ES2245042T3 - Vectores de lentivirus de no primates y sistemas de empaquetamiento. - Google Patents

Vectores de lentivirus de no primates y sistemas de empaquetamiento.

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Eric M. Poeschia
David J. Looney
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Abstract

Un vector de ácido nucleico que comprende un sitio de encapsidación de VIF y una LTR 5¿ de VIF, en donde la región U3 de la LTR 5¿ está sustituida por una secuencia de control de la expresión que actúa en células humanas; y en donde dicho vector de ácido nucleico es incapaz de producir al menos una proteína vírica necesaria para encapsidar dicho vector en una partícula vírica en el contexto de una célula.

Description

Vectores de lentivirus de no primates y sistemas de empaquetamiento.
Declaración de apoyo gubernamental
Esta invención se ha realizado con ayuda gubernamental proporcionada por la Administración de Veteranos y concedida con el número de concesión Ca 67394 y AI36612 otorgado por los Institutos Nacionales de Salud. El Gobierno tiene ciertos derechos sobre esta invención.
Antecedentes de la invención
La terapia génica proporciona métodos para combatir enfermedades infecciosas crónicas (p. ej., infección con VIH), así como enfermedades no infecciosas que incluyen el cáncer y algunas formas de defectos congénitos, tales como deficiencias enzimáticas. Se han empleado algunas vías para introducir ácidos nucleicos en células in vivo, ex vivo e in vitro. Estas incluyen la entrega de genes mediante liposomas (Debs y Zhu (1993) documento de patente internacional WO 93/24640 y el documento de patente de Estados Unidos nº 5.641.662); Mannino y Gould-Fogerite (1988) BioTechniques 6(7): 682-691; el documento de patente de EE.UU. de Rose nº 5.279.833; el documento de patente de Brigham (1991) WO 91/06309; y Felgner y col. (1987) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84:7413-7414) y la entrega de genes mediada por vectores adenovíricos, p. ej., para tratar el cáncer (véase, p. ej., Chen y col. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 3054-3057; Tong y col. (1996) Gynecol. Oncol. 61: 175-179; Clayman y col. (1995) Cancer Res. 5: 1-6; O'Malley y col. (1995) Cancer Res. 55: 1080-1085; Hwang y col. (1995) Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 13: 7-16; Haddada y col. (1995) Curr. Top. Microbiol. Immunol. 199 (Pt. 3): 297-306; Addison y col. (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92: 8522-8526; Colak y col. (1995) Brain Res. 691: 76-82; Crystal (1995) Science 270: 404-410; Elshami y col. (1996) Human Gene Ther. 7: 141-148; Vincent y col. (1996) J. Neurosurg. 85: 648-654). También se han empleado vectores retrovíricos con replicación defectuosa que albergan una secuencia terapéuticas de polinucleótidos como parte del genoma retrovírico, particularmente en relación con vectores MuLV sencillos. Véase, p. ej., Miller y col. (1990) Mol. Cell. Biol. 10:4239 (1990); Kolberg (1992) J. NIH Res. 4:43 y Cornetta y col. Hum. Gene Ther. 2:215 (1991)).
Uno de los objetos más atractivos para la terapia génica es la infección con VIH. La expansión pandémica del VIH ha conducido a un intenso esfuerzo a escala mundial para desentrañar los mecanismos moleculares y el ciclo vital de estos virus. Ahora está claro que el ciclo de vida de los VIH proporciona muchas dianas potenciales para inhibir mediante terapia génica, que incluye la expresión celular de ácidos nucleicos de gag y env mutantes transdominantes para interferir con la entrada del virus, TAR (el sitio de unión de tat, que se requiere típicamente para la transactivación) es una señal para inhibir la transcripción y la transactivación y RRE (el sitio de unión de Rev; es decir, el elemento de respuesta a Rev, (del inglés, Rev Response Element) es un señuelo y los mutantes Rev transdominantes inhiben el procesamiento del ARN. Véase, Rosenburg y Fauci (1993) en Fundamental Immunology, Tercera Edición Paul (compilador) Raven Press, Ltd., Nueva York y las referencias citadas para un resumen de la infección con VIH y el ciclo vital del VIH. Los vectores para la terapia génica que codifican ribozimas, moléculas antiparalelas, genes señuelos, genes transdominantes y genes suicidas, que incluyen los retrovirus, son descritos por Yu y col., Gene Therapy (1994) 1:13-26. Los agentes terapéuticos antiparalelos y las ribozimas tienen una importancia creciente para el tratamiento y la prevención de la infección con VIH.
A pesar de las diversas vías terapéuticas génicas que están avanzando ahora para tratar el cáncer, el VIH y similares, existe una variedad de limitaciones en los sistemas de entrega empleados generalmente en la terapia génica. Por ejemplo, en relación con el tratamiento del VIH, los vectores retrovíricos de múridos empleados ampliamente transducen (transfieren los ácidos nucleicos) de forma defectuosa los linfocitos humanos de la sangre periférica y fracasan en la transducción de células que no se dividen, tales como los monocitos/macrófagos, que son conocidos por ser depósitos de VIH. Son deseables nuevos vectores seguros para la entrega de inhibidores víricos, particularmente, a las células pluripotenciales hematopoyéticas que no se dividen, para el tratamiento de la infección con
VIH.
Los lentivirus de no primates proporcionan un posible sistema para el desarrollo de nuevos sistemas de vectores; sin embargo, se conoce relativamente poco sobre estos virus. Aunque se ha estudiado considerablemente menos su biología que la de los lentivirus de primates (p. ej., VIH-1, VIH-2 y VIS), los lentivirus de no primates son de interés para la biología comparativa de los lentivirus y como fuentes potenciales de vectores seguros de lentivirus. Los vectores retrovíricos basados en VIH se han mostrado recientemente prometedores para la transferencia terapéutica de genes porque muestran la propiedad específica de los lentiretrovirus de infectar de forma permanente las células que no se dividen (véase, Naldini y col., (1996) Science 272, 263-267). Por el contrario, los vectores retrovíricos obtenidos a partir de simples retrovirus (p. ej., los Oncovirinae) requieren la rotura de la envuelta nuclear durante la mitosis, para completar la transcripción inversa y la integración. Por ello, estos vectores transducen de forma defectuosa las células que no se dividen, lo que puede limitar su utilidad para la transferencia de genes a dianas de células quiescentes o post-mitóticas. Sin embargo, los vectores de VIH presentan problemas complejos de seguridad (véase, Emerman (1996) Nature Biotechnology 14, 943).
Los lentivirus de no primates incluyen los lentivirus de ungulados que incluyen los virus visna/maedi, los virus de la artritis encefalitis caprina (VEAC), los virus de la anemia infecciosa equina (VAIE) y los virus de la inmunodeficiencia bovina (VIB). Estos lentivirus infectan sólo animales ungulados y generalmente sólo infectan especies particulares de ungulados.
Los lentivirus de no primates también incluyen el virus de la inmunodeficiencia de felinos (VIF) (véase, Clements & Zink (1996) Clinical Microbiology Reviews 9, 100-117) que sólo infecta a felinos. Se han identificado numerosas cepas de VIF.
Los lentivirus de no primates (p. ej., de felinos y ungulados) pueden proporcionar una alternativa más segura que los vectores de lentivirus de primates, pero su uso es complicado por una falta relativa de conocimiento sobre sus propiedades moleculares, especialmente su adaptabilidad a células animales no hospedadoras (Emerman, mencionado anteriormente). Todos los lentivirus muestran tropismos altamente restringidos (véase, Clements & Zink (1996), véase arriba y Haase (1994) Annuals of the New York Academy of Sciences 724, 75-86).
El VIF fue descubierto en 1986 como una causa de la inmunodeficiencia adquirida y de enfermedad neurológica en, y sólo en, gatos domésticos (Felis catus) Pedersen y col. (1987) Science 235, 790-793 (1987); Elder & Phillips (1993) Infectious Agents and Disease 2, 361-374; Pedersen (1993) "The feline immunodeficiency virus" en The Retroviridae (compilador, Levy, J.A.) 181-228 (Plenum Press, Nueva York) Bendinelli y col. (1995) Clinical Microbiology Reviews 8, 87-112; y Sparger (1993) Veterinary Clinics of North America, Small Animal Practice 23, 173-191). En los gatos grandes, el VIF está ampliamente extendido geográficamente y parece ser simbiótico: 18 de 37 especies de Felidae no domésticas y de vagabundeo libre se conocen por estar infectadas en todo el mundo, pero sin tener una enfermedad manifiesta (Elder & Phillips (1993), véase arriba; Olmsted y col. (1992) Journal of Virology 66, 6008-6018; Burr y col. (1995) Journal of Virology 69, 7371-7374; Courchamp & Pontier (1994) "Feline immunodeficiency virus: an epidemiological review". Comptes Rendus de L'Academie des Sciences. Serie III. Sciences de la Vie 317, 1123-1134). El virus es predominante, infectando 2-20% de las poblaciones de gato doméstico en Norte América, Europa y Japón; se han observado tasas más altas en gatos llevados a cuidados veterinarios (Pedersen (1993), véase arriba y Courchamp, F. & Pontier (1994), véase arriba). La predominancia mundial del VIF en diversas Felidae y la observación de que los sueros de Felis catus con fecha de 1960 que muestran unas tasas altas similares de casos positivos, sugieren que el VIF no se ha introducido recientemente en los gatos domésticos (Bendinelli y col. (1995), véase arriba, Olmsted y col. (1992), véase arriba; Courchamp, F. & Pontier (1994) véase arriba; Shelton y col. (1990) Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes 3, 623-630; Bennett & Smyth (1992) British Veterinary Journal 148, 399-412; Brown y col. (1993) Journal of Zoo and Wildlife Medicine 24, 357-364; Carpenter & O'Brien (1995) Current Opinion in Genetics and Development 5, 739-745.
No existe una evidencia de infección con VIF de animales no felinos. La infección cruzada con cualquier lentivirus de ungulado o de felino no se ha observado nunca en animales no ungulados o no felinos, respectivamente. El VIH y el VIF difieren notablemente en sus modos de transmisión, ya que el VIF se dispersa principalmente por mordedura (Pederson (1993) véase arriba). A pesar de la frecuente exposición de los humanos al VIF a través de mordeduras de gatos domésticos, este modo de inoculación claramente eficaz, no produce como resultado la seroconversión en humanos o cualquier otra evidencia detectable de infección o de enfermedad en los humanos (Pedersen (1993) mencionado anteriormente: Bendinelli y col. (1995) véase arriba; Sparger (1993), véase arriba; Courchamp, F. & Pontier (1994), véase arriba; Brown y col. (1993).
El VIF también está distante genética y antigénicamente de los lentivirus de primates. Comparaciones de las secuencias de nucleótidos indican una relación más estrecha con los lentivirus de ungulados que con el VIH y el VIS (Olmsted y col. (1989) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 86, 2448-2452 (Olmsted y col. (1989) A); Olmsted y col. (1989) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 86, 8088-8092 (Olmsted y col. (1989) B). Se ha observado reactividad serológica cruzada de las proteínas del núcleo de VIF con diversos lentivirus de ungulados, pero no tiene lugar con VIH-1, VIH-2 o VIS (Elder, J.H. & Phillips (1993), véase arriba; Bennett, M. & Smyth (1992), véase arriba; Olmsted y col. (1989) A, véase arriba; Talbott y col. (1989) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 86, 5743-5747; Miyazawa y col. (1994) Archives of Virology 134, 221-234). El virus codifica una dUTPasa; esta quinta actividad enzimática codificada por pol es una característica encontrada sólo en lentivirus de no primates (Wagaman y col. (1993) Virology 196, 451-457). Los datos filogenéticos y epidemiológicos sugieren un episodio adaptativo antiguo entre el VIF y los ancestros de los felinos salvajes, así como una divergencia temprana en la evolución desde los ancestros de otros lentivirus (Olmsted, R.A. y col. (1992) véase arriba; Brown y col. (1993), véase arriba; Carpenter & O'Brien (1995); Talbott y col. (1989), véase arriba).
A nivel celular, también son evidentes restricciones en las células humanas frente a los estados productivos e infecciosos de los ciclos vitales de lentivirus de no primates (Tomonaga y col. (1994) Journal of Veterinary Medical Science 56, 199-201; Miyazawa y col. (1992) Journal of General Virology 73, 1543-1546; Thormar & Sigurdardottir (1962) Acta Pathol Microbiol Scandinav 55, 180-186; Gilden y col. (1981) Archives of Virology 67, 181-185; Carey & Dalziel (1993) British Veterinary Journal 149, 437-454. Las bases de estos bloqueos que pueden impedir el desarrollo de vectores basados en lentivirus de no primates, para aplicación humana, no se conocen bien.
Las moléculas CD4 de primates son los únicos receptores primarios de lentivirus, conocidos (p. ej., para VIH). No se han determinado previamente receptores primarios ni secundarios, para ninguno de los lentivirus de no primates. Aunque un anticuerpo que se une al homólogo en felinos de CD9, inhibe la infección con VIF en cultivo de tejidos (Willett (1994) Immunology 81, 228-233), una investigación posterior ha establecido que ni CD9 ni el homólogo en felinos de CD4 son receptores de VIF (Willett y col. (1997) Journal of General Virology 78, 611-618). Los obstáculos descritos para la expresión de VIF en células humanas han incluido el funcionamiento débil de las funciones víricas del núcleo, tales como el eje regulador Rev/RRE (Tomonaga, K. y col. (1994) véase arriba; Simon y col. (1995) Journal of Virology 69, 4166-4172) y la débil actividad promotora de la repetición terminal larga (LTR) (Miyazawa y col. (1992), véase arriba; Sparger y col. (1992) Virology 187, 165-177. Debido a estos bloqueos, la expresión de las proteínas estructurales dependientes de Rev de lentivirus de no primates, se ha estudiado muy limitadamente.
Además de la cuestión del tropismo restringido, la producción de vectores de lentivirus de no primates en células de ungulados o de felinos para uso clínico, crearía riesgos de transmisión de retrovirus endógenos u otros patógenos potenciales. Este peligro está bien documentado en células de origen animal diverso (Stoye & Coffin (1995) Nature Medicine 1, 1100; van der Kuyl y col. (1997) Journal of Virology 71, 3666-3676). Las células de felinos también contienen múltiples copias de un retrovirus endógeno de tipo C, competente para la replicación (RD114), que se replica en células humanas, se mezcla fenotípicamente con otros retrovirus y se relaciona a nivel de la secuencia de nucleótidos con un retrovirus de primate (virus endógeno de babuino) (McAllister y col. (1972) Nature New Biol. 235, 3-6). Además, al contrario de la mayoría de los otros retrovirus de mamíferos de tipo C, RD114 resiste la inactivación por el complemento del suero humano (Takeuchi y col. (1994) Journal of Virology 68, 8001-8007). Las células de gato también pueden contener otros agentes infecciosos desconocidos y potencialmente patógenos.
Por tanto, existe una necesidad en la técnica de vectores seguros para lentivirus, p. ej., para la entrega de genes, el tratamiento del cáncer, los inhibidores víricos y similares para células que no se dividen, que incluyen células pluripotenciales hematopoyéticas y células neuronales, y para células humanas que encapsidan vectores, capaces de encapsidar vectores de lentivirus de no primates. La presente invención proporciona estas y otras características.
Sumario de la invención
Esta invención describe sistemas de encapsidación de retrovirus, vectores, ácidos nucleicos encapsidables y otras características basadas en el descubrimiento y el diseño de vectores de lentivirus de no primates que son activos en células humanas. Los vectores que pueden ser encapsidados por un lentivirus de no primate, VIF, se transducen a células humanas que no están en división. Los sistemas de encapsidación producen unos componentes de encapsidación de vectores en trans en las células humanas, evitando de este modo la posibilidad de introducción de nuevos agentes patógenos en la población humana. Estos vectores y los componentes de encapsidación son útiles para la construcción de vectores generales para la transferencia génica y para la terapia génica en humanos.
Una clase de vector retrovírico proporcionada por la invención tiene un ácido nucleico del vector encapsidado por el lentivirus de no primate, VIF. Por tanto, el vector tiene un ácido nucleico encapsidable que es reconocido y encapsidado por las proteínas víricas de encapsidación codificadas por el retrovirus seleccionado (es decir, VIF). El ácido nucleico del vector puede incluir también un ácido nucleico diana heterólogo, tal como un gen terapéutico. El ácido nucleico del vector no es virulento porque el ácido nucleico carece o tiene defectuoso uno o varios genes necesarios para la replicación vírica. Sin embargo, cuando el componente perdido o defectuoso (p. ej., una proteína retrovírica) se proporciona en trans (p. ej., en una célula de encapsidación), el ácido nucleico del vector se encapsida en forma de partícula vírica. Estos vectores incluyen opcionalmente elementos de la encapsidación o de la replicación del vector, tales como proteínas víricas, partículas víricas, actividad de transcriptasa inversa o similares.
Una clase preferida de dianas para los vectores de la invención son las células humanas, particularmente las células que no se dividen tales como las células hematopoyéticas diferenciadas terminalmente y las neuronas (las células están in vitro o in vivo). Por ello, se prefieren las características dirigidas a la transducción y a la infección de células humanas. Por ejemplo, la incorporación de la glicoproteína del virus de la estomatitis vesicular (VSV) en la superficie del vector, se prefiere en algunas realizaciones, ya que ésta facilita la entrada del vector en una variedad de células humanas. De forma similar, la incorporación de un promotor (p. ej., el promotor de CMV o un promotor de ARNt) que dirige la expresión de uno o varios ácidos nucleicos codificados por el vector en una célula humana, es deseable para la producción de ácidos nucleicos y, opcionalmente, de proteínas codificadas por el vector en una célula humana diana.
Los plásmidos de encapsidación que codifican componentes víricos que encapsidan los ácidos nucleicos del vector en trans, también se pueden proporcionar. Los plásmidos de encapsidación incluyen un promotor que es activo en una célula humana (es decir, una célula humana empleada para la encapsidación del vector). Este promotor está ligado funcionalmente con un ácido nucleico que codifica al menos una proteína necesaria para la encapsidación del ácido nucleico del vector, p. ej., un ácido nucleico de encapsidación de VIF. El plásmido de encapsidación carece de un sitio para la encapsidación de VIF.
En una realización preferida, el plásmido de encapsidación tiene una LTR de VIF que tiene una deleción en el promotor U3, típicamente con una inserción de un promotor heterólogo en el sitio de la deleción. Esta disposición da como resultado la eliminación endógena de la función del promotor de LTR de VIF, permitiendo la regulación con el promotor heterólogo.
Se apreciará que las células retrovíricas de encapsidación que encapsidan los ácidos nucleicos encapsidables en lentivirus de no primates, son proporcionadas por los plásmidos de encapsidación descritos anteriormente. En particular, las células que son preferentemente humanas, comprenden plásmidos de encapsidación que codifican los elementos de encapsidación necesarios para el virus (p. ej., las proteínas Gag y Env). Estos elementos de encapsidación se emplean para encapsidar los ácidos nucleicos del vector encapsidables en trans. Por razones de seguridad, frecuentemente es preferible para la célula incluir plásmidos de encapsidación separados, codificando cada uno de ellos proteínas de encapsidación diferentes. Por ejemplo, una célula de encapsidación puede incluir dos plásmidos de encapsidación separados que codifican diferentes proteínas de encapsidación de retrovirus distintas (p. ej., las proteínas Gag y Env de VIF). La célula puede comprender adicionalmente un plásmido que codifique un elemento seudotipificador, tal como la glicoproteína de la envuelta de VSV para aumentar el campo de cualquier plásmido encapsidado. El elemento seudotipificador puede estar codificado en el mismo plásmido como otro elemento retrovírico de no primates o en un plásmido separado. En cualquier caso, los elementos de encapsidación deseados están bajo el control de elementos reguladores adecuados que dirigen la expresión de los componentes en una célula humana. Se apreciará que los ácidos nucleicos encapsidables (p. ej., que incluyen un sitio de encapsidación de VIF y un ácido nucleico heterólogo) se transducen opcionalmente (de forma estable o transitoria) en las células de la invención.
Breve descripción de los dibujos
La Fig. 1 es un esquema que describe las estructuras artificiales de ácidos nucleicos de la invención, que incluyen FIV34TF-10, CT5, CTRZLb y CTAGCb.
Los paneles de las Figs. 2A y B, proporcionan los resultados experimentales de forma gráfica.
Definiciones
Para los fines de la presente invención, se definen a continuación los siguientes términos.
Un "vector" es una composición que se puede transducir, transformar o puede infectar una célula, causando por ello que la célula exprese los ácidos nucleicos codificados por el vector y, opcionalmente, las proteínas distintas de las naturales de la célula o de una manera no natural para la célula. Un vector incluye un ácido nucleico (generalmente ARN o ADN) que va a ser expresado por la célula (un "ácido nucleico del vector"). Un vector incluye opcionalmente materiales de ayuda para conseguir la entrada del ácido nucleico en la célula, tales como una partícula retrovírica, un liposoma, una proteína de la cubierta o similares.
Un "ácido nucleico encapsidable en lentivirus de no primate" es un ácido nucleico que tiene un sitio funcional de encapsidación en virus, procedente de un lentivirus de ungulado o de un lentivirus VIF. Los ácidos nucleicos que tienen este sito de encapsidación que se puede incorporar en una partícula vírica mediante componentes víricos, aportados en trans, por un virus correspondiente de tipo silvestre, se encapsidan en el virus de tipo silvestre (o en los componentes de encapsidación adecuados, obtenidos a partir de un virus de tipo silvestre).
Un "defecto de encapsidación que bloquea la auto-encapsidación" de un ácido nucleico de un vector de lentivirus de no primate, es una incapacidad del ácido nucleico para producir al menos una proteína vírica necesaria para la encapsidación del ácido nucleico del vector en una partícula vírica en el contexto de una célula. Por ejemplo, cuando el vector del lentivirus no codifica las proteínas Gag o Env, las proteínas se deben suministrar en trans, antes de que se pueda encapsidar en la célula el ácido nucleico del vector. La omisión puede ser una deleción o una mutación de un gen necesario para la encapsidación vírica de un clon vírico, en la región codificadora o no codificadora (p. ej., promotor) del gen relevante. El ácido nucleico del vector se puede rescatar en trans cuando codifica un sitio de encapsidación vírico que es reconocido por un vector de lentivirus de no primate, tal como VIF.
Un "plásmido de encapsidación" es un plásmido que codifica componentes necesarios para la producción de partículas víricas en una célula transducida con el plásmido de encapsidación. El plásmido de encapsidación codifica opcionalmente todos los componentes necesarios para la producción de partículas víricas o incluye opcionalmente un subgrupo de componentes necesarios para la encapsidación. Por ejemplo, en una realización preferida, una célula de encapsidación se transforma con más de un plásmido de encapsidación, teniendo cada uno de ellos una función complementaria en la producción de una partícula de VIF. El plásmido de encapsidación carece de un sitio funcional para la encapsidación, es decir, un sitio para la encapsidación reconocido por los componentes del lentivirus de no primate, codificado por el plásmido, volviendo al plásmido incapaz de encapsidarse a sí mismo.
Dos (o más) de los plásmidos para la encapsidación basada en lentivirus de no primate, son "complementarios" cuando juntos codifican todas las funciones necesarias para la encapsidación vírica y cuando cada uno de forma individual no codifica todas las funciones necesarias para la encapsidación. Por tanto, p. ej., cuando dos plásmidos transducen a una sola célula y juntos codifican la información para la producción de las partículas para la encapsidación de VIF, los dos vectores son "complementarios". El uso de plásmidos complementarios se prefiere porque aumenta la seguridad de cualquier célula de encapsidación preparada para la transformación con un plásmido de encapsidación, reduciendo la posibilidad de que un proceso de recombinación produzca un virus infeccioso.
Los plásmidos de encapsidación codifican componentes de una partícula vírica. Las partículas son competentes para encapsidar el ARN diana que tiene un sitio correspondiente para la encapsidación. Los "plásmidos muy eficaces para la encapsidación" encapsidan ARNs dianas que tienen sitios de encapsidación de modo que las células de encapsidación transducidas de forma transitoria o estable con el plásmido de encapsidación y transducidas con el ácido nucleico encapsidable diana, se dirigen a la diana de ARN del vector encapsidable, con un título de al menos aproximadamente 10^{5} o 10^{6} hasta aproximadamente 10^{7} o incluso 10^{8} unidades de transducción por ml o más. El título preciso que se produce varía dependiendo de la naturaleza del ácido nucleico encapsidable y de la célula de encapsidación seleccionada. Una mayor capacidad de infección se obtiene típicamente cuando se encapsidan vectores con sitos de encapsidación completos.
Un "inhibidor" o un "inhibidor vírico" es lo más frecuente un ácido nucleico que codifica un agente antivírico activo o que es el mismo un agente antivírico. Por tanto, en una clase de realizaciones, el inhibidor es un "inhibidor directo", es decir, el inhibidor actúa directamente sobre un componente vírico para inhibir la infección, la replicación, la integración o el crecimiento del virus en la célula. Por ejemplo, en una realización particularmente preferida, el inhibidor comprende una ribozima trans-activa que corta un transcrito de VIH. Con esta configuración, el inhibidor es típicamente una molécula de ARN con actividad nucleasa catalítica. En otra clase de realizaciones, el inhibidor es un "inhibidor indirecto", es decir, el inhibidor codifica el inhibidor directo. Un inhibidor "codifica" un inhibidor directo tal como una ribozima activa, una proteína, un señuelo molecular de ARN o un ARN antiparalelo si éste contiene el ácido nucleico paralelo o antiparalelo, codificante o complementario, que se corresponde con el inhibidor directo. Por convención, los ARNs inhibidores directos, tales como ribozimas se clasifican típicamente por sus secuencias de ADN correspondientes. Esto se hace para simplificar la visualización del ARN activo correspondiente, que es equivalente a la secuencia dada con los residuos T sustituidos por residuos U.
Una "inhibición vírica" se refiere a la capacidad de un componente para inhibir la infección, el crecimiento, la integración o la replicación de un virus en una célula. La inhibición se mide típicamente vigilando los cambios en una carga vírica de la célula (es decir, el número de virus y/o de proteínas víricas o de ácidos nucleicos presentes en la célula, en el cultivo celular o en el organismo) o vigilando la resistencia a la infección de una célula, de un cultivo celular o de un organismo.
Un "promotor" es un conjunto de secuencias para controlar el ácido nucleico que dirigen la transcripción de un ácido nucleico. Tal y como se emplea en esta memoria, un promotor incluye las secuencias de ácido nucleico necesarias cercanas al sitio de inicio de la transcripción, tales como, en el caso de un promotor de tipo polimerasa II, un elemento TATA. Un promotor también incluye opcionalmente elementos potenciadores o represores que pueden estar localizados hasta a varios miles de pares de bases del sito de inicio de la transcripción.
Un promotor "constitutivo" es un promotor que es activo bajo la mayoría de las condiciones del entorno y del desarrollo. Un promotor "inducible" es un promotor que está sometido a regulación por elentorno o por el desarrollo.
Los términos y expresiones "aislado" o "biológicamente puro" se refieren a un material que está sustancial o esencialmente exento de componentes que le acompañan normalmente cuando se encuentra en estado natural.
El término "heterólogo", cuando se emplea en relación con las partes de un ácido nucleico, indica que el ácido nucleico comprende dos o más subsecuencias que no se encuentran en la misma relación entre sí en la naturaleza. Por ejemplo, el ácido nucleico se produce típicamente de forma recombinante, disponiéndose dos o más secuencias de genes no relacionados, para formar un nuevo ácido nucleico funcional. Por ejemplo, en una realización, el ácido nucleico tiene un promotor de un gen dispuesto para dirigir la expresión de una secuencia codificadora de un gen diferente, tal como una ribozima antivírica. Por tanto, haciendo referencia a la secuencia que codifica la ribozima, el promotor es heterólogo.
El término "idéntico" en el contexto de dos secuencias de ácidos nucleicos o de polipéptidos, se refiere a los residuos en las dos secuencias que son iguales cuando están alineados con una correspondencia máxima. Cuando se emplea un porcentaje de la identidad de la secuencia en relación con proteínas o péptidos, se reconoce que las posiciones de los residuos que no son idénticos, difieren frecuentemente en sustituciones conservadoras de aminoácidos, en donde los residuos de aminoácidos están sustituidos por otros residuos de aminoácidos con propiedades químicas similares (p. ej., carga o hidrofobicidad) y por ello no cambian las propiedades funcionales de la molécula. Cuando las secuencias difieren en sustituciones conservadoras, el porcentaje de identidad de la secuencia se tiene que ajustar hacia arriba para corregir la naturaleza conservadora de la sustitución. Los medios para realizar este ajuste son bien conocidos por los expertos en la técnica. Típicamente, esto implica valorar una sustitución conservadora como un desemparejamiento parcial, más que un desemparejamiento total, incrementando de este modo el porcentaje de identidad de la secuencia. Por tanto, por ejemplo, cuando un aminoácido idéntico se valora con una puntuación 1 y a una sustitución no conservadora se le da un valor cero, a una sustitución conservadora se le da una puntuación entre cero y 1. La puntuación de sustituciones conservadoras se calcula, p. ej., según el algoritmo de Meyers y Miller, Computer Applic. Biol. Sci., 4: 11-17 (1988) p. ej., como se implementa en el programa PC/GENE (Intelligenetics, Mountain View, California, EE.UU.). Una "ventana comparativa", tal y como se emplea en esta memoria, se refiere a un segmento de al menos aproximadamente 50 posiciones contiguas, generalmente aproximadamente 50 hasta aproximadamente 200, más generalmente aproximadamente 100 hasta aproximadamente 150, en donde una secuencia se compara con una secuencia de referencia con el mismo número de posiciones contiguas, después de alinear de forma óptima las dos secuencias. Los métodos para alinear las secuencias a comparar son bien conocidos en la técnica. La alineación óptima de secuencias a comparar se puede realizar mediante el algoritmo de homología local de Smith y Waterman (1981), Adv. Appl. Math. 2: 482; por el algoritmo de alineación por homología de Needleman y Wunsch (1970) J. Mol. Biol. 48: 443; por la búsqueda de similitudes por el método de Pearson y Lipman (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85: 2444; mediante implementaciones por ordenador de estos algoritmos (que incluyen, pero no están limitadas a CLUSTAL en el programa PC/Gene de Intelligenetics, Mountain View, California, GAP, BESTFIT, FASTA y TFASTA en el paquete de programas de Wisconsin Genetics, Genetics Computer Group (GCG), 575 Science Dr., Madison, Wisconsin, EE.UU.); el programa CLUSTAL está bien descrito por Higgins y Sharp (1988) Gene, 73: 237-244 y Higgins y Sharp (1989) CABIOS 5: 151-153; Corpet y col. (1988) Nucleic Acids Research 16, 10881-90; Huang y col., (1992) Computer Applications in the Biosciences 8, 155-65; y Pearson y col. (1994) Methods in Molecular Biology 24, 307-31. La alineación también se realiza frecuentemente por inspección y alineación manual. Las "variaciones modificadas de forma conservadora" de una secuencia de ácidos nucleicos particular, se refieren a los ácidos nucleicos que codifican secuencias de aminoácidos idénticas o esencialmente idénticas o, cuando el ácido nucleico no codifica una secuencia de aminoácidos, para las secuencias esencialmente idénticas. Debido a la degeneración del código genético, un gran número de ácidos nucleicos funcionalmente idénticos codifican cualquier polipéptido dado. Por ejemplo, los codones CGU, CGC, CGA, CGG, AGA y AGG todos ellos codifican el aminoácido arginina. Por tanto, en todas las posiciones en las que se especifica una arginina por un codón, el codón se puede alterar a cualquiera de los codones correspondientes descritos, sin alterar el polipéptido codificado. Tales variaciones de ácidos nucleicos son "variaciones silenciosas" que son un tipo de las "variaciones modificadas de forma conservadora". Cada secuencia de ácido nucleico que codifica en esta memoria un polipéptido, también describe cualquier posible alteración silenciosa. Un experto en la técnica reconocerá que cada codón en un ácido nucleico (excepto AUG, que es generalmente el único codón para metionina) se puede modificar para conseguir una molécula funcionalmente idéntica, mediante técnicas convencionales. Por tanto, cada "variación silenciosa" de un ácido nucleico que codifica un polipéptido está implícita en cualquier secuencia descrita. Además, un experto en la técnica reconocerá que las sustituciones, las deleciones o las adiciones individuales que alteran, añaden o delecionan un aminoácido aislado o un pequeño porcentaje de aminoácidos (típicamente menos de 5%, más típicamente menos de 1%) en una secuencia codificada, son "variaciones modificadas de forma conservadora", en donde las alteraciones dan como resultado la sustitución de un aminoácido por un aminoácido químicamente similar. Las tablas de sustituciones conservadoras que proporcionan aminoácidos funcionalmente similares son bien conocidas en la técnica. Los seis grupos siguientes contienen cada uno aminoácidos que son sustituciones conservadoras de otro: 1) Alanina (A), Serina (S), Treonina (T); 2) Ácido aspártico (D), Ácido glutámico (E); 3) Asparagina (N), Glutamina (Q); 4) Arginina (R), Lisina (K); 5) Isoleucina (I), Leucina (L), Metionina (M), Valina (V); y 6) Fenilalanina (F), Tirosina (Y), Triptófano (W). Véase también, Creighton (1984) Proteins W.H. Freeman and Company. Finalmente, la adición de secuencias que no alteran la actividad de una molécula de ácido nucleico, tal como una secuencia no funcional, es una modificación conservadora del ácido nucleico básico.
Las "condiciones rigurosas de lavado de la hibridación" en el contexto de los experimentos de hibridación de ácidos nucleicos, tales como hibridaciones de tipo Southern y Northern, son dependientes de la secuencia y son diferentes según parámetros diferentes del entorno. Una guía a fondo de la hibridación de ácidos nucleicos se encuentra en Tijssen (1993) Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology-Hybridization with Nucleic Acid Probes parte I capítulo 2 "revisión de los principios de la hibridación y la estrategia de ensayos con sondas de ácidos nucleicos", Elsevier, Nueva York. Generalmente, una hibridación y unas condiciones de lavado muy rigurosas se seleccionan para que sean aproximadamente 5ºC menores que el punto de fusión térmico (T_{m}) para la secuencia específica, con una fuerza iónica y un pH definidos. El T_{m} es la temperatura (con una fuerza iónica y un pH definidos) a la que el 50% de la secuencia diana se hibrida con una sonda perfectamente emparejada. Unas condiciones muy rigurosas se seleccionan para que sea igual al T_{m} para una sonda en particular.
Un ejemplo de condiciones de hibridación rigurosas para la hibridación de ácidos nucleicos complementarios que tienen más de 100 residuos complementarios, sobre un filtro en una transferencia de tipo Southern o Northern, es 50% de formalina con 1 mg de heparina a 42ºC, realizándose la hibridación durante una noche. Un ejemplo de condiciones de lavado rigurosas es un lavado con 2x SSC a 65ºC durante 15 minutos (véase, Sambrook, véase arriba, para una descripción del tampón SSC). Frecuentemente, el lavado muy riguroso está precedido de un lavado menos riguroso para eliminar la señal de fondo de la sonda. Un ejemplo de lavado menos riguroso es 2x SSC a 40ºC durante 15 minutos. En general, una proporción de la fuerza de una señal con la cantidad de interferencia no deseada (ruido) de 2x (o superior) que la observada para una sonda no relacionada en el ensayo de hibridación particular, indica la detección de una hibridación específica.
Los ácidos nucleicos que no se hibridan entre sí bajo condiciones rigurosas son todavía sustancialmente idénticos si los polipéptidos que codifican son sustancialmente idénticos. Esto tiene lugar, p. ej., cuando se crea una copia de un ácido nucleico empleando la mayor degeneración posible del codón, permitida por el código genético.
Una "proteína Gag de VIF-1" es una proteína codificada por el gen gag de VIF-1. Las proteínas Gag se traducen típicamente como una gran preproteína que se corta para formar las proteínas del núcleo estructural que encapsidan el ARN genómico de VIF de tipo silvestre. Una proteína Gag truncada es una proteína producida por un gen gag que tiene una deleción en relación con la secuencia de tipo silvestre. De forma similar, una proteína de la transcriptasa inversa de VIF y una proteína de la envuelta de VIF están codificadas por los genes pol y env, respectivamente.
La expresión "ácido nucleico" se refiere a un polímero de desoxirribonucleótidos o de ribonucleótidos en forma mono o bicatenaria y, a menos que no se indique de otro modo, incluye los análogos conocidos de nucleótidos naturales que se hibridan con los ácidos nucleicos de forma similar a los nucleótidos presentes en la naturaleza. A no ser que se indique de otro modo, una secuencia de ácidos nucleicos particular incluye opcionalmente su secuencia complementaria.
La expresión "ligado funcionalmente" se refiere a una asociación funcional entre una secuencia que controla la expresión del ácido nucleico (tal como un promotor o un conjunto de sitios de unión de un factor de transcripción) y una segunda secuencia de ácidos nucleicos, en donde la secuencia que controla la expresión dirige la transcripción del ácido nucleico correspondiente a la segunda secuencia.
El término "recombinante", cuando se emplea haciendo referencia a una célula, indica que la célula replica o expresa un ácido nucleico, o que expresa un péptido o una proteína codificada por ácido nucleico, cuyo origen es exógeno a la célula. Las células recombinantes pueden expresar genes que no se encuentran en la forma natural (no recombinante) de la célula. Las células recombinantes también pueden expresar genes encontrados en la forma natural de la célula en donde los genes se reintroducen en la células por medios artificiales.
Una "casete de expresión recombinante" o simplemente una "casete de expresión" es una estructura artificial de ácidos nucleicos, generada por recombinación o sintéticamente, con elementos de ácido nucleico que permiten la transcripción de un ácido nucleico particular en una célula. La casete de expresión recombinante puede ser parte de un plásmido, un virus o un fragmento de ácido nucleico. Típicamente, la casete de expresión recombinante incluye un ácido nucleico que se va a transcribir y un promotor. En algunas realizaciones, la casete de expresión también incluye, p. ej., un origen de replicación y/o elementos de integración cromosómica (p. ej., una LTR retrovírica).
El término "subsecuencia" en el contexto de una secuencia de ácidos nucleicos en particular, se refiere a una región del ácido nucleico igual o menor que el ácido nucleico especificado.
Un virus o un vector "se transduce" a una célula cuando transfiere el ácido nucleico a la célula. Un virus o un vector es "infectivo" cuando se transduce a una célula, se replica y (sin la ayuda de ningún virus o vector complementario) dispersa los vectores o los virus de la progenie del mismo tipo que los del virus o del vector transductor original, a otras células en un organismo o en un cultivo celular, en donde los vectores o los virus de la progenie tienen la misma capacidad para reproducirse y diseminarse por el organismo o el cultivo celular. Por tanto, un ácido nucleico que codifica una partícula de VIF no es infectivo si el ácido nucleico no se puede encapsidar en la partícula de VIF (p. ej., si el ácido nucleico carece de un sitio de encapsidación de VIF), aunque el ácido nucleico se pueda emplear para transfectar y transformar una célula. De forma similar, un ácido nucleico encapsidable en VIF, encapsidado por una partícula de VIF, no es infectivo si no codifica la partícula de VIF que lo encapsida, aunque se pueda emplear para transformar y transfectar una célula. Los vectores que no codifican un grupo completo de componentes de encapsidación vírica (p. ej., las proteínas Gag y Env) son "deficientes para la encapsidación". Estos vectores son "trans-rescatables" cuando los vectores son encapsidados por proteína víricas proporcionadas en trans en una célula de encapsidación. Si un ácido nucleico encapsidable en VIF se emplea para transformar una célula infectada con VIF en un cultivo celular o en un organismo infectado con VIF, el ácido nucleico encapsidable en VIF se replicará y se diseminará por el organismo, junto con el virus VIF infectante. Sin embargo, el ácido nucleico encapsidable en VIF no es "infectivo" por sí mismo, debido a que las funciones de encapsidación son suministradas por el virus VIF infectivo mediante complementación en trans.
Un "material sobrenadante" celular es el medio de cultivo en el que crece una célula. El medio de cultivo incluye material de la célula que incluye, p. ej., partículas víricas de VIF que se invaginan desde la membrana celular y entran en el medio de cultivo.
Exposición detallada de la invención
La transfección del clon CF1 de lentivirus de no primate en células humanas HeLa, de riñón 293 y 293-T por el método de coprecipitación con fosfato cálcico, produjo el sorprendente resultado de sincitios con forma de globo, muy diseminados (células gigantes multinucleadas producidas por fusión de células que expresan la envuelta con otras células) que contenían de cincuenta a varios cientos de núcleos y altos niveles (más de un millón de cpm) de transcriptasa inversa en el material sobrenadante. De forma inesperada, los cultivos en monocapa de células humanas 293 y 293-T y HeLa fueron destruidos de 90-95% con reproducibilidad por los sincitios, después de una transfección transitoria de CF1 (por ejemplo, por transfección de 10 \mug de CF1 en un matraz de 75 cm^{2}), aunque se produjeron virus no infecciosos o competentes para replicación: la transferencia de grandes volúmenes de material sobrenadante de células 293-T transfectadas con CF1 a células 293 o 293-T de nuevo aporte o a células de riñón de felino Crandall, daban como resultado la falta de formación de sincitios o de producción de RT. CF1\Deltaenv, que es idéntico a CF1 exceptuando una deleción de la envuelta de VIF, no produce sincitios pero produce altos niveles de transcriptasa inversa y de funciones víricas necesarias para encapsidar vectores. Estos resultados sin precedentes llevaron al nuevo enfoque de que todas las funciones de los vectores de no primates, tales como VIF, requieren la producción de proteínas, incluyendo el eje de regulación Rev/RRE, la producción de gag/pol de VIF y los sincitios mediados por la envuelta, podrían tener lugar en células humanas si el promotor de VIF se sustituía por un promotor activo en células humanas.
Por tanto, esta invención proporciona el primer uso de vectores de lentivirus de no primate, encapsidados en células de encapsidación humanas, para la transducción de células diana humanas. Antes de la presente invención no existía ningún modo de conocer si estos sistemas de encapsidación se podían desarrollar en células humanas o si los vectores de lentivirus de no primates encapsidados se podían utilizar para transducir células humanas o si los componentes reguladores, procesadores y de encapsidación de tales vectores serían activos en células humanas. No existía información sobre disposiciones deseables o sobre estructuras artificiales particulares especialmente útiles en los vectores y en las células de encapsidación de la invención, p. ej., la disposición y la estructura artificial de vectores basados en VIF y los sistemas de encapsidación descritos en esta memoria. Las ventajas de los vectores incluyen una falta de patogenicidad en humanos para los virus en los que están basados los vectores y los sistemas de encapsidación y en la capacidad de los vectores para transducir células humanas que no se dividen. Tales células que no se dividen incluyen, pero no están limitadas a, células del sistema nervioso humano, del ojo, del sistema hematopoyético, del tegumento, del sistema endocrino, del sistema hepatobiliar, del tracto gastrointestinal, del tracto genitourinario, del hueso, del músculo, del sistema cardiovascular y del sistema respiratorio. Todas estas células se transducen in vitro o in vivo, empleando los vectores de la invención. Estos vectores también evitan la exposición de pacientes a células no humanas y evitan la exposición a genes de lentivirus o a proteínas de lentivirus derivadas de patógenos conocidos.
Los mecanismos del ciclo vital de VIF en células humanas se describe en esta memoria. Aquí se describe por primera vez que las proteínas del virus de la inmunodeficiencia felina (VIF) codificadas por un plásmido encapsidado, se pueden expresar con altos niveles en células humanas, en forma defectuosa para la replicación y se pueden suministrar a vectores que se pueden encapsidar en VIF en trans, reemplazando la repetición terminal larga del genoma de VIF por un promotor heterólogo, tal como el promotor inmediato temprano de citomegalovirus humano (promotor CMV). En particular, la sustitución con un promotor heterólogo poll II de los elementos del promotor de la LTR de VIF, permitía altos niveles de producción de proteína de VIF, en trans, en células humanas. Además, la sustitución selectiva del elemento U3 5-prima de VIF mediante fusión precisa de un promotor heterólogo con la repetición R, daba como resultado una alta producción en células humanas de VIF de tipo silvestre que era competente para la replicación sólo en células de felino. Se construyó un sistema de vector de VIF con tres plásmidos, defectuoso para la replicación, con env delecionado y con promotor totalmente heterólogo y se encontró que se transducía de forma eficaz en células humanas que se dividen y que no se dividen con partículas de VIF seudotipificadas con glicoproteína G del virus de la estomatitis vesicular (VSV-G). No había una ventaja en la transducción a células de felino; las eficacias relativas de la transducción en células que se dividen de diversos linajes humanos y felinos eran las mismas que para el vector basado en el virus de la leucemia de múridos de Moloney (M-MuLV). Al contrario que el vector común de M-MuLV, los vectores de VIF se transducían eficazmente en células humanas que no se dividen, que incluyen macrófagos humanos diferenciados de forma terminal y neuronas (neuronas hNT). Los sincitios extensos se forman cuando la expresión de VIF es posible en células humanas; esta actividad requiere la expresión de CXCR4/fusina35, el correceptor para el material aislado de VIH que induce sincitios. La expresión de CXCR4 humana en células CRFK de felinos, cambia el fenotipo vírico a uno muy inductor de sincitios y media en la entrada del vector en la envuelta de VIF. Los estudios muestran que VIF puede utilizar el homólogo humano de CXCR4 para generar sincitios en células humanas, de roedor y de felinos y, de forma compatible con una función de correceptor, para la entrada de virus en células de felino.
El virus de la inmunodeficiencia de felinos que es competente para la replicación en células de felinos pero no en células humanas, se produce con bajos niveles en células humanas y de felino por una fusión precisa de un promotor heterólogo, tal como el promotor temprano inmediato de citomegalovirus humano (promotor CMV), y el genoma de VIF, inmediatamente aguas arriba de la repetición R de VIF, tal y como se ha descrito. En una realización, la fusión se une precisamente sobre la caja TATA (se emplea la caja TATA del promotor CMV; las secuencias de VIF comienzan en el sitio de Sac I justo aguas debajo de la caja TATA). Los detalles de esta fusión que conserva la caja TATA en las disposiciones espaciales del sitio de inicio de la transcripción del ARNm, se esquematizan en los ejemplos.
Los vectores retrovíricos derivados de VIF se expresan opcionalmente con altos niveles a partir de la misma fusión del promotor heterólogo-repetición R, en la que el elemento U3 cinco prima del vector VIF ha sido sustituido precisamente por un promotor heterólogo. Estos vectores de VIF se pueden entregar con un alto título de forma defectuosa para la replicación, a células de mamíferos no felinos que incluyen células humanas que se dividen y con crecimiento detenido, mediante envueltas heterólogas que incluyen, pero no están limitadas a, la seudotipificación mediante la glicoproteína G de la envuelta del virus de la estomatitis vesicular (VSV-G); esta es la primera demostración de entrega de genes a células humanas empleando un lentivirus de no primate.
La coproducción de proteínas de VIF y de vectores de VIF daba como resultado vectores de lentivirus con alta titulación, defectuosos para la replicación que se pueden entregar a células humanas y a células de felinos. Se consiguieron títulos del vector de VIF que excedían 10^{7} por mol en células humanas y los títulos superiores se consiguieron con refinamientos de la producción y la concentración empleando métodos disponibles. Por ello, la invención tiene una aplicabilidad directa a la terapia génica humana. Otros promotores activos en las células humanas también serán útiles en algunas realizaciones.
La invención incorpora diversas ventajas en la seguridad. Una ventaja importante de la seguridad de esta invención es la producción del vector defectuoso para la replicación, exclusivamente en células humanas. El promotor de VIF natural (LTR) está inactivo o mínimamente activo en las células humanas. De hecho, el promotor hCMVVIE tal y como se aplica en esta memoria, permite una mayor expresión que la LTR de VIF en células de felinos y humanas. Ya que la LTR de VIF se emplea en células productoras de felinos para dirigir la expresión (de forma análoga al uso del promotor del virus de la leucemia de múridos de Moloney (MoMLV) en sistemas basados en MoMLV), dicho uso presenta diferentes problemas de seguridad que preferentemente se evitan. Las células de felino pueden contener un retrovirus endógeno de tipo C competente para la replicación (RD114) que se replica en células humanas. Las células de felino, a las que se han dirigido menos estudios científicos que a las células humanas, también pueden contener otros agentes infecciosos desconocidos que son potencialmente patógenos. RD114 se aisló originalmente en células de rabdomiosarcoma humanas en las que se habían hecho pases en gatitos fetales; RD114 competente para la replicación también se ha aislado de líneas de células de felinos cultivadas mediante cocultivo con células humanas y otras células de no felinos. Además, RD114 está estrechamente relacionado al nivel de secuencia de nucleótidos con un retrovirus de primate (virus endógeno de babuino o BaEV); este hecho, además de demostrar la competencia para la replicación en líneas celulares humanas, sugiere un claro potencial de transmisión entre especies a humanos. El peligro de transmisión de retrovirus endógenos tales como RD114 u otros virus a los seres humanos a través de xenotransplantes o de la exposición a materiales biológicos obtenidos a partir de células o tejidos animales, ha generado recientemente una gran preocupación. Las células de cerdo, por ejemplo, han mostrado ahora que pueden cultivar un retrovirus endógeno que se puede replicar en células humanas de forma similar a RD114; este descubrimiento se considera ahora por los expertos como capaz de alcanzar serias dudas sobre la seguridad de los xenotransplantes de órganos animales en seres humanos o sobre el uso de materiales biológicos obtenidos de animales que no son esterilizables para fines terapéuticos. Por ello, la exposición de los seres humanos a vectores obtenidos a partir de líneas celulares felinas, que están mucho menos caracterizadas que las líneas celulares de humanos o de roedores, podría ser problemática. El diseño de quimeras de los vectores en esta memoria permite una producción exclusiva en líneas celulares productoras en humanos que están bien definidas, tales como las células 293T. La ventaja en seguridad es la falta de exposición en cualquier etapa de la producción a las células o a los tejidos de felinos. Por tanto, para aplicaciones que implican la introducción de células o de vectores en pacientes, es preferible emplear vectores encapsidados en células de encapsidación humanas.
En todas sus realizaciones, el sistema también representa un avance significativo en seguridad, sobre los vectores de lentivirus basados en VIH, tal y como se mencionaba anteriormente, porque VIF no es transmisible a los seres humanos ni es patógeno en humanos. Esta invención hace por ello uso del hecho bien documentado de que no existe ninguna evidencia de patogenia de VIF en los seres humanos. La aplicación práctica de esta invención también se beneficia del hecho de que la falta de tropismo o de patogenicidad en los seres humanos está mejor establecida para VIF que para cualquier otro lentivirus de no primate (estos incluyen a Visna/Maedi, VEAC, VAIE y VIB) ya que muchos miles de seres humanos están expuestos anualmente a los mismos medios por los que se transmite predominantemente VIF entre los gatos domésticos y salvajes en la naturaleza, es decir, las mordeduras de gatos.
Todos los lentivirus se transmiten exclusivamente por intercambio de fluidos corporales. VIH se transmite predominantemente de forma sexual; existe una ligera evidencia de que VIF se transmite sexualmente en la naturaleza; por otro lado, las mordeduras de los gatos, a los cuales también están generalmente expuestos los humanos, es el mecanismo principal. Las heridas de las mordeduras son comunes entre los gatos porque estos animales son territoriales y los machos en particular entablan frecuentes luchas por el territorio y la dominancia; la infección con VIF es por tanto más común entre los gatos machos que entre los gatos hembras.
Resumiendo, no existe una evidencia de infección con VIF de animales no felinos: este tropismo restringido es característico de todos los lentivirus conocidos. Morder es la forma natural principal de extender el VIF entre los gatos y, a pesar de la frecuente exposición de los humanos a VIF por las mordeduras de los gatos, este medio tan eficaz de inoculación no tiene como resultado la seroconversión en humanos o cualquier otra evidencia detectable de infección en humanos. Por ello, entre los lentivirus de no primates, es importante una evidencia epidemiológica de VIF frente a la patogenicidad en humanos.
Puesto que con el VIF se trabaja rutinariamente empleando las medidas de bioseguridad de nivel 2 (BL-2), se puede trabajar rutinariamente con los vectores con las medidas de BL-2, siendo menores los riesgos a los que se expone el personal implicado en su desarrollo y producción, comparado con los vectores de VIH, mejorando de este modo la comodidad y la conveniencia de la producción.
Además de las ventajas en la seguridad inherentes al uso de lentivirus de no primates para la transferencia génica celular y para la terapia génica, un sistema preferido, descrito en esta memoria procedente de un clon de VIF (34TF10), es defectuoso en un gen importante de VIF (ORF2) y por ello es un virus atenuado. 34TF10 se replica en líneas celulares adherentes de gatos pero no en linfocitos; la competencia para la replicación en linfocitos felinos se ha cartografiado para ORF2. Además, el virus ORF2-minus es neurotrópico. Si se necesita para la entrega a ciertos tipos celulares, ORF2 se puede reparar. Además, en otras realizaciones, otras cepas o clones moleculares de VIF se emplean de forma similar, ya que la presente invención muestra su adaptabilidad para la transducción a células humanas.
Aunque en un ejemplo de esta memoria se ha empleado una estructura artificial quimérica en donde se fusiona el promotor heterólogo con secuencias de VIF, debido a que la fusión está localizada en el inicio de la transcripción, sólo se transcriben las secuencias de VIF (es decir, sólo las secuencias del promotor de VIF aparecen en el ARNm generado por el sistema; las secuencias del promotor heterólogo no se transcriben). La posibilidad de un virus quimérico competente para la replicación conseguido por una recombinación al nivel del ARN, se reduce de este modo.
Además, puesto que este lentivirus está filogenéticamente distante de VIH y ya que se muestra ahora en la presente invención que es adaptable a la transducción de células humanas, ahora está claro que otros lentivirus de no primates, particularmente los lentivirus de ungulados, se pueden utilizar de forma similar.
Mediante la expresión por ingeniería genética del plásmido de encapsidación, en donde el plásmido de expresión de la envuelta y del vector tiene el mismo promotor, se facilita la expresión sincronizada (es decir, la coordinación temporal) de la expresión de proteínas.
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Preparación de Plásmidos de Encapsidación y de Ácidos Nucleicos Encapsidables
La presente invención proporciona una variedad de plásmidos de encapsidación y de ácidos nucleicos encapsidables, tal y como se ha descrito anteriormente. Los plásmidos de encapsidación incluyen ácidos nucleicos obtenidos a partir de lentivirus de no primates, particularmente los obtenidos a partir de VIF. Los vectores de ácido nucleico encapsidable codifican ARNs que comprenden un sitio de encapsidación de VIF y, opcionalmente, comprenden otros ácidos nucleicos de lentivirus de no primate o ácidos nucleicos heterólogos.
Los vectores encapsidables y los plásmidos de encapsidación de la invención se obtienen a partir de clones de lentivirus. Muchos de estos clones son conocidos por los expertos en la técnica y hay publicaciones disponibles. Depositarios bien establecidos de la información de la secuencia incluyen GenBank, EMBL, DDBJ y el NCBI. Los clones de VIH que están bien caracterizados incluyen HIV-1_{NLA3}, HIV-1_{SF2}, HIV-1_{BRU}, HIV-1_{MN}.
Además, los clones víricos se pueden aislar a partir de los virus de tipo silvestre empleando técnicas conocidas. Típicamente, un clon de fago lambda que contiene un provirus de lentivirus de longitud completa, se obtiene a partir del ADN genómico de una línea celular infectada con una cepa vírica aislada a partir de las células mononucleares de sangre periférica de un animal seropositivo. El virus es competente para la replicación in vitro, produciendo viriones infecciosos en la progenie, después de la transfección directa en células diana procedentes del organismo (p. ej., células CD4^{+}). En general, un genoma completo virulento se puede emplear para preparar un plásmido de encapsidación. Un "genoma de VIF de longitud completa" en relación con un vector de encapsidación de VIF, consta de un ácido nucleico (ARN o ADN) codificado por un virus VIF o un clon vírico (p. ej., un fago de ADN) que incluye las regiones 5' y 3' de LTR y los genes entre las regiones LTR que están presentes en un virus típico correspondiente. Para VIF, estos genes incluyen: gag-pol, env y orf-2 y además hay varios cuadros de lectura sin caracterizar, particularmente en env.
Un plásmido de encapsidación se prepara delecionando el sitio de encapsidación de un genoma de longitud completa, volviendo al clon capaz de producir proteínas víricas, pero siendo incapaz de encapsidar él mismo los ARNs víricos. La estructura secundaria del ARN del sitio de encapsidación de VIF incluye probablemente la región entre MSD y gag-pol; además, otras regiones pueden ser importantes para una encapsidación correcta. La naturaleza precisa del sitio de encapsidación se puede determinar realizando un análisis por deleción.
En los plásmidos de encapsidación, preferentemente, el sitio psi (sitio de encapsidación) está delecionado, pero es suficiente cualquier mutación o deleción que delecione o mute el sitio de modo que se inhiba la encapsidación. Esto produce típicamente como resultado una deleción sustancial en la región entre el sitio del donante principal de corte y empalme ("MSD") y el comienzo del gen gag y puede incluir también otras regiones. La deleción de elementos del promotor que dirigen la expresión vírica de las proteínas víricas codificadas también es deseable, ya que se incorporan promotores heterólogos. En particular, los promotores humanos (es decir, promotores activos en células humanas que son típicamente, pero no necesariamente, de origen humano, o se obtienen a partir de un patógeno humano, tal como un virus que es activo en un ser humano).
Los plásmidos de encapsidación resultantes de la invención se emplean para preparar partículas víricas, transduciendo el clon con deleción a una célula de encapsidación (típicamente una célula humana tal como una célula 293 u otra célula bien caracterizada que no comprenda ningún componente indeseado) y expresar el plásmido. Debido a que el plásmido carece de un sitio de encapsidación de lentivirus, no se produce una encapsidación en partículas víricas.
Para incrementar la seguridad de las células de encapsidación transducidas, es preferible cortar (p. ej., subclonando) el plásmido de encapsidación (o los clones homólogos) en múltiples plásmidos de encapsidación con funciones complementarias. Esto disminuye la probabilidad de que un proceso de recombinación dé como resultado una partícula infecciosa.
Los ácidos nucleicos encapsidables codifican un ARN que es competente para ser encapsidado en una partícula de VIF. Tales ácidos nucleicos se pueden construir por recombinación combinando un sitio de encapsidación de VIF con un ácido nucleico a elegir. El sitio de la encapsidación (sitio psi) está localizado adyacente a LTR 5', en primer lugar entre el sitio de MSD y el codón iniciador de gag (AUG), en la secuencia líder del gen gag. Por tanto, el sitio mínimo de encapsidación incluye una mayoría de los ácidos nucleicos entre MSD y el codón iniciador de gag, del lentivirus pertinente. Preferentemente, un sitio completo de encapsidación incluye secuencias de LTR 5' y la región 5' del gen gag, para obtener la máxima eficacia en la encapsidación. Estas secuencias de encapsidación incluyen típicamente una parte del gen gag, p. ej., que se extiende aproximadamente 100 bases en la región codificadora de gag o más, y aproximadamente 100 bases en la LTR 5' de VIF o más. Adicionalmente, las secuencias del gen env se incluyen opcionalmente en el sitio de encapsidación, particularmente la RRE.
Dada la estrategia para preparar los plásmidos de encapsidación y los ácidos nucleicos del vector diana encapsidable de la presente invención, una persona experta en la técnica puede construir una variedad de clones que contienen ácidos nucleicos equivalentes en su función. Las metodologías de clonación para alcanzar estos fines y los métodos de secuenciación para verificar la secuencia de ácidos nucleicos, son bien conocidos en la técnica. Ejemplos de técnicas adecuadas de clonación y de secuenciación y las instrucciones suficientes para dirigir a personas expertas, mediante muchos ejercicios de clonación, se encuentran en Berger y Kimmel, Guide to Molecular Cloning Techniques, Methods in Enzymology volumen 152, Academic Press, Inc. San Diego, CA (Berger); Sambrook y col. (1989) Molecular Cloning - A Laboratory Manual (2ª ed.) vol. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Press, N.Y., (Sambrook); y Current Protocols in Molecular Biology, F.M. Ausubel y col., compiladores, Current Protocols, una asociación entre Greene Publishing Associates, Inc. y John Wiley & Sons, Inc., (suplemento de 1994) (Ausubel). La información sobre el producto de los fabricantes de los reactivos biológicos y los equipos experimentales, también proporciona una información útil sobre métodos biológicos conocidos. Tales fabricantes incluyen la compañía química SIGMA (Saint Louis, MO), R&D Systems (Minneapolis, MN), Pharmacia LKB Biotechnology (Piscataway, NJ), CLONTECH Laboratories, Inc. (Palo Alto, CA), Chem Genes Corp., Aldrich Chemical Company (Milwaukee, WI), Glen Research, Inc., GIBCO BRL Life Technologies, Inc. (Gaithersberg, MD), Fluka Chemica-Biochemika Analytika (Fluka Chemie AG, Buchs, Suiza), Invitrogen, San Diego, CA y Applied Biosystems (Foster City, CA), así como muchas otras fuentes comerciales conocidas por los expertos.
Las composiciones de ácidos nucleicos de esta invención, ARN, ADNc, ADN genómico o un híbrido de diversas combinaciones, se aíslan de fuentes biológicas o se sintetizan in vitro. Los ácidos nucleicos de la invención están presentes en células completas transformadas o transfectadas, en lisados celulares transformados o transfectados o en una forma parcialmente purificada o sustancialmente pura.
Las técnicas de amplificación in vitro adecuadas para amplificar secuencias para uso como sondas moleculares o para generar fragmentos de ácidos nucleicos para una subclonación posterior, son conocidas. Ejemplos de técnicas que sean suficientes para dirigir a los expertos en la técnica a través de las mismas, son métodos de amplificación in vitro que incluyen la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), la reacción en cadena de la ligasa (LCR), la amplificación con la replicasa Q\beta y otras técnicas mediadas por la polimerasa de ARN (p. ej., NASBA), se encuentran en Berger, Sambrook y Ausubel, así como en Mullis y col. (1987) documento de patente de EE.UU. nº 4.683.202; PCR Protocols A Guide to Methods and Applications (Innis y col. compiladores) Academic Press Inc. San Diego, CA (1990) (Innis); Arnheim & Levinson (1 de octubre, 1990) C&EN 36-47; The Journal Of NIH Research (1991) 3, 81-94; Kwoh y col. (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, 1173; Guatelli y col. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87, 1874; Lomell y col. (1989) J. Clin. Chem 35, 1826; Landegren y col., (1988) Science 241, 1077-1080; Van Brunt (1990) Biotechnology 8, 291-294; Wu y Wallace, (1989) Gene 4, 560; Barringer y col. (1990) Gene 89, 117; y Sooknanan y Malek (1995) Biotechnology 13: 563-564. Los métodos mejorados de clonación in vitro de ácidos nucleicos amplificados, se describen en Wallace y col. documento de patente de EE.UU. nº 5.426.039.
Los oligonucleótidos para uso como sondas, p. ej., en los métodos de amplificación in vitro, para uso como sondas génicas o como componentes inhibidores (p. ej., ribozimas) se sintetizan típicamente de forma química según el método de triéster de fosforamidita en fase sólida, descrito por Beaucage y Caruthers (1981), Tetrahedron Letts., 22(20):1859-1862, p. ej., empleando un sintetizador automático, tal y como describen Needham-VanDevanter y col. (1984) Nucleic Acids Res., 12:6159-6168. Los oligonucleótidos también se pueden obtener comercialmente a partir de una variedad de fuentes comerciales conocidas por los expertos en la técnica. La purificación de oligonucleótidos, cuando es necesaria, se realiza típicamente mediante electroforesis en gel de acrilamida natural o por HPLC de intercambio aniónico, tal y como describen Pearson y Regnier (1983) J. Chrom. 255:137-149. La secuencia de los oligonucleótidos sintéticos se puede verificar empleando el método de degradación química de Maxam y Gilbert (1980) en Grossman y Moldave (compiladores) Academic Press, Nueva York, Methods in Enzymology 65: 499-560.
Preparación de Sustituciones Conservadoras
Un experto en la técnica apreciará que con muchas variaciones conservadoras de las estructuras artificiales de los ácidos nucleicos descritos, se consigue una estructura artificial funcionalmente idéntica. Por ejemplo, debido a la degeneración del código genético, las "sustituciones silenciosas" (es decir, sustituciones de una secuencia de ácidos nucleicos que no dan como resultado la alteración de un polipéptido codificado) son una característica implícita de cada secuencia de ácidos nucleicos que codifica un aminoácido. De forma similar, con las "sustituciones conservadoras de aminoácidos" de uno o de unos pocos aminoácidos, en una secuencia de aminoácidos de una estructura artificial de encapsidación o encapsidable, se sustituyen éstos con diferentes aminoácidos con propiedades muy similares (véase, la sección de definiciones, arriba), que se identifican fácilmente por ser una estructura artificial muy similar a la descrita. Tales variaciones por sustitución conservadora de cada secuencia descrita explícitamente, son una característica de la presente invención.
Un experto en la técnica conocerá muchos modos para generar alteraciones en una estructura artificial dada de ácidos nucleicos. Tales métodos bien conocidos incluyen la mutagénesis dirigida al sitio, la amplificación con PCR empleando oligonucleótidos degenerados, la exposición de células que contienen el ácido nucleico a agentes mutágenos o a radiación, la síntesis química de un oligonucleótido deseado (p. ej., junto con ligación y/o clonación para generar ácidos nucleicos largos) y otras técnicas bien conocidas. Véase, Giliman y Smith (1979) Gene 8:81-97; Roberts y col. (1987) Nature 328:731-734 y Sambrook, Innis, Ausubel, Berger, Needham VanDevanter y Mullis (todos véase arriba).
Un experto puede seleccionar un ácido nucleico deseado de la invención basado en las secuencias proporcionadas y basado en el conocimiento de la técnica en relación con retrovirus en general. Los efectos específicos de muchas mutaciones en los genomas de retrovirus son conocidos. Además, el conocimiento general de la naturaleza de las proteínas y de los ácidos nucleicos permite a los expertos el poder seleccionar las secuencias adecuadas con una actividad similar o equivalente a los ácidos nucleicos y a los polipéptidos descritos en los listados de secuencias de esta memoria. La sección de definiciones de esta memoria describe a modo de ejemplo, sustituciones conservadoras de aminoácidos.
Finalmente, la mayoría de las modificaciones de ácidos nucleicos se evalúan por técnicas de escrutinio rutinarias, en ensayos adecuados para la característica deseada. Por ejemplo, se pueden detectar cambios en el carácter inmunológico de polipéptidos codificados según un ensayo inmunológico adecuado. Las modificaciones de otras propiedades, tales como la hibridación de ácidos nucleicos con un ácido nucleico complementario, la estabilidad redox o térmica de las proteínas codificadas, la hidrofobicidad, la susceptibilidad a proteolisis o la tendencia a agregarse, se someten todas a ensayo según técnicas convencionales.
Preparación de Líneas Celulares Estables de Encapsidación
Las líneas celulares estables de encapsidación se preparan transduciendo de forma estable o transitoria una célula de mamífero con un plásmido de encapsidación, lo más preferido transduciendo una célula humana. La transducción de células de mamífero (incluyendo los seres humanos) es conocida en la técnica. Las células hospedadoras son competentes o se vuelven competentes para la transformación según diversos medios conocidos. Existen diversos métodos bien conocidos para introducir ADN en células animales. Estos incluyen: la precipitación con fosfato cálcico, la fusión de las células receptoras con protoplastos bacterianos que contienen el ADN, el tratamiento de las células receptoras con liposomas que contienen el ADN, el DEAE-dextrano, la endocitosis mediada por receptor, la electroporación y la micro-inyección del ADN directamente en las células.
El cultivo de células empleado en la presente invención, que incluye líneas celulares y células cultivadas procedentes de tejidos o de muestras de sangre, es bien conocido en la técnica. Freshney (Culture of Animal Cells, a Manual of Basic Technique, tercera edición Wiley-Liss, Nueva York (1994)) y las referencias citadas en esta memoria, proporcionan una guía general para el cultivo de células. Las células transformadas se cultivan por medios bien conocidos en la técnica. Véase, también Kuchler y col. (1977) Biochemical Methods in Cell Culture and Virology, Kuchler, R.J., Dowden, Hutchinson and Ross, Inc. Los sistemas de células de mamíferos estarán frecuentemente en forma de monocapas celulares, aunque también se utilizan suspensiones de células de mamífero. Ejemplos ilustrativos de líneas celulares de mamíferos incluyen las células VERO y HeLa, las células de riñón embrionario 293, las líneas celulares de ovario de hámster chino (CHO), las líneas celulares W138, BHK, Cos-7 o MDCK (véase, p. ej., Freshney, véase arriba). Las células humanas son las más preferidas.
El material sobrenadante de cultivos celulares de las células de encapsidación de la invención se obtiene utilizando técnicas convencionales, tales como las mostradas por Freshney, véase arriba. Véase también, Corbeau y col. (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:14070-14075 y las referencias en esta memoria. Los componentes del material sobrenadante celular se pueden purificar adicionalmente empleando técnicas convencionales. Por ejemplo, las partículas de VIF en el material sobrenadante se pueden purificar del material sobrenadante, por métodos empleados típicamente para la purificación de virus, tales como centrifugación, cromatografía, procedimientos de purificación por afinidad y similares.
La transformación de las células de mamífero con ácidos nucleicos pueden incluir, por ejemplo, incubar las células competentes con un plásmido que contiene ácidos nucleicos que codifican una partícula de VIF. El plásmido que se emplea para transformar la célula hospedadora contiene preferentemente secuencias de ácidos nucleicos para iniciar la transcripción y secuencias para controlar la traducción de las secuencias codificadas. Estas secuencias se denominan generalmente secuencias de control de la expresión. Las secuencias ilustrativas de control de la expresión de mamíferos se obtienen a partir del promotor de SV-40 (Science (1983) 222:524-527), el promotor I.E. de CMV (Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1984) 81:659-663), el promotor de CMV o el promotor de la metalotioneína (Nature (1982) 296:39-42). Un vector de clonación que contiene secuencias de control de la expresión, se corta empleando enzimas de restricción y se ajusta el tamaño a como sea necesario o deseable y se liga con ADN que codifica las secuencias de VIH de interés, por medios bien conocidos en la técnica. Se conoce en la técnica una amplia variedad de promotores específicos de pol II y de pol III, activos en células humanas, y un experto en la técnica es capaz de seleccionar y de emplear tales promotores según el nivel de expresión deseado, el patrón, la célula transformada o similares.
Las secuencias de poliadenilación o de terminación de la transcripción procedentes de genes de mamíferos conocidos, se incorporan típicamente en los vectores de la invención. Un ejemplo de una secuencia de terminación es la secuencia de poliadenilación procedente del gen de la hormona de crecimiento bovina. Las secuencias para precisar el corte y el empalme del transcrito también se pueden incluir. Un ejemplo de una secuencia de corte y empalme es el intrón VPI de SV40 (Sprague y col. (1983) J. Virol. 45: 773-781). Adicionalmente, las secuencias génicas para controlar la replicación en una célula hospedadora particular, se incorporan en el vector como las encontradas en los vectores del tipo virus de papiloma bovino. Véase, Saveria-Campo (1985), "Bovine Papilloma virus DNA a Eukaryotic Cloning Vector" en DNA Cloning Vol. II a Practical Approach Glover (compilador) IRL Press, Arlington, Virginia págs. 213-238.
Los coplásmidos se pueden utilizar en los métodos de selección. En estos métodos, un plásmido que contiene un marcador seleccionable, tal como un gen de resistencia a antibióticos, se emplea para cotransfectar una célula junto con un plásmido que codifica ácidos nucleicos para la encapsidación de VIH. Las células se seleccionan según la resistencia al antibiótico y la presencia del plásmido de interés se confirma con el análisis de tipo Southern, el análisis de tipo Northern o con PCR. Los coplásmidos que codifican proteínas que se van a expresar en la superficie de una partícula de VIH (p. ej., proteínas que amplían el campo del hospedador de la cápsida, tales como la envuelta de VSV, un ligando de receptor celular o un anticuerpo de un receptor celular) se transducen opcionalmente en la célula de encapsidación. Además del VSV, las proteínas de la envuelta de otros virus con envuelta lipídica se incorporan opcionalmente en una partícula de la invención, aumentando de este modo el campo de transducción de la partícula.
Los vectores víricos que contienen ácidos nucleicos que codifican secuencias seleccionadas, también se emplean para transformar células en el campo de hospedadores del vector. Véase, p. ej., Methods in Enzymology, vol 185, Academic Press Inc., San Diego, CA (D.V. Goeddel, compilador) (1990) o M. Krieger, Gene Transfer and Expression - A Laboratory Manual, Stockton Press, Nueva York, (1990) y las referencias citadas en el mismo.
Una vez preparadas las líneas celulares estables transformadas que expresan las partículas de VIF, las líneas celulares transformadas se transfectan con vectores que codifican ácidos nucleicos que se van a incorporar en los vectores de VIF. Típicamente, estos vectores son plásmidos o se codifican en vectores víricos. Los ácidos nucleicos encapsidados incluyen una subsecuencia del sitio de encapsidación de VIF, junto con una secuencia de interés, tal como un inhibidor vírico u otro agente terapéutico génico (se apreciará que cualquier estado que esté mediado por células que no se dividen o su progenie, es tratable empleando los vectores de la invención, incluyendo las infecciones con VIH, infecciones con HTLV, los linfomas, las leucemias, los tumores neuronales y similares).
Las células humanas son líneas celulares de encapsidación preferidas y se pueden volver competentes para la transformación por técnicas descritas anteriormente. Por ejemplo, para generar una línea celular de encapsidación de VIF estable, las células de VIF se transfectan por el método de fosfato cálcico tal y como se describe en los ejemplos de esta memoria. Un cultivo subconfluyente, p. ej., en una placa de 6 pocillos (Costar, Cambridge, MA) se transfecta con plásmido linealizado y precipitado con fosfato cálcico (10 \mug), p. ej., en medio de Eagle modificado con Dulbecco, suplementado con 10% de FCS, antibióticos y glutamina (DMEM-10% de FCS), opcionalmente con un marcador del coplásmido. Después de 18 horas, se lavan los pocillos con solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco (PBS) pH 7,8, se incuba durante 2 min a 20ºC con solución de 15% de glicerol en solución salina tamponada con HEPES (HEPES 50 mM pH 7,1, NaCl 280 mM, Na_{2}HPO_{4} 1,5 mM) se lava dos veces con PBS y se cultiva en DMEM-10% de FCS. Estas células se someten a selección de forma adecuada por un gen marcador de la transducción.
Ensayo para encapsidar plásmidos, ácidos nucleicos encapsidables y partículas de VIF en líneas celulares de encapsidación, células diana y lisados celulares
Una amplia variedad de formatos y marcadores están disponibles y son adecuados para la detección de plásmidos de encapsidación, ácidos nucleicos encapsidables y partículas de lentivirus en células de encapsidación, células diana y lisados celulares. Los anticuerpos para los componentes de lentivirus y los polipéptidos y los ácidos nucleicos de la invención (vectores, plásmidos de encapsidación, ácidos nucleicos codificados y polipéptidos, etc.) se detectan y se cuantifican por cualquiera de una variedad de medios bien conocidos por los expertos en la técnica. Estos incluyen los métodos analíticos bioquímicos, tales como espectrofotometría, radiografía, electroforesis, electroforesis capilar, cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), cromatografía en capa fina (TLC), cromatografía por hiperdifusión y similares, y diversos métodos inmunológicos tales como reacciones de precipitación en gel o fluida, inmunodifusión (sencilla o doble), inmunoelectroforesis, radioinmunoensayos (RIAs), ensayos inmunoenzimáticos (ELISAs), ensayos de inmunofluorescencia y similares. Diversos ensayos de ELISA para la detección de componentes de lentivirus (p. ej., VIF) están disponibles, permitiendo a un experto en la técnica detectar partículas de lentivirus de no primate o de lentivirus de no primate en una muestra biológica.
La detección de ácidos nucleicos se realiza por métodos bien conocidos, tales como el análisis de tipo Southern, el análisis de tipo Northern, electroforesis en gel, PCR, radiomarcación y recuento de centelleo y cromatografía de afinidad. Muchos formatos de los ensayos son adecuados, incluyendo los revisados por Tijssen (1993) Laboratory Techniques in biochemistry and molecular biology-hybridization with nucleic acid probes partes I y II, Elsevier, Nueva York y Choo (compilador) (1994) Methods In Molecular Biology Volume 33- In Situ Hybridization Protocols Humana Press Inc., New Jersey (véanse también, otros libros en las series de Methods in Molecular Biology); véase especialmente, el capítulo 21 de Choo (mencionado antes) "Detection of Virus Nucleic Acids by Radioactive and Nonisotropic in Situ Hybridization". También son apropiadas una variedad de técnicas de detección en fase sólida automatizadas. Por ejemplo, conjuntos de polímeros inmovilizados a gran escala (VLSIPS^{TM}) se emplean para detectar ácidos nucleicos. Véase Tijssen (véase arriba), Fodor y col. (1991) Science, 251: 767-777 y Sheldon y col. (1993) Clinical Chemistry 39(4): 718-719. Finalmente, también se puede utilizar la PCR de forma rutinaria para detectar ácidos nucleicos en muestras biológicas (véase, Innis, véase arriba, para una descripción general de la técnicas de PCR).
En una realización preferida, se emplean anticuerpos para detectar proteínas expresadas por el vector encapsidado, el ácido nucleico de encapsidación o para vigilar el VIH, VLTH circulante (u otro agente patógeno de relevancia), los niveles en sangre humana, p. ej., para vigilar el efecto in vivo de un agente terapéutico génico codificado por los ácidos nucleicos encapsidados en VIF. En otras realizaciones, los anticuerpos se expresan conjuntamente en las células de encapsidación que se van a incorporar en partículas víricas. Los métodos para producir anticuerpos policlonales y monoclonales son conocidos por los expertos en la técnica y están a disposición muchos anticuerpos. Véase, p. ej., Coligan (1991) Current Protocols in Immunology Wiley/Greene, NY; y Harlow y Lane (1989) Antibodies: A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Press, NY; Stites y col. (compiladores) Basic and Clinical Immunology (4ª ed.) Lange Medical Publications, Los Altos, CA, y las referencias citadas en los mismos; Goding (1986) Monoclonal Antibodies: Principles and Practice (2ª ed.) Academic Press, Nueva York, NY; y Kohler y Milstein (1975) Nature 256: 495-497. Otras técnicas adecuadas para la preparación de anticuerpos incluyen la selección de bancos de anticuerpos recombinantes en fagos o vectores similares. Véase, Huse y col. (1989) Science 246: 1275-1281; y Ward y col. (1989) Nature 341: 544-546. Los anticuerpos monoclonales y policlonales específicos y los antisueros se unirán generalmente con una K_{D} de al menos aproximadamente 0,1 \muM, preferentemente al menos aproximadamente 0,01 \muM o mejor y lo más típico y preferido, 0,001 \muM o mejor.
Uso de los Ácidos Nucleicos de la Invención como Sondas Moleculares
Además de su utilidad para preparar líneas celulares de encapsidación, los plásmidos de encapsidación no infectivos de la invención se pueden utilizar para detectar virus de tipo silvestre en muestras biológicas, empleando ensayos de transferencia de tipo Southern o Northern. Brevemente, un ácido nucleico codificado por el plásmido de encapsidación se marca, típicamente empleando un radiomarcador o un marcador bioluminiscente y se emplea para sondar una transferencia de tipo Northern o Southern de una muestra que se sospecha que contiene un virus (VIF). El uso del plásmido de encapsidación como sonda es más seguro que el uso de un virus infectivo como sonda. El plásmido de encapsidación es también más susceptible de que detecte un virus de tipo silvestre que una sonda menor, debido que, al contrario de una sonda pequeña, la sonda del plásmido de encapsidación tiene opcionalmente prácticamente el genoma completo en común con un virus de tipo silvestre (excepto el sitio de encapsidación), siendo improbable que el virus de tipo silvestre pueda escapar a la detección por una mutación del sitio de unión a la
sonda.
Además, el plásmido de encapsidación se puede utilizar como testigo positivo en esencialmente todos los métodos de detección conocidos, para la detección del retrovirus correspondiente (VIF). En esta realización, un ácido nucleico del plásmido de encapsidación o el polipéptido codificado, se emplea como testigo positivo para establecer que un ensayo de detección de VIF esté funcionando de forma adecuada. Por ejemplo, los oligonucleótidos se emplean como cebadores en reacciones de la PCR para detectar ácidos nucleicos de VIF en muestras biológicas, tales como sangre de felinos, en la práctica veterinaria. El plásmido de encapsidación, que comprende subsecuencias del ácido nucleico correspondientes a la región que se va a amplificar, se emplea como un molde para la amplificación en una reacción separada de una muestra del ensayo, tal como sangre humana, para determinar que los reactivos de la PCR y las condiciones de la hibridación son adecuadas. De forma similar, los polipéptidos codificados por el plásmido de encapsidación se pueden emplear para comprobar los reactivos de ELISA en ensayos para la detección de productos de la expresión de VIF en muestras biológicas.
Los ácidos nucleicos encapsidables también se pueden utilizar del mismo modo que las sondas moleculares, p. ej., cuando codifican componentes de VIH, tales como los sitios de encapsidación de VIH, LTRs de VIH, proteínas Tat o Rev transdominantes o similares, para la detección de VIH o como reactivos para la detección de VIH.
Transformación Celular y Terapia Génica
La presente invención proporciona ácidos nucleicos encapsidables para la transformación de células in vitro e in vivo. Estos ácidos nucleicos encapsidables se encapsidan en partículas de lentivirus de no primate, tales como partículas de VIF, en las líneas celulares de encapsidación de lentivirus descritas en esta memoria. Preferentemente, cuando la diana está en el campo del hospedador del virus VSV (p. ej., una célula pluripotencial hematopoyética) la partícula también incluye glicoproteínas de VSV. Los ácidos nucleicos se transfieren a las células mediante interacción de la partícula de VIF que rodea el ácido nucleico y un receptor celular de VIF o de VSV.
En una clase particularmente preferida de realizaciones, los ácidos nucleicos encapsidables de la invención se emplean en procedimientos de transformación celular para terapia génica. La terapia génica proporciona métodos para combatir enfermedades infecciosas crónicas, tales como VIH, así como enfermedades no infecciosas, tales como cáncer y defectos de nacimiento, tal como deficiencias enzimáticas. Yu y col. (1994) Gene Therapy 1:13-26 y las referencias del mismo proporcionan una guía general para las estrategias de terapia génica para la infección con VIH. Véase también, Sodoski y col. documento de patente PCT/US91/04335. Una limitación general de los vectores comunes para la terapia génica, tales como los retrovirus de múridos, es que sólo infectan células que se dividen activamente y que generalmente no son específicos. La presente invención proporciona diversas características generales que permiten a un experto generar vectores retrovíricos potentes para terapia génica que se dirigen al blanco de células pluripotenciales de forma específica in vivo y que transforman muchos tipos de células in vitro. Las células CD4+, células neuronales y otras células que no se dividen (frecuentemente positivas para CXCR4) se transducen con ácidos nucleicos encapsidados en partículas de VIF. Además, los vectores se seudotipifican opcionalmente para la transformación de células pluripotenciales.
Seudotipificación del Vector Encapsidable
Las células pluripotenciales hematopoyéticas son dianas especialmente preferidas para la transformación celular en general y para la terapia génica (particularmente la terapia génica anti-VIH) en particular. Los vectores encapsidables se hacen competentes para transformar células CD34+ seudotipificando el vector. Esto se realiza transduciendo la línea celular de encapsidación empleada para encapsidar el vector, con un ácido nucleico que codifica una proteína Env que suplanta o complementa la función env retrovírica. La función de la envuelta se puede proporcionar en trans por cualquiera de las distintas proteínas heterólogas de la envuelta vírica. Estas incluyen, pero no están limitadas a, VSV-G, la envuelta anfotrópica del virus de la leucemia de Moloney (MoMuLV) y la envuelta del virus de la leucemia de los simios gibones (GALV). La glicoproteína de la envuelta del virus de la estomatitis vesicular (VSV) que se expresa en la superficie del vector es un componente de seudotipificación preferido. VSV infecta células CD34+ que se dividen y que no se dividen, y los vectores de seudotipificación que expresan proteínas de la envuelta de VSV son competentes para transducir estas células.
De forma similar, las proteínas víricas o celulares en general se pueden co-expresar para incrementar el campo de hospedadores de un vector basado en VIF. Típicamente, un ácido nucleico que codifica una proteína seleccionada se coexpresa en una célula de encapsidación de VIF de la invención. La proteína codificada por el ácido nucleico se incorpora en la partícula que encapsida un ácido nucleico encapsidable en VIF, que se invagina desde la membrana de la célula de encapsidación. Si la proteína es reconocida por un receptor celular sobre una célula diana, la partícula se transduce a la célula mediante endocitosis mediada por el receptor. Las proteínas preferidas incluyen las proteínas de la envuelta o de la cubierta vírica, los ligandos del receptor celular, los anticuerpos o los fragmentos de anticuerpos que se unen a receptores celulares sobre las células diana, y similares.
Promotores Preferidos
Una clase de realizaciones emplea una secuencia de LTR de VIH como promotor para el vector encapsidable en VIF. Estas secuencias de LTR se transactivan después de la infección de una célula que contiene el promotor de LTR del virus VIH infectante. Los promotores de LTR de VIH, además de unirse a tat y a rev, son sensibles a las citoquinas celulares (tales como IL-2 y SP-1) que actúan permitiendo la transcripción del genoma de VIH después de la infección. Por tanto, en una realización, un ácido nucleico terapéutico de elección se sitúa bajo el control de un promotor de LTR, volviendo las células que generalmente son lo más vulnerable a la infección con VIH, resistentes a la infección. Además, en una realización, un sitio de encapsidación de VIH (además del sitio de encapsidación de lentivirus de VIF o de no primate) se incluye en el vector encapsidable en VIF. Esto permite que el agente terapéutico anti-VIH codificado en el vector basado en VIF, se encapside y se disemine infectando virus VIH, causando un efecto protector secundario que se va a propagar junto con la infección de VIH, retardando de este modo la infección. El sitio de encapsidación de VIH está bien descrito, véase, Poznansky y col. (1991) Journal of Virology 65(1): 532-536; Aldovini y Young (1990) Journal of Virology 64(5): 1920-1926 y Clever y col. (1995) Journal of Virology 69(4):2101-2109. Para una descripción de los vectores que se pueden encapsidar en VIH para proporcionar un efecto protector secundario, véase, Wong-Stall y col. documento de patente de EE.UU. nº 5.650.309.
También son preferidos los promotores constitutivos para dirigir la expresión de los ácidos nucleicos terapéuticos, tales como los promotores pol III. El documento de solicitud de patente PCT/US94/05700 (WO 94/26877) y Chatterjee y col. (Science (1992), 258:1485-1488, de aquí en adelante, Chatterjee y col. 1) describen la inhibición antiparalela de la infectividad de VIH-1 en células diana empleando vectores víricos con una casete constitutiva de expresión de pol III que expresa ARN anti-TAR. Chatterjee y col. (documento de solicitud de patente PCT/US91/03440 (1991), de que aquí en adelante, Chatterjee y col. 2) describen vectores víricos que incluyen vectores basados en el VAA que expresan secuencias antiparalelas de TAR. Chatterjee y Wong (Methods, A companion to Methods in Enzymology (1993), 5: 51-59) describen adicionalmente vectores víricos para la entrega de ARN antiparalelo. La publicación del documento de patente PCT WO 94/26877 (PCT/US/05700) describe una variedad de genes para la terapia anti-VIH y estrategias para la terapia génica, que incluyen generalmente el uso de genes suicidas, genes transdominantes, ribozimas, genes antiparalelos y genes señuelos en vectores de terapia génica. Yu y col. (1994) Gene Therapy 1: 13-26 y las referencias citadas en esta memoria proporcionan una guía general para las estrategias de terapia génica, útiles contra la infección con VIH.
Transformación Ex Vivo de Células
Los métodos ex vivo para inhibir la replicación vírica en una célula en un organismo (o para introducir de otro modo un gen terapéutico en la célula) incluyen transducir la célula ex vivo con un ácido nucleico terapéutico de esta invención e introducir la célula en el organismo. Las células diana incluyen células CD4+, tales como células T CD4+ o macrófagos aislados o cultivados de un paciente, células pluripotenciales o similares. Véase, p. ej., Freshney y col., véase arriba y las referencias citadas en esta memoria para una exposición de cómo aislar y cultivar células de pacientes. Alternativamente, las células pueden ser las almacenadas en un banco de células (p. ej., un banco de sangre). En una clase de realizaciones preferidas, el ácido nucleico encapsidable codifica un agente terapéutico antivírico (p. ej., un gen suicida, un gen transdominante, una ribozima anti-VIH, un gen antiparalelo o un gen señuelo) que inhibe el crecimiento o la replicación de un virus VIH, bajo el control de un promotor activado o constitutivo. El vector de la transformación celular inhibe la replicación vírica en cualquiera de estas células ya infectadas con el virus VIH, además de conferir un efecto protector a las células que no están infectadas con VIH. Además, en realizaciones preferidas, el vector se replica y se encapsida en cápsidas de VIH, empleando la maquinaria de la replicación de VIH, provocando de este modo que el gen terapéutico anti-VIH se propague junto con la replicación de un virus VIH. Por tanto, en un organismo infectado con VIH se puede tratar la infección transduciendo una población de sus células con un vector de la invención e introduciendo las células transducidas de nuevo en el organismo, tal y como se describe en esta memoria. Por tanto, la presente invención proporciona un método para proteger células in vitro, ex vivo o in vivo, incluso cuando las células ya están infectadas con el virus contra el que se buscaba protección.
En una realización particularmente preferida, las células pluripotenciales (que son típicamente no CD4+) se emplean en procedimientos ex vivo para la transformación celular y la terapia génica. La ventaja de utilizar células pluripotenciales es que se pueden diferenciar en otros tipos de células in vitro o se pueden introducir en un mamífero (tal como el donante de las células) en donde se implantan en la médula ósea. Los métodos para diferenciar células CD34+ in vitro en tipos inmunocelulares clínicamente importantes, empleando citoquinas tales como GM-CSF,
IFN-\gamma y TNF-\alpha, son conocidos (véase, Inaba y col. (1992) J. Exp. Med. 176, 1693-1702 y Szabolcs y col. (1995) 154:5851-5861). Los métodos para seudotipificar vectores de VIF de modo que se puedan transformar células pluripotenciales se han descrito anteriormente. Se puede utilizar un procedimiento de aislamiento en columna de afinidad para aislar células que se unen a CD34 o a anticuerpos unidos a CD34. Véase, Ho y col. (1995) Stem Cells (supl. 3): 100-105. Véase también, Brenner (1993) Journal of Hematotherapy 2: 7-17. En otra realización, las células pluripotenciales hematopoyéticas se aíslan a partir de sangre del cordón umbilical fetal. Yu y col. (1995) PNAS 92: 699-703 describen un método preferido para transducir células CD34+ de sangre del cordón umbilical humano, empleando vectores retrovíricos. Más que el uso de células pluripotenciales, las células T también se transducen en realizaciones preferidas en procedimientos ex vivo. Se conocen diversas técnicas para aislar células T. En un método, se emplea la centrifugación en gradiente de densidad con Ficoll-Hypaque para separar PBMC de los glóbulos rojos y de los neutrófilos, según procedimientos establecidos. Las células se lavan con AIM-V modificado (que consta de AIM-V (GIBCO) con glutamina 2 mM, 10 \mug/ml de sulfato de gentamicina, 50 \mug/ml de estreptomicina) suplementado con 1% de suero de ternera fetal (FBS). El enriquecimiento de las células T se realiza mediante selección negativa o positiva con anticuerpos monoclonales adecuados, acoplados a columnas o a lechos magnéticos según técnicas convencionales. Una parte alícuota de las células se analiza para estudiar el fenotipo de la superficie celular deseada (p. ej., CD4, CD8, CD3, CD14, etc.).
En general, la expresión de los marcadores de superficie facilita la identificación y la purificación de células T. Los métodos para identificar y aislar células T incluyen FACS, cromatografía en columna, la separación por absorción a lechos magnéticos, las transferencias de tipo Western, radiografía, electroforesis, electroforesis capilar, cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), cromatografía en capa fina (TLC), cromatografía por hiperdifusión y similares, y diversos métodos inmunológicos tales como reacciones con precipitina sobre fluido o sobre gel, inmunodifusión (simple o doble), inmunoelectroforesis, radioinmunoensayos (RIAs), ensayos inmunoenzimáticos (ELISAs), ensayos inmunofluorescentes y similares. Para una revisión de los procedimientos inmunológicos de inmunoensayo en general, véase Stites y Terr (compiladores) 1991 Basic and Clinical Immunology (7ª ed.) y Paul véase arriba. Para una exposición de cómo preparar anticuerpos para seleccionar antígenos, véase, p. ej., Coligan (1991) Current Protocols in Immunology Wiley/Greene, NY; y Harlow y Lane (1989) Antibodies: A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Press, NY; Stites y col. (compiladores) Basic and Clinical Immunology (4ª ed.).
Además de los usos ex vivo descritos anteriormente, las líneas celulares de encapsidación de la invención y los ácidos nucleicos encapsidables en VIH de la invención, son útiles generalmente en métodos de clonación. Los ácidos nucleicos encapsidables se encapsidan en una partícula de VIF y se emplean para transformar una célula infectable con VIF (p. ej., una célula hematopoyética de felino) in vitro o in vivo. Esto proporciona a un experto una técnica y unos vectores para transformar células con un ácido nucleico elegido, p. ej., en ensayos de descubrimiento de fármacos o como una herramienta en el estudio de la regulación génica, o como un vector de clonación general.
Transformación in Vivo
Las partículas de lentivirus de no primate que contienen ácidos nucleicos terapéuticos se pueden administrar directamente al organismo, para la transducción de células in vivo. La administración se realiza mediante cualquiera de las vías empleadas normalmente para introducir una molécula en contacto fundamental con la sangre o células tisulares. Los ácidos nucleicos encapsidables encapsidados en VIF o en otras partículas de lentivirus de no primate, se emplean para tratar y prevenir las enfermedades mediadas por virus, tales como SIDA, en pacientes animales y humanos. Los ácidos nucleicos encapsidados se administran de cualquier forma adecuada, preferentemente con vehículos farmacéuticamente aceptables. Los métodos de administración adecuados para dichos ácidos nucleicos encapsidados en el contexto de la presente invención, a un paciente, están disponibles y, aunque se puede utilizar más de una ruta para administrar una composición particular, una ruta en particular puede proporcionar frecuentemente una reacción más inmediata y más eficaz que otra ruta.
Los vehículos farmacéuticamente aceptables se determinan en parte por la composición particular que se va a administrar, así como por el método particular empleado para administrar la composición. Por tanto, existe una gran variedad de formulaciones adecuadas de composiciones farmacéuticas de la presente invención.
Los ácidos nucleicos encapsidados, solos o en combinación con otros componentes adecuados, se pueden preparar también en formulaciones de aerosoles (es decir, se pueden "nebulizar") para una administración mediante inhalación. Las formulaciones de aerosoles se pueden colocar en propulsores aceptables a presión, tales como diclorodifluorometano, propano, nitrógeno y similares.
Las formulaciones adecuadas para una administración por vía parenteral, tales como por ejemplo, por vía interarticular (en las articulaciones), intravenosa, intramuscular, intradérmica, intraperitoneal y subcutánea, incluyen soluciones acuosas y no acuosas, para inyección estéril e isotónica, que pueden contener antioxidantes, tampones, bacteriostáticos y solutos que vuelven la formulación isotónica con la sangre del receptor elegido, y suspensiones acuosas y no acuosas estériles que pueden incluir agentes de suspensión, solubilizantes, agentes espesantes, estabilizantes y conservantes. La administración por vía parenteral y la administración por vía intravenosa son los métodos de administración preferidos. Las formulaciones del ácido nucleico encapsidado se pueden presentar en recipientes sellados de una dosis o de dosis múltiples, tales como ampollas y frascos.
Las células transducidas con el ácido nucleico encapsidado, tal y como se ha descrito anteriormente, en el contexto de la terapia ex vivo, también se pueden administrar por vía intravenosa o parenteralmente tal y como se ha descrito anteriormente.
La dosis administrada a un paciente, en el contexto de la presente invención, debe ser suficiente para efectuar una respuesta terapéutica beneficiosa extra en el paciente o para inhibir la infección con un agente patógeno. La dosis se determinará por la eficacia del vector empleado en particular y el estado del paciente, así como el peso corporal o la superficie del paciente que se va a tratar. El tamaño de la dosis también se determinará según la existencia, la naturaleza y el grado de cualquier efecto secundario adverso que acompañe la administración de un vector en particular o el tipo de célula transducida en un paciente en particular.
Para determinar la cantidad eficaz del vector que se va a administrar en el tratamiento o en la profilaxis de enfermedades mediadas por virus, tales como el SIDA, el médico evalúa los niveles circulantes en plasma, las toxicidades del vector, la progresión de la enfermedad y la producción de anticuerpos anti-vector. En general, la dosis equivalente de un ácido nucleico desnudo procedente de un vector es desde aproximadamente 1 \mug a 100 \mug para un paciente típico de 70 kg y las dosis de vectores que incluyen una partícula retrovírica se calculan para conseguir una cantidad equivalente de ácido nucleico inhibidor. Los vectores de esta invención puede complementar el tratamiento de estados mediados por virus, según cualquier terapia convencional conocida, incluyendo agentes citotóxicos, análogos de nucleótidos y modificadores de la respuesta biológica.
Para la administración, los inhibidores y las células transducidas de la presente invención se pueden administrar con una tasa determinada por la LD-50 del inhibidor, del vector o del tipo celular transducido, y los efectos secundarios del inhibidor, del vector o del tipo celular a diferentes concentraciones, tal y como se aplica a la masa y a la salud general del paciente. La administración se puede realizar con una sola dosis o en dosis divididas.
Para introducir las células transducidas, antes de la infusión, se obtienen muestras de sangre y se conservan para análisis. Entre 1 x 10^{8} y 1 x 10^{12} células transducidas se infunden por vía intravenosa a lo largo de 60-200 minutos. Las señales vitales y la saturación de oxígeno por oximetría de pulso se vigilan de cerca. Las muestras sanguíneas obtenidas 5 minutos y 1 hora después de la infusión se conservan para un posterior análisis. La leucoforesis, la transducción y la reinfusión se repiten cada 2 a 3 meses durante un total de 4 a 6 tratamientos en el periodo de un año. Después del primer tratamiento, las infusiones se pueden realizar de forma ambulante a discreción del médico. Si se proporciona la reinfusión de forma ambulante, el paciente se vigila durante al menos 4 y preferentemente 8 horas después de la terapia.
Las células transducidas se preparan para reinfusión según métodos establecidos. Véase, Abrahamsen y col., (1991) J. Clin. Apheresis 6: 48-53; Carter y col. (1988) J. Clin. Apheresis 4: 113-117; Aebersold y col. (1988), J. Immunol. Methods 112: 1-7; Muul y col. (1987) J. Immunol. Methods 101: 171-181 y Carter y col. (1987) Transfusion 27: 362-365. Después de un periodo de aproximadamente 2-4 semanas en cultivo, se deben tener entre 1x 10^{8} y 1 x 10^{12} células. En relación con ésto, las características del crecimiento de las células varía de paciente a paciente y de tipo celular a tipo celular. Aproximadamente 72 horas antes de la reinfusión de las células transducidas, se toma una parte alícuota para analizar el fenotipo y el porcentaje de células que expresan el agente terapéutico.
Si un paciente al que se está realizando la infusión de un vector o de células transducidas tiene fiebre, escalofríos o dolores musculares, recibe la dosis apropiada de aspirina, ibuprofeno o acetaminofeno. Los pacientes que padecen reacciones frente a la infusión, tales como fiebre, dolores musculares y escalofríos se medican previamente 30 minutos antes de las futuras infusiones con aspirina, acetaminofeno o difenhidramina. La meperidina se emplea para los escalofríos y los dolores musculares más graves que no responden rápidamente a los antipiréticos e antihistamínicos. La infusión celular es lenta o discontinua, dependiendo de la gravedad de la reacción.
Inhibidores Víricos
Los inhibidores víricos especializados se codifican típicamente en los ácidos nucleicos encapsidados de la invención, en donde el uso pretendido es la inhibición vírica (p. ej., VIH). Por tanto, las técnicas aplicables a la construcción y al mantenimiento de ácidos nucleicos, se aplican a los inhibidores de la presente invención. Los agentes antivíricos que se incorporan opcionalmente en los inhibidores víricos de la invención, incluyen genes antiparalelos, ribozimas, genes señuelos y ácidos nucleicos transdominantes.
Un ácido nucleico antiparalelo es un ácido nucleico que, después de la expresión, se hibrida con una molécula de ARN particular, con un promotor transcripcional o con la hebra paralela de un gen. En la hibridación, el ácido nucleico antiparalelo interfiere con la transcripción de un ácido nucleico complementario, con la traducción de un ARNm o con la función de un ARN catalítico. Las moléculas antiparalelas útiles en esta invención incluyen las que se hibridan con transcritos de genes víricos. Dos secuencias diana para las moléculas antiparalelas son el primer y el segundo exón de los genes del VIH tat y rev. Chatterjee y Wong, véase arriba y Marcus-Sekura (Analytical Biochemistry (1988) 172, 289-285) describen el uso de genes antiparalelos que bloquean o modifican la expresión génica.
Una ribozima es una molécula de ARN catalítica que corta otras moléculas de ARN que tienen secuencias de ácidos nucleicos particulares. Los métodos generales para la construcción de ribozimas, que incluyen las ribozimas en horquilla, las ribozimas en cabeza de martillo, las ribozimas de ARNasa P (es decir, ribozimas obtenidas a partir de la ribozima de ARNasa P presente en la naturaleza en procariontes y eucariontes) son conocidos en la técnica. Castanotto y col. (1994) Advances in Pharmacology 25: 289-317 proporcionan una revisión de las ribozimas en general, incluyendo el grupo de ribozimas I, ribozimas en cabeza de martillo, ribozimas en horquilla, ARNasa P y ribozimas en cabeza de hacha. Las ribozimas útiles en esta invención incluyen las que cortan transcritos víricos, particularmente transcritos de genes de VIH. Ojwang y col. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89:10802-06 (1992); Wong-Staal y col. (documento de patente PCT/US94/05700); Ojwang y col. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:6340-6344; Yamada y col. (1994) Human Gene Therapy 1: 39-45; Leavitt y col. (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92: 699-703; Leavitt y col. (1994) Human Gene Therapy 5: 1151-1120; Yamada y col. (1994) Virology 205:121-126 y Dropulic y col. (1992) Journal of Virology 66(3):1432-1441 proporcionan ejemplos de ribozimas en horquilla y cabeza de martillo específicas de VIH-1.
Resumiendo, dos tipos de ribozimas que son particularmente útiles en esta invención incluyen la ribozima en horquilla y la ribozima en cabeza de martillo. La ribozima en cabeza de martillo (véase, Rossie y col. (1991) Pharmac. Ther. 50:245-254; Forster y Symons (1987) Cell 48:211-220; Haseloff y Gerlach (1988) Nature 328:596-600; Walbot y Bruening (1998) Nature 334:196; Haseloff y Gerlach (1988) Nature 334:585 y Dropulic y col. y Castanotto y col. y las referencias citadas en esas memorias, véase arriba) y la ribozima en horquilla (véase, p. ej., Hampel y col. (1990) Nucl. Acids. Res. 18:299-304; Hempel y col., (1990) el documento de publicación de patente europea nº 0360257; el documento de patente de EE.UU. nº 5.254.678 expedido el 19 de octubre de 1993; Wong-Staal y col., documento de patente PCT/US94/05700; Ojwang y col. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:6340-6344; Yamada y col. (1994) Human Gene Therapy 1:39-45; Leavitt y col. (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92:699-703; Leavitt y col. (1994) Human Gene Therapy 5:1151-1120 y Yamada y col. (1994) Virology 205:121-126) son moléculas catalíticas que tienen actividad antiparalela y endorribonucleotidasa. La expresión intracelular de las ribozimas en cabeza de martillo y las ribozimas en horquilla, dirigidas contra ARN de VIH, ha mostrado que confiere una resistencia significativa frente a la infección con VIH. Estas ribozimas se construyen para dirigirse como blanco a una parte del genoma de VIH o del ácido nucleico codificado por el genoma. Los sitios de diana preferidos en VIH-1 incluyen la región U5 y el gen de la polimerasa. Se conocen las ribozimas anti-VIH transactivas que cortan en GUC y GUA.
Un ácido nucleico señuelo es un ácido nucleico que tiene una secuencia reconocida por una proteína reguladora que se une al ácido nucleico (es decir, un factor de transcripción, un factor celular de tráfico, etc.). Después de la expresión, el factor de transcripción se une más al ácido nucleico señuelo que a su diana natural en el genoma. Las secuencias señuelo de ácido nucleico útiles incluyen cualquier secuencia a la que se une un factor de transcripción vírico. Por ejemplo, la secuencia TAR, a la que se une la proteína tat y la secuencia RRE de VIH (en particular la secuencia SL II), a la que se unen las proteínas rev, son secuencias adecuadas para emplear como ácidos nucleicos señuelo.
Un ácido nucleico transdominante es un ácido nucleico que expresa una proteína cuyo fenotipo, cuando se suministra por transcomplementación, supera el efecto de la forma natural de la proteína. Por ejemplo, tat y rev se pueden mutar para mantener su capacidad para unirse a TAR y a RRE, respectivamente, pero carecen de la propia función reguladora de estas proteínas. En particular, rev se puede volver transdominante eliminando el dominio rico en leucinas cercano al extremo C, que es esencial para la regulación normal propia de la transcripción. Las proteínas tat transdominantes se pueden generar por mutaciones en el dominio de localización del ARN de unión/nuclear. La complementación recíproca de los clones moleculares defectuosos de VIH está descrita, p. ej., por Lori y col. (1992) Journal of Virology 66(9) 5553-5560.
Ejemplos
Los siguientes ejemplos se proporcionan sólo a modo de ilustración y no como una limitación. Los expertos reconocerán fácilmente una variedad de parámetros no decisivos que se cambian o se modifican para conseguir resultados similares.
Ejemplo 1 Construcción de plásmidos de encapsidación de VIF y vectores
La repetición larga terminal (LTR) de VIF está inactiva o mínimamente activa en las células humanas. No se ha descrito previamente ningún método anterior para una expresión de altos niveles del complemento completo de proteínas de un lentivirus de no primate en trans, en células humanas y de forma defectuosa para la replicación. Por tanto, para expresar altos niveles de proteínas de VIF en trans, de forma defectuosa para la replicación en células humanas y para potenciar la seguridad sustituyendo una parte decisiva de VIF que sea necesaria para la replicación, el clon 34TF10 de VIF se cortó con EspI, tratado con la polimerasa Klenow en presencia de dNTPs 200 \muM, a continuación se cortó con SacI, se trató con la ADN polimerasa de T4 en presencia de dNTPs 200 \muM y el fragmento resultante que contenía las regiones que codifican el virus (pero no las LTRs) se purificó en gel. Este fragmento se ligó después con extremos romos en el elemento principal tratado con fosfatasa alcalina intestinal de ternera, tratado con Klenow y cortado con NotI & XbaI, del plásmido de expresión de CMV, pRc/CMV. El plásmido resultante (CF1) se confirmó mediante múltiples digestiones con enzimas de restricción para diagnóstico. CF1 contiene el promotor de CMV seguido del genoma de VIF desde la parte distal de líder 5' post-LTR (93 nucleótidos aguas arriba del donante principal de corte y empalme) hasta 38 nucleótidos aguas abajo del último ORF (Rev) de VIF.
El clon 34TF10 de VIF se escogió para este trabajo porque este clon de VIF ya tiene una mutación que inactiva el gen de ORF2. Véase, Talbott, R.L. y col. (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, 5743-5747. ORF2 es un transactivador putativo que se ha observado que es necesario para la replicación en linfocitos de sangre periférica de felinos. Por tanto, 34TF10 es un virus atenuado; esta atenuación es beneficiosa para esta invención porque disminuye adicionalmente el riesgo patogénico de VIF de tipo silvestre, sin afectar al comportamiento del vector. Sin embargo, están disponibles otros clones con propiedades similares o se pueden obtener fácilmente inactivando de forma similar el virus de tipo silvestre, empleando métodos recombinantes.
La transfección de CF1 en células humanas HeLa, 293 y 293-T de riñón por el método de coprecipitación con fosfato de calcio producía el sorprendente resultado de sincitios inflamados expandidos (células gigantes multinucleadas producidas por fusión de células que expresan la envuelta con otras células) que contenían de cincuenta a varios cientos de núcleos y altos niveles (sobre un millón de cpm) de transcriptasa inversa en el material sobrenadante. De hecho, encontramos que los cultivos en monocapa de células 293 y 293-T y de HeLa humanas se destruían en 90-95% con reproducibilidad con los sincitios, después de la transfección transitoria de CF1 (por ejemplo, mediante transfección de 10 \mug de CF1 en un frasco de 75 cm^{2}), tal y como se había diseñado y esperado, se producía un virus no infeccioso o no competente para la replicación: la transferencia de grandes volúmenes de material sobrenadante de células 293-T transfectadas con CF1, a células 293 o 293-T de nuevo aporte o a células de riñón de felino Crandall, daba como resultado la falta de formación de sincitios o la no producción de RT. CF1\Deltaenv, que es idéntico a CF1 excepto una deleción en la envuelta de VIF (véanse los detalles arriba), no causa sincitios pero produce altos niveles de transcriptasa inversa y de las funciones víricas necesarias para encapsidar los vectores. Este resultado sin precedentes llevaba al nuevo enfoque de que todas las funciones de VIF necesarias para la producción de proteínas, incluyendo el eje de regulación Rev/RRE, la producción de gag/pol de VIF y los sincitios mediados por la envuelta, pueden tener lugar en células humanas si el promotor de VIF se sustituye específicamente con un promotor activo en células humanas.
Los sincitios producidos en células humanas por CF1 y CT5 (abajo) se inhibían totalmente por la inclusión de una dilución 1:1000 de plasma procedente de gatos infectados con VIF (CI50 entre una dilución de 1:10.000 y 1:30.000), pero no se inhibían en absoluto con cualquier dilución (incluso de 1:10) de plasma procedente de gatos domésticos no infectados. Esta inhibición específica con anticuerpos anti-VIF, proporcionaba una evidencia adicional de que los sincitios eran específicos de la envuelta de VIF.
La radioinmunoprecipitación de células humanas (293-T, HeLa) y felinas (CRFK) marcadas con ^{35}S-metionina y con ^{35}S-cisteína, transfectadas con CF1 y con el virus parental (34TF10), mostraba que las proteínas víricas de VIF se podían inmunoprecipitar específicamente con sueros VIF+ procedentes de células CRFK transfectadas con otro plásmido. En las células humanas, 34TF10 producía poca proteína o ninguna, lo que indica una actividad mínima del promotor de VIF, aunque CF1 producía grandes cantidades de proteína de VIF. Estas proteínas mostraban ser específicas de VIF por su ausencia en inmunoprecipitados de las mismas células transfectadas con un plásmido testigo.
Para permitir el uso heterólogo de la envuelta (p. ej., VSV-G), se realizó una deleción específica de la envuelta de VIF (el producto del gen env) en CF1 mediante una ligación en 3 partes: CF1 se restringió con PflmI (que está presente 4 veces en CF1). Puesto que dos sitios de PflM de interés en el gen env, eran incompatibles, y debido a que la formación de extremos romos en estos sitios PflM produciría una deleción en el marco de lectura de env, la digestión de PflM se trató con polimerasa de T4 para eliminar la parte sobresaliente 3' PflmI y se ligó con un enlazador sacII con desplazamiento del marco de lectura, se digirió con SacII y se purificó en gel. A continuación, se digirieron partes alícuotas de la digestión enlazada a PflMI/SacII con sacII y separadamente con pvuI o con Bsu36I. Entonces se realizó un ligación en 3 partes (PvuI-BsU36I más BsU36I-PflM(enlazador de SacII) más (enlazador de SacII)PflMI-PvuI). El plásmido resultante (CF1\Deltaenv) se confirmó por múltiples digestiones para diagnóstico por restricción. CF1\Deltaenv contenía una deleción de 875 nt en env. Producía altos niveles de transcriptasa inversa en células humanas después de la transfección, pero no producía sincitios, proporcionando una evidencia más, además de los experimentos de inhibición plasmática descritos anteriormente, de que los sincitios observados con CF1 estaban mediados específicamente con la envuelta de VIF.
La función de la envuelta en CF1\Deltaenv se puede sustituir en trans por cualquier cantidad de proteínas heterólogas de la envuelta vírica. Estas incluyen, pero no están limitadas a, VSV-G, la envuelta anfotrópica del virus de la leucemia de múridos de Moloney (MoMuLV) y la envuelta del virus de la leucemia de simios gibones (GALV), que son bien conocidas por los expertos en la técnica por ser capaces de suplantar de modo eficaz la función de la envuelta en retrovirus.
En otras realizaciones, las deleciones adicionales de las secuencias de VIF, se realizan a partir de CF1\Deltaenv. Por ejemplo, la región entre el donante principal 5' de corte y empalme y el codón ATG de gag, aunque sólo tiene veinte nucleótidos en VIF (en comparación con más de 40 en VIH-1 y más de 70 en VIH-2), se puede delecionar o cambiar la secuencia. Las secuencias adicionales de env se eliminan y se someten a ensayo los efectos de la deleción de vif o de otras regiones estudiadas.
En una realización preferida, se decidió sustituir completamente la función promotora del U3 de VIF en este sistema (es decir, en las estructuras artificiales de encapsidación y en el vector) por diversas razones (U3, o región única 3-prima, contiene los elementos de promotor/potenciador de un retrovirus). En primer lugar, la LTR de VIF está inactiva o poco activa en las células humanas y se deseaba conseguir la producción de un vector en células humanas ya que incrementaría la probabilidad de transducción posterior en células humanas y debido a que no están bien caracterizados los sistemas de transfección adecuados que emplean células de felinos. En segundo lugar, porque son deseables los altos niveles de expresión bien conocidos, dirigidos por un promotor tal como el promotor inmediato temprano de hCMV en sistemas definidos (p. ej., el sistema de células de riñón embrionario humano 293T). En tercer lugar, la sustitución de U3 en el vector y en la estructura artificial de encapsidación ayudará adicionalmente a eliminar el riesgo de un VIF competente para la replicación. En otra modificación, se delecionaron del vector 80 bases de la región 3' de U3, incluyendo especialmente la caja TATA. Por tanto, no se puede regenerar un VIF competente para la replicación debido a esta deleción, y debido a que el plásmido de encapsidación tiene la deleción del gen env y del codón de detención que inactiva ORF2. En cuarto lugar, por estar dirigidos los tres componentes (el plásmido de encapsidación, el vector y el plásmido de expresión de la envuelta) por el mismo promotor, se puede mejorar la expresión sincronizada y la formación eficaz de partículas. En quinto lugar, tal y como se ha descrito anteriormente, la producción en células humanas es más segura que la producción en células de felino para uso clínico, debido a que las células de felino plantean el riesgo de introducir agentes infecciosos conocidos o desconocidos en los seres humanos.
El diseño de la estructura artificial incluye la fusión del promotor de CMV y del genoma de VIF (desde la repetición 5' R) precisamente en la caja TATA. Primero, la PCR (las PCRs sintéticas se realizaron con exonucleasa + polimerasa Vent) se realizó con un cebador para PCR paralelo, con cola de SacI, homólogo a los nucleótidos inmediatamente aguas debajo de la caja TATA de VIF (5'-atataGAGCTCtgtgaaacttcgaggagtctc-3') junto con un cebador para PCR antiparalelo (5'-ccaatctcgcccctgtccattcccc-3') homólogo a la cadena opuesta del gen gag de VIF. El producto de la PCR generado tenía 450 pb. Este producto de la PCR se digirió con XhoI antes de la digestión con sac I (debido a que hay un sitio sac inmediatamente después del sitio XhoI en la LTR de VIF y sino se generaría un fragmento SacI-SacI). Después de la digestión con XhoI y la digestión posterior con SacI, el fragmento resultante de 310 pb era:
1
Este fragmento se purificó en gel, lejos del residuo de 140 pb y se clonó en el elemento principal SacI-XhoI del plásmido pRc/CMV. Resumiendo, esta etapa dispone las secuencias LTR de VIF aguas abajo de la caja TATA, en un registro preciso para la caja TATA del promotor de CMV y para la caja TATA de VIF sustituida: coloca un sitio SacI 3 nucleótidos aguas abajo de la caja TATA justo donde hay un sitio SacI 3 nucléotidos aguas debajo de la caja TATA, justo donde se encuentra un sitio SacI 3 nucleótidos aguas abajo de la caja TATA en el promotor hCMV y coloca la repetición R de VIF precisamente 9 nt aguas debajo de la caja TATA, justo como en el genoma de VIF. Por ello la fusión conserva (y une) la separación entre los nucleótidos del promotor CMV y de las secuencias transcripcionales de VIF y se detalla en la secuencia a continuación:
2
CRF1 completaba la fusión en 5-prima del promotor CMV con la repetición R de VIF, pero la LTR 3-prima y el resto del genoma de VIF permanecían situados aguas abajo. Por tanto, se empleaban los cebadores de PCR con cola de sal I, F3'S (tatataGTCgactagggactgtttacgaac) y F3'A/Not (atatatagtcgacGCGGCCGCtgcgaagttctcg) para amplificar la LTR 3' de VIF: el producto de la PCR digerido con SalI se ligó en el sitio Xho I compatible de CRF1 tratado con fosfatasa alcalina y la ligación se inactivó térmicamente y se seleccionó frente al tipo silvestre con Xho I. El plásmido resultante, denominado CRF(L), tiene ambas LTRs y un único sitio NotI se sitúa en el extremo 3' de la LTR 3'.
A continuación, la región principal de codificación del genoma de VIF se insertó mediante ligación del fragmento de 8.845 nt BbeI-EspI de p34TF10 en el elemento principal BbeI-EspI fosfatado de CRF(L). El plásmido resultante se denominó CT5 (por promotor CMV \rightarrow fusión en la caja TATA \rightarrow genoma de VIF completo desde la repetición R hasta el extremo provírico normal en el elemento U5 de la LTR 3'). CT5 codifica un VIF infeccioso de longitud completa que se dirige con el promotor CMV en la primera ronda (en las rondas posteriores se dirige con la LTR de VIF puesto que la transcriptasa inversa genera un U3 de tipo silvestre en el extremo 5' del provirus). La transfección de CT5 o de 34TF10 de tipo silvestre en células humanas 293-T daba como resultado niveles equivalentes de RT en el material sobrenadante y en los sincitios expandidos en un ensayo convencional para la replicación de VIF: formación de sincitios sobre células de riñón de felino Crandall mantenidas con suero al 0,5% (células CRFK) seguida de transferencia del material sobrenadante filtrado a las células 293-T transfectadas (véase también, Tozzini y col. (1992) Journal of Virological Methods 37, 241-252). Sin embargo, de forma idéntica al virus generado con 34TF10, el virus generado con CT5 es completamente de tipo silvestre en su tropismo: no se replica en células humanas. Esto se esperaba ya que el U3 tres prima de CT5 es de tipo silvestre (los retrovirus portan su promotor en el extremo tres prima del ARNm del virión: la transcripción inversa da como resultado la colocación de una copia del U3 tres prima en el extremo 5' del provirus integrado, en donde adquiere la capacidad de promover rondas posteriores de transcripción en células susceptibles). Resumiendo, VIF que es competente para la replicación en células de felino, se produjo por transfección de CT5 en líneas celulares adherentes, incluyendo las células 293T, probando que la fase productora del ciclo vital se conseguía eficazmente, pero no la replicación, en células humanas.
Vectores de VIF Obtenidos a partir de CT5
Aunque esté transfectado en células humanas o felinas, CT5 genera VIF que es competente para la replicación en células felinas pero no en las humanas: los transcritos víricos se expresan con un promotor humano, pero no felino, en células productoras, pero el U3 tres prima felino permanece intacto y la fuente del promotor de U3 cinco prima en cualquier ronda posterior de replicación es siempre el U3 tres prima del transcrito de la célula productora. Este elemento U3 tres prima restante también se puede delecionar.
Para generar vectores retrovíricos a partir de modificaciones de CT5, se emplearon dos estrategias. Una realización toma nota del hecho de que RRE de VIF está localizado tres prima de las secuencias codificadoras en VIF (en el extremo de la proteína TM más que en la unión de SU/TM como en otros lentivirus). Por ello, si una casete génica informadora que tiene su señal p(A) de poliadenilación, se sitúa con orientación antiparalela en relación con las secuencias de VIF, la posición de RRE se conserva potenciando el uso de las señales que actúan en cis y de encapsidación. En una segunda realización, la RRE se retira de su posición 3 prima normal y se sitúa mediante técnicas convencionales de clonación, inmediatamente después de una parte del gen gag/pol de VIF, permitiendo la protección de Rev del transcrito del vector que contiene la secuencia gag y la inserción de una casete génica informadora con orientación paralela, aguas abajo. Las secuencias del gen gag se incluyen en estos vectores porque se ha observado que potencian la encapsidación en otros retrovirus. Sin embargo, en estos vectores, el gen gag se desplaza en el marco de lectura por el cierre cohesivo de un sitio Tth III 1, localizado en el nucleótido 298 de gag (clonado por digestión con Tth III1, relleno mediado con la polimerasa Klenow, ligación, inactivación de la ligasa y finalmente selección con Tth III 1 frente al tipo silvestre) para evitar la recombinación de gag funcional y evitar la generación de una proteína Gag supresora de forma transdominante. Porciones adicionales de gag detrás de este cambio del marco de lectura o incluso que lo precedan, se pueden eliminar de los vectores sin afectar a la titulación.
Se debe tener en cuenta que la transcripción de estos vectores tiene lugar desde el promotor de CMV y no el promotor de VIF. Se pueden emplear opcionalmente otros promotores. Además, son posibles modificaciones múltiples, delecionando regiones adicionales del genoma de VIF, p. ej., regiones de gag, tal y como se detalla adelante.
Tales vectores se han descrito e ilustrado a continuación:
1. Vector CTAGCgfsB. Las letras subrayadas en las descripciones de la cápsula, tales como las que aquí se encuentran entre paréntesis, indican la derivación del nombre del vector (promotor CMV unido a la caja TATA que dirige la expresión de una casete génica interna de información CMV-GFP-p(A) en orientación inversa y que tiene una mutación en el marco de lectura (del inglés, frame shift) del gen gag y una inserción posterior del sitio de unión del antígeno de sv40 T, para causar la amplificación del plásmido después de la transfección en células que expresan el antígeno SV40 T). CTAGCgfsB se construyó mediante ligación en tres partes del fragmento pvuI-ecoR1 de CT5, el fragmento EcoR1-Spe1 de un plásmido que contiene el gen de la proteína fluorescente verde (GFP), pZcmvGFPpA, y el fragmento SpeI-PvuI de CT5. Esta ligación coloca la casete del promotor CMV-la señal GFP-p(A) en orientación inversa entre EcoRI y SpeI en el genoma de VIF. A continuación, el sito Tth III 1 en la parte de gag/pol que permanece en el vector se corta, se rellena con la polimerasa Klenow en presencia de dNTPs 200 \muM y se cierra con la ligasa de ADN T4. Esto inserta con extremos romos un residuo G extra que cambia el marco de lectura del fragmento gag en unas pocas bases del sitio Tth III 1. No están presentes secuencias pol. Por ello, el precursor de gag/pol se tiene que entregar en trans desde CF1\Deltaenv o de modificaciones posteriores de CF1\Deltaenv. Además, esta etapa reduce la posibilidad de que se produzca la recombinación del tipo silvestre y la posibilidad de que un fragmento de la proteína Gag interfiera de forma transdominante. Finalmente, la casete sv40-promotor-neoR de pRc/CMV se insertó en el plásmido fuera de las secuencias del vector para beneficiarse de la amplificación del plásmido dirigida por el antigeno de Sv40 T y para permitir la selección con neoR, si es necesaria. En una modificación, el codón de iniciación ATG del gen gag se puede mutar un codón de detención. También la región entre el sitio BsRG1 y los sitios aguas arriba de PstI, se delecionan opcionalmente para eliminar más de gag.
2. Vector CTRZLb. (Promotor CMV unido a la caja TATA que dirige la expresión que comienza con la repetición R de una casete génica interna de información de LacZ con orientación paralela y que tiene la LTR 3' después de lacZ. También tiene una mutación con cambio del marco de lectura del gen gag en el sitio Tth III 1 y una inserción posterior del sitio de unión (del inglés, binding) al antígeno de sv40 T, para causar la amplificación del plásmido después de la transfección). Para construir este vector, se delecionó CTAGCgfs entre EcoR1 y BsrG1 cortando con estas enzimas, se trató con Klenow con dNTPs 200 \muM, se ligó con extremos romos con ligasa T4 y se seleccionó frente al tipo silvestre con EcoR1. El sitio BsrG1 se regeneró. El fragmento BsrgI-EcoNi de pz-lacz se trató con Klenow y se colocaron extremos romos en el único sitio EcoNI. La estructura era así: promotor CMV - fusión de la caja TATA con la repetición R de VIF - U5 - \Deltagag - elemento de respuesta Rev de VIF - promotor cmv - gen LacZ - LTR. Finalmente la región promotor sv40-promotor neoR procedente de pRc/CMV se insertó en el plásmido aguas abajo del vector, para proporcionar un sitio del unión del antígeno T para beneficiarse de la amplificación del plásmido dirigida por el antígeno T de Sv40 y para permitir la selección con neoR, si fuera necesaria. El codón de iniciación ATG del gen gag se puede mutar en un codón de detención y se pueden delecionar porciones adicionales de gag.
El material sobrenadante del vector generado por el método de la cotransfección con fosfato cálcico, se tituló en células humanas (HeLa, 293) y felinas (CRFK, Fc3Tg). Al comparar con vectores retrovíricos convencionales basados en (Mo-MuLV) del virus de la leucemia de múridos de Moloney, los vectores de VIF eran igual de eficaces para transducir células humanas y felinas. Se consiguieron títulos de 10^{7} en las células de humanos y de felinos, después de una sola ronda de concentración por ultracentrifugación. Títulos superiores se podían conseguir con un refinamiento de la transfección y una posterior ultracentrifugación. Además, las células humanas (HeLa) y felinas (CRFK) se transducen de forma eficaz cuando se detiene el crecimiento empleando 15 \mug/ml de afidicolina en el medio de cultivo, añadidos 24 horas antes de la transducción y sustituidos diariamente mediante tinción con lacZ. Los títulos de lacZ con el vector de VIF en células detenidas con afidicolina, era 80-90% de los de las células en división, mientras que se eliminaba la transducción de vectores Mo-MuLV mediante el tratamiento con afidicolina. Estos resultados indican que el vector de VIF puede transducir células humanas y que tiene claramente propiedades biológicas específicas de lentivirus que faltan en los vectores retrovíricos convencionales (p. ej., múridos): la capacidad de transducir células que no se dividen. De forma importante, no detectamos una preferencia de los vectores de VIF por las células de felinos: la transducción relativa de diversas células humanas y felinas era específica de la célula y no específica del vector. En otras palabras, las células en las que era eficaz la transducción con el vector de VIF, también se transducían de forma eficaz con vectores del virus de la leucemia de múridos de Moloney convencionales, y viceversa.
La invención es aplicable a la terapia génica en humanos. Tal y como se ha detallado anteriormente, estos vectores retrovíricos tienen ventajas en seguridad sobre los vectores de lentivirus basados en el VIH, porque los vectores de VIH se obtienen a partir de agentes patógenos humanos letales. Puesto que los vectores de VIF se pueden manipular con las medidas de seguridad de nivel BL-2, los riesgos a los que se expone el personal implicado en su producción son menores, comparados con los vectores de VIH, y se mejora la facilidad y la comodidad de la producción. Estos vectores tienen ventajas sobre otros métodos para entregar genes si se desea una transferencia estable de genes a células que no se dividen o que se dividen poco frecuentemente. Tales células incluyen, pero no están limitadas a las células del sistema nervioso humano, del ojo, del sistema hematopoyético, del tegumento, del sistema endocrino, del sistema hepatobiliar, del tracto gastrointestinal, del tracto genitourinario, del hueso, del músculo, del sistema cardiovascular y del sistema respiratorio. Estos vectores también evitan la exposición de pacientes a células no humanas y evitan la exposición a genes de lentivirus o a proteínas de lentivirus obtenidas a partir de agentes patógenos conocidos.
Ejemplo 2 Transducción del Vector de Lentivirus basado en VIF de Células Humanas que No se Dividen y Demostración de un Requisito de CXCR4 para la Infección con VIF y Citopaticidad
Los vectores de lentivirus basados en VIH transducen de forma eficaz las células que no se dividen pero son problemáticos por obtenerse a partir de agentes patógenos letales para humanos. Sin embargo, el uso de los lentivirus de no primate era complicado por una falta relativa de información sobre sus propiedades moleculares, particularmente su adaptabilidad a las células humanas. Este ejemplo describe los mecanismos infectivos productores y post-receptores del ciclo vital de VIF en células humanas y muestra que las funciones necesarias para la transducción del vector de lentivirus pueden tener lugar con alta eficacia. Se realizó la sustitución del promotor de VIF que funciona débilmente en células de no felinos. Un sistema de vector de VIF con promotor completamente heterólogo y seudotipificado con env, mostraba un alto nivel de expresión celular en humanos y el procesamiento de las proteínas de VIF en trans y producía vectores retrovíricos de VIF que transducían células humanas que se dividen, detenidas en el crecimiento y post-mitóticas (macrófagos y neuronas hNT) con una titulación alta. El sistema elimina los riesgos en seguridad de las células productoras de felinos. Se observó una citopaticidad grave de las proteínas de la envuelta de VIF con promotor heterólogo en células humanas y los vectores de la invención se utilizaron para investigar este fenómeno. La expresión del genoma de VIF con el promotor de citomegalovirus humano inducía sincitios profusos, específicos de Env en una amplia variedad de células humanas pero no en células de roedores. Además, esta actividad fusogénica requería la coexpresión de CXCR4, el co-receptor para las cepas que inducen sincitios de VIH. Sin embargo, a pesar de su dependencia de CXCR4, la inducción de sincitios Env VIF en células no hospedadoras era disociable de la entrada del virus: la expresión de CXCR4 en células de no felinos permitía la fusión de células específicas para Env de VIF pero no la transducción del vector mediado con Env de VIF ni la replicación vírica. Siendo compatible con el papel de un correceptor, la expresión de CXCR4 humana en células de felinos, cambiaba el fenotipo vírico de no citopático a altamente citopático e incrementaba la infectividad vírica y la transducción con vectores de la envuelta de VIF. El uso de CXCR4 en lentivirus evolucionalmente distantes, implica un papel fundamental para este receptor de quimioquinas en la replicación de los lentivirus y la citopaticidad. Los resultados tienen implicaciones para la biología comparativa de lentivirus, así como para la terapia génica en humanos.
Se empleó un clon molecular defectuoso en ORF-2 (FIV 34TF10)19 de la cepa Petaluma (Fig. 1). En la parte superior de la Fig. 1, se muestran FIV 34TF10 y el plásmido CF1. Las modificaciones adicionales de CF1 empleadas en este estudio se muestran y se describen debajo del dibujo de FIV 34TF10. Para generar CF1, se ligaron con extremos romos el fragmento SacI-Esp1 de 34TF10 entre NotI y XbaI en el polienlazador del plásmido de expresión con el promotor hCMVIE, pRc/CMV (Invitrogen). La fusión del promotor hCMVIE con el genoma de VIF entre la caja TATA (obtenida de CMVIEp) y el inicio de la repetición R (obtenida de VIF) se realizó y se muestra para el plásmido CT5 (unión en el sitio Sac1). La fusión generada con PCR dispone las secuencias de la repetición R de VIF aguas abajo de la caja TATA de CMV, en el registro preciso para la caja TATA de VIF sustituida; esta también dirige la expresión de los vectores (abajo) que carecen todos de las secuencias vif, ORF2, pol y env. La casete génica del marcador está en la orientación paralela para lacZ y con orientación antiparalela para GFP, con una señal adicional de poli(A). Se introdujo un cambio del marco de lectura en los vectores en el nt 298 del fragmento restante de gag. Para generar el vector seudotipificado, el plásmido de expresión de VSV-G, pHCMV-G 42 (no ilustrado) se cotransfectó en células 293T con CF1\Deltaenv y se mostraron los vectores. Los detalles adicionales de la clonación se encuentran en el
\hbox{Ejemplo 1.}
34TF10 infecta productivamente células de riñón felino Crandall (células CRFK) pero no infecta los linfocitos de sangre periférica de felinos o los macrófagos primarios de felinos (Carpenter & O'Brien (1995) Current Opinion in Genetics and Development 5, 739-745; Waters y col. (1996) Virology 215, 10-16; Sparger y col. (1994) Virology 205, 546-553; Bandecchi y col. (1995) New Microbiologica 18, 241-252; Tozzini y col. (1992) Journal of Virological Methods 37, 241-252 (1992); Olmsted y col. (1989) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 86, 2448-2452). Este tropismo restringido cartografía la mutación de ORF2, no env: reparación de ORF2, un transactivador putativo de LTR, que da como resultado una infección productiva con 34TF10 de todos estos tipos de células de felino 36. La envuelta de 34TF10 se debe considerar, por tanto, por analogía débil con VIH, que tiene "tropismo dual", sin embargo no se ha establecido la clasificación de adaptación a lab/primario frente a T-trópico/macrofagotrópico para cepas o clones de VIF. De hecho, aunque es característica la depleción de CD4 que conduce al SIDA, VIF también infecta células T CD8+ y células B, así como células T CD4+ en felinos infectados (Pedersen (1993) véase arriba). Ni 34TF10 ni ninguna otra cepa o clon de gato doméstico, son citolíticos en células CRFK; se pueden detectar pequeñas células gigantes multinucleadas (4-12 núcleos) en un cultivo infectado al máximo, pero no tiene lugar una muerte celular intensa (Barr y col. (1995) véase arriba; Tozzini y col. (1992) Journal of Virological Methods 37, 241-252; Barr (1997) Virology 228, 84-91). 34TF10 no causa una viremia o enfermedad significativa en gatos domésticos infectados experimentalmente; el fenotipo in vivo de los clones con ORF2 reparado todavía no se conoce (Sparger y col. (1994) Virology 205, 546-553).
Tal y como se muestra en el diagrama de la Fig. 1, el promotor génico temprano inmediato del citomegalovirus humano (hCMVIEp) se dispuso (a) para sustituir todas las LTR de FIV con una unión 97 nt aguas arriba del donante principal de corte y empalme 5' de VIF (en el plásmido CF1) o (b) para sustituir selectivamente los elementos del promotor U3 de VIF (en el plásmido CT5 y en los vectores de VIF) mediante una fusión en la posición \sim 14, entre la caja TATA y el inicio de la transcripción, es decir, la repetición R. La disposición sitúa la caja TATA de CMV en el registro preciso para sustituir a la caja TATA de VIF en relación con el inicio de la transcripción (posición \sim27). CF1 carece de ambas LTRs, excepto la porción de 89 nt de la U3 tres prima que solapa el ORF de rev (VIF no tiene un homólogo de nef de VIH), delecionando de este modo las secuencias que actúan en cis necesarias para la replicación y la integración (secuencias del promotor U3, sitio de unión al cebador de ARNt, repeticiones R, elementos U5). Véase también, el Ejemplo 1 para detalles de la clonación de las estructuras artificiales descritas en este ejemplo. CF1\Deltaenv tiene una deleción adicional de 875 nt en env que engloba la unión SU-TM y que también cambia el marco de lectura: este plásmido, que se empleó para encapsidar vectores seudotipificados es por tanto defectuoso para ORF-2, env y los elementos retrovíricos mencionados que actúan en cis. CT5 por el contrario, codifica 34TF10 completamente de tipo silvestre y competente para la replicación. El sistema elimina de este modo la necesidad de un promotor de felinos. La función de ORF2 no se ha definido de forma concluyente, pero la actividad transactivadora de LTR de VIF descrita para el producto génico 36 sería por ello también prescindible.
La transfección de CF1 o de CT5 pero no de 34TF10 en células humanas daba como resultado la formación explosiva de sincitios, en 12-18 horas. Las monocapas de células HeLa y de células de riñón embrionario humano 293 se destruían en 90-95% con reproducibilidad por lisis sincitial al cabo de 48-60 horas de la transfección de CF1 o de CT5 (Fig. 1). Los tres plásmidos producían siempre muchos menos sincitios (400 veces), más pequeños (4-12 núcleos) y no había una citolisis discernible en las células CRFK.
Las transfecciones eran con precipitación con fosfato cálcico, excepto para las células U87MG y U87MG.CXCR4 que se habían electroporado. En todos los casos, las células transfectadas en este estudio se compararon mediante un ensayo cuantitativo de enfoque sincitial, empleando células transfectadas simultáneamente con el mismo precipitado de fosfato cálcico. Las células se tiñeron con violeta de cristal o, para los ensayos de infectividad focal, con tinción con inmunoperoxidasa con sueros de Petaluma de VIF y un anticuerpo secundario de cabra conjugado con peroxidasa de rábano picante para IgG41 de felinos. Todas las comparaciones se controlaban por cotransfección de un GFP con promotor hCMVIE o un plásmido informador de LacZ como 10% de entrada de ADN; sólo se describen los experimentos con eficacias de la transfección que variaban < de 5% entre las líneas celulares comparadas. Cuando la lisis se ampliaba a 24 horas para CF1, la eficacia comparativa de la transfección se sometió a ensayo, mediante GFP en pocillos paralelos en presencia de una dilución 1:300 del plasma de gato doméstico infectado con VIF, para inhibir la formación de sincitios. Todas las células eran líneas ATCC multiplicadas en suero bovino al 10% con antibióticos; las células CRFK se hacían crecer en medio L50 tal y como se ha descrito. La ATCC de CRFK es ATCC CL94.
Siendo compatible con estudios previos (Barr y col. (1995) Journal of Virology 69, 7371-7374), la transfección de 34TF10 y CT5 en células CRFK (ATCC CCL 94) establecía una infección permanente con altos niveles de RT (> 5 x 10^{5} cpm/ml) por día 7-14, pero con un efecto citopático mínimo (6-12 +/- 4 sincitios, 4-8 núcleos cada uno, por pocillo de 9,6 cm^{2} de una placa de seis pocillos). Sin embargo, tal y como se esperaba, CF1 no producía virus infeccioso: el paso de material sobrenadante filtrado desde células humanas o felinas transfectadas con CF1 a 10^{7} células CRFK o a 10^{7} células humanas (HeLa, 293, H9, Molt4, supT1, U937) no producía sincitios o la producción de RT; las líneas celulares adherentes también eran negativas según un ensayo de la infectividad focal descrito previamente (FIA) (Remington y col. (1991) Journal of Virology 65, 308-312), sensible a <5 unidades infecciosas por ml en células CRFK infectadas con 34TF10 o CT5. Aunque se produjera en células humanas o CRFK, VIF generado con p34TF10 o con CT5 no se replicaba en células humanas. Sin embargo, los sincitios producidos por la transfección de CF1 y CT5 en células humanas y felinas se producían específicamente por la proteína de la envuelta de VIF, puesto que la transfección de CF1\Deltaenv no producía nunca sincitios en ninguna célula, pero se obtenían altos niveles comparativamente de RT.
La transcriptasa inversa dependiente de Mg2+ se midió tal y como se ha descrito previamente (Willey y col. (1988) Journal of Virology 62, 139-147) 52 horas después de la transfección de los plásmidos indicados en las células CRFK, HeLa, 293 y 293T. La lisis intensa de los sincitios se observó en las células transfectadas con CT5, CF1, CF1\Deltapol y pHCMV-G. Los dos últimos plásmidos se incluyeron como testigos de la lisis celular para verificar la especificidad vírica. El material sobrenadante de células H9 infectadas 2 semanas antes con VIH-1 y VIH-2 con m.o.i de 1,0, también se sometieron a ensayo para comparar. En la Fig. 2, cada punto es la media de mediciones por triplicado \pm la S.E.
Se realizó la radioinmunoprecipitación de las células transfectadas con plasma de gato doméstico infectado con VIF (cepa Petaluma). Las células 293, HeLa y CRFK se transfectaron con los plásmidos indicados mediante precipitación con fosfato cálcico, en frascos de 25 cm^{2}. Al cabo de 27 horas (células 293) o 48 horas (células HeLa o CRFK) de la transfección, las células se radiomarcaron durante cinco horas con ^{35}S-cisteína y ^{35}S-metionina en medio exento de cisteína y de metionina, con 7,5% de suero bovino fetal dializado después de una hora de preincubación en este medio sin isótopos. Los materiales lisados se lavaron previamente con suero de gato normal y Sepharose A proteica, se incubaron durante una noche con 10 \mul de plasma de gato infectado con VIF, se precipitaron con Sepharose A proteica y se sometieron a electroforesis con marcadores teñidos previamente en 10 o 12,5% de geles de SDS-poliacrilamida. El material lisado se obtenía a partir de aproximadamente 15-25% de la cantidad de células en otras pistas, debido a la pérdida de células por la lisis intensa de sincitios. El panel B muestra la inhibición de sincitios inducidos con CF1 en células 293T y HeLa mediante plasma de gatos domésticos infectados con VIF. Los sincitios se puntuaron a las 48 horas como focos con \geq8 núcleos mediante tinción con violeta de cristal de las células fijadas con metanol. Las diluciones de los plasmas VIF + (cuadrados, círculos) o VIF + (rombos, triángulos) se añadieron a las células en el momento de la transfección en placas de 12 pocillos y con un nuevo cambio del medio 14 horas después.
Los sincitios en las células humanas transfectadas con CF1 se suprimían de forma intensa con el plasma de gato doméstico infectado con la cepa Petamula de VIF, con un 50% de inhibición en células 293T y HeLa diluidas 1:32.000 veces y diluidas 1:12.700 veces, respectivamente, aunque el plasma de gato doméstico preinmunizado no tenía efecto sobre la formación de sincitios con ninguna dilución, incluso de 1:10 (Fig. 2B). Además, la inducción de sincitios se suprimía con una pequeña deleción de 539 nt (nt 7322-7861), que no cambiaba el marco de lectura, confinada en la parte SU de env (prescindiendo del dominio TM y del sitio de corte proteolítico aguas arriba, véase CF1\DeltaSU en la Fig. 1) sugiriendo que ambos dominios SU y TM de la envuelta son necesarios para la inducción de sincitios. La eficacia de la transfección determinada por una cotransfección informadora con GFP en pocillos paralelos, en presencia de antisuero diluido 1:300 para los experimentos, era \leq10%, mostrando que la lisis sincitial estaba mediada por la fusión de células no transfectadas con células transfectadas.
La expresión en células humanas se examinó entonces adicionalmente mediante ensayos de la transcriptasa inversa (RT) y mediante la inmunoprecipitación de células radiomarcadas con plasma de gatos domésticos infectados con VIF. Las estructuras artificiales con el promotor hCMVIE expresaban altos niveles de RT dependiente de Mg 2+ en células humanas (HeLa, 293, 293T) y también eran superiores a la LTR natural de p34TF10 en células felinas (CRFK) y humanas (Fig. 2A). Por el contrario, la expresión de RT dirigida por LTR en células 34TF110 en células humanas era mínima; la expresión proteica en las estructuras artificiales quiméricas hCMVIEp también excedía a la expresión de 34TF10 en células de felino, en aproximadamente seis veces. Un mutante con deleción en pol (CF1\Deltapol) no producía RT (Fig. 2A) pero producía sincitios con la misma intensidad que CF1.
La inmunoprecipitación de las células transfectadas y radiomarcadas humanas y de felinos mostraba un patrón de expresión de 34TF10 de tipo silvestre para CF1 o CT5 en células humanas, con cantidades correspondientes a los ensayos de RT. La expresión de p34TF10 se detectaba sin embargo claramente por RIPA en células HeLa pero con niveles considerablemente menores que en las quimeras CMVIEp y no era detectable (incluso después de una exposición prolongada de la película) en células 293 o 293T. Es compatible con este resultado, que los sincitios pequeños (4-6 núcleos, 11-14 sincitios \pm 4, n = 4, por pocillo en placas de seis pocillos) eran detectables en células HeLa, 48 horas después de la transfección con p34TF10. La deleción de SU que mantiene el marco de lectura en CF1\DeltaSU, daba como resultado el precursor pronosticado truncado de la envuelta, una mancha de poca resolución que corre con el producto del corte acortado de SU/gp100. En el plasma utilizado no precipitaba la proteína TM de ninguna célula. Los otros dos mutantes env anulaban la producción de Env inmunoprecipitable y ningún mutante de la envuelta formaba sincitios en ninguna célula. Siendo compatible con los datos de RT, la expresión de CF1 era también superior a la expresión dirigida por LTR en células CRFK.
En conjunto, estos datos muestran que altos niveles de expresión del repertorio genómico completo de un lentivirus de no primate, tiene lugar en células humanas y que la sustitución del promotor permite la fase productora de la replicación de VIF (que incluye el eje regulador Rev/RRE, el corte y empalme, la producción de los precursores de Gag/Pol y Env y el correcto procesamiento proteolítico de cada uno) que tiene lugar con una eficacia máxima en las células humanas y con niveles más elevados que los observados con el promotor natural o el promotor CMVIE en las células CRFK. La sustitución selectiva de U3 (en CT5 y para uso en vectores descritos a continuación) y la sustitución completa de LTR (para la producción de proteínas en trans) eran ambas eficaces.
Para examinar las fases posteriores a la entrada del ciclo vital de VIF en las células humanas, se empleó CT5 como el punto de partida para construir vectores retrovíricos que contienen casetes génicas de marcador con promotor interno que sustituyen pol, env y los genes accesorios, así como una parte de gag. Se introdujo una mutación por cambio del marco de lectura en todos los vectores en el nt 298 del ORF de gag restante por cierre de los extremos romos de un sitio Tth III 1, generando un codón de detención en el nt 319 (Fig. 1). El vector CTRZLb se cotransfectó con CF1\Deltaenv y el plásmido de expresión de VSV-G, pHCMV-G, en células 293T mediante coprecipitación con fosfato cálcico. De 48-96 horas después de la transfección, el material sobrenadante del vector VIF y de un vector testigo LacZ Mu-MLV, seudotipificado con VSV-G, se lavó, se filtró (0,45 \muM), se tituló sobre células HeLa y a continuación se tituló de nuevo por dilución limitante sobre un panel de líneas celulares humanas y de felino; los experimentos se realizaron con células que estaban en crecimiento o detenidas en G1/S con 20 \mug/ml de afidicolina. Se consiguieron títulos altos (10^{6}), equivalentes a los de un vector retrovírico de virus de la leucemia de múridos de Moloney convencional, con una sola ronda de concentración (Burns y col. (1993) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 90, 8033-8037) por ultracentrifugación. De forma similar a los vectores de VIH, el vector de VIF estaba mínimamente afectado por la detención del ciclo celular, aunque se había eliminado la transducción del vector Mu-MLF, demostrando de este modo esta propiedad específica de lentivirus del vector de VIF y la capacidad de transferencia de esta propiedad a las células de humanos. Con igual de importancia, cuando se comparaba en células en crecimiento el vector lacZ del virus de la leucemia de múridos de Moloney seudotipificado con VSV-G, el vector de VIF no mostraba una preferencia significativa hacia las células de felino (comparar porcentajes de titulación, véase la representación gráfica inserta). Cuando se permitía la proliferación después de la transducción con CTRZLb, se generaban homogéneamente colonias grandes (100-400 células), positivas para lacZ, lo que indicaba un mantenimiento estable del clon del transgen. Aunque las líneas celulares variaban considerablemente en su capacidad de transducción, tal y como se esperaba, estas diferencias eran equivalentes en los vectores de VIF y de Moloney: es decir, eran más específicas de las células que específicas del vector y reflejan la susceptibilidad a una transducción mediada con VSV-G. Por tanto se muestra que el bloqueo clave del estado infectivo del ciclo vital de VIF en células de no felinos, está a nivel de la entrada del virión más que posteriormente.
Para determinar adicionalmente la capacidad de los vectores de VIF para transducir células humanas que no se dividen, transdujimos células humanas postmitóticas, empleando los dos modelos más desarrollados de cultivo tisular humano definitivo: macrófagos humanos primarios y neuronas hNT. Las neuronas hNT se diferencian de forma irreversible, se polarizan las neuronas humanas obtenidas a partir de células de teratocarcinoma NT2 mediante un proceso de seis semanas, empleando ácido retinoico y diversos inhibidores mitóticos. Las células hNT cambiadas de placa por tercera vez, empleadas en este experimento, que son irreversiblemente post-mitóticas, permaneciendo de este modo un año después del transplante a los cerebros de ratones inmunosuprimidos, pareciéndose morfológicamente a neuronas primarias, expresan una variedad de marcadores específicos de neuronas y crecen en racimos de neuronas que elaboran axones funcionales y dendritas. Las nNT neuronas transducidas con una m.o.i. de 1,0, mostraban que la tinción de lacZ era visible en los cuerpos celulares y en los procesos. Los macrófagos primarios humanos mostraban un amplio fondo de tinción de lacZ y se transdujeron por ello con el vector de GFP, CTAGCb, el noveno día después del aislamiento de la sangre periférica de donantes normales. Estas células se transdujeron con un alto título con el vector de VIF pero no con un vector de Mu-MLV con transducción de GFP.
Los determinantes de la encapsidación de VIF no han tenido un estudio previo, Las señales de la encapsidación de lentivirus son más complejas que las de los oncovirinae de múridos (Lever, (1996) Gene Therapy 3, 470-471). Las LTRs se delecionaron en CF1\Deltaenv para evitar una encapsidación y se eliminaron las secuencias necesarias para la transcripción inversa y la integración; los 20 nucleótidos entre el donante principal de corte y empalme y el gen gag, una contribución putativa a la encapsidación de lentivirus, es extraordinariamente corta en VIF (20 nt comparados con los 44 nt en VIH-175 nt en VIH-2 y 375 nt en Mu-MLV). La encriptación y la deleción de esta región puede mejorar el título.
Para someter a ensayo si las secuencias codificadoras de genes estructurales de VIF se transferían a las células diana por transducción con el vector encapsidado de CF1, se transdujeron 10^{6} células de CRFK con una m.o.i. = 10 con el vector CTRZLb sometido a ADNasa, consiguiendo 99% de transducción. Un \mug de ADN genómico procedente de estas células, era negativo en la PCR para las secuencias gag, mientras que la amplificación simultánea de la misma cantidad de este ADN espigado con ADN genómico procedente de sólo 10 células de un cultivo de CRFK infectado crónicamente con 34TF10, era positiva.
Se obtenía una citopaticidad grave cuando era posible la expresión de la envuelta de VIF en células humanas. Debido al reciente descubrimiento de CXCR4 como correceptor de cepas de VIH que inducen sincitios, estas observaciones plantean cuestiones inmediatas sobre el mecanismo específico. El receptor primario de VIF sigue siendo desconocido. Puesto que la mayoría de las líneas celulares humanas, incluyendo las células HeLa y 293, expresan niveles apreciables de CXCR4, a continuación empleamos las líneas celulares humanas raras, conocidas por no expresar CXCR4 (las células U87MG y SK-N-MC) o niveles extremadamente bajos de CXCR4 (células HOS) Berson y col. (1996) Journal of Virology 70, 6288-6295; Endres y col. (1996) Cell 87, 745-756; Harouse & González-Scarano (1996) Journal of Virology 70, 7290-7294). La transfección de CF1 o CT5 en células U87MG y SK-N-MC (mediante electroporación o coprecipitación con fosfato cálcico) nunca daba como resultado la formación de sincitios (n = 9 para cada línea, eficacias de la transfección \geq10% con cotransfección informadora con GFP). Además, aunque las células 208F de rata transfectadas con CF1 se fusionaban fácilmente con una variedad de líneas celulares humanas y con células CRFK, la fusión no tenía lugar con células SK-N-MC o U87MG. Además, la transfección de otras células de roedores (NIH 3T3, CHO) no producía sincitios (n = 8, eficacias \geq10% con cotransfección con GFP).
Por tanto construimos un vector retrovírico a base de MMLV, pZ.CXCR4, que expresa CXCR4 humano y neoR a partir de un ARNm bicistrónico y lo empleamos para generar un panel de líneas celulares seleccionadas con G418, U87MG, HOS, SK-N-MC, NIH3T3 y CRFK que expresaban CXCR4 humano. Las líneas testigos seleccionadas con G418 se generaron con el vector retrovírico parental, pJZ30854. La expresión de CXCR4 estaba documentada en todas las líneas transducidas con pZ.CXCR4. La transfección de CF1 o CT5 en U87MG.CXCR4, SK-N-MC.CXCR4, 3T3.CXCR4 pero no la transfección simultánea en las líneas testigos respectivas (n = 8 para CF1, n = 6 para CT5), producía sincitios exuberantes. Además, aunque en las células HOS transfectadas con CF1 se podían observar pequeños sincitios de 4-8 células, en las células HOS.CXCR4 transfectadas con CF1 se producían células gigantes multinucleadas de forma masiva que contenían varios cientos de núcleos. Para confirmar estos resultados, también realizamos estudios de mezclas de células felinas/humanas con células 3201-FIV (células de linfoma de gato felino infectadas crónicamente con VIF, ATCC CRL 10909). Las células U87MG, SK-N-MC, HOS, 3T3, sus líneas duplicadas seleccionadas con el vector pZ.CXCR4 y las células HeLa se extendieron en placas (3 x 10^{5} células) en placas de seis pocillos. Al día siguiente se añadieron 10^{5} células 3201-FIV a cada pocillo. Después de 18 h, se observaron grandes sincitios en forma de balón (que incluían 30-80% de la monocapa) de las células HeLa y cada línea que expresaba CXCR4; en las células U87MG, SK-N-MC, HOS o 3T3 no se observó ningún sincitio en ningún momento.
La transducción de Env de VIF se examinó a continuación empleando la cotransfección de CF1 y CTRZLb en células 293T. Tal y como se muestra en la Tabla 1, este vector era incapaz de transducirse en ninguna línea humana, sin tener en cuenta la expresión de CXCR4; la transducción se podía detectar en células CRFK pero con un título bajo (< 10 unidades de transducción/ml). Las células CRFK.CXCR4 por el contrario, se podían transducir al menos con un título superior en 2 logaritmos (3,6 x 102) que las CRFK. Además, el ligando para CXCR4 inhibía la transducción del vector a través de la envuelta de VIF.
Puesto que los datos del vector indicaban que CXCR4 aumentaba la entrada de virus en células de felinos, así como una fusogénesis más amplia, a continuación comparamos la infectividad de VIF competente para la replicación sobre células CRFK y sobre células CRFK.CXCR4. Cada línea se sembró en placas de 48 pocillos, con 10^{4} células por pocillo y se infectaron el día siguiente con diluciones en series de cuatro de unas reservas de virus 34TF10 producido en células CRFK. Para reducir la pérdida por artefactos del título de la citopaticidad marcada de 34TF10 en células CRFK.CXCR4, las placas se fijaron y se examinaron 40 horas después de la infección con un ensayo de la infectividad focal (empleando una dilución 1:500 de los sueros VIF positivos y un anticuerpo de IgG anti-felino conjugado secundariamente con peroxidasa de rábano picante) sensible a 1 célula en 10^{6} células infectadas (véase también, Remington y col. (1991) Journal of Virology 65, 308-312 y Chesebro & Wehrly (1988) Journal of Virology 62, 3779-3788). 34TF10 era ocho veces más infeccioso sobre CRFK.CXCR4 que sobre CRFK ( p = 0,0002). Consideramos ésto un mínimo estimado de proporción de infectividad, puesto que numerosas células flotantes redondeadas o poco adheridas, teñidas por el método IFA, estaban presentes en los pocillos de CRFK.CXCR4 infectados, ya a las 40 horas (pero no en los pocillos testigos no infectados o los pocillos infectados con CRFK) y no se contaron. Para confirmar estos resultados, se realizó una titulación con dilución limitante de 34TF10 sobre las dos líneas celulares, infectando como se ha descrito anteriormente: las células que se separaban en intervalos de cuatro-cinco días durante tres semanas, y los pocillos positivos fueron identificados en el ensayo de RT.
Reuniendo estos resultados, se observa que la actividad fusogénica y la entrada vírica de lentivirus de primates relacionados remotamente y de no primates está mediada por la misma molécula de la superficie celular. Esta amplia utilización de CXCR4 en un lentivirus de no primate que no utiliza CD4 con receptor primario, implica un papel fundamental de CXCR4 en la génesis de sincitios en lentivirus y en la patogénesis del SIDA. Nuestros experimentos no excluyen que el bajo nivel de infección mediada por la envuelta de células humanas tenga lugar, quizás sólo debido a CXCR4, tal y como se ha descrito para algunos materiales aislados de VIH-1 y VIH-2 (Endres y col. (1996) Cell 87, 745-756; Harouse & González-Scarano (1996) Journal of Virology 70, 7290-7294; McKnight y col. (1994) Virology 201, 8-18; Reeves y col. (1997) Virology 231, 130-134; Potempa y col. (1997) Journal of Virology 71, 4419-4424; Harouse y col. (1995) Journal of Virology 69, 7383-7390; Talbot y col. (1995) Journal of Virology 69, 3399-3406; Tateno y col. (1989) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 86, 4287-4290 (1989), Clapham y col. (1992) Journal of Virology 66, 3531-3537) sino que indican que, en la mayoría de estos ejemplos, dicho proceso es ineficaz. De forma similar, también los conejos se pueden infectar con VIH-1, pero el proceso es bastante ineficaz (Gardner & Luciw (1989) Faseb Journal 3, 2593-2606). Nuestros datos son compatibles con la existencia de un receptor primario de VIF. Además de los datos de los vectores, por ejemplo, las células HeLa no mantienen una replicación productiva de VIF sino que eran fácilmente transducibles con los seudotipos VSV-G, expresaban CXCR4 abundante, mostraban una citopaticidad específica de Env intensa, mostraban niveles bajos pero significativos de expresión dirigida con LTR de VIF, permitían el procesamiento normal de proteínas víricas y generaban VIF competentes para la replicación a partir de un plásmido CT5.
Los resultados por ello tienen implicaciones importantes para la biología de lentivirus y para la terapia génica en humanos. Al mostrar que un lentivirus de no primate también utiliza CXCR-4 para la fusión celular y para la entrada vírica, nuestros datos muestran que este receptor de quimioquinas tiene un papel fundamental en la replicación del lentivirus, en la génesis de sincitios y quizás en la patogénesis. También es probable que la replicación in vivo de VIF tenga otros requerimientos más sutiles. Los vectores de VIF por tanto, representan una alternativa inherentemente segura a los vectores de VIH. El apoyo epidemiológico para esta hipótesis es mayor para VIF que para cualquiera de los otros lentivirus de no primates, porque VIF ha mostrado que no tiene capacidad de infección o de causar enfermedad en humanos después de la inoculación natural en muchos seres humanos a lo largo de muchos años, mediante la principal vía infectiva, operativa en los gatos (mordeduras). Adicionalmente, además de U3, ORF2 y env, son posibles deleciones adicionales de secuencias de VIF en ambos vectores y en plásmidos de encapsidación. Los vectores de VIF son más fáciles de producir logísticamente puesto que el VIF infeccioso se propaga de forma rutinaria en cultivo de tejidos con nivel de Bioseguridad 2 (los vectores de esta memoria han sido aprobados para uso con BL-2 por el Comité de Bioseguridad Institucional de UC San Diego).

Claims (33)

1. Un vector de ácido nucleico que comprende un sitio de encapsidación de VIF y una LTR 5' de VIF, en donde la región U3 de la LTR 5' está sustituida por una secuencia de control de la expresión que actúa en células humanas; y en donde dicho vector de ácido nucleico es incapaz de producir al menos una proteína vírica necesaria para encapsidar dicho vector en una partícula vírica en el contexto de una célula.
2. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 1, que comprende un ácido nucleico heterólogo ligado funcionalmente a una secuencia de control de la expresión que actúa en células humanas.
3. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 2, en donde el ácido nucleico heterólogo codifica una proteína.
4. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 2, en donde el ácido nucleico heterólogo codifica un inhibidor vírico.
5. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 4, en donde el inhibidor vírico se selecciona entre el grupo consistente en ácido nucleico antiparalelo, ribozima, ácido nucleico señuelo y ácido nucleico transdominante.
6. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 2, en donde el ácido nucleico heterólogo codifica un componente de VIH.
7. El vector de ácido nucleico según una cualquiera de las reivindicaciones 2 a 6, en donde la secuencia de control de la expresión se selecciona entre el grupo consistente en la secuencia del promotor de CMV, la secuencia del promotor de VIH, la secuencia del promotor de LTR de VIH, la secuencia del promotor de SV-40, la secuencia del promotor de pol II y la secuencia del promotor de pol III.
8. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 7, en donde la secuencia de control de la expresión es una secuencia del promotor de CMV.
9. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 1, que comprende la región R y la región U5 de la LTR 5'.
10. El vector de ácido nucleico según la reivindicación 1, que comprende una LTR 3' de VIF y en donde la región U3 de la LTR 3' o una parte de la misma está delecionada.
11. Una partícula vírica, que comprende el vector de ácido nucleico de la reivindicación 1.
12. La partícula vírica según la reivindicación 11, que comprende un polipéptido vírico env seleccionado entre el grupo consistente en el polipéptido de la envuelta de VIF, el polipéptido de la envuelta de VIH, el polipéptido de la envuelta de VSV, el polipéptido de la envuelta de MoMLV y el polipéptido de la envuelta de VLAG.
13. La partícula vírica según la reivindicación 11, que comprende un polipéptido de la envuelta de VSV.
14. Una célula que comprende el vector de ácido nucleico según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10.
15. La célula según la reivindicación 14, que es humana.
16. La célula según la reivindicación 14 o 15, que comprende un plásmido de ácido nucleico en el que:
el plásmido de ácido nucleico comprende una secuencia de nucleótidos que codifica uno o varios polipéptidos necesarios para encapsidar el vector de ácido nucleico;
la secuencia de nucleótidos está ligada funcionalmente a una secuencia de control de la expresión que actúa en células humanas; y
el plásmido de ácido nucleico carece de un sitio de encapsidación funcional de lentivirus.
17. La célula según la reivindicación 16, en donde la secuencia de nucleótidos codifica un polipéptido seleccionado entre el grupo consistente en el polipéptido de la envuelta vírica, el polipéptido de la cubierta vírica, el ligando del receptor celular, el anticuerpo o un fragmento de anticuerpo.
18. La célula según la reivindicación 16, en donde la secuencia de nucleótidos codifica uno o varios polipéptidos víricos seleccionados entre env, gag y pol.
19. La célula según la reivindicación 17, en donde el polipéptido env vírico se selecciona entre el grupo consistente en el polipéptido de la envuelta de VIF, el polipéptido de la envuelta de VIH, el polipéptido de la envuelta de VSV, el polipéptido de la envuelta de MoMLV y el polipéptido de la envuelta de VLAG.
20. La célula según la reivindicación 19, en donde la secuencia de nucleótidos codifica un polipéptido de la envuelta de VSV.
21. La célula según una cualquiera de las reivindicaciones 16 a 20, en donde la secuencia de control de la expresión se selecciona entre el grupo consistente en la secuencia del promotor de CMV, la secuencia del promotor de VIH, la secuencia del promotor de LTR de VIH, la secuencia del promotor de SV-40, la secuencia del promotor de pol II y la secuencia de control de la expresión de pol III.
22. La célula según la reivindicación 21, en donde la secuencia de control de la expresión es una secuencia del promotor de CMV.
23. Un método para transfectar una célula con un vector de ácido nucleico según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, o para transducir una célula con una partícula vírica que comprende dicho vector de ácido nucleico, que comprende poner en contacto la célula in vitro con dicho vector de ácido nucleico o dicha partícula vírica, en donde:
el vector de ácido nucleico comprende un ácido nucleico diana heterólogo, ligado funcionalmente a una secuencia de control de la expresión.
24. El método según la reivindicación 23, en donde la célula es una célula humana.
25. El método según la reivindicación 23, en donde la célula es una célula humana que no se divide.
26. El método según la reivindicación 24, en donde la célula humana que no se divide se selecciona entre el grupo consistente en células neuronales diferenciadas de forma terminal y células hematopoyéticas diferenciadas de forma terminal.
27. El método según la reivindicación 24, en donde la célula humana que no se divide es de un tejido seleccionado entre el grupo consistente en el sistema nervioso, el ojo, el sistema hematopoyético, el tegumento, el sistema endocrino, el sistema hepatobiliar, el tracto gastrointestinal, el tracto genitourinario, el hueso, el músculo, el sistema cardiovascular y el sistema respiratorio.
28. Un vector de ácido nucleico según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 o una partícula vírica que contiene dicho vector de ácido nucleico, para uso en un método de transfección de una célula humana con dicho ácido nucleico o de transducción de una célula humana con dicha partícula vírica, que comprende poner en contacto dicha célula con dicho ácido nucleico o partícula vírica in vivo.
29. Un ácido nucleico o una partícula vírica según la reivindicación 28, en donde dicha célula es como se ha definido en una cualquiera de las reivindicaciones 24 a 27.
30. Un vector de ácido nucleico según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, una partícula vírica que contiene dicho vector de ácido nucleico o una célula tal y como se han definido en cualquiera de las reivindicaciones 16 a 22, para uso en un método terapéutico.
31. Una célula según la reivindicación 30, en donde dicha célula es para uso en un método que comprende la infusión en un paciente.
32. El método según cualquiera de las reivindicaciones 23 a 27, que comprende poner en contacto la célula con un plásmido del vector de ácido nucleico, tal y como se ha definido en cualquiera de las reivindicaciones 16 a 20.
33. El método según la reivindicación 23, en donde la partícula vírica es como se ha definido en la reivindicación 12 o 13.
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