, amido o ureido.
R' es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono;
R es:
(i) un grupo cíclico que tiene por lo menos un anillo heterocíclico de 5 ó 6 miembros, opcionalmente con un anillo carbocíclico o heterocíclico fusionado con el mismo, el o cada anillo heterocíclico con por lo menos un heteroátomo escogido entre O, N ó S, ó un derivado substituido del mismo que tiene una substitución en el (los) anillo(s) heterocíclico(s) y/o el (los) anillo(s) carbocíclico(s) mediante uno o más alquilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''' en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n = 0, 1 ó 2, ó
(ii) naftilo o un derivado substituido del mismo teniendo la substitución con uno o más alquilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''', en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n=0, 1 ó 2,
y las sales farmacéuticamente aceptables de los mismos.
R puede ser convenientemente un anillo heterocíclico de 5 ó 6 miembros o un benzo derivado del mismo, en cuyo caso el grupo O^{6}-alquil guanina puede estar unido a R, bien en el anillo heterocíclico o bien en el anillo de benceno.
En versiones preferidas, R es un anillo de 5 miembros que contiene S ó O, con o sin un segundo anillo fusionado al mismo.
De preferencia, R es un anillo heterocíclico que tiene por lo menos un átomo de S, con más preferencia, R es un anillo heterocíclico de 5 miembros que tiene por lo menos un átomo de S; y con mayor preferencia, R es un anillo de tiofeno o un derivado substituido del mismo.
Alternativamente, R puede ser un anillo heterocíclico que tiene por lo menos un átomo de O, en particular, un anillo heterocíclico de 5 miembros que tiene por lo menos un átomo de O y más particularmente R puede ser un anillo de furano o un derivado substituido del mismo.
Como otra alternativa, R puede ser un anillo heterocíclico que tiene por lo menos un átomo de N, particularmente R puede ser un anillo heterocíclico de 6 miembros que tiene por lo menos un átomo de N y en particular R puede ser un anillo de piridina.
En la definición de R, los substituyentes preferidos son: halo, haloalquilo, ciano, SO_{n}R'''', en donde R'''' es alquilo y n=0, 1 ó 2, y un grupo éster de fórmula -COOR^{5} en donde R^{5} es alquilo.
Un grupo alquilo, alquenilo o alquinilo contiene de preferencia de 1 a 10 átomos de carbono y con más preferencia de 1 a 5 átomos de carbono. Halo incluye yodo, bromo, cloro o flúor.
Ejemplos de compuestos de la invención (juntamente con compuestos B.4214 y B.4218 no comprendidos por la presente solicitud), se muestran en la tabla 1.
TABLA 1
5
6
7
8
9
10
11
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13
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15
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18
19
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21
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33
34
35
De los compuestos de la tabla 1, los compuestos B.4214 y B.4218 no son compuestos de la invención. El compuesto B.4210 (es decir, el compuesto de fórmula 1 en el cual R es 2-piridilo, R^{1} es H e Y es H) no es un compuesto preferido de la invención.
Los compuestos particularmente preferidos de la invención incluyen:
B.4205 O^{6}-tienilguanina
B.4206 O^{6}-(3-tienilmetil)guanina
B.4212 O^{6}-piperonilguanina
B.4226 O^{6}-(2-benzo[b]tienilmetil)guanina
B.4266 O^{6}-(2-benzofuranilmetil)guanina
B.4275 O^{6}-(5-tiazolilmetil)guanina,
y los compuestos substituidos en el anillo heterocíclico de R con un grupo halo, ciano o éster, incluyendo
B.4229 O^{6}-(5-metoxicarbonilfurfuril)guanina
B.4269 O^{6}-(5-bromotenil)guanina
B.4273 O^{6}-(5-cianofurfuril)guanina.
Otros compuestos preferidos incluyen
B.4209 O^{6}-(3-furilmetil)guanina
B.4276 O^{6}-(2-benzo[b]tienilmetil)guanosina
B.4277 O^{6}-(4-picolil)guanina
Los compuestos más preferidos de la invención son aquellos que inactivan la Atasa in vitro y/o en células de mamíferos y/o tumores de xenoinjertos más efectivamente que la O^{6}-bencilguanina (BeG) y que sensibilizan las células de mamíferos y/o tumores de xenoinjertos para los efectos aniquiladores o inhibidores del crecimiento, de las nitrosoureas y o agentes metilantes, más efectivamente que la BeG. Los compuestos preferidos deben también tener en comparación con la BeG, una reducida toxicidad para los tejidos normales y/o a todo el organismo cuando se emplean en combinación con dichos agentes. Los compuestos preferidos no deben ser por sí mismos tóxicos o mostrar más que una mínima toxicidad a las dosis requeridas para inactivar la ATasa, ni cualquier producto de hidrólisis de un compuesto preferido químicamente inestable debe ser tóxico. Aunque la invención no está limitada a ninguna teoría, los compuestos preferidos pueden necesitar ser menos estables que la BeG de forma que experimentan una degradación química espontánea poco tiempo después de lograr la máxima inactivación de la ATasa: de esta forma cualquier acción de procesos metabólicos que podrían actuar sobre el agente para generar especies tóxicas sería minimizado. Los compuestos preferidos deben ser menos capaces de sensibilizar la médula espinal humana u otros tipos de células normales a los efectos tóxicos de los agentes alquilantes de forma que no exacerben la toxicidad conocida o generen nuevas toxicidades de estos agentes, en tejidos humanos normales.
Compuestos preferidos de la invención incluyen aquellos que tienen un valor I_{50} relativamente bajo en la Tabla 4 adjunta (p. ej., debajo de 1,0 \muM, más particularmente debajo de 0,04 \muM) y/o que tienen una semivida relativamente corta en tampón I (representando las condiciones para un ensayo in vitro) y/o solución salina tamponada con fosfato (PBS) (representando las condiciones en un medio fisiológico) en la Tabla 4 adjunta (p. ej., menos de 20 horas en tampón 1 ó menos de 16 horas en PBS).
Una semivida relativamente corta puede considerarse como un indicador de que un compuesto de la invención sería menos estable que la O^{6}-bencilguanina debido a la reactividad de RR'CH- y tendería a disociarse por hidrólisis en un medio fisiológico.
La influencia del grupo RR'CH- en los compuestos de fórmula I permitiéndoles actuar como inhibidores de la ATasa, se determina mediante factores electrónicos, estéricos y fisicoquímicos. Los factores estéricos pueden relacionarse con la naturaleza del entorno del sitio receptor de la cisteína en la ATasa. De preferencia R' es H. Un carbono secundario unido al O^{6} (como en los compuestos DL, B.4214 ó B.4217) se ha encontrado que reduce en gran manera la actividad inactivadora, probablemente debido al volumen del substituyente.
De preferencia, el grupo cíclico en R no tiene un grupo metilo en la posición vecina (como en B.4222) aunque la influencia de la substitución vecina es evidentemente mucho menor cuando R es heterocíclico que en los isómeros de naftilo B.4213 y B.4265.
Factores fisicoquímicos tales como la estabilidad, solubilidad y reparto en agua/lípido, son importantes para la selección de compuestos para emplear in vivo y afectan a la formulación, absorción y transporte, por ejemplo. La selección de compuestos puede también ser influenciada por su distribución diferencial en diferentes tejidos.
Una versión de la invención proporciona una composición farmacéutica que contiene compuestos de fórmula I, en donde Y, R y R' son como se ha definido más arriba, o una sal farmacéuticamente aceptable de los mismos, y un excipiente farmacéuticamente aceptable. Opcionalmente la composición puede también contener un agente alquilante tal como un agente cloroetilante o metilante.
En otra versión, la presente invención proporciona un método para reducir la actividad de ATasa en un anfitrión, el cual método comprende la administración al anfitrión de una cantidad efectiva de una composición que contiene un compuesto de fórmula I en donde Y, R y R' son como se ha definido más arriba, o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo, más particularmente una composición farmacéutica como se ha definido más arriba. Este método puede alternativamente definirse como un método de reducir la actividad reparadora del ADN inducida por ATasa, en un anfitrión.
La invención proporciona además un método para el tratamiento de células tumorales en un anfitrión que comprende la administración al anfitrión de una cantidad efectiva de una composición que contiene un compuesto de fórmula I, en donde Y, R y R' son como se ha definido más arriba o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo, más particularmente una composición farmacéutica como se ha definido más arriba, y administrando al anfitrión una cantidad efectiva de una composición que contiene un agente alquilante. El método puede emplearse para el tratamiento de neoplasmas incluyendo aquellos que son conocidos por ser sensibles a la acción de un agente alquilante, p. ej., el melanoma y glioma y otros cuya resistencia al tratamiento con agentes alquilantes sólo puede ser vencida mediante el empleo de un inactivador de acuerdo con la invención.
La invención proporciona también un procedimiento para la preparación de compuestos de fórmula I, el cual comprende los pasos de: reacción del hidruro de sodio con una solución de RR'CHOH (en donde R y R' son como se ha definido más arriba) en un disolvente orgánico, de preferencia a temperatura ambiente o por debajo de ella; adición de cloruro de 2-amino-N,N,N-trimetil-1H-purin-6-aminio ó 2-amino-6-cloropurina ribosido; tratamiento de la mezcla de reacción con un ácido débil y éter; y extracción del producto deseado.
Breve descripción de los dibujos
La invención se describe a continuación en detalle, con referencia a los dibujos adjuntos, en los cuales:
La figura 1 es una gráfica del porcentaje residual de actividad de la ATasa humana recombinante purificada, después de la incubación con diferentes concentraciones de varios inactivadores. Cada punto muestra la media de 3 mediciones. La línea del 50% de actividad residual se emplea para el cálculo de los valores I_{50}, es decir la concentración de inactivador necesaria para producir una reducción del 50% de la actividad ATasa.
La figura 2 son dos gráficas del porcentaje del crecimiento celular contra la concentración de agente alquilante (\mug/ml) mostrando el efecto de sensibilización de la O^{6}-bencilguanina (BeG) y O^{6}-fenilguanina (B.4205) en dos diferentes concentraciones (0,1 y 1,0 \muM) en la sensibilización de células Raji al BCNU. La línea al 90% de crecimiento se emplea para el cálculo de los valores de D_{90}, es decir la dosis de BCNU a la cual el crecimiento fue del 90% comparado a los controles sin tratar, es decir, el 10% de inhibición al crecimiento.
La figura 3 son cuatro gráficos de porcentajes de crecimiento celular, contra la concentración del agente alquilante (\muM), mostrando el efecto de BeG y B.4205 a cuatro diferentes concentraciones (0,1, 0,5, 1,0 y 5,0 \muM) en la sensibilización de células Raji a la temozolomida.
La figura 4 es una gráfica extrapolada de la figura 3 de los valores para D_{50} (\muM) (es decir, la dosis de temozolomida a la cual el crecimiento fue del 50% comparado con controles sin tratar) contra la concentración del inactivador (\muM).
La figura 5 son dos gráficas del porcentaje de crecimiento celular contra la concentración del inactivador, mostrando el efecto inhibidor del crecimiento de la O^{6}-furfurilguanina (B.4203) y B.4205 en células de hamster chinos V79 (RJKO) y una sublínea de la misma (+120).
La figura 6 son dos gráficas del porcentaje de crecimiento celular contra la concentración del inactivador, mostrando el efecto de inhibición del crecimiento de B.4203 y B.4205 en dos subclones de Xeroderma pigmentosum.
La figura 7 son cuatro gráficas de porcentaje de crecimiento celular contra la concentración del inactivador (\muM) mostrando el efecto de los productos de degradación de los inactivadores B.4203, B.4205, B.4212 (O^{6}-piperonil-guanina) y B.4226 (O^{6}-[2-benzo(b)tienilmetil)guanina) en el crecimiento de células Raji.
La figura 8 es un diagrama de la actividad ATasa (fm/mg) contra el tiempo (horas) que muestra la reducción de la actividad ATasa en xenoinjertos A375 en ratones inmunodeprimidos para controles sin tratar, controles tratados con aceite de maíz y extractos tratados con BeG (30 mg/kg) y B.4205 (30 mg/kg).
Las figuras 9-13 son gráficas de resultados de estudios con xenoinjertos. En cada figura la gráfica superior muestra el porcentaje de volumen tumoral contra el tiempo (días) para los xenoinjertos tumorales A375 en ratones inmunodeprimidos tratados con BCNU solo, con BeG en combinación con BCNU, y B.4205 en combinación con BCNU. La gráfica inferior de cada figura muestra el número de ratones supervivientes en cada grupo de tratamiento contra el tiempo (días) después del tratamiento ilustrado en la gráfica superior.
Los datos para cada figura son como sigue:
Figura Ratones Concentración de BCNU (mg/kg) Inactivador (mg/kg)
9 ASU Aprox. 15 60
10 ASU 25 60
11 OLAC 10 30
12 ASU 16 60
13 ASU 16 60
La figura 14 son 3 gráficas de porcentaje de supervivencia contra la concentración de temozolomida (\muM), que nuestra la supervivencia de células de médula ósea después del tratamiento con inactivador (10 \muM) ó DMSO (control) en combinación con dosis crecientes de temozolomida.
Modalidades para la ejecución de la invención
Los derivados de la O^{6}-hetarilalquilguanina que tienen característica inactivadoras de la ATasa, pueden sintetizarse adaptando la preparación estándar que se describe a continuación como apropiada.
Se prepara el cloruro de 2-amino-N,N,N-trimetil-1H-purin-6-aminio, de acuerdo con el procedimiento descrito por Kiburis y col., J. Chem. Soc. (C), 1971, 3942. Detalles y condiciones para la reacción de esta sal cuaternaria con bencilóxido de sodio (para dar O^{6}-bencil-guanina) no descritos en MacCoss, Chen y Tolman, Tetrahedron Lett., 1985, 26, 1815, fueron dados por MacCoss, Tolman, Wagner y Hannah en la solicitud de patente europea nº 184.473, pero los mismos no fueron adecuados para la preparación de análogos relativamente sensibles y los inventores idearon la preparación estándar que figura a continuación.
Preparación estándar de las O^{6}-hetarilalquilguaninas (Fórmula I, y = H)
Se añade hidruro de sodio (60% en aceite; 0,8 g, 20 mmoles) a una solución de RR'CHOH (56 mmoles, aproximadamente 5 ml) en DMSO (5 ml) y la mezcla se agita a temperatura ambiente durante 1 hora. Para alcoholes sólidos o de alto peso molecular, se emplean hasta 10 ml de DMSO en lugar de 5 ml. Se añade cloruro de 2-amino-N,N,N-trimetil-1H-purin-6-aminio (2,29 g, 10 mmoles) y se continua agitando durante 1 hora más. El cambio en el espectro UV es entonces completo (\lambda_{máx} 312 \rightarrow 284 nm) y la solución casi transparente se trata con ácido acético (1,7 ml). Después de enfriar y diluir con éter (300 ml), la mezcla se deja aparte en reposo (2 horas) y se recoge el sólido (A) formado. La trituración con agua proporciona el producto. Una segunda fracción puede obtenerse por evaporación del filtrado éter-DMSO, y trituración del residuo sucesivamente con éter y agua. Alternativamente el producto puede extraerse del sólido (A) con acetonitrilo caliente. Los compuestos recristalizados muestran por TLC una única mancha (C_{6}H_{6}-MeOH, 4:1) y se caracterizan mediante análisis y sus espectros RMN. Frecuentemente, contienen disolvente procedente de la cristalización. En la Tabla 2 figuran los puntos de fusión y datos analíticos. Los datos de UV y ^{1}H RMN vienen dados en la Tabla 3. Los espectros de RMN se midieron en instrumentos Bruker WP80 ó MSL 300.
Este procedimiento de preparación estándar (con las variaciones indicadas por símbolos en la Tabla 2) se empleó para preparar los compuestos que figuran en la relación de las Tablas 2ª y 3ª. En los compuestos B.4217 y B.4219. R' es metilo; en los restantes compuestos R' es H. La O^{6}-bencilguanina y los compuestos B.4214, B.4218 y B.4231 que figuran en la relación de la Tabla 4 a continuación fueron también preparados mediante este procedimiento de preparación estándar con fines analíticos comparativos.
Las variaciones indicadas por los símbolos en la Tabla 2 son como sigue:
a Se emplearon 5 mmoles de hidruro de sodio por mmol de sal cuaternaria en la preparación de este compuesto. Cuando se emplea la cantidad estándar (2 mmoles) puede recuperarse un 40% de sal cuaternaria después de la reacción.
b Este compuesto se prepara por hidrólisis del éster metílico B.4229 (145 mg, 0,5 mmoles) en 2-metoxietanol (2,5 ml) y agua (2,5 ml) por tratamiento con NaOH 2M (2,5 ml) durante 4 horas a temperatura ambiente. La neutralización con ácido acético (0,32 ml, 5,5 mmoles), suave evaporación, trituración con agua (3 ml) y filtración, da un sólido el cual por extracción con metanol caliente proporciona el ácido B.4234.
c Los datos necesarios se basan en el monohidrato de una mezcla de 4 partes de sal de sodio del ácido y 3 partes del ácido, que necesita 4,3% de Na. Encontrado Na, 4,44%.
d Se emplean 3 mmoles de RCH_{2}OH por mmol de sal cuaternaria en lugar de los 5,6 mmoles estándar.
e Para alcoholes que son demasiado sensibles al hidruro de sodio en DMSO a temperatura ambiente, se prepara RCH_{2}ONa en DMF (2,5 ml a -10ºC; 3 mmoles de RCH_{2}OH; 2 mmoles de hidruro de sodio). Se añade 1 mmol de sal cuaternaria después de 15-20 minutos y se continúa agitando durante 2-3 horas a temperatura ambiente
f Se extraen los productos con acetonitrilo.
Preparación de ribosidos (fórmula I, Y=ribosilo)
Se trata una solución de alcóxido preparada como en el procedimiento estándar de más arriba a partir de hidruro de sodio (60% en aceite; 120 mg, 3 mmoles) y RR'CHOH (4,6 mmoles) en DMSO anhidro (2 ml) durante 1 hora, con 2-amino-6-cloropurina ribosido (302 mg, 1 mmol) y se agita durante 5 minutos a temperatura ambiente y a continuación, 15 minutos a 60-65ºC. La reacción es entonces completa como indica el cambio del espectro UV (\lambda_{máx} 311 \rightarrow 284 nm). Enfriando y triturando con éter (100 + 15 ml) y filtrando se obtiene un sólido que se trata con agua (10 ml). El pH se ajusta de 11 a 8 pasando CO_{2} durante breve tiempo. La filtración elimina el material inorgánico y el residuo anhidro se extrae a temperatura ambiente con metanol (4 porciones de 10 ml conteniendo cada una, una gota de piridina). La evaporación de casi todo el metanol y adición de una poca cantidad de éter suministra el producto casi puro de acuerdo con el análisis TLC (C_{6}H_{6}-MeOH 4:1). Se recristaliza con metanol y trazas de piridina, disolviendo y concentrando por debajo de 40ºC, algunas veces con la adición final de un poco de éter.
Este procedimiento se empleó para preparar los compuestos que figuran en las tablas 2b y 3b. Las trazas de impurezas son difíciles de eliminar pero los espectros de RMN muestran que los nucleósidos son aproximadamente el 90% puros. Los rendimientos son del orden de 30-40%.
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Los alcoholes de partida RR'CHOH se prepararon habitualmente por reducción de los correspondientes aldehidos, a menudo disponibles comercialmente, mediante borohidruro de sodio. Un método diferente se empleó para los precursores del éster B.4229 y el nitrilo B.4273. La sucrosa se convirtió ^{1} mediante el 5-clorometilfurfural en 5-hidroxi-metilfurfural. La oxidación ^{2} de este aldehido dio el ácido carboxílico el cual se esterificó mediante el método de Bocchi y col.,^{3} dando el 5-(hidroximetil)furoato de metilo ^{4} necesario para el B.4229. La oxima ^{5} del aldehido se deshidrató mediante el método de Carotti y col., ^{6} ; el producto crudo de la reacción se trató con amoníaco acuoso concentrado en metanol antes de la extracción con diclorometano. La destilación proporcionó 5-cianofurfuril alcohol, ^{7} necesario para el B.4273.
Para el B.4266, la reacción de Vilsmeier ^{8} del benzofurano suministró el 2-aldehido, el cual se redujo al alcohol necesario ^{9} mientras que para el B.4226 la litiación y tratamiento con dimetilformamida dieron el 2-aldehido y a su vez el alcohol ^{10}.
Para el B.4274, se oxidó el tartrato de dimetilo ^{11} a glioxilato de metilo el cual reaccionó ^{12} con el isocianuro de tosilmetilo para dar el oxazol-5-carboxilato de metilo ^{13}. Este se redujo mediante hidruro de aluminio y litio mediante el método de Fallab ^{14} para dar el alcohol^{15}.
Para el B.4275, el bromomalonaldehido ^{16} y la tiourea suministraron el 2-aminotiazol-5-carboxaldehido ^{17}. La desaminación mediante el nitrilo de amilo ^{17} seguido de la reducción con borohidruro de sodio dio el 5-hidroximetiltiazol. ^{14} Para el B.4271, se preparó el 5-azapiperonil alcohol (p.f. 82-84ºC; encontrado C, 54,60; H, 4,58; N, 9,09; C_{7}H_{7}NO_{3}; exigido C, 54,90; H, 4,61; N, 9,15%), a partir del correspondiente aldehido. ^{18}
Para el B.4278, se nitró el 1-metilpirrol-2-carboxaldehido ^{19} y se redujo a alcohol ^{20} mediante borohidruro de sodio.
A título de ejemplo específico, se describe a continuación la preparación de la O^{6}-tenilguanina (B.4205):
Preparación de la O^{6}-tenilguanina
Una solución de tenil alcohol (3,18 ml, 33,6 mmoles) en DMSO (3 ml) se trató con hidruro de sodio (60% en aceite; 0,48 g, 12 mmoles), agitando cuidadosamente al principio. Después de 1 hora, se añadió cloruro de 2-amino-N,N, N-trimetil-1H-purin-6-aminio (1,37 g, 6 mmoles) y se continuó la agitación 1 hora más. Se añadió ácido acético (1,0 ml), se enfrió breve tiempo y la mezcla se diluyó con éter (180 ml). El sólido (2,09 g) se recogió después de 1-2 horas. La evaporación del éter del filtrado y la destilación del DMSO y exceso de tenil alcohol (p.e. 48.57ºC/0,2 mm) dejó un residuo el cual por trituración con éter proporcionó una segunda fracción de sólido (0,36 g). Los sólidos combinados se malaxaron (trituración) con agua (6 ml), obteniéndose el producto (1,335 g, 90%), mostrando con una intensa mancha en TLC (C_{6}H_{6}-MeOH, 4:1) solamente con trazas de impurezas. La disolución en etanol caliente (30 ml), la clarificación mediante filtración a través de Celite, y la concentración (hasta 10 ml) empleando un evaporador rotativo, suministraron el B.4205 (1,125 g, 71% de material conteniendo 1/3 de EtOH por mol como solvato).
Pueden prepararse compuestos de fórmula I en la cual Y es R''XCHR''' (seco-nucleósidos) mediante una preparación análoga a la reacción de la O^{6}-bencilguanina con \alpha-cloro-éteres (MacCoss y col., Tetrahedron Lett.; solicitud de patente europea nº 184.473., loc.cit.) o con bromuros de alquilo (p. ej., Kjellberg, Liljenberg y Johansson, Tetrahedron Lett., 1986, 27, 877; Moschel, McDougall, Dolan, Stine y Pegg, J. Med. Chem., 1992, 35, 4486).
Componentes típicos del "azúcar" correspondientes a R''XCHR''', que conducen a los seco-nucleósidos, se obtienen mediante métodos descritos en p. ej., McCormick y McElhinney, J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1, 1985, 93; Lucey, McCormick y McElhinney, J. Chem. Soc., Perkin Trans. 1, 1990, 795.
Compuestos de fórmula I en la cual Y es ribosilo o desoxirribosilo (nucleósidos) pueden prepararse mediante métodos análogos a las síntesis de O^{6}-bencilguanina ribosido y 2-desoxirribosido (Moschel y col., 1992; ver Gao, Fathi, Gaffney y col., J. Org. Chem., 1992, 57, 6954; Moschel, Hudgins y Dipple, J. Amer. Chem. Soc., 1981, 103, 5489) (ver preparación de ribosidos más arriba).
Aplicación industrial
La cantidad del compuesto de la presente invención que hay que emplear, varía de acuerdo con la cantidad efectiva requerida para el tratamiento de células tumorales. Una dosificación adecuada es aquella que da como resultado una concentración del compuesto de la invención en las células tumorales a tratar, que da como resultado una reducción de la actividad de ATasa, p. ej., aproximadamente 1-2000 mg/kg, y de preferencia 1-800 mg/kg, en particular 1-120 mg/kg, antes de la quimioterapia con un agente alquilante.
La composición farmacéutica de la invención puede formularse en formas convencionales con excipientes convencionales, como se describe por ejemplo en la patente WO 91/13898, el contenido de la cual se incorpora a la presente como referencia. La composición puede contener el inactivador de acuerdo con la invención juntamente con un agente alquilante; o la composición puede comprender dos partes, una que contiene el inactivador y otra que contiene el agente alquilante. El método de administración de los compuestos de la invención a un anfitrión puede ser también un método convencional como se describe en la patente WO 91/13898 por ejemplo. Para la administración de un inactivador de acuerdo con la invención a pacientes, la composición farmacéutica puede contener adecuadamente el inactivador en un vehículo adecuado tal como el polietilenglicol 400 al 40% en solución salina o en solución salina o etanol al 3% (en solución salina), para inyección intravenosa, o en forma de polvo en cápsulas adecuadas para administración oral.
Los agentes alquilantes pueden administrarse de acuerdo con técnicas conocidas y en formas convencionales de administración como se describe en la patente WO 91/13898 por ejemplo o de preferencia como dosis única inmediatamente después o hasta 24 horas después pero de preferencia alrededor de 2 horas después de la administración de agentes de inactivación de ATasa y también a dosis menores que las empleadas en régimen de tratamiento estándar. Una reducción de la dosis puede ser necesaria debido a que los inactivadores serían generalmente anticipados para aumentar la toxicidad de los agentes alquilantes. Ejemplos de agentes cloroetilantes incluyen el 1,3 bis (2-cloroetil)-1-nitrosourea (BCNU), 1-(2-cloroetil)-3-ciclohexil-1-nitrosourea (CCNU), fotemustina, mitozolomida y clomesona y los descritos en McCormick, McElhinney, McMurry y Maxwell J. Chem. Soc. Perkin Trans. I, 1991, 877 y Bibby, Double, McCormick, McElhinney, Radacic Pratesi y Dumont Anti-Cancer Drug Design, 1993, 8, 115. Ejemplos de agentes metilantes incluyen la temozolida (patente inglesa GB 2 104 522) y la dacarbazina, procarbazina y estreptozocina.
Métodos Purificación de ATasas recombinantes
El clonado de ADNc y la superexpresión de la Atada humana ha sido informado anteriormente ^{23}.La purificación de las proteínas recombinantes se logró bien por cromatografía de afinidad a través de una columna de ADN-celulosa como describe Wilkinson y col., ^{25,26}, ó mediante cromatografía de intercambio iónico de DEAE-celulosa. Para esta última. la ATasa proteína se purificó parcialmente mediante precipitación con sulfato de amonio (30-60%) y se dializó contra 10 mM de Tris-HCl, pH 7,5, 1 mM de DTT, 2 mM de EDTA, 10% de glicerina, antes de cargar en la columna de DEAE-celulosa. A continuación, se eluyó la ATasa con un gradiente de NaCl 0-0,1 M. La proteína ATasa humana purificada retuvo la actividad durante más de un año almacenada a alta concentración a -20ºC en tampón I [50 mM de Tris/HCl (pH 8,3)/ 3 mM de ditiotreitol/ 1 mM de EDTA] y pudo ser descongelada y congelada varias veces sin una substancial pérdida de actividad.
Incubación con inactivadores y ensayo de ATasa
Los compuestos que debían ensayarse se disolvieron en DMSO hasta una concentración final de 10 mM y se diluyeron justo antes de ser empleados en tampón I que contenía 1 mg/ml de albúmina de suero bovino (IBSA). La ATasa recombinante se diluyó en IBSA y se tituló con el fin de que la reacción fuera conducida por la ATasa y no por el substrato, limitando las condiciones. En cada ensayo se incubaron cantidades fijas de ATasa (60-75 fmoles) con cantidades variables de O^{6}-bencilguanina o del compuesto de ensayo en un volumen total de 200 \mul de IBSA conteniendo 10 \mug de ADN de timo de vaca a 37ºC durante 1 hora. El substrato de ADN [^{3}H]-metilado (100 \mul conteniendo 6,7 \mug de ADN y 100 fmoles de O^{6}-metilguanina) se añadió, y la incubación continuó a 37ºC durante 1 hora, hasta que la reacción fue completa. Después de la hidrólisis ácida del ADN como se ha descrito previamente ^{21}, la proteína [^{3}H]-metilada se recuperó y cuantificó mediante un contaje de centelleo líquido. Las muestras se ensayaron típicamente por duplicado y se repitieron los experimentos varias veces. I_{50} es la concentración de inactivador necesaria para producir una reducción del 50% en la actividad de la ATasa.
Cultivo celular y preparación de los extractos
Se cultivaron células de mamíferos en condiciones estándar. Por ejemplo, se hicieron crecer células Raji (una línea celular de linfoblastoides humanos a partir del linfoma de Burkitt), en un cultivo en suspensión en medio RPMI suplementado con 10% de suero de caballo. Las células A375M son células de melanoma humano a partir de las cuales los xeno-injertos descritos más adelante se establecieron después una inyección subcutánea en ratones inmunodeprimidos. Las células WiDr son una línea celular de carcinoma del colon humano: células de Hamster+120 son una sublínea seleccionada de mitozolomida de una línea celular V79 de fibroblasto de pulmón de hamster chino, llamada RJKO. Las células Yoshida son una línea celular de carcinosarcoma de rata y YR_{bus} es una sublínea de la misma, resistente al busulfan. Las células XP son un línea celular SV40 de fibroblastos transformados originalmente de la piel de un paciente de Xeroderma pigmentosum. Las células pHMGhAT2b son un clon de estas células que han sido transfectadas con un vector de expresión de células de mamíferos que contienen el ADNc de ATasa humana, y las células pHMGla son un clon que ha sido transfectado con el vector de expresión solamente (es decir, uno que no contiene el ADNc de ATasa humana). Los sedimentos celulares se resuspendieron en tampón I frío (4ºC) que contenía 2 \mug/ml de leupeptina y se trataron con ultrasonidos durante 10 segundos a 12 \mu de distancia de pico a pico. Después de enfriar en hielo las células se trataron con ultrasonidos durante 10 segundos más a 18 \mu. Inmediatamente después del tratamiento con ultrasonidos, se añadieron 0,01 volúmenes de 8,7 mg/ml de fluoruro de fenilmetansulfonilo en etanol, y el sonicado se centrifugó a 15000 g durante 10 minutos a 4ºC hasta la formación de un sedimento en forma de bolita de residuos celulares. El sobrenadante se guardó para la determinación de la actividad de ATasa (ver más adelante).
Estabilidad de los inactivadores a 37ºC
Los inactivadores (10 mM en DMSO) se diluyeron hasta 0,1 mM en tampón I desgasificado precalentado (1 mM de EDTA, 50 mM de Tris pH 8,3) ó PBS (pH 7-7,2). El PBS (phosphate buffered saline)("solución salina tamponada con fosfato") es 0,8% de NaCl, 0,02% de KCl, 0,15% de Na_{2}H_{2}PO_{4}, 0,02% de KH_{2}PO_{4}, pH 7,2. Las muestras fueron inmediatamente transferidas a un espectrofotómetro CARY13 (bloque de la cubeta mantenido a 37ºC) y se escanearon a una longitud de onda apropiada (de acuerdo con las propiedades espectrales del compuesto) a intervalos de 3-10 minutos durante hasta 80 horas. Los resultados se expresaron como cambio de porcentaje de absorbancia frente al tiempo y de éstos se extrapolaron valores de T1/2 (semivida).
Inactivación de la actividad ATasa en células de mamífero
Las células se diluyeron a 10^{6}/ml en un medio de cultivo conteniendo la apropiada concentración de inactivador o un volumen equivalente de vehículo (DMSO). Después de la incubación a 37ºC durante 2 horas, las células se recogieron por centrifugación, se lavaron dos veces con PBS y los sedimentos celulares en forma de bolita resultantes (entre 1-2 x 10^{7} por bolita) se almacenaron a -20ºC. La actividad ATasa se determinó como se ha descrito más arriba, se trataron por duplicado con ultrasonidos los extractos celulares y se expresaron como la actividad en tanto por ciento restante con respecto a la presente en los controles no tratados (por ejemplo 350-450 fm/mg en células Raji). Los valores de I_{50} (es decir, la concentración de inactivador necesaria para reducir la actividad de la ATasa en un 50%), se extrapolaron de estos datos.
Sensibilización de células Raji y A3/5M al BCNU y a la temozolomida
Se analizó la sensibilización de las células Raji a los efectos citotóxicos del BCNU y la temozolomida después de 2 horas de pretratamiento con inactivador, empleando un ensayo XTT ^{22}. En resumen, las células se plaquearon a 1000 células/ pocillo en placas de 96 pocillos y se incubaron a 37ºC durante 30 minutos antes de la adición del medio conteniendo o bien la concentración apropiada de inactivador o bien un volumen equivalente de vehículo. Después de 2 horas de incubación a 37ºC, se añadió el medio conteniendo o bien dosis crecientes de BCNU, temozolomida o bien un vehículo equivalente, y las células se dejaron crecer durante 6 días. A continuación, se añadió solución de XTT y las células se incubaron durante 4 horas más a 37ºC. El producto resultante de la reacción del formazano de color rojo/naranja, se cuantificó midiendo la absorción a 450 nm en un lector de placas de microtitulación.
La sensibilización de las células A375M a los efectos citotóxicos del BCNU se analizó mediante el ensayo
\hbox{MTT  ^{24} }
que se diferencia del ensayo XTT descrito más arriba como sigue. Las células A375M (1000 por pocillo) se dejaron crecer durante 24 horas y a continuación se trataron con el inactivador y 2 horas más tarde con BCNU. Después de 6 días se añadió solución de MTT (4 mg/ml) y las células se incubaron durante 3 horas a 37ºC. El medio se aspiró y los cristales resultantes de formazano de color púrpura se solubilizaron en DMSO (120 \mul) y se cuantificó la viabilidad celular midiendo la absorción a 540 nm empleando un lector de placas de microtitulación.
A partir de estos datos se determinó el porcentaje de crecimiento de las células con respecto al de los pocillos de control, para un margen de dosis de BCNU o temozolomida tanto en presencia como en ausencia de inactivador. La sensibilización de las células Raji al BCNU (D_{90}.C/D_{90}.I) se determinó dividiendo el D_{90} (es decir, la dosis a la cual se obtuvo un crecimiento del 90% frente a los controles sin tratar, es decir, el 10% de inhibición) calculado para los datos empleando el BCNU solo (D_{90}.C), por los del BCNU más el inactivador (D_{90}.I). Un valor de uno (1) indica pues, ninguna sensibilización por el inactivador. La sensibilización de las células Raji a la temozolomida y la sensibilización de las células A375M al BCNU se determinaron empleando los correspondientes valores de D_{50} (es decir, las dosis a las cuales hubo un 50% de inhibición).
Sensibilización de las células mamarias a los inactivadores o sus productos de hidrólisis
Con el fin de dictaminar los efectos sobre las células solas, se expusieron células de Xeroderma pigmentosum y células del hamster chino V79 a concentraciones crecientes (hasta 600 \muM) de inhibidores seleccionados durante 2 horas a 37º. En algunos casos, los inactivadores se sometieron a una hidrólisis a 37ºC durante 20 horas y a continuación se añadieron a las células Raji con el fin de dictaminar la extensión a la cual los productos de descomposición de los agentes podrían inhibir el crecimiento de las células. Después de 6 días se determinó la extensión del crecimiento celular como se ha descrito más arriba.
Sensibilización de células de médula ósea a la temozolomida (ensayo GM-CFC)
Para el ensayo (GM-CFC) de células formadoras de colonias granulocitos/macrófagos, se obtuvieron muestras de médula ósea humana primaria a partir de pacientes experimentando una cirugía cardiotorácica. Después de la eliminación de los eritrocitos de las muestras, las células se plaquearon a 1-2 x 10^{5}/ml en 300mOsM de medio Iscoves conteniendo 10\muM de inactivador o un volumen equivalente de DMSO, 20% de suero bovino fetal, 10% de medio 5637 condicionado como fuente de factores de crecimiento y 0,3% de agar noble, en cápsulas de Petri de 1 ml conteniendo una dosis apropiada de temozolomida y se incubaron a 37ºC en una atmósfera de 5% de CO_{2} y 95% de aire. Después de 9 días, se contaron colonias que contenían más de 50 células. las colonias representaban células precursoras del linaje granulocito/macrófago (huGM-CFC). La supervivencia se expresó como % del número de colonias a la dosis cero de temozolomida.
Estudios con xenoinjertos Animales
Se obtuvieron ratones machos atímicos derivados de los BALB-C (nu/nu atímicos) con un peso entre 25-35g a partir de una colonia criada en casa, del Paterson Institute for Cancer Research, Christie Hospital NHS Trust, Wilmslow Road, Manchester M20 9BX, Inglaterra (ratones ASU). Los animales fueron estabulados en un ambiente estéril hasta que se necesitaron para los experimentos). En un experimento, los ratones se obtuvieron de Harlan-Olac, Harlan UK Limited, Shaw's Farm, Blackthorn, Bicester, Oxon. OX6 OPT, Inglaterra (ratones OLAC). Estos ratones pesaron entre 17 y 23 g y subsiguientemente se encontró que eran más sensibles a los efectos tóxicos del tratamiento de la combinación (inactivador y BCNU). Por esta razón se administraron dosis más bajas.
Células
Células A375M (melanoma humano) se hicieron crecer en DMEM conteniendo 10% de suero fetal bovino. Las células se prepararon para la inoculación in vivo mediante incubación con 0,01 de tripsina.
Tumores
Se inyectaron subcutáneamente células (10^{6}) en 100 \mul de PBS en el flanco de mano derecha de ratones atímicos nu/nu de 8-10 semanas de edad. Estas células se dejaron desarrollar en un tumor durante 3-4 semanas para su paso a animales de experimentación. Bloques tumorales de 2 mm x 2 mm x 2 mm se implantaron subcutáneamente en el flanco de mano derecha. Estos animales estuvieron en disposición de ser empleados en los experimentos del inactivador en 7-10 días.
Tratamiento con fármacos
Ratones Nu/Nu se trataron o bien con 30 ó 60 mg/kg de O^{6}-bencilguanina, ó bien con B.4205 y el vehículo de control apropiado (i.p.) 60-90 minutos antes de 10-25 mg/kg de BCNU (i.p.). Se prepararon la O^{6}-bencilguanina y el B.4205 en forma de una solución de 5 mg/kg en aceite de maíz y BCNU (2 mg/kg) en PBS + 3% de etanol.
Mediciones de los tumores
Se efectuaron mediciones de los tumores de xenoinjertos, cada 1-2 día, por operarios empleando calibradores digitales. El volumen del tumor se calculó empleando la fórmula (h x w x 1)\pi/6. Los animales experimentales se pesaron también cada 1-2 días. Las mediciones continuaron hasta que los tumores en los animales de control alcanzaron el máximo volumen permitido (es decir, 1 cm x 1 cm x 1 cm).
Resultados
Las tablas 4, 5 y 6 muestran los datos físicos, bioquímicos y en vivo de cada uno de los inactivadores. Los ensayos que figuran en la relación están descritos en la sección de métodos.
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TABLA 5 Inactivación de ATasa en células de mamíferos
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TABLA 6 Sensibilización de A375M (D_{50}.C/D_{50}.I)
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La figura 1 muestra el resultado del ensayo de inactivación in vitro de la ATasa empleando 4 de los compuestos. El B.4206 fue algo más efectivo que el BeG pero el B.4212 y B.4205 fueron considerablemente mejores en las condiciones empleadas para el ensayo. El 4203 no fue tan efectivo como el BeG.
La figura 2 muestra que con el 0,1 \muM de inactivador, el B.4205 fue más efectivo que el BeG en la sensibilización de las células Raji a los efectos de inhibición del crecimiento del BCNU: con 1,0 \muM de inactivador, el B.4205 y la BeG fueron igualmente efectivos a este respecto.
La figura 3 muestra que con 0,1 \muM de inactivador, el B.4205 fue más efectivo que la BeG en la sensibilización de las células Raji a los efectos inhibidores del crecimiento de la temozolomida, pero que como las dosis de los inactivadores fueron aumentadas, la sensibilización mediante la BeG resultó más efectiva mientras que mediante el B.4205 permaneció inalterable. Esta falta de respuesta a la dosis con el B.4205 pero una clara respuesta a la dosis con la BeG se muestra más claramente en la figura 4.
La figura 5 muestra que mientras se produjo alguna inhibición al crecimiento de las células V79 mediante el B.4203 a dosis en exceso de 100 \muM (es decir, como mínimo 100x más alto que la dosis I_{50} para este compuesto), no se observó ningún efecto con el B.4205 hasta la máxima concentración empleada.
La figura 6 muestra que las células XP fueron también susceptibles a los efectos inhibidores del crecimiento del B.4203, pero que estas células fueron más sensibles que las células V70 a los efectos del B.4205. Sin embargo, las dosis requeridas para la inhibición del crecimiento fueron por lo menos 100 veces que las requeridas para la inactivación de la ATasa. Puede aceptarse que los efectos inherentes a la inhibición del crecimiento de estos inactivadores no contribuiría detectablemente a la sensibilización de las células a los efectos inhibidores del crecimiento de los agentes alquilantes.
La figura 7 muestra que no se produjo ningún efecto substancial inhibidor del crecimiento en células Raji cuando se dejó que los compuestos en cuestión experimentaran una hidrólisis (ver métodos) antes de ser añadidos a las células sin posterior adición de los agentes alquilantes. Por lo tanto, en estas condiciones experimentales, no sería de esperar que los productos de descomposición de los agentes contribuyeran a las inhibiciones del crecimiento observadas empleando combinaciones de estos agentes y agentes alquilantes.
Las figuras 8-13 muestran los resultados del estudio de xenoinjertos con mayor detalle. La reducción y recuperación de la actividad ATasa después de la exposición a la O^{6}-bencilguanina ó B.4205 se midió en extractos (fig. 8) de xenoinjerto del tumor A375, preparados a partir de tejidos de animales sacrificados 2 ó 24 horas después de la administración del inactivador. Las figuras 9-13 indican la sensibilización de los xenoinjertos tumorales del A375 en ratones inmunodeprimidos bien a la O^{6}-bencilguanina o bien al B.4205 en combinación con el BCNU como se ha descrito en la sección de métodos. En cada figura la gráfica superior muestra el aumento de porcentaje en el volumen del tumor durante el transcurso de tiempo del experimento. La gráfica inferior muestra el número de animales de cada grupo de tratamiento y el número de supervivientes después del tratamiento. Los gráficos muestran que el B.4205 es comparable a la O^{6}-bencilguanina (BeG) en la reducción del volumen tumoral y es substancialmente menos tóxico en combinación con el BCNU que la BeG en combinación con el BCNU. En pacientes humanos, el melanoma maligno cutáneo se trata con el BCNU, particularmente en USA (Balch, C.M., Houghton, A. & Peters, L. (1989) "Cutaneous Melanoma" ("Melanoma cutáneo") en Cancer: Principles and Practise of Oncology ("Cáncer: principios y práctica de la oncología"), De Vita, V.T., Helman, S. & Rosenberg, S.A. (eds.), pp 1499-1542, Lipincott: Philadelphia) de forma que el xenoinjerto del melanoma humano crecido en ratones inmunodeprimidos es un sistema de modelo de animal que es clínicamente altamente importante.
La figura 14 muestra los resultados de los ensayos sobre la sensibilización de las células de médula ósea humana para la temozomida como se ha descrito en la sección de métodos de más arriba. Las células de médula ósea se obtuvieron de tres pacientes identificados como C, D y E respectivamente. Las curvas de supervivencia muestran su relación con el efecto citotóxico del tratamiento combinado inactivador/temozolomida. Es deseable que este efecto fuera reducido. Los resultados para los pacientes C & E muestran que el B.4205 tiene un efecto de sensibilización más pequeño que la O^{6}-bencilguanina (O^{6}BeG); para el paciente D no hubo diferencia pero este resultado se considera como una razonable variación en los ensayos científicos con material humano.
La tabla 7 muestra el efecto tóxico del inactivador sólo sobre las células de médula ósea obtenidos de 5 pacientes A-E, incluyendo los mismos pacientes C-E que en la figura 17. Los resultados para B.4205 son comparables a los de la O^{6}-bencilguanina. Nótese que las células del paciente B fueron casi dos veces tan sensibles como, tanto la BeG como el B.4205, en comparación con las otras muestras.
TABLA 7 Toxicidad del inactivador (10 \mum) en las células de médula osea
50
Resumen de los descubrimientos
1) Todos los compuestos han sido ensayados para determinar su capacidad para inactivar la ATasa recombinante humana en condiciones estándar en un ensayo in vitro. En estas condiciones dos de los compuestos (B.4214 y B.4217) no inactivaron la ATasa hasta la concentración más alta empleada pero éstos fueron compuestos en los cuales R^{1} es metilo. El resto de los compuestos inactivaron la ATasa con valores I_{50} en el margen de 0,0045 a 95 \mumolar. Ocho compuestos (B.4205, B.4206, B.4212, B.4226, B-4266, B.4269, B.4273, B.4275) tuvieron valores I_{50} menores que los de BeG (tabla 4).
2) Los inactivadores experimentaron una hidrólisis en solución acuosa a diferentes velocidades (semi vidas 0,17 a > 80 horas) pero esto no estaba relacionado con su eficiencia como inactivadores de ATasa (tabla 4).
3) Compuestos que fueron eficientes en la inactiva-ción de ATasa in vitro (I_{50} < 1,0 \muM) inactivaron también la ATasa en células humanas con valores I_{50} que fueron en general solamente ligeramente mayores (media aprox. 1,5 veces) que los encontrados empleando proteína recombinante en el ensayo in vitro (tabla 4).
4) La ATasa se inactivó con B.4205 en células de huma-nos, ratas y hamster chinos con una efectividad similar (valores de I_{50} 0,02-0,03). Para B.4203 el margen fue de 0,04-0,12. En las líneas celulares empleadas, el B.4205 y el B.4203 fueron hasta 7 veces más efectivos que la BeG (tabla 5).
5) Los B.4203 y B.4205 fueron tóxicos para las células XP estudiadas y el B.4203 fue tóxico para las células V79 estudiadas pero solamente a concentraciones que eran por lo menos 100 veces más altas que aquellas en las que se observó una sensibilización al BCNU (figuras 5 y 6).
6) Compuestos que fueron eficientes en la inactivación de ATasa in vitro (I_{50} < 1,0 \muM) y en células Raji (I_{50} < 1,0 \muM) sensibilizaron también las células Raji y A375M en cuanto a los efectos inhibidores del crecimiento del BCNU donde éste fue ensayado (tabla 4).
7) A concentraciones de inactivador de 0,1 \muM, el B.4205 fue más efectivo que la BeG en la sensibilización de células Raji en cuanto a los efectos inhibidores del crecimiento, de la temozolomida (fig. 3).
8) El ensayo in vitro puede emplearse para predecir cuáles compuestos son más probablemente más efectivos sensibilizadores de células de mamíferos en cuanto a los efectos inhibidores del crecimiento del BCNU y agentes citotóxicos afines.
9) El B.4205 fue similar o ligeramente más efectivo que la BeG en la sensibilización de xenoinjertos de melanoma humano crecidos en ratones inmunodeprimidos en cuanto a los efectos inhibidores del crecimiento, del BCNU (figuras 9-13).
10) El B.4205 fue tan efectivo como la BeG en la inactivación de la ATasa en xenoinjertos de melanoma humano crecidos en ratones inmunodeprimidos (fig. 8).
11) El ensayo in vitro y/o el ensayo de reducción de la ATasa en el xenoinjerto puede emplearse para predecir cuáles compuestos son más probablemente efectivos sensibilizadores de xenoinjertos de melanoma en cuanto a los efectos inhibidores del crecimiento de BCNU y agentes citotóxicos afines.
12) En contraste con la BeG, que causó la muerte de hasta el 70% de los animales tratados, el B.4205 tuvo un efecto muy pequeño en la sensibilidad de ratones inmunodeprimidos que llevaban xenoinjertos de melanoma humano en cuanto a los efectos tóxicos agudos de BCNU en las condiciones empleadas (figs. 9-13).
13) La BeG sensibilizó los GM-CFC en tres muestras de médula ósea humana ensayadas para determinar los efectos tóxicos de la temozolomida pero en dos de estas muestras, se produjo poca o ninguna sensibilización mediante el B.4205. Este ensayo fue por lo tanto usado para predecir los posibles efectos mielosupresivos de los inactivadores de ATasa cuando se emplean en la clínica en combinación con el BCNU y agentes afines (fig. 14).
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In the specification the abbreviations "1h" or "2h" etc. mean "1 hour", "2 hours", etc.

Claims (37)

1. Derivados de O^{6}-alquilguanina de fórmula I:
51
en donde
Y es H, ribosil, desoxirribosil, o R''XCHR''', en donde X es O ó S, R'' y R''' son alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o derivados substituidos de los mismos que tienen una substitución con uno o más hidroxilos, alcoxilo de 1 a 20 átomos de carbono, amino, alquilamino de 1 a 20 átomos de carbono, amido o ureido;
R' es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono;
R es:
(i) un grupo cíclico que tiene por lo menos un anillo heterocíclico de 5 ó 6 miembros, opcionalmente con un anillo carbocíclico o heterocíclico fusionado con el mismo, el cual o cada anillo heterocíclico tiene por lo menos un heteroátomo escogido entre O, N ó S, ó un derivado substituido del mismo que tiene una substitución en el (los) anillo(s) heterocíclico(s) y/o el (los) anillo(s) carbocíclico(s) mediante uno o más alquilos de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''' en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n = 0, 1 ó 2, ó un grupo carboxilo o grupo éster de fórmula -COOR^{5} en donde R^{5} es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono; ó
(ii) naftilo o un derivado substituido del mismo teniendo la substitución con uno o más alquilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''', en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n=0, 1 ó 2, ó un grupo carboxilo o éster de fórmula -COOR^{5} en donde R^{5} es H ó alquilo de 1 a 20 átomos de carbono,
y las sales farmacéuticamente aceptables de los mismos.
2. Un compuesto de acuuerdo con la reivindicación 1 en donde
Y es H, ribosil, desoxirribosil, ó R''XCHR'''', en donde X es O ó S, R'' y R'''' son alquilo de 1 a 20 átomos de carbono o derivados substituidos de los mismos que tienen una substitución con uno o más hidroxilos, amino, alquilamino de 1 a 20 átomos de carbono, amido o ureido.
R' es como se ha definido en la reivindicación 1;
R es
(i) un grupo cíclico que tiene por lo menos un anillo heterocíclico de 5 ó 6 miembros, opcionalmente con un anillo carbocíclico o heterocíclico fusionado con el mismo, el cual o cada anillo heterocíclico tiene por lo menos un heteroátomo escogido entre O, N ó S, ó un derivado substituido del mismo que tiene una substitución en el (los) anillo(s) heterocíclico(s) y/o el (los) anillo(s) carbocíclico(s) mediante uno o más alquilos de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''' en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n = 0, 1 ó 2; ó
(ii) naftilo o un derivado substituido del mismo teniendo la substitución con uno o más alquilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquenilo de 1 a 20 átomos de carbono, alquinilo de 1 a 20 átomos de carbono, halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, nitro, ciano, hidroxialquilo de 1 a 20 átomos de carbono, SO_{n}R'''', en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n=0, 1 ó 2,
y las sales farmacéuticamente aceptables de los mismos.
3. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde R es:
(a) un anillo heterocíclico de 5 ó 6 miembros, ó
(b) un benzo derivado del mismo, estando el grupo O^{6}-alquilguanina unido al R en cualquiera de los dos: bien el anillo heterocíclico o bien el anillo de benceno.
4. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2 en donde R es un anillo heterocíclico de 5 miembros, que tiene por lo menos un átomo de S ó un derivado substituido del mismo como se ha definido en la reivindicación 1 ó 2.
5. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde R es un anillo de tiofeno o un derivado substituido del mismo como se ha definido en la reivindicación 1 ó 2 respectivamente.
6. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 5, en donde R es un anillo de tiofeno substituido en el anillo con halo.
7. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 6, en donde halo es yodo, bromo, cloro o flúor.
8. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde R es un anillo de furano o un derivado substituí-do del mismo como se ha definido en la reivindicación 1 ó 2 respectivamente.
9. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde R incluye un anillo heterocíclico y/o carbocíclico substituido con halo, haloalquilo de 1 a 20 átomos de carbono, ciano, SO_{n}R'''' en donde R'''' es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono y n = 0, 1 ó 2, ó -COOR^{5}, en donde R^{5} es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono.
10. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde R incluye un anillo heterocíclico substituido con halo, ciano, o un grupo éster de fórmula -COOR^{5}, en donde R^{5} es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono.
11. Un compuesto de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en donde R' es H.
12. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, el cual es O^{6}-tenilguanina o un derivado substituido del mismo, que tiene una substitución en el anillo de tiofeno con un grupo halo, ciano o éster.
13. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 12, el cual es O^{6}-tenilguanina.
14. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 12, el cual es O^{6}-tenilguanina con una substitución en el anillo de tiofeno con halo.
15. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 14, en donde halo es yodo, bromo, cloro o flúor.
16. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(3-tienilmetil)guanina.
17. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-piperonilguanina.
18. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-furfurilguanina.
19. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(3-furilmetil)guanina.
20. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(2-benzo[b]tienilmetil)guanina.
21. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(2-benzofuranilmetil)guanina.
22. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(5-tiazolilmetil)guanina.
23. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(5-metoxicarbonilfurfuril)guanina.
24. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(5-bromotenil)guanina.
25. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(5-cianofurfuril)guanina.
26. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(2-benzo[b]tienilmetil)guanosina.
27. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(4-picolil)guanina.
28. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación 1, el cual es O^{6}-(2-naftilmetil)guanina.
29. Una composición farmacéutica que contiene un compuesto de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones precedentes y un excipiente farmacéuticamente aceptable.
30. Una composición farmacéutica de acuerdo con la reivindicación 29, que contiene además un agente alquilante.
31. Un compuesto de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28, para emplear en un método para la reducción de la actividad de la O^{6}-alquilguanina-ADN alquiltransferasa en un anfitrión.
32. Empleo de un compuesto de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28, en la elaboración de un medicamento para la reducción de la actividad de O^{6}-alquilguanina-ADN alquiltransferasa.
33. Empleo de un compuesto de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28, y un agente alquilante en la elaboración de una composición farmacéutica de una o dos partes, para el tratamiento de células tumorales.
34. Empleo, de acuerdo con la reivindicación 32 ó 33, en donde el compuesto de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28 es la O^{6}-tenilguanina o un derivado substituido de la misma que tiene una substitución en el anillo de tiofeno con un grupo halo, ciano o éster, de fórmula -COOR^{5}, en donde R^{5} es alquilo de 1 a 20 átomos de carbono.
35. Una composición, de acuerdo con la reivindicación 30, en donde el agente alquilante se selecciona entre la 1,3 bis(2-cloroetil)-1-nitrosourea (BCNU) y la temozolomida.
36. Empleo de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 32 a 34, en donde el agente alquilante se selecciona entre la 1,3 bis(2-cloroetil)-1-nitrosourea (BCNU) y la temozolomida.
37. Un procedimiento para la preparación de un compuesto de fórmula I como se ha reivindicado en la reivindicación 1, el cual comprende la reacción de hidruro de sodio con una solución de RR'CHOH (en donde R y R' son como se ha definido en la reivindicación 1), en un disolvente orgánico, añadiendo cloruro de 2-amino-N,N,N-trimetil-1H-purin-6-aminio ó 2-amino-6-cloropurina ribosido, tratamiento con un ácido débil y éter, y extracción del producto deseado.
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