ES2226797T3 - Procedimiento para determinar la avidez de anticuerpos. - Google Patents

Procedimiento para determinar la avidez de anticuerpos.

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Abstract

Procedimiento para determinar la avidez de anticuerpos, que abarca los siguientes pasos: a) disposición de al menos dos fases sólidas, en donde en cada fase sólida están inmovilizados del mismo modo y en la misma cantidad al menos dos antígenos distintos, y en cada fase sólida los distintos antígenos están espacialmente separados entre sí, b) incubación de las fases sólidas de a) con una solución que contiene anticuerpos, c) incubación de una de las fases sólidas en una solución que no reduce esencialmente la combinación de anticuerpos con baja avidez con los antígenos, d) incubación de al menos otra fase sólida en una solución, en donde esta solución presenta un agente que reduce la combinación de anticuerpos con baja avidez con los antígenos, y e) detección de los anticuerpos combinados en las fases sólidas.

Description

Procedimiento para determinar la avidez de anticuerpos.
La presente invención se refiere a un procedimiento con el cual, en una tanda de ensayo, se pueden determinar las avideces de los anticuerpos contra varios antígenos.
Una misión importante del diagnóstico serológico consiste en constatar si en un caso concreto existe o no una infección aguda. Por lo regular, una infección primaria se caracteriza por una respuesta de IgM que aparece de forma transitoria, mientras que la respuesta de IgG permanece largo tiempo. En estas observaciones se basa la serología clásica de la infección, según la cual se determinan la IgG y la IgM específicas de agentes patógenos. Así, sobre la base de un hallazgo de IgM, se obtiene una indicación de infección aguda, mientras que un hallazgo de IgG sin IgM paralelo indica una infección más antigua. Sin embargo, debido a la variabilidad de la respuesta inmunológica y a la aparición de decursos serológicos aberrantes, este modo de proceder clásico puede conducir a conclusiones erróneas en no pocos casos.
Así, debido a una respuesta de IgM persistente o reactivada puede simularse una infección primaria. Del mismo modo, por ejemplo, una infección por virus Epstein-Barr (EBV) puede conducir a una estimulación policlonal de células B, a continuación de la cual se sintetizan moléculas de IgM según el principio aleatorio sin que el organismo haya tenido contacto con el agente patógeno correspondiente. Sin embargo, debido a la alta variabilidad de la respuesta de IgM también se pueden obtener resultados negativos erróneos.
Al formarse la respuesta de IgG se produce un aumento subsiguiente de la afinidad de la IgG formada para el antígeno correspondiente. Esta maduración de la afinidad es un proceso inmunológico que se produce con extremada regularidad. Por eso, en el caso de una infección aguda siempre existe una IgG de baja afinidad, y en el caso de una infección pasada una IgG de alta afinidad.
Por este motivo, para solucionar los problemas arriba mencionados, durante los últimos años se ha introducido en el diagnóstico otro marcador de gran valor informativo: la avidez de la IgG. La avidez es una medida de la intensidad de la combinación entre un anticuerpo y "su" antígeno. Con ayuda del diagnóstico EBV se ha demostrado de forma ejemplar el gran valor informativo de este procedimiento, que supera con mucho al de la serología clásica (Andersson et al. (1994) J. Med. Virol. 43, 238-244; Vetter et al. (1994) Clin. Diag. Virol. 2, 29-39; Bauer (1994) Therapeutische Umschau 51, 558-562; Bauer (1995) Clin. Lab. 41, 623-634; Wolters et al. (1997) Clin. Lab. 43, 125-135). No obstante, la maduración de la avidez de IgGs de distintos antígenos no avanza de forma necesariamente sincrónica. Así, por ejemplo, se demostró que la maduración de la avidez de la IgG contra antígenos de la cápsida del virus (ACV) ya está terminada cuando todavía está aumentando la avidez de la IgG contra los componentes del complejo "antígeno temprano" (AE). De este hecho resulta la necesidad de ensayar varios antígenos de un agente patógeno para obtener una información fiable sobre la situación de una infección.
Procedimientos conocidos para determinar la avidez son el ELISA o el ensayo de inmnunofluorescencia. Sin embargo, en la prueba de inmunofluorescencia sólo se puede estudiar un antígeno, y en el ELISA habría que medir todos los antígenos en ensayos comparativos individuales. En una tanda conjunta con varios antígenos, en el ensayo de inmunofluorescencia o ELISA siempre se obtendría un valor medio de la reducción de la avidez tras el tratamiento con urea. El documento EP 0 875 761 da a conocer un procedimiento para determinar la avidez de un anticuerpo, en el que se emplea peróxido de hidrógeno-urea. Söderlund et al. [J. of Inf. Dis. (1995), págs. 710-713] describen la utilización de antígenos de parvovirus recombinantes para medir la avidez en tandas individuales.
Una misión de la presente invención consiste en poner a disposición un procedimiento con el que en una única tanda de ensayo se puedan determinar las avideces de los anticuerpos frente a varios antígenos definidos.
La misión se solucionó con el procedimiento según la invención. Para ello se inmovilizan uno o varios antígenos distintos en una fase sólida, en donde los distintos antígenos están separados espacialmente entre sí. En total se preparan al menos dos fases sólidas, en las que las proteínas están distribuidas del mismo modo y en la misma cantidad. Estas fases sólidas se incuban entonces con una solución que contiene anticuerpos. A continuación, se incuba la primera fase sólida en una solución que no perjudica la mayoría de las interacciones antígeno-anticuerpo (solución no rigurosa). Sin embargo, las demás fases sólidas se incuban en una solución que contiene un medio que desprende los anticuerpos de baja avidez de sus antígenos (solución rigurosa). Finalmente, tras el lavado se identifican los anticuerpos que todavía están combinados con las fases sólidas. Mediante comparación de las fases sólidas, que se incubaron en solución no rigurosa con las fases sólidas que se incubaron en solución rigurosa, se puede determinar la avidez para cada antígeno. En cada fase sólida se inmovilizan preferentemente al menos dos antígenos distintos definidos, preferentemente al menos tres antígenos distintos definidos, y de forma más preferente al menos cuatro antígenos distintos definidos. Sin embargo, también es imaginable inmovilizar en cada fase sólida cinco, seis o más antígenos distintos. La ventaja del procedimiento descrito consiste en que en un experimento se pueden determinar las avideces de numerosos anticuerpos. Con ello, se pueden obtener "perfiles de avidez" que son característicos de la duración de la infección. Esto permite obtener una información más precisa que la que era posible hasta ahora. Cuando se emplean más de dos fases sólidas, las demás fases sólidas se pueden incubar en soluciones de rigurosidad creciente, de modo que se puede obtener un cuadro diferenciado sobre la avidez de numerosos anticuerpos. Esto constituye otra ventaja del procedimiento según la invención.
Las composiciones de la solución rigurosa y de la no rigurosa no están limitados de forma especial. Sin embargo, son tales, que en la fase sólida que se incubó con la solución no rigurosa, tras la incubación hay más anticuerpos combinados que en la fase sólida que se incubó con la solución rigurosa. La solución no rigurosa, así como las soluciones de lavado, pueden contener una sustancia tampón tal como fosfato o Tris-HCl o Hepes. Además, estas soluciones contienen preferentemente hasta 500 mM, más preferentemente hasta 250 mM, y de forma más preferente aproximadamente 150 mM de sal. Como sales se pueden considerar sales inorgánicas tales como NaCl, KCl, MgCl_{2} o sales similares. Una solución no rigurosa preferida es PBS o TBS, eventualmente con otros aditivos. La solución rigurosa puede abarcar los componentes de la solución no rigurosa, en donde al menos está contenido otro producto que debilita la combinación de anticuerpos de baja avidez con los antígenos. En una forma de realización preferida del procedimiento, la solución rigurosa contiene una sustancia desnaturalizante en una concentración adecuada para debilitar esencialmente la combinación de anticuerpos con antígenos.
En una forma de realización preferida del procedimiento según la invención, la solución rigurosa contiene urea, preferentemente en una concentración de 4-9 M, preferentemente en una concentración de 4,8 hasta 7,5 M y de forma más preferente en una concentración de aproximadamente 5,5 M. Además de la urea se puede utilizar cualquier agente desnaturalizante de modo similar. Ejemplos de ello son dietilamina, guanidina o tiocianato.
Las fases sólidas pueden ser superficies de plástico tales como bolas de poliestireno o placas de microtitulación, pero preferentemente son membranas. Las fases sólidas también pueden estar configuradas en forma de "biochips", o pueden utilizarse en plataformas para determinaciones de parámetros múltiples.
De forma preferente, las membranas están formadas por nitrocelulosa, nailon o poli(fluoruro de vinilideno) (PFVD).
Los antígenos se pueden aplicar directamente sobre las membranas. Sin embargo, las membranas se producen preferentemente mediante electroforesis en gel de los antígenos y trasferencia electroforética subsiguiente a las membranas. Así surgen membranas en las que las proteínas están separadas según su tamaño. Preferentemente, los antígenos se limpiaron antes de la inmovilización en la fase sólida. En este caso se puede tratar de proteínas "nativas" o fragmentos de proteína aislados del agente patógeno, pero también se puede tratar de antígenos producidos de forma recombinante. El experto sabe que un antígeno no tiene que abarcar necesariamente la secuencia completa de aminoácidos de la proteína "nativa".
El método de detección preferido se basa en la combinación de anticuerpos secundarios acoplados a enzimas con los anticuerpos primarios combinados con membrana y visualización subsiguiente mediante la reacción enzimática de un sustrato.
Los procedimientos descritos se aplican preferentemente en el diagnóstico. Por ejemplo, en un kit de ensayo se podrían incluir tiras de membrana que contengan varios antígenos del EBV. Además, se puede incluir una sustancia desnaturalizante, preferentemente urea, que se utilice como agente en las soluciones rigurosas. Además, en un kit de ensayo de este tipo se pueden incluir reactivos para realizar una detección de transferencia "Western" de proteínas.
Un kit de ensayo preferido puede contener varias bandas de transferencia Western u otros soportes en los que estén inmovilizados antígenos de un agente patógeno. Por ejemplo, los agentes pueden proceder de EBV, de citomegalovirus humano (CMVH), de agentes patógenos de la hepatitis, tal como hepatitis A, B, C o G, o de virus de la inmunodeficiencia humana (VIH). También se pueden emplear los antígenos de otros agentes patógenos, tales como bacterias, hongos o protozoos. Además, habitualmente se incluye un tampón de lavado que contiene proteína y, por lo tanto, también se puede emplear para bloquear puntos de combinación no específicos en las membranas. También se puede utilizar para diluir muestras. El kit de ensayo también contiene habitualmente sueros que sirven como control positivo o negativo. La solución rigurosa puede estar contenida en forma de una solución ureica preparada. Finalmente, el kit puede contener anticuerpos secundarios dirigidos contra la IgG humana y que están conjugados con un enzima, por ejemplo peroxidasa de rábano picante.
Además, un kit de ensayo puede contener tiras de membranas o soportes que lleven antígenos de distintos agentes patógenos. Así, en el diagnóstico se puede cubrir una anchura de tira mayor. En este tipo de kits de ensayo se pueden aplicar, por ejemplo, antígenos de diferentes agentes patógenos para, por un lado, determinar el estado serológico en una tanda y, simultáneamente, mediante un ensayo de avidez, diferenciar si en este caso se trata de infecciones agudas, recientes, reactivación o estimulación inespecífica.
Esto es importante en determinadas enfermedades virales (por ejemplo EBV, CMV), que producen una estimulación inespecífica del sistema inmunológico y, con ello, con frecuencia indican el cuadro serológico de una infección reciente para otros parámetros - con la diferencia de que en ellos sólo hay entonces anticuerpos altamente ávidos.
En especial en pacientes con disfunción del sistema inmunológico o pacientes con tratamiento inmunosupresor, esta tanda también resulta conveniente, porque aquí se puede producir de muchos modos una reactivación de virus persistentes (EBV, CMV, eventualmente parvovirus B19, y otros) con el cuadro serológico de una infección reciente. Estas reactivaciones se pueden distinguir con este ensayo de avidez en una tanda de infecciones adicionales eventualmente presentes.
Los ejemplos siguientes explican con más detalle el procedimiento según la invención:
Ejemplo 1
Los antígenos de EBV recombinantes MA, p18, p23, p54, p138 y EBNA-1 (p72) se separan mediante electroforesis en gel y, a continuación, se trasfieren electroforéticamente a una membrana de nitrocelulosa. Tras la saturación de puntos de combinación no específicos en la membrana, ésta se corta en tiras. Dos de estas tiras de membrana se incuban en diferentes pocillos de incubación (tandas 1 y 2) con el mismo suero (diluido en la relación 1:100 en tampón de lavado con contenido en sal/proteína) durante tres horas a temperatura ambiente bajo ligero sacudimiento. Los sueros diluidos se filtran a continuación con succión y la tanda 1 se mezcla con tampón de lavado, mientras que a la tanda 2 se añade urea 5,5 M (en PBS). Las tiras se incuban durante 3 min y, a continuación, se lavan cuatro veces durante cinco minutos con tampón de lavado bajo agitación. A continuación, ambas tiras de membrana se incuban durante 1 hora con anticuerpos de conejo-IgG antihumana (diluidos a 1:1000; conjugados con peroxidasa). A continuación, se lava de nuevo cuatro veces y los anticuerpos combinados se identifican por tinción enzimática mediante TMB o DAB. La reacción se detiene lavando las tiras con agua. Es importante que la reacción de tinción se realice para ambas tiras bajo las mismas condiciones. Tras el secado de las membranas, las tiras se analizan por densitometría. Se comparan las intensidades que entonces se identifican de las bandas de tiras tratadas con urea y las tiras de control. A partir de las diferentes intensidades para los antígenos individuales se puede calcular un índice de avidez (cociente de intensidad tras tratamiento con urea/intensidad sin tratamiento con urea). Este índice permite una información adicional sobre la cuestión de si existe una infección reciente o una infección pasada. Las figuras 1 y 2 muestran los resultados de experimentos en los que se utilizaron los sueros de dos personas con infección EBV pasada. Todos los marcadores reconocidos tienen anticuerpos muy ávidos, pues mediante el tratamiento con urea no resulta ningún debilitamiento de las bandas. Con ello se caracteriza la infección EBV pasada.
Ejemplo 2
Se prepararon tiras de membrana como en el Ejemplo 1, en donde se ensayaron sueros de pacientes con infección por EBV reciente. Los ensayos se realizaron como se describe en el Ejemplo 1. La figura 3 muestra el resultado de un suero con anticuerpos de baja avidez frente a p54 y p138. Esto muestra una infección reciente. La figura 4 muestra anticuerpos de baja avidez frente a p23 y p138. Esto también muestra una infección reciente. En la figura 5 se puede reconocer que ya han madurado anticuerpos frente a p138 (muy ávidos), pero la baja avidez de los anticuerpos frente a p54 y p23 permite reconocer la infección por EBV reciente. Aquí se puede reconocer especialmente el valor de este procedimiento: si se ensayara sólo la avidez de p138, se habría obtenido una exclusión errónea de una infección reciente. En la figura 6, la reducción de la banda de p54 y la banda de p138 por la urea permite deducir una infección reciente. La maduración de la avidez ya ha comenzado, pero todavía no ha terminado. Finalmente, en la figura 7 la IgG frente a p54 ya ha madurado en gran medida, mientras que la baja avidez de los anticuerpos frente a p23 y p18 permite reconocer la infección por EBV reciente.

Claims (17)

1. Procedimiento para determinar la avidez de anticuerpos, que abarca los siguientes pasos:
a)
disposición de al menos dos fases sólidas, en donde en cada fase sólida están inmovilizados del mismo modo y en la misma cantidad al menos dos antígenos distintos, y en cada fase sólida los distintos antígenos están espacialmente separados entre sí,
b)
incubación de las fases sólidas de a) con una solución que contiene anticuerpos,
c)
incubación de una de las fases sólidas en una solución que no reduce esencialmente la combinación de anticuerpos con baja avidez con los antígenos,
d)
incubación de al menos otra fase sólida en una solución, en donde esta solución presenta un agente que reduce la combinación de anticuerpos con baja avidez con los antígenos, y
e)
detección de los anticuerpos combinados en las fases sólidas.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque el agente utilizado en el paso d) contiene al menos una sustancia desnaturalizadora de proteínas.
3. Procedimiento según la reivindicación 2, caracterizado porque el agente contiene urea.
4. Procedimiento según la reivindicación 3, caracterizado porque la urea se utiliza en una concentración de 4 a 9 M.
5. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizado porque las fases sólidas son membranas.
6. Procedimiento según la reivindicación 5, caracterizado porque las membranas están constituidas por un material seleccionado de un grupo que contiene nitrocelulosa, nailon y poli(fluoruro de vinilideno).
7. Procedimiento según la reivindicación 5 ó 6, caracterizado porque las membranas se preparan mediante electroforesis en gel y subsiguiente transferencia electroforética de los antígenos a las membranas.
8. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 7, caracterizado porque la detección de los anticuerpos en el paso e) se realiza mediante incubación con anticuerpos secundarios acoplados a enzimas y subsiguiente reacción enzimática de identificación.
9. Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque se determina la avidez de anticuerpos frente al virus Epstein-Bar.
10. Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque en las fases sólidas hay proteínas purificadas inmovilizadas.
11. Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque se preparan por recombinación los antígenos inmovilizados en las fases sólidas.
12. Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque en la fase sólida, que se incubó según c), tras la incubación hay más anticuerpos combinados que en la fase sólida que se incubó según d).
13. Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque la solución para la incubación según c) contiene al menos una sustancia tampón y hasta 500 mM de sal, preferentemente hasta 250 mM de sal.
14. Kit de ensayo para la realización de un procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 13, caracterizado porque contiene varias tiras de transferencia Werstern u otros soportes en los que hay antígenos inmovilizados de un agente patógeno, en donde en cada soporte hay al menos dos antígenos distintos inmovilizados del mismo modo y en igual cantidad, y en cada soporte los distintos antígenos están espacialmente separados entre sí.
15. Kit de ensayo según la reivindicación 14, caracterizado porque contiene un agente desnaturalizante.
16. Kit de ensayo según la reivindicación 15, caracterizado porque contiene urea como agente desnaturalizante.
17. Uso de antígenos preparados de forma recombinante para determinar las avideces de anticuerpos frente a antígenos, en donde
a)
se disponen al menos dos fases sólidas, en cada fase sólida hay inmovilizados al menos dos antígenos distintos del mismo modo y en la misma cantidad, y en cada fase sólida los distintos antígenos están espacialmente separados entre sí,
b)
las fases sólidas de a) se incuban con una solución que contiene anticuerpos,
c)
una de las fases sólidas se incuba en una solución que no reduce esencialmente la combinación de anticuerpos con baja avidez con los antígenos,
d)
al menos se incuba otra fase sólida en una solución, en donde esta solución presenta un agente que reduce la combinación de anticuerpos con baja avidez con los antígenos, y
e)
se detectan los anticuerpos combinados en las fases sólidas.
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