ES2312457T3 - Proceso para enumerar e identificar microorganismos. - Google Patents
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Abstract
Un proceso para enumerar e identificar microorganismos, que comprende: (a) filtrar una muestra líquida a través de una membrana apropiada para la retención de microorganismos, (b) incubar dicha membrana con cualquier microorganismo, (c) aplicar un análisis de enumeración a la superficie de dicha membrana para enumerar las colonias de microorganismos que están presentes y contar el número presente, (d) aplicar una hibridación de PNA a dicha membrana para determinar la presencia/ausencia de uno o más microorganismos especificados, y contar el número detectado, y (e) emparejar los organismos encontrados por dicho análisis de enumeración con las ubicaciones de las colonias de organismos encontrados por dicha etapa de hibridación de PNA y eliminar aquellas ubicaciones encontradas por la hibridación de PNA que no corresponden con las ubicaciones encontradas por el análisis de enumeración.
Description
Proceso para enumerar e identificar
microorganismos.
La presente invención se refiere a un proceso
para enumerar y luego identificar microorganismos. Más
particularmente, se refiere a un proceso para enumerar e
identificar microorganismos sobre un dispositivo de membrana.
El método tradicional para determinar la
presencia o ausencia de microorganismos en líquidos como agua,
productos alimentarios como zumos, o medicamentos, ha sido filtrar
el líquido a través de una membrana apropiada para atrapar
cualquier microorganismo presente en el líquido sobre la superficie
de la membrana. Después, la membrana se coloca en una placa de
medio de crecimiento, como una Placa Petri rellena de agar u otro
medio apropiado y después se incuba durante varios días para
permitir el desarrollo de colonias de los organismos capturados.
Después, las placas se eliminan y se examinan visualmente para que
pueda contarse el número de colonias presentes. Si el número es lo
suficientemente alto se pueden realizar más análisis para determinar
exactamente qué organismos están presentes. (Normalmente, la mera
presencia de organismos no es, en sí, un indicador de que el líquido
es peligroso y se requiere más trabajo para identificar los
organismos especificados).
Recientemente, se han introducido análisis
moleculares como matrices de ADN, amplificación de ácidos nucleicos
y secuenciación de ácidos nucleicos. La identificación tradicional
se hace utilizando medios de selección y una variedad de análisis
bioquímicos.
Se conoce que la simple enumeración de dichos
organismos puede agilizarse utilizando un análisis de
ATP-bioluminiscencia, como el que se enseña en la
Patente de EE.UU. 5.627.042.
También se ha sugerido que se pueden utilizar
los ensayos de sonda PNA para detectar la presencia y el número de
microorganismos especificados. Véase la Patente de EE.UU. 5.773.571.
Un inconveniente para el uso de este sistema es la presencia de
puntos que no provienen de la presencia de microorganismos (falsos
positivos). Algo, aún no determinado, causa la generación de una
señal que indica la presencia de un organismo diana que, cuando se
investiga más a fondo, revela que, de hecho, no hay organismo
presente en ese lugar. Probablemente, esto está causado por la
unión no específica de moléculas sonda a las membranas. Esto hace
inútil el análisis por ser poco fiable, e incluso a menudo, la
detección de un organismo diana es lo suficientemente fallida en el
fluido que está siendo analizado.
Además, ninguno de estos análisis han sido
capaces de detectar la presencia de bajos niveles de organismos
contaminantes en grandes volúmenes de líquido, e identificar
rápidamente los organismos de incumbencia con la misma muestra y en
un tiempo relativamente corto.
La presente invención proporciona dicho
proceso.
US-A-5 624 815
describe un método para analizar material sólido en una muestra
líquida que comprende las etapas de: distribuir equitativamente la
muestra por paso a través de un número de pocillos diferenciados
adaptados para retener el material sólido, la concentración de
material sólido siendo tal que esté ausente en, al menos, un
pocillo; y analizar los pocillos para la presencia de material
sólido retenido. US-A-5 624 815
también describe un instrumento adaptado pasa su uso en un método
para analizar material sólido en una muestra líquida cuyo
instrumento comprende la combinación de: un contenedor para la
muestra; una unidad que comprende un número de pocillos
diferenciados adaptados para retener el material sólido y permitir
el paso de líquido bajo la aplicación de presión reducida;
estructura para extraer líquido del contenedor y a través de los
pocillos bajo presión reducida; y un colector u otro elemento que
proporcione distribución uniforme de la muestra que pasa del
contenedor a los pocillos.
K. F. Reineke y cols., "Direct enumeration of
enteric bacteria in food, beverages and water in situ
hybridisation to 16S ribosomal RNA", Abstracts of the General
Meeting of the American Society For Microbiology, Vol. 99, 1999,
page 516, XP002199783. 99^{th} General Meeting of the American
Society for Microbiology describe que se utilizó una sonda de
oligonucleótido fluorescente, complementaria a una secuencia de ARN
ribosomal 16S de Escherichia coli publicada para dirigir la
cuantificación de células por una hibridación in situ sobre
filtros de membrana.
WO-A-99/55916
describe métodos, kits y composiciones apropiadas para la detección
mejorada, cuantificación y análisis de secuencias diana de ácido
nucleico utilizando ensayos de hibridación basados en sondas.
EP-A-0 760 008
describe sondas de ácido nucleico específicas de péptido (PNA) para
detectar una enfermedad transmitida sexualmente causada por
Neisseria gonorrhoeae o Chlamidia trachomatis, que
comprende unidades de N-(2-aminoetil) glicina en
enlace amida con la nitrógeno glicina conectada a nucleobases
naturales o nucleobases no naturales por un enlazador carbonil
metileno y dichas pruebas capaces de hibridar con ARNr 16S o 23S o
ADNr de Neisseria gonorrhoeae o Chlamidia trachomatis.
PNA es una molécula muy estable con una afinidad muy alta por ácido
nucleico, permitiendo que una sonda PNA sea más corta que las sondas
convencionales de ácido nucleico.
La presente invención se refiere a un proceso
para la enumeración e identificación de especies específicas de
microorganismos en grandes volúmenes de líquido utilizando primero
un análisis de enumeración como un ensayo de
ATP-bioluminiscencia o un análisis de indicación de
fluorescencia para enumerar el número total de organismos y
después, un ensayo de sonda PNA o ensayos para determinar la
presencia de organismos seleccionados o diana. Un atributo clave
del presente proceso es que, en ambos análisis, se utiliza la misma
muestra de membrana y de organismos. Esto permite la rápida
detección e identificación de organismos presentes, sólo haciendo e
incubando una muestra para ambos análisis. Además, utilizando la
misma muestra y membrana para ambos análisis, se puede eliminar
cualquier falso positivo, comparando las ubicaciones de los
organismos indicados por cada análisis relativo a una o más marcas
de registro y eliminando aquellas que no aparecen en el mismo lugar
en ambos análisis.
Es un objeto de la presente invención
proporcionar un proceso para enumerar e identificar
microorganismos.
La presente invención proporciona un proceso
para enumerar y identificar microorganismos, que comprende:
- (a) filtrar una muestra líquida a través de una membrana apropiada para la retención de microorganismos, (b) incubar la membrana con cualquier microorganismo, (c) aplicar un análisis de enumeración a la superficie de la membrana para enumerar las colonias de microorganismos que están presentes y contar el número presente, (d) aplicar una hibridación de PNA a la membrana para determinar la presencia/ausencia de uno o más microorganismos especificados, y contar el número detectado, y (e) emparejar los organismos encontrados por el análisis de enumeración con las ubicaciones de las colonias de organismos encontrados por la etapa de hibridación de PNA y eliminar aquellas ubicaciones encontradas por la hibridación de PNA que no corresponden con las ubicaciones encontradas por el análisis de enumeración.
La Figura 1 muestra un diagrama bloque de una
realización preferida de la presente invención.
La presente invención se relaciona con un
proceso para la rápida enumeración e identificación de
microorganismos en líquidos o sólidos solubles como polvos, sales,
cremas, pastillas, etc. Dichos fluidos incluyen, pero no se limitan
a, agua, potable o no, lácteos como leche, cerveza, vino, refrescos,
zumos de frutas, medicamentos, parenterales, contadores de aire
bacterianos, etc.
La Figura 1 muestra un proceso preferido de
acuerdo a la presente invención. En este proceso, como la primera
etapa 1, se obtiene una muestra, en forma líquida, del producto a
ser diagnosticado. Por ejemplo, en muestras medioambientales, como
una fuente de agua, se obtiene una muestra de agua de río, manantial
o embalse. Para un producto alimenticio o farmacéutico, se toma una
muestra de la mercancía (típicamente es la mercancía terminada,
aunque no tiene por qué). Si es en forma líquida, simplemente se
utiliza como tal o, si es necesario debido a la viscosidad, se
puede diluir con agua desionizada. Si es en forma sólida, se
disuelve o dispersa en un líquido apropiado, típicamente agua o una
solución amortiguadora u otro medio cualquiera que no mate o estrese
excesivamente a los organismos presentes.
Después, en la segunda etapa 2, se filtra a
través de un filtro de membrana y luego, el filtro se coloca sobre
un medio de crecimiento como agar (típicamente contenido en una
Placa Petri) y se incuba como en la tercera etapa 3 para permitir
surgir a las micro-colonias (visibles utilizando ATP
bioluminiscencia e imagen, pero no visibles a ojo) de los
organismos atrapados.
Un instrumento preferido para sujetar el filtro
es un filtro embudo MILLIFLEX^{TM} que tiene 50 mm de diámetro y
100 ml de capacidad, disponible en Millipore Corporation de Bedford,
Massachussets. En su lugar, también se pueden usar otras membranas
de sujeción como filtros de sujeción o embudos de cristal o acero
inoxidable. Dichos instrumentos son bien conocidos y están
disponibles en una variedad de fuentes que incluyen Millipore
Corporation de Bedford, Massachussets y Fisher Scientific, Inc, de
Pittsburg, Pennsylvania. Una membrana preferida es un filtro
MicroStar^{TM}, disponible en Millipore Corporation de Bedford,
Massachussets. Este filtro es un filtro de PVDF de un tamaño de
poro nominal de 0,45, que tiene una serie de compartimentos
hidrofílicos separados por divisiones hidrofóbicas que se extienden
a lo largo la toda la profundidad del filtro. Otros filtros que son
útiles es esta invención incluyen filtros
EZ-Pak^{TM}, filtros S-Pak^{TM},
filtros S-Pak^{TM} Plus y filtros AO^{TM} o
SO^{TM}, disponibles en Millipore Corporation de Bedford,
Massachussets.
En la tercera etapa 3, se incuba el filtro/medio
de cultivo durante un corto periodo de tiempo, típicamente de 1 a
aproximadamente 24 horas. La duración de incubación depende de la
precisión necesitada por el análisis, la relación de crecimiento de
los microorganismos a detectar, el estrés al que el organismo está
sujeto (a mayor estrés impuesto, mayor tiempo de incubación
necesario), del tipo de organismo a detectar y de la sensibilidad
del análisis utilizado para determinar la presencia de ese organismo
(a menor sensibilidad del análisis, mayor tiempo de incubación para
asegurar que la colonia del organismo diana ha crecido a un tamaño
apropiado), la rapidez deseada del análisis frente a la precisión
de los resultados de los análisis y otros muchos factores. La
temperatura de incubación puede ser de aproximadamente la
temperatura ambiente (24ºC) a aproximadamente 40ºC. Se pueden usar
temperaturas más altas o más bajas dependiendo del (los)
organismo(s) que se desean detectar y de sus temperaturas
óptimas de incubación.
Se debería entender que los ensayos aquí
dirigidos con ambos análisis de enumeración y de PNA son sobre
micro-colonias de microorganismos que se
desarrollan a partir de una sola célula capturada en la membrana, es
decir, se enumera el número de organismos individuales en una
muestra analizada por detección de colonias que surgen por
crecimiento por división de aquellos mismos organismos
individuales, más que por detección directa de organismos
individuales.
Tras un periodo de incubación apropiado para el
filtro sobre el medio, el filtro se extrae del medio, se seca,
luego se rocía con reactivos, y se somete a un análisis de
enumeración 4.
Un análisis de enumeración preferido es un
análisis ATP/bioluminiscencia. En dicho análisis, la muestra se
expone a un agente permeabilizante apropiado, como el agente de
liberación de ATP del kit de reactivos MicroStar (RMLL00000)
disponible en Millipore Corporation de Bedford, Massachussets.
Luego, el ATP se detecta por el uso de un reactivo de
bioluminiscencia, como un Reactivo de Bioluminiscencia del kit de
reactivos de MicroStar, disponible en Millipore Corporation de
Bedford, Massachussets. Después, la luminiscencia se lee visualmente
o digitalmente por un aparato de imagen, como una cámara CCD con
procesador de imagen. Dicho sistema se vende como sistema
MicroStar^{TM}, disponible de Millipore Corporation de Bedford,
Massachussets. Con cualquier medio utilizado, se puede realizar el
recuento y la ubicación de las colonia microbianas detectadas.
De forma alternativa, uno puede utilizar el
proceso de la Patente de EE.UU. 5.627.042. En este proceso, el ATP
se extrae de un organismo vivo sobre una membrana por el uso de un
agente de extracción como NRB^{TM} disponible en Lumac, Co. y
después, se somete a un agente de bioluminiscencia como
Lumit-PM^{TM} de Lumac Co.. Luego, se mide la
luminiscencia en un instrumento que detecta y graba la localización
de la luz emitida por la reacción ATP/reactivo. Sin embargo, no se
prefiere este proceso debido a que actualmente rompe la pared
celular, derramando su contenido sobre la superficie de la
membrana. Aunque la membrana tiene partes hidrofóbicas, no se
garantiza que alguna contaminación cruzada no las tenga.
Una alternativa más es usar un sistema para
enumeración que no dependa de la detección de ATP, pero que utilice
algún otro mecanismo para determinar la presencia y el número de
organismos. Dicho sistema es ScanRDI disponible en Chemunex. En
lugar de usar ATP, se utiliza una etiqueta fluorescente que es
absorbida por los organismos (análisis de absorción de etiqueta
fluorescente) y luego se detecta bajo luz fluorescente.
Tras el análisis de enumeración, la muestra se
somete a un ensayo de sonda PNA 5 para los organismos diana. Las
sondas PNA son sondas de ácido nucleico peptídicas (más que sondas
basadas en ADN) y se diseñan para entrar en la célula e hibridar
con una porción seleccionada de una hebra de ARN o ADN de la célula.
Deben ser diseñadas de tal forma que hibriden específicamente sólo
con una sola especie o con un género entero. Las sondas contienen
una etiqueta como una enzima, hapteno, fluoróforo o radioisótopo que
indica su presencia en la célula. Dichas sondas están disponibles
en una variedad de fuentes que incluyen Sondas Boston, incorporadas
para Bedford, Massachussets bajo nombres comerciales como sondas
Eco06^{TM} para la detección de E. Coli y sondas
BacUni^{TM} para la simple detección de todas las bacterias. El
método para hacer y utilizar dichas sondas se enseña en las
Patentes de EE.UU. 5.714.331; 5.736.336; 5.773.571; 5.912.145 y
5.985.563 y en las solicitudes de PCT publicadas WO 98/24933 y
99/49293.
En esta etapa, los organismos sobre el mismo
filtro, se someten de nuevo a agentes de permeabilización y fijación
como etanol y glutaraldehido, y se aplican sondas PNA a las células
permeables. Se pueden seleccionar una o más sondas PNA para
detectar una o más especies de organismos. Algunas existen para
organismos individuales como E. Coli o Salmonella sp., L.
Brevis, etc, mientras que otras son más universales y
simplemente detectan la presencia de bacterias o levaduras u
hongos. Tras la aplicación de la(s) sonda(s), se
permite reposar a la membrana durante un periodo de tiempo,
típicamente 10 minutos a 1 hora y luego se lava para eliminar
cualquier sonda no hibridada. Dependiendo de las sondas
seleccionadas y del método utilizado para incorporar una etiqueta
detectable sobre ésta, se puede usar una película de rayos X, una
película instantánea, fluorescencia, colorimetría o cualquier otro
instrumento para detectar la presencia de la etiqueta de las sondas
que se han hibridado al ADN o ARN del organismo y con ello,
identificar el número y tipo de cada organismo diana presente.
Se prefiere utilizar un material
quimioluminiscente y después, detectar la presencia de la luz
química por una fotografía o un aparato digital que graba imágenes
como el sistema MicroStar^{TM} disponible por Millipore
Corporation de Bedford, Massachussets.
En esta realización, tras haber completado las
etapas de enumeración y de la sonda PNA, los resultados de cada
análisis se comparan entre sí para determinar si hay indicios de
colonias de organismos en un análisis en una cierta ubicación que
no se encuentren en la misma ubicación con el otro análisis. Esto
permite que se determine cualquier falso positivo de los
resultados. Esto es particularmente verdadero con el análisis de
sonda PNA que a veces identifica una ubicación como que contiene una
colonia de un organismo cuando mas análisis indican que no hay
colonia presente en esa ubicación. Los medios más simples para
realizar este uso es el sistema MicroStar^{TM} disponible en
Millipore Corporation de Bedford, Massachussets y superponer o ver
en paralelo las dos imágenes. De forma alternativa, se puede
utilizar un programa de software para comparar automáticamente los
dos resultados de los análisis y descartar cualquier mancha que no
se encuentre en la misma ubicación en ambos análisis.
Esto es particularmente útil en aplicaciones
donde se requiere o desea la enumeración e identificación de
microorganismos.
Se realizaron los análisis para determinar si
los presentes procesos pueden ser utilizados para enumerar y
distinguir don microorganismos estrechamente relacionados,
Escherichia coli y Salmonella choleraesuis.
Se diluyeron cultivos puros de Escherichia
coli y Salmonella choleraesuis a unas 50 unidades
formadoras de colonias estimadas por 100 \mul en una solución
salina estéril al 0,85%. Algunos de los dos cultivos se mezclaron y
filtraron como una mezcla mientras que el resto se filtró de forma
separada a través de discos de filtro MicroStar^{TM} en un embudo
filtro de cristal, ambos disponibles en Millipore Corporation de
Bedford, Massachussets.
Las membranas se incubaron durante seis horas.
Las membranas de cada conjunto (tanto mezcladas como de organismos
individuales) se sometieron a un ensayo de enumeración
ATP-bioluminiscencia utilizando el kit de Reactivos
de MicroStar^{TM} RMLL00000 disponible en Millipore Corporation de
Bedford, Massachussets para determinar el número de colonias sobre
cada membrana. También se almacenaron muestras de cada conjunto en
placas de medio de crecimiento tradicional y se incubaron durante
toda la noche a 30ºC.
Luego, las mismas membranas se sometieron a un
ensayo de sonda PNA utilizando sondas Eco06^{TM} específica de
E. Coli disponibles en Sondas Boston, Inc. de Bedford,
Massachussets y a un ensayo de sonda PNA para detectar todas las
bacterias, incluyendo las dos utilizadas en este análisis (sondas
BacUni^{TM} disponibles en Sondas Boston, Inc. de Bedford,
Massachussets).
En las membranas donde la mezcla de organismos
se filtró sobre la misma membrana, el número de colonias detectadas
utilizando la sonda PNA específica para E. Coli igualó el
número de células de E. Coli filtradas, mientras que las
colonias observadas con la sonda universal de bacterias igualó a la
suma de ambos organismos presentes.
Por el contrario, se detectaron números
equivalentes de colonias sobre las membranas que filtraron sólo la
E. Coli, usando cualquier sonda. Las membranas que solo
filtraron S. Choleraesuis sólo podían ser detectadas
utilizando la sonda universal.
De forma adicional, los organismos detectados
por las sondas PNA se emparejaron, en las localizaciones
encontradas, por el ensayo de ATP-bioluminiscencia
con el fin de eliminar cualquier falso positivo causado por la
membrana o su contaminación.
Estos resultados eran consistentes con los
números de colonias detectadas por los ensayos de ATP o sobre placas
de crecimiento control. Esto demuestra que una especie microbiana
específica puede ser detectada y enumerada utilizando una
combinación de ensayos de sondas de ATP y PNA sobre la membrana.
Claims (10)
1. Un proceso para enumerar e identificar
microorganismos, que comprende:
- (a) filtrar una muestra líquida a través de una membrana apropiada para la retención de microorganismos, (b) incubar dicha membrana con cualquier microorganismo, (c) aplicar un análisis de enumeración a la superficie de dicha membrana para enumerar las colonias de microorganismos que están presentes y contar el número presente, (d) aplicar una hibridación de PNA a dicha membrana para determinar la presencia/ausencia de uno o más microorganismos especificados, y contar el número detectado, y (e) emparejar los organismos encontrados por dicho análisis de enumeración con las ubicaciones de las colonias de organismos encontrados por dicha etapa de hibridación de PNA y eliminar aquellas ubicaciones encontradas por la hibridación de PNA que no corresponden con las ubicaciones encontradas por el análisis de enumeración.
2. El proceso de la reivindicación 1, donde la
muestra líquida es de 50 a 1000 mililitros, la membrana se
selecciona del grupo que consiste en membrana de PVDF que tiene
zonas hidrofílicas separadas por divisiones hidrofóbicas, las
membranas se incuban durante 1 a 24 horas a una temperatura de
aproximadamente 24ºC a aproximadamente 40ºC y el análisis de
enumeración se selecciona del grupo que consiste en un análisis
ATP-bioluminiscencia y un análisis de absorción de
etiqueta fluorescente.
3. El proceso de las reivindicaciones 1 o 2,
donde el análisis de enumeración es un análisis de
ATP/bioluminiscencia y se lee por un sistema de imagen digital.
4. El proceso de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, donde la etapa de hibridación de PNA se lee
por un proceso seleccionado entre el grupo que consiste en película
de rayos X, película instantánea, detección visual de una reacción
colorimétrica sobre la membrana, detección visual de una etiqueta
fluorescente o por imagen digital.
5. El proceso de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4 que, adicionalmente comprende entre las
etapas (b) y (c) una etapa (b1) de registro de membrana con el fin
de indicar un punto específico a lo largo de un borde de la
membrana, y tras la etapa (d) una etapa (e) de emparejamiento de los
organismos encontrados por el análisis de enumeración de las
ubicaciones de los organismos encontrados por los ensayos de sonda
PNA por el uso de una marca de registro.
6. El proceso de la reivindicación 5, donde la
muestra líquida es de 50 a 1000 mililitros, la membrana se
selecciona del grupo que consiste en membrana de PVDF que tiene
zonas hidrofílicas separadas por divisiones hidrofóbicas y las
membranas se incuban de aproximadamente 1 a aproximadamente 24 horas
a una temperatura de aproximadamente 24ºC a aproximadamente
40ºC.
7. El proceso de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, donde las membranas se incuban de
aproximadamente 3 a aproximadamente 8 horas.
8. El proceso de una cualquiera de las
reivindicaciones 5 a 7, donde el análisis de enumeración es una
etapa de ATP/bioluminiscencia que se lee por un sistema de imagen
digital.
9. El proceso de una cualquiera de las
reivindicaciones 5 a 8, donde la etapa de la sonda PNA se lee por un
proceso seleccionado del grupo que consiste en película de rayos X,
película instantánea, detección visual de una reacción colorimétrica
sobre la membrana, detección visual de una etiqueta fluorescente o
por imagen digital.
10. El proceso de una cualquiera de las
reivindicaciones 5 a 9, donde el análisis de enumeración es un
análisis de absorción de etiqueta fluorescente.
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