ES2268886T3 - Un nuevo componente en la via de señalizacion de hedgehog. - Google Patents

Un nuevo componente en la via de señalizacion de hedgehog. Download PDF

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Peter G. Zaphiropoulos
Anne Birgitte Unden
Rune Toftgard
Fahimeh Rahnama
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Abstract

Una secuencia de ácido nucleico aislada que codifica una proteína Ptch2 humana que tiene la SEC ID Nº 1.

Description

Un nuevo componente en la vía de señalización de hedgehog.
Campo técnico
La presente invención se refiere a nuevas moléculas, tales como proteínas, polipéptidos y nucleótidos, implicados en la vía de señalización de hedgehog con una supuesta implicación en el desarrollo embrionario y carcinogénesis. La invención también se refiere a diversos usos nuevos y ventajosos de las moléculas de acuerdo con la invención, por ejemplo, en el diagnóstico y terapia.
Antecedentes
En el estudio del desarrollo de las células, la mosca de la fruta se ha usado ampliamente como modelo, ya que es menos compleja que las células de mamífero.
La formación de patrones tiene lugar a través de una serie de etapas lógicas, reiteradas muchas veces durante el desarrollo de un organismo. Visto desde una perspectiva evolutiva más amplia, entre las especies, se observa el mismo tipo de formaciones de patrones reiterativos. Se ha descrito el dogma central de la formación de patrones (Lawrence y Struhl, 1996). Se definen tres etapas interbloqueantes y solapantes. En primer lugar, la información posicional en forma de gradientes morfogénicos sitúa las células en etapas no solapantes, encontrando cada conjunto un compartimiento. En segundo lugar, cada uno de estos compartimientos adquiere una dirección genética, como resultado de la función de genes "selectores" activos, que especifican el destino celular en un compartimiento y también muestran a las células y sus descendientes cómo comunicarse con células en los compartimientos adyacentes. La tercera etapa implica interacciones entre células en compartimientos adyacentes, iniciando nuevos gradientes morfogénicos, que organizan directamente el patrón.
Tomando estas etapas con mayor detalle, se descubre que la primera etapa en la formación de patrones es la definición de conjuntos de células en cada primordio. Las células se sitúan de acuerdo con sus posiciones con respecto a los ejes dorsoventral y anterior/posterior por gradientes morfogénicos. La asignación de las células en el eje dorsoventral constituye las capas germinales, tales como el mesodermo y el neuroectodermo.
En la segmentación, la segunda etapa (la especificación del destino celular en cada compartimiento) se realiza pero por el gen engrailed y los elementos del complejo bitórax. Engrailed define los compartimientos anterior y posterior tanto en la segmentación como en la especificación de extremidades.
La tercera etapa en la formación de patrones, la secreción de morfogenes, funciona diferenciando los patrones en los compartimientos (y estableciendo de este modo la polaridad de los segmentos). Inicialmente, todas las células en un compartimiento son equipolentes, pero llegan a diversificarse para formar el patrón. La formación de patrones depende de los gradientes de morfogenes, gradientes iniciados a lo largo de los límites del compartimiento. Dichos gradientes se establecen por una señal de corto alcance en todas las células del compartimiento en el que es activo el gen selector engrailed mencionado anteriormente. Para la polaridad de los segmentos, esta señal es Hedgehog. En el compartimiento adyacente, el gen selector está inactivo, asegurando que las células sean sensibles a la señal. El intervalo de señal de Hedgehog es probablemente sólo de unas pocas filas de células; las células respondedoras llegan a formar una fuente lineal de un morfogén de largo alcance, que se difunde hacia el exterior en todas las direcciones. Existen tres Hedgehog conocidas, Sonic (SHH), Indian (IHH) y Desert (DHH). Las proteínas que codifican pueden sustituirse entre sí, pero en animales de tipo silvestre, sus distintas distribuciones provocan actividades únicas. SHH controla la polaridad del crecimiento de las extremidades, dirige el desarrollo de las neuronas en el tubo neural ventral y forma patrones de somitos. IHH controla el desarrollo del hueso endocondral y DHH es necesaria para la espermiogénesis. Los genes de hedgehog de vertebrados se expresan en muchos tejidos diferentes, incluyendo el sistema nervioso periférico, el cerebro, los pulmones, el hígado, los riñones, los primordios dentales, los genitales y el endodermo del intestino posterior y el intestino anterior.
Por tanto, se han identificado los genes de polaridad de los segmentos en las moscas como mutaciones, que cambian el patrón de las estructuras de los segmentos corporales. Mutaciones en estos genes provocan que los animales desarrollen los patrones cambiados en las superficies de los segmentos corporales, afectando los cambios al patrón a lo largo del eje de la cabeza a la cola. Por ejemplo, mutaciones en el gen patched provoca que cada segmento corporal se desarrolle sin las estructuras normales en el centro de cada segmento. En su lugar, hay una imagen especular del patrón normalmente encontrado en el segmento anterior. Por tanto, las células en el centro del segmento componen las estructuras erróneas, y las dirigen en la dirección incorrecta con referencia a la polaridad de la cabeza a la cola global del animal.
Se conocen aproximadamente dieciséis genes de esta clase. Las proteínas codificadas incluyen quinasas, factores de trascripción, una proteína de unión celular, dos proteínas secretadas llamadas wingless (WG) y la Hedgehog mencionada anteriormente (HH), una proteína transmembrana única llamada patched (PTC) y algunas proteínas nuevas no relacionadas con ninguna proteína conocida. Se cree que todas estas proteínas trabajan juntas en las vías de señalización que informan a las células acerca de sus alrededores para establecer los destinos celulares y polaridades.
Se ha propuesto PTC como un receptor para la proteína HH en base a experimentos genéticos en moscas. Un modelo para la relación es que PTC funciona a través de una vía muy desconocida para inactivar su propia trascripción y la trascripción del gen de polaridad de segmentos wingless. Este modelo propone que la proteína HH, secretada por células adyacentes, se une al receptor PTC, lo inactiva y de este modo evita que PTC anule su propia trascripción y la de wingless. Varios experimentos han demostrado acontecimientos coordinados entre PTC y HH.
El gen patched humano (PTCH) se identificó recientemente como el gen responsable del síndrome de carcinoma de células basales nevoides (NBCCS), también conocido como el síndrome de Gorlin, que es un trastorno dominante autosómico que predispone a cáncer y a defectos en el desarrollo (Gorlin (1995) Dermatologic Clinics 13:113-125) caracterizado por múltiples carcinomas de células basales (BCC), meduloblastomas y fibromas de ovario así como numerosas anormalidades en el desarrollo (Hahn, H., Wicking, C., Zaphiropoulos, P.G., Gailani, M.R, Shanley, S., Chidambaram, A., Vorechovsky, I., Holmberg, E., Undén, A.B., Gillies, S., Negus, K., Smyth, I., Pressman, C., Leffell, D.J., Gerrard, B., Goldstein, A.M., Dean, M., Toftgard, R., Chenevix-Trench, G., Wainright, B. y Bale, A.E. (1996): "Mutations of the human homolog of Drosophila patched in the nevoid basal cell carcinoma syndrome", Cell 85, 841-851; y Jonson, R.L., Rothman, A.L., Xie, J., Goodrich, L.V., Bare, J.W., Bonifas, J.M., Quinn, A.G., Myers, R.M., Cox, D.R, Epstein, E.H. Jr y Scout, M.P. (1996): "Human homolog of patched a candidate gene for the basal cell nevus syndrome", Science 272, 1668-1671). PTCH codifica un receptor de membrana del dominio amino terminal escindido autolíticamente (proteína con corte y empalme) de sonic hedgehog (SHH) (Mariano, V., Davey, R.A., Zuo, Y., Cunningham, J.M. y Tabin, C.J. (1996): "Biochemical evidence that patched is the Hedgehog receptor", Nature 384, 176-179; y Stone, D.M., Hynes, M., Armanini, M., Swanson, T.A., Gu, Q., Johnson, R.L., Scott, M.P., Pennica, D., Goddard, A., Phillips, H., Noll, M., Hooper, J.E. de Sauvage, F. y Rosenthal, A (1996): "The tumor-suppressor gene patched encodes a candidate receptor for Sonic hedgehog", Nature 384, 129-134). En el estado de no-señalización, se cree que PTCH inhibe la señalización consecutiva de otras proteínas de membrana, smoothened (SMO), sin embargo, la unión de SHH a PTCH alivia esta inhibición (Goodrich, L.V., Milenkovic, L., Higgins, K.M. y Scott, M.P. (1997): "Altered neural cell fates and medullablastom in mouse patched mutants", Science 277, 1109-1113). Esta cascada de acontecimientos de señalización, mejor caracteriza in Drosophila, también implica varios componentes intracelulares incluyendo fused (una serina treonina quinasa), el supresor de fused, costal 2, y cubitus interruptus (Ruiz i Altaba, A.: "Catching a Glimpse of Hedgehog" (1997) Cell 90, 193-196). El último es un factor de trascripción que regula de forma positiva la expresión de genes diana que también incluyen PTCH.
Se han identificado mutaciones en el gen de PTCH en BCC esporádicos y familiares (Gailani, M.R., Stahle-Bäckdahl, M., Leffell, D.J., Glynn, M., Zaphiropoulos, P.G., Pressman, C., Undén, A.B., Dean, M., Brash, D.E., Bale, A.E. y Toftgard, R (1996): "The role of human homologue of Drosophila patched in sporadic basal cell carcinomas" Nature Genet. 14, 78-81). La ausencia de la proteína PTCH normal en estas células permite que suceda la señalización constitutiva de SMO, provocando la acumulación de ARNm de PTCH mutantes (Undén, B.A., Zaphiropoulos, P.G., Bruce, K., Toftgard, R., y Stahle-Bäckdahl, M. (1997): "Human patched (PTCH) mRNA is overexpressed consistently in tumor cells of both familial and sporadic basal cell carcinoma", Cancer Res. 57, 2336-2340).
El documento WO 96/11260 describe el aislamiento de genes patched y el uso de la proteína PTC para identificar ligandos, diferentes al ligando Hedgehog establecido, que se unan al mismo.
Sin embargo, aún existe la necesidad de comprender adicionalmente la señalización celular de SHH/PTCH, que puede proporcionarse por la descripción de genes adicionales, péptidos y proteínas implicados en la misma.
Sumario de la invención
La presente invención proporciona una etapa significativa dirigida al entendimiento de la vía descrita anteriormente. Se ha clonado y secuenciado un nuevo gen tipo patched humano (PTCH2) por una combinación de análisis de bibliotecas de ADNc y RACE. Se han identificado varías formas de ARNm con un corte y empalme alternativo de PTCH2, incluyendo transcritos que carecen de segmentos que se cree que están implicados en la unión de sonic hedgehog (SHH) y ARNm con exones en el extremo 3' terminal definidos de forma diferente. Por consiguiente, la invención se refiere a dos variantes de corte y empalme que producen diferentes extremos C-terminales como se describe en la Figura 2B.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 muestra la secuencia genómica de la SEC ID Nº 5, en la que los exones y los intrones están indicados en la secuencia genómica del nuevo gen de patched 2 humano.
La Figura 2A describe una comparación de secuencia de aminoácidos de las secuencias de PTCH2 (líneas superiores) y PTCH1 (líneas inferiores) humanas.
La Figura 2B es una representación de los acontecimientos de corte y empalme alternativos que producen diferentes extremos C-terminales.
La Figura 2C es una representación de las diferentes variaciones de transcritos que han sufrido corte y empalme que abarcan las secuencias del exón 1 y el exón 2.
La Figura 3A es una fotomicrografía de campo oscuro de un tumor BCC hibridado con una sonda antisentido marcada con ^{35}S que muestra una señal abundante de ARNm de PTCH1 (granos brillantes) en todas las células de tumor BCC.
La Figura 3B describe la sobreexpresión de ARNm de PTCH2 en BCC y se expresa principalmente en contraste en las células basaloides en la periferia de las redes tumorales.
La Figura 3C es otro BCC que muestra una fuerte señal de ARNm de PTCH2 en la periferia de la red tumoral (Tu), mientras que no se detecta señal en la epidermis (Ep).
La Figura 3D son secciones del mismo tumor (C) hibridado con la sonda con sentido de PTCH2 que no mostró señal.
La Figura 3E muestra la inmunorreactividad para Ki-67.
La Figura 3F describe cómo las redes tumorales bajo un aumento de alta potencia muestran una señal de ARNm de PTCH2 abundante (granos negros) en las células tumorales basaloides oscuras y una señal inferior en el centro (flecha).
Definiciones
Los términos "polipéptidos", "péptido" y "proteína" se usan indistintamente en este documento para referirse a un polímero de restos de aminoácidos. Los términos se aplican a polímeros de aminoácidos en los que uno o más restos de aminoácidos son un análogo químico artificial de un aminoácido de origen natural correspondiente, así como a polímeros de aminoácidos de origen natural.
Las expresiones "aislado", "purificado" o "biológicamente puro" se refieren a un material que está sustancial o esencialmente libre de componentes que lo acompañan normalmente como se encuentra en su estado nativo.
La expresión "ácido nucleico" se refiere a un polímero de desoxirribonucleótidos o ribonucleótidos en forma monocatenaria o bicatenaria, y salvo que se limite de otro modo, incluye análogos conocidos de nucleótidos naturales que pueden funcionar de un modo similar a los nucleótidos de origen natural.
Un "marcador" es una composición detectable por medios espectroscópicos, fotoquímicos, bioquímicos, inmunoquímicos, o químicos. Por ejemplo, los marcadores útiles incluyen ^{32}P, colorantes fluorescentes, reactivos electro-densos, enzimas (por ejemplo, como se usa habitualmente en un ELISA), biotina, dioxigenina, o haptenos y proteínas para los que están disponibles antisueros o anticuerpos monoclonales (por ejemplo, el péptido de la SEC ID Nº 1 puede hacerse detectable, por ejemplo, incorporando un radio-marcador en el péptido, y puede usarse para detectar anticuerpos específicamente reactivos con el péptido).
Como se usa en este documento una "sonda de ácido nucleico" se define como un ácido nucleico capaz de unirse a un ácido nucleico diana de secuencia complementaria a través de uno o más tipos de enlaces químicos, habitualmente a través de apareamiento de bases complementarias, habitualmente a través de la formación de enlaces de hidrógeno. Como se usa en este documento, una sonda puede incluir bases naturales (es decir, A, G, C, o T) o modificadas (7-desazaguanosina, inosina, etc.). Además, las bases de una sonda pueden unirse por un enlace diferente al enlace fosfodiéster, siempre que no impida la hibridación. Por tanto, por ejemplo, las sondas pueden ser ácidos peptidonucleicos en los que las bases constituyentes están unidas por enlaces peptídicos en lugar de enlaces fosfodiéster. Un especialista en la técnica entenderá que las sondas pueden unirse a secuencias diana que carecen de la complementariedad completa con la secuencia de la sonda dependiendo de la rigurosidad de las condiciones de hibridación. Las sondas preferiblemente se marcan directamente como con isótopos, cromóforos, luminóforos, cromógenos, o pueden marcarse indirectamente tal como con biotina a la que puede unirse después un complejo de estreptavidina. Ensayando la presencia o ausencia de la sonda se puede detectar la presencia o ausencia de la secuencia o subsecuencia seleccionada.
Una "sonda de ácido nucleico marcada" es una sonda de ácido nucleico que está unida, covalentemente, a través de un enlace, o a través de enlaces iónicos, de van der Waals o de hidrógeno a un marcador de modo que puede detectarse la presencia de la sonda detectando la presencia del marcador unido a la sonda.
La expresión "ácido nucleico diana" se refiere a un ácido nucleico (a menudo obtenido de una muestra biológica), para el que se diseña una sonda de ácido nucleico que hibrida específicamente. Lo que debe detectarse es la presencia o ausencia del ácido nucleico diana, o la cantidad del ácido nucleico diana que debe cuantificarse. El ácido nucleico diana tiene una secuencia que es complementaria a la secuencia del ácido nucleico de la sonda correspondiente dirigida a la diana. La expresión ácido nucleico diana puede referirse a la subsecuencia específica de un ácido nucleico más grande al que se dirige la sonda o a la secuencia global (por ejemplo, gen o ARNm) cuyo nivel de expresión se desea detectar. La diferencia en el uso será evidente a partir del contexto.
El termino "recombinante" cuando se usa con referencia a una célula, o ácido nucleico, o vector, indica que la célula, o ácido nucleico, o vector, se ha modificado por la introducción de un ácido nucleico heterólogo o la alteración de un ácido nucleico nativo, o que la célula se obtiene de una célula modificada de este modo.
El término "idéntico" en el contexto de dos secuencias de ácidos nucleicos o polipéptidos se refiere a los restos en las dos secuencias que son iguales cuando se alinean para una correspondencia máxima. El alineamiento óptimo de las secuencias para la comparación puede realizarse, por ejemplo, por el algoritmo de homología local de Smith y Waterman (1981) Adv. Appl. Math. 2: 482, por el algoritmo de alineamiento de homología de Needleman y Wunsch (1970) J. Mol. Biol. 48: 443, por la búsqueda del método de similitud de Pearson y Lipman (1988) Proc. Natl. Acad Sci. USA 85: 2444, por herramientas informáticas de estos algoritmos (GAP, GESTFTT, FASTA, y TFASTA en el Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison WI) o por inspección. El algoritmo BLAST realiza un análisis estadístico de la similitud entre dos secuencias; véase, por ejemplo, Karlin y Altschul (1993) Proc. Nat'l Acad Sci USA 90: 5873-5787.
La expresión "identidad sustancial" o "similitud sustancial" en el contexto de un polipéptido indica que el polipéptido comprende una secuencia con una identidad de secuencia de al menos el 70% con una secuencia de referencia, o preferiblemente una identidad de secuencia del 80%, o más preferiblemente del 85% con la secuencia de referencia, o más preferible una identidad del 90% en una ventana de comparación de aproximadamente 10-20 restos de aminoácidos. Un indicio de que dos secuencias polipeptídicas sean sustancialmente idénticas es que un péptido sea inmunológicamente reactivo con anticuerpos producidos contra el segundo péptido. Por tanto, un polipéptido es sustancialmente idéntico a un segundo polipéptido, por ejemplo, cuando los dos péptidos difieren sólo en una sustitución conservativa.
Un indicio de que dos secuencias de ácido nucleico sean sustancialmente idénticas es que el polipéptido que codifica el primer ácido nucleico sea inmunológicamente reactivo de forma cruzada con el polipéptido codificado por el segundo ácido nucleico. Otro indicio de que dos secuencias de ácido nucleico sean sustancialmente idénticas es que las dos moléculas hibriden entre sí en condiciones rigurosas.
La expresión "que hibride específicamente con", se refiere a la unión, formación de dúplex, o hibridación de una molécula sólo con una secuencia de nucleótidos particular en condiciones de rigurosidad cuando la secuencia está presente en una mezcla de ADN o ARN compleja (por ejemplo, celular total). La expresión "condiciones de rigurosidad" se refiere a condiciones en las que hibridará una sonda con su subsecuencia diana, pero no con otras secuencias. Las condiciones de rigurosidad dependen de la secuencia y serán diferentes en diferentes circunstancias. Secuencias más largas hibridan específicamente a temperaturas más altas. Generalmente, las condiciones de rigurosidad se seleccionan para que sean aproximadamente 5ºC inferiores al punto de fusión térmica Tm para la secuencia específica a una fuerza iónica y pH definidos. La Tm es la temperatura (con una fuerza iónica, pH, y concentración de ácido nucleico definidos) a la que hibrida el 50% de las sondas complementarias a la secuencia diana con la secuencia diana en equilibrio. (Como la secuencia diana está generalmente presente en exceso, a Tm, el 50% de las sondas estarán ocupadas en equilibrio). Típicamente, las condiciones de rigurosidad serán aquellas en las que la concentración salina sea de iones Na de menos de aproximadamente 1,0 M, típicamente una concentración de iones Na de aproximadamente 0,01 a 1,0 M (u otras sales) a un pH de 7,0 a 8,3 y la temperatura sea al menos aproximadamente 30ºC para sondas cortas (por ejemplo, 10 a 50 nucleótidos) y al menos aproximadamente 60ºC para sondas largas (por ejemplo, mayores de 50 nucleótidos). Las condiciones de rigurosidad pueden también conseguirse con la adición de agentes desestabilizantes tales como formamida.
El término "anticuerpo" se refiere a un polipéptido codificado sustancialmente por un gen de inmunoglobulina o genes de inmunoglobulina, o fragmentos de los mismos que se unen específicamente y reconocen un analito
(antígeno).
Un "anticuerpo quimérico" es una molécula de anticuerpo en la que (a) la región constante, o una parte de la misma, está alterada, remplazada o intercambiada, de modo que el sitio de unión al antígeno (región variable) esté unido a una región constante de una clase, función efectora y/o especie diferente o alterada, o una molécula completamente diferente que otorga nuevas propiedades al anticuerpo quimérico, por ejemplo, una enzima, toxina, hormona, factor de crecimiento, fármaco, etc.; o (b) la región variable, o una parte de la misma, está alterada, remplaza o intercambiada con una región variable que tiene una especificidad antigénica diferente o alterada.
El término "inmunoensayo" es un ensayo que utiliza un anticuerpo para unirse específicamente a un analito. El inmunoensayo está caracterizado por el uso de propiedades de unión específicas de un anticuerpo particular para aislar, dirigir, y/o cuantificar el analito.
Las expresiones "se une específicamente a una proteína" o "específicamente inmunorreactivo con", cuando se refiere a un anticuerpo, se refiere a una reacción de unión que es determinante de la presencia de la proteína en presencia de una población heterogénea de proteínas y otros compuestos biológicos. Por tanto, en condiciones de inmunoensayo indicadas, los anticuerpos especificados se unen preferentemente a una proteína particular y no se unen en una cantidad significativa a otras proteínas presentes en la muestra. La unión específica a una proteína en dichas condiciones requiere que un anticuerpo se seleccione por su especificidad por una proteína particular. Puede usarse una diversidad de formatos de inmunoensayo para seleccionar anticuerpos específicamente inmunorreactivos con una proteína particular. Por ejemplo, se usan de forma rutinaria inmunoensayos ELISA en fase sólida para seleccionar anticuerpos monoclonales específicamente inmunorreactivos con una proteína. Véase, Harlow y Lane (1988) Antibodies, A Laboratory Manual, Cold Spring Harbour Publications, Nueva York, para una descripción de formatos de inmunoensayo y condiciones que pueden usarse para determinar inmunorreactividad específica.
Un "producto génico", como se usa en este documento, se refiere a un ácido nucleico cuya presencia, ausencia, cantidad o secuencia de ácido nucleico es indicativo de la presencia, ausencia, cantidad, o composición de ácido nucleico del gen. Los productos génicos, por tanto, incluyen, pero sin limitación, un trascrito de ARNm, un ADNc trascrito de forma inversa a partir de un ARNm, y ARN trascrito a partir de ese ADNc, un ADN amplificado a partir del ADNc, un ARN trascrito a partir del ADN amplificado y subsecuencias de cualquiera de estos ácidos nucleicos. Los polipéptidos expresados por el gen o subsecuencias del mismo también son productos génicos. El tipo particular de producto génico será evidente a partir del contexto del uso de los mismos.
Un "fármaco modificado" significa un compuesto que retiene las propiedades farmacéuticas del fármaco original o sustancia activa aunque la estructura del mismo se haya modificado. Además, también se incluye en el término "fármaco" compuestos útiles en métodos de diagnóstico por sus propiedades de unión específica.
Descripción detallada de la invención
En un primer aspecto, la presente invención se refiere a dos proteínas humanas descritas en la Figura 2B, capaces de participar en la vía de PTCH/SHH humana durante el desarrollo embrionario y/o la carcinogénesis, tal como carcinoma de células basales. Las proteínas de acuerdo con la invención están codificadas por variantes de un gen, cuyo ácido nucleico aislado se describe con detalle a continuación y que se denomina patched 2 (PTCH2) debido a sus similitudes con patched 1 (PTCH1). Por consiguiente, las proteínas de acuerdo con la invención muestran diferencias sustanciales en la secuencia y funciones cuando se comparan con la proteína PTCH1 humana. Las proteínas pueden caracterizarse por sus funciones que cuando se comparan con PTCH1 humana son similares pero distintas de las mismas de ciertas maneras, más específicamente descritas a continuación en la sección "Resultados y análisis". Las nuevas proteínas humanas PTCH2 de acuerdo con la invención también son distintas de la PTCH2 de ratón aislada previamente. Por tanto, en una realización preferida, comprende las secuencias de aminoácidos descrita en la SEC ID Nº 1 y presentada en el Gen-Bank con el número de identificación de proteína AAD17260.1. Una de las presentes proteínas comprende todos los aminoácidos de la secuencia llamada SEC ID Nº 1.
Las proteínas de acuerdo con la invención se preparan fácilmente por los especialistas en este campo por técnicas de ADN recombinante usando las moléculas descritas a continuación o cualquier método sintético (véase, por ejemplo, Barany y Merrifield, Solid-Phase Peptide synthesis, pág. 3-284 en The Peptides: Analysis, Synthesis, Biology, Vol. 2: Special Methods in Peptide synthesis, Part A, Merrifield et al., J. Am. Chem. Soc., 2149-2156).
La presente invención también se refiere al uso de los péptidos, polipéptidos y proteínas descritos en este documento como compuestos principales en métodos dirigidos a descubrir nuevas sustancias, es decir, fármacos modificados, tales como sustancias que muestren propiedades equivalentes o incluso más ventajosas que los compuestos principales en sí. Dichos fármacos modificados también pueden diseñarse por métodos de química combinatoria, en la que se diseña específicamente un compuesto estructuralmente similar, por ejemplo, por la ayuda de ordenadores. Como alternativa, el presente fármaco modificado se identifica por exploración de una biblioteca de compuestos candidatos, por ejemplo, usando un anticuerpo de acuerdo con la invención. En el presente contexto, debe entenderse que, cuando se ha identificado dicho fármaco modificado, es posible producirlo por cualquier otra técnica adecuada. Los métodos de proteómica en los que se usan las presentes moléculas, así como también pueden ser útiles para un uso per se.
Un segundo aspecto de la invención es un ácido nucleico que codifica una proteína, definida en las reivindicaciones 1 y 2.
La presente solicitud describe el ácido nucleico de PTCH2 genómico humano aislado que comprende partes o toda la secuencia genómica llamada SEC ID Nº 5. En la descripción de la secuencia genómica mostrada en la Figura 1, se muestra la estructura de exones/intrones del presente gen. Además de los exones mostrados, también se ha identificado el exón 12a y 12b, definidos específicamente por la SEC ID Nº 3 y la SEC ID Nº 4, respectivamente. Es interesante observar que hay una variante de corte y empalme que une el exón 12a al segmento 3' del exón 12b conservando los dinucleótidos GT-AG intrónicos. Los exones 12a y 12b no son variantes, pero los exones reales del gen están identificados por secuenciación de la región genómica correspondiente. (Materiales y métodos como se describe a continuación). Por consiguiente, estos descubrimientos muestran que PTCH2 tiene la misma organización estructural de intrones/exones que PTCH1. La presente solicitud describe un trascrito que ha saltado sólo uno de los exones 9 y 10 definidos en la Figura 1. En una realización alternativa, el trascrito de acuerdo con la invención ha saltado tanto el exón 9 como el exón 10. Las variantes de corte y empalme del presente gen se analizan con más detalle a continuación en la sección "Resultados", todas las cuales se incluyen en el alcance de la presente invención. Este aspecto de la invención posibilita de forma ventajosa diseñar cebadores de PCR adecuados, que a su vez posibilita la exploración de mutaciones de todas las secciones codificantes de los mismos, por ejemplo, por análisis de SSCP, secuenciación, o cualquier otro método adecuado conocido por los especialistas en este campo. Por tanto, el nuevo gen de PTCH2 humano se ha localizado por mapeo de híbridos de radiación en el cromosoma 1p32-35 con D1S211 y WI1404 como los marcadores flanqueantes más cercanos y con una localización estimada 5,5cR de D1S443. Esta región a menudo se pierde por LOH en diversos tipos tumorales diferentes, tales como neuroblastoma, melanoma, cáncer de mama, cáncer de colon, etc. Por consiguiente, PTCH2 es un candidato para un gen supresor de tumores en esta región y la presente invención también abarca métodos de diagnóstico basados en esta nueva descripción.
En esta región cromosómica también se han mapeado tres síndromes de predisposición a cáncer, concretamente, melanoma familiar CMM1, el locus modificador para la poliposis adenamatosa familiar hMom1 y el síndrome de Bebé Michelin. PTCH2 es también un candidato para el gen que está detrás de estos síndromes hereditarios. Las presentes moléculas, por lo tanto, se usan de forma ventajosa en el contexto de estas afecciones, por ejemplo, en terapia y/o diagnóstico, tal como en ensayos.
Además, la invención también se refiere a diversos cebadores de PCR basados en secuencias sincrónicas, que permiten la amplificación de toda la secuencia codificante. Dichos cebadores se usan de forma ventajosa para la exploración de mutaciones.
La invención también se refiere al uso de los nuevos ácidos nucleicos aislados, por ejemplo, para identificar mutaciones para propósitos de diagnóstico y/o terapéuticos.
Realizaciones adicionales de este aspecto de la invención incluyen sondas de ácido nucleico, por ejemplo, sondas de ADN, ácidos nucleicos marcados, ADNc, ARN, etc., es decir, todos los productos génicos que se pueden obtener por un especialista en este campo en base a las nuevas variantes de PTCH2 humanas aisladas.
Otro aspecto de la invención es un ácido nucleico que corresponde a una cualquiera de las variantes de corte y empalme descritas en la Figura 2B, una proteína o polipéptido codificado por la misma, así como diversos usos de la misma.
Con respecto a la preparación de ácidos nucleicos de acuerdo con la invención, puede usarse cualquier técnica de ADN recombinante o método sintético adecuado. (Para procedimientos de laboratorio generales útiles en este contexto véase, por ejemplo, Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2^{a} ed., Vol. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY, 1989; Berger y Kimmel, Guide to Molecular Cloning Techniques, Methods in Enzymology, Vol 153, Academic Press, Inc., San Diego, CA; Current Protocols in Molecular Biology, F.M. Ausbel et al., eds., Current Protocols (1994)).
Un aspecto adicional de la presente invención es un vector que comprende un ácido nucleico definido anteriormente. Los vectores son, por ejemplo, útiles para transformar células in vitro o in vivo que expresen las proteínas y péptidos de acuerdo con la invención y pueden ser, por ejemplos, plásmidos, virus, etc.
Otro aspecto de la invención es una célula recombinante, tal como una célula eucariota, por ejemplo, de mamífero, o una célula procariota, por ejemplo, una bacteria, que comprende un vector definido anteriormente. Dichas células, por ejemplo, pueden usarse para controlar los niveles de expresión de las proteínas y polipéptidos de acuerdo con la invención en una amplia diversidad de contextos. Por ejemplo, cuando se tienen que determinar los efectos de un fármaco, se administrará el fármaco al organismo, tejido o célula transformada. Por consiguiente, los sistemas modelo que incluyen dichas células son otro aspecto de la invención.
Un aspecto adicional de la invención es un anticuerpo, tal como un anticuerpo monoclonal o policlonal, que se une específicamente a una proteína o polipéptido de acuerdo con la invención. Una unidad estructural de inmunoglobulina ejemplar (anticuerpo) comprende un tetrámero. Cada tetrámero está compuesto por dos pares idénticos de cadenas polipeptídicas, teniendo cada par una cadena "ligera" (aproximadamente 25 kD) y una cadena "pesada" (aproximadamente 50-70 kD). El extremo N-terminal de cada cadena define una región variable de aproximadamente 100 a 110 o más aminoácidos principalmente responsables del reconocimiento de antígenos. Las expresiones cadena ligera variable (V_{L}) y cadena pesada variable (V_{H}) se refieren a estas cadenas ligera y pesada, respectivamente.
La invención también abarca anticuerpos quiméricos u otros anticuerpos que se unen a las presentes proteínas o polipéptidos. Además, la invención también se refiere al uso de los presentes anticuerpos en ensayos. (En este contexto véase, por ejemplo, Fundamental Immunology, Third Edition, W.E. Paul, ed., Raven Press, N.Y. 1993).
Además, la invención también se refiere a una célula recombinante que expresa un anticuerpo de acuerdo con la invención.
En general, pueden usarse procariotas para clonar las secuencias de ADN que codifican una cadena de inmunoglobulina humana anti-PTCH2. E. coli es un hospedador procariota particularmente útil para clonar las secuencias de ADN de la presente invención. Microbios, tales como levaduras también son útiles para la expresión. Saccharomyces es un hospedador de levaduras preferido, teniendo los vectores adecuados secuencias de control de la expresión, un origen de replicación, secuencias de terminación y similares, según se desee. Los promotores típicos incluyen la 3-fosfoglicerato quinasa y otras enzimas glicolíticas. Los promotores de levaduras inducibles incluyen, entre otros, promotores de la alcohol deshidrogenasa 2, isocitocromo C, y enzimas responsables de la utilización de maltosa y galactosa.
Las células de mamífero son un hospedador particularmente preferido para expresar segmentos de nucleótidos que codifican inmunoglobulinas o fragmentos de las mismas (véase, por ejemplo, Winnacker, From Genes to Clones, VCH Publishers, N.Y., 1987). Se han desarrollado en la técnica varías líneas celulares hospedadoras adecuadas capaces de secretar proteínas heterólogas intactas, e incluyen las líneas celulares CHO, diversas líneas celulares COS, células HeLa, células L y líneas celulares de mieloma. Preferiblemente, las células son no-humanas. Los vectores de expresión de estas células pueden incluir secuencias de control de la expresión, tales como un origen de replicación, un promotor, un potenciador (Queen et al. (1986) Immunol. Rev. 89:49), y sitios con información de procesamiento necesarias, tales como sitios de unión al ribosoma, sitios de corte y empalme del ARN, sitios de poliadenilación, y secuencias terminadoras de la trascripción. Las secuencias de control de la expresión preferidas son promotores derivados de genes endógenos, citomegalovirus, SV40, adenovirus, papilomavirus bovinos y similares (véase, por ejemplo Co et al. (1992) J. Immunol. 1458:1149).
Un aspecto adicional de la presente invención es un kit para la detección de un gen o polipéptido de PTCH2 humano que comprende en un recipiente una molécula seleccionada entre el grupo compuesto por un ácido nucleico, un polipéptido o una proteína o un anticuerpo de acuerdo con la invención. Los componentes adecuados adicionales de dicho kit se determinan fácilmente por los especialistas en este campo así como las condiciones para el uso del mismo.
Además, la invención también se refiere al uso de un ácido nucleico descrito en la reivindicación 1 ó 25 en terapia génica. Además de dichas secuencias descritas específicamente, uno cualquiera de los exones descritos en este documento puede usarse para este fin. Para una revisión de los procedimientos de terapia génica véase Anderson, Science (1992) 256:808-813; Nabel y Felgner (1993) TIBTECH 11:211-217; Mitani y Caskey (1993) TIBTECH 11:162-166; Mulligan (1993) Science 926-932; Dillon (1993) TIBTECH 11: 167-175; Miller (1992) Nature 357:455-460; Van Brunt (1988) Biotechnology 6(10): 1149-1154; Vigne (1995) Restorative Neurology and Neuroscience 8: 35-36; Kremer y Perricaudet (1995) British Medical Bulletin 51(1) 31-44; Haddada et al. (1995) en Current Topics in Microbiology and Immunology Doerfler y Böhm (eds) Springer-Verlag, Heidelberg Alemania; y Yu et al Gene Theraphy (1994) 1:13-26.
El suministro del gen o el material génico al interior de la célula es la primera etapa crítica en el tratamiento con terapia génica de una enfermedad. Los especialistas en la técnica conocen bien una amplia diversidad de métodos de suministro. Dichos métodos incluyen, por ejemplo, suministro de genes basado en liposomas (Debs y Zhu (1993) documento WO 93/24640; Mannino y Gould-Fogerite (1988) Bio Techniques 6(7):682-691; Rose Patente de Estados Unidos Nº 5.279.833; Brignam (1991) documento WO 91/06309; y Felgner et al. (1987) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 7413-7414), y vectores retrovirales deficientes en replicación que tienen una secuencia polinucleotídica terapéutica como parte del gen retroviral (véase, por ejemplo, Miller et al. (1990) Mol. Cell. Biol. 10:4239 (1990; Kolberg (1992) J. NIH Res. 4:43, y Cornetta et al. Hum. Gene Ther. 2:215 (1991)). Los vectores retrovirales ampliamente usados incluyen los basados en el virus de leucemia murina. (MuLV), virus de la leucemia del mono gibbon (GaLV), virus de la inmunodeficiencia del simio (SIV), virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), y combinaciones de los mismos. Véase, por ejemplo, Buchscher et al. (1992) J. Virol. 66 (5) 2731-2739; Johann et al (1992) J. Virol. 66 (5):1635-1640 (1992); Sommerfelt et al., (1990) Virol. 176:58-59; Wilson et al (1989) J. Virol. 63:2374-2378; Miller et al., J. Virol. 65:2220-2224 (1991); Wong-Staal et al., documento PCT/US94/05700, y Rosenburg y Fauci (1993) en Fundamental Immunology, Third Edition Panl (ed) Raven Press, Ltd., Nueva York y las referencias del mismo, y Yu et al., Gene Therapy (1994) supra).
La presente invención también puede usarse en la industria farmacéutica. Por ejemplo, se proporcionará información que pueda posibilitar finalmente que las células del tejido fetal puedan transplantarse en pacientes que padecen, por ejemplo, enfermedad de Parkinson o cáncer, tal como BCC. (Para una breve revisión de los métodos de suministro de fármacos véase Langer 249:1 527-1533 (1990), Remington's Pharmaceutical Sciences, Mack Publishing Company, Philadelphia, PA, 17^{a} ed. (1985) etc.)
Descripción detallada de los dibujos
La Figura 1 muestra la secuencia genómica de la SEC ID Nº 5, en la que los exones y los intrones están indicados en la secuencia genómica del presente gen patched 2 humano. Sin embargo, los exones 12a y 12b analizados anteriormente no se muestran específicamente en la Figura 1, pero en su lugar se describen como secuencias diferentes SEC ID Nº 3 y SEC ID Nº 4, respectivamente. La Figura 2A describe una comparación de secuencia de aminoácido de la secuencia de PTCH2 (líneas superiores) y PTCH1 (líneas inferiores) humanas. Las líneas verticales indican aminoácidos idénticos, mientras que los puntos aminoácidos similares. La secuencia de PTCH2 presentada está compuesta por los clones de ADNc originales y los productos del análisis RACE 5'.
La Figura 2B es una representación de los acontecimientos de corte y empalme alternativo que producen diferentes extremos C-terminales. En la glándula parótida y el colon, el penúltimo exón y el último exón están canónicamente unidos entre sí. En cerebro fetal, sin embargo, el penúltimo exón con parte del intrón 3' funciona como el exón terminal. La secuencia intrónica se muestra por letras minúsculas y la exónica flanqueante por letras mayúsculas. Por encima de la secuencia de nucleótidos, se muestra la secuencia de aminoácidos deducida, y por debajo se encuentra la secuencia correspondiente de Ptch2 de ratón. Los dinucleótidos intrónicos conservados se muestran por letras en negrita y las señales de terminación se indican por asteriscos. Obsérvese la ausencia de conservación de la posición de los codones de terminación entre la secuencias de PTCH2 de ratón y humana. Las supuestas señales de poliadenilación también se muestran en este diagrama. La organización genómica se obtuvo analizando clones BAC que incluyen el gen de PTCH2.
La Figura 2C es una representación de las diferentes variaciones de trascritos con corte y empalme que incluyen las secuencias del exón 1 y el exón 2. Los exones 1 y 2 canónicos se muestran por recuadros y el intrón entre ellos por una línea continua. Los dinucleótidos GT y AG que abarcan las secuencias que se usan como intrones en trascritos individuales se indican por letras minúsculas. G, estructura genómica, obtenida de los segmentos de secuenciación de clones BAC que incluyen el gen de PTCH2; C, trascrito canónico; A, trascrito A (los exones 9 y 10 saltados de este producto no se muestran en el diagrama); B, trascrito B.
La Figura 3A es una fotomicrografía de campo oscuro del tumor BCC hibridado con la sonda antisentido marcada con ^{35}S que muestra la señal abundante para el ARNm de PTCH1 (granos brillantes) en todas las células tumorales BCC.
La Figura 3B describe la sobreexpresión del ARNm de PTCH2 en BCC y se expresa principalmente en contraste en las células basaloides en la periferia de las redes tumorales.
La Figura 3C es otro BCC que muestra una fuerte señal de ARNm de PTCH2 en la periferia de la red tumoral (Tu), mientras que no se detecta señal en la epidermis (Ep).
La Figura 3D son secciones del mismo tumor (C) hibridado con la sonda con sentido de PTCH2 que no muestra señal.
La Figura 3E muestra inmunorreactividad para Ki-67 (precipitado marrón) observado en la periferia, en las células que mostraron regulación positiva fuerte del ARNm de PTCH2.
La Figura 3F describe redes tumorales bajo un aumento de alta potencia que muestra una abundante señal de ARNm de PATCH2 (granos negros) en las células tumorales basaloides oscuras y una señal inferior en el centro (flecha). Barras (A-E), 24 \mum, y F, 6 \mum.
Parte experimental Materiales y métodos
En el presente contexto, se hace una referencia general a G. Zaphiropoulos et al., Cancer Res., vol. 59, pág. 787-792, 15 de febrero de 1999, que describe métodos útiles en el presente contexto. Todas las referencias mencionadas en la presente solicitud se incluyen por la presente en este documento como referencia. Los siguientes ejemplos no pretenden limitar el alcance de la invención sino que son simplemente una ilustración.
Los análisis RACE se realizaron esencialmente como se ha descrito anteriormente (Zaphiropoulos, P.G. y Toftgard, R. (1996): "cDNA cloning of a novel WD repeat protein mapping to the 9q22.3 chomosomal region", DNA Cell Biol. 15, 1049-1056) usando el kit Marathon (Promega). Las secuencias cebadoras usadas para RACE están disponibles a petición.
Las sondas de ARN marcadas con 35S de PTCH2 usadas para las hibridaciones in situ, que se realizaron como se ha descrito previamente (Unden et al., (1997) supra), corresponden a las posiciones 218 a 437 y 838 a 920 de la secuencia de PTCH2 de la SEC ID Nº 1.
Resultados y análisis
Para identificar componentes adicionales de la cascada de PTCH/SHH de acontecimientos de señalización, se buscó en la base de datos Incyte LifeSeq^{TM} (Incyte Pharmaceuticals Inc., Palo Alto, CA, USA) usando las secuencias de PTCH. Además de los clones que representan el ADNc de PTCH, se identificaron dos ADNc casi idénticos, de la glándula parótida y el colon, que contenían secuencias similares a, pero distintas de, el extremo 3' de PTCH. Por análisis RACE 5' usando ADNc de cerebro fetal se obtuvo información de secuencia adicional de estos trascritos (llamados PTCH2) y que corresponde al ADNc de longitud completa (Figura 2A). PTCH2 es idéntica al 57% con PTCH1, con una región significativamente variable presente entre los dominios transmembrana 6 y 7, e idéntica al 91% a la secuencia de Ptch2 de ratón recientemente publicada (Motoyama, J., Takabatake, T., Takeshima, K. y Hui, C. (1998): "Ptch2, a second mouse Patched gene is co-expressed with Sonic hedgehog", Nature Genet, 18, 104-106). Similar al gen de ratón, PTCH2 carece de la extensión C-terminal presente en la PTCH1 de seres humanos, de ratón y de pollo (Goodrich, L.V., Johnson, R.L., Milenkovic, L., McMahon, J.A. y Scott, M.P. (1996): "Conservation of the hedgehog/patched signalling pathway from flies to mice: Induction of a mouse patched by Hedgehog", Genes Dev. 10, 301-312, Mariago, V., Scott, M.P., Johnson, R.L., Goodrich, L.V. y Tabin, C.J. (1996): "Conservation in hedgehog signalling: Induction of a chicken patched homolog by Sonic hedgehog in the developing limb" Development 122, 1225-1233). Sin embargo, de acuerdo con la presente invención, se ha demostrado que el ADNc de PTCH2 humana termina 36 aminoácidos antes que la secuencia de Ptch2 de ratón. Además, cuando se realizó RACE 3' a partir del cerebro fetal, se identificó una región C-terminal alternativa. Esto tuvo una gran similitud estructural con la secuencia C-terminal de Ptch2 de ratón y se origina de la región genómica que se une a al menos 2 exones de PTCH2 (Figura 2B). Por lo tanto, en estos trascritos con corte y empalme alternativo, el penúltimo exón con un segmento del intrón 3' contiguo sirve como exón terminal.
Además, los trascritos humanos y de ratón diferían en la posición de las señales de terminación (la secuencia humana es 21 aminoácidos más larga), lo que sugiere una función no conservada, específica de la especie de este dominio C-terminal alternativo. El descubrimiento de dos posibles regiones C-terminales para PTCH2 es intrigante e implica un papel de este fenómeno en la modulación de la señalización. Los trascritos con corte y empalme alternativo adicionales también se identificaron por el análisis RACE (Figura 2C). El trascrito A carece de la secuencia que corresponde a los exones 9 y 10 de PTCH1 (comparaciones preliminares de las uniones intrón-exón de PTCH2 con PTCH1 indican una organización genómica similar), estando la fase de lectura abierta retenida en la unión del exón 8 al exón 11. Los exones 9 y 10 codifican la última parte del primer bucle extracelular y los dominios transmembrana 2 y 3 en la supuesta estructura de la proteína PTCH1. Además, este trascrito también carece de un segmento 5' del exón canónico 2, debido al uso de un sitio de corte y empalme 3' alternativo presente en este exón, manteniéndose la fase de lectura abierta. La consecuencia funcional de este corte y empalme alternativo aún no se conoce, pero es interesante observar que los bucles extracelulares en PTCH1 se supone que están implicados en la unión del ligando SHH (Marigo et al., (1996), Nature 384, supra; Stone et al., (1996), Nature 384, supra) y que la inserción de un nuevo casete en el intrón 9 del gen de PTCH1 de ratón está asociado con un fenotipo grave (Hahn, H., Wojnowski, L., Zimmer, A.M., Hall, J., Miller, G. y Zimmer, A. (1998): "Rhabdomyosarcomas and radiation hypersensitivity in a mouse model of Gorlin syndrome", Nature Med. 4, 619-622). Además, los exones 9 y 10 codifican parte del supuesto dominio sensible a esteroles (Osborne, T.F. y Rosenfeld, J.M. (1998): "Related membrane domains in proteins of sterol sensing and cell signalling provide a glimpse of treasures still buried within the dynamic realm of intracellular metabolic regulation", Curr. Opin. Lipidol. 9, 137-140) también encontrado en PTCH1, y que se ha implicado recientemente en la mediación del efecto modulador potente del colesterol sobre la señalización de SHH/PTCH (Cooper, M.K., Porter, J.A., Young, K.E., y Beachy, P.A. (1998): "Teratogen-mediated inhibition of target tissue response to Shh signalling" Science 280, 1603-1607). Por tanto, si PTCH2 también sirve como receptor para SHH y/o factores relacionados, la forma del receptor que carece de los exones 9 y 10 puede mostrar propiedades de señalización alteradas. El trascrito B contiene secuencias adicionales entre los exones canónicos 1 y 2, que se originan a partir del extremo 5' del intrón 1. La fase de lectura abierta que incluye la metionina iniciadora del exón 1 no se mantiene en este trascrito, lo que sugiere que, si este trascrito es funcional, la metionina del exón 2 o los codones que no son metionina se usan para producir un producto proteico, en similitud con lo que se ha propuesto para los productos con corte y empalme alternativo de PTCH1 humana (Hahn et al., Cell 85, supra). Por mapeo de híbridos de radiación, se localizó el gen de PTCH2 en el brazo corto del cromosoma 1, a diferencia de PTCH1 que reside en el cromosoma 9q22.3.
Se ha informado de que los homólogos de ratón y pez cebra de PTCH2 se expresan en un patrón parcialmente solapante con PTCH1 durante el desarrollo embrionario y que están inducidos por SHH (Motoyama et al., (1998) Nature Genet. 18, supra, Concordet, J.P., Lewis, K.E., Moore, J.W., Goodrich, L.V., Johnson, R. L., Scott, M.P., y Ingham, P.W. (1996): "Spatial regulation of a zebrafish patched homologue reflects the roles of sonic hedgehog and protein kinase A in a neural tube and somite patterning", Development 122, 2835-2846), lo que implica un papel en esta vía de señalización. Con estos antecedentes fue interesante analizar la expresión de PTCH2 en BCC que muestran regulación positiva uniforme de PTCH1 en todas las células tumorales (Undén et al., (1997) Cancer res. 57, supra). Se realizó hibridación in situ sobre seis BCC familiares y cuatro BCC esporádicos de diferentes subtipos histológicos. Se observó una fuerte señal positiva para el ARNm de PTCH2 exclusivamente en las células tumorales de todos los BCC. De forma notable, la señal fue uniformemente más fuerte en las células periféricas en empalizada de las redes tumorales (Figura 2). Estas células también mostraron una inmunotinción positiva para el marcador de proliferación celular Ki-67.
El descubrimiento de que en BCC que tienen mutaciones frecuentes en el gen de PTCH1, la expresión de los ARNm de PTCH2 está regulada positivamente, une ligeramente la nueva PTCH2 de acuerdo con la invención con la cascada de PTCH/SHH de acontecimiento de señalización. Por lo tanto, es probable que PTCH2 represente un gen diana de esta vía que está bajo la regulación negativa de PTCH1, precisamente como PTCH1 en sí misma. Además, esta observación sugiere fuertemente que PTCH2 tiene funciones diferentes a PTCH1 ya que la regulación positiva de la expresión de PTCH2 parece incapaz de compensar la proteína PTCH1 inactiva. Esta conclusión también está apoyada por la letalidad embrionaria temprana observada en ratones PTCH1 (-/-) 5,13) y la ausencia de heterogenicidad genética en el síndrome de Gorlin. Sin embargo, si PTCH2 puede bloquear la señalización constitutiva de SMO, o pudiera funcionar como receptor de SHH adicional, dependiendo posiblemente del corte y empalme alternativo, permanece como objeto de experimentación adicional.
<110> PHARMACIA & UPJOHN S.P.A KAROLINSKA INNOVATIONS AB
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<120> UN NUEVO COMPONENTE EN LA VÍA DE SEÑALIZACIÓN DE HEDGEHOG
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<130> 56822
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<140>
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<141>
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<160> 5
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<170> PatentIn Ver. 2.1
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<210> 1
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<211> 1146
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<212> PRT
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<213> HUMANO
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<400> 1
1
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3
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<210> 2
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<211> 3453
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<212> ADN
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<213> HUMANO
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<400> 2
5
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<210> 3
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<212> ADN
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<213> HUMANO
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<211> 12886
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<212> ADN
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<213> HUMANO
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<400> 5
8
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Claims (14)

1. Una secuencia de ácido nucleico aislada que codifica una proteína Ptch2 humana que tiene la SEC ID Nº 1.
2. Una secuencia de ácido nucleico aislada que codifica una variante de corte y empalme que tiene los aminoácidos 1-1142 de la SEC ID Nº 1 inmediatamente seguida por la secuencia TrpGlyAlaSerSerSerLeuProGlnSerPheAlaArg
ValThrThrSerMetThrValAlaIleHisProProProLeuProGlyAlaTyrIleHisProAlaProAspGluProProTrpSerProAlaAlaThr
SerSerGlyAsnLeuSerSerArgGlyProGlyProAlaThrGly.
3. Una proteína que tiene la SEC ID Nº 1 o que tiene los aminoácidos 1-1142 de la SEC ID Nº 1 inmediatamente seguida por la secuencia TrpGlyAlaSerSerSerLeuProGlnSerPheAlaArgValThrThrSerMetThrValAlaIleHisProProProLeu
ProGlyAlaTyrIleHisProAlaProAspGluProProTrpSerProAlaAlaThr SerSerGlyAsnLeuSerSerArgGlyProGlyProAla
ThrGly.
4. Una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-2, o una proteína de acuerdo con la reivindicación 3, para su uso como medicamento.
5. Uso de una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-2, o una proteína de acuerdo con la reivindicación 3, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de una afección que implique tumores, tal como BCC.
6. Un método de diagnóstico in vitro, en el que se usa una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-2, o una proteína de acuerdo con la reivindicación 3.
7. Un método para explorar, en el que se explora una biblioteca de compuestos candidatos adecuados para fármacos modificados, usando una proteína de acuerdo con la reivindicación 3 como compuesto principal.
8. Un vector que comprende una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-2.
9. Una célula recombinante que comprende un vector de acuerdo con la reivindicación 8.
10. Un anticuerpo que se une específicamente a una proteína de acuerdo con la reivindicación 3.
11. Una célula recombinante que expresa un anticuerpo de acuerdo con la reivindicación 10.
12. Un kit para la detección de un gen o proteína de Ptch2 humana, que comprende en un recipiente una molécula seleccionada entre el grupo compuesto por una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-2, una proteína de acuerdo con la reivindicación 3, o un anticuerpo de acuerdo con la reivindicación 11.
13. Uso de una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1-2, para la fabricación de un medicamento para su uso en terapia génica.
14. Uso in vitro de una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-2, como sonda, un cebador o un reactivo de diagnóstico.
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