ES2220185B1 - Nuevo peptido inhibidor del intercambiador na+/h+ (pinhe), y sus aplicaciones. - Google Patents
Nuevo peptido inhibidor del intercambiador na+/h+ (pinhe), y sus aplicaciones.Info
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Abstract
Nuevo Peptido inhibidor del intercambiador Na+/h+ (PINHE), y sus aplicaciones. La presente invención describe un péptido (PINHE) constituido por 28 aminoácidos obtenido por fraccionamiento y purificación del sobrenadante del cultivo de Haloferax gibbonsii alicante SPH7. El PINHE actúa como inhibidor fisiológico natural del intercambiador Na+/H+ en eucariotas. Es activo en rangos amplios de concentraciones salinas, temperatura y pH, resistente a tripsina y sensible a pronasa. De su acción reversible sobre el intercambiador Na+/H+ se deriva: (1) su uso para el tratamiento o profilaxis de patologías como enfermedades cardiovasculares, renales, cerebrales, metabólicas, procesos proliferativos patológicos, hiperproducción de ácido clorhídrico etc., (2) en otras enfermedades o patologías que cursen con isquemia y lesión por reperfusión post-isquémica debida a la hiperactividad del NHE como isquemias por alteraciones vasculares primarias o secundarias en diversos tejidos, por reperfusión post-infarto, por transplante de órganos o tejidos, etc. También como contraceptivo (en mamíferos macho), antibiótico o agente inmunorregulador, y en plantas como modulador del estrés salino.
Description
Nuevo péptido inhibidor del intercambiador
Na^{+}/H^{+} (PINHE), y sus aplicaciones.
La presente invención se encuadra en varios
sectores, siendo el más importante el Farmacéutico donde tendría
aplicaciones como tratamiento protector de diversos procesos
patológicos de gran trascendencia tales como la patología isquémica
y por reperfusión (independientemente del mecanismo de producción),
arritmias, hipertensión, etc. También podría aplicarse como
contraceptivo (en mamíferos macho), como antibiótico y como agente
inmunorregulador. En el sector Químico, como reactivo regulador de
la actividad del intercambiador de Na^{+}/H^{+}. Y
potencialmente en el Agrícola, como modulador frente al estrés
salino.
El intercambiador sodio-protón
(Na^{+}/H^{+}) (sodium-proton exchanger o NHE),
es un mecanismo que está presente en las membranas de todos los
tipos celulares, tanto procariotas como eucariotas, y cataliza un
intercambio electroneutro de H^{+} intracelular por Na^{+}
extracelular (Putney et al. 2002, Annu. Rev. Pharmacol.
Toxicol. 42: 527-552; Counillon and
Pouyssegur, 2000, J. Biol. Chem. 275:
1-4, Orlowsky and Grinstein, 1997, J. Biol.
Chem. 272: 22373-76; Grinstein et
al, 1989, Biochim. Biophys. Acta, 988:
73-97). Se sabe desde hace años que participa a
nivel celular en procesos vitales que dependen del intercambio
fónico transmembranal tales como homeostasis, pH intracelular,
volumen celular, adhesión, determinación de la forma, migración y
proliferación (Motais et al. 1991. Biochim Biophys
Acta, 1075 (2): 169-180; Maidurna et
al, 1993, Br J Cancer, 67 (2):
297-303; Harguindey y Craoge 1992. Med
Hypotheses, 39 (3): 229-237; Putney et
al. 2002, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 42:
527-552).
La familia de los intercambiadores NHE incluye
seis isoformas (NHE1-NHE6). La isoforma NHE1, que
se localiza en la membrana citoplasmática se expresa ubicuamente y
juega un papel central en los procesos reguladores del pH
intracelular, volumen celular y homeostasis (Orlowski J, Grinstein
S. 1997. J. Biol. Chem. 272:
22373-76; Counillon L, Pouysségur J. 2000. J.
Biol. Chem. 275: 1-4). En contraste, los
intercambiadores NHE2, 3, 4 y 5 muestran una distribución tisular
limitada y una función más especializada. Así NHE2, 3 y 4 se
expresan predominantemente en el riñón y en el tracto intestinal.
En esos lugares, la localización celular de NHE2 es apical, e
interviene principalmente en la reabsorción de iones Na^{+} (Tse
CM, Levine SA et al. 1993. J. Biol. Chem. 268:
11917-24). NHE2 puede actuar en colaboración con
NHE4 que tiene una localización basolateral (Orlowski J, Kandasamy
RA, Shull GE. 1992. J. Biol. Chem. 267:
9331-39; Pizzonia JH, Biemesderfer D,
Abu-Alfa AK et al. 1998. Am J.
Physiol. 275: F510-17; Bookstein C, Xie
Y et al. 1997. Am J. Physiol. 273:
C1496-505; Bai L, Collins JF, Muller YL, Xu H, Kiela
PR, Ghishan FK, . 1999. Am J. Physiol 277:
R1112-19) para promover la osmoregulación de las
células medulares internas renales. El intercambiador NHE3 se ha
identificado en la membrana apical del epitelio del túbulo renal
proximal (Biemesderfer D, Pizzonia J, et al. 1993. Am J.
Physiol. 265: F736-42) y en las
microvellosidades del epitelio intestinal maduro (Hoogerwerf WA, Tsa
SC et al. 1996. Am J. Physiol. 270:
G29-41; Bookstein C, DePaoli AM, et al.
1994. J. Clin. Investig. 93: 106-13).
En el riñón, el NHE3 es importante en la reabsorción de Na^{+} y
HCO_{3}^{-}, contribuyendo significativamente al mantenimiento
de la osmolaridad sanguínea y el balance ácido-base
(Moe 0W. 1999. J. Am. Soc. Nephrol. 10:
2412-25). El intercambiador NHE5 se expresa
predominantemente en el cerebro (Klanke CA, Su YR et al.
1995. Genomics 25: 615-22; Baird NR,
Orlowski J et al. 1999. J. Biol: Chem. 274:
4377-82) y se piensa que regula el pH intracelular
en neuronas (Raley-Susman KM, Cragoe EJ, Saplosky
RM, Kopito RR. 1991. J. Biol. Chem. 266:
2739-45). NHE6 es el miembro más reciente de la
familia NHE. Esta molécula presenta la secuencia más divergente
mostrando únicamente un 20% de identidad con las otras isoformas.
NHE6 se localiza exclusivamente en las mitocondrias, dándose la
mayor expresión en los tejidos y órganos que presentan un
metabolismo elevado, como son el corazón, cerebro y el músculo
esquelético (Numata M, Petrecca K, Lake N, Orloski J. 1998. J.
Biol. Chem. 273: 6951-59).
La familia de genes NHE se ha conservado
evolutivamente. Se han identificado genes que codifican para NHEs
en toda clase de organismos vivos. En organismos procariotas desde
arqueas como Halobacterium salinarum (Ng WV, Kennedy SP,
et al. 2000. Proc, Nat. Acad. Sci. USA. 97:
12176-181) a las bacterias como Streptococcus
faecalis (Harold FM, Papineau D. 1972. J. Membr. Biol.
8: 45-62) y Escherichia coli (genes
nhaA y nhaB. Padan E, Maisler N, Taglicht D, Karpel
R, Schuldiner S. 1989. J. Biol. Chem. 264:
20297-302), donde estos intercambiadores son
electrogénicos y muestran muy poca homología con los NHE de
organismos superiores. También se han identificado genes NHE en
plantas, en concreto un homólogo de NHE5 en Arabidopsis
thaliana (Apse MP, Aharon GS, Snedden WA, Blumwald E. 1999.
Science. 285: 1256-58) y en las
levaduras Schizosaccharomyces pombe (gen sod2, Jia
ZP, McCullogh N, Martel R, Hemingsen S, Young PG, 1992. EMBO
J. 11: 1631-40) y Saccharomyces
cerevisae (genes nhx1, nha2, Nass R, Cunningham
KW, Rao R. 1997. J. Biol. Chem. 272:
26145-52; Numata M, Petrecca K, Lake N, Orloski J.
1998. J. Biol. Chem. 273: 6951-59). El
producto del gen nhxl, la proteína Nhx1p, se localiza
predominantemente en un compartimento prevacuolar y es importante
en el proceso de tráfico endocítico (Bowers K, Levi BP, Patel FI,
Stevens TH. 2000. Mol. Biol. Cell. 11:
4277-94). También se han identificado genes de la
familia NHE en Caenorhabditis elegans (Marra MA, Prasad SS,
Baillie DL. 1993. Mol Gen. Genet. 236:
289-98) y en Drosophila melanogaster (Adams
MD, Cleniker SE et al. 2000. Science 287:
2185-95), aunque no se han identificado las
isoformas específicas ni se han caracterizado sus funciones.
Finalmente, se han identificado genes NHE en un número de
organismos superiores tales como diversos vertebrados incluyendo a
los humanos (Klanke CA, Su YR et al. 1995. Genomics
25: 615-22; y 24), rata (Orlowski J,
Kandasamy RA, Shull GE. 1992. J. Biol. Chem. 267:
9331-39; Collins JF, Honda T, et al. 1993.
Proc. Nat. Acad. Sci. USA 90:
3938-42), ratón (Praetorius J. Andreasen D, Jensen
BL, Ainsworth MA, Friis UG, Johansen T. 2000. Am. J. Physiol.
Gastrointest. Liver Physiol. 278:
G197-206), cerdo (Reilly RF, Hildebrandt F, et
al. 1991. Am J. Physiol. 261:
F1088-94), Xenopus laevis (Busch S, Rosskopf
D, Lang H-J, Weichert A, Siffert W. 1998.
Pflugers Arch-Eur: J Physiol.
436: 828-33), y en trucha (Borgese F, Sardet
C, Cappadoro M, Pouyséegur J., Motays R. 1992. Proc Nat. Acad.
Sci. USA 89: 6765-69).
Recientemente, se ha determinado que el NHE
también funciona como un anclaje de membrana para el citoesqueleto
a través de actina y que esta función es independiente de la
translocación de iones (Putney et al. Annu. Rev.
Pharmacol. Toxicol. 42: 527-552, 2002).
Este carácter del NHE junto con los efectos sobre la regulación del
pH intracelular, la homeostasis y el volumen celular, indican que
el NHE regula un gran número de actividades celulares que incluyen
adhesión, determinación de la forma, migración y proliferación. La
actividad normal del NHE es por tanto de importancia vital para la
célula (Pouyssegur et al. 1984. Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 81: 4833-37; Kapus et al,
1994 J. Biol. Chem. 269: 23544-52;
Delvaux et al 1990, Am. J. Physiol. 259:
G842-49. Horvat et al. 1992, Eur. J.
Cancer 29ª: 132-37; Ritter et al,
1998. Br. J. Pharmacol. 124: 627-38).
Sin embargo, hay situaciones en las que existe un
proceso anormal de hiperactividad del NHE que conducen a un proceso
patológico. Desde el punto de vista tisular el NHE está implicado
en diversos procesos fisiológicos y patológicos de vital
importancia como la isquemia y por reperfusión, la diuresis, la
hipertensión arterial, la división de las células tumorales, la
acidez gástrica, el transporte epitelial, la activación de los
macrófagos, etc. (Rodríguez-Soriano 2000,
Pediatr. Nephrol., 14: 1121-36;
Sastrasinh et al 1995, Am. J. Phisiol. 268:
C1227-34; Szabó et al, 2000 J. Biol.
Chem. 275: 6302-7; Cournillon et
al, 1993, Mol. Pharmacol. 44:
1041-45; Scholz et al, 1995, Cardiovasc.
Res. 29: 260-68; Scholz et al.
1999, J. Thromb. Thrombolysis, 8:
61-70. Rolfe et al. 1992. Am J Respir.
Cell. Mol. Biol. 6 (6): 576-582) han
señalado que el NHE participa en la liberación de citokinas por
parte de los macrófagos que tiene lugar en los procesos de
activación inmunitaria. Asimismo, la actividad del NHE está
aumentada en la hipertensión esencial en el humano y en los modelos
animales de hipertensión (Canessa et al, 1991,
Hypertension. 17 (3): 340-348;
Rosskopf et al. 1993. Hypertension, 21 (5):
607-617). En patologías asociadas a la
colesterolemia se describe un incremento de actividad del
intercambiador NHE o un aumento del número de ellos en las células
(Scholz W.; Albus U.; Linz W.; Schölkens B.A. 1991. Effect of
Na*/H* exchance inhibition in cardiac ischaemia. Eur Herat
J. 12 (Suppl.), 124 (Abstr.)). La asociación frecuente
diabetes-hipertensión tendría como mecanismo común
el aumento de la actividad de dicho intercambiador. La inhibición
del intercambiador puede mejorar la resistencia a la insulina
(Dudeya et al. 1992 Kidney Int. 42 (5):
1184-1190; Dudeja PK et al. 1991 J. Clin.
Invest. 87 (5): 1755-1762; Dusing et
al. 1993 Clin. Invest. 71 (2):
119-125). Por último, el NHE participaría en los
procesos de reperfusión tras un periodo de isquemia. Durante la
reperfusión del miocardio se produce un gradiente de H^{+} debido
al aumento de pH extracelular frente al intracelular por efecto de
lavado. Como consecuencia, se produce una acumulación de Na^{+}
intracelular, que fuerza al intercambiador Na^{+}/Ca^{++} a
operar en sentido inverso, y se produce un aumento del Ca^{++}
citosólico hasta niveles tóxicos que conducen a la muerte celular.
La utilización de un buen bloqueador del intercambiador
Na^{+}/H^{+} puede mejorar dicho cuadro.
El tratamiento de todos estos procesos
patológicos mencionados anteriormente podría verse mejorado en caso
de disponer de un buen inhibidor del NHE.
En la actualidad no se dispone de inhibidores
fisiológicos de origen natural específicos del intercambiador NHE.
Los NHE son inhibidos por compuestos sintéticos como el amiloride
(Cragoe EJ Jr, Woltersdorf OW Jr, Bicking JB, Kwong SF, Jones JH.
1967 J. Med. Chem. Jan; 10 (1):66-75)
y sus análogos como el EIPA (Vigne P, Frelin C, Cragoe EJ Jr,
Lazdunski M. 1983 Biochem Biophys Res Commun. 14;
116(1):86-90) y los derivados de la benzoil
guanidina como el cariporide (HOE 642) (Scholz, W., Albus, U.,
Counillon, L., Gögelein, H., Lang, H.J., Linz, W., Weichert, A. y
Schölkens 1995 B.A. Cardiovas. Res.; 29:
260-268; Hoechst AG, Cardiovascular Research
H 821, 65926 Frankfurt/Main, Germany: Scholz, W., Albus, U.,
Gögelein, H., Lang, H.J., Linz, W., Weichert, A. y Schölkens, B.A.;
Centre de Biochimie, Université de Nice-Sophia
Antipolis, Parc Valrose, Nice, France: L Counillon), el HOE 694
(Counillon, L., Scholz, W., Lang, H.J., Pouyssegur, 1993. J. Mol
Pharmacol. Nov; 44(5): 1041-5; Scholz,
W., Albus, U., Lang, H.J., Linz, W., Martorana, P.A., Englert, H.C.
y Schölkens, B.A.. 1.993. Br. J. Pharmacol. 109 (2):
562-568; Hoechst AG, Cardiovasc Research H
821, 65926 Frankfurt/Main, Germany: Scholz, W., Albus, U.,
Gögelein, H., Lang, H.J., Linz, W., Weichert, A. y Schölkens, B.A),
EMD 85131 (Baumgarth, M., Beier, N. y Gericke, R. 1.997.
J. Med. Chem. 40: 2017-2034) y otros
como el zoniporide (Guzman-Perez, A., Wester, R.T.,
Allen, M.C., Brown, J.A., Buchholz, A.R., Cook, E.R., Day, W.W.,
Hamanaka, E.S., Kennedy, S.P., Knight, D.R., Kowalczyk, P.J.,
Marala, R.B., Mularski, C.J., Novomisle, W.A., Ruggeri, R.B.,
Tracey, W.R. y Hill, R.J. 2001. Bioorg Med Chem Lett. Mar 26;
11 (6):803-7).
Algunas de estas sustancias como el amiloride,
inhiben el intercambiador NHE pero no lo hacen de forma específica,
inhibiendo a la vez otros intercambiadores, como el
Na^{+}/Ca^{++} y los canales inespecíficos de Na^{+}. A pesar
de estas limitaciones el amiloride se está utilizando en
terapéutica como diurético. No obstante, es grande el número de sus
efectos secundarios. Por otra parte, algunos derivados de amiloride
que han mostrado un efecto más específico sobre el intercambiador
NHE, salvo alguna excepción, tienen el grave inconveniente de ser
difíciles de revertir. Mayor especificidad han mostrado el
cariporide y el zoniporide, siendo éste ultimo además de mayor
potencia.
La sensibilidad a todos estos fármacos varía
enormemente entre las isoformas del NHE (Yu et al, 1993.
J. Biol. Chem., 268: 25536-41;
Cournillon et al, 1993, Mol. Pharmacol. 44:
1041-45; Cournillon et al, 1993, Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 90: 4508-12;
Scholz et al, 1995, Cardiovasc. Res. 29:
260-68; Scholz et al, 1999, J. Thromb.
Thrombolysis, 8: 61-70; Baumgarth et
al, 1997, J. Medicinal Chem. 40:
2017-34). Las afinidades aparentes de las isoformas
de la membrana plasmática por un inhibidor puede variar en un rango
de cuatro ordenes de magnitud, generalmente siguiendo el orden:
NHE1 > NHE 2 >> NHE 3 > NHE 4 (Putney et al,
2002, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 42:
527-552). En contraste, el NHE mitocondrial es
relativamente insensible al amiloride, pero es inhibido muy
efectivamente por su análogo benzamil (Sastrasinh et al,
1995, Am. J. Phisiol. 268: C1227-34;
Brierley et al, Biochemistry, 28:
4347-54; Kapus et al, 1988, Biochim Biophys
Acta, 944: 383-90).
Otros agentes farmacológicos como la
cimetidina, clonidina, y harmalina también
exhiben diferentes afinidades por las isoformas del NHE. Sin
embargo, estos compuestos, que no están relacionados químicamente
con el amiloride o el cariporide, poseen una parte imidazólica o
guanidínica que puede explicar alguna similitud estructural
(Orlowski and Grinstein. 1997. J. Biol. Chem. 272:
22373-22376).
Algunos de los inhibidores del NHE han mostrado
ser efectivos en la disminución del tamaño de la zona de necrosis
en el infarto de miocardio experimental (Gumina et al. 1998
J. Pharm. Experim. Therapeutics, 286:
175-183; Miura et al. 1997. J. Am. Coll.
Cardiol. 29: 693-701;
Munch-Ellingsen et al. 1998. Mol. Cell
Biochem. 186: 13-18; Otani et al.
2000. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 27:
387-393).
Algunos de ellos son objeto de patentes
internacionales (p.e. WO0183470 "Sodium-hydrogen
exchanger type 1 inhibitor", publicada el 8 de Noviembre de
2001, titulares: Chen Weichao George, Cox Eric David, PFIZER PROD
INC, Guzmán Perez Angel; Patente US6348476 "Pharmaceutical
combination preparation of an inhibitor of the sodium/hydrogen
exchanger and a medicament for the treatment of cardiovascular
diseases").
Frente a estas sustancias de origen sintético,
hasta la fecha, halocina H7 (antes H6), es la única sustancia
conocida de origen biológico que muestra un efecto inhibidor
específico del NHE. La halocina H7 es una sustancia proteica que ha
sido objeto de dos patentes previas (inventores: 1 Meseguer
Soria, M Torreblanca Calvo, B Soria Escoms, F Colom Valiente e 1
Alba Carballo. Nº de patentes. ES 2 094 695 y ES 2 094 696
publicadas ambas el 16 de enero de 1997, titular: Universidad de
Alicante). Dicha halocina tiene un peso molecular de 30.500
\pm 500 D y se obtiene a partir del cultivo de la cepa CECT 4547
(protegida en la patente: ES 2 094 695) y se extrae
utilizando procedimientos de purificación de proteínas tales como
la cromatografía en columna con concanavalina A y la cromatografía
de alta presión con columna de intercambio iónico. El proceso
completo de purificación es largo, costoso y complejo.
Las ventajas más destacables de la halocina H7
frente al resto de inhibidores del NHE son (como se describen en la
patente ES 2 094 696):
- -
- Al ser un producto de naturaleza peptídica tiene reversibilidad de acción terapéutica y la facilidad para metabolizarse propia de las sustancias protéicas.
- -
- Es una sustancia natural de tipo antibiótico, su poder microbicida está basado en su acción inhibidora del intercambiador sodio-protón.
- -
- Es un inhibidor específico, activo a concentraciones muy bajas lo que disminuye los efectos secundarios.
- -
- Puede operar en un gran rango de concentraciones de sales, temperatura y pH, lo que le convierte en el fármaco de elección en determinados procesos.
- -
- Es resistente a la acción de la tripsina, lo que permite su utilización en el tracto intestinal.
- -
- Al tratarse de un péptido sensible a pronasa su efecto puede terminarse cuando se desee.
La importancia de disponer de inhibidores del
intercambiador sodio-protón (NHE), reside en las
consecuencias que se derivan de la actividad de este mecanismo en
diversos procesos patológicos. A excepción de la halocina H7, no se
conoce ningún producto natural y/o de naturaleza peptídica capaz de
inhibir el NHE. A pesar de que la halocina H7 ya presentaba una
serie de ventajas respecto a los inhibidores de tipo sintético, la
gran desventaja que podríamos destacar frente a ellos es que el
proceso de obtención y purificación es demasiado largo, complejo y
caro, y, además, que al tratarse de una proteína de 30.5 kD, podría
inducir respuesta inmunitaria.
El PINHE, objeto de esta patente, además de
poseer todas las ventajas mencionadas anteriormente para la
halocina H7 respecto al resto de inhibidores del NHE conocidos,
presenta nuevas ventajas que permiten asegurar que nos encontramos
ante una sustancia de elección y con mayor potencial desde el punto
de vista aplicado.
Las principales ventajas que ofrece el PINHE
respecto a la halocina H7 son:
- -
- Es un péptido de pequeño tamaño, con un peso molecular 11 veces menor que el de la Halocina H7, lo que podría implicar un menor riesgo de capacidad antigénica.
- -
- Mayor facilidad de manipulación.
\newpage
- -
- Aunque se obtiene a partir del cultivo del mismo microorganismo, tiene un proceso de purificación mucho más rápido, fácil y económico.
Por lo que respecta a la actividad del PINHE, al
igual que la halocina H7, inhibe de forma específica el NHE.
La presente invención describe un péptido
(PINHE), derivado de la halocina H7, de pequeño peso molecular y
definido por su secuencia de aminoácidos u otra análoga que actúa
como inhibidor fisiológico natural del intercambiador
Na^{+}/H^{+} (NHE) en eucariotas. El PINHE se obtiene por
fraccionamiento (que incluye una precipitación con acetona en frío)
y purificación del sobrenadante del cultivo de la haloarquea
Haloferax gibbonsii alicante SPH7 que lo produce de forma
natural o bien, sobre la base de su secuencia de aminoácidos, puede
sintetizarse o modificarse y expresarse por técnicas moleculares o
de ingeniería genética. El PINHE es estable y activo en rangos
amplios de concentraciones salinas, temperatura y pH, resistente a
tripsina y sensible a pronasa y también puede ser liofilizado y
reconstituido sin pérdida de actividad. El empleo de dicho péptido
inhibidor de NHE, o sus sales farmacéuticamente aceptables, en la
elaboración de una composición farmacéutica constituye otro objeto
adicional de esta invención. De su acción reversible como inhibidor
del intercambiador Na^{+}/H^{+} de eucariotas tanto del péptido
como de sus sales se deriva sus usos: (1) para el tratamiento o
profilaxis de patologías en mamíferos, preferente humanos,
ocasionados por una hiperactividad o una actividad indeseada del
NHE, tales como enfermedades cardiovasculares (p.e. hipertensión,
infarto de miocardio, arritmias, angina de pecho, etc.),
enfermedades cerebrales (p.e. infarto cerebral, edema cerebral,
embolias, etc.), enfermedades renales (p.e. fallo renal),
enfermedades metabólicas (p.e. diabetes mellitus, hiperlipidemias,
etc.), enfermedades con hiperproducción de ácido clorhídrico de la
mucosa gástrica, enfermedades con alteraciones en el transporte
epitelial, enfermedades con alteraciones del volumen celular,
procesos proliferativos patológicos (p.e. cáncer, tumores, fibrosis,
etc.), y alteraciones asociadas a una actividad excesiva de células
del sistema inmunitario (p.e. inflamación, hipersensibilidad) y
tambien su uso en (2) otras enfermedades o patologías que cursen
con isquemia y lesión por reperfusión
post-isquémica debida a la hiperactividad del NHE,
entre otros: isquemias por alteraciones vasculares primarias o
secundarias en diversos tejidos y órganos anexos, por reperfusión
post-infarto, por transplante de órganos o tejidos,
por cirugía cardíaca y vascular, por isquemia en situaciones
fisiológicas tales como ejercicio físico, embarazo, parto,
menstruación, etc., por traumatismos, o cualquier patología que
implique hipoperfusión tisular (choque hemorrágico, térmico,
neurogénico, etc.) y en cualquier proceso quirúrgico en general.
Otros usos, derivados de su actividad, son como contraceptivo (en
mamíferos macho), antibiótico o agente inmunorregulador y en otro
campo como modulador del estrés salino en plantas.
La invención proporciona un péptido de pequeño
tamaño inhibidor del intercambiador Na^{+}/H^{+}, en adelante
péptido inhibidor de NHE o PINHE, que comprende una secuencia de
aminoácidos seleccionada entre:
- a)
- la secuencia de aminoácidos identificada como SEQ ID NO 1 (PINHE) o un fragmento de la misma; y
- b)
- una secuencia de aminoácidos análoga a la secuencia definida en a)
Tal como se utiliza en la presente invención, el
término "NHE" se refiere a las distintas formas de NHE
presentes en distintos organismos procariotas o eucariotas.
En el sentido utilizado en esta invención, el
término "análoga" pretende incluir a cualquier secuencia de
aminoácidos (aás.) que pueda ser aislada o construida en base a la
secuencia de aás. mostrada en la SEQ ID NO 1, por ejemplo, mediante
la introducción de sustituciones de aás., incluyendo la inserción de
uno o más aás., la adición de uno o más aás. en cualquiera de los
extremos de la molécula o la delección de uno o más aás. en
cualquier extremo o en el interior de la secuencia.
En general, una secuencia de aás. análoga es
sustancialmente homóloga a la secuencia de aás. identificada como
la SEQ ID NO 1. En el sentido utilizado en esta descripción, la
expresión "sustancialmente homóloga" significa que las
secuencias de aás. en cuestión tienen un grado de identidad, a nivel
de aá., de, al menos, un 40%, preferentemente de, al menos un 85%,
o más preferentemente de, al menos, un 95%.
El péptido PINHE de la presente invención es
sintetizado por un microorganismo halófilo extremo perteneciente al
Dominio Archaea también conocidos como haloarqueas. En concreto, el
PINHE es producido por la cepa "alicante SPH7" de la
haloarquea Haloferax gibbonsii, que fue depositad en la
Colección Española de Cultivos Tipo (CECT), Universidad de Valencia,
Edificio de Investigación, Campus de Burjasot, 46100 Burjasot,
Valencia, España, correspondiéndole el número de depósito CECT
4547.
La práctica totalidad de las haloarqueas producen
sustancias peptídicas con actividad antagónica frente a otros
miembros del grupo. Estas sustancias son denominadas genéricamente
como halocinas (Rodriguez-Valera F, Juez G, Kushner
DJ, 1982, Can. J. Microbiol. 28:
151-154) y hasta el momento solo se han estudiado
un reducido número de ellas (O'Connor EM, Shand RF. J Ind
Microbiol Biotechnol. 2002 28:23-31).
Sólo se conoce la secuencia completa de la halocina H4 (Cheung J,
Danna KJ, O'Connor EM, Price LB, Shand RF. 1997 J. Bacteriol
179: 548-51) y de la halocina S8 (Price LB,
Shand RF. 2000. J. Bacteriol. 182:
4951-8). Con relación al mecanismo de acción,
únicamente se conoce el de la halocina H7 (antes H6, Meseguer I,
Torreblanca M, Konishi T. 1995. J. Biol. Chem. 270:
6450-5) de la que deriva el PINHE objeto de esta
invención.
Dada la amplia actividad antagónica de las
haloarqueas y la fragilidad de estos microorganismos ante una
inhibición de su intercambiador NHE, este constituye una diana
perfecta para un mecanismo de competencia o antagonismo en la lucha
por la supervivencia poblacional. Es por tanto más que probable que,
entre la amplia gama de halocinas, puedan encontrarse péptidos
homólogos al PINHE que pueden estar o no, de forma natural.
En una realización particular, la molécula de
aás. de la invención es una molécula de aás. de la cepa "alicante
SPH7" de Haloferax gibbonsii de SEQ ID NO 1 (péptido
PINHE). El PINHE es un péptido derivado de la halocina H7 que posee
toda su actividad, por ello un aspecto importante de la invención es
la relación existente entre la halocina H7 y el PINHE, y cómo se
llega a obtener éste partiendo de la halocina. En la actualidad no
existen más estudios sobre la halocina H7 o el PINHE que los
realizados por los inventores y por el momento se desconoce la
secuencia peptídica de la halocina H7, de la que únicamente se
conoce el extremo amino terminal. También sabemos que las células
excretan al medio una sustancia inhibidora del NHE en forma de
halocina H7 y que el PINHE, como tal, no se detecta en el medio. Se
sabe que el PINHE de algún modo forma parte de la halocina H7, sin
embargo, se desconoce si la halocina H7 es un monómero con una
secuencia peptídica única que incluye la secuencia del PINHE o si
se trata realmente de un dímero formado por dos péptidos, uno
pequeño e hidrofóbico responsable de la actividad inhibidora del
NHE, y otro de mayor tamaño e hidrofílico que actuaría como medio
de transporte para el PINHE. Esta segunda opción sería la mas
lógica teniendo en cuenta que el tratamiento para separar el PINHE,
con acetona en frío, no es demasiado agresivo como para romper
enlaces peptídicos. Cualquiera que sea el caso, la forma de
obtención de la halocina o el PINHE tiene una serie de pasos en
común (producción, obtención de la solución sin células,
clarificación y concentración) hasta obtener un concentrado
protéico que contiene la halocina H7 y luego en función del
procedimiento de purificación empleado, se obtiene la halocina o el
PINHE. El paso clave para la obtención de una u otro, como ya se ha
mencionado, es la precipitación con acetona. La separación del PINHE
del resto de la molécula de halocina, requiere que la precipitación
con acetona se haga en frío y durante un tiempo más o menos
prolongado, preferiblemente varias horas. Sin el tratamiento de la
acetona, u otro que permita la separación del PINHE, se puede
llegar a purificar la halocina 1-17 utilizando los
procedimientos ya descritos (Torreblanca M, Meseguer 1,
Rodriguez-Valera F. 1989, J. Gen. Microbiol.
135: 2655-2661).
El PINHE es un péptido derivado de la halocina H7
que posee toda su actividad, por lo que se deduce que el PINHE se
corresponde con la fracción peptídica en donde reside la actividad
de la halocina H7.
El péptido PINHE de la invención procede de la
cepa "alicante SPH7" de Haloferax gibbonsii y puede
encontrarse en formas parecidas en otras especies de
microorganismos, donde pueden estar de forma natural o en otro caso,
también podrían estar como resultado de un proceso de
transformación génica por el que el organismo transformado exprese
dichos péptidos inhibidores de NHE. La molécula aminoacídica de la
presente invención puede ser aislada, entre otros, mediante
técnicas convencionales, a partir de extractos proteicos de
microorganismos que la contengan, o mediante el empleo de
anticuerpos mono- o policlonales, preparados gracias a la
información de la secuencia de aás. proporcionada en esta
invención.
El péptido inhibidor del NHE de la invención
incluye los fragmentos del mismo que presentan dicha actividad
inhibidora del intercambiador Na^{+}/H^{+} y que pueden ser
fácilmente identificados a partir de los conocimientos existentes
en el sector de la técnica.
La molécula de aás. de la presente invención
puede ser expresada, en general, mediante técnicas de ingeniería
genética que permitan la expresión recombinante del péptido
inhibidor de la presente invención mediante la utilización de un
vector de expresión, que contenga una secuencia de nucleótidos
codificante de la secuencia SEQ ID NO 1, en una amplia gama de
células huésped. En general, dicho vector de expresión comprende,
al menos, una secuencia de ADN codificante del péptido inhibidor de
la presente invención y, al menos, un promotor que dirige la
transcripción de dicha secuencia de nucleótidos de interés, al que
está operativamente enlazado, y otras secuencias necesarias o
apropiadas para la transcripción y su regulación adecuada en tiempo
y lugar, por ejemplo, señales de inicio y terminación, sitios de
corte, señal de poliadenilación, origen de replicación, activadores
transcripcionales (enhancers), silenciadores transcripcionales
(silencers), etc. Ejemplos de vectores de expresión apropiados
pueden seleccionarse de acuerdo con las condiciones y necesidades de
cada caso concreto entre plásmidos, cromosomas artificiales de
levadura (YACs), cromosomas artificiales de bacteria (BACs),
cromosomas artificiales basados en el bacteriófago P1 (PACs),
cósmidos o virus, que pueden contener, además, un origen bacteriano
o de levadura de replicación para que pueda ser amplificado en
bacterias o levaduras, así como un marcador utilizable para
seleccionar las células transfectadas diferente al gen o genes de
interés. Este vector puede ser obtenido por métodos convencionales
conocidos por los técnicos en la materia (Sambroook, J., Russell DW
2001 Molecular Cloning: A laboratory manual. Tercera
edición. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor
NY.).
La "síntesis artificial" significa la
utilización de técnicas físico-químicas de síntesis
que no impliquen la utilización de microorganismos u otros seres
vivos para la obtención de un compuesto que contenga total o
parcialmente la secuencia del péptido inhibidor de la presente
invención y que tenga actividad inhibitoria sobre el NHE.
El término "procedimientos mixtos" tal como
se utiliza en la presente invención significa la utilización
conjunta de procedimientos de manipulación biológica y síntesis
artificial para la obtención de un compuesto que contenga total o
parcialmente la secuencia del péptido inhibidor de NHE de la
presente invención y que tenga actividad inhibitoria sobre el
NHE.
Dentro del alcance de esta invención se
encuentran las sales farmacéuticamente aceptables del péptido
inhibidor de NHE proporcionado por esta invención. El término
"sales farmacéuticamente aceptables" incluye las sales
habitualmente utilizadas para formar sales metálicas o sales de
adición de ácidos. La naturaleza de la sal no es crítica, siempre y
cuando sea farmacéuticamente aceptable. Dichas sales pueden
obtenerse por métodos convencionales bien conocidos por los
técnicos en la materia haciendo reaccionar el ácido o la base
apropiados con el péptido inhibidor de NHE.
El péptido inhibidor de NHE de la presente
invención, así como sus sales farmacéuticamente aceptables, pueden
formar parte de diversos tipos de composiciones para su aplicación
en el cuerpo de un mamífero, preferiblemente el ser humano. En una
realización particular, dicha composición es una composición
farmacéutica. La composición farmacéutica proporcionada por esta
invención comprende una cantidad terapéuticamente eficaz de un
péptido inhibidor de NHE junto con al menos un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
El empleo de dicho péptido inhibidor de NHE, así
como sus sales farmacéuticamente aceptables, en la elaboración de
dicha composición farmacéutica constituye otro objeto adicional de
esta invención.
Las composiciones farmacéuticas que contienen el
péptido inhibidor de NHE pueden presentarse en cualquier forma de
administración, por ejemplo, sólida o líquida, y pueden
administrarse por cualquier vía apropiada, por ejemplo, por vía
oral, parenteral, rectal o tópica, para lo cual incluirán los
excipientes farmacéuticamente aceptables necesarios para la
formulación de la forma de administración deseada.
Un objeto adicional de la presente invención es
el empleo de dichas composiciones farmacéuticas en la elaboración
de un medicamento para el tratamiento o profilaxis de procesos
patológicos de mamíferros, preferiblemente humanos, ocasionados por
una hiperactividad o una actividad indeseada del NHE, tales como,
entre otros, enfermedades cardiovasculares (p.e. hipertensión,
infarto de miocardio, arritmias, angina de pecho, etc.),
enfermedades cerebrales (p.e. infarto cerebral, edema cerebral,
embolias, etc.), enfermedades renales (p.e. fallo renal, nefropatía
diabética, etc.), enfermedades metabólicas (diabetes mellitus,
hiperlipidemias, etc.), enfermedades con hipersecreción de ácido
clorhídrico en la mucosa intestinal, enfermedades con alteraciones
en el transporte epitelial, enfermedades con alteraciones del
volumen celular, procesos proliferativos patológicos (p.e. cáncer,
tumores, fibrosis, etc.), y alteraciones asociadas a una actividad
excesiva de células del sistema inmunitario (p.e. inflamación,
hipersensibilidad).
Un objeto particular de la presente invención es
el empleo de dichas composiciones farmacéuticas en la elaboración
de medicamentos para el tratamiento o profilaxis de procesos
patológicos de mamíferos, preferiblemente humanos, que cursen con
isquemia y lesión por reperfusión post-isquémica
debida a la hiperactividad del NHE. Entre estos procesos
patológicos se incluyen como destacables las lesiones isquémicas
producidas por alteraciones vasculares (tanto primarias como
secundarias) en tejidos pertenecientes a los sistemas
cardiocirculatorio (corazón y vasos sanguíneos y linfáticos),
respiratorio, digestivo, genito-urinario, nervioso
(central y periférico), musculoesquelético, hemático, endocrino y
piel, y en general todos los órganos anexos a los sistemas
anteriormente mencionados, procesos isquémicos por reperfusión
post-infarto, procesos isquémicos tras trasplante de
órganos y/o tejidos y procesos isquémicos en situaciones
fisiológicas tales como ejercicio físico, embarazo, parto,
menstruación, etc. Por otro lado, estas composiciones farmacéuticas
pueden administrarse como profilaxis de la isquemia o hipoxia que
tiene lugar durante la cirugía cardiaca y vascular (durante y
posteriormente a dichas cirugías) y también como consecuencia de
traumatismos incluyendo síndrome de aplastamiento y destrucción de
miembros, así como en cualquier patología que implique
hipoperfusión tisular (choque hemorrágico, cardiaco, térmico,
neurogénico, anafiláctico, etc.).
Otro objeto particular y adicional de la presente
invención es el empleo de la composición farmacéutica de la
presente invención en la contracepció. El receptor alpha
estrogénico es esencial para una adecuada función fértil en
individuos del sexo masculino ya que su actividad es necesaria para
el mantenimiento de la citoarquitectura en los conductos eferentes
y para la concentración de esperma en la cabeza del epidídimo. Zhou
et al. (PNAS 2001;
98(24):14132-14137) han mostrado que el
receptor alpha estrogénico es responsable de la expresión de una
isoforma del intercambiador sodio-protón
(Na^{+}/H^{+}) en los túbulos eferentes del sistema reproductor
en ratones machos, y por tanto, influye en la reabsorción de sodio y
transporte pasivo de agua, efectos éstos, necesarios para la
concentración de esperma. Asimismo, estos autores sugieren que la
interferencia en la función de este sistema intercambiador
sodio-protón (Na^{+}/H^{+}), sería capaz de
producir infertilidad en los machos, sin alterar la síntesis de
testoterona y por tanto los efectos fisiológicos de ésta, tales
como el mantenimiento de la libido. Así pues, la aplicación a la
contracepción resultaría de excepcional importancia, entre otras
situaciones, por la reversibilidad de efectos del citado
compuesto.
Otro objeto particular de la presente invención
es el empleo de la composición farmacéutica de la presente
invención por su actividad antibiótica en la elaboración de un
antibiótico para el tratamiento de enfermedades infecciosas, entre
otras, las enfermedades infecciosas provocadas por microorganismos
(p.e. Helicobacter pylori).
Otro objeto particular de la presente invención
es el empleo de cantidades efectivas del compuesto de la presente
invención como modulador de la expresión del intercambiador
Na^{+}/H^{+} en plantas que tuvieran una sobreexpresión
incrementada (constitutiva o no) del intercambiador Na^{+}/H^{+}
u otros similares. En los esfuerzos que se realizan para disponer
de plantas tolerantes a la sal, podría servir para modular la
expresión del intercambiador vacuolar Na^{+}/H^{+} de plantas
como el patentado por Eduardo Blumwald (Overexpression of a
Vacuolar Na^{+}/H^{+} Antiport in Arabidopsis. Apse MP,
Aharon GS, Snedden WA, Blumwald E. Science. 1999 Aug
20;285(5431):1256-8.), o cualquier otro, que
realizando la misma función, fuera inhibido por el péptido objeto
de la presente invención. En este sentido, la aplicación o no de
este inhibidor del intercambiador Na^{+}/H^{+} podría modular
la expresión de dicho gen permitiendo una mayor o menor actividad
enzimática de la proteína codificada por el mismo. Ello significaría
que en condiciones en las que no existiera un exceso de ClNa, la
planta que sobreexpresara el transportador podría tener menores
efectos indeseables (o carecer de ellos). Tales efectos indeseables
se podrían producir, por ejemplo, por una excesiva acidificación
del citoplasma. Aunque el intercambiador Na^{+}/H^{+} utiliza
Na^{+}, no se puede descartar que una presencia elevada de este
enzima pueda utilizar otros cationes, extruyendo protones al
citoplasma. La utilización comercial podría residir en la adición de
este inhibidor en cantidades controladas a plantas que tuvieran una
expresión incrementada (constitutiva o no) del intercambiador de
Na^{+}/H^{+} vacuolar arriba mencionado o enzimas
similares.
Figura 1A.- Electroforésis en SDS poliacrilamida
(12%) de una muestra conteniendo el PINHE tras su purificación con
acetona. Calle 1 y 2: Proteínas patrón. Calle 3: Muestra
conteniendo el PINHE. Tinción con nitrato de plata.
Figura 1B.- Electroforésis en
SDS-poliacrilamida (12%) de una muestra conteniendo
H7 semipurificada en primer lugar por Hidroxiapatito y en segundo
lugar por Sephadex G50. Calle 1: proteínas patrón. Calle 2: Muestra
conteniendo H7. Tinción con nitrato de plata.
Figura 1C.- Purificación de H7 (antes H6) (figura
publicada en Torreblanca M, Meseguer I,
Rodriguez-Valera F. 1989, J Gen. Microbiol.
135: 2655-2661) Tinción con azul Comassie.
Figura 2.- Halos de inhibición mostrando la
actividad inhibitoria del PINHE sobre la cepa indicadora en doble
capa.
Figura 3A.- Microfotografía óptica de células de
Halobacterium salinarum sin tratar (X 2000).
Figura 3B.- Microfotografía óptica de células de
Halobacterium salinarum tratadas con PINHE (X 2000).
Figura 4.- Relación entre la medida citométrica
de la acidez citoplasmática de células 293HEK (Ratio) y su pH
intracelular. El ratio es la medida de la fluorescencia de BCECF en
el citoplasma expresada como cociente entre la fluorescencia
naranja (FL3) y verde (LF1) detectadas por el citómetro. El pH
intracelular es el pH del medio donde se suspenden las células
permeabilizadas con nigericina. Para ello las células (1 x 10^{5}
células por ml) se incubaron a 37ºC durante 15 minutos con medio
DMEM con glucosa y sin bicarbonato que contenía a su vez FBS 10%,
HEPES 25 mM y BCECF 2 \mug/ml y cuyo pH se ajustó con HC1. El pH
intracelular se equilibró con el externo mediante la presencia en
el medio de 2 \mug/m1 de nigericina. Después de la incubación la
fluorescencia se midió en el citómetro.
Figura 5.- Recuperación del pH intracelular de
células 293HEK después de una acidificación con propionato sódico.
El ensayo se realizó en presencia (derecha) y ausencia (izquierda)
de 1000 U/ml del péptido inhibidor de NHE como se ha descrito en la
Figura 4 pero sin la presencia de nigericina. En el eje de abscisas
se representa el ratio y en ordenadas el tiempo transcurrido en el
ensayo (el tiempo máximo reseñado en la figura, (1023, equivale a
300 segundos).
El PINHE al igual que la halocina H7 se obtiene a
partir de la cepa CECT 4547 y siguiendo las mismas condiciones de
cultivo que se describen en la patente ES 2 094 695. A continuación
se eliminan las células, se concentra el sobrenadante y se dializa
con agua destilada mediante técnicas de filtración y
ultrafiltración tangencial siguiendo también el protocolo que allí
se indica. Llegados a este punto, se tropezaba con el principal
inconveniente que mostraba la halocina H7 que era el proceso de
purificación, que constaba de varias etapas en las que se requerían
técnicas lentas y costosas de purificación de proteínas.
Se prepara un cultivo de la cepa productora SPH7
(CECT 4547) en un medio que contenga 2,66 M ClNa, 0,13 M Cl_{2}Mg
x 6H_{2}O, 0,16 M SO_{4}Mg x 7H_{2}O, 6,64 mM Cl_{2}Ca,
53,3 mM ClK, 1,6 mM CO_{3}HNa, 4,48 mM BrNa, suplementado con
0.5% de extracto de levadura y pH de 7,2. Se incuba a 37ºC con
aireación hasta alcanzar una densidad óptica entre 0,9 y 1 a 600 nm.
A continuación se separan las células mediante la utilización de un
sistema de filtración tangencial con filtros de tamaño de poro de
0,45 \mum. Posteriormente se eliminan grandes macromoléculas
mediante ultrafiltros de 100.000 Daltons. A continuación, el
filtrado se concentra utilizando ultrafiltros de 1000 Daltons. El
concentrado se dializa frente a agua destilada y se procede como
sigue:
Precipitación con tres o más volúmenes de acetona
en frío durante 18-24 horas.
El PINHE queda en el sobrenadante y se elimina el
precipitado que contiene las impurezas por centrifugación.
Se toma el sobrenadante y se elimina la acetona
(p.e. mediante un rotavapor).
Se comprueba el grado de pureza del PINHE.
Si no se ha alcanzado un grado de pureza
satisfactorio (aproximadamente del 90%) se repite de nuevo el
proceso.
La determinación del grado de pureza de las
muestras que contienen PINHE se realizó mediante análisis en geles
de poliacrilamida en SDS (figura 1A) siguiendo el protocolo
descrito por Laemmli (Laemmli UK, 1973. J. Mol. Biol.
80: 575-599). El PINHE así obtenido es
susceptible de ser tratado para obtener su secuencia peptídica que
se indica en la SEQ ID NO 1.
A partir del concentrado dializado, podemos
obtener halocina H7 siguiendo otro procedimiento que no incluya la
precipitación con acetona. Así una muestra del concentrado se
aplicó en una columna de hidroxiapatito en tampón conteniendo
fosfato potásico 10 mM, 2'5 M NaCl, pH 7'2 y eluido utilizando un
gradiente lineal de tampón fosfato potásico 10-400
mM, 2'5 M NaCl, pH 7'2. Se colectaron fracciones de 10 ml y de cada
una se realizó un test para determinar su actividad
inhibitoria.
Las fracciones que contenían la mayor actividad
inhibitoria fueron concentradas hasta un volumen final de 3 ml.
Posteriormente se dializaron frente a agua destilada y se filtraron
utilizando una columna de Sephadex G-50 previamente
equilibrada en tampón 0'05 M TRIS/HC1, pH 6'7. Las fracciones de 1
ml se eluyeron en el mismo tampón. Aquellas que contenían la
máxima actividad se juntaron y concentraron hasta un volumen de 1'5
ml. En este punto el grado de la pureza de la muestra se determinó
20 mediante una electroforesis en gel de poliacrilamida en SDS
(figura 1B) siguiendo el protocolo descrito por Laemmli (Laemmli
UK, 1973. J. Mol. Biol. 80: 575-599).
Si se desea mayor grado de pureza hay que
continuar el proceso utilizando otros métodos adicionales de
purificación de proteínas. Utilizando cromatografía de alta 5
presión, como se describe por ejemplo en Torreblanca y colaboradores
(Torreblanca et al 1989, J. Gen. Microbiol.
135: 2655-2661), se puede alcanzar un buen
grado de pureza, si bien el rendimiento del proceso es bajo (la
figura 1C se muestra el resultado de este procedimiento de
purificación).
Tiene un peso molecular de 2733.8 Daltons
calculado por espectrometría de masas que se corresponde con el
peso calculado como la suma de los pesos de los aminoácidos que lo
componen.
A partir de su secuencia, se deduce que el PINHE
es un péptido con carácter 15 hidrofóbico. Esto está en concordancia
con la dificultad que ha mostrado para disolverse en agua después
de haber sido liofilizado.
Para estudiar otras propiedades
fisico-químicas, se tomaron muestras de PINHE, se
determinó su actividad y se sometió a diversos tratamientos tras los
cuales se determinó nuevamente la actividad remanente. Como
resultado de ello se determinó lo siguiente:
El PINHE es resistente a la desnaturalización
térmica, siendo capaz de soportar 100ºC durante varios minutos y es
necesario un tratamiento de 10 min. a 121ºC para destruir
totalmente su actividad por calor.
El PINHE mantiene toda su actividad en un amplio
rango de soluciones salinas que va desde el agua destilada hasta
soluciones saturadas de sales. Asimismo mantiene su actividad en
una gran diversidad de soluciones acuosas, no habiéndose encontrado
hasta el momento pérdida de actividad por estos motivos en ningún
caso.
El PINHE soporta un amplio rango de pH del
disolvente, siendo activa al menos, a valores de pH comprendidos
entre 5 y 9.
Proteasas como la tripsina no le afectan, sin
embargo es sensible a otras enzimas tales 30 como la pronasa.
Es susceptible de liofilización sin pérdida de
actividad aunque para la rehidratación posterior requiere
previamente disolución en un solvente como el DMSO.
Se trata además de una sustancia muy estable,
capaz de conservar toda su actividad en soluciones acuosas
estériles durante largos períodos de tiempo. De igual modo soporta
bien las bajas temperaturas, incluso la congelación, aunque se ha
observado una disminución parcial de su actividad tras sucesivas
congelaciones y descongelaciones.
La actividad del PINHE se determina del mismo
modo que la de la halocina H7, utilizando el sistema denominado de
dobles capas conteniendo la cepa indicadora.
Se prepara un medio de cultivo sólido tal que
contiene los mismos componentes que el 10 medio líquido indicado en
el ejemplo 1 añadiendo un 2% de agar-agar. Se
distribuye en placas Petri a razón de 10 ml por placa y se deja
solidificar. Se preparan tubos con 5 ml del mismo medio que se
mantienen a 50ºC para evitar la solidificación. A estos tubos se
les añade una suspensión microbiana conteniendo aproximadamente
10^{6} células de la cepa indicadora de Halobacterium
salinarum y rapidamente se vierte sobre las placas 15 antes
preparadas y se deja también solidificar, generando así la doble
capa. Se preparan diluciones seriadas de la muestra de PINHE a
ensayar. De estas diluciones se depositan 10 \mul sobre la doble
capa y se deja a temperatura ambiente hasta su completa absorción.
Posteriormente se incuban las placas a 37ºC durante cuatro días. La
máxima dilución del PINHE que muestra un halo de inhibición
detectable se considera que contiene 1 unidad arbitraria, es decir
100 unidades arbitrarias (UA) por mililitro (Figura 2).
Se ha comprobado que el PINHE al igual que la
halocina H7, tiene actividad antibiótica frente a microorganismos
del grupo de las haloarchaeas. Estos 25 microorganismos que habitan
en ambientes hipersalinos (aprox. 4 M de Na^{+} en el medio
externo frente a 2 M de Na^{+} intracelular), poseen un NHE
unidireccional muy eficiente para sacar este ión del medio
intracelular aprovechando la fuerza protón motriz. La inhibición
del NHE es letal para estos microorganismos, ya que en un medio
donde la concentración de Na^{+} es tan elevada, si no funciona
el NHE, este ión se acumula intracelularmente provocando un
desequilibrio osmótico. El agua entra al interior celular, la célula
se hincha y finalmente se lisa y muere. Una forma de detectar este
efecto letal es por observación al microscopio de las células antes
y después del tratamiento.
Para ello se prepara un cultivo de la cepa
indicadora de Halobacterium salinarum, se centrifuga y se
resuspende en una solución conteniendo la misma concentración de
sales del ejemplo 1. Se cuantifican las proteínas y se ajusta hasta
alcanzar la concentración de 1 mg de proteínas por mililitro. Se
toman fotos de las células utilizando un microscopio de contraste
de fases (figura 3A). Se añade PINHE purificado a una concentración
final de 640 UA por miligramo de proteina. A distintos intervalos
de tiempo se toman muestras para ser fotografiadas al microscopio.
A partir de los diez minutos se observa una deformación e hinchazón
de las células que aumenta progresivamente con el tiempo hasta
producirse la lisis celular. Al cabo de 24 horas solo pueden
observarse restos de envolturas celulares, denominados fantasmas
(figura 3B).
Un grupo de 6 ratas wistar se dividió en
dos, tres para el grupo control y otras tres para ser tratadas. A
este grupo le sería administrada intraperitonealmente una inyección
única de PINHE purificado a una concentración de 125 UA por gramo
de peso del animal. El grupo control fue tratado con suero salino.
Los animales se introdujeron en jaulas metabólicas individuales.
Tras la administración del PINHE se controló el peso del animal y
la ingesta de alimento y de agua a las 24, 48 y 72 horas de la
administración. Asimismo se recogía y medía el volumen de orina.
Para controlar el efecto del PINHE sobre la natriuresis se determinó
la concentración de sodio en la orina de las ratas. A las 24 horas
se observó un incremento del volumen de la orina del orden del
89-98% y un aumento de la concentración de sodio en
la orina del orden del 39-43% de las ratas tratadas
con PINHE respecto a las ratas control, lo cual indica un efecto
claramente diurético y natriurético del PINHE. Estos efectos son
compatibles con una actividad inhibidora del PINHE sobre el NHE. El
mecanismo podría ser una disminución de la tasa de reabsorción
tubular. Los efectos indicados revierten de forma espontánea a las
48-72 horas del tratamiento.
Las células 293HEK se cultivaron en medio de
cultivo constituido por DMEM conteniendo 4 gil de glucosa y 3.7 gil
de bicarbonato sódico y suplementado con 10% de suero fetal bovino,
2 mM L-glutamina, penicilina 1000 U/mi,
estreptomicina 1000 anfotericina 2.5 µg/ml y gentamicina 501.tg/ml.
El cultivo se realizó a 37ºC y en atmósfera de 5% de CO^{2}. Las
células se cultivaron hasta EL 80% de confluencia, entonces se
recolectaron mediante incubación con tripsina
0.25-0.12% y EDTA 0.01-0.03% y
centrifugación a 300g durante 10 minutos y el precipitado se
resuspendió en medio DMEM sin bicarbonato, conteniendo 10% de suero
fetal bovino (FBS) y 25 mM de Hepes. Se realizó un recuento del
número de células vivas utilizando un hemocitómetro y un colorante
vital (trypan blue dye). La suspensión celular se conservó en hielo
hasta el ensayo. El efecto inhibidor del PINHE sobre NHE de las
células 293HEK se realizó mediante un ensayo con un citómetro de
flujo, midiendo la recuperación del pH intracelular después de una
acidificación con ácido propiónico 1M (pH 7-7.5) en
presencia o ausencia (control) de PINHE. El ensayo contenía:
1x10^{5} células/mi, 10% de FBS, 2 µg/ml de BCECF
(2',7'-bis(carboxyethyl)-5,6-carboxyfluoresceina)
y hasta 1-2 ml de medio DMEM (Dulbecco's Modified
Eagle Medium) con glucosa y sin bicarbonato, 10% FBS y 25mM de
Hepes. Se incubó a 37ºC durante 10 minutos y a los tubos
correspondientes se les añadió PINHE a las concentraciones deseadas
entre 0 y 3000 U/ml y se incubó hasta la estabilización del pH
intracelular (5-30 minutos).
Se midió en un citómetro (EPICS
XL-MCL de Beckman-Coulter) la
fluorescencia de BCECF -medida como cociente entre las emisiones de
fluorescencia verde (FL1) y naranja (FL3)- y a continuación se
acidificó añadiendo ácido propiónico neutralizado con NaOH hasta pH
7-7.5 de una solución stock hasta conseguir una
acidificación intracelular deseada desde 7.2 hasta 6.4,
continuándose entonces la medida de fluorescencia de BCECF. La
relación entre la fluorescencia de BCECF y pH interno de las células
293HEK se realizó en experimentos paralelos equilibrando el pH
externo (utilizando distintos pH en la solución del ensayo) con el
pH interno, para lo que se añadió a la solución de ensayo 2 µg/ml
de nigericina para permeabilizar las células a los protones del
medio extracelular. Un ejemplo de la relación entre la
fluorescencia de BCECF -cociente FL3/FL1- de las células y su pH
interno se muestra en la Figura 4. Al producirse la acidificación
con propiónico tiene lugar un descenso brusco del pH interno de las
células desde valores de equilibrio 7.3-7.6 hasta
7.1-6.4. En este momento la célula pone en marcha
sus mecanismos de regulación de pH intracelular para restaurar el
pH de equilibrio. Sin embargo, la ausencia de bicarbonato en el
medio de ensayo inhabilita al intercambiador bicarbonato/cloruro
(CO3H^{-}/Cl^{-}) y además la presencia de Hepes en el medio
inhibe el cotransportador NBS por lo que la recuperación del pH
intracelular que tiene lugar después de la acidificación se debería
casi exclusivamente al intercambiador NHE. En la Figura 5 se
muestra un ejemplo de acidificación de células 293HEK en ausencia
(control) y en presencia de PINHE (1000 U/ml). La acidificación con
propionato sódico produjo una acidificación del citosol de las
células desde un pH en el equilibrio de 7.4 hasta un valor de 7.04.
Inmediatamente la célula comienza a restablecer el pH intracelular
como se pone de manifiesto en la Figura 5, tanto en el caso control
como en presencia de PINHE. A partir de los valores experimentales
se realizó una estimación de la velocidad inicial de recuperación
del pH intracelular sobre la base de un ajuste matemático de los
datos experimentales a una curva y la obtención de su derivada a
tiempo cero, lo que permite estimar valores iniciales de velocidades
de recuperación del pH intracelular de 0.37exp(-2) \DeltapH/s
para el control y de 0.11 exp(-2) \DeltapH/s en el caso de la
presencia de PINHE. Los resultados demuestran que el PINHE, tras la
acidificación del citosol, inhibe la recuperación del pH
intracelular debida al intercambiador de Na^{+}/H^{+}.
<110> CONSEJO SUPERIOR DE INVESTIGACIONES
CIENTÍFICAS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> NUEVO PÉPTIDO INHIBIDOR DEL
INTERCAMBIADOR DE Na^{+}/H^{+} (PINHE) Y SUS APLICACIONES
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> PINHE
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Haloferax gibbonsii alicante
SPH7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ser Trp Ile Asp Ser Ala Ser Thr Ala Ala Leu
Gly Thr Asn Pro}
\sac{Val Thr Met Ser Ala Pro Gly Gly Thr Val Asn
Ile Asp}
Claims (10)
1. Un péptido inhibidor del intercambiador
Na^{+}/H^{+} caracterizado por una secuencia de
aminoácidos perteneciente al siguiente grupo:
la secuencia de aminoácidos identificada como SEQ
ID NO 1 o un fragmento de la misma;
y una secuencia de aminoácidos análoga a la
secuencia definida en a).
2. Un péptido según la reivindicación 1
caracterizado porque se obtiene, entre otros
microorganismos, a partir de la cepa "alicante SPH7" de la
haloarquea Haloferax gibbonsii (CECT 4547).
3. Un péptido según la reivindicación 1
caracterizado porque se obtiene por procedimientos de
ingeniería genética que permiten la expresión de dicho péptido, por
síntesis artificial o por procedimientos mixtos.
4. Una composición caracterizada porque
comprende un péptido según una cualquiera de las reivindicaciones 1
a la 3.
5. Una composición según la reivindicación 4,
caracterizada porque es una composición farmacéutica que
comprende una cantidad terapéuticamente eficaz de un péptido según
una cualquiera de las reivindicaciones 1 a la 3 y, al menos, un
excipiente farmaceúticamente aceptable.
6. Empleo de una composición farmacéutica según
las reivindicaciones 4 a la 5 en la elaboración de un medicamento
para el tratamiento o profilaxis de enfermedades y alteraciones
patológicas en mamíferos, preferentemente humanos, ocasionados por
una hiperactividad o una actividad indeseada del NHE, tales como,
entre otros, enfermedades cardiovasculares (p.e. hipertensión,
infarto de miocardio, arritmias, angina de pecho, etc.),
enfermedades cerebrales (p.e. infarto cerebral, edema cerebral,
embolias, etc.), enfermedades renales (p.e. fallo renal),
enfermedades metabólicas (diabetes mellitus, hiperlipidemias,
etc.), enfermedades con hiperproducción de ácido clorhídrico de la
mucosa gástrica, enfermedades con alteraciones en el transporte
epitelial, enfermedades con alteraciones del volumen celular,
procesos proliferativos patológicos (p.e. cáncer, tumores,
fibrosis, etc.), y alteraciones asociadas a una actividad excesiva
de células del sistema inmunitario (p.e. inflamación,
hipersensibilidad).
7. Empleo de una composición farmacéutica según
las reivindicaciones 4 a la 5 en la elaboración de un medicamento
para el tratamiento o profilaxis de enfermedades y alteraciones
patológicas en mamíferos, preferentemente humanos, que cursen con
isquemia y lesión por reperfusión post-isquémica
debida a la hiperactividad del NHE, entre otros,
- a)
- lesiones isquémicas producidas por alteraciones vasculares (tanto primarias como secundarias) en tejidos pertenecientes a los sistemas cardiocirculatorio (corazón y vasos sanguíneos y linfáticos), respiratorio, digestivo, genito-urinario, nervioso (central y periférico), musculoesquelético, hemático, endocrino y piel; así como en general todos los órganos anexos a los sistemas anteriormente mencionados.
- b)
- procesos isquémicos por reperfusión post-infarto,
- c)
- procesos isquémicos tras trasplante de órganos y/o tejidos,
- d)
- isquemia o hipoxia que tiene lugar durante la cirugía cardiaca y vascular,
- e)
- lesiones de tejidos causadas por isquemia en situaciones fisiológicas tales como ejercicio físico, embarazo, parto, menstruación, etc.
- f)
- isquemia o hipoxia como consecuencia de traumatismos incluyendo síndrome de aplastamiento y destrucción de miembros.
- g)
- Cualquier patología que implique hipo-perfusión tisular (choque hemorrágico, cardiaco, térmico, neurogénico, anafiláctico, etc.).
8. Empleo de una composición farmacéutica según
las reivindicaciones 4 a la 5 en la elaboración de un medicamento
que pueda ser utilizado como contraceptivo en mamíferos machos,
incluyendo humanos.
9. Empleo de una composición farmacéutica según
las reivindicaciones 4 a la 5 en la elaboración de un antibiótico
para el tratamiento de infecciones en mamíferos, preferentemente
humanos, entre otras, provocadas por microorganismos como
Helicobacter pylori.
10. Empleo de cantidades efectivas del péptido
inhibidor según una de las reivindicaciones 1 a la 3 para modular
la expresión del intercambiador Na^{+}/H^{+} en plantas que
tuvieran una sobreexpresión incrementada (constitutiva o no) del
intercambiador Na^{+}/H^{+} u otros similares.
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