ES2221376T3 - Formulacion de 2-metil-tieno-benzodiazepina. - Google Patents
Formulacion de 2-metil-tieno-benzodiazepina.Info
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Abstract
Un compuesto que es una sal de pamoato de olanzapina, o un solvato del mismo. Esta invención proporciona una formulación farmacéuticamente, con ingredientes eficientes en pequeño volumen, de sabor tolerable o agradable de 2-metil-4-(4-metil-1-piperazinil)-10H-tieno[2, 3-b][1, 5]benzodiazepina (denominada en lo que sigue en la presente invención como ¿olanzapina¿), o una sal de pamoato o un solvato adecuado para lo mismo.
Description
Formulación de
2-metil-tieno-benzodiazepina.
Esta invención proporciona una formulación
farmacéuticamente, con ingredientes eficientes en pequeño volumen,
de sabor tolerable o agradable de
2-metil-4-(4-metil-1-piperazinil)-10H-tieno[2,3-b][1,5]benzodiazepina
(denominada en lo que sigue en la presente invención como
"olanzapina"), o una sal de pamoato o un solvato adecuado para
lo mismo.
Olanzapina ha demostrado ser una gran promesa
para el tratamiento de pacientes psicóticos, y actualmente se
comercializa con ese objetivo. Dichos pacientes psicóticos a menudo
son poco cumplidores, haciendo difícil evaluar si un paciente ha
recibido o no la dosis adecuada de medicación. Los Solicitantes han
descubierto que puede ser especialmente deseable formular olanzapina
en una formulación de depósito, o como una formulación intramuscular
rápida para asegurar una dosificación constante y adecuada del
fármaco y para asumir el cumplimiento.
El documento
WO-A-97 0 9985 describe, por
ejemplo, el uso transdermal de olanzapina para el tratamiento de la
psicosis o de la manía aguda.
Dicha formulación debe diseñarse y seleccionarse
cuidadosamente debido a la tendencia de la olanzapina a ser
metaestable, a sufrir decoloración farmacéuticamente indeseable, y a
la sorprendente potencia de la olanzapina que requiere cuidado para
asegurar la homogeneidad y estabilidad de la formulación
terminada.
Típicamente, el técnico prepararía una forma
estérica de la sustancia activa del fármaco para conseguir una
liberación controlada. Desdichadamente, la molécula de olanzapina no
es adecuada para formar un producto estérico.
Además, los solicitantes han descubierto que la
olanzapina sufre decoloración indeseable cuando entra en contacto
con algunos excipientes, incluyendo combinaciones en polvo. La
decoloración se acentúa por las condiciones ambientales, elevadas
temperaturas y entornos húmedos. Aunque el fenómeno de decoloración
puede que no produzca un aumento en el total de sustancias
relacionadas, el cambio de color no se considera farmacéuticamente
aceptable de forma general a efectos comerciales.
Además, se sabe que el pH del tejido muscular
puede variar con el ejercicio, estrés y lesiones, lo que puede
afectar a la solubilidad del fármaco, y por tanto, a la velocidad de
absorción de los fármacos inyectables. Por tanto, es deseable
encontrar una formulación inyectable para liberación continua, cuya
velocidad de liberación del ingrediente activo dependa sólo
mínimamente del pH.
Los solicitantes han descubierto que una
formulación que comprende olanzapina, o una sal de pamoato o un
solvato adecuado para lo mismo como ingrediente activo, junto con
uno o más vehículos, puede resolver la necesidad, largo tiempo
sentida, de una formulación estable, farmacéuticamente elegante, con
una velocidad de liberación controlable que pueda resultar útil como
formulación de depósito, o para acción intramuscular rápida, o para
uso subcutáneo.
La presente invención proporciona una formulación
que comprende olanzapina, o una sal de pamoato o un solvato adecuado
para lo mismo, y un vehículo de microesferas oleaginoso o de
colesterol.
La presente invención proporciona, además, nuevas
sales de pamoato de olanzapina. Dichas sales son especialmente
útiles en la preparación de una formulación para liberación
controlada cuya velocidad de liberación dependa sólo mínimamente del
pH del entorno.
Puede usarse olanzapina. sin embargo, los
solicitantes han encontrado que las sales de pamoato de olanzapina
pueden preferirse para llevar a cabo la dilatación de la liberación
de las composiciones anteriores. También pueden ser útiles
diferentes formas solvatadas de olanzapina o de sus sales de
pamoato, entre las que se incluyen, por ejemplo, los dihidratos de
olanzapina D, E y F, pamoato de olanzapina, así como los solvatos de
monohidrato, dimetanolato, THF (tetrahidrofurano) y acetona del
pamoato de olanzapina. El pamoato de bis(olanzapina) y sus
solvatos pueden ser también útiles en la presente invención. Una sal
preferida es el pamoato de olanzapina monohidrato. También es una
sal preferida el pamoato de bis(olanzapina) monohidrato.
La formulación puede contener la forma anhidra de
olanzapina, más estable, denominada en la presente invención como
Forma II; sin embargo, también pueden tenerse en cuenta otras formas
de olanzapina.
Un ejemplo típico de un diagrama de difracción de
rayos X de la Forma II se muestra a continuación, en el que d
representa la distancia interplanar y la intensidad representa las
intensidades relativas típicas, tal como se muestra en la Tabla
1:
Los diagramas de difracción de rayos X
anteriormente reseñados se obtuvieron mediante un difractómetro de
rayos X en polvo Siemens D5000 con una fuente de radiación
K_{\alpha} de cobre de longitud de onda \lambda = 1,541
\ring{A}.
Un solvato de pamoato de olanzapina especialmente
preferido es el pamoato monohidrato cuyo diagrama típico de
difracción de rayos X en polvo se representa mediante la distancia
interplanar y la intensidad relativa que se muestra en la Tabla
2.
Otro solvato de pamoato de olanzapina
especialmente preferido es el pamoato dimetanolato, cuyo diagrama
típico de difracción de rayos X en polvo se representa mediante la
distancia interplanar y la intensidad relativa que se muestra en la
Tabla 3.
Otro solvato de pamoato de olanzapina preferido
es el solvato de pamoato THF, cuyo diagrama típico de difracción de
rayos X en polvo se representa mediante la distancia interplanar y
la intensidad relativa que se muestra en la
\hbox{Tabla
4.}
Otro solvato de pamoato de olanzapina preferido
es el solvato de pamoato de bis(olanzapina) en acetona, cuyo
diagrama típico de difracción de rayos X en polvo se representa
mediante la distancia interplanar y la intensidad relativa que se
muestra en la Tabla 5.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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Otro solvato de pamoato de olanzapina adicional
especialmente preferido es el pamoato de bis(olanzapina)
monohidrato, cuyo diagrama típico de difracción de rayos X en polvo
se representa mediante la distancia interplanar y la intensidad
relativa que se muestra en la Tabla 6.
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Los diagramas de difracción de rayos X en polvo
de las sales y solvatos de pamoato se obtuvieron mediante un
difractómetro de polvo de rayos X Siemens D5000 con radiación Cu
K_{\alpha} con la longitud de onda \lambda = 1,5406 \ring{A}.
Condiciones instrumentales:pendiente 0,01º; velocidad de escaneo 1,0
segundos/ etapa, intervalo 4º-35º 2\theta; 0,6 mm de rendija de
divergencia, 1,0 mm de rendija para la radiación dispersada; 0,2 mm
de rendija receptora; 50 kV; 40 mA, detector de estado sólido Kevex.
Las muestras se empaquetaron en contenedores para muestras con
rebajes para análisis.
La formulación de la invención puede contener
sustancialmente Forma II pura como el ingrediente activo. Tal como
se usa en el presente documento "sustancialmente pura" se
refiera a Forma II asociada con menos del 15% del polimorfo de
olanzapina no deseado (denominado en la presente invención como
"Forma indeseable", preferiblemente menos del 5% de Forma
indeseable, y más preferiblemente menos del 2% de Forma indeseable.
Además,
\hbox{la Forma II} "sustancialmente pura"
contendrá menos del 5% de impurezas químicas indeseables o de
solvente residual o de agua. En particular, la Forma II
"sustancialmente pura" contendrá preferiblemente menos del
0,05% del contenido en acetonitrilo, preferiblemente menos del
0,005% del contenido en acetonitrilo.
La Forma II es la forma anhidra más estable de
olanzapina que se conoce, y por tanto es importante para el
desarrollo comercial de formulaciones farmacéuticamente
elegantes.
O-dihidrato hace referencia al
polimorfo de olanzapina cristalina Dihidrato D (denominado en la
presente invención como "Dihidrato D") cuyo diagrama típico de
difracción de rayos X en polvo se representa mediante la distancia
interplanar y la intensidad relativa que se muestra en la Tabla
7.
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Otro dihidrato especialmente preferido es el
polimorfo de olanzapina cristalina Dihidrato B (denominado en la
presente invención como "Dihidrato B") cuyo diagrama típico de
difracción de rayos X en polvo se representa mediante la distancia
interplanar y la intensidad relativa que se muestra en la Tabla
8.
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Otro dihidrato de olanzapina preferido es el
polimorfo de olanzapina cristalina Dihidrato E (denominado en la
presente invención como "Dihidrato E") cuyo diagrama típico de
difracción de rayos X en polvo se representa mediante la distancia
interplanar y la intensidad relativa que se muestra en la Tabla
9.
Los diagramas de difracción de rayos X en polvo
mostrados en la presente invención que corresponden a las tablas 7,
8 y 9 se obtuvieron con un cobre k y longitud de onda \lambda =
1,541 \ring{A}. Las distancias interplanares de la columna
"d" están en Ángstroms. El detector fue un detector de estado
sólido Kevex de silicio y litio.
El dihidrato de olanzapina D se prepara mediante
agitación extensiva de la olanzapina técnica, tal como se describe
en Preparación 9, en condiciones acuosas. El término "condiciones
acuosas" se refiere a un disolvente acuoso que puede ser agua o
una mezcla de disolventes que comprende agua y un disolvente
orgánico que sea lo suficientemente miscible con agua para permitir
que la cantidad estequiométrica de agua necesaria esté presente en
la mezcla de disolventes. Si se usa una mezcla de disolventes,
entonces el solvente orgánico debe eliminarse, dejando agua tras de
sí, y/o sustituido por agua. El término "agitación extensiva"
debería significar aproximadamente entre cuatro (4) y seis (6) días;
sin embargo, el técnico apreciará que el tiempo variará con las
condiciones de reacción tales como temperatura, presión y
disolvente. Se prefiere que las condiciones acuosas incluyan un
solvente acuoso.
La finalización de la reacción puede
monitorizarse usando difracción de rayos X en polvo y otros
procedimientos similares, familiares para el técnico experto.
Algunas de dichas técnicas se describen a continuación.
Entre los procedimientos de caracterización de
compuestos se incluyen, por ejemplo, los análisis de difracción de
rayos x en polvo, análisis termogravimétrico (TGA), curvas de
humectación, curvas de rociado, calorimetría diferencial de barrido
(DSC), valoración volumétrica del agua, y análisis del contenido en
disolvente mediante RMN ^{1}H. También pueden emplearse en la
caracterización del compuesto SEM, porosidad, disolventes residuales
(HPLC), jeringabilidad, tamaño de partícula por microscopía óptica,
área superficial, densidad superior mediante IR (de la forma
solvato/ cristal), friabilidad.
Los dihidratos de olanzapina descritos en la
presente invención en las Preparaciones 9, 10 y 11 son dihidratos
verdaderos que tienen dos moléculas de agua por molécula de fármaco,
en los que las moléculas de agua están incorporadas en la red
cristalina del compuesto de dihidrato.
Los vehículos que promueven la absorción lenta de
olanzapina incluyen composiciones acuosas y no acuosas.
Entre las suspensiones acuosas de olanzapina,
sales de pamoato de olanzapina o solvatos adecuados para lo mismo se
incluyen los PLURONIC, tales como PLURONIC F68, que a la
concentración apropiada gelifica a la temperatura corporal. Para
este uso se prefieren concentraciones de PLURONIC en el intervalo de
40-45%, en presencia de geles de olanzapina a
temperatura corporal.
De forma alternativa, las suspensiones acuosas de
celulosas o gomas de polisacáridos, entre las que se incluyen
carboximetil celulosa sódica o alginato sódico, pueden proporcionan
la liberación prolongada de olanzapina, pamoato de olanzapina o
solvatos adecuados para lo mismo. Pueden usarse otros biopolímeros,
naturales o sintéticos, tales como chitosán, gelatinas, colágenos,
ácidos halurónicos, y similares. Además, puede añadirse hasta
aproximadamente un 30% en peso de agentes modificadores de la
liberación.
Entre las composiciones no acuosas se incluyen,
aunque no están limitadas a los PLURONIC hidrófobos, propilén
glicoles, polietilén glicoles, y formulaciones oleaginosas. Los
PLURONIC hidrófobos incluyen aquellos con un balance hidrófilo/
lipófilo inferior a 8, y pueden incorporarse de forma individual con
olanzapina, sales de pamoato de olanzapina o solvatos adecuados para
lo mismo, o en conjunción con hasta aproximadamente un 30% en peso
de agentes modificadores de la liberación que retarden la absorción
en el cuerpo.
Las composiciones oleaginosas incluyen
olanzapina, sales de pamoato o solvatos adecuados para lo mismo
suspendidas en o solubilizadas en aceites y en aceites espesados con
agentes anti hidratantes y o gelificantes. Estos agentes anti
hidratación o gelificantes proporcionan al cuerpo de aceite una
viscoelasticidad mayor (y por tanto, mayor estabilidad estructural),
y de esta forma, disminuyen la penetración por los fluidos oleosos
corporales, prolongando la absorción del fármaco.
El aceite se elige de forma preferible entre
aceites que se obtienen fácilmente en forma razonablemente pura, y
que sean fisiológica y farmacéuticamente aceptables. Por supuesto,
el aceite debe estar suficientemente refinado para que sea estable
en almacenamiento, no produzca un precipitado, no presente ninguna
reacción química observable, y no tenga reacciones fisiológicas
observables cuando se administra al cuerpo. Los aceites preferidos
son aceites vegetales tales como aceite de soja, aceite de
cacahuete, aceite de sésamo, aceite de semilla de algodón, aceite de
maíz, aceite de oliva, aceite de ricino, aceite de palma, aceite de
almendra, aceites fraccionados refinados tales como MYGLIOL 810,
MYGLIOL 812, y similares, y aceites derivatizados, como MYGLIOL 840
y similares. El aceite más preferido es MIGLYOL 812, un aceite de
coco fraccionado. Pueden usarse otros aceites siempre que cumplan
los requisitos especificados con anterioridad.
Entre los agentes anti hidratación y gelificantes
se incluyen varias sales de ácidos orgánicos, por ejemplo, ácidos
grasos que tienen tener aproximadamente 8 (preferiblemente, al menos
10) hasta aproximadamente 22 (preferiblemente, hasta 20) átomos de
carbono, por ejemplo, sales de aluminio, cinc, magnesio o calcio de
ácido láurico, ácido palmítico, ácido esteárico y similares. Dichas
sales pueden estar mono-, di- y trisustituidas, dependiendo de la
valencia del metal y del grado de oxidación del metal por el ácido.
Resultan particularmente útiles las sales de aluminio de dichos
ácidos grasos. El monoesterato y diesterato de aluminio son agentes
anti hidratación preferidos. Entre otros que pueden resultar útiles
se incluyen triesterato de aluminio, mono- y diesterato de calcio,
mono- y diesterato de magnesio y los correspondientes palmitatos,
lauratos y similares. La concentración de estos agentes anti
hidratación se basa normalmente en el peso del aceite más el del
fármaco, y está comprendido usualmente entre 1% y 10%, y más
normalmente entre 2% y 5% en peso. Otras concentraciones pueden ser
adecuadas para cada caso en particular.
La ceras, naturales y sintéticas, lecitinas,
tocoferoles y sus ésteres, tales como el acetato de tocoferol o
succinato de tocoferol, aceite de castor polioxietilén derivatizado
(por ejemplo, CREMOPHOR EL), aceite de castor polioxietilén
derivatizado hidrogenado (por ejemplo, CREMOPHOR RH40, CREMOPHOR
RH60), ésteres de ácido graso (por ejemplo, oleato de etilo y de
metilo), colesterol y sus derivados, pueden también incluirse en los
aceitas para comunicar viscoelasticidad o efectos de atenuación de
la absorción. Las ceras se eligen de forma preferible de fuentes
vegetales, animales o sintéticas. Entre las fuentes preferidas se
incluyen fuentes vegetales o sintéticas. Por ejemplo, las ceras
útiles incluyen la cera de carnauba y la cera de abeja. La cera de
abeja se comercializa en diferentes grados de purificación, que
incluyen cera blanca y cera amarilla. Pueden usarse otras ceras
sintéticas, o derivados de ceras, tales como CRODACOL
CS-50, CROTHIX, POLAWAX, SYNCROWAX, derivados de
cera de abeja con sorbitán poliloxietilenado (por ejemplo,
G-1726®) y similares.
Pueden añadirse otros agentes modificadores de la
liberación en los aceites, tanto para acelerar como para retardar la
liberación del fármaco. Entre estos se incluyen, pero no se limitan
al ácido oleico, los ésteres de ácido oleico, tales como oleato de
etilo, alcohol bencílico, benzoato de bencilo y similares. Los
aditivos modificadores de la liberación basados en lecitina
incluyen, pero no se limitan a, colesterol, etil celulosa,
tocoferoles, polivinil pirrolidona, y polietilén glicoles. Estos
aditivos puede añadirse a distintas concentraciones de hasta el 30%
en peso, de forma que afecte a la liberación del fármaco.
Se ha usado material biodegradable, tal como
diacetato hexaisobutirato de sacarosa (SDHB) en solución con un
solvente o solventes farmacéuticamente aceptables, tales como etanol
y polietilén glicol, para producir la liberación prolongada de
olanzapina. También pueden usarse otras composiciones de SDHB con
agentes modificadores de la liberación en concentraciones de hasta
aproximadamente el 20% en peso, tales como propilén glicol,
PLURONIC, celulosas, lecitinas, aceites y similares para modificar o
prolongar la liberación de olanzapina.
Una formulación oleaginosa preferida comprende
olanzapina, sales de pamoato o solvatos adecuados para lo mismo, un
vehículo oleoso y un agente gelificante o anti hidratación. Incluso
más preferida es una formulación oleaginosa que comprende pamoato de
olanzapina monohidrato MIGLYOL 812 y cera blanca.
Tal como se usa en la presente invención, el
término "micropartícula" debería tener el significado común
conocido para el técnico experto. De esta forma, el término incluye,
pero en ninguna forma se limita a microesferas en las que el
ingrediente activo puede estas uniformemente distribuido en todo el
vehículo, o microcápsulas en las que el ingrediente activo está
rodeado por una carcasa externa bien definida, y similares. La
micropartículas pueden preparase mediante técnicas, tales como
coacervación de complejos, incompatibilidad polímero/ polímero,
polimerización interfacial, polimerización in situ,
enfriamiento por rociado, lecho fluidizado, secado por rociado y
otros procedimientos conocidos para el técnico.
Por ejemplo, pueden conformarse microesferas de
colesterol usando un procedimiento de evaporación de disolvente que
atrape la olanzapina con eficacia, o una sal de pamoato de
olanzapina o un solvato adecuado para lo mismo, y que proporciona
una liberación sostenida de olanzapina en el cuerpo. El
procedimiento de atrapamiento consiste en emulsionar una solución
orgánica de colesterol, la fase dispersa, y el ingrediente activo de
interés en el medio de procesamiento, una solución de tensioactivo
acuoso. La solución de tensioactivo acuoso permite la formación de
una emulsión estable y evita la aglomeración.
La emulsión puede llevarse a cabo mediante los
procesos generales conocidos por aquellos expertos en la técnica,
entre los que se incluyen, pero no se limitan a, agitación con imán,
mezcladora, agitador vertical, homogeneizador en línea, mezclador
estático, y similares.
Entre los ejemplos de compuestos catiónicos,
aniónicos y no iónicos que pueden usarse como tensioactivos se
incluyen, pero no se limitan a, alcohol polivinílico (PVA),
carboximetil celulosa, gelatina, polivinil pirrolidona, TWEEN 80,
TWEEN 20, lauril sulfato de sodio, y similares. La concentración de
tensioactivo debe ser suficiente para estabilizar la emulsión. La
concentración del tensioactivo será responsable del tamaño final de
las microesferas de colesterol. Generalmente, el tensioactivo en el
medio acuoso estará entre 0,1% a aproximadamente 20% en peso,
dependiendo del tensioactivo, el solvente usado para disolver el
colesterol, y el medio de procesado empleado.
De forma alternativa, el medio de procesado puede
ser un aceite inmiscible con colesterol. Entre los ejemplos de
dichos aceites se incluyen, pero no se limitan a, aceite mineral y
aceite de silicona. Los tensioactivos adecuados al medio de
procesado oleoso deben elegirse para estabilizar la emulsión y
optimizar el tamaño final de las microesferas de colesterol
resultantes. Además, pueden añadirse tensioactivos a la fase
dispersa, o fase colesterol, para un efecto beneficioso sobre la
estabilidad de la emulsión, tamaño de la microesfera, y
rendimiento.
Los derivados de colesterol empleados para
alargar la duración de la liberación incluyen en acetato de
colesterol, hemisuccinato de colesterol, oleato de colesterol,
palmitato de colesterol, estearato de colesterol, y similares. Se
emplean aditivos compatibles con el colesterol para alargar todavía
más la liberación, tales como ácido oleico, oleato de etilo, oleato
de metilo, triestearina, y similares.
La concentración de agente emulsionante, cantidad
de agitación, velocidad de agitación, y temperatura de la emulsión
agitada, afectarán la velocidad de eliminación del solvente, y el
tamaño y calidad de las microesferas de colesterol resultantes. En
general, el intervalo aceptado de tamaños de micropartículas está
comprendido entre 1-5.000 \mum. Un intervalo
preferido de tamaños de micropartículas está comprendido entre
20-5.00 \mum. Un intervalo más preferido está
comprendido entre 30-200 \mum. Incluso más
preferido es de 40 a 100 \mum.
Brevemente, una solución acuosa de tensioactivo
de alcohol polivinílico (PVA) se fabrica disolviendo el PVA en agua
desionizada. Se sabe que son efectivas concentraciones de PVA de
hasta el 6%, pero puede quedar limitada si la viscosidad del medio
de procesado es demasiado alta. Para esta invención, una
concentración preferida de alcohol polivinílico es 1% (5 g de PVS
añadido a 500 ml de agua desionizada). La disolución de tensioactivo
se agita con un imán y se calienta hasta 50-60ºC
durante varias horas hasta que todo el PVA queda disuelto. Se deja
enfriar la disolución hasta temperatura ambiente. La disolución de
tensioactivo de PVA se vierte en un contenedor cuadrado de plástico
y se agita con un agitador vertical a 450 RPM. Se disuelven
olanzapina y colesterol en cloruro de metileno. La fase dispersa se
vierta directamente, e inmediatamente, en la solución de PVA con
agitación, y se deja agitando durante 18 horas a temperatura
ambiente, para dejar que el cloruro de metileno se evapore y se
formen las microesferas de colesterol.
Las microesferas de colesterol pueden recogerse
aislando las microesferas mediante tamices normalizados, lavadas con
agua u otro medio apropiado, y secadas al aire. También pueden
usarse otros procedimientos de recogida y secado, y puede usarse
equipo farmacéuticamente aceptable conocido por aquellos expertos en
la técnica.
El tamaño de partícula de olanzapina, sales de
pamoato o solvatos adecuados para lo mismo, usadas en las
formulaciones de esta invención pueden controlarse y conseguirse
mediante procedimientos de reducción del tamaño de partículas
conocidos por aquellos expertos en la técnica, tales como los
molinos de chorro de aire. El fármaco molido puede variar en tamaño
de partícula desde gruesa a fina, dependiendo del tipo de
formulación usada y las propiedades deseadas para la liberación del
fármaco. Las partículas gruesas tienen un tamaño medio de partícula
de entre 20 a aproximadamente 60 \mum; las partículas medias entre
aproximadamente 5 a aproximadamente 20 \mum; y las partículas
finas son inferiores a 5 \mum.
Tal como se usa en la presente invención, el
término "mamífero" se refiere a la clase Mammalia de los
vertebrados superiores. El término "mamífero" incluye los seres
humanos, pero no se limita a estos. El término "tratar" tal
como se usa en la presente invención incluye profilaxis de la
dolencia mencionada, o mejoría o eliminación de la dolencia, una vez
que ha sido diagnosticada.
Olanzapina es efectiva en un amplio rango de
dosificación, la dosis real administrada dependerá de la dolencia a
tratar. Por ejemplo, en el tratamiento de humanos adultos, pueden
usarse dosificaciones desde aproximadamente 0,25 a 200 mg,
preferiblemente de 1 a 30 mg, y más preferiblemente de 1 a 25 mg por
día. Así, la formulación de depósito puede ajustarse para
proporcionar la deseada dosificación diaria durante un periodo entre
varios días hasta cerca de un mes.
Si se contempla una formulación multidosis,
pueden necesitarse vehículos adicionales, tales como conservantes.
Por ejemplo, pueden emplearse conservantes tales como tocoferol o
galato de propilo, aunque no se limita a estos. Otros conservantes
incluyen fenol, cresol, benzoato de sodio y similares.
De forma más preferible, la formulación de
olanzapina se contiene en materiales de envasado que protegen la
formulación de la luz y de la humedad. Por ejemplo, entre los
materiales de envasado adecuados se incluyen contenedores de
polietileno de alta densidad color ámbar, y botellas de vidrio
coloreadas, jeringas de polipropileno y otros contenedores,
incluyendo pero sin limitarse a un embalaje tipo blister con
sobrecillos, fabricado de un material que inhiba el paso de la luz.
De forma más deseable, el embalaje incluirá un desecante. El
contenedor puede sellarse con un blister de aluminio para
proporcionar la protección deseada y mantener la estabilidad del
producto.
Los materiales de la presente invención pueden
adquirirse o prepararse mediante diferentes procedimientos bien
conocidos por aquellos normalmente expertos en la técnica. La
olanzapina puede prepararse según describe Chakrabarti en la Patente
de los Estados Unidos nº 5.229.382 ('382), que se incorpora en el
presente documento como referencia en su totalidad. Generalmente,
las sales de pamoato de olanzapina y los solvatos pueden prepararse
mezclando olanzapina y ácido pamoico en un solvente adecuado,
seguido de lavado y secado del producto resultante. Se necesitan
cantidades equimolares de ácido pamoico y olanzapina para las sales
(1:1) de pamoico y olanzapina. Las sales de pamoato de
bis(olanzapina) necesitan dos equivalentes de olanzapina por
cada mol de ácido pamoico.
Los Solicitantes han descubierto,
sorprendentemente, que la solubilidad del pamoato de olanzapina y de
los solvatos es ligeramente independiente del pH, especialmente en
el intervalo entre 4 y 8. Esto hace que dichas sales sean
especialmente adecuadas para inyecciones intramusculares, puesto que
el pH del músculo varía con el ejercicio, estrés, estado metabólico,
y sanado de lesiones, y oscila generalmente entre 7,4 y 4. Además,
las sales de bis(olanzapina) tienen la ventaja adicional de
mejorar la actividad del fármaco por unidad de masa, permitiendo una
carga resultante de micropartículas superior y reducir el volumen de
inyección por dosis unitaria.
Preferiblemente, la formulación tiene una
liberación sostenida continuada de una cantidad farmacéuticamente
efectiva de olanzapina, sales de pamoato o solvatos adecuados para
lo mismo, durante un periodo superior a 7 días, preferiblemente de
la menos 14 días, más preferiblemente de casi 30 días con una
liberación instantánea inferior al 15% del ingrediente activo. El
término "instantánea" debe entenderse por aquellos expertos en
la técnica como la liberación inmediata del ingrediente activo.
Además, una formulación preferida es inyectable mediante una aguja
del 21 o más pequeña, con un volumen de inyección de 2 ml o menos.
Otras características deseables incluyen el uso de excipientes que
sean toxicológica y farmacéuticamente aceptables. Las formulaciones
son deseables en forma de unidosis, preferiblemente para
administración subcutánea o intramuscular.
Las formulaciones reivindicadas en la presente
invención pueden usarse solas en combinación con otras. Dependiendo
del vehículo seleccionado, las formulaciones reivindicadas en la
presente invención pueden resultar especialmente útiles para
administración intramuscular de acción corta o como formulación de
depósito. La formulación de olanzapina en vehículo oleosos en útil
tanto en combinación con microesferas de colesterol (hasta el 50% de
masa por unidad de volumen) o por sí mismas sin el uso de
microesferas. Las microesferas de colesterol pueden mezclarse
también con un vehículo oleaginoso y agua en una cantidad de hasta e
incluyendo hasta el 50% de masa por unidad de volumen inyectado,
dependiendo del tipo de vehículo seleccionado.
Los siguientes ejemplos se proporcionan con
objetivos de ilustración, y no deben considerarse que limiten de
forma alguna el alcance de la invención reivindicada.
Preparación
1
En un matraz de tres bocas adecuado se añade lo
siguiente:
| Dimetilsulfóxido (análisis): | 6 volúmenes |
| Intermedio 1: | 75 g |
| N-metilpiperazina (síntesis): | 6 equivalentes |
El Intermedio 1 puede prepararse usando
procedimientos conocidos por aquellos expertos en la técnica. Por
ejemplo, la preparación del Intermedio 1 se enseña en la patente
'382.
Se añadió una línea para burbujear nitrógeno por
debajo de la superficie con el objetivo de eliminar el amoniaco
formado durante la reacción. La reacción se calentó a 120ºC y se
mantuvo a esa temperatura durante todo el periodo de reacción. Las
reacciones fueron seguidas mediante HPLC hasta que se dejó sin
reaccionar aproximadamente el 5% del intermedio 1. Tras finalizar la
reacción, la mezcla se dejó enfriar lentamente hasta 20ºC
(aproximadamente
2 horas). La mezcla de reacción se transfirió a continuación a un matraz de fondo redondo con tres bocas, en un baño de agua. Se añadió a esta disolución agitada 10 volúmenes de metanol grado síntesis y la reacción se agitó a 20ºC durante 30 minutos. Se añadieron lentamente a lo largo de 30 minutos tres volúmenes de agua. La suspensión de reacción se enfrió hasta cero a 5ºC y se agitó durante 30 minutos. El producto se filtró y la torta húmeda se lavó a continuación con metanol muy frío. La torta húmeda se secó a vacío a 45ºC durante toda la noche. El producto se identificó como olanzapina técnica.
2 horas). La mezcla de reacción se transfirió a continuación a un matraz de fondo redondo con tres bocas, en un baño de agua. Se añadió a esta disolución agitada 10 volúmenes de metanol grado síntesis y la reacción se agitó a 20ºC durante 30 minutos. Se añadieron lentamente a lo largo de 30 minutos tres volúmenes de agua. La suspensión de reacción se enfrió hasta cero a 5ºC y se agitó durante 30 minutos. El producto se filtró y la torta húmeda se lavó a continuación con metanol muy frío. La torta húmeda se secó a vacío a 45ºC durante toda la noche. El producto se identificó como olanzapina técnica.
Rendimiento: 76,7%; potencia: 98,1%
Preparación
2
Forma
II
Una muestra de 270 g de
2-metil-4-(4-metil-1-piperazinil)-10H-tieno[2,3-b][1,5]benzodiazepina
calidad técnica se suspendió en acetato de etilo anhidro (2,7 l). La
mezcla se calentó hasta 76ºC y se mantuvo a esa temperatura durante
30 minutos. Se dejó enfriar la mezcla hasta 25ºC. El producto
resultante se aisló mediante filtración a vacío. El producto se
identificó como Forma II usando análisis de rayos X en polvo.
Rendimiento: 197 g
El proceso anteriormente descrito para preparar
Forma II proporciona un producto farmacéuticamente elegante de
potencia \geq 97%, con < 0,5% de sustancias relativas totales y
un rendimiento tras aislamiento del > 73%.
Preparación
3
A. Se disolvió olanzapina (3,12 g, 0,01 moles) en
tetrahidrofurano (50 ml) con calefacción. Se disolvió ácido pamoico
(3,88 g, 0,01 moles) en tetrahidrofurano (100 ml) con calefacción.
Se mezclaron ambas soluciones, y se filtraron a través de celita
mientras estaban aun calientes. La solución amarilla se transfirió a
un matraz Buchi, y se evaporó a presión reducida (temperatura del
baño, 501C). Tras eliminar aproximadamente 50 ml de solvente, se
introdujo etanol (50 ml) y continuó la evaporación. Tras eliminar
aproximadamente otros 50 ml de solvente, se volvieron a introducir
50 ml de etanol. La evaporación continuó hasta el inicio de la
cristalización. Se recogieron los cristales amarillos por
filtración, y se secaron bajo vacío a 120ºC. Pf
203-205ºC; OK mediante RMN ^{1}H, RMN ^{13}C, y
MS. Pureza HPLC de 99,61%.
OK mediante RMN ^{1}H, RMN ^{13}C, y MS.
Pureza HPLC de 99,61%.
Picos del espectro ^{1}H: 8,4, s, 2p, s, 8,2,
d, 2p, d, 1,9, s, 1p, s, 7,8, d, 2p, d, 7,2, t, 2p, t, 7,1, t, 2p,
t, 6,9, m, 2p, 6,7, m, 1p, t?, 6,4, s, 1p, s, 4,8, s, 2p, s, 3,6,
br, 4p, br, 3,3, br, 4p, br, 2,8, s, 3p, s, 2,3, s, 3p, s.
Picos ^{13}C 171,4; 156,6, 154,6, 154,5, 143,7,
138,2, 135,1, 129,5, 128,9, 128,0, 126,9, 126,6, 125,8, 124,0,
123,1, 122,9, 121,8, 121,6, 119,3, 118,5, 117,8, 115,9, 51,9, 43,6,
42,0, 19,3, 14,4.
Preparación
4
En un matraz de 250 ml equipado con un agitador
magnético se añadió dimetil sulfóxido (DMSO) (10 ml, 0,636 M), ácido
pamoico (2,49 g, 6,41 mmol) y olanzapina (2,0 g, 6,40 mmol). La
suspensión se agitó a 20-25ºC para disolución. La
solución se añadió durante 10 ml a una matraz de tres bocas de 250
ml equipado con un agitador mecánico que contenía metanol (100 ml) a
20-25ºC. Pronto tras el inicio de la adición al
metanol, la solución se volvió turbia a medida que los cristales
comenzaban a formarse. Los sólidos se incrementaron a medida que
continuaba la adición. Tras completar la adición, se ajustó la
temperatura a 5ºC durante 15 minutos y se agitó durante 120 minutos.
Se filtró la suspensión. El matras y la torta húmeda se lavaron con
metanol (25 ml). El producto se seco en vacío durante toda la noche
a 50ºC para dar 4,61 g de pamoato de olanzapina dimetanolato, que se
identifica mediante difracción de rayos X en polvo (XRPD), TGA
(8,2%), cromatografía de gases (CG), (8,6% de metanol), y análisis
por resonancia magnética nuclear (RMN) (sal 1:1).
Preparación
5
En un matraz de tres bocas de 250 ml equipado con
un agitador magnético se añadió tetrahidrofurano (THF) (60 ml),
ácido pamoico (2,49 g, 6,41 mmol) y olanzapina (2,0 g, 6,40 mmol).
La suspensión se agitó a 20-25ºC para disolución
(aproximadamente 20 minutos). A la solución de THF se añadió metanol
durante 10 ml. En cuanto se completó la precipitación, se filtró
aproximadamente la mitad de la suspensión. La torta húmeda (1) se
seco en vacío durante toda la noche a 50ºC para dar 2,07 g. El resto
de la suspensión se agitó durante 2 horas a temperatura ambiente, y
fue filtrada. La torta húmeda (2) se seco en vacío durante toda la
noche a 50ºC para dar 2,16 g. En ambos casos, el material aislado se
identificó como pamoato de olanzapina solvato THF mediante XRPD, TGA
(12,7-13,5%), y análisis por RMN
(12,2-12,9% THF, sal 1:1).
Preparación
6
En un matraz adecuado provisto de un agitador
magnético se añadió dimetil sulfóxido (DMSO) (22 ml), ácido pamoico
(2,49 g, 6,41 mmol) y olanzapina (2,0 g, 6,40 mmol). La suspensión
se agitó a 20-25ºC para disolución (aproximadamente
20 minutos). La solución se añadió durante 20 minutos a un matraz de
tres bocas de 250 ml equipado con un agitador mecánico que contenía
agua (96 ml) a 40ºC. Tras completar la adición, la suspensión se
agitó durante 20 minutos a 40ºC, se enfrió hasta
20-25ºC durante 30 minutos y se filtró y lavó con
agua. El producto se seco en vacío a 50ºC para dar 4,55 g de pamoato
de olanzapina monohidrato, identificada mediante análisis XRPD, TGA
(3,0%), y volumetría (KF = 3,2%).
Preparación
7
En un matraz de tres bocas de 100 ml provisto de
un agitador se añadió acetona (10 ml), ácido pamoico (1,25 g, 3,22
mmol) y olanzapina (2,0 g, 6,4 mmol). La suspensión se agitó a
20-25ºC para disolución durante aproximadamente 60
minutos y se filtró. La torta húmeda se lavó con acetona (5 ml). El
producto se seco en vacío a 40ºC para dar 4,55 g de pamoato de
bis(olanzapina) solvato en acetona (3,24 g) identificada
mediante análisis XRPD, TGA (7,0%), y RMN (3,7% de acetona, sal
2:1).
En un matraz de tres bocas de 100 ml equipado con
un agitador se añadió dimetil sulfóxido (DMSO) (10,8 ml), y ácido
pamoico (2,49 g, 6,41 mmol). La suspensión se agitó a
20-25ºC para disolución. ). La solución se añadió
durante 15-20 minutos a un matraz de tres bocas de
250 ml equipado con un agitador mecánico que contenía acetona (150
ml) y olanzapina (6,0 g, 19,2 mmol) a 50ºC. En cuanto se completó la
adición, la suspensión se agitó durante 20 minutos a 50ºC, se enfrió
hasta 20-25ºC durante 60 minutos y se filtró. La
torta húmeda se lavó con acetona (15 ml). La mitad de la torta
húmeda se resuspendió en acetona (54 ml) durante 2 horas a
20-25ºC, se filtró y se lavó con acetona (10 ml). El
producto se seco en vacío a 35-40ºC para dar pamoato
de bis(olanzapina) solvato en acetona (4,54 g) identificada
mediante análisis XRPD, TGA (5,8%), CG (5,57% en acetona) y RMN (sal
2:1).
Preparación
8
En un matraz de tres bocas de 100 ml equipado con
un agitador se añadió dimetil sulfóxido (DMSO) (10,8 ml), y ácido
pamoico (3,75 g, 9,65 mmol). La suspensión se agitó a
20-25ºC para disolución. La solución se añadió
durante 15-20 minutos a un matraz de tres bocas de
250 ml equipado con un agitador mecánico que contenía acetona (150
ml) y olanzapina (6,0 g, 19,2 mmol) a 50ºC. En cuanto se completo la
adición, la suspensión se agitó durante 20 minutos a 50ºC, se enfrió
hasta 20-25ºC durante 60 minutos, se agitó durante
60 minutos y se filtró. La torta húmeda se lavó con acetona (15 ml).
La mitad de la torta húmeda se seco en vacío a
35-40ºC para dar pamoato de bis(olanzapina)
monohidrato (4,54 g) identificada mediante análisis XRPD, TGA
(3,3%), CG, volumetría (KF = 2,2%) y RMN (sal 2:1).
\newpage
Preparación
9
Una muestra de 100 g de olanzapina calidad
técnica (ver la Preparación 1) se suspendió en agua (500 ml). La
mezcla se agitó a 25ºC durante aproximadamente 5 días. El producto
se aisló mediante filtración a vacío. El producto se identificó como
olanzapina dihidrato D usando análisis de rayos X en polvo.
Rendimiento: 100 g. La pérdida de masa en TGA fue 10,2%.
Preparación
10
Una muestra de 0,5 g de olanzapina calidad
técnica se suspendió en acetato de etilo (10 ml) y tolueno (0,6 ml).
La mezcla se calentó a 80ºC hasta disolución de todos los sólidos.
La solución se enfrió hasta 60ºC y se añadió lentamente agua (1 ml)
A medida que la solución se enfriaba hasta temperatura ambiente, se
formó una suspensión de cristales. El producto se aisló mediante
filtración a vacío y se secó al aire. El producto se identificó como
olanzapina dihidrato E usando análisis de rayos X en polvo y RMN
^{13}C de estado sólido. La pérdida de masa en TGA fue 10,5%.
Rendimiento: 0,3 g.
Preparación
11
Una muestra de 10 g de olanzapina calidad técnica
se suspendió en agua (88 ml). La mezcla se agitó a 25ºC durante
aproximadamente 6 horas. El producto se aisló mediante filtración a
vacío. El producto se identificó como olanzapina dihidrato B usando
análisis de rayos X en polvo. Rendimiento: 10,86 g.
Se usan las siguientes abreviaturas en los
ejemplos tabulados a continuación:
- O
- = Olanzapina, tamaño de partícula indeterminado
- O-F
- = Olanzapina, molienda fina, tamaño de partícula inferior a 5 \mum.
- O-C
- = Olanzapina, molienda gruesa, tamaño de partícula de 20-60 \mum.
- OPDM-C
- = Pamoato de olanzapina dimetanolato, molienda gruesa, tamaño de partícula de 20-60 \mum.
- OPDM-F
- = Pamoato de olanzapina dimetanolato, molienda fina, tamaño de partícula inferior a 5 \mum.
- OPMH
- = Pamoato de olanzapina monohidrato
- OPMH-F
- = Pamoato de olanzapina monohidrato, molienda fina, tamaño de partícula inferior a 5 \mum.
- BOPM o BOP
- = Pamoato de bis(olanzapina)monohidrato
- BOPM-F o BOP-F
- = Pamoato de bis(olanzapina)monohidrato, molienda fina, tamaño de partícula inferior a 5 \mum.
- Aq
- = Acuoso
- PEG200
- = Polietilén glicol, con un peso celular medio de 200
- EtOH
- = Etanol
- CHITOSAN® bajo PM, alto PM
- = Quitina desacetilada, peso molecular alto y bajo
- NaCMC
- = Carboximetil celulosa sódica, sal de sodio
- Wrt
- = Con respecto a
- BRIJ®-52
- = Tensioactivo de polioxietilén (2) cetil éter
- Carnauba
- = Cera
- G-1726®
- = Derivado de cera de abeja de polioxietilén (20) sorbitol
- PLURONIN
- = Tensioactivo no iónico, que son bloques de copolímeros de óxido de propileno y óxido de {}\hskip0,3cm etileno. El bloque de óxido de propileno está colocado entre dos bloques de óxido de etileno {}\hskip0,4cm(sándwich). Hay grupos de poli(oxietileno) en ambos finales de la cadena de polioxipropileno. {}\hskip0,3cm HO(CH_{2}CH_{2}O)_{a}(CHCH_{3}CH_{2}O)_{b}CH_{2}CH_{2}O)_{c}H
La designación alfabética explica la forma física
del producto: "L" para líquidos, "P" para pastas, "F"
para formas sólidas. El primer dígito (dos dígitos en un número de
tres dígitos) de la designación numérica, multiplicado por 300,
indica el peso molecular aproximado del hidrófobo. El último dígito,
cuando se multiplica por 10, indica el contenido aproximado de óxido
de etileno en la molécula.
- NF
- = Formulario nacional = cumple los estándares para polaxámeros, que es la designación genérica {}\hskip0,3cmde los plurónicos
- LF y D
- = Baja formación de espumas. Incluye: {}\hskip0,3cmPLURONICS F68 {}\hskip0,3cmPLURONICS F 68NF {}\hskip0,3cmPLURONICS L121 {}\hskip0,3cmPLURONICS L092
- MIGLYOL 810
- = Triglicéridos de los ácidos grasos vegetales C8 y C10 (ácidos caprílico/ cáprico)
- MIGLYOL 812
- = Se diferencia de 810 sólo en el índice C8/C10. Tiene un mayor índice C10, y la viscosidad y el {}\hskip0,3cmpunto de turbidez.
- MIGLYOL 840
- = Propilén glicol diéster de ácidos grasos vegetales saturados con longitud de cadena C[8] y C10 {}\hskip0,3cm(ácidos caprílico/ cáprico)
- CREMAPHOR EL
- = Un derivado de aceite de ricino y de aceite de ricino polioxietilenado con óxido de etileno. {}\hskip0,3cmUna mezcla de la porción hidrófoba que contiene ésteres del ácido ricinoleico, éteres de glicerol {}\hskip0,3cmy poliglicol, y aceite de ricino, y una porción hidrófila que contiene polietilén glicol y glicerol {}\hskip0,3cmetoxilado.
- CREMAPHORE RH 40
- = 40 moles de óxido de etileno por mol de aceite de ricino hidrogenado.
- CREMAPHORE RH 60
- = 60 moles de óxido de etileno por mol de aceite de ricino hidrogenado.
- POVIDONA USP (K-30)
- = Polivinil pirrolidona, Farmacopea XXIII de los Estados Unidos: valor k: 30 (viscosidad intrín {}\hskip0,3cmseca)
- Sinónimos de a-tocoferol
- {}\hskip0,3cm= Vitamina E, alfa tocoferol, 2,5,7,8-tetrametil-2-(4',8',12'-trimetiltidecil)-6-cromanol
- NMP
- = 1-metil-2-pirrolidinona
- CROTHIX
- = PEG 150 tetrasesterato de pentoaritritil
- SYNCROWAX
- = cera de abeja sintética
- POLAWAX
- = Cera emulsificante
- Tween 20
- = Monolaureato de sorbitán polioxietilenado 20, un éster laurato del sorbitol. El 20 significa 20 {}\hskip0,3cmmoles de óxido de etileno copolimerizados con un mol de sorbitol.
- Tween 80
- = Monolaureato de sorbitán polioxietilenado 80, un éster laurato del sorbitol. El 80 significa 80 {}\hskip0,3cmmoles de óxido de etileno copolimerizados con un mol de sorbitol.
PLURONICS®: Se mezcló PLURONIC® F68NF (50
g) con 111 ml de agua calidad HPLC. La mezcla se agitó de forma
intermitente con una espátula, y se enfrió en el refrigerados. Se
usó un sonicador para ayudar en la rotura del material no disuelto.
La mezcla se enfrió y agitó hasta que resultó una solución
transparente. Se mezcló olanzapina (300 mg) con 10 ml de la solución
de PLURONIC® con una espátula hasta homogeneidad. La mezcla se
mantuvo refrigerada hasta uso.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 1.
Diacetato de sacarosa hexaisobutirato
(SDHB): Se mezclaron conjuntamente una solución de etanol al 10%
y SDHB al 90% con una espátula es un matraz hasta homogeneidad. Se
pesó sobre el matraz olanzapina molida (150 mg). Se añadió solución
de SDHB (5 ml) y se agitó con una espátula hasta que la olanzapina
se mezcló uniformemente en el vehículo.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 13.
Chitosan®: Se pesó agua en un matraz (70
g). Se añadió ácido láctico (1 g) y a continuación 2 g de Chitosan®,
y finalmente, 300 mg de olanzapina. Se agitó con una espátula hasta
uniformidad.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 19.
Chitosan®: Se pesó agua en un matraz (25
g). Se añadió ácido láctico (0,5 g) y a continuación 765 mg de
olanzapina y finalmente, 1 g de CHITOSAN®. Se agitó con una espátula
hasta uniformidad.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 19.
Miscelánea: Se midió NaCMC en un matraz (2
g). La mezcla se agitó a temperatura ambiente con un agitador
magnético en una placa agitadora hasta disolución total de los
sólidos. Se pesó sobre el matraz olanzapina (150 mg). Y se
añadieron 4,85 ml del vehículo de NaCMC. La formulación se
resuspendió mediante agitado o mezclado inmediatamente antes de
usar.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 25.
Aceite®: Se pesó olanzapina molida en un
matraz (120 mg) y se añadieron 3,88 ml de MIGLYOL® 812. Se agitó con
una espátula hasta homogeneidad. La formulación se resuspendió
mediante agitado o mezclado inmediatamente antes de usar.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 28.
Ácido oleico: Se calentaron juntos ácido
oleico (0,54 ml) y 300 mg de olanzapina. A continuación se añadió
MIGLYOL® 840 (9,2 ml), y todos los sólidos se disolvieron calentando
suavemente.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 28.
Aceite gelificado: Para gelificar el
aceite, se añadieron 25 g de monoestearato de aluminio a 475 g de
aceite de sésamo en un matraz. El aceite se mezcló con un mezclador
estético con una hélice de acero inoxidable, a la vez que se
calentaba mediante un baño de aceite hasta 155ºC durante 20 minutos.
Se dejó fluir nitrógeno gaseoso sobre el sistema durante el proceso.
Se dejo a continuación enfriar el aceite hasta temperatura ambiente.
Se pesó en un matraz olanzapina molida (120 mg), y se añadieron 3,88
ml de aceite de sésamo gelificado. Se agitó con una espátula hasta
homogeneidad.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 57.
Cera/ aceite: Se midió cera blanca (400
mg) en un matraz, y se añadieron a continuación 3,6 g de aceite
MIGLYOL® 812. La mezcla se calentó en un baño de agua hasta
aproximadamente 80ºC, hasta que se fundió la cera. Se agitó con una
espátula hasta homogeneidad. Se añadió al matraz olanzapina molida
(1 g), y se agitó con una espátula hasta mezclado con homogeneidad.
Se dejó enfriar la muestra hasta temperatura ambiente continuando
con la agitación.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 61. En
algunos casos, la mezcla se homogeneizó con un homogeneizador manual
para reducir los tamaños de partículas más grandes, así como los
agregados de ingrediente activo.
Lecitina: Olanzapina (500 mg) y 12,0 g de
lecitina se agitaron bien con una espátula durante aproximadamente
15 minutos para asegurar la homogeneidad.
Lecitina +
\alpha-tocoferol: Lecitina (8,9972 g) más
1,0204 g de \alpha-tocoferol se agitaron bien, y
se mantuvieron toda la noche en el refrigerador. La mezcla se agitó
bien y a continuación se añadieron 300,7 mg de olanzapina, y se
mezcló bien.
Lecitina/NMP: Se disolvió olanzapina (500
mg), en 3 ml de N-metil pirrolidona (NMP). Se añadió
lecitina (9 ml) y se agitó bien con una espátula durante
aproximadamente 15 minutos para obtener una mezcla homogénea.
Colesterol/ POVIDONA USP
(k-30)/ etil celulosa/ NMP: Olanzapina (500 mg),
etil celulosa (0,062 g) y NMP
(5 ml) y se agitaron bien y se calentaron suavemente durante 2-3 minutos hasta que se obtuvo una solución transparente. A continuación se añadieron POVIDONA USP (K-30) (0,309 g) y colesterol (2,475 g), para obtener una formulación de consistencia parecida a la de la goma, seca.
(5 ml) y se agitaron bien y se calentaron suavemente durante 2-3 minutos hasta que se obtuvo una solución transparente. A continuación se añadieron POVIDONA USP (K-30) (0,309 g) y colesterol (2,475 g), para obtener una formulación de consistencia parecida a la de la goma, seca.
Colesterol/ POVIDONA USP
(k-30)/ etil celulosa/ NMP: Colesterol (2,475
g), 0,3098 g de POVIDONA USP
(K-30), 0,062 g de etil celulosa y 9,1686 g de NMP se pesaron en un matraz de 25 ml. Los materiales del matraz se mezclaron completamente y se calentaron suavemente para disolver cualquier material insoluble. Se tuvo cuidado de usar una exposición mínima al calor a efectos de la disolución. La solución transparente se enfrió, y a esta se añadieron 500 mg de olanzapina, que se mezcló completamente, produciendo una solución transparente de color amarillo pálido.
(K-30), 0,062 g de etil celulosa y 9,1686 g de NMP se pesaron en un matraz de 25 ml. Los materiales del matraz se mezclaron completamente y se calentaron suavemente para disolver cualquier material insoluble. Se tuvo cuidado de usar una exposición mínima al calor a efectos de la disolución. La solución transparente se enfrió, y a esta se añadieron 500 mg de olanzapina, que se mezcló completamente, produciendo una solución transparente de color amarillo pálido.
Lecitina/ Colesterol/ POVIDONA USP
(k-30)/ etil celulosa/ NMP: Se pesaron en un
matraz 0,2511 g de POVIDONA USP (K-30). A esto se
añadieron 300,5 mg de olanzapina gruesa, 28,5 mg de etil celulosa, y
2,008 g de colesterol. Esta mezcla seca se agitó bien. Se añadieron
a esta mezcla seca 0,7463 g de a-tocoferol, y esta
mezcla se agitó bien. Es esta se añadieron 3,3806 g de lecitina, y
se mezcló bien.
A continuación, se añadieron otros 3,0825 g de
lecitina y se volvió a mezclar bien.
Lecitina/ Colesterol/ POVIDONA USP
(k-30)/ etil celulosa/ NMP: Se agitaron en un
matraz olanzapina gruesa (300,7 mg), 2,5821 g de NMP y 25,4 mg de
etil celulosa. A esto se añadieron 248,0 mg de POVIDONA USP
(K-30), 2,008 g de colesterol y 2,6020 g de lecitina. Esta formulación se mezcló bien. La mezcla se separó en capas, y se calentó durante 5 minutos en un baño a 37ºC. En la solución espesa se coagularon formaciones parecidas a copos suaves. Se añadió lecitina (2,5074 g) y se agitó bien. Eventualmente, la formulación pareció perder la coagulación parecida al gel y formó una suspensión de olanzapina.
(K-30), 2,008 g de colesterol y 2,6020 g de lecitina. Esta formulación se mezcló bien. La mezcla se separó en capas, y se calentó durante 5 minutos en un baño a 37ºC. En la solución espesa se coagularon formaciones parecidas a copos suaves. Se añadió lecitina (2,5074 g) y se agitó bien. Eventualmente, la formulación pareció perder la coagulación parecida al gel y formó una suspensión de olanzapina.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente los mismos procedimientos descrito en los Ejemplos
97-103 anteriores.
Se añadieron 5 g /1%) de alcohol polivinílico
(PVA) a 500 ml de agua desionizada. Se agitó la solución con un
agitador magnético, y se calentó durante varias horas hasta que todo
el PVA se hubo disuelto. Se dejó enfriar hasta temperatura ambiente.
La solución se vertió en un contenedor cuadrado de plástico, y se
agitó con un agitador vertical a 450 RPM. Se disolvieron 1,2 g de
olanzapina y 8,8 g de colesterol en 100 ml de cloruro de metileno.
Se añadió la solución de PVA y la mezcla se agitó durante 18
horas.
Procedimiento
1
Se vertió una solución de PVA/ olanzapina a
través de tamices de malla 100 y 230 (norma USA) respectivamente. Se
descartaron los cortes mayores y menores. Se lavaron las partículas
del tamiz 230 con agua en un embudo Buchner con un papel de filtro
Whatman #4, y se filtraron a vacío- Se transfirieron las partículas
a un disco de pesado, y se dejaron secar al aire. El tamaño de
partícula recogido: > 63 \mum - < 150 \mum.
Procedimiento
2
Se filtró a vacío una solución de PVA/ olanzapina
a través en un embudo Buchner con un papel de filtro Whatman #4 y se
lavó con agua. Se transfirieron las partículas a un disco de pesado,
y se dejaron secar al aire. Las partículas se tamizaron en seco a
través de un tamiz de malla 30 (norma USA) para eliminar cualquier
partícula de tamaño superior.
Procedimiento
3
Se vertió una solución de PVA/ olanzapina a
través de un tamiz de malla 230 (norma USA). Se lavaron las
partículas del tamiz con agua en un embudo Buchner con un papel de
filtro Whatman #4, y se filtraron a vacío. Se transfirieron las
partículas a un disco de pesado, y se dejaron secar al aire. El
tamaño de partícula recogido: > 63 \mum.
Procedimiento
4
Se vertió una solución de PVA/ olanzapina a
través de un tamiz de malla 230 (norma USA). Se lavaron las
partículas del tamiz con agua en un embudo Buchner con un papel de
filtro Whatman #4, y se filtraron a vacío- Se transfirieron las
partículas a un disco de pesado, y se dejaron secar al aire. Las
partículas se tamizaron en seco a través de un tamiz de malla 100
(norma USA). El tamaño de partícula recogido: > 63 \mum - <
150 \mum.
Procedimiento
5
Se vertió una solución de PVA/ olanzapina a
través de un tamiz de malla 100 (norma USA). Se lavaron las
partículas del tamiz con agua en un embudo Buchner con un papel de
filtro Whatman #4, y se filtraron a vacío. Se transfirieron las
partículas a un disco de pesado, y se dejaron secar al aire. El
tamaño de partícula recogido: < 150 \mum. La solución de PVA/
olanzapina tamizada se centrífugo y decantó. Las briquetas se
filtraron en un embudo Buchner con un papel de filtro Whatman #4, se
transfirieron a un disco. El tamaño de partícula recogido: < 150
\mum.
Procedimiento
6
Se filtró a vacío una solución de PVA/ olanzapina
a través en un embudo Buchner con un papel de filtro Whatman #4 y se
lavó con agua. Se transfirieron las partículas a un disco de pesado,
y se dejaron secar al aire.
Se analizó la actividad del producto mediante
cromatografía líquida de alta resolución.
Se disolvieron olanzapina (0,5 g, molida) y 4,5 g
fr colesterol en 50 ml de cloruro de metileno. Esta solución se secó
por rociado en un secador por rociado Yamato de laboratorio con una
columna de secado de 60 cm de longitud. Se ajustaron las siguientes
condiciones de secado: temperatura de entrada = 50ºC, temperatura de
salida = 33ºC, volumen de aire en la columna = 55 m^{3}, volumen
de spray atomizador = 0,55 kgf/cm^{3}. Se recogieron las
micropartículas en un vial en la salida, y se tamizan a un tamaño de
partícula de 63-150 \mum, y se analizó la potencia
mediante cromatografía líquida de alta resolución.
Los siguientes Ejemplos se prepararon usando
esencialmente el mismo procedimiento descrito en el Ejemplo 164.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
Las formulaciones se mezclaron y cargaron en
jeringas de 5 ml. Se cortó la punta de una pipeta de plástico
desechable y se colocó en la jeringa. Se cortó un tubo de diálisis
de 5-6cm de longitud, y se mantuvieron húmedos en un
matraz de agua. Un extremo del tubo se cerró con una pinza. El tubo
se taró en una escala, y desde la jeringa se dispensó al tubo 1 ml
de la formulación. El extremo abierto se pinzó, y se registró el
peso final. El tubo de diálisis lleno se colocó en un recipiente de
disolución de 900 ml que contenía 250 ml de solución fosfato salina
Dulbecco tamponada a pH 7,4 a 37ºC. Los recipientes se colocaron en
un equipo de disolución Vankel con palas que rotaban a 50 RPM. Se
tomaron muestras manualmente, deteniendo la rotación de las palas, y
retirando alícuotas de 2 ml con pipetas. Se cogieron muestras a 2,
4, 8, 12, 24, 48 y en intervalos de 24 horas consecutivas cada 48
horas a lo largo de 4 semanas. En las muestras de 2, 4, 8 y 12
horas, se sustituyó el medio con 2 ml de tampón fresco. En cada 24
horas, el volumen completo del medio se sustituyó con medio fresco
precalentado a 37ºC. Las muestras se introdujeron directamente en
viales de HPLC, y se analizó su actividad mediante cromatografía
líquida de alta resolución.
Las formulaciones se ensayaron usando el ensayo
de liberación anteriormente descrito, y se encontró que tenía un
tiempo prolongado aceptable de liberación sostenida de ingrediente
activo desde 48 horas hasta prácticamente 4 semanas.
Se seleccionaron conejos blancos Nueva Zelanda
para la evaluación de las formulaciones de depósito debido a que el
tamaño de los músculos de sus piernas facilitan la administración de
la dosis y la evaluación del emplazamiento de inyección.
Se usaron tres conejos del mismo sexo en cada
formulación, basándose la selección en la disponibilidad. Los
conejos tenían como mínimo cinco meses de edad, y pesaron entre 2,5
y 5 kg. Se proporcionó a los conejos una inyección única con una
inyección número 20 ó 21 en el bíceps femoris. El volumen de dosis
varió con la concentración de la formulación, pero no excedió de 2
ml por inyección. Se proporcionó a los conejos 10 mg de
olanzapina/kg de peso corporal.
Se tomaron muestras de sangre de 2 ml de la
arteria interna de la oreja o de la vena yugular en tubos
heparinizados de recogida, una vez antes de la administración de la
dosis, y posteriormente 4 horas después de la administración de la
dosis, y de nuevo diariamente tras 1, 2, 7, 10 y 14 días después. Se
recogió el plasma, y se determino la concentración de olanzapina en
el plasma mediante HPLC.
Las formulaciones de la presente invención se
ensayaron en el ensayo con conejos, y se encontró que presentaban
concentraciones efectivas de olanzapina durante casi 14 días.
Se eligió el perro Beagle porque se sabe mucho
acerca de la farmacocinética de la olanzapina en perros. Puesto que
no hay diferencias en la farmacocinética de la olanzapina entre los
sexos, la selección de los perros no se basó en el sexo. Se usaron
para cada formulación tres perros (machos o hembras). Los perros
eran adulos (> 6 meses de edad) y pesaron entre 8 y 21 kg. Se
proporcionó a los perros una inyección única con una inyección
número 20 ó 21 en el bíceps femoris. El volumen de dosis varió con
la concentración de la formulación, pero no excedió de 2 ml por
inyección. Se proporcionó a los perros 10 mg de olanzapina/kg de
peso corporal.
Se tomaron muestras de sangre de 2 ml de la
arteria interna de la oreja o de la vena yugular en tubos
heparinizados de recogida, una vez antes de la administración de la
dosis, y posteriormente 4 horas después de la administración de la
dosis, y de nuevo diariamente tras 1, 2, 7, 10 y 14 días después. Se
recogió el plasma, y se determino la concentración de olanzapina en
el plasma mediante HPLC.
Las formulaciones de la presente invención se
ensayaron en el ensayo con perros, y se encontró que presentaban
concentraciones efectivas de olanzapina durante casi 28 días.
Claims (7)
1. Un compuesto que es una sal de pamoato de
olanzapina, o un solvato del mismo.
2. Un compuesto como el reivindicado en la
Reivindicación 1, en el que la sal de pamoato es pamoato de
olanzapina dimetanolato, con un diagrama típico de difracción de
rayos X en polvo representado mediante la distancia interplanar
siguiente:
3. Un compuesto como el que se reivindica en la
Reivindicación 1, en el que la sal de pamoato es pamoato de
olanzapina monohidrato con un diagrama típico de difracción de rayos
X en polvo representado mediante la distancia interplanar
siguiente:
4. Un compuesto como el reivindicado en la
Reivindicación 1, en el que la sal de pamoato es pamoato de
bis(olanzapina) solvato en acetona, con un diagrama típico de
difracción de rayos X en polvo representado mediante la distancia
interplanar siguiente:
5. Un compuesto como el que se reivindica en la
Reivindicación 1, en el que la sal de pamoato es pamoato de
bis(olanzapina) monohidrato, con un diagrama típico de
difracción de rayos X en polvo representado mediante la distancia
interplanar siguiente:
6. Un compuesto como el que se reivindica en la
Reivindicación 1, en el que la sal de pamoato es pamoato de
olanzapina solvato en THF, con un diagrama típico de difracción de
rayos X en polvo representado mediante la distancia interplanar
siguiente:
7. El uso de un compuesto de la Reivindicación 1,
2, 3, 4, 5, ó 6 para la fabricación de un medicamento para tratar un
animal, incluyendo un ser humano, que padezca, o sea susceptible de
padecer psicosis, manía aguda o estados de ansiedad suaves.
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