ES2283015T3 - Vacunacion con acidos nucleicos para infecciones parvoviricas. - Google Patents

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Abstract

EL CAMPO GENERICO DE LA INVENCION ES UN PROCEDIMIENTO PARA VACUNACION CON ACIDO NUCLEICO DE ANIMALES, A FIN DE PROTEGERLOS CONTRA INFECCIONES PARVOVIRALES. LA INVENCION SE REFIERE MAS PARTICULARMENTE A LA PREPARACION Y USO DEL ADN PARVOVIRAL Y A SU ADMINISTRACION A PERROS, GATOS Y VISONES, A FIN DE INDUCIR UNA RESPUESTA INMUNE QUE PUEDA PROTEGER A ESTOS ANIMALES CONTRA LA ENFERMEDAD PROVOCADA POR UN PARVOVIRUS VIRULENTO. LOS INMUNOGENES DEL ACIDO NUCLEICO SE DISEÑAN DE MANERA QUE SE INCLUYAN LAS PARTES ANTIGENICAS DEL GENOMA PARVOVIRAL QUE SE INCORPORA A LOS PLASMIDIOS BACTERIANOS. ESTOS PLASMIDIOS PRODUCEN EL GEN PARVOVIRAL DESEADO CUANDO SE INTRODUCEN EN CELULAS HUESPEDES POR TRANSFECCION. LAS CELULAS HUESPEDES TRANSFECTADAS CON EL INMUNOGENO PARVOVIRAL QUE EXPRESA LOS PLASMIDIOS PRODUCEN UNA CORRIENTE DE PROTEINAS ANTIGENICAS ANTE LA QUE EL SISTEMA INMUNOLOGICO DEL HUESPED LEVANTARA UNA RESPUESTA INMUNE PROTECTORA.

Description

Vacunación con ácidos nucleicos para infecciones parvovíricas.
El campo general de la invención es un procedimiento para la vacunación con ácidos nucleicos de animales para protegerlos de infecciones parvovíricas. La presente invención se refiere más particularmente a la preparación y uso de ADN parvovírico y a su administración a perros, gatos y visones para inducir una respuesta inmunitaria que puede proteger a estos animales de una enfermedad causada por parvovirus virulentos. Los inmunogenes de ácidos nucleicos están diseñados para incluir las partes antigénicas del genoma parvovírico que están incorporadas a los plásmidos bacterianos. Estos plásmidos producen el producto génico parvovírico deseado cuando son introducidos en células huésped mediante transfección. Las células huésped transfectadas con plásmidos que expresan el inmunogén parvovírico producen una corriente de proteínas antigénicas contra las que el sistema inmunitario huésped pondrá en marcha una respuesta inmunitaria protectora.
Los parvovirus son una familia de pequeños virus de ADN estrechamente relacionados compuestos por una cápside proteínica que contiene ADN monocatenario. Los parvovirus causan varias enfermedades en una variedad de especies de mamíferos. El virus de la panleucopenia felina, el virus de la enteritis del visón y el parvovirus canino son variantes de una especificidad de huéspedes del subgrupo del parvovirus felino y comparten más del 98% de homología en el ADN (Martyn y otros, J. Gen. Virol. 71 (1990) 2.747-2.753). El parvovirus canino es un agente patógeno relativamente nuevo de todos los cánidos, identificado por primera vez a finales de la década de 1970 como el agente causante de una pandemia mundial de gastroenteritis muy mortal. Se ha propuesto la hipótesis de que este virus es un mutante de la especificidad de huéspedes del parvovirus felino. Cuando se compararon las secuencias de nucleótidos de los parvovirus felino y canino, se identificaron 31 cambios de bases que daban lugar a cambios en tan sólo 9 aminoácidos (Martyn y otros, 1990). Seis de estos cambios de aminoácidos se localizaban en los principales genes de la cápside, VP1 y VP2. El epítopo antigénico específicamente canino está determinado por la diferencia de un sólo aminoácido con respecto al virus de la panleucopenia felina. Un mapeo genético adicional ha confirmado recientemente cuándo se originó el parvovirus canino, ha reforzado la teoría de su origen a partir del parvovirus felino y ha indicado una evolución continuada del virus en las cepas de campo actualmente en proceso de aislamiento (Truyen y otros, J. of Virology 69 (8) (1995), 4.702-4.710).
Las dos proteínas de la nucleocápside, VP1 y VP2, se expresan a partir del mismo ARN siendo VP2 el resultado de un codón ATG sin cambio de pauta de lectura dentro del marco abierto de lectura de VP1. VP2 se expresa a un nivel casi 10 veces mayor que VP1 indicando que el codón de iniciación interno es identificado de un modo más eficaz como tal mediante el equipo de traducción (Turiso y otros, J. of Gen. Virol. 72 (1991), 2.445-2.456). Los experimentos de mapeo de epítopos han demostrado que todos los epítopos antigénicos que generan anticuerpos neutralizantes están situados dentro de VP2 (Turiso y otros, 1991, loc. cit.). Entre éstos se incluyen los primeros 16 aminoácidos de VP2 (Langeveld y otros, J. of Virology 68 (7) (1994), 4.506-4.513; Casal y otros, J. of Virology 69 (11) (1995), 7.274-7.277).
La inmunización sigue siendo el principal mecanismo mediante el cual los humanos y a las especies animales se protegen contra el azote de una enfermedad infecciosa. La tendencia reciente en el diseño de vacunas alejadas de microbios vivos, atenuados, por motivos de seguridad, bien por "vaccine breaks", atenuación incompleta, reversión, o por amplificación en pacientes inmunodeprimidos, ha ido acompañada de una disminución en la duración y la eficacia de las vacunas. La utilización de agentes muertos, proteínas o péptidos recombinantes clonados requiere dosis grandes y la presencia de adyuvantes. No obstante, no se han estudiado los efectos a largo plazo de tales adyuvantes y, recientemente, se ha dado a entender que podrían ser los agentes causantes de los sarcomas inducidos por vacunas en gatos (Hendrick y otros, J. Am. Vet. Med. Assoc. 205 (1994), 1.425-1.429). Además, la localización extracelular del antígeno inyectado plantea preguntas acerca de cómo se presentan estos antígenos al sistema inmunitario, así como sobre su idoneidad para generar protección contra infecciones de aparición natural.
Las actuales prácticas de vacunación contra el parvovirus canino son dudosas (Schultz, R.D. (1994), The Challenge of Controlling a Newly Recognized Disease: Canine Parvovirus Vaccines, IBC International Symposium, octubre 27-28, 108). Las vacunas que consisten en organismos atenuados o muertos, deben administrarse repetidamente para crear inmunidad, y habitualmente no se produce inmunización circulante frente a títulos de anticuerpos maternos. Este problema se complica por la capacidad del anticuerpo materno para inactivar la vacuna cuando se ha reducido a niveles de concentración que no son protectores y que conducen a "cierta vulnerabilidad" (Pollock y Carmichael, J. Am. Vet. Med. Assoc. 130 (1982), 37-42). La clonación del parvovirus canino ha llevado al desarrollo de dos estrategias de vacuna distintas. La primera fue la introducción de toda la secuencia de VP2 en un sistema de expresión de baculovirus. Se extrajo el producto proteínico y se utilizó para inmunizar satisfactoriamente a perros (Turiso y otros, J. of Virology 66 (5) (1992), 2.748-2.753). La segunda estrategia implica la subclonación o síntesis de epítopos de péptidos que se utilizan para inmunizar a perros. Estos péptidos han utilizado la secuencia aminoterminal de VP2 (Casal y otros, 1995, loc. cit.) que dio lugar a la inmunización satisfactoria de perros. Las vacunas desarrolladas utilizando estas estrategias también han sido probadas con el virus de la enteritis del visón, otra variante de la serie de huéspedes estrechamente relacionada del parvovirus. La administración de una proteína o un péptido recombinante da lugar a una inmunidad protectora contra esta enfermedad comercialmente relevante del visón (Langeveld y otros, Vacuna 13 (11) (1995), 1.033-1.037).
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Las vacunas contra parvovirus elaboradas a partir de péptidos que corresponden a epítopos antigénicos de proteínas de la cápside parvovírica se describen en EP-A-0647655 y en Turiso y otros. (J. General Virology 72 (1991), páginas 2.445 a 2.456). Además, Langeveld y otros, Vaccine, Vol. 12, (1994), páginas 1.473 a 1.480, describen como referencia la vacunación de perros utilizando virus vivos modificados o material vírico inactivado.
Las vacunas de virus vivos modificadas contra la panleucopenia felina son efectivas para proteger a gatos adultos, pero pueden producir anomalías congénitas en embriones de gato in utero, por consiguiente no están recomendadas para vacunar a gatas intactas que podrían estar preñadas. Dadas las limitaciones importantes de las vacunas de virus vivos modificadas, los científicos empezaron a investigar la posibilidad de transfectar células in vivo con genes que expresan antígenos de organismos infecciosos (revisado en Donnelly y otros, J. Imm. Meth. 176 (1994), 145-152; Fynan y otros, Int. J. Immunopharmac. 17 (2) (1995), 79-83; Whalen y otros (1995), DNA Mediated Immunization to the Hepatitis B Surface Antigen; Activation and Entrainment of the Immune Response in DNA Vaccines, Nueva York: New York Academy of Sciences). Dicho mecanismo de inmunización emularía el mecanismo de expresión génica vírica sin el riesgo concomitante impuesto por los organismos atenuados, al tiempo que se evitaría la necesidad de los adyuvantes habituales. El descubrimiento fortuito de que la inyección intramuscular de ADN plásmido "desnudo" portador de un promotor de mamífero haría que el ADN fuera aceptado por células musculares y se expresara (Wolff y otros, Science 247 (1990) 1.465-1.468) ha causado una expansión radical del nuevo campo de la vacunación con ácidos nucleicos. Con posterioridad al estudio original, se han definido y ampliado las condiciones que afectan a la inyección intramuscular de ADN plásmido (Wolff y otros, Biotechniques 11 (1991), 474-485). La eficacia de la transferencia es relativamente baja, variando entre el 1 y el 5%, aunque esta eficacia puede aumentarse hasta 40 veces induciendo una degeneración muscular previa a la inyección del ADN plásmido (Vitadello y otros, Hum. Gene. Ther. 5 (1994), 11-18; Danko y Wolff, Vaccine 12 (16) (1994), 1.499-1.502); Davis y otros, Hum. Gene. Ther. 4 (1993), 733-740). Dos de los agentes mionecróticos utilizados más frecuentemente son los anestésicos locales bupivicaína y cardiotoxina (Danko y Wolff, 1994, loc. cit.; Davis y otros, 1993, loc. cit.). Se han empleado numerosas técnicas distintas para transferir genes al músculo tales como los vectores retrovirales, los vectores adenovirales y los liposomas. No obstante, la inyección directa de ADN desnudo parecer ser el más eficaz de los mecanismos de administración a la hora de transferir y expresar ADN exógeno (Davis y otros, 1993, loc. cit.).
Se han investigado varias vías de administración además de la inyección intramuscular. Todas estas vías tienen en común que no requieren ningún agente o vector para facilitar la introducción del ácido nucleico a las células diana. La inyección intravenosa, intraperitoneal, intradérmica, intranasal y subcutánea de plásmidos de ADN han dado lugar a una inmunización contra la hemoaglutinina (HA) del virus de la gripe en pollos (revisado en Pardoll y Beckerkleg, Immunity 3 (1995), 165-169). De forma interesante, estos estudios indicaron que la inmunización mucosal (intranasal) con ADN no producía la respuesta IgA esperada, sino más bien una respuesta IgG, tal como se observa con las inyecciones intramusculares. Además, se observó que la inmunización intradérmica por bombardeo de micropartículas de oro recubiertas de ADN era tan eficaz como otros procedimientos de liberación de genes a concentraciones de ADN de 100 a 1.000 veces inferiores que en los otros procedimientos. Experimentos similares han demostrado que las vías intradérmica e intravenosa producen una inmunización en ratones y conejos (Raz y otros, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91 (1994), 9.519-9.523). Destacando la simplicidad de la estrategia, Raz y colaboradores han señalado que una manera de evitar tener que utilizar el equipo caro y potencialmente incómodo necesario para el bombardeo tisular y la inmunización intradérmica es recubriendo con ADN un punzón de plástico de PPD de la tuberculina y escarificando la piel para conseguir un resultado similar al bombardeo biolístico. La inmunización con ADN se ha intentado con éxito variable en varias especies de mamíferos tales como ganado bovino, porcino y primates no humanos, predominantemente por vía intramuscular.
En Erth y otros, Viral Immunology, vol. 9, 1996, páginas 1 a 9, se puede observar una visión general de la inmunización genética.
Se ha descrito que la naturaleza de la respuesta inmunitaria frente a los antígenos presentes después de la inyección intramuscular de construcciones de expresión de ADN implica tanto la rama humoral como la celular del sistema inmunitario. Cuando se inyectan construcciones de ADN informador, éstas parecen estar dentro de miofibras maduras. Esto cuenta con el apoyo de pruebas según las cuales la regeneración del músculo parece aumentar la eficacia de la expresión de los plásmidos. La presentación de los antígenos podría tener lugar por medio de la presentación del complejo principal de histocompatibilidad ("major histocompatibility complex", MHC) de clase I por la célula muscular, la capatación de antígenos de los miocitos por parte de células presentadoras de antígenos ("antigen presenting cells", APC) procedentes de la médula ósea o mediante transfección directa con ADN de las APC que migran a través del músculo (revisado en Pardoll y Beckerleg, 1995, loc. cit.; Whalen y otros, 1995, loc. cit.). No parece probable que la simple presentación de antígenos por los miocitos sea completamente responsable de este fenómeno por dos razones. En primer lugar hay un conjunto cada vez más importante de datos según los cuales la presentación de antígenos en ausencia de señales coestimuladoras, tales como B7 y B7-2, da lugar a tolerización de antígenos (Chen y Nabavi, Immunity 1 (1994), 147-154). En segundo lugar, se ha descrito que el músculo tiene niveles extremadamente bajos de expresión del MHC de clase I (Karpati y otros, Ann. Neurol. 23 (1988), 64-72). Por lo tanto, parece probable que la presentación de antígenos se lleve a cabo por APC específicas que han adquirido un antígeno fagocitándolo o bien a través de la adquisición y expresión directas del gen transferido (Pardoll y Beckerleg, 1995, loc. cit.; Whalen y otros, 1995, loc. cit.). Un experimento realizado con bombardeo biolístico de partículas en el ratón parecería favorecer la última estrategia. Los ratones se bombardearon en el pabellón de la oreja y la oreja se extirpó quirúrgicamente cinco minutos después del bombardeo. Estos ratones conservaban la capacidad de llevar a cabo una respuesta inmunitaria, y aquella respuesta no difería cualitativamente de la inducida únicamente por bombardeo. Está claro que tiene que ser una población celular muy móvil la responsable del inicio y el mantenimiento de la respuesta inmunitaria en estos ratones. Se ha propuesto la célula dendrítica como esta posible célula (Fynan y otros, 1995, loc. cit.). De manera significativa, el carácter de la respuesta inmunitaria inducida por el bombardeo de partículas difiere ligeramente de la respuesta resultante de la inyección intramuscular, con predominio de IgG1 en las inyecciones intramusculares mientras que en las inyecciones intradérmicas predomina IgG2. La razón principal de esta diferencia puede atribuirse a los miocitos que en la inmunización intramuscular siguen expresando antígenos durante períodos superiores a un mes (Pardoll y Beckerleg, 1995, loc. cit.). Esta expresión continua da lugar a lo que se ha denominado encarrilamiento inmunitario (Whalen y otros, 1995, loc. cit.). El resultado práctico de este fenómeno es que la expresión muscular actúa como un estímulo continuo. Con frecuencia, las titulaciones procedentes de una sola inyección puede aumentar durante un período de 4 a 8 semanas, o incluso más. También se han observado respuestas clásicas de refuerzo con inyecciones de ADN administradas durante 6 meses después de la primera inyección. Curiosamente, es posible que las inyecciones de ADN de refuerzo, administradas durante el período de aumento de las titulaciones de anticuerpos, no tengan ningún efecto o incluso que reduzcan la respuesta al antígeno (Davis y otros, "Introduction of systemic and mucosal immunity to HBV with plasmid DNA", International Meeting on Nucleic Acid Vaccines, febrero 5-7, 1996, Bethesda, Maryland, EE.UU.).
La capacidad de generar una respuesta inmunitaria cuantificable no es a priori suficiente para la vacunación. Al contrario, la respuesta inmunitaria debe contener los elementos apropiados para proteger al huésped de la infección, la invasión y la enfermedad. Por lo tanto, la protección frente a la infección en estudios de provocación sigue siendo la única demostración más convincente de la eficacia de la vacuna. Las vacunas basadas en ADN han sido capaces de proteger a pollos frente a la exposición letal del virus de la gripe (Robinson y otros, Vacuna 9 (1993), 957-960) y a ratones de la infección por Mycoplasma pulmonis (Lai y otros, DNA and Cell Biology 14 (7) (1995), 643-651). Además, la inmunización con ADN podría proteger a los ratones frente al establecimiento de infecciones persistentes del virus de la coriomeningitis linfocítica (Martins y otros, J. of Virology 69 (4) (1995), 2.574-2.582).
Con respecto a la vacunación con ácidos nucleicos relacionada con la presente invención, la técnica anterior se resume en los siguientes artículos: Donnely y otros, 1994, loc. cit., Fynan y otros, 1995, loc. cit., Whalen y otros, 1995, loc. cit. en lo que respecta a la vacunación con ácidos nucleicos, y Turiso y otros, 1992, loc. cit. y Casal y otros, 1995, loc. cit., en lo que respecta a la vacunación parvovírica.
La técnica anterior mencionada anteriormente sólo examinó la respuesta inmunitaria de ratones a la vacunación con ácidos nucleicos. Tal como es conocido en el estado de la técnica, los resultados experimentales obtenidos con ratones no pueden generalizarse a animales como gatos, perros y visones, debido a la diferencia taxonómica entre estos animales. Por otro lado, puesto que la técnica anterior no pudo proporcionar vacunas adecuadas contra infecciones parvovíricas de cánidos, félidos y mustélidos, el problema técnico subyacente en la presente invención era proporcionar dicha vacuna. Dicha vacuna podría proteger de manera eficaz en particular a perros, gatos y visones del efecto potencialmente mortal de las infecciones por parvovirus. La solución al problema técnico anterior se consigue mediante las realizaciones caracterizadas en las reivindicaciones.
Por consiguiente, la presente invención se refiere a una vacuna antiparvovírica tal y como se ha especificado en las reivindicaciones anexas.
La presente memoria también describe una vacuna antiparvovírica que comprende moléculas de ácidos nucleicos que codifican por lo menos un epítopo específico de parvovirus y un portador farmacéuticamente aceptable. Sorprendentemente, según la presente invención, se ha observado que la inmunización con ADN "desnudo" que codifica por lo menos un epítopo específico del parvovirus produce una respuesta inmunitaria que protege a los animales vacunados de una enfermedad inducida por parvovirus tras la posterior infección parvovírica.
En una realización preferida de la vacuna antiparvovírica de la invención, por lo menos uno de dichos epítopos específicos del parvovirus es un epítopo de célula T.
El experto en la materia, al diseñar una vacuna protectora teniendo en cuenta las enseñanzas de la presente invención, es capaz de idear una vacuna que comprenda una secuencia de ácidos nucleicos que codifiquen únicamente un epítopo de célula T para utilizarlo en la vacuna de la invención.
Del mismo modo, el experto en la materia es capaz de idear una vacuna que comprenda sólo un epítopo de célula B que codifique un ADN para utilizarla en una vacuna de ácidos nucleicos según la presente invención. Por lo tanto, en otra realización preferida, la vacuna antiparvovírica comprende por lo menos un epítopo de célula B. Alternativamente, los ácidos nucleicos que codifican dicho epítopo o epítopos de célula B pueden estar comprendidos en dicha vacuna junto con ácidos nucleicos que codifican por lo menos un epítopo de célula T. Los epítopos de células T y B pueden ser codificados por las mismas o por distintas moléculas de ADN.
En otra realización preferida de la vacuna antiparvovírica según la invención, dichas moléculas de ácidos nucleicos son moléculas de ADN o moléculas de ARN. La expresión "moléculas de ADN" se utiliza en la presente en su sentido más amplio e incluye, por ejemplo, moléculas de ADNc, ADN genómico, moléculas de ADN sintético y semisintético. Igualmente, la expresión "moléculas de ARN" se utiliza en la presente en el sentido más amplio posible.
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En otra realización preferida de la vacuna antiparvovírica según la invención, dichas moléculas de ácidos nucleicos codifican las proteínas parvovíricas de la nucleocápside VP1 y/o VP2.
El genoma parvovírico tiene una longitud aproximada de 5.000 pares de bases y contiene aproximadamente cuatro marcos abiertos de lectura. Dos de estos marcos abiertos de lectura codifican VP1 y VP2, las principales proteínas de la cápside de los parvovirus. VP2 se halla dentro de VP1 y consiste en prácticamente todo excepto una pequeña parte del extremo 5' del gen VP1 o del extremo amino de la proteína VP1. Se sabe que la secuencia exclusiva para VP1 codifica un epítopo que es responsable de estimular una respuesta de célula T. La secuencia común a VP1 y VP2 codifica por lo menos un epítopo que estimula una respuesta de los anticuerpos. Las infecciones naturales con parvovirus generan respuestas protectoras considerables dentro de la semana de la infección. La expresión de todo el gen VP1 o del epítopo dentro de VP1 (y VP2) también produce inmunidad protectora a través de las ramas celular y humoral del sistema inmunitario.
De acuerdo con esto, el experto en la materia puede utilizar secuencias de ácidos nucleicos que comprenden la secuencia que codifica el epítopo VP1 como representativa de un epítopo de célula T parvovírica o una secuencia de ácidos nucleicos que codifica el epítopo VP2 como representativa de un epítopo de célula B parvovírica o una combinación de ambas para la preparación de una vacuna para vacunar a cánidos, félidos o mustélidos.
En una realización particularmente preferida de la vacuna de la invención, dichas moléculas de ácido nucleico comprenden el marco abierto de lectura completo de VP1, es decir, el marco de lectura que codifica la proteína de la nucleocápside VP1. En el caso del parvovirus canino, la longitud total del marco abierto de lectura es de 2.169 pares de bases. Dicho marco abierto de lectura se expresa preferiblemente bajo el control de un promotor exógeno adecuado.
La memoria describe además que, en la vacuna de la invención, dicho epítopo procede de un genoma de parvovirus, siendo dicho parvovirus capaz de infectar cánidos, félidos o mustélidos y preferiblemente perros, gatos o visones. Debido a la gran homología general del genoma de los parvovirus que infectan a cánidos, félidos o mustélidos, puede utilizarse una vacuna obtenida a partir de un ácido nucleico procedente de cánidos, félidos o mustélidos para vacunar satisfactoriamente a cualquiera de los otros grupos de animales mencionados.
En otra realización preferida de la vacuna de la presente invención, dichas moléculas de ácidos nucleicos que codifican por lo menos un epítopo específico de parvovirus se hallan comprendidas en un vector de expresión, siendo dicho vector de expresión funcional en células de mamíferos.
Para el experto en la materia, hay disponibles numerosos vectores de expresión adecuados para llevar a cabo la presente invención. De acuerdo con esto, los vectores mencionados en los ejemplos anexos como elementos fundamentales de partida para elaborar la vacuna de la presente invención no pretenden de ninguna manera limitar el campo de aplicación de la presente invención. Otros vectores adecuados se hallan disponibles en empresas comerciales como Invitrogen, Vical y Agracetus y pueden ser fácilmente producidos por el experto en la materia.
Otra realización preferida de la invención se refiere a una vacuna antiparvovírica, en la que dicha vacuna comprende o dicho vector de expresión codifica por lo menos un antígeno adicional.
Dicho antígeno adicional puede desempeñar la función de aumentar la respuesta inmunitaria al epítopo específico del parvovirus. En cuanto a esto, dicho antígeno adicional tiene la función de una proteína portadora. Por otro lado, el antígeno diferente puede inducir una respuesta inmunitaria a un organismo patógeno distinto y de este modo desempeñar la función de crear una vacuna multivalente. También es posible que el antígeno adicional desempeñe ambas funciones.
Hay múltiples formas de inventar un vector que codifique por lo menos un epítopo específico del parvovirus, así como por lo menos un antígeno adicional. De este modo, por ejemplo, el ácido nucleico que codifica el antígeno adicional puede ser clonado en una secuencia de ácidos nucleicos que codifique por lo menos un epítopo específico de parvovirus. Si no se localiza una secuencia de restricción adecuada dentro de dicha secuencia de ácidos nucleicos que codifica dicho epítopo específico de parvovirus, puede crearse tal secuencia de restricción utilizando procedimientos convencionales. A la inversa, la secuencia de ácidos nucleicos que codifica por lo menos dicho epítopo específico de parvovirus puede ser clonada en una secuencia de ADN que codifique por lo menos dicho antígeno adicional. El polipéptido resultante puede ser una proteína de fusión. Por otro lado, por lo menos un epítopo específico de parvovirus y por lo menos un antígeno adicional pueden ser expresados como entidades proteináceas separadas.
De las afirmaciones realizadas en el párrafo anterior se desprende claramente que una realización particular preferida de la invención se refiere a una vacuna, en la que dicho antígeno adicional es un inmunogén.
Un ejemplo de tal inmunogén, que ha resultado ser efectivo como molécula portadora, es el antígeno de superficie de la hepatitis B, y preferiblemente la proteína pre-S2 del antígeno de superficie de la hepatitis B humana.
Además, la memoria describe una vacuna que comprende el vector recombinante pGT36VP1. Dicho vector comprende una molécula de ácidos nucleicos que representa el marco abierto de lectura completo de VP1. La construcción detallada de dicho vector se describe en el Ejemplo 2.
En otra realización particularmente preferida de la vacuna de la presente invención, dicha molécula de ácidos nucleicos que codifica por lo menos un epítopo de célula T es seleccionada del grupo de epítopos codificados por la secuencia de ácidos nucleicos degenerada:
CCNAARATHTTYATHAAYYTNGCNAARAARAARAARGCNGGC;
en la que N representa cualquier base, R representa la purina, Y representa la pirimidina y H representa A, C o T;
y es preferiblemente el epítopo codificado por la secuencia de ácidos nucleicos:
CCGAAAATATTCATCAACCTGGCTAAGAAGAAGAAAGCTGGC.
En otra realización particularmente preferida de la vacuna de la presente invención, dichas moléculas de ácidos nucleicos que codifican por lo menos un epítopo de célula B son seleccionadas del grupo de epítopos codificados por la secuencia de ácidos nucleicos degenerada:
TSNGAYGGNGCNGTNCARCCNGAYGGNGGNCARCCNGCNGTNMGN;
en la que N representa cualquier base, R representa la purina, Y representa la pirimidina, S representa G o C y M representa C o A; y es preferiblemente el epítopo codificado por la secuencia de ácidos nucleicos:
TCAGACGGTGCTGTACAGCCAGATGGAGGACAACCCGCGGTTCGC.
En otra realización preferida, la vacuna de la presente invención comprende una mezcla de ácidos nucleicos que codifica ambos epítopos de célula B y célula T.
Un ejemplo de esta realización de la invención es el caso en el que cualquiera de las moléculas de ácidos nucleicos mencionadas anteriormente que codifican por lo menos dichos epítopos de células B y células T se hallen comprendidas en vectores de expresión distintos.
En otra realización preferida de la vacuna antiparvovírica de la invención, dicha vacuna comprende además un adyuvante.
Los adyuvantes para vacunación son bien conocidos en el estado de la técnica y pueden combinarse adyuvantes adecuados con las secuencias de ácidos nucleicos descritas en las realizaciones mencionadas anteriormente para la formulación de una vacuna por parte de un experto en el materia.
Una realización particularmente preferida de la presente invención se refiere a una vacuna, en la que dicho adyuvante es una molécula de ADN que comprende motivos CpG desmetilados.
Ya hace tiempo que se sabe que el ADN contiene la información genética que hace único a cada individuo. Además de esta función de la célula como plano detallado, el Dr. Arthur Krieg ha descubierto recientemente un pequeño fragmento de ADN, denominado motivo CpG, que produce una potente activación inmunitaria (Nature (1995), Vol 374, 546). El ADN con motivos CpG ("ADN CpG") puede ser fácilmente sintetizado y con unos costes reducidos, y utilizarse selectivamente para activar el sistema inmunitario. Las aplicaciones terapéuticas de la activación inmunitaria mediada por ADN CpG incluyen aumentar la eficacia de las vacunas, ayudar al sistema inmunitario a destruir el cáncer y prevenir o tratar la infección. El ADN es una parte natural del cuerpo y es posible que sea más seguro que los fármacos que se utilizan ahora para estimular el sistema inmunitario; véase solicitud de patente de EE.UU. N.º de serie 08/386,063; 08/461,036; 08/462,799.
Esta invención combina por primera vez la utilización de un ADN plásmido como vacuna junto con motivos CpG que contienen oligonucleótidos que actúan como adyuvante de la vacuna de ADN.
Las propiedades inmunológicas superiores de esta vacuna se describen en los ejemplos anexos.
Es en particular preferida la vacuna antiparvovírica, en la que dicha molécula de ADN que comprende motivos CpG desmetilados es:
TCCATGACGTTCCTGATGCT.
En otra realización particularmente preferida de la vacuna antiparvovírica de la invención, dicha molécula de ADN que comprende motivos CpG desmetilados comprendía una cadena principal de fosforotioato modificada. La modificación del fosforotioato es particularmente ventajosa, ya que al parecer también estimula las capacidades adyuvantes de los motivos CpG desmetilados; véase, por ejemplo, Krieg y otros, loc. cit.
Con la vacuna según la presente invención es posible obtener una vacunación efectiva incluso si la vacuna sólo se aplica una vez.
Además, la presente invención se refiere a la utilización de una vacuna antiparvovírica de la invención para la vacunación de cánidos, félidos o mustélidos, un procedimiento para vacunar cánidos, félidos o mustélidos mediante la administración de una dosis adecuada de la vacuna de la invención a un animal que la requiera, así como a la utilización de los ingredientes de la vacuna de la invención mencionados anteriormente en la presente, tales como los ácidos nucleicos especificados en las diversas realizaciones o los adyuvantes, tales como los motivos CpG desmetilados, o cualquier combinación de éstos para la preparación de una vacuna para la vacunación de cánidos, félidos o mustélidos contra una enfermedad parvovírica.
Preferiblemente, dichos cánidos, félidos o mustélidos son perros, gatos o visones. El experto en la materia, en este caso un veterinario, es perfectamente consciente de qué dosis y vía de aplicación debería aplicarse. Además, está familiarizado con el número de aplicaciones de la vacuna así como con el intervalo de tiempo óptimo entre la primera vacuna y la vacuna de recuerdo.
En una realización particularmente preferida, la vacuna según la invención es utilizada para un protocolo de vacunación en el que la vacuna sólo se aplica una vez y conduce a una vacunación suficiente ("vacunación de una sola dosis").
La vacuna de la invención se administra preferiblemente mediante una de las siguientes vías: intramuscular mediante aguja y jeringa, intramuscular mediante Biojector 2000®, intradérmica mediante aguja y jeringa, intradérmica mediante bombardeo de partículas, intradérmica mediante escarificación, intravenosa o intraperitoneal.
Los ejemplos ilustran la invención.
Ejemplo 1
Síntesis de epítopos antigénicos del subgrupo del parvovirus felino
Se produjeron oligonucleótidos desoxirribonucleicos sintéticos con la secuencia:
AATTCCCCGAAAATATTCATCAACCTGGCTAAGAAGAAGAAAGCTGGC
y la cadena complementaria:
TCGAGCCAGCTTTCTTCTTCTTAGCCAGGTTGATGAATATTTTCGGGG
que al hibridarse entre sí contienen proyecciones que se unirán a una secuencia de restricción Eco RI y Xho I y que, en el marco de lectura adecuado, codifican el epítopo de célula T de VP1, PKIFINLAKKKKAG. Estos oligonucleótidos se unieron a las secuencias Eco RI y Xho I en la región pre S2 del antígeno de superficie de la hepatitis humana B en el plásmido pCMV-S2S (Michel y otros, Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 92 (1995), 5307-5311) en el proceso de eliminación de la mayor parte de la región pre S2. La construcción resultante se denominó pCMVS-VP1e. El transcrito de ARN producido a partir del promotor CMV de esta construcción contiene un marco abierto de lectura con un codón de iniciación interno (AUG). Cuando se utiliza el primer ATG, el epítopo VP1, parte de la región pre S2 y toda la región S son producidas como una sola proteína. El AUG interno produce sólo la proteína S. Del mismo modo, los oligonucleótidos desoxirribonucleicos que con la secuencia:
AATTCAGACGGTGCTGTACAGCCAGATGGAGGACAACCCGCGGTTCGC
y la cadena complementaria:
TCGAGCGAACCGCGGGTTGTCCTCCATCTGGCTGTACAGCACCGTCTG
codifican el epítopo de péptido SDGAVQPDGGQPAVR, a partir de VP2, fueron clonados en el pCMV-S2S de la misma manera que el epítopo VP1. El plásmido resultante se denominó pCMVS-VP2e. Ambas secuencias de ADN que codifican estos epítopos son secuencias artificiales y no representan la secuencia de ADN de parvovirus de aparición natural.
Ejemplo 2
Clonación del gen VP1-VP2 del parvovirus canino y construcción de plásmidos que expresan genes de parvovirus
Toda la región codificante del VP1 parvovírico canino (VP1 y VP2) fue clonada mediante amplificación de la reacción en cadena de la polimerasa (RCP) a partir de sobrenadantes de cultivos celulares que contenían CPV de tipo 2a. Los cebadores se localizaban justo fuera del marco abierto de lectura en el caso de VP1, incluían las secuencias de restricción Not I (en dirección 3') y BamH I (en dirección 5'), y tenían las siguientes secuencias:
cgg gat ccG AGA CGA CTT GGA TTA AGG TA para el cebador en dirección 5', y:
gtg cgg ccg CTA GTT GAT ATG TAA TAA AC para el cebador en dirección 3'.
El producto de la RCP se restringió secuencialmente con Not I y BamH I, y se unió al plásmido de expresión bacteriana pGT36 digerido de un modo similar (Conry y otros, Cancer Gene Therapy 2 (1) (1995), 33-38) en el sentido de la orientación. La orientación y la secuencia de VP1 (y VP2) fueron confirmadas mediante secuenciación de ADN de todo el inserto de VP1. Se hará referencia a este ADN clonado como pGT36VP1.
Ejemplo 3
Expresión del gen VP1-VP2 de parvovirus clonado en células cultivadas
Se transfectó un fibroblasto murino (NIH 3T3) con el clon pGT36VP1. A continuación se analizaron las células en busca de la presencia de proteínas parvovíricas caninas inmunorreactivas mediante análisis de inmunofluorescencia con antisuero canino para parvovirus canino. El patrón de tinción era indistinguible del de las células infectadas con parvovirus canino, mientras que los controles negativos (pGT36, no ADN) mostraban ausencia de tinción, lo que indicaba que el clon pGT36VP1 producía un producto proteínico identificado por anticuerpos antiparvovíricos.
Ejemplo 4
Vacunación de perros con vacunas de ácidos nucleicos (epítopo) de parvovirus
Se vacunó a tres perros de 11 semanas de vida con 150 \mug de pCMVS-VP1e y 100 \mug de oligonucleótido de fosforotioato sintético TCCATGACGTTCCTGATGCT (ISO) en el músculo cuádriceps derecho, se vacunó a tres perros de 11 semanas de vida con 150 \mug de pCMVS-VP2e y con 100 \mug de ISO, y se vacunó a tres perros de 11 semanas de vida con 150 \mug de pCMVS-VP1e, 150 \mug de pCMVS-VP2e y 100 \mug de ISO. Al cabo de 3 semanas, se revacunó a los perros con dosis idénticas y se les puso bajo control para ver si aparecía titulación de anticuerpos de proteína portadora, antígeno de superficie de la hepatitis B y epítopos parvovíricos caninos. Se observó una respuesta considerable de los anticuerpos contra la hepatitis y el parvovirus canino en los animales de los grupos del pCMVS-VP1e más pCMVS-VP2e, y del pCMVS-VP2e. No se esperaba ninguna respuesta de los anticuerpos al parvovirus canino en el grupo pCMVS-VP1e, ya que éste representa un epítopo de célula T. Esto se confirmó experimentalmente. La respuesta fue mayor en el grupo pCMVS-VP1e más pCMVS-VP2e, lo que indicaba que la vacuna multivalente era más efectiva.
Ejemplo 5
Vacunación de animales con un ácido nucleico que expresa los genes VP1 y VP2 de parvovirus
(a) Uno de tres ratones Balb-c vacunados con pGT36VP1 manifestó una respuesta inmunitaria, en particular anticuerpos contra el parvovirus canino, una semana después del bombardeo de partículas con 1 \mug del plásmido.
(b) Tres perros Beagle jóvenes (edad aproximada de 6 meses) sin titulación de anticuerpos contra el parvovirus canino fueron vacunados con 150 \mug de pGT36VP1 y 100 \mug de ISO en el músculo cuádriceps derecho. Se observó una respuesta considerable por parte de los anticuerpos contra el parvovirus canino que inició dentro de las 2 semanas de vacunación en un animal, y siguió aumentando durante por lo menos 3 semanas en los tres animales. En un Beagle de control, al que se habían inyectado los vectores ADN e ISO no se observó aumento de la titulación de anticuerpos.
(c) Seis perros jóvenes sin titulación de anticuerpos contra el parvovirus canino fueron vacunados con 400 \mug de pGT36VP1 en el músculo cuádriceps derecho. Tres de estos perros recibieron otros 400 \mug de ADN procedente de E. coli como adyuvante inmunoestimulador, que se administró conjuntamente con pGT36VP1. Los seis perros mostraron respuesta de los anticuerpos contra el parvovirus dentro de las dos semanas de la vacunación, con una titulación considerablemente superior a la considerada protectora en de 3 a 5 semanas. En los tres perros que recibieron ADN inmunoestimulador, se alcanzó una titulación de anticuerpos más rápidamente que en los otros perros, lo que indica un efecto estimulador de la inmunidad CpG positivo.
Ejemplo 6
Protección de perros, vacunados con una vacuna de ácidos nucleicos que expresa los genes VP1 y VP2 de parvovirus, de la infección por exposición al parvovirus canino
(a) Los tres perros Beagle vacunados en el ejemplo 5 fueron expuestos a una dosis trivalente estándar de parvovirus canino, habitual en los ensayos con vacunas parvovíricas, por vía intranasal. Ninguno de los perros mostró signos de enfermedad relacionada con el parvovirus, lo que indica protección de la enfermedad. En dos perros se observó un ligero aumento de las respuestas de los anticuerpos contra el parvovirus canino, que coincidía con la tendencia anterior a la exposición, sin eliminación fecal de parvovirus, lo que indica protección completa de la infección. El Beagle de control mostró signos de enfermedad parvovírica después de la exposición, acompañados de un aumento radical de la respuesta de los anticuerpos contra el parvovirus canino.
(b) Cuatro perros jóvenes sin titulación de anticuerpos contra el parvovirus canino fueron vacunados por vía intramuscular con dosis de pGT36VP1 que incluían 200, 400, 600, y 800 \mug de plásmido. A la semana, todos los perros habían fabricado anticuerpos contra el parvovirus canino, que a las 2 semanas alcanzaron una titulación protectora máxima. En un perro de control negativo al que se inyectó solución salina no se observaron anticuerpos contra el parvovirus canino. En el perro que recibió 600 \mug de ADN plásmido la titulación de anticuerpos se mantuvo durante más tiempo que en los otros perros. Todos los perros fueron revacunados con el mismo preparado y dosis 16 semanas después de la inyección inicial. Todos los perros excepto el control negativo y el que recibió una dosis de 200 \mug mostraron una respuesta de anticuerpos anamnéstica. Todos los perros excepto el control negativo, además del que recibió la dosis de 200 \mug, mostraron, tras la reinyección, una titulación de anticuerpos neutralizantes en suero que se sabe que es protectora. Todos los perros fueron expuestos, durante 24 semanas después de la inyección inicial, a un virus natural virulento que consta de tres virus aislados que se sabe que causan enfermedad en perros vacunados. Todos los perros vacunados con una vacuna de ácidos nucleicos pGT36VP1 fueron protegidos de la infección y la enfermedad. El perro de control negativo presentó una enfermedad clínica característica del parvovirus canino y eliminó virus a través de las heces. Este experimento demuestra que las dosis de pGT36VP1 que se hallan entre 200 y 800 \mug de plásmido, administradas como inyección principal y de recuerdo, estimularon la producción de una titulación de anticuerpos y protegieron de la exposición virulenta.
(c) Tres perros jóvenes sin titulación de anticuerpos contra el parvovirus canino fueron inyectados con 150 \mug de pGT36VP1 más 150 g de ADN oligonucleótido sintetizado para contener CpG óptimos. Todos los perros fabricaron anticuerpos contra el parvovirus canino y fueron protegidos de la exposición al virus virulento. Este experimento demuestra que la vacunación con una dosis más baja de pGT36VP1 conferirá inmunidad protectora cuando la vacunación se amplifique con oligonucleótidos inmunoestimuladores.
(d) Seis perros jóvenes sin titulación de anticuerpos contra el parvovirus canino fueron inyectados con una sola dosis de 200 o 800 \mug de pGT36VP1. En todos los perros se observó una titulación de anticuerpos contra el parvovirus canino, que disminuyó a niveles indetectables a las 12 semanas de la vacunación. Sin administrarles una vacunación de recuerdo, todos los perros fueron expuestos a un virus virulento y ninguno se infectó o se puso enfermo. Este experimento demuestra que la inmunidad protectora se adquiere después de una única dosis de pGT36VP1 y esta protección es independiente de la presencia cuantificable de anticuerpos contra el parvovirus canino. Este resultado puede interpretarse como resultado de la inmunidad celular conferida por las células T de memoria inmunológica de vida larga.
Estos estudios demuestran que las secuencias de ADN seleccionadas a partir del subgrupo del parvovirus felino, una vez insertadas en un plásmido de expresión de mamíferos, pueden transfectar células en cultivo y en animales. Además, se demostró que nuestros plásmidos de expresión de ADN pueden inducir una respuesta de los anticuerpos en animales que puede conducir a la protección frente a una exposición vírica virulenta.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NOMBRE: Colpan, Metin
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
CALLE: Uhland Str. 5
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CIUDAD: Essen
\vskip0.500000\baselineskip
(E)
PAÍS: Alemania
\vskip0.500000\baselineskip
(F)
CÓDIGO POSTAL: 45219
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Vacunación con ácidos nucleicos para infecciones parvovíricas
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
NÚMERO DE SECUENCIAS: 14
\vskip0.800000\baselineskip
(iv)
PRESENTACIÓN INFORMÁTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
MEDIO: Disco flexible
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
ORDENADOR: PC IBM o compatible
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
PROGRAMA INFORMÁTICO: PatentIn Release #1.0, Versión #1.30 (EPO)
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 1:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 42 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CCNAARATHT TYATHAAYYT NGCNAARAAR AARAARGCNG GC
\hfill
42
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 2:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 42 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CCGAAAATAT TCATCAACCT GGCTAAGAAG AAGAAAGCTG GC
\hfill
42
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 3:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 45 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TSNGAYGGNG CNGTNCARCC NGAYGGNGGN CARCCNGCNG TNMGN
\hfill
45
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 4:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 45 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 4:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TCAGACGGTG CTGTACAGCC AGATGGAGGA CAACCCGCGG TTCGC
\hfill
45
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 5:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 5:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TCCATGACGT TCCTGATGCT
\hfill
20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 6:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 48 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 6:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AATTCCCCGA AAATATTCAT CAACCTGGCT AAGAAGAAGA AAGCTGGC
\hfill
48
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 7:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 48 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 7:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TCGAGCCAGC TTTCTTCTTC TTAGCCAGGT TGATGAATAT TTTCGGGG
\hfill
48
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 8:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 14 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 8:
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Pro Lys Ile Phe Ile Asn Leu Ala Lys Lys Lys Lys Ala Gly}
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 9:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 48 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 9:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AATTCAGACG GTGCTGTACA GCCAGATGGA GGACAACCCG CGGTTCGC
\hfill
48
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 10:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 48 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 10:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TCGAGCGAAC CGCGGGTTGT CCTCCATCTG GCTGTACAGC ACCGTCTG
\hfill
48
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 11:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 15 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: péptido
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 11:
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ser Asp Gly Ala Val Gln Pro Asp Gly Gly Gln Pro Ala Val Arg}
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 12:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 29 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 12:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CGGGATCCGA GACGACTTGG ATTAAGGTA
\hfill
29
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 13:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 29 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 13:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
GTGCGGCCGC TAGTTGATAT GTAATAAAC
\hfill
29
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA LA SEC ID N.º 14:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
HEBRA: única
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
HIPOTÉTICA: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID N.º 14:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TCCATGACGT TCCTGATGCT
\hfill
20

Claims (21)

1. Vacuna antiparvovírica, que protege al animal vacunado de una enfermedad inducida por parvovirus tras la posterior infección parvovírica, que comprende moléculas de ácidos nucleicos comprendidas en un plásmido, siendo dicho plásmido funcional en un mamífero, que codifican por lo menos un epítopo VP1 y/o VP2 específico de parvovirus y un portador farmacéuticamente aceptable, en el que dicho parvovirus es capaz de infectar cánidos, félidos, mustélidos, perros, gatos o visones.
2. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 1, en la que por lo menos uno de dichos epítopos específicos de parvovirus es un epítopo de célula T.
3. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 1 ó 2, en la que por lo menos uno de dichos epítopos específicos de parvovirus es un epítopo de célula B.
4. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en la que dichas moléculas de ácidos nucleicos son moléculas de ADN o moléculas de ARN.
5. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en la que dichas moléculas de ácidos nucleicos codifican las proteínas de la nucleocápside del parvovirus VP1 y/o VP2.
6. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 5, en la que dichas moléculas de ácidos nucleicos comprenden el marco de lectura abierto completo de VP1.
7. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en la que dicha vacuna comprende o dicho plásmido codifica por lo menos un antígeno adicional.
8. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 7, en la que dicho antígeno adicional es un inmunogén.
9. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 2 a 8, en la que dicha molécula de ácido nucleico que codifica por lo menos un epítopo de célula T se selecciona del grupo de epítopos codificados por la secuencia degenerada de ácidos nucleicos:
CCNAARATHTTYATHAAYYTNGCNAARAARAARAARGCNGGC;
donde N representa cualquier base, R representa purina, Y representa pirimidina y H representa A, C o T.
10. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 9, en la que el epítopo codificado por la secuencia de ácidos nucleicos es:
CCGAAAATATTCATCAACCTGGCTAAGAAGAAGAAAGCTGGC.
11. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 3 a 10, en la que dichas moléculas de ácidos nucleicos que codifican por lo menos un epítopo de célula B seleccionado del grupo de epítopos codificados por la secuencia degenerada de ácidos nucleicos:
TSNGAYGGNGCNGTNCARCCNGAYGGNGGNCARCCNGCNGTNMGN;
donde N representa cualquier base, R representa purina, Y representa pirimidina, S representa G o C y M representa C o A.
12. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 11, en la que el epítopo codificado por la secuencia de ácidos nucleicos es:
TCAGACGGTGCTGTACAGCCAGATGGAGGACAACCCGCGGTTCGC.
13. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12, que comprende una mezcla de ácidos nucleicos que codifican tanto epítopos de célula T como de célula B.
14. Vacuna antiparvovírica según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13, que comprende además un adyuvante.
15. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 14, en la que dicho adyuvante es una molécula de ADN que comprende motivos CpG desmetilados.
16. Vacuna antiparvovírica según la reivindicación 15, en la que dicha molécula de ADN que comprende motivos CpG desmetilados es:
TCCATGACGTTCCTGATGCT.
17. Vacuna antiparvovírica según las reivindicaciones 15 ó 16, en la que dicha molécula de ADN comprende un esqueleto con modificación fosforotioato.
18. Uso de las moléculas de ácidos nucleicos tal y como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 17, para la preparación de una vacuna según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 17 para la vacunación de cánidos, félidos o mustélidos.
19. Uso según la reivindicación 18, en el que dichos cánidos, félidos o mustélidos son perros, gatos o visones.
20. Uso según las reivindicaciones 18 ó 19, en el que dicha vacuna se administra mediante una de las siguientes vías: intramuscular mediante aguja y jeringa, intramuscular mediante Biojector 2000®, intradérmica mediante aguja y jeringa, intradérmica mediante bombardeo de partículas, intradérmica mediante escarificación, intravenosa o intraperitoneal.
21. Uso según las reivindicaciones 18 ó 19, en el que la inmunización se consigue mediante una sola aplicación de la vacuna.
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