ES2279981T3 - Proteinas quimericas activantes de colectina-complemento. - Google Patents
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Abstract
Una proteína de fusión que comprende i) Una primera secuencia polipeptídica derivada de una proteína que activa la ruta del complemento-lectina o de un homólogo funcional al menos 70% idéntico a dicha proteína que activa la ruta del complemento-lectina, donde dicha primera secuencia polipeptídica es capaz de activar la ruta del complemento-lectina; y ii) Una segunda secuencia polipeptídica derivada de una colectina o un homólogo funcional al menos 70% idéntico a dicha colectina, donde dicha segunda secuencia polipeptídica es capaz de asociarse a uno o más hidratos de carbono; donde dicha proteína que activa el complemento no es una colectina.
Description
Proteínas quiméricas activantes de
colectina-complemento.
La presente invención se refiere a una proteína
de fusión capaz de activar el sistema del complemento, a métodos
para producir dicha proteína de fusión así como a una composición
farmacéutica que comprende dicha proteína de fusión y métodos para
tratar enfermedades, en particular infecciones, con dichas proteínas
de fusión.
Los animales han desarrollado diferentes
estrategias complejas para protegerse contra las infecciones. Las
respuestas inmunitarias se pueden dividir en dos grupos
fundamentales, la respuesta inmunitaria adaptativa, en la que ha
tenido lugar una adaptación y en la que las células desempeñan una
parte dominante, y la respuesta inmunitaria innata, que está
disponible al instante y que se basa fundamentalmente en moléculas
presentes en los fluidos corporales. El sistema inmunitario innato
está operativo en el momento del nacimiento, a diferencia de la
defensa inmunitaria adaptativa que sólo durante la infancia adquiere
su potencial completo de protección del cuerpo (Janeway et
al., 1999).
Las bacterias que entran en el cuerpo por las
superficies mucosas o a través de piel no intacta son reconocidas
inmediatamente por las colectinas, una familia de proteínas solubles
que reconocen configuraciones características de hidratos de
carbono que están presentes en la superficie de los microbios y
ausentes en las células de los organismos pluricelulares. Así, las
colectinas pertenecen al amplio y diverso grupo de los receptores
de reconocimiento de patrones del sistema inmunitario innato. En los
seres humanos, se conocen tres colectinas, aunque pueden existir
otras: Las vacas, por ejemplo, tienen más. Las colectinas señalan a
las partículas a las que se unen, o bien para su captación por los
fagocitos o bien para la activación de la cascada del complemento,
pudiendo participar en su destrucción por ambas vías.
Todas las colectinas presentan la siguiente
arquitectura: tienen una región N-terminal rica en
cisteínas que parece formar puentes disulfuro intercatenarios,
seguida de una región similar al colágeno, una región de
\alpha-hélice doble y finalmente un dominio de
lectina de tipo C que es la región de reconocimiento del patrón y
se conoce como dominio de reconocimiento de hidratos de carbono
(CRD, por sus siglas en inglés). El nombre colectina se debe a la
presencia de dominios de colágeno y de lectina. La región de
\alpha-hélice doble inicia la trimerización de
los polipéptidos individuales para formar triples hélices de
colágeno, generándose así subunidades de colectina cada una de las
cuales consiste en 3 polipéptidos individuales, mientras que la
región N-terminal participa en la formación de
oligómeros de subunidades. Las diferentes colectinas presentan
estructuras características de orden superior, típicamente o bien
tetrámeros de subunidades o hexámeros de subunidades. El
agrupamiento de gran número de dominios de unión permite a las
colectinas unirse con gran avidez a las paredes de las células
microbianas, a pesar de la afinidad intrínseca relativamente baja de
cada CRD individual por los hidratos de carbono.
Los CRD de tipo C se encuentran en las proteínas
con abundante frecuencia, tanto en perspectiva filogenética como
funcional. Los diferentes CRD de las diferentes colectinas permiten
que éstas reconozcan un abanico de componentes característicos de
la superficie microbiana expuestos en diferentes microorganismos.
Los CRD terminales están distribuidos de tal modo que los sitios de
unión presentados por cada uno de los tres dominios que se unirán a
la superficie diana están separados por aproximadamente 53
\ring{A} (Sheriff et al., 1994; Weis & Drickamer,
1994). Esta propiedad de reconocimiento de patrones puede contribuir
además a la unión selectiva de superficies microbianas. La región
colagenosa o posiblemente las colas N-terminales de
las colectinas, son reconocidas por receptores específicos sobre
los fagocitos, y son el sitio de unión para proteasas asociadas que
se activan para iniciar la cascada del complemento tras la unión
del dominio CRD a un objetivo.
La lectina que se une a manano (MBL), también
llamada lectina que se une a manosa o proteína que se une a manosa,
es una colectina que ha adquirido gran interés como parte importante
del sistema inmunitario innato. MBL se une a estructuras
específicas de los hidratos de carbono encontradas sobre la
superficie de un abanico de microorganismos que incluye bacterias,
levaduras, protozoos parasitarios y virus, y se ha encontrado que
presentan actividad antibacteriana a través de la muerte mediada por
la activación de los componentes terminales del complemento lítico
o a través de la promoción de la fagocitosis. La deficiencia de MBL
está asociada con susceptibilidad a infecciones frecuentes por una
gama de microorganismos en la infancia y posiblemente también en la
edad adulta.
El CRD de MBL reconoce preferentemente hexosas
con grupos 3- y 4-OH ecuatoriales, tales como
manosa, glucosa, N-acetilmanosamina y
N-acetilglucosamina mientras que los hidratos de carbono que
no cumplen este requisito estérico, tales como la galactosa y la
D-fucosa, no se unen (Weiss et al., 1992). La
selectividad en cuanto a los hidratos de carbono es obviamente un
aspecto importante de la discriminación entre lo propio y lo no
propio por MBL y probablemente está mediada por la diferencia en la
prevalencia de restos de manosa y
N-acetilglucosamina sobre superficies microbianas,
siendo un ejemplo el alto contenido de manosa en la pared celular de
levaduras tales como Saccharomyces cerevisiae y Candida
albicans. Las estructuras de los hidratos de carbono en la
glicosilación de proteínas mamíferas se completan habitualmente con
ácido siálico, lo que impide la unión de MBL a estos hidratos de
carbono oligómeros e impide así el reconocimiento por MBL de las
propias superficies. Para el reconocimiento del objetivo también
puede ser importante la estructura trimérica.
El complemento es un grupo de proteínas
presentes en el plasma sanguíneo y en el fluido tisular que ayuda a
las defensas del cuerpo después de una infección. El sistema del
complemento está siendo activado a través de al menos tres rutas
diferenciadas, conocidas como la ruta clásica, la ruta alternativa y
la ruta de las MBLectinas (Janeway et al., 1999). La ruta
clásica se inicia cuando el factor 1 del complemento (C1) reconoce
la inmunoglobulina unida a la superficie. El complejo C1 está
compuesto por dos enzimas proteolíticas, C1r y C1s, y una parte no
enzimática, C1q, que contiene dominios que reconocen a las
inmunoglobulinas. C1q y MBL comparten características
estructurales, teniendo ambas moléculas apariencia de 'ramillete'
cuando se visualizan por microscopía electrónica. También, al igual
que C1q, MBL se encuentra formando un complejo con dos enzimas
proteolíticas, las proteasas asociadas a lectina que se une a manano
(MASP). Las tres rutas generan convertasa del factor 3 del
complemento (C3), lo que garantiza la unión de C3b a la superficie
de la superficie activante, es decir, el patógeno microbiano tomado
como objetivo. La conversión de C3 en C3b unida a la superficie es
crucial en el proceso de eliminar el patógeno microbiano por
fagocitosis o lisis (Janeway et al., 1999).
Se ha descrito que ciertos oligosacáridos de
Salmonella específicos de O-antígenos activan
el complemento en suero de cobayas deficientes en C4 y más tarde se
demostró que el serogrupo C de Salmonella reaccionaba con
MBL y por tanto, activaba el complemento por la ruta de las
MBLectinas, que también se conoce como la ruta MBL de activación del
complemento o la ruta de las lectinas.
Durante algún tiempo se ha creído que el sistema
inmunitario innato puede colaborar con el sistema inmunitario
adaptativo en la generación de respuestas inmunitarias específicas
como lo ejemplifica la respuesta de los anticuerpos después de la
infección o la vacunación. El grupo de Fearon ha demostrado que la
unión del fragmento C3d del factor C3 del complemento a un antígeno
proteico a través de fusión por tecnología génica puede multiplicar
por 1000 o más la inmunogénesis del antígeno. Todavía se están
esperando las aplicaciones de esta técnica o algún número de
modificaciones.
La importancia del sistema del complemento para
las respuestas inmunitarias normales fue sugerida por primera vez
por Pepys, quién descubrió una alteración en las respuestas de los
anticuerpos a los eritrocitos de oveja, un antígeno dependiente del
timo, en ratones que habían experimentado depleción de C3 con el
factor de veneno de cobra. La idea de una conexión entre la
inmunidad innata y la adaptativa estuvo avalada por informes que
demostraban una disminución de las respuestas primarias de los
anticuerpos a los antígenos dependientes del timo y una alteración
en el cambio de isotipo de IgM a IgG en pacientes y animales
experimentales con deficiencias de C4, C2 y C3. El mecanismo puede
implicar la generación de ligandos derivados de C3 para la unión del
antígeno o de complejos que contienen el antígeno a los receptores
del complemento sobre linfocitos B o células presentadoras del
antígeno. Así, el bloqueo de CR1 (CD35) y CR2 (CD21) en ratones con
anticuerpos específicos anti-CR1 y
anti-CR2 o con proteína receptora soluble redujo la
respuesta de los anticuerpos a la inmunización y los experimentos
con ratones deficientes en CR1 y CR2 muestran el requisito de estos
receptores para que haya respuestas a los antígenos dependientes
del timo. Además, los pacientes con deficiencia de adhesión
leucocitaria, que carecen de la molécula de adhesión CR3
(CD11/CD18), demuestran peores respuestas de los anticuerpos y fallo
en el cambio de isotipo IgM a IgG. El fragmento C3d derivado de C3,
un ligando específico de CR2, como se ha mencionado antes, presenta
un fuerte efecto coadyuvante dependiente de la dosis.
Las deficiencias de la ruta clásica del
complemento (C1, C2, C4 y C3) están asociadas a infecciones por
bacterias encapsuladas. La razón principal para esto probablemente
sea una disminución de la eficacia de los mecanismos de defensa
opsónicos y bactericidas causada por la disfunción del complemento.
Sin embargo, también podrían considerarse las respuestas
inmunitarias deficientes a antígenos de polisacáridos. La influencia
del complemento sobre las respuestas a los antígenos independientes
del timo no se ha estudiado a fondo y la información disponible es
contradictoria. Así, las bajas respuestas de los anticuerpos a
antígenos independientes del timo ha sido claramente documentada en
ratones que presentan depleción de C3 y perros deficientes en C3.
Por otro lado, algunos informes encuentran que los pacientes
deficientes en C3 parecen responder con normalidad a la inmunización
con vacunas de polisacáridos.
Las ficolinas, al igual que las MBL, son
lectinas que contienen un dominio similar a colágeno. Sin embargo,
a diferencia de MBL, tienen un dominio similar a fibrinógeno, que es
similar a las cadenas \beta y \gamma. Las ficolinas también
forman oligómeros de subunidades estructurales, cada uno de los
cuales está compuesto por tres polipéptidos idénticos de 35 kDa.
Cada subunidad se compone de una región rica en cisteínas en el
extremo amino-terminal; un dominio similar a
colágeno que consiste en repeticiones en tándem de secuencias de
tripletes Gly-Xaa-Yaa (donde Xaa e
Yaa representan cualquier aminoácido); una región de cuello; y un
dominio similar a fibrinógeno. Los oligómeros de las ficolinas
comprenden dos o más subunidades, especialmente se ha observado una
forma tetrámera de ficolina.
Algunas ficolinas desencadenan la activación del
sistema del complemento sustancialmente de forma similar a como lo
hace MBL. Este desencadenamiento del sistema del complemento da como
resultado la activación de nuevas serina proteasas (MASPs) como se
ha descrito anteriormente.
El dominio similar a fibrinógeno de varias
lectinas tiene una función similar al CRD de las lectinas de tipo
C, incluyendo MBL, así que funcionan como receptores de
reconocimiento de patrones para discriminar entre los patógenos y
ellas mismas.
Las ficolinas de suero tienen una especificidad
de unión común a GlcNAc (N-acetilglucosamina),
elastina o GaINAc
(N-acetil-galactosamina). El dominio
similar a fibrinógeno es responsable de la unión a hidratos de
carbono. En suero humano, se han identificado dos tipos de ficolina,
conocidos como L-ficolina (P35, ficolina L,
ficolina 2 o hucolina) y H-ficolina (antígeno de
Hakata, ficolina 3 o b2-macroglicoproteína
termolábil), y ambos tienen actividad de lectina. La
L-ficolina reconoce GlcNAc y la
H-ficolina reconoce GaINAc. Otra ficolina conocida
como ficolina M (proteína relacionada con P35, Ficolina 1 o Ficolina
A) no se considera que sea una proteína del suero y se encuentra en
los leucocitos y en los pulmones. La L-ficolina y la
H-ficolina activan la ruta del
complemento-lectina en asociación con las MASP.
M-Ficolina, L-ficolina y
H-ficolina tienen actividad de lectina independiente
del calcio.
Las MASP (serina proteasas asociadas a MBL) que
comprenden MASP-1, MASP-2 y
MASP-3 son enzimas proteolíticas que son
responsables de la activación de la ruta de las lectinas. La
estructura global de MASP se asemeja a la de los dos componentes
proteolíticos del primer factor en la ruta clásica del complemento
C1r y C1s. La ruta de las lectinas se inicia cuando MBL o una
ficolina asociada a MASP-1, MASP-2,
MASP-3 y sMAP se une a una estructura de hidrato de
carbono de la superficie, p. ej. de bacterias, levaduras, protozoos
parasitarios, virus. MASP-2 es el componente de la
enzima que - al igual que C1s en la ruta clásica - escinde los
componentes del complemento C4 y C2 para formar la C3 convertasa
C4bC2a, que es común para las vías de activación de la ruta de las
lectinas y de la ruta clásica.
MASP-1, MASP-2,
MASP-3 y sMAP son codificadas por dos genes; sMAP es
una forma truncada de MASP-2, y
MASP-3 se produce a partir del gen
MASP-1 por maduración por corte y empalme
alternativo. El gen MASP-1 tiene una región
codificante de la cadena H que es común para MASP-1
y MASP-3, que va seguida de repeticiones en tándem
de regiones que codifican el dominio de proteasa que son específicas
para MASP-3 y MASP-1.
La familia MASP se puede dividir en dos linajes
filogenéticos - los linajes de tipo TCN y de tipo AGY. El linaje de
tipo TCN, que incluye MASP-1, tiene un codón TCN
(donde N representa A, G, C o T) que codifica la serina del sitio
activo, la presencia de un puente disulfuro en un bucle de histidina
y exones de corte y empalme. En cambio, el linaje de tipo AGY, que
incluye MASP-2, MASP-3, C1r y C1s,
se caracteriza por un codón AGY (donde Y representa C o T) que
codifica la serina del sitio activo, la ausencia de un bucle de
histidina y un solo exón.
MASP-1, MASP-2,
MASP-3, C1r y C1s consisten en seis dominios: dos
dominios de C1r/C1s/Uegf/proteína morfogenética ósea 1 (CUB); un
dominio similar al factor de crecimiento epidérmico (EGF); dos
dominios de proteína de control del complemento (CCP) o
repeticiones de consenso cortas (SCRs), y un dominio de
serina-proteasa. Los restos de histidina (H), ácido
aspártico (D) y serina (S) son esenciales para la formación del
centro activo en el dominio de serina-proteasa.
Sólo MASP-1 tiene dos restos de cisteína adicionales
en una cadena ligera, que forman un puente disulfuro
(S-S) en el bucle de histidina, como se encuentra en
tripsina y quimotripsina. Al unirse MBL y ficolinas a hidratos de
carbono en la superficie de un patógeno, la forma de
pro-enzima de una MASP se escinde entre el segundo
CCP y el dominio de proteasa, lo que da como resultado una forma
activa que consiste en dos cadenas pesadas y ligeras de polipéptidos
(también conocidas como cadenas A y B).
La presente invención se refiere a proteínas de
fusión capaces de activar el sistema del complemento. Por
consiguiente, la presente invención se refiere a una proteína de
fusión que comprende una primera secuencia polipeptídica derivada
de una proteína que activa la ruta del
complemento-lectina (=proteína que activa el
complemento) o un homólogo funcional al menos 70% idéntico a dicha
proteína de la ruta que activa el
complemento-lectina, donde dicha primera secuencia
polipeptídica es capaz de activar la ruta del
complemento-lectina; y una segunda secuencia
polipeptídica derivada de una colectina o un homólogo funcional al
menos 70% idéntico a dicha colectina, donde dicha segunda secuencia
polipeptídica es capaz de asociarse a uno o más hidratos de carbono;
donde dicha proteína que activa el complemento no es una
colectina.
La proteína de fusión es adecuada para uso en el
tratamiento que consiste en la creación, reconstitución,
intensificación y/o estimulación de la actividad opsónica y/o
bactericida del sistema del complemento, es decir, en la
intensificación de la capacidad de la defensa inmunitaria de
reconocer y matar patógenos microbianos, y por consiguiente, la
invención se refiere a un medicamento que comprende la proteína de
fusión.
También, en otro aspecto, la invención se
refiere al uso de la proteína de fusión que se ha definido
anteriormente para la preparación de un medicamento para el
tratamiento de un cuadro clínico en un individuo que lo necesita,
que comprende administrar a dicho individuo la proteína de fusión
que se definió antes.
En otro aspecto, la invención se refiere al uso
de la proteína de fusión que se ha definido antes para la
preparación de un medicamento para el tratamiento o la profilaxis de
un cuadro clínico, tal como infección, en un individuo con
necesidad de ello, que comprende administrar a dicho individuo una
proteína de fusión que comprende una primera secuencia
polipeptídica derivada de una proteína capaz de formar oligómeros de
unidades estructurales; y una segunda secuencia polipeptídica
derivada de una lectina que se une a manosa (MBL) donde dicha
primera secuencia polipeptídica y dicha segunda secuencia
polipeptídica no se derivan de la misma proteína, y dicha proteína
de fusión es capaz de asociarse a una
serina-proteasa asociada a manosa (MASP).
Preferiblemente, la primera secuencia polipeptídica se deriva de
una proteína capaz de formar tetrámeros, pentámeros, y/o hexámeros
de una unidad estructural. En una realización preferida la primera
secuencia polipeptídica y la segunda secuencia polipeptídica son
como se describe más adelante.
Además, la invención se refiere a un método para
producir la proteína de fusión, así como una secuencia de ácido
nucleico aislada que codifica la proteína de fusión, un vector que
comprende la secuencia y una célula que comprende el vector.
La Figura 1 muestra la secuencia de
L-ficolina.
La Figura 2 muestra la secuencia de MBL.
La Figura 3 muestra un ejemplo de proteína de
fusión.
Las Figuras 4-8 muestran
plásmidos como los descritos en el Ejemplo 1
La Figura 9 muestra una alineación de proteínas
de fusión descrita en el Ejemplo 1.
La Figura 10 muestra transferencias Western como
las discutidas en el Ejemplo 2.
Colectinas: Una familia de proteínas de la
inmunidad innata que reconocen hidratos de carbono y están
estructuralmente relacionadas, que incluyen la lectina que se une a
manano (MBL) y las proteínas de los tensioactivos A y D. El nombre
hace referencia a la presencia de una región similar a colágeno y un
dominio de lectina de tipo C.
Complemento: Un grupo de proteínas presentes en
el plasma sanguíneo y en el fluido tisular que ayuda a las defensas
del cuerpo después de una infección. El complemento está implicado
en la destrucción de células foráneas y en la atracción de los
fagocitos a la zona de conflicto en el cuerpo.
Conjugado: Una asociación formada entre dos
compuesto, por ejemplo, entre un determinante inmunogénico y una
colectina y/o un homólogo de colectina o entre un determinante
inmunogénico y un sacárido. La asociación puede ser una asociación
física generada p. ej. por la formación de un enlace químico, tal
como p. ej. un enlace covalente.
CRD: Dominio de reconocimiento de hidratos de
carbono, un dominio de lectina de tipo C que se encuentra en el
extremo C-terminal de las colectinas.
Determinante inmunogénico: Una molécula, o parte
de ella, que contiene uno o más epitopos que estimularán el sistema
inmunitario de un organismo anfitrión para producir una respuesta
secretora, humoral y/o específica del antígeno celular, o una
molécula de DNA que es capaz de producir tal inmunogénico en un
vertebrado.
Respuesta inmunitaria: Respuesta a una
composición inmunogénica que comprende un determinante inmunogénico.
Una respuesta inmunitaria implica el desarrollo en el anfitrión de
una respuesta inmunitaria celular y/o humoral a la composición o
vacuna administrada en cuestión. Por lo general, una respuesta
inmunitaria implica la acción de uno o más de i) los anticuerpos
generados, ii) células B, iii) células T cooperantes, iv) células T
supresoras, v) células T citotóxicas y iv) complemento dirigido
específica o inespecíficamente a un determinante inmunogénico
presente en una composición inmunogénica administrada.
Lectina: Proteínas que se unen específicamente a
los hidratos de carbono.
MASP: Serina proteasa asociada a manosa
MBL: Lectina que se une a manano o lectina que
se une a manosa.
Complejo de subunidades=complejo de unidades
estructurales de tres proteínas de fusión individuales, similar al
complejo de subunidades discutido anteriormente para MBL y
ficolinas.
Un objeto de la presente invención es
proporcionar una proteína de fusión capaz de activar el sistema del
complemento con el fin de ayudar a prevenir o tratar enfermedades,
en particular, enfermedades infecciosas.
La proteína de fusión se compone de:
- una primera secuencia polipeptídica derivada
de una proteína que activa la ruta del
complemento-lectina (=proteína que activa el
complemento) o de un homólogo funcional al menos 70% idéntica a
dicha proteína de la ruta que activa el
complemento-lectina, donde dicha primera secuencia
polipeptídica es capaz de activar la ruta del
complemento-lectina; y
\newpage
- una segunda secuencia polipeptídica derivada
de una colectina o de un homólogo funcional al menos 70% idéntico a
dicha colectina, donde dicha segunda secuencia polipeptídica es
capaz de asociarse a uno o más hidratos de carbono;
donde dicha proteína que activa el complemento
no es una colectina.
Combinando una secuencia polipeptídica derivada
de una proteína que activa la ruta de las
lectinas-complemento y una secuencia polipeptídica
derivada de una colectina, es posible diseñar una proteína de fusión
que tiene afinidad por un abanico de hidratos de carbono,
preferiblemente hidratos de carbono bacterianos y virales y, al
mismo tiempo, tiene actividad activante del sistema del
complemento.
La primera secuencia polipeptídica puede
derivarse de cualquier proteína activante de la ruta de las
lectinas-complemento. Dicha proteína activante de
la ruta de las lectinas-complemento puede ser
proteína activante de la ruta de las
lectinas-complemento, de origen natural, así como
variantes u homólogos de dichas proteínas activantes de la ruta de
las lectinas-complemento, donde dichas variantes u
homólogos han mantenido la actividad de activación de la ruta
lectina-complemento.
Se prefiere que la proteína de fusión sea capaz
de formar complejos de subunidades, consistiendo cada uno en 3
proteínas de fusión como se han definido anteriormente.
También, la primera secuencia polipeptídica es
preferiblemente capaz de formar complejos oligómeros con la primera
secuencia polipeptídica de otra proteína de fusión, donde dicha otra
proteína de fusión puede ser idéntica a la primera proteína de
fusión. De este modo, se puede proporcionar el complejo oligómero de
dos o más proteínas de fusión o dos o más complejos de subunidades,
teniendo dicho complejo oligómero mayor avidez de unión hacia los
hidratos de carbono bacterianos o virales que la proteína de fusión
monómera. En una realización preferida, el complejo oligómero es un
complejo dímero de subunidades, más preferiblemente un complejo
trímero de subunidades, más preferiblemente un complejo tetrámero de
subunidades.
En una realización preferida, la proteína
activante de la ruta de las lectinas-complemento es
una ficolina como se ha definido anteriormente. Dicha ficolina
puede ser L-ficolina, H-ficolina o
M-ficolina o variantes u homólogos de la misma. En
una realización preferida la proteína activante de la ruta de las
lectinas-complemento es
L-ficolina.
En otra realización, la primera secuencia
polipeptídica comprende el dominio de fibrinógeno de la lectina,
y/o la región de cuello de un lectina, tal como una ficolina o uno
de sus homólogos o variantes.
Cuando la primera secuencia polipeptídica se
deriva de ficolina o de una variante o un homólogo de ficolina, se
prefiere que la primera secuencia polipeptídica comprenda el dominio
similar a colágeno de ficolina o de una variante u homólogo de
ficolina. En otra realización, se prefiere que la primera secuencia
polipeptídica comprenda el dominio rico en cisteínas de ficolina o
de una variante u homólogo de ficolina. Es aún más preferido que la
primera secuencia polipeptídica comprenda el dominio similar a
colágeno y el dominio rico en cisteínas de ficolina o de una
variante u homólogo de ficolina.
Es más preferido que la primera secuencia
polipeptídica comprenda el dominio similar a colágeno de
L-ficolina o de una variante u homólogo de
L-ficolina. En otra realización, es más preferido
que la primera secuencia polipeptídica comprenda el dominio rico en
cisteínas de L-ficolina o de una variante u homólogo
de L-ficolina. Es aun más preferido que la primera
secuencia polipeptídica comprenda la región
N-terminal de L-ficolina incluyendo
dos restos del aminoácido cisteína.
Es aún más preferido que la primera secuencia
polipeptídica comprenda el dominio similar a colágeno y el dominio
rico en cisteínas de L-ficolina o de una variante u
homólogo de L-ficolina.
En una realización preferida particular, la
ficolina tiene una de las secuencias enumeradas más abajo con
referencia a su base de datos y su número de acceso. Para cada una
de las secuencias, se describe la región rica en cisteína y la
región similar a colágeno.
El primer polipéptido preferiblemente comprende
al menos 10, tal como al menos 12, por ejemplo al menos 15, tal
como al menos 20, por ejemplo al menos 25, tal como al menos 30, por
ejemplo al menos 35, tal como al menos 40, por ejemplo al menos 50
restos de aminoácidos consecutivos de la proteína activante del
complemento o de una variante o un homólogo de dicha proteína.
Dicha variante u homólogo es preferiblemente al menos 70%, tal como
80%, por ejemplo 90%, tal como 95% idéntica a la proteína activante
del complemento.
La primera secuencia polipeptídica de la
proteína de fusión es preferiblemente capaz de activar la ruta de
las lectinas-complemento cuando se unen directa o
indirectamente a un objetivo, tal como una bacteria o un virus. En
una realización preferida, la primera secuencia polipeptídica es
capaz de asociarse con al menos una proteína MASP, tal como una
proteína MASP seleccionada del grupo que consiste en
MASP-1, MASP-2 y
MASP-3 u homólogos funcionales o variantes de los
mismos. En particular, el primer polipéptido es capaz de asociarse
con dicha al menos una proteína MASP cuando forma parte de la
proteína de fusión. De este modo, la primera secuencia
polipeptídica es capaz de proporcionar la proteína de fusión con
actividad activante del sistema del complemento.
En una realización preferida particular, la
primera secuencia polipeptídica comprende al menos los restos de
aminoácidos correspondientes a las posiciones 1-54
de la secuencia de L-Ficolina de la Figura 1, tal
como 1-55 de la secuencia de
L-ficolina de la Figura 1, tal como
1-69 de la secuencia de L-Ficolina
de a Figura 1, tal como 1-77 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1, tal como
1-90 de la secuencia de L-Ficolina
de la Figura 1, tal como 1-93 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1, tal como
1-131 de la secuencia de L-Ficolina
de la Figura 1, tal como 1-207 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1. En particular, la
primera secuencia polipeptídica comprende los restos de aminoácidos
seleccionados de: 1-55 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1, 1-54 de
la secuencia de L-Ficolina de la Figura 1,
1-50, o 1-77 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1. En una realización más
preferida, la primera secuencia polipeptídica tiene los restos de
aminoácidos seleccionados de: 1-55 de la secuencia
de L-Ficolina de la Figura 1, 1-54
de la secuencia de L-Ficolina de la Figura 1,
1-50, o 1-77 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1. En otra realización, la
primera secuencia polipeptídica comprende al menos los restos de
aminoácidos correspondientes a 60-90 de la
secuencia de L-Ficolina de la Figura 1, tal como
55-90 de la secuencia de L-Ficolina
de la Figura 1, tal como 54-92 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1.
Se prefiere que la primera secuencia
polipeptídica y la segunda secuencia polipeptídica se seleccionen
para incluir el motivo
X-X-G-X-X-G
al menos 5 veces, tal como al menos 7 veces, preferiblemente en una
secuencia consecutiva. Es más preferido seleccionar la primera
secuencia polipeptídica y la segunda secuencia polipeptídica de tal
manera que el motivo antes mencionado esté sustituido una vez por el
motivo
X-X-G-X-G.
En los motivos, X representa cualquier aminoácido distinto de
Glicina, y G significa glicina.
La segunda secuencia polipeptídica es
preferiblemente capaz de asociarse con uno o más hidratos de
carbono. Esto se puede conseguir incorporando al menos el dominio
de la colectina que reconoce el hidrato de carbono en cuestión. Por
consiguiente, la segunda secuencia polipeptídica preferiblemente
comprende el dominio CRD de una colectina o uno de sus homólogos o
variantes.
Preferiblemente la colectina se selecciona del
grupo que consiste en MBL (lectina que se une a manosa),
SP-A (proteína A de tensioactivo pulmonar),
SP-D (proteína D de tensioactivo pulmonar), BK (o
BC, conglutinina bovina) y CL-43
(colectina-43). Lo más preferiblemente, la colectina
es MBL.
En una realización preferida particular, la
colectina tiene una de las secuencias enumeradas más adelante con
referencia a su base de datos y nº de acceso.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
El segundo polipéptido preferiblemente comprende
al menos 10, tal como al menos 12, por ejemplo al menos 15, tal
como al menos 20, por ejemplo al menos 25, tal como al menos 30, por
ejemplo al menos 35, tal como al menos 40, por ejemplo al menos 50
restos de aminoácidos consecutivos de la colectina o de una variante
o un homólogo de dicha proteína. Dicha variante u homólogo es
preferiblemente al menos 70%, tal como 80%, por ejemplo 90%, tal
como 95% idéntica a la colectina.
En una realización preferida, la segunda
secuencia polipeptídica comprende el dominio CRD de MBL o la región
de cuello de MBL o el dominio similar a colágeno de MBL. Más
preferiblemente, El segundo polipéptido comprende la región de
cuello y el dominio CRD de MBL. En una realización muy preferida, la
segunda secuencia polipeptídica comprende el dominio similar a
colágeno, la región de cuello y el dominio CRD de MBL. MBL es como
se ha definido anteriormente.
Preferiblemente, la segunda secuencia
polipeptídica comprende al menos los aminoácidos
170-200 de la secuencia de MBL mostrada en la
Figura 2, tal como al menos los aminoácidos 160-200
de la secuencia de MBL mostrada en la Figura 2, tal como al menos
los aminoácidos 150-200 de la secuencia de MBL
mostrada en la Figura 2, tal como al menos los aminoácidos
140-200 de la secuencia de MBL mostrada en la Figura
2, tal como al menos los aminoácidos 130-200 de la
secuencia de MBL mostrada en la Figura 2, tal como al menos los
aminoácidos 120-200 de la secuencia de MBL mostrada
en la Figura 2, tal como al menos los aminoácidos
110-200 de la secuencia de MBL mostrada en la
Figura 2, tal como al menos los aminoácidos 100-200
de la secuencia de MBL mostrada en la Figura 2, tal como al menos
los aminoácidos 90-200 de la secuencia de MBL
mostrada en la Figura 2, tal como al menos los aminoácidos
80-200 de la secuencia de MBL mostrada en la Figura
2, tal como al menos los aminoácidos 70-200 de la
secuencia de MBL mostrada en la Figura 2, tal como al menos los
aminoácidos 60-200 de la secuencia de MBL mostrada
en la Figura 2, tal como al menos los aminoácidos
80-228 de la secuencia de MBL mostrada en la Figura
2.
Preferiblemente, la segunda secuencia
polipeptídica comprende los aminoácidos 80-228 de
SEQ ID. NO 2.
En una realización preferida, la segunda
secuencia polipeptídica es capaz de asociarse con al menos una
proteína MASP, tal como una proteína MASP seleccionada del grupo
que consiste en MASP-1, MASP-2 y
MASP-3 u homólogos funcionales o variantes de los
mismos. En particular, el segundo polipéptido es capaz de asociarse
con dicha al menos una proteína MASP cuando forma parte de la
proteína de fusión. De este modo, la segunda secuencia
polipeptídica es capaz de proporcionar la proteína de fusión con
actividad activante del sistema del complemento. En una realización
más preferida, la segunda secuencia polipeptídica comprende una
secuencia de aminoácidos seleccionada de: 56-228 de
SEQ ID. NO 2, 55-228 de SEQ ID. NO 2,
54-228 de SEQ ID. NO 2, y 50-228 de
SEQ ID. NO 2.
En una realización más preferida, la segunda
secuencia polipeptídica tiene una secuencia de aminoácidos
seleccionada de: 56-228 de SEQ ID. NO 2,
55-228 de SEQ ID. NO 2, 54-228 de
SEQ ID. NO 2, y 50-228 de SEQ ID. NO 2.
En otra realización, El segundo polipéptido
comprende la región rica en cisteínas de la colectina, tal como la
región N-terminal de la colectina.
La proteína de fusión comprende el primer y el
segundo polipéptido conectados entre sí, opcionalmente a través de
una región enlazadora: En una realización preferida, la primera
secuencia polipeptídica está colocada en posición
N-terminal en la proteína de fusión y la segunda
secuencia polipeptídica está colocada en posición
C-terminal.
Ejemplos específicos de los componentes de las
proteínas de fusión son:
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas y el dominio similar a colágeno de
L-ficolina y el dominio CRD de MBL.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de L-ficolina y el dominio similar
a colágeno, la región de cuello y el dominio CRD de MBL.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas y el dominio similar a colágeno de
H-ficolina y el dominio CRD de MBL.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de H-ficolina y el dominio similar
a colágeno, la región de cuello y el dominio CRD de MBL.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas y el dominio similar a colágeno de
M-ficolina y el dominio CRD de MBL.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de M-ficolina y el dominio similar
a colágeno, la región de cuello y el dominio CRD de MBL.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de MBL, y el dominio CRD de ficolina.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de MBL y el dominio similar a colágeno, la región
de cuello y el dominio CRD de ficolina.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas y el dominio similar a colágeno de
L-ficolina y el dominio CRD de la proteína D
asociada al tensioactivo pulmonar.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de L-ficolina y el dominio similar
a colágeno, la región de cuello y el dominio CRD de la proteína D
asociada al tensioactivo pulmonar.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas y el dominio similar a colágeno de una ficolina y
el dominio CRD de una colectina-43.
- Una proteína de fusión que comprende la región
rica en cisteínas de una ficolina y el dominio similar a colágeno,
la región de cuello y el dominio CRD de una
colectina-43.
Una proteína de fusión que comprende la
secuencia de aminoácidos definida por la secuencia indicada en la
Figura 3, o un homólogo funcional de la misma, preferiblemente una
proteína de fusión que consiste en la secuencia de aminoácidos que
se indica en la Figura 3. En otra realización, la proteína de fusión
tiene la secuencia de aminoácidos 1-50 de la
secuencia de aminoácidos indicada en la Figura 1 y la secuencia de
aminoácidos 54-228 de la secuencia de aminoácidos
indicada en la Figura 2.
Como se ha discutido más arriba, la proteína de
fusión es preferiblemente capaz de formar complejos de subunidades
así como oligómeros de complejos de subunidades. Preferiblemente, la
proteína de fusión forma sustancialmente sólo oligómeros trímeros,
tetrámeros, pentámeros y hexámeros de subunidades, tal como
oligómeros trímeros, tetrámeros y pentámeros de subunidades, tal
como oligómeros trímeros o tetrámeros de subunidades, más
preferiblemente sustancialmente sólo oligómeros tetrámeros de
subunidades, con el fin de obtener una composición más homogénea de
proteínas de fusión.
En el presente contexto los términos homólogo o
variante y homólogos funcionales se usan como sinónimos, donde un
homólogo de una proteína presenta una o más sustituciones,
deleciones y/o adiciones de uno o más restos de aminoácidos. Los
fragmentos son un subgrupo de homólogos que son truncaciones de la
proteína.
Un homólogo de la proteína puede comprender una
o más sustituciones conservadas de aminoácidos, tal como al menos 2
sustituciones conservadas de aminoácidos, por ejemplo al menos 3
sustituciones conservadas de aminoácidos, tal como al menos 5
sustituciones conservadas de aminoácidos, por ejemplo al menos 10
sustituciones conservadas de aminoácidos, tal como al menos 20
sustituciones conservadas de aminoácidos, por ejemplo al menos 50
sustituciones conservadas de aminoácidos tal como al menos 75
sustituciones conservadas de aminoácidos, por ejemplo al menos 100
sustituciones conservadas de aminoácidos. Sustituciones conservadas
de aminoácidos, dentro del contexto de la presente invención, es la
sustitución de un aminoácido dentro de un grupo predeterminado de
aminoácidos por otro aminoácido dentro del mismo grupo
predeterminado, que presenta características similares o
sustancialmente similares. Dichos grupos predeterminados son, por
ejemplo:
cadenas laterales polares (Asp, Glu, Lys, Arg,
His, Asn, Gln, Ser, Thr, Tyr, y Cys,)
cadenas laterales no polares (Gly, Ala, Val,
Leu, Ile, Phe, Trp, Pro, y Met)
cadenas laterales alifáticas (Gly, Ala Val, Leu,
Ile)
cadenas laterales cíclicas (Phe, Tyr, Trp, His,
Pro)
cadenas laterales aromáticas (Phe, Tyr, Trp)
cadenas laterales ácidas (Asp, Glu)
cadenas laterales básicas (Lys, Arg, His)
cadenas laterales amídicas (Asn, Gln)
cadenas laterales hidroxílicas (Ser, Thr)
cadenas laterales que contienen azufre (Cys,
Met), y
aminoácidos que son ácidos
monoamino-dicarboxílicos o ácidos
monoamino-monocarboxi-monoamidocarboxílicos
(Asp, Glu, Asn, Gln).
\newpage
Las sustituciones conservadas se pueden
introducir en cualquier posición de una proteína preferida. Sin
embargo, puede ser deseable también introducir sustituciones no
conservadas. Una sustitución no conservada dará lugar a la
formación de un homólogo de una proteína capaz de ejercer una
función similar a la función de dicha proteína. Tal sustitución
podría, por ejemplo i) diferir sustancialmente en hidrofobia, por
ejemplo la sustitución de un resto hidrófilo tal como Arg, Lys, Trp
o Asn por un resto hidrófobo (Val, Ile, Leu, Phe o Met), o la
sustitución de un resto hidrófobo por un resto hidrófilo tal como
Thr, Ser, His, Gln, Asn, Lys, Asp, Glu o Trp; y/o ii) diferir
sustancialmente en su efecto sobre la orientación de la cadena
peptídica tal como la sustitución de Pro o Gly por otro resto, o
viceversa; y/o iii) diferir sustancialmente en carga eléctrica, por
ejemplo la sustitución de un resto cargado positivamente tal como
Lys, His o Arg por un resto cargado negativamente tal como Glu o
Asp (y viceversa); y/o iv) diferir sustancialmente en impedimento
estérico, por ejemplo la sustitución de un resto con una cadena
lateral pequeña, p. ej. Ala, Gly o Ser por uno más voluminoso tal
como His, Trp, Phe o Tyr (y viceversa).
En una realización adicional, la presente
invención se refiere a homólogos de una proteína preferida, donde
tales homólogos comprenden aminoácidos sustituidos que tienen
índices hidrófilos o hidropáticos que están dentro de +/-2.5, por
ejemplo dentro de +/- 2.3, tal como dentro de +/- 2.1, por ejemplo
dentro de +/- 2.0, tal como dentro de +/-1.8, por ejemplo dentro de
+/- 1.6, tal como dentro de +/- 1.5, por ejemplo dentro de +/- 1.4,
tal como dentro de +/-1.3 por ejemplo dentro de +/- 1.2, tal como
dentro de +/- 1.1, por ejemplo dentro de +/- 1.0, tal como dentro
de +/- 0.9, por ejemplo dentro de +/- 0.8, tal como dentro de +/-
0.7, por ejemplo dentro de +/- 0.6, tal como dentro de +/- 0.5, por
ejemplo dentro de +/- 0.4, tal como dentro de +/-0.3, por ejemplo
dentro de +/- 0.25, tal como dentro de +/- 0.2 del valor del
aminoácido que se ha sustituido.
La importancia de los índices de aminoácidos
hidrófilos e hidropáticos en la concesión de función biológica
interactiva a una proteína es bien entendida en la técnica (Kyte
& Doolittle, 1982 y Hopp, Patente de EE.UU. nº 4,554,101, cada
una de las cuales se incorpora en la presente memoria por
referencia).
Los valores de los índices hidropáticos de los
aminoácidos que se utilizan aquí son: isoleucina (+4,5); valina
(+4,2); leucina (+3,8); fenilalanina (+2,8); cisteína/cistina
(+2,5); metionina (+1,9); alanina (+1,8); glicina (-0,4);
treonina
(-0,7); serina (-0,8); triptófano (-0,9); tirosina (-1,3); prolina (-1,6); histidina (-3,2); glutamato (-3,5); glutamina (-3,5); aspartato (-3,5); asparagina (-3,5); lisina (-3,9); y arginina (-4.5) (Kyte & Doolittle, 1982).
(-0,7); serina (-0,8); triptófano (-0,9); tirosina (-1,3); prolina (-1,6); histidina (-3,2); glutamato (-3,5); glutamina (-3,5); aspartato (-3,5); asparagina (-3,5); lisina (-3,9); y arginina (-4.5) (Kyte & Doolittle, 1982).
Los valores de hidrofilia de los aminoácidos
son: arginina (+3,0); lisina (+3,0); aspartato (+3,0.+-.1);
glutamato (+3,0.+-.1); serina (+0,3); asparagina (+0,2); glutamina
(+0,2); glicina (0); treonina (-0,4); prolina (-0,5.+-.1); alanina
(-0,5); histidina (-0,5); glicina (-1,0); metionina (-1,3); valina
(-1,5); leucina (-1,8); isoleucina (-1,8); tirosina (-2,3);
fenilalanina (-2,5); triptófano (-3,4) (patente de EE.UU.
4,554,101).
Por lo tanto, en una realización, la sustitución
de aminoácidos se puede hacer basándose en su valores de hidrofobia
e hidrofilia y la similitud relativa de los sustituyentes de la
cadena lateral de los aminoácidos, incluyendo la carga, el tamaño y
similares. Ejemplos de sustituciones de aminoácidos que tienen en
cuenta algunas de las características anteriores son bien conocidos
por los expertos en la técnica, e incluyen: arginina y lisina;
glutamato y aspartato; serina y treonina; glutamina y asparagina; y
valina, leucina e isoleucina.
Más aún, un homólogo puede comprender la adición
o deleción de un aminoácido, por ejemplo la adición o deleción de 2
a 100 aminoácidos, tal como de 2 a 50 aminoácidos, por ejemplo de 2
a 20 aminoácidos, tal como de 2 a 10 aminoácidos, por ejemplo de 2
a 5 aminoácidos, tal como de 2 a 3 aminoácidos. Sin embargo, las
adiciones de más de 100 aminoácidos, tal como adiciones de 100 a
500 aminoácidos, también están comprendidas dentro de la presente
invención.
Las proteínas que comparten al menos alguna
homología con una proteína preferida se considera que caen dentro
del alcance de la presente invención cuando son al menos
aproximadamente 40 por ciento homólogas, o preferiblemente
idénticas, siendo la proteína preferida, tal como al menos
aproximadamente 50 por ciento homólogas, o preferiblemente
idénticas, por ejemplo al menos aproximadamente 60 por ciento
homólogas, o preferiblemente idénticas, tal como al menos
aproximadamente 70 por ciento homólogas, o preferiblemente
idénticas, por ejemplo al menos aproximadamente 75 por ciento
homólogas, o preferiblemente idénticas, tal como al menos
aproximadamente 80 por ciento homólogas, o preferiblemente
idénticas, por ejemplo al menos aproximadamente 85 por ciento
homólogas, o preferiblemente idénticas, tal como al menos
aproximadamente 90 por ciento homólogas, o preferiblemente
idénticas, por ejemplo al menos 92 por ciento homólogas, o
preferiblemente idénticas, tal como al menos 94 por ciento
homólogas, o preferiblemente idénticas, por ejemplo al menos 95 por
ciento homólogas, o preferiblemente idénticas, tal como al menos 96
por ciento homólogas, o preferiblemente idénticas, por ejemplo al
menos 97 por ciento homólogas, o preferiblemente idénticas, tal
como al menos 98 por ciento homólogas, o preferiblemente idénticas,
por ejemplo al menos 99 por ciento homólogas, o preferiblemente
idénticas, con la proteína preferida.
Las proteínas preferidas son proteínas
activantes del complemento que comprenden colectinas y lectinas y
homólogos de los mismos.
Un homólogo de una colectina, incluida MBL,
dentro del alcance de la presente invención se entenderá que es
cualquier proteína capaz de ejercer una función similar a la función
de una colectina y que comprende una o más de las variaciones
descritas más arriba. En particular, esa función es la capacidad de
activar el complemento tras unirse a uno o más hidratos de
carbono.
Los términos homólogos funcionales de colectina
usados aquí se refieren a equivalentes funcionales o un fragmento
de colectina que comprende una secuencia de aminoácidos
predeterminada, y tales homólogos se definen como:
a) Un homólogo que comprende una secuencia de
aminoácidos capaz de reconocer y unirse a glucanos,
lipofosfoglicanos y glicoinositol fosfolípidos que contienen azúcar
con grupos 3- o 4-hidroxilo en el anillo de piranosa
(i.e. Man, Glc, Fuc o GlcNAc) ya sea a
solas o cuando está complejándose con la subunidad como se ha
descrito más arriba y/o
b) Un homólogo que comprende la secuencia de
aminoácidos capaz de formar asociación con un componente de la ruta
de las lectinas/MBL tal como unión a MASP-1,
MASP-2, MASP-3 y/o sMAP ya sea a
solas o cuando está complejándose con la subunidad como se ha
descrito más arriba, donde dicha unión da como resultado la
activación de la ruta de las lectinas/MBL y/o
c) Un homólogo que comprende una secuencia de
aminoácidos capaz de formar, por el dominio similar a colágeno, una
estructura oligómera de dos o más subunidades, donde una subunidad
comprende tres polipéptidos idénticos de una región rica en
cisteínas, un dominio similar a colágeno, una región de cuello y un
dominio de reconocimiento de hidratos de carbono.
Un homólogo de una lectina, incluidas las
ficolinas, dentro del alcance de la presente invención se entenderá
que es cualquier proteína capaz de ejercer una función similar a la
función de una lectina y que comprende una o más de las variaciones
descritas más arriba. En particular, esa función es la capacidad de
activar el complemento que se une a uno o más hidratos de
carbono.
Los términos homólogos funcionales de lectina
usados aquí se refieren a equivalentes funcionales de un fragmento
de lectina que comprende una secuencia de aminoácidos
predeterminada, y tales homólogos se definen como:
a) Un homólogo que comprende una secuencia de
aminoácidos capaz de reconocer y unirse a
N-acetil-glucosamina (GlcNAc), o
N-acetil-galactosamina (GalNAc), o
elastina ya sea a solas o cuando está complejada con una subunidad
como se ha descrito más arriba y/o
b) Un homólogo que comprende la secuencia de
aminoácidos capaz de formar asociación con un componente de la ruta
de las lectinas/MBL tal como unión a MASP-1,
MASP-2, MASP-3 y/o sMAP ya sea a
solas o cuando está complejándose con la subunidad como se ha
descrito más arriba, donde dicha unión da como resultado la
activación de la ruta de las lectinas/MBL y/o
c) Un homólogo que comprende una secuencia de
aminoácidos capaz de formar, por el dominio similar a colágeno, una
estructura oligómera de dos o más subunidades, donde una subunidad
comprende tres polipéptidos idénticos de una región rica en
cisteínas, un dominio similar a colágeno, una región de cuello y un
dominio de similar a fibrinógeno.
La activación de la ruta de las lectinas/MBL,
i.e. la actividad de la proteína de fusión para activar el sistema
del complemento se puede analizar evaluando el efecto lisante C4 de
la proteína de fusión o complejos de subunidades u oligómeros de
complejos de los mismos por el siguiente método que comprende las
etapas de:
- aplicar una muestra que comprende una cantidad
predeterminada de proteína de fusión así como una cantidad
predeterminada de MASP-1, MASP-2 o
MASP-3, aplicar al menos un factor del complemento a
la muestra,
- detectar la cantidad de factores del
complemento escindidos,
- correlacionar la cantidad de factores del
complemento escindidos con la cantidad de proteína, y
- determinar la actividad de la proteína de
fusión.
El factor del complemento usado preferiblemente
en el presente método es un factor del complemento escindible por
el complejo MBUMASP-2, tal como C4. Sin embargo, el
factor del complemento también se puede seleccionar de C3 y C5.
El factor del complemento escindido puede ser
detectado por diversos medios, tal como por medio de anticuerpos
dirigidos al factor del complemento escindido.
El ensayo se lleva a cabo en condiciones que
minimizan o eliminan la interferencia de la ruta clásica de
activación del complemento y la ruta alternativa de activación del
complemento.
\newpage
Preferiblemente, un homólogo de una colectina
y/o una lectina presenta dos de las funciones definidas más arriba,
más preferiblemente tres de las funciones definidas más arriba.
La proteína de fusión puede ser preparada por
cualquier método adecuado conocido por el experto en la técnica. A
continuación, se describen varios de los métodos de preparación de
la proteína de fusión, sin embargo la invención no se limita a esos
métodos.
Cuando es apropiado, en particular dependiendo
del tamaño de la proteína de fusión, la proteína de fusión puede
ser producida por síntesis. Los métodos para la producción de
péptidos por síntesis son bien conocidos en la técnica. Se pueden
encontrar descripciones detalladas así como consejos prácticos para
producir péptidos por síntesis en Synthetic Peptides: A User's
Guide (Advances in Molecular Biology), Grant G. A. ed., Oxford
University Press, 2002, o en: Pharmaceutical Formulation:
Development of Peptides and Proteins, Frokjaer and Hovgaard eds.,
Taylor y Francis, 1999.
Las proteínas de fusión de la invención se
producen preferiblemente mediante el uso de la tecnología del DNA
recombinante. La secuencia de DNA que codifica cada parte de la
proteína de fusión puede prepararse por fragmentación de las
secuencias de DNA que codifican la proteína de longitud completa,
(DNA genómico o cDNA) de la que se deriva la parte de la proteína
de fusión, usando DNAasa I de acuerdo con un protocolo clásico
(Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory manual. 2ª ed.,
CSHL Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989). Después se pueden unir
las secuencias de DNA obtenidas que codifican las partes
individuales de la proteína de fusión.
La secuencia de DNA también se puede preparar
por reacción en cadena de la polimerasa usando cebadores
específicos, como se describe, por ejemplo, en la patente de EE.UU.
4,683,202 o Saiki et al., 1988, Science
239:487-491.
La secuencia de DNA que codifica una proteína de
fusión de la invención puede prepararse por síntesis empleando
métodos clásicos establecidos, p. ej. el método de la fosfamidina
descrito por Beaucage y Caruthers, 1981, Tetrahedron Lett.
22:1859-1869, o el método descrito por Matthes et
al., 1984, EMBO J. 3:801-805. De acuerdo con el
método de la fosfamidina, se sintetizan oligonucleótidos, p. ej. en
un sintetizador automático de DNA, y se purifican, reasocian, ligan
y clonan en vectores adecuados.
Luego, la secuencia de DNA se puede insertar en
un vector de expresión recombinante, que puede ser cualquier vector
que pueda someterse convenientemente a procedimientos de DNA
recombinante. La elección del vector dependerá habitualmente de la
célula anfitriona en la que va a ser introducido. Así, el vector
puede ser un vector que se replica autónomamente, es decir un
vector que existe como una entidad extracromosómica, cuya
replicación es independiente de la replicación cromosómica, p. ej.
un plásmido. Alternativamente, el vector puede ser uno que, cuando
se introduce en una célula anfitriona, se integra en el genoma de la
célula anfitriona y se replica junto con el o los cromosomas en los
que se ha integrado.
En el vector, la secuencia de DNA que codifica
una proteína de fusión deberá estar operativamente conectada a una
secuencia promotora adecuada. El promotor puede ser cualquier
secuencia de DNA que presente actividad transcripcional en la
célula anfitriona de elección y se puede derivar de genes que
codifican proteínas ya sea homólogas o heterólogas para la célula
anfitriona. Ejemplos de promotores adecuados para dirigir la
transcripción de la secuencia de DNA codificante en células
mamíferas son el promotor de SV 40 (Subramani et al., 1981,
Mol. Cell Biol. 1:854-864), el promotor de
MT-1 (gen de metalotioneína)(Palmiter et al.,
1983, Science 222: 809-814) o el promotor tardío
principal de adenovirus 2. Un promotor adecuado para uso en células
insectiles es el promotor de polihedrina (Vasuvedan et al.,
1992, FEBS Lett. 311:7-11). Los promotores adecuados
para uso en células anfitrionas de levadura incluyen promotores de
genes glicolíticos de levadura (Hitzeman et al., 1980, J. Biol.
Chem. 255:12073-12080; Alber y Kawasaki, 1982, J.
Mol. Appl. Gen. 1: 419-434) o los genes de alcohol
deshidrogenasa (Young et al., 1982, en Genetic Engineering of
Microorganisms for Chemicals, Hollaender et al, eds., Plenum
Press, New York), o los promotores de TP11 (Patente de EE.UU.
4,599,311) o ADH2-4c (Russell et al., 1983,
Nature 304:652-654). Los promotores adecuados para
uso en células hospedantes de hongos filamentosos son, por ejemplo,
el promotor de ADH3 (McKnight et al., 1985, EMBO J.
4:2093-2099) o el promotor de tpiA.
La secuencia de DNA codificante también puede
conectarse operativamente a un terminador adecuado, tal como el
terminador de la hormona humana del crecimiento (Palmiter et
al., op. cit.) o (para anfitriones fúngicos) los promotores de
TPI1 (Alber and Kawasaki, op. cit.) o ADH3 (McKnight et al.,
op. cit.). El vector puede comprender además elementos tales como
señales de poliadenilación (p. ej. de SV 40 o la región E1b de
adenovirus 5), secuencias potenciadoras de la transcripción (p. ej.
el potenciador de SV 40) y secuencias potenciadoras de la traducción
(p. ej. las que codifican RNAs de adenovirus VA).
\newpage
El vector de expresión recombinante puede
comprender además una secuencia de DNA que permite al vector
replicarse en la célula anfitriona en cuestión. Un ejemplo de dicha
secuencia (cuando la célula anfitriona es una célula de mamífero)
es el origen de replicación de SV 40. El vector también puede
comprender un marcador seleccionable, p. ej. un gen cuyo producto
suple un defecto en la célula anfitriona, tal como el gen que
codifica dihidrofolato reductasa (DHFR) o uno que confiere
resistencia a un fármaco, p. ej. neomicina, hidromicina o
metotrexato.
Los procedimientos usados para ligar las
secuencias de DNA que codifican las proteínas de fusión, el promotor
y el terminador, respectivamente, y para insertarlas en vectores
adecuados que contienen la información necesaria para la
replicación, son bien conocidas por el experto en la técnica (véase
por ejemplo, Sambrook et al., op. cit).
La síntesis de la proteína de fusión
recombinante puede hacerse usando cultivos in vitro e in
vivo. Preferiblemente, el cultivo de células anfitrionas es un
cultivo de células anfitrionas eucarióticas. Por transformación de
un cultivo de células eucarióticas en este contexto se entiende la
introducción de DNA recombinante en las células. La construcción
para expresión usada en el proceso se caracteriza por tener la
región codificante seleccionada de genes mamíferos incluyendo genes
humanos y genes con gran parecido con éstos, tales como los genes
del chimpancé. Además, la construcción de expresión usada se
caracteriza porque la región promotora se caracteriza a partir de
genes de virus o eucariotas, incluidas las células mamíferas y las
células insectiles.
El procedimiento para producir MBL recombinante
de acuerdo con la invención se caracteriza porque el cultivo de
células anfitrionas es preferiblemente eucariótico, por ejemplo, un
cultivo de células mamíferas. Un cultivo preferido de células
anfitrionas es un cultivo de células de riñón humano y en una forma
aún más preferida el cultivo de células anfitrionas es un cultivo
de células embrionarias de riñón humano (células HEK), tales como
las líneas celulares HEK 293 para la producción de MBL humano
recombinante. Por "líneas de células HEK 293" se entiende
cualquier línea celular derivada de tejido de riñón embrionario
humano tal como, pero sin limitarse a ellas, las líneas de células
depositadas en la Colección americana de Cultivos Tipo con los
números CRL-1573 y CRL-10852.
Otras células pueden ser fibroblastos
embrionarios de pollo; células de ovario de hámster, células renales
de crías de hámster, células de carcinoma cervical humano, células
de melanoma humano, células de riñón humano, células de endotelio
vascular umbilical humano, células de endotelio cerebral humano,
células tumorales de la cavidad oral humana, células renales de
mono, fibroblastos de ratón, células renales de ratón, células de
tejido conjuntivo de ratón, células oligodendríticas de ratón,
macrófagos de ratón, fibroblastos de ratón, células de
neuroblastoma de ratón, pre-células B de ratón,
células B de linfoma de ratón, células de plasmacitoma de ratón,
células de teratocarcinoma de ratón, células de astrocitoma de rata,
células de epitelio mamario de rata, COS, CHO, BHK, VERO, HeLa,
MDCK, WI38, Y NIH 3T3.
Alternativamente, como células anfitrionas se
pueden usar las células fúngicas (incluidas las células de levadura.
Ejemplos de células de levadura adecuadas incluyen las células de
Saccharomyces spp. o Schizosaccharomyces spp., En
particular cepas de Saccharomyces cerevisiae. Ejemplos de
otras células fúngicas son las células de hongos filamentosos, p.
ej. Aspergillus spp. o Neurospora spp., en particular
cepas de Aspergillus oryzae o Aspergillus niger. El
uso de Aspergillus spp. para la expresión de proteínas se
describe en, p. ej., en la patente europea EP 238 023.
Además, se puede elegir una cepa de una célula
anfitriona que module la expresión de las secuencias insertadas, o
que modifique y procese el producto génico de la forma específica
deseada. Tales modificaciones (por ejemplo, glicosilación) y
procesamientos (por ejemplo, escisión) de los productos proteicos
pueden ser importantes para la función de la proteína. Las
diferentes células anfitrionas tienen mecanismos característicos y
específicos para el procesamiento y la modificación
post-traduccional de proteínas y productos génicos.
Se pueden elegir líneas celulares o sistemas anfitriones apropiados
para asegurar la correcta modificación y procesamiento de la
proteína foránea expresada. Para este fin, se pueden usar células
anfitrionas eucarióticas que poseen la maquinaria celular para el
procesamiento conveniente del transcrito primario, la glicosilación
y la fosforilación del producto génico. Los tipos de células
mamíferas enumeradas más arriba están entre las que podrían servir
como células anfitrionas adecuadas.
Los métodos de transfección de células mamíferas
y expresión de secuencias de DNA introducidas en las células están
descritos, p. ej. en Kaufman y Sharp, J. Mol. Biol. 159, 1982, págs.
601-621; Southern y Berg, 1982, J. Mol. Appl.
Genet. 1:327-341; Loyter et al., 1982, Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 79: 422-426; Wigler et
al., 1978, Cell 14:725; Corsaro y Pearson, 1981, in Somatic
Cell Genetics 7, p. 603; Graham y van der Eb, 1973, Virol. 52:456; y
Neumann et al., 1982, EMBO J. 1:841-845.
También se prevé que se pueden utilizar otros
sistemas de producción eucarióticos en la presente invención, tal
como la producción de la proteína de fusión en una planta
transgénica o un animal no humano.
En otro aspecto, la presente invención
proporciona un método para producir una proteína de fusión
mediante:
- preparación de una construcción de expresión
génica como se ha definido más arriba, que codifica una proteína de
fusión,
- transformación de un cultivo de células
anfitrionas con la construcción,
\newpage
- cultivo del cultivo de células anfitrionas,
con lo que se obtiene la expresión y secreción del polipéptido en el
medio de cultivo, seguido de
- obtención de un medio de cultivo que comprende
proteína de fusión recombinante, y
- purificación de la proteína de fusión.
El medio usado para cultivar las células puede
ser cualquier medio convencional adecuado para hacer crecer células
mamíferas, tal como medio que contiene suero o medio exento de suero
que contiene suplementos apropiados, o un medio adecuado para hacer
crecer células de insectos, levaduras u hongos. Los medios adecuados
son obtenibles a partir de fuentes comerciales o se pueden preparar
de acuerdo con recetas publicadas (p. ej. en catálogos de la
Colección Americana de Cultivos Tipo). Son ejemplos de medios de
cultivo RPMI-1640 o DMEM completado con, p. ej.,
insulina, transferrina, selenio, y suero bovino fetal.
Las proteínas de fusión producidas
recombinantemente por las células pueden recuperarse después del
medio de cultivo por procedimientos convencionales que incluyen la
separación de las células anfitrionas del medio por centrifugación
o filtración, la precipitación de los componentes proteicos del
sobrenadante o filtrado por medio de una sal, p. ej., sulfato de
amonio, la purificación por diversos procedimientos cromatográficos,
p. ej. HPLC, cromatografía de intercambio iónico, cromatografía de
afinidad, o similares.
En una realización preferida, la proteína de
fusión se purifica por el uso de cromatografía de afinidad con
hidratos de carbono como se ha descrito más arriba. En una
realización preferida de la invención la cromatografía de afinidad
se realiza por medio de matrices que han sido modificadas con
manosa, hexosa o N-acetilglucosamina, que son
adecuadas para cromatografía de afinidad. En particular, se usa
cromatografía de afinidad, cuyas matrices han sido modificadas con
manosa.
En este contexto, se ha de entender que una
proteína de fusión recombinante es una proteína de fusión
recombinante purificada a partir de sobrenadantes de cultivo
celular o fluidos corporales o tejido de animales transgénicos
purificado por el uso de, por ejemplo, cromatografía de afinidad con
hidratos de carbono.
Después de la aplicación del medio de cultivo,
la columna se lava, preferiblemente usando tampones no
desnaturalizantes, que tienen una composición, un pH y una fuerza
iónica que da como resultado la eliminación de proteínas, sin eluir
la proteína de fusión. Dicho tampón puede ser TBS. La elución de la
proteína de fusión se realiza con un agente desorbente selectivo,
capaz de producir la elución eficiente de la proteína de fusión, tal
como TBS que contiene un agente desorbente, tal como EDTA (5 mM por
ejemplo) o manosa (50 mM por ejemplo), y se recogen proteínas de
fusión.
La proteína de fusión obtenida por la presente
invención puede ser usada para la preparación de un composición
farmacéutica para la prevención y/o el tratamiento de diversas
enfermedades o afecciones. En el presente contexto, la expresión
composición farmacéutica se usa con el mismo significado que la
expresión medicamento.
Además de la proteína de fusión, la composición
farmacéutica puede comprender una sustancia portadora y/o vehículos
farmacéuticamente aceptables.
En particular, se puede añadir un agente
estabilizante para estabilizar las proteínas de fusión. El agente
estabilizante puede ser un alcohol de azúcar, sacárido, proteína y/o
aminoácidos. Un ejemplo de un agente estabilizante puede ser
albúmina o maltosa.
Se pueden añadir otros aditivos convencionales a
la composición farmacéutica dependiendo, por ejemplo, de la forma de
administración.
En una realización, la composición farmacéutica
está en una forma adecuada para inyectarse. Se pueden usar
sustancias portadoras convencionales, tales como solución salina
isotónica.
En otra realización la composición farmacéutica
está en una forma adecuada para administrarse por vía pulmonar, tal
como en forma de un polvo para inhalarse o una crema o fluido para
aplicación tópica.
En este contexto, un tratamiento puede
comprender cura y/o profilaxis de, p. ej., el sistema inmunitario y
el sistema reproductor por seres humanos y animales que tienen
dichas unidades funcionales que actúan a este respecto como las de
los seres humanos. Por estados que han de tratarse no se entiende
necesariamente las estados actualmente conocidos y en necesidad de
tratamiento, sino que ese término comprende generalmente cualquier
alteración relacionada con la necesidad actual y/o futura o en
relación con una mejoría de una situación normal. En particular, el
tratamiento es un tratamiento de una situación de deficiencia de
lectinas, tal como deficiencia de MBL.
En otro aspecto de la presente invención se
proporciona la fabricación de un medicamento que consiste en dichas
composiciones farmacéuticas de proteínas de fusión destinadas al
tratamiento de estados que comprenden la cura y/o profilaxis de
enfermedades y trastornos de p. ej. el sistema inmunitario y el
sistema reproductor en seres humanos y animales que tienen dichas
unidades funcionales que actúan como en los seres humanos.
Dichas enfermedades, trastornos y/o estados en
necesidad de tratamiento con los compuestos de la invención
comprende, p. ej. el tratamiento de estados de deficiencia de MBL,
el tratamiento del cáncer y de infecciones relacionadas con la
quimioterapia inmunosupresora, incluyendo en particular las
infecciones que se observan en relación con estados durante el
tratamiento del cáncer o en relación con la implantación y/o el
trasplante de órganos. La invención también comprende el
tratamiento de estados relacionados con abortos recurrentes.
Así, en particular la composición farmacéutica
puede usarse para el tratamiento y/o la prevención de estados
clínicos seleccionados de infecciones, deficiencias de MBL, cáncer,
trastornos asociados con quimioterapia, tales como infecciones,
enfermedades asociadas al virus de la inmunodeficiencia humana
(VIH), enfermedades relacionadas con inmunodeficiencias congénitas
o adquiridas. De modo más particular, polineuropatía desmielinante
inflamatoria crónica (CIDP), neuropatía motora multifocal,
esclerosis múltiple, miastenia gravis, síndrome de
Eaton-Lambert, neuritis óptica, epilepsia; síndrome
antifosfolipídico primario; artritis reumatoide, lupus eritematoso
sistémico, esclerodermia sistémica, vasculitis, granulomatosis de
Wegner; síndrome de Sjogren, artritis reumatoide juvenil;
neutropenia autoinmunitaria, anemia hemolítica autoinmunitaria,
neutropenia; enfermedad de Crohn, colitis ulcerosa, enfermedad
celíaca; asma, síndrome de choque séptico, síndrome de fatiga
crónica, psoriasis, síndrome de choque tóxico, diabetes, sinusitis,
cardiomiopatía dilatada, endocarditis, aterosclerosis,
hipo/agammaglobulinemia primaria incluyendo la inmunodeficiencia
variable común, síndrome de Wiskot-Aldrich e
inmunodeficiencia combinada severa (SCDI), hipo/agammaglobulinemia
en pacientes con leucemia linfática crónica (CLL) y mieloma
múltiple, púrpura trombocitopénica idiopática aguda y crónica (ITP),
transplante alógeno de médula ósea (BTM), enfermedad de Kawasaki y
síndrome de Guillan-Barre.
La ruta de administración puede ser cualquier
ruta adecuada, tal como intravenosa, intramuscular, subcutánea o
intradérmica. También se tiene en cuenta la administración pulmonar
o tópica en la presente invención.
En particular, la proteína de fusión puede
administrarse para prevenir y/o tratar infecciones en pacientes que
tienen síntomas clínicos asociados con la deficiencia de MBL
congénita o adquirida o que están en riesgo de desarrollar tales
síntomas. Una amplia gama de estados puede conducir a un aumento de
la susceptibilidad a las infecciones en individuos deficientes en
MBL; tal como la quimioterapia u otros tratamientos terapéuticos
citotóxicos, cáncer, SIDA, disposición genérica, infecciones
crónicas y neutropenia.
Así, la composición farmacéutica se puede
administrar durante un período de tiempo antes del comienzo de la
administración de quimioterapia o similares y durante al menos una
parte de la quimioterapia.
La proteína de fusión se puede administrar como
un "refuerzo" general antes de la quimioterapia, o se puede
administrar sólo a pacientes en riesgo de desarrollar deficiencia en
MBL. Midiendo el nivel de MBL antes del tratamiento puede
determinarse el grupo de pacientes que está en riesgo y someter a
tratamiento sólo a los pacientes cuyo nivel de MBL está por debajo
de un nivel predeterminado.
La proteína de fusión se administra en regímenes
de dosificación adecuados, en particular se administra habitualmente
a intervalos adecuados, p. ej. una o dos veces por semana durante
la quimioterapia.
Normalmente se administran 1-100
mg por dosis, tal como 2-10 mg, generalmente
5-10 mg por dosis. Generalmente se administran
aproximadamente 0,1 mg/kg de peso corporal.
Además, un aspecto de la presente invención es
el uso de una composición recombinante según la presente invención
en un kit que comprende además otro medicamento. En particular, el
otro medicamento puede ser un medicamento antimicrobiano, tal como
un antibiótico.
En lo que se refiere a los abortos, se ha
informado que la frecuencia de bajos niveles plasmáticos de MBL es
alta en pacientes que sufren abortos recurrentes sin explicación
alguna, lo que constituye la base para disminuir la susceptibilidad
a sufrir abortos mediante la reconstitución del nivel de MBL por
administración de MBL recombinante en estos casos.
En cuanto a la naturaleza de los compuestos de
la invención, parece que, en su aspecto más amplio, la presente
invención se refiere a compuestos que son capaces de actuar como
opsoninas, es decir, capaces de intensificar la captación por
macrófagos, o bien a través de la interacción directa entre el
compuesto y el macrófago o por mediación del depósito de complemento
sobre la superficie diana.
Se construyeron una serie de plásmidos para la
expresión en células mamíferas de fusiones proteicas entre el gen
humano recombinante de lectina 2 que se une a manosa (rhMBL) y la
ficolina 2 humana (FCN2). El vector se deriva de un plásmido basado
en ColE1 con alto número de copias y está diseñado para permitir la
expresión de proteínas en sistemas mamíferos. Las expresiones de
las proteínas de fusión son conducidas por el promotor precoz
inmediato de citomegalovirus humano (CMV) para promover la expresión
constitutiva. La selección es hecha posible en bacterias por el gen
de resistencia a ampicilina bajo el control del promotor de
\beta-lactamasa procariótica. El gen de
resistencia a neomicina es conducido por el promotor precoz de SV40,
lo que proporciona la selección estable con G418 en células
mamíferas.
Con el fin de expresar proteínas de fusión entre
Ficolina2 y MBL, se han diseñado y construido una serie de
plásmidos. Los nuevos plásmidos recombinantes se basan en el
pcDNA2001-cintMBLcDNA previamente clonado. Este
plásmido contiene un intrón sintético junto con el cDNA para MBL
humano. Se diseñaron las siguientes fusiones (la fuente
subrayada indica la parte FCN2 - cursiva indica la
parte MBL de la proteína de fusión.)
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr1 (SEQ ID NO:118):
FCN2 (secuencia señal+ colágeno+"bisagra" a
aa131 de dominio de ficolina) MBL (de aa129 de dominio de unión a
hidratos de carbono)
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr2 (SEQ ID NO: 119):
FCN2 (secuencia señal+
colágeno+"bisagra"+parte del dominio de ficolina que contiene
doble hélice predicho a aa207) MBL (de aa129 de dominio de unión a
hidratos de carbono)
\newpage
FCN2MBLr3 (SEQ ID NO: 120):
FCN2 (secuencia señal+ colágeno a aa92) MBL (de
aa101 doble hélice + dominio de unión a hidratos de carbono)
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr4 (SEQ ID NO: 121):
FCN2 (secuencia señal+ parte de colágeno a
cons.K en aa93) MBL (de cons.K en el resto aa77 de colágeno+doble
hélice + dominio de unión a hidratos de carbono)
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr5 (SEQ ID NO: 122):
FCN2 (secuencia señal+ parte de colágeno a
cons.G en aa69) MBL (de cons.G en resto de aa.64 de colágeno (que
contiene "kick")+doble hélice + dominio de unión a hidratos de
carbono)
\newpage
FCN2MBLr6 (SEQ ID NO: 123):
MBL (colágeno MBL reemplazado (aa.41 a aa
99)+doble hélice + dominio de unión a hidratos de carbono) FCN2
(colágeno insertado aa.54 a aa.92)
FCN2MBLr7 (SEQ ID NO:
124):
MBL (secuencia señal a aa.25)FCN2
(colágeno a aa93) MBL (de aa100 doble hélice + dominio de unión a
hidratos de carbono)
- pcDNA2003-cintMBLcDNA
- Invitrogen Genestorm clon RG000632 (nº Cat.
H-K1000 Invitrogen). Las construcciones fueron
hechas por recombinación usando el kit de clonación PCR BD
In-Fusion™ PCR forma BD (nº Cat. 631774). El kit
In-Fusion permite la clonación de los productos PCR
basándose sólo en homología 2 x 15 pb entre el vector y el extremo
del producto PCR. Cuando se la hace la clonación con este kit, la
ligasa y la fosfatasa son innecesarias. La enzima
In-Fusion captura los extremos del fragmento de DNA
y fusiona el inserto en el vector.
Los cebadores usados para las reacciones se
indican en la Tabla 1.
Se hicieron reacciones PCR en el plásmido
"Genestorm RG000632" lote N135-15C digerido con
Bstz17I (N135-20B). Se usaron pares de cebadores
como se describe a continuación. Kit para reacciones PCR: Mezcla
maestra PCR PfuUltra™ Hotstart, Stratagen #600630. Los tubos de
reacción PCR se pusieron en el ciclador-i BioRAD
usando el perfil de temperaturas indicado en la tabla 2.
Para las reacciones de recombinación, el vector
pcDNA2001-cintMBLcDNA se linealizó por digestión con
enzimas de restricción, usando las enumeradas a continuación.
FCN2MBLr1:
PCR usando cebadores:
Pr1-xho-MBLFCN +
Pr4-Xmn-FCNMBL-rev
(producto de 463 pb) Digestión de
pcDNA2001-cintMBLcDNA: XhoI + XmnI (parcial)
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr2:
PCR usando cebadores:
Pr1-xho-MBLFCN +
Pr5-Xmn-FCNMBL-rev
Digestión de pcDNA2001-cintMBLcDNA: XhoI + XmnI
(parcial)
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr3:
PCR usando cebadores:
Pr1-xho-MBLFCN +
Pr6-b-Bsp-FCNMBL-rev
Digestión de pcDNA2001-cintMBLcDNA: XhoI + BspEI
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr4:
PCR usando cebadores:
Pr1-xho-MBLFCN +
Pr2-apa-FCNNIBL-rev
Digestión de pcDNA2001-cintMBLcDNA: XhoI + ApaI
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr5:
PCR usando cebadores:
Pr1-xho-MBLFCN +
Pr3-apa-FCNMBL-rev
Digestión de pcDNA2001-cintMBLcDNA: XhoI + ApaI
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr6:
PCR usando cebadores:
Pr8-BstAP-MBLFCN +
Pr6-b-Bsp-FCNMBL-rev
Digestión de pcDNA2001-cintMBLcDNA: parcial BstAPI +
BspEI
\vskip1.000000\baselineskip
FCN2MBLr7:
PCR usando cebadores:
Pr7-Alw-MBLFCN +
Pr6-b-Bsp-FCNMBL-rev
Digestión de pcDNA2001-cintMBLcDNA :parcial AlwNI +
BspEI
\vskip1.000000\baselineskip
Las reacciones de recombinación PCR
In-Fusión se llevaron a cabo usando aproximadamente
50-100 ng de productos PCR purificados en Quiagen
Minelute junto con 50-100 ng de
pcDNA2001-cintMBLcDNA linealizado purificado con
Quiagen Minelute.
1/10 de las reacciones de recombinación se
transformaron en células competentes DH5\alpha de eficiencia MAX
(Invitrogen nº Cat. 18258-012). 1/10 y 9/10 de cada
transformación se rociaron sobre placas LB separadas que contenían
200 ug/ml ampicilina. Las placas se incubaron a 37°C durante una
noche. Escrutinio en busca de clones positivos: Se
recogieron al menos 6 colonias de cada placa experimental para el
aislamiento del DNA plasmídico miniprep. Para determinar la
presencia del inserto, se analizó el DNA por análisis de digestión
por restricción con la enzima PstI. Se eligieron tres clones
positivos individuales de cada reacción para trabajo adicional.
Para verificar los plásmidos recombinantes
individuales seleccionados después del escrutinio primario, se
realizó un análisis intensivo por digestión con enzimas de
restricción sobre el DNA plasmídico aislado.
El DNA plasmídico de los recombinantes se
digirió con la enzima indicada en la tabla 3. Los fragmentos
esperados se enumeran también en la tabla. Todos los clones
recombinantes ensayados presentaron el patrón esperado. La
digestión con EcoRl no fue como se había predicho. Se observó un
fragmento adicional tanto en la digestión del plásmido recombinante
como del plásmido parental. La discrepancia se puede explicar por un
sitio EcoRI adicional en el plásmido parental.
Los plásmidos recombinantes obtenidos se
muestran esquemáticamente en las figuras 4-8 para
las construcciones r1, -r2, -r3,-r4, y -r5.
Se describe la expresión de proteínas de fusión
humanas recombinantes FCNMBLr1, FCNMBLr4, FCNMBLr5 y MBL en células
HEK293 y Per.C6. Se halló que las líneas celulares en el experimento
de transfección pasajera eran capaces de producir al menos las
proteínas de fusión FCNMBLr4 y FCNMBLr5 ensambladas en oligómeros
activos con una estructura primaria similar a las formas oligómeras
3 y 4 de MBL. Las proteínas de fusión FCNMBLr4 y FCNMBLr5 se
comportaron igual que MBL en la unión a una superficie de hidrato de
carbono y en la activación de la cascada del complemento.
El objeto de los estudios fue dilucidar la
posibilidad de crear una proteína híbrida consistente en la parte
de colágeno de la ficolina 2 humana y la lectina humana que se una a
manosa (MBL). Además, se deseaba aclarar si estas moléculas
seguirían teniendo la capacidad de unirse a estructuras complejas de
hidratos de carbono y si seguirían siendo capaces de activar el
complemento.
Se usaron dos líneas celulares eucarióticas de
origen humano, HEK293 y Per.C6, como líneas celulares anfitrionas
para transfecciones pasajeras con los respectivos plásmidos de
expresión. La transcripción fue conducida por el potenciador del
promotor CMV-IE.
pME607-FCNMBL-r1,
-r2, -r3,-r4,-r5,-r6 y-r7 (descritos en el Ejemplo
1)
\vskip1.000000\baselineskip
Se obtuvieron células PerC6 a partir de
Crucell.
Se obtuvieron células HEK 293 Freestyle a partir
de InVitrogen.
\vskip1.000000\baselineskip
Se cultivaron células PerC6 a 37°C en 10%
(vol/vol) de CO_{2} mantenidas como monocapas en medio exento de
suero.
Se cultivaron células HEK 293 Freestyle a 37°C
en 8% (vol/vol) de CO_{2} mantenidas como suspensión en un medio
Freestyle de Invitrogen.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células Per.C6 en medio que contenía suero
se transfectaron con el DNA usando el reactivo de transfección
Lipofectamine. Un día después de la transfección, el medio se repuso
con medio exento de suero.
Las células HEK293 en medio Freestyle libre de
suero se transfectaron con el DNA usando el reactivo de transfección
293fect. El medio se recogió después de aproximadamente 4 días de
incubación después de la transfección.
\vskip1.000000\baselineskip
Ensayo de MBL recombinante (TRIFMA) usando
placas revestidas de manano o placas revestidas de
mAb-131-01. Para la cuantificación
de MBL, se llevó a cabo inmunofluorimetría resuelta en función del
tiempo.
\vskip1.000000\baselineskip
Se llevó a cabo la SDS-PAGE con
transferencia subsiguiente de proteínas a membranas de difluoruro de
polivinilideno y detección de MBL usando anticuerpos monoclonales
anti-MBL.
\vskip1.000000\baselineskip
El ensayo está diseñado para medir la capacidad
de MBL y rMBL para iniciar la ruta de MBL lectina del sistema del
complemento. Serina proteasa asociada con MBL(MASP 2),
asociada con MBL, escinde el factor del complemento C4 liberando C4a
y C4b.
El depósito de C4b en las placas de ELISA
revestidas con manano se detecta con anticuerpos marcados con
biotina frente a C4b y estreptavidina marcada con Europio.
En los experimentos descritos aquí, fue posible
expresar FCN2MBLr4, FCN2MBLr5 y MBL pasajeramente tanto en células
HEK293 como Per.C6 en condiciones libres de suero.
\vskip1.000000\baselineskip
Las formas oligómeras de las proteínas de fusión
se examinaron por SDS PAGE desnaturalizante no reductora, seguida
de una transferencia Western. El anticuerpo detector reconoce la
parte CDR de MBL (y puede ser parte de la región doble hélice). Los
resultados se muestran en la Figura 10. A partir de la figura, es
evidente que la forma más prominente de las proteínas de fusión
FCN2MBLr4 y FCN2MBLr5 es aproximadamente 250 kDa correspondientes a
un 3- o 4-mero de subunidades que consisten en 3
cadenas proteicas individuales (24 kDa). La apariencia de la forma
oligómera era independiente de las células anfitrionas usadas. Se
produjo MBL en un amplio abanico de formas oligómeras.
\vskip1.000000\baselineskip
La proteínas de fusión se sometieron a ensayo de
funcionalidad del dominio de unión a hidratos de carbono de MBL
mediante unión a una superficie de manano y detección con un
anticuerpo que reconoce la parte CDR de MBL (y puede ser parte de
la región de doble hélice). Los resultados se muestran en la Figura
4. Se puede llegar a la conclusión de que FCN2MBLr4 y FCN2MBLr5 se
expresaban tan bien como MBL en las células anfitrionas y que las
proteínas de fusión se unen a una superficie de manano.
\vskip1.000000\baselineskip
Las proteínas de fusión se ensayaron además para
determinar la capacidad de unirse a MASP-2 y de
activar la serina proteasa de MASP-2. Esto se hizo
midiendo la escisión del factor del complemento C4 del sustrato
ASP-2 tras la unión de la proteína de fusión a una
superficie de manano. Los resultados se muestran en la tabla 5. A
partir de estos resultados se puede llegar a la conclusión de que
las proteínas de fusión FCN2MBLr4 y FCN2MBLr5 conservaron la
capacidad de unión y activación de MASP-2.
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados descritos aquí indican claramente
que es posible construir proteínas de fusión de FCN 2 y MBL con las
siguientes propiedades:
- 1.
- La estructura oligómera de las proteínas de fusión es más simple que la de la proteína MBL.
- 2.
- Las proteínas de fusión conservan la propiedad esencial de activación por MBL de la cascada del complemento tras unirse a una densa estructura de hidratos de carbono.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
<110> NatImmune A/S
\hskip1cmWeilguny, Dietmar
\hskip1cmKongerslev, Leif
\hskip1cmMatthiesen, Finn
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Quimeras de
colectina-proteína activante del complemento
\vskip0.400000\baselineskip
<130> P 703 PC00
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 127
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 185
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 244
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 239
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 652
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 644
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 688
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 652
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 248
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 248
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 643
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus norvegicus
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 686
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 185
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 728
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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<220>
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<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
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<222> (91)..(116)
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<223> Desconocida
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<213> Mus musculus
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<213> Homo sapiens
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<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
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Arg Leu Leu Ile Ile}
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<213> Homo sapiens
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<213> Homo sapiens
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<213> Canis familiaris
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 108
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\sa{Leu Gly Ile Pro Cys Phe Pro Ser Ser Leu Lys
Arg Leu Leu Ile Ile}
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Ile Val Gly Ala Leu Leu}
\sac{Met Gly Leu}
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 109
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 34
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<212> PRT
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<213> Bos taurus
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<400> 109
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Leu Ile Pro Cys Cys Pro Val Asn Ile Lys Arg
Leu Leu Ile Val Val}
\sac{Val Val Val Val Leu Leu Val Val Val Ile
Val Gly Ala Leu Leu Met}
\sac{Gly Leu}
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<211> 35
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<212> PRT
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\sa{Gly Gln Ser Ile Thr Phe Asp Ala Gly Lys Glu
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<210> 111
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<211> 370
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<212> PRT
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<213> Oryctolagus cuniculus
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\vskip1.000000\baselineskip
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<212> PRT
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<213> Oryctolagus cuniculus
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\vskip1.000000\baselineskip
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<211> 369
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<212> PRT
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<211> 301
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<212> PRT
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<213> Bos taurus
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
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<222> (7) .. (7)
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<223> Desconocida
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<400> 114
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<210> 115
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<211> 375
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 115
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 194
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rattus norvegicus
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 116
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 247
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oryctolagus cuniculus
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 117
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 251
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (25)..(130)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica del dom
aa131 de ficolina
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (131)..(251)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
aa129
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 118
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 329
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (25)..(206)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica del dominio
de ficolina que contiene doble hélice pred. a aa207
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (207) .. (329)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 119
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 240
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (25) .. (91)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de
colágeno
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (92)..(240)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 121
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 255
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (25)..(82)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de colágeno
a K cons. en aa 93
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (83)..(255)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 121
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 122
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 254
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (25)..(69)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de
colágeno
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (70)..(254)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 122
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 123
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 232
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (21)..(41)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
colágeno
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (42)..(232)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de
colágeno
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 123
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 124
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 237
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (21) .. (89)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de
colágeno
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CARACTERÍSTICA_MISCELÁNEA
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (90)..(237)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Secuencia polipeptídica de MBL
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 124
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 288
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 125
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 228
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 126
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 127
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 216
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 127
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (35)
1. Una proteína de fusión que comprende
i) Una primera secuencia polipeptídica derivada
de una proteína que activa la ruta del
complemento-lectina o de un homólogo funcional al
menos 70% idéntico a dicha proteína que activa la ruta del
complemento-lectina, donde dicha primera secuencia
polipeptídica es capaz de activar la ruta del
complemento-lectina; y
ii) Una segunda secuencia polipeptídica derivada
de una colectina o un homólogo funcional al menos 70% idéntico a
dicha colectina, donde dicha segunda secuencia polipeptídica es
capaz de asociarse a uno o más hidratos de carbono;
donde dicha proteína que activa el complemento
no es una colectina.
2. La proteína de fusión según la reivindicación
1, donde dicha primera secuencia polipeptídica es capaz de asociarse
con al menos una proteína MASP.
3. La proteína de fusión según la reivindicación
1, donde dicha primera secuencia polipeptídica es capaz de asociarse
con una proteína MASP seleccionada del grupo que consiste en
MASP-1, MASP-2 y
MASP-3 u homólogos funcionales o variantes de los
mismos.
4. La proteína de fusión según la reivindicación
1, donde la proteína activante del complemento es una ficolina.
5. La proteína de fusión según la reivindicación
4, donde la ficolina se selecciona del grupo que consiste en
L-ficolina, H-ficolina y
M-ficolina.
6. La proteína de fusión según la reivindicación
4, donde la ficolina es L-ficolina.
7. La proteína de fusión según la reivindicación
1, donde la primera secuencia polipeptídica comprende el dominio
similar a colágeno de una ficolina o un homólogo funcional o una
variante del mismo.
8. La proteína de fusión según la reivindicación
1, donde la primera secuencia polipeptídica comprende la región rica
en cisteínas de una ficolina o un homólogo funcional de la
misma.
9. La proteína de fusión según la reivindicación
1, donde la primera secuencia polipeptídica comprende la región rica
en cisteínas y el dominio similar a colágeno de una ficolina o un
homólogo funcional o una variante del mismo.
10. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la primera secuencia polipeptídica comprende
los aminoácidos 1-77 de la secuencia de
L-Ficolina de la Figura 1 (SEQ ID. NO 125).
11. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la colectina se selecciona del grupo que
consiste en MBL (lectina que se une a manosa), SP-A
(proteína A de tensioactivo pulmonar), SP-D
(proteína D de tensioactivo pulmonar), BK (o BC, conglutinina
bovina) y CL-43 (colectina-43).
12. La proteína de fusión según la
reivindicación 15, donde la colectina es MBL.
13. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
el dominio CRD de una colectina o un homólogo funcional o una
variante del mismo.
14. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
el dominio CRD de MBL.
15. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
la región de cuello de MBL.
16. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
el dominio rico en colágeno de MBL.
17. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
la región de cuello y el dominio CRD de MBL.
18. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
el dominio similar a colágeno, la región de cuello y el dominio CRD
de MBL.
19. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la segunda secuencia polipeptídica comprende
los aminoácidos 80-228 de la secuencia de MBL
mostrada en la Figura 2 (SEQ ID. NO 126).
\newpage
20. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la proteína de fusión comprende la región
rica en cisteínas y el dominio similar a colágeno de
L-ficolina y el dominio CRD de MBL.
21. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la proteína de fusión comprende la región
rica en cisteínas de L-ficolina y el dominio similar
a colágeno, la región de cuello y el dominio CRD de MBL.
22. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la proteína de fusión comprende la secuencia
de aminoácidos definida por la secuencia indicada en la Figura 3
(SEQ ID. NO. 127), o un homólogo funcional al menos 70% idéntico a
la misma.
23. La proteína de fusión según la
reivindicación 1, donde la proteína de fusión consiste en la
secuencia de aminoácidos definida por la secuencia indicada en la
Figura 3 (SEQ ID. NO. 127).
24. Un ácido nucleico aislado que comprende una
secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de fusión de
acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28.
25. Un vector que comprende la secuencia de
ácidos nucleicos según la reivindicación 29.
26. Una célula que comprende el vector según la
reivindicación 30.
27. Una proteína de fusión de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28 para uso como
medicamento.
28. Uso de la proteína de fusión de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 28 para la preparación de un
medicamento para la prevención y/o el tratamiento de una infección
en un individuo con necesidad de ello.
29. El uso según la reivindicación 40, donde el
individuo es un ser humano.
30. El uso según la reivindicación 40, donde el
individuo es un ser humano que padece un mayor riesgo de sufrir una
infección.
31. El uso según la reivindicación 40, donde el
individuo es un ser humano con un nivel sérico de MBL inferior al
normal.
32. El uso según la reivindicación 40, donde el
individuo es un ser humano con un nivel sérico de MBL normal.
33. Un medicamento para el tratamiento o la
prevención de un estado clínico en un individuo con necesidad de
ello, que comprende la proteína de fusión de acuerdo con cualquiera
de las reivindicaciones 1 a 28.
34. El medicamento según la reivindicación 45,
donde el estado clínico es una infección.
35. El medicamento según la reivindicación 45,
donde el individuo es un ser humano.
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