ES2235156T3 - Expresion y purificacion de alfa-fetoproteina humana clonada. - Google Patents
Expresion y purificacion de alfa-fetoproteina humana clonada.Info
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Abstract
EN GENERAL, LA INVENCION CARACTERIZA UN METODO PARA PRODUCIR UNA ALFA-FETOPROTEINA HUMANA EN CELULAS PROCARIOTICAS. EL METODO INCLUYE: SUMINISTRAR UNA CELULA PROCARIOTICA TRANSFORMADA QUE INCLUYA UNA MOLECULA DE ADN RECOMBINANTE QUE CODIFIQUE LA ALFAFETOPROTEINA HUMANA OPERABLEMENTE UNIDA A ELEMENTOS DE SECUENCIA CAPACES DE DIRIGIR LA EXPRESION DE LA ALFA-FETOPROTEINA, Y PERMITIR QUE LA CELULA TRANSFORMADA EXPRESE LA ALFA-FETOPROTEINA HUMANA.
Description
Expresión y purificación de
alfa-fetoproteína humana clonada.
El campo de la invención es la expresión y la
purificación de alfa-fetoproteína humana
clonada.
La alfa-fetoproteína (AFP) es una
proteína sérica que normalmente se encuentra en niveles importantes
en sangre fetal. En sangre adulta, unos elevados niveles de
alfa-fetoproteína están asociados a la regeneración
del hígado y ciertos carcinomas.
No se conoce la función específica de la
alfa-fetoproteína. Papeles sugeridos para la
proteína incluyen: albúmina fetal; protección de ataque inmune
materno; y protección del estrógeno materno.
Morinaga y otros (Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 80:4604, 1983) presentan la clonación de AFP humana.
Innis y otros (Arch. Biochem. Biophys.
195:128, 1979) presentan la clonación de un fragmento de
aproximadamente 950 pares de bases de AFP humana en E. coli
plásmido pBR322.
Nishi y otros (J. Biochem. 104:968, 1988)
presentan la expresión de AFP de ratas en E. coli y
Saccharomyces Cerevisiae. Nishi y otros también informan de
que, en un ensayo de unión de estradiol, rAFP de rata producido por
levadura es tan como activo una AFP auténtica, mientras que la rAFP
de rata producida por bacterias es esencialmente inactiva. Además,
cuando se caracteriza por ensayo radio inmunológico o una prueba de
Ouchterlony de doble inmunodifusión, la rAFP de rata producida por
levadura tiene un parecido más cercano a la AFP de rata auténtica
que la rAFP de rata producida por bacterias. Nishi y otros indican
que:
"En la prueba de Ouchterlony de doble
inmunodifusión, la rAFP auténtica y de levadura formó una línea de
precipitina completamente fundida con anticuerpo para AFP de rata
mientras que la rAFP de E. coli mostró una reacción de
identidad parcial en una prueba similar. Es probable que la rAFP de
levadura funcionalmente activa en este estudio tuviera los pares
correctos de puentes disulfuro. Por otra parte, la rAFP de E.
coli probablemente no consiguió formarlos."
Yamamoto y otros (Life Sciences 46:1679,
1990) presentan la expresión de AFP humana en la levadura e
informan que la rAFP producida así era "inmunológicamente
indistinguible de AFP auténtica".
Giuliani y otros (Protein Engineering
2:605, 1989) presentan la expresión de una parte de AFP humana
(aminoácidos 38 a 119) en E. coli.
La solicitud de Patente Japonesa nº 88158596
presenta un procedimiento para preparar dominio humano recombinante
I AFP en E. coli.
En general, la invención dispone un procedimiento
para producir alfa-fetoproteína humana en una
célula procariota. El procedimiento incluye disponer una célula
procariota transformada que incluye una molécula de ADN
recombinante que codifica alfa-fetoproteína humana
unida operativamente a un elemento de control de expresión capaz
de dirigir la expresión de la alfa-fetoproteína
humana, y permitir que la célula transformada exprese
alfa-fetoproteína humana. En una realización
preferida, la célula procariota es E. coli. En realizaciones
más preferidas, el elemento de control de expresión incluye un
estimulador Trp de E. coli y el elemento de control de
expresión incluye un estimulador Tac de E. coli.
En un aspecto relacionado, la invención dispone
también alfa-fetoproteína humana substancialmente
pura producida disponiendo una célula procariota transformada que
incluye una molécula de ADN recombinante que codifica
alfa-fetoproteína humana unida operativamente a un
elemento de control de expresión capaz de dirigir la expresión de la
alfa-fetoproteína humana, y permitiendo que la
célula transformada exprese alfa-fetoproteína
huma-
na.
na.
En un aspecto relacionado, la invención presenta
una composición terapéutica que comprende
alfa-fetoproteína substancialmente pura producida
tal como se describe anteriormente.
Por "alfa-fetoproteína
humana" se entiende un polipéptido que tiene substancialmente la
misma secuencia de aminoácidos que la proteína codificada por el
gen de alfa-fetoproteína humana. Moringa y otros
(Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80:4604, 1983) presenta la
secuencia de ADNc complementaria a la
alfa-fetoproteína humana.
Por "elemento de control de expresión" se
entiende una sucesión de nucleótidos que incluye secuencias de
reconocimiento para factores que controlan la expresión de una
secuencia de codificación de proteínas a la cual está unida
operativamente. En consecuencia, un elemento de control de
expresión incluye generalmente secuencias para controlar tanto la
transcripción como la traducción, por ejemplo, estimuladores,
sitios de enlace de ribosomas, sitios de enlace de represores, y
sitios de enlace de activadores.
Por "substancialmente la misma secuencia de
aminoácidos" se entiende un polipéptido que presenta por lo
menos una homología de un 80% con la secuencia de aminoácidos de
origen natural de la alfa-fetoproteína humana,
típicamente de una homología de por lo menos un 85% aproximadamente
con la secuencia de alfa-fetoproteína humana
natural, más típicamente de una homología de por lo menos un 90%
aproximadamente, normalmente de una homología de por lo menos un
95% aproximadamente, y más normalmente de una homología de por lo
menos un 97% aproximadamente con la secuencia de
alfa-fetoproteína humana natural. La longitud de
las secuencias de comparación será generalmente de por lo menos 16
aminoácidos, normalmente de por lo menos 20 aminoácidos, más
normalmente de por lo menos 25 aminoácidos, típicamente de por lo
menos 30 aminoácidos, y preferiblemente de más de 35
aminoácidos.
La homología, para los polipéptidos, se mide
típicamente utilizando un software de análisis de secuencias (por
ejemplo, el Paquete de Software de Análisis de Secuencias del
Genetics Computer Group, de la Universidad del Centro de
Biotecnología de Wisconsin, 1710 University Avenue, Madison, WI
53705). El software de análisis de proteínas empareja secuencias
similares asignando grados de homología a varias substituciones,
deleciones, substituciones, y otras modificaciones. Las
substituciones conservadoras incluyen típicamente substituciones
dentro de los grupos siguientes: glicina alanina; valina,
isoleucina, leucina; ácido aspártico, ácido glutámico,
esparraguina, glutamina; serina, treonina; lisina, arginina; y
fenilalanina, tirosina.
Tal como aquí se utiliza, el término
"substancialmente puro" describe una proteína o polipéptido
que ha sido separado de los componentes que lo acompañan de manera
natural. Típicamente, una proteína de interés es substancialmente
pura cuando por lo menos de un 60% a un 75% de la proteína total en
una muestra es la proteína de interés. Variantes o modificaciones
químicas menores comparten típicamente la misma secuencia de
polipéptidos. Una proteína substancialmente pura comprenderá
típicamente más de 85 a 90% aproximadamente de proteína en la
muestra, normalmente comprenderá más de por lo menos
aproximadamente un 95%, y preferiblemente tendrá una pureza de por
encima de aproximadamente un 99%. Normalmente, la pureza se mide
en una columna de cromatografía, gel de poliacrilamida, o por
mediante un análisis de HPLC.
Una proteína está substancialmente libre de
componentes asociados de manera natural cuando está separada de
contaminantes nativos que la acompañan en su estado natural. De
este modo, una proteína que se sintetiza químicamente o se produce
en un sistema celular diferente de la célula de la cual se origina
de manera natural estará substancialmente libre de sus componentes
asociados de manera natural. De este modo, el término puede
emplearse para describir polipéptidos y ácidos nucleicos derivados
de organismos eucariotas que han sido sintetizados en E.
coli y otros procariotas.
La presente invención propone
alfa-fetoproteína humana substancialmente pura.
Pueden concebirse diversos métodos para el aislamiento del AFP
humano a partir de material biológico, en parte en base a las
propiedades estructurales y funcionales de la
alfa-fetoproteína humana. Alternativamente, los
anticuerpos anti-AFP pueden inmovilizarse sobre un
substrato sólido para generar una columna de afinidad altamente
específica para la purificación de AFP
humano.
humano.
Además de polipéptidos substancialmente de
longitud total, la presente invención propone fragmentos
recombinantes biológicamente activos de
alfa-fetoproteína. Por ejemplo, fragmentos activos
de unión del ligando o inmunosupresión.
Los fragmentos de ADN natural o sintético que
codifican para la alfa-fetoproteína humana o un
fragmento deseado de la misma se incorporarán en estructuras de ADN
capaces de la introducción a un cultivo de células y de la
expresión en el mismo. Estructuras de ADN preparadas para la
introducción en dichos hospedadores incluirán típicamente un origen
de repetición que puede utilizar la célula hospedadora, un
fragmento de ADN que codifica la parte deseada de la
alfa-fetoproteína humana, secuencias de
transcripción reguladoras de iniciación traslacional unidas
operativamente al segmento que codifica la
alfa-fetoproteína, y secuencias de transcripción y
terminación traslacional reguladoras unidas operativamente al
segmento que codifica la alfa-fetoproteína. Las
secuencias reguladoras de transcripción incluirán típicamente un
estimulador heterólogo que es reconocido por el hospedador. La
selección de un estimulador apropiado dependerá del hospedador, si
bien pueden utilizase estimuladores tales como trp, tac y fago
estimuladores, estimuladores de tRNA y estimuladores de enzimas
glicolíticos bajo circunstancias apropiadas (Sambrook y otros eds.,
Molecular Closing; Laboratory Manual, Cold Spring Harbor
Press, Cold Spring Harbor, NY 1989). En algunos casos puede ser
deseable incluir secuencias de reconocimiento situadas
adecuadamente para factores capaces de regular la transcripción en
la célula hospedadora (por ejemplo, el represor lac de E.
coli). Pueden utilizarse vectores de expresión disponibles en
el mercado que incluyen el sistema de replicación y secuencias de
transcripción y de translación reguladoras junto con sitios
apropiados para la inserción de un fragmento de ADN que codifica el
gen que se ha de expresar.
Los distintos estimuladores, de transcripción, y
de traducción descritos anteriormente se denominan generalmente
como "elemento de control de expresión".
\newpage
También es posible integrar un fragmento de ADN
que codifica todo o parte de la AFP humana en el cromosoma de la
célula hospedadora.
Los vectores que contienen los segmentos de ADN
de interés pueden transferirse a la célula hospedadora por métodos
muy conocidos, que varían en función del tipo de hospedador celular
(Sambrook y otros, supra). El término "célula transformada"
significa que también incluye la descendencia de una célula
transformada.
Hospedadores procariotas útiles para la expresión
de alto nivel de proteínas recombinantes incluyen: distintas cepas
de E. coli, Bacilus Subtilis, y
Pseudomonas.
El procedimiento de la invención dispone un medio
a través del cual se generan grandes cantidades de
alfa-fetoproteína humana que presenta una actividad
biológica. La AFP producida de acuerdo con el procedimiento de la
invención presenta actividad biológica a pesar del hecho de que no
se modifica de la misma manera que la AFP humana de origen
natural.
Otras características y ventajas de la invención
serán claras a partir de la siguiente descripción de las
realizaciones preferidas, y de las reivindicaciones.
Se construyó una biblioteca de ADNc fraccionada
en tamaños (0,5-3 kb) preparada a partir de ARN
poli(A)^{+} aislado de células de hígado (\sim3
gramos de peso húmedo) de un aborto humano de 4,5 meses.
(Alternativamente, puede obtenerse una biblioteca de ADNc fetal de
Clontech Laboratories, Inc., Palo Alto, CA). El ARN total se
preparó mediante el procedimiento de tiocianato de guanidio
(Chirgwin y otros, Biochemistry 18:5294, 1979), y se
seleccionó mARN por cromatografía de oligo
DT-celulosa (Collaborative Research, Bedford, MA).
(Current Protocols in Molecular Biology, Ausubel y otros,
eds., Wiley Interscience, Nueva York, 1989). Se sintetizó ADNc
utilizando el kit de síntesis de ADNc Librarían II (Invitrogen, San
Diego, CA) y se fraccionó sobre un gel de azarosa a 1%. Se
extrajeron fragmentos de 0,5 a 3 kb y se ligó al vector
pTZ18-RB (Invitrogen), y se utilizó para
transformar E. coli. DH1\alphaF' (Invitrogen) competente.
Se llevó a cabo un procedimiento colony lifts con filtros
Colony/Plaque Screen (DuPont, Wilmington, DE), y las
colonias bacterianas transferidas fueron lisadas y desnaturalizados
mediante incubación en una solución de 0,5M NaOH, 1,5M NaCl durante
10 minutos. Los filtros se lavaron durante 5 minutos en 1,5M NaCl,
0,50M Tris-HCl (pH 7,6), y se secó al aire. Después
se lavaron los filtros 5 veces en cloroformo, se impregnaron en
0,3M NaCl para eliminar residuos celulares, y después se secó al
aire. El ADN se fijó a la nitrocelulosa calentando a 80º en vacío
durante 2 horas. Los filtros calentados fueron prehibridados
durante 3 horas a 37ºC en 6X SCC (1X SSC= 150 mM NaCl, citrato de
sodio 15 mM [pH 7,0]), 1X solución de Denhardt (0,2
polivinilpirrolidona, 0,2 gil ESA, 0,2 Ficoll 400), 0,05%
pirofosfato de sodio, 0,5% SDS, y 100 \mug/ml ADN E. coli.
La hibridación se realizó durante 18-24 horas a
37ºC en la misma solución sin SDS, que contenía 1-2
x 10^{6} cpm/ml de dos oligonucleótidos marcados con ^{32}P
mediante fosforilación del extremo 5' (Current Protocols in
Molecular Biology, supra). La secuencia de los
oligonucleótidos utilizada para explorar la biblioteca:
51-TGTCTGCAGGATGGGGAAAAA-3' (ID.
SEQ. nº: 1) y 5'-CATGAAATGACTCCAGTA- 3' (ID. SEQ.
nº: 2), corresponden a las posiciones 772 a 792 y a las posiciones
1405 a 1422 de la secuencia de codificación de AFP humana,
respectivamente. Los filtros se lavaron dos veces durante 30
minutos a 37ºC con 6X SSC, 0,05% pirofosfato de sodio y una vez
durante 30 minutos 48ºC en la misma solución. Los filtros secos
fueron expuestos a películas Kodak XAR en presencia de pantallas
intensificadoras de Du Pont Cronex Lightning Plus durante
24-48 horas para identificar clones positivos. Los
clones positivos fueron aislados, amplificados, y sometidos a
análisis de Southern blot (Current Protocols in Molecular
Biology, supra). Brevemente, se hidrolizó ADN purificado
con los enzimas de restricción apropiados, y los fragmentos
resultantes se resolvieron en gel de agarosa al 1%. El ADN fue
transferido después a una membrana de nitrocelulosa. Las
condiciones de hibridación fueron tal como se ha descrito
anteriormente excepto en que se utilizó un tercer oligonucleótido
marcado con ^{32}P
(5'-CATAGAAATGAATATGGA-3' (ID. SEQ.
nº: 3), representando las posiciones 7 a 24 de la zona que codifica
la AFP humana) además de las otras dos sondas descritas
anteriormente. Se identificaron cinco clones positivos entre las
3.000 colonias cribadas. Se utilizó un clon, el pLHuAFP, en la
configuración que se describe a continuación.
Se creó una estructura que contiene un codon de
iniciación de traducción seguido de la secuencia de codificación de
la AFP humana y un codon de terminación de traducción utilizando los
siguientes cinco fragmentos de ADN.
Fragmento 1: Se calentaron dos oligonucleótidos
no fosforilados para formar una molécula de ADN de doble cadena que
consiste en un sitio de reconocimiento de EcoRI cohesivo del
extremo 5', seguido de un codon de iniciación ATG y los primeros 60
bp del ADNc de AFP humana hasta el sitio de restricción PstI (e
inclusive) localizado en la posición 60 en la secuencia de
codificación. (En este esquema, el nucleótido 1 es el primer
nucleótido del primer codon (Thr) en la proteína madura y
corresponde al nucleótido 102 de Morinaga y otros, supra).
Este fragmento fue ligado a pUC119 (pUC19 con la zona intergénica
de M13 desde HgiA I en 5465 hasta AhaII en 5941 insertados en el
sitio Nde I del pUC19) linearizado con Eco RI y Pst I. El ADN
resultante fue amplificado en E. coli NM522 (Pharmacia,
Piscataway, NJ). La inserción de EcoRI-PstI se
recuperó por digestión enzimática del plásmido recombinante seguida
de separación electroforética en gel de poliacrilamida al 5% y el
aislamiento del gel.
Fragmento 2: Se obtuvo un fragmento de 97 bp de
ADNc de AFP humana (posiciones 57 a 153) por digestión de pLHuAFP
con PstI y NsiI y gel purificando tal como se ha descrito
anteriormente. Este clon contiene toda la zona de codificación de
AFP humana así como las secuencias no traducidas 5' y 3'.
Fragmento 3: Se obtuvo un fragmento de 224 bp de
ADNc de AFP humana (posiciones 150 a 373) por digestión de pLHuAFP
con NsiI y AlwNI y purificando como descrito anteriormente.
Fragmento 5: Se calentaron dos oligonucleótidos
no fosforilados para formar 86 bp de ADN de doble cadena que
contiene la secuencia de AFP humana desde la posición 1693 en el
sitio de Styl al codon de terminación TAA que termina la zona de
codificación de la AFP en la posición 1773, seguido de sitio de
BamHI cohesivo. Este ADN sintético se utilizó sin más
manipulaciones.
Se hidrolizó pBlueScript (StrataGene, La Jolla,
CA) completamente con EcoRI y BamHI, y se añadió a la mezcla de
ligación que contenía los cinco fragmentos purificados descritos
anteriormente. Una ligación de control contenía solamente
pBluescript linearizado. Se utilizaron partes de estas dos mezclas
de ligación para transformar el E. coli DH5\alpha
competente (GIBCO/BRL, Grand Island, NY). Los plásmidos
recombinantes fueron aislados de varios transformantes y fueron
cribados mediante análisis de enzima de restricción extensivo y
secuenciación de ADN. Se seleccionó un plásmida recombinante y se
designó como pHuAFP. Se utilizó para la posterior inserción del gen
de AFP humana en varios vectores de expresión. El pHuAFP incluye
un único fragmento de EcoRI-BamHI que contiene la
secuencia de codificación completa para la AFP humana además de un
codon de partida ATG en el extremo 5' y un codon final TAA en el
extremo 3'.
Se consiguió con éxito una síntesis de alto nivel
de AFP humana en E. coli en tres sistemas de expresión
diferentes. El sistema TRP proporcionó una expresión directa. El
sistema RX1 produjo una proteína de fusión que contenía 20
aminoácidos codificados por trpE y secuencias de vectores. El
sistema MAL expresó AFP fundido al producto gen malE, una proteína
de unión a maltosa de 42 kd.
Sistema de Expresión TRP: El fragmento de
codificación de AFP EcoRI-BamHI de 1186 bp del
pHuAFP se clonó en el vector de expresión pTrp4 (Olsen y otros,
J. Biotechnol. 9:179, 1989) curso abajo del estimulador trp y
un sitio de unión d ribosomas modificado.
Brevemente, el pHuAFP fue digerido con EcoRI y
BamHI, y los extremos se llenaron utilizando polimerasa de Klenow.
El fragmento de AFP de 1186 bp se purificó después en gel. El pTrp4
fue diferido en Clal, los extremos se llenaron utilizando
Polimerasa de Klenow, y el vector linearizado fue purificado en
gel. El fragmento de AFP de 1186 bp y la parte principal del pTrp4
fueron ligados y se utilizaron para transformar E. coli
competente de las cepas siguientes: DH5\alpha, BL21 (F. W.
Studier, Brookhaven National Laboratory, Upton, NY), SG927
(American Type culture Collection, Rockville, Md.: Acc. nº 39627),
SG928 (ATCC Acc. Nº 39628), y SG935 (ATCC Acc. nº 39623).
Sistema de Expresión RX1: Se clonó ADNc de AFP
humana en el vector de expresión pRX1 (Rimm y otros, Gene 75:323,
1989) adyacente al estimulador trp y en el marco de traducción de
TrpE. El ADNc de AFP humana se suprimió del pHuAFP por digestión
con EcoRI y BamHI y se clonó en pRX1 tratado adecuadamente (BioRad
Laboratories, Hércules, CA). Las cepas E. coli descritas
anteriormente y CAG456 (D. W. Cleveland, Johns Hopkins University,
Baltimore, MD) se transformaron después con la última configuración
de plásmido identificada como pRX1/HuAFP.
Sistema de Expresión MAL: El ADNc de AFP se
insertó en el vector de expresión pMAL (New England Biolabs, Inc.,
Beverly, MA) bajo el control del estimulador tac y en el marco de
traducción de malE. Brevemente, el pHuAFP fue hidrolizado con BamHI
y los extremos fueron suavizados utilizando polimerasa de Klenow.
El ADNc de AFP humana fue liberado del resto del ADN plásmido por
digestión de EcoRI y después se purificó en gel. El fragmento
purificado fue ligado al pMAL-C digerido
apropiadamente. Se utilizó un plásmido recombinante orientado
correctamente, designado pMAL/HuAFP, para transformar E.
coli DH5\alpha, TBI (New England Biolabs) y SG935.
La zona de codificación de AFP utilizada en la
configuración de los tres vectores de expresión fue secuenciada y
se encontró que codificaba AFP de longitud total.
Se incubaron cultivos bacterianos a 30ºC o 37ºC
con aireación. Los cultivos durante la noche de E. coli
crecieron en un medio LB complementado con los antibióticos
apropiados según fue necesario (era tetraciclina-HCl
a 50 \mug/ml, y ampicilina-Na a 100
\mug/ml).
Sistemas de Expresión TRP y RX1: El estimulador
trp fue inducido bajo condiciones de inanición de triptófano. La
inducción se realizó en un medio M9CA preparado tal como sigue: se
añadió 1 g de ácidos Casamino (Difco Laboratories, Detroit, MI), 6
g de Na_{2}HPO_{4}, 3 g de KH_{2}PO_{4}, 0,5 g de NaCl, 1 g
de NH_{4}Cl a un litro de agua milli-Q (Millipore
Corp., Bedford, MA), el pH se reguló a 7,4 y la solución de dispuso
en autoclave. El medio enfriado se hace MgSO_{4} 2 mM, CaCl_{2}
0,1 mM, y 0,2% glucosa. Después de una dilución de 100 partes de un
cultivo por la noche en M9CA complementado con antibióticos, las
células crecieron a 30ºC a A550 de 0,4, se cultivaron por
centrifugado, y se guardaron en forma de pellets a -20ºC.
Sistema de Expresión MAL: El estimulador tac fue
inducido con el inductor gratuito IPTG. Se diluyeron los cultivos de
noche en 100 partes en un medio LB complementado con antibióticos,
y las células crecieron a 37ºC a A550 de 0,4. Se añadió después
IPTG a una concentración final de 0,3 mm, y las bacterias se
incubaron 2 horas adicionales. Las células se cultivaron entonces
por centrifugado y se guardaron en forma de pellets a -20ºC.
Se llevaron a cabo estudios analíticos para
determinar la expresión y el comportamiento de AFP recombinante.
Los pellets de células fueron suspendidos en una solución de lisis
SDS (0,16M Tris-HCl [pH 6,8], 4% w/v SDS, 0,2M DTT,
20% glicerol, 0,02% azul de bromofenol), calentado durante 5
minutos, y utilizada para el análisis mediante
SDS-PAGE o bien fueron suspendidos en un buffer de
lisis que consistía en Na_{2}HPO_{4} 10 mM, NaCl 30 mM, 0,25%
Tween 20, EDTA 10 mM, EGTA 10 mM y se incubó con 1 mg/ml de
lisozima a 4ºC durante 30 minutos antes de sonicación en modo
pulsado para 3 x 1 minutos al 50% de potencia (Sonics and
Materials, Danbury, CT: sonificador modelo VC300). El lisado se
centrifugó a 10.000 g durante 20 minutos, y el sobrenadante que
contiene la proteína soluble fue decantado en un tubo de prueba
separado y se congeló a -20ºC hasta su uso. El pellet que contiene
la proteína insoluble fue resuspendido en el buffer de lisis SDS,
se calentó durante 5 minutos y se mantuvo a -20ºC hasta su uso. Se
analizó la proteína total liberada en el buffer de lisis SDS, así
como fracciones solubles y de pellets mediante
SDS-PAGE y detección inmunológica tras una
transferencia western blot. En estos estudios se examinaron de
manera rutinaria geles con azul de Coomassie con un vídeo
densitómetro (BioRad, modelo 620). Esto permitió una valoración
cualitativa de la cantidad de AFP recombinante producido como un
porcentaje de la proteína celular total.
Todos los procedimientos se llevaron a cabo a
4ºC, salvo que se indique lo contrario. Cada pellet de células
congelado a partir de cultivo de un litro fue resuspendido en 25 ml
de buffer A de lisis, Tris-HCl 50 mM [pH 7,5], 20%
sacarosa, 100 \mug/ml lisozima, 10 \mug/ml PMSF), y se incubó
durante 10 minutos. Se añadió EDTA a una concentración final de 35
mM; y el extracto se dejó reposar otros 10 minutos. Tras la adición
de 25 ml de buffer B de lisis (Tris-HCl 50 mM [pH
7,5], EDTA 25 mM, 0,2% Tritón X-100), el lisado se
incubó 30 minutos adicionales. El lisado celular fue centrifugado a
12.000 g durante 20 minutos, y el precipitado que contiene la AFP
recombinante se lavó dos veces con 50 ml de buffer de lavado
(Tris-HCl 50 mM [pH 8,0], EDTA 10 mM, 0,2% Tritón
X-100), seguido cada vez por centrifugado tal como
se ha especificado anteriormente. El precipitado se disolvió en 50
ml de Buffer de desnaturalización (0,1M K_{2}HPO_{4} [pH 8,5],
6M guanidina-HCl, 0,1M
2-mercaptoetanol), sonicado, y después se mezcló en
un Nutator (Clay Adams) durante 4 horas. El extracto solubilizado
fue diluido en 50 partes en Tris-HCl 50 mM, NaCl
100 mM, EDTA 1 mM, y la proteína de AFP recombinante se dejó
renaturalizar 24 horas. Esta etapa de dilución de 50 partes es
importante ya que antes de la dilución la AFP parece estar
microagregada. Después de la dilución y la reconcentration, la AFP
no está agregada. La solución se concentró en 100 partes en
membranas YM10 utilizando una unidad de filtración Amicon, y se
aclaró mediante un filtro de membranas Millex 0,22 \mum
(Millipore). La AFP recombinante se purificó también a temperatura
ambiente en una columna Mono Q (Pharmacia) y se equilibró en
Tris-HCl 20 mM (pH 8,0) con proteínas enlazadas
eluídas utilizando un gradiente lineal de 0-100%
NaCl 1M, Tris-HCl 2 mM (pH 8,0). Los fragmentos
fueron analizados mediante SDS-PAGE, APAGE, y
Western blotting.
Se llevó a acabo una SDS-PAGE en
un sistema de buffer discontinuo y una PAGE alcalina según Hames y
otros (Gel Electrophoresis of Proteins: A Practicak
Approach, IRL Press, London, 1981) empleando el aparato de
electroforesis mini-Protean (BioRad). La detección
inmunológica de AFP humano recombinante tras una
SDS-PAGE o APAGE se llevó a cabo impregnando los
geles en buffer de transferencia (Tris-HCl 12,5 mM,
glicina 96 mM, 20% metanol [pH 8,2]) durante 15 min. Después se
estratificaron los geles individuales con una membrana Immobilon
PVDF (Millipore) y se intercalaron entre las redes de electrodos
del dispositivo de transferencia mini-Protean
(BioRad), con los geles adyacentes al cátodo. El sistema se
sumergió en buffer de transferencia, y se aplicó una corriente de
150 MA durante 2 horas. Los sitios sin reaccionar en las láminas
de Immobilon PVDF fueron bloqueados en Tris-HCl 20
mM (pH 7,5), NaCl 500 mM, 3% gelatina durante 1 hora. Se empleó
antisuero de AFP antihumano de conejo y anticuerpos IgG de
anticonejo de cabra conjugados a fosfatasa alcalina (BioRad) como
anticuerpo principal y secundario, respectivamente. La actividad de
la fosfatasa alcalina se detectó utilizando
5-bromo-4-cloro-3-indolil
fosfato y p-nitroazul de tetrazolio
(Bio-Rad).
El AFP humano recombinante fue cuantificado
utilizando un kit de ELISA de AFP humana (Abbott Laboratories,
Chicago, IL).
El rendimiento de la AFP se estimó examinando
geles con tinción de plata. Cuando las células SG935 se transforman
con el plásmido que codifica la AFP que utiliza el sistema de
expresión Trp, la AFP representa de un 2 a un 5% de proteína E.
coli celular total (aproximadamente 3-7 mg de
AFP por litro de cultivo). Tal como se ha descrito anteriormente,
la mayoría de la AFP en el extracto inicial es insoluble. El
procedimiento de resolubilization descrito anteriormente permite una
recuperación de 50-60% de AFP en forma de AFP
monomérica estable y semipurificada (rendimiento aproximado 50
mg/20 l de E. coli). Esto puede purificarse además para dar
25 mg de AFP monomérica puro.
Se realizaron degradaciones Edman
automáticas utilizando un microsecuenciador de fase gas
proteína/péptido Porton con un HPLC microbore integrado
personalizado para optimizar la secuencia. El análisis de
secuencias de proteínas fue asistido mediante el uso de programas
seleccionados dentro del paquete de software PC/Gen
(Intelligenetics).
Puede utilizarse AFP humano recombinante y
fragmentos de la misma producidos por células procariotas para
estándares de diagnósticos y para usos terapéutico.
Puede administrarse AFP recombinante y fragmentos
de la misma en una cantidad eficaz, solo o en combinación con un
excipiente o diluyente farmacéuticamente aceptable. Los
polipéptidos y composiciones pueden administrarse solos o en
combinación con otros agentes terapéuticos a través de cualquier
medio apropiado, por ejemplo por vía intravenosa, oral,
intramuscular o intranasal.
(1) INFORMACIÓN GENERAL
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE: Murgita, Robert A.
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Expresión y Purificación de Alfa-Fetoproteína Humana Clonada
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 3
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- DIRECCIÓN DE CORRESPONDENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESTINATARIO: Fish & Richardson
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: 225, Franklin Street
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: Boston
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ESTADO: Massachusetts
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PÁIS: EEUU
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CÓDIGO POSTAL: 02110-2804
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- FORMULARIO ELECTRÓNICO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: Disco 3,5'', 1,44 Mb
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: IBM PS/2 Modelo 50Z o 55SX
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: IMB P.C. DOS (Versión 3.30)
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: WordPerfect (Versión 5.0)
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- DATOS DE SOLICITUD ACTUALES:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NÚMERO DE SOLICITUD:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- FECHA DE SOLICITUD:
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CLASIFICACIÓN:
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- DATOS DE SOLICITUD ANTERIORES:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NÚMERO DE SOLICITUD: 07/767.435
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- FECHA DE SOLICITUD: 27 de Septiembre de 1991
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- INFORMACIÓN DEL ABOGADO/AGENTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: Paul T. Clark
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Nº de REGISTRO: 30.162
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- Nº de REFERENCIA/SUMARIO: 04844/002001
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- INFORMACIÓN DE TELECOMUNICACIONES:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TELÉFONO: (617)-542-5070
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TELEFAX: (617)-542-8906
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TÉLEX: 200154
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA INDENTIFICACIÓN DE
SECUENCIA NÚMERO: 1
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TRENZADO: simple
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: ID. SECUENCIA nº 1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTGTCTGCAGG ATGGGGAAAAA
\hfill
\newpage
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA INDENTIFICACIÓN DE
SECUENCIA NÚMERO: 2
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TRENZADO: simple
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: ID. SECUENCIA nº 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCATGAAATGA CTCCAGTA
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA INDENTIFICACIÓN DE
SECUENCIA NÚMERO: 3
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TRENZADO: simple
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: ID. SECUENCIA nº 3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCATAGAAATG AATATGGA
\hfill
Claims (6)
1. Procedimiento para producir
alfa-fetoproteína humana biológicamente activa en
una célula procariota, que comprende
disponer una célula procariota transformada que
incluye una molécula de ADN recombinante que codifica la citada
alfa-fetoproteína humana unida operativamente a un
elemento de control de expresión capaz de dirigir la expresión de
dicha alfa-fetoproteína humana,
cultivar dicha célula transformada, y purificar
la citada alfa-fetoproteína humana.
2. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado en que dicha célula procariota es E.
coli.
3. Procedimiento según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, caracterizado en que dicho elemento de
control de expresión comprende un estimulador Trp de E.
coli.
4. Procedimiento según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, caracterizado en que dicho elemento de
control de expresión comprende un estimulador Tac de E.
coli.
5. Alfa-fetoproteína humana
substancialmente pura producida mediante el procedimiento de
cualquiera de las reivindicaciones anteriores.
6. Composición terapéutica que comprende la
alfa-fetoproteína substancialmente pura producida de
la reivindicación 5.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US76743591A | 1991-09-27 | 1991-09-27 | |
| PCT/US1992/008317 WO1994010199A1 (en) | 1991-09-27 | 1992-10-30 | Expression and purification of cloned human alpha-fetoprotein |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2235156T3 true ES2235156T3 (es) | 2005-07-01 |
Family
ID=26785055
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES93915109T Expired - Lifetime ES2235156T3 (es) | 1991-09-27 | 1992-10-30 | Expresion y purificacion de alfa-fetoproteina humana clonada. |
Country Status (8)
| Country | Link |
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