ES2312984T3 - Gen de la lipoxigenasa-1 de cebada, metodo de seleccion de cebada, materiales para bebidas alcoholicas de malta y metodo para la produccion de bebidas alcoholicas de malta. - Google Patents
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Abstract
Un gen mutante de lipoxigenasa-1 de cebada, en donde la guanina del sitio donador de empalme (5''-GT-3'') del 5º intrón del gen de lipoxigenasa-1 de la cebada está mutada a una base diferente.
Description
Gen de la lipoxigenasa-1 de
cebada, método de selección de cebada, materiales para bebidas
alcohólicas de malta y método para la producción de bebidas
alcohólicas de malta.
La presente invención se refiere a un gen de
lipoxigenasa-1 de cebada, a un método de selección
de cebada, a materiales para bebidas alcohólicas de malta y a un
método para la producción de bebidas alcohólicas de malta.
La lipoxigenasa-1 de cebada (en
lo sucesivo, abreviadamente "LOX-1") en una
enzima presente en la malta, que oxida el ácido linoleico derivado
de la malta a ácido 9-hidroperoxioctadecadienoico
durante el braceado para la producción de bebidas alcohólicas de
malta (Kobayashi, N. et al., J. Ferment. Bioeng., 76,
371-375, 1993). El ácido
9-hidroperoxioctadecadienoico se convierte
posteriormente en ácido trihidroxioctadecenoico (THOD) por una
actividad similar a peroxigenasa (Kuroda, H., et al., J.
Biosci. Bioeng., 93, 73-77, 2002). Se sabe que
el THOD reduce la estabilidad de la espuma de cerveza, imparte un
sabor astringente y deteriora la suavidad del sabor de la cerveza
(Kobayashi, N., J. Am. Soc. Brew. Chem. 60:
37-41. 2002; y Kaneda, et al., J. Biosci.
Bioeng., 92: 221-226. 2001), dando como
resultado una menor calidad de las bebidas alcohólicas de malta.
Además, el ácido 9-hidroperoxioctadecadienoico se
convierte en trans-2-nonenal que es
la sustancia responsable de un sabor desagradable a cartulina en
bebidas alcohólicas de malta envejecidas (Yasui, Journal of the
Brewing Society of Japan, 96:94-99
(2001)).
(2001)).
Como estrategia para inhibir la producción de
trans-2-nonenal con el fin de
mejorar la estabilidad del sabor de las bebidas alcohólicas de
malta, se ha propuesto un método para producir bebidas alcohólicas
de malta utilizando una malta con baja actividad de
LOX-1 (Drost, J. Am. Soc. Brew. Chem. 48:
124-131 (1990)).
Douma et al., han inducido una mutación
en la cebada por tratamiento mutágeno (químico) para generar una
línea mutada inducida que exhibe 9% menos de actividad de
LOX-1 en comparación con los controles y han
intentado producir bebidas alcohólicas de malta empleando dicha
cebada (WO02/053721).
Sin embargo, aún cuando se utilice esa cebada la
concentración reducida de
trans-2-nonenal de las bebidas
alcohólicas de malta obtenidas es insuficiente y la estabilidad del
sabor no mejora lo suficiente. Más aun, no se han obtenido
resultados absolutamente definitivos en términos de reducir el THOD
o mejorar la estabilidad de la espuma.
A la luz de los problemas de la técnica anterior
antes citados, se ha logrado la presente invención, cuyo objeto es
proporcionar un gen de LOX-1 de cebada que es útil
para la producción de bebidas alcohólicas de malta que exhiben
estabilidad del sabor y estabilidad de la espuma mejoradas sin
manipulación de genes, un método de selección de cebada deficiente
en LOX-1, materiales para bebidas alcohólicas de
malta derivados de cebada obtenidos por el método de selección, y
un método para la producción de bebidas alcohólicas de malta usando
los materiales para bebidas alcohólicas de malta.
Como resultado de una intensa y diligente
investigación llevada a cabo con el propósito de alcanzar el objeto
antes señalado, los inventores de la presente solicitud han
completado esta invención al descubrir una variedad de cebada
natural que es completamente deficiente en actividad de
LOX-1 e identificar un nuevo gen
LOX-1 mutante de la variedad de cebada.
Específicamente, el gen LOX-1
mutante de la presente invención se caracteriza porque la guanina
presente en el sitio donador de empalme
(5'-GT-3') del 5º intrón del gen
LOX-1 conocido de cebada está mutado a una base
diferente. La base diferente es preferiblemente adenina.
El método de selección para cebada deficiente en
LOX-1 de cebada de acuerdo con la presente invención
se caracteriza por distinguir cebada deficiente en
LOX-1 de cebada comprobando sí o no la guanina
presente en el sitio donador de empalme del quinto intrón del gen
de LOX-1 está mutada a una base diferente. La base
diferente es preferiblemente adenina.
Asimismo, el método de selección de cebada
deficiente en LOX-1 se caracteriza por comprender
una etapa de extracción de DNA genómico en donde se extrae DNA
genómico de una muestra de cebada; una etapa de amplificación de un
fragmento de DNA en donde se amplifica un fragmento de DNA que
contiene el sitio donador de empalme del 5º intrón del gen
LOX-1 a partir del DNA genómico extraído; y una
etapa de detección del fragmento de DNA en donde se escinde, con
una enzima de restricción, el fragmento de DNA que contiene el sitio
donador de empalme del 5º intrón del gen LOX-1
amplificado en la etapa de amplificación del fragmento de DNA, se
detecta un fragmento de DNA que tiene el número de bases prescrito
y se distingue cebada deficiente en LOX-1 de cebada
comprobando sí o no la guanina situada en el sitio donador de
empalme está mutada a una base diferente.
La enzima de restricción empleada en la etapa de
detección del fragmento de DNA es preferiblemente AfaI y/o RsaI,
que reconocen la secuencia de nucleótidos
5'-GTAC-3'.
De acuerdo con la presente invención, la
variedad de cebada que tiene el rasgo de deficiente actividad de
LOX-1 se distingue sobre la base de la presencia o
ausencia de una mutación de la guanina en el sitio donador de
empalme del 5º intrón del gen LOX-1.
Como resultado, es posible distinguir fácilmente
la variedad de cebada deficiente en actividad de
LOX-1 por análisis a nivel genético, sin medir
directamente la actividad de LOX-1. La actividad de
la enzima está influenciada por las etapas de desarrollo
individuales, el medio ambiente y otros factores y, por lo tanto, es
difícil medirla con precisión, pero este método permite distinguir
la variedad de cebada deficiente en actividad de
LOX-1 de manera diferente de la medición enzimática
y, por tanto, independientemente del medio ambiente y otros
factores. Más aun, aunque no se puede medir la actividad enzimática
hasta que las semillas hayan madurado, el escrutinio de DNA puede
identificar la presencia o ausencia del rasgo de deficiencia de
actividad en una etapa temprana del desarrollo, puesto que se lleva
a cabo antes de la floración y, por consiguiente, es eficaz para el
retrocruzamiento
continuo.
continuo.
El material para las bebidas alcohólicas de
malta de la presente invención se caracteriza por consistir en una
semilla, una malta, un extracto de malta, un producto de la
descomposición de cebada o un derivado de cebada procesada
procedente de cebada que tiene un gen LOX-1 mutante
de acuerdo con la presente invención.
El material para bebidas alcohólicas de malta de
la presente invención se caracteriza asimismo por consistir en una
semilla, una malta, un extracto de malta, un producto de la
descomposición de cebada o un derivado de cebada procesada
procedente de cebada seleccionado por un método de selección de
cebada deficiente en LOX-1 de acuerdo con la
presente invención.
El método para la producción de bebidas
alcohólicas de malta de acuerdo con la presente invención se
caracteriza por utilizar el material para bebidas alcohólicas de
malta de acuerdo con la presente invención.
De acuerdo con la presente invención, es posible
obtener bebidas alcohólicas de malta con estabilidad de sabor y
estabilidad de espuma mejoradas porque no está presente
LOX-1 en el material y, por lo tanto, no se produce
fácilmente el ácido 9-hidroperoxioctadecadienoico a
partir del ácido linoleico y, en consecuencia, tampoco se producen
fácilmente THOD y trans-2-nonenal en
el método de producción de bebidas alcohólicas de malta.
La invención proporciona además un ácido
nucleico que comprende la secuencia de nucleótidos desde la posición
1 a 1554 que se exponen la SEQ ID NO: 10. Esta secuencia de
nucleótidos representa la región codificadora del gen que codifica
una proteína LOX-1 mutante que carece de actividad
de lipoxigenasa de la proteína LOX-1. Detectando la
presencia o ausencia de este ácido nucleico es posible distinguir si
o no la cebada tiene el rasgo de deficiencia en actividad de
LOX-1.
La invención proporciona además incluso un ácido
nucleico que comprende la secuencia de nucleótidos que se expone en
SEQ ID NO: 11. Esta secuencia de nucleótidos representa la secuencia
genómica del gen que codifica una proteína LOX-1
mutante que carece de actividad de lipoxigenasa de la proteína
LOX-1. Detectando la presencia o ausencia de este
ácido nucleico en una muestra de cebada, es posible distinguir si o
no la cebada tiene el rasgo de deficiencia en actividad de
LOX-1.
La invención proporciona además incluso un ácido
nucleico que comprende la secuencia de nucleótidos de 10 a 60 bases
continuas, incluyendo la base 3178ª en la secuencia de nucleótidos
como se expone en la SEQ ID NO: 11. La base 3178ª es un
polimorfismo de un solo nucleótido, que es G en
LOX-1 auténtico y A en LOX-1
mutante. Detectando la presencia o ausencia del ácido nucleico que
incluye el sitio polimorfo en una muestra de cebada es posible
distinguir si o no la cebada tiene el rasgo de deficiencia en
actividad de LOX-1.
La invención proporciona además un método para
detectar la presencia de actividad de LOX-1 en
cebada, que comprende una etapa de aislar un DNA genómico a partir
de una muestra de cebada, y una etapa de detectar la base 3178ª de
la secuencia de nucleótidos que se expone en la SEQ ID NO: 11, en
donde la presencia de la base es un indicador de la presencia del
actividad de LOX-1 en cebada. De acuerdo con este
método es posible distinguir si o no la cebada analizada tiene el
rasgo de deficiencia en actividad de LOX-1.
Una semilla, malta, extracto de malta, producto
de descomposición de cebada o cebada procesada derivada de cebada
deficiente en actividad de LOX-1 descubierta por
este método puede ser usado como materia prima para bebidas
alcohólicas de malta con estabilidad de sabor y estabilidad de
espumas mejoradas.
La Figura 1 es una gráfica que muestra los
resultados de actividad de LOX-1 en el Ensayo de
búsqueda 1.
La Figura 2 es una gráfica que muestra los
resultados de la inhibición de actividad en el Ensayo de
verificación 1.
La Figura 3 es un par de imágenes de
electroforesis que muestran los resultados del análisis de Western
de la proteína LOX de la semilla de cebada en el Ensayo de
verificación 2. La imagen A muestra los resultados de análisis
Western después de la SDS-PAGE, y B muestra los
resultados del análisis de Western después de la IEF.
La Figura 4 es una imagen de electroforesis que
muestra los resultados de los análisis de RT-PCR del
RNA de semillas de cebada en el Ensayo de verificación 3.
La Figura 5 es un diagrama que muestra la
estructura del sitio donador de empalme del 5º intrón del gen
LOX-1 en el Ensayo de verificación 4.
La Figura 6 es un par de imágenes de
electroforesis que muestran los resultados de los análisis de
empalme del gen LOX-1 mutante en el Ensayo de
verificación 5. La imagen A es una imagen de electroforesis de
fragmentos amplificados que contienen del 3º al 5º intrones y B es
una imagen de electroforesis de los mismos fragmentos que A tras la
digestión con StuI.
La Figura 7 es una imagen de electroforesis que
muestra las proteínas inducidas por expresión en E. coli en
los Ensayos de verificación 7 y 8.
La Figura 8 es una gráfica que muestra la
actividad de la expresión inducida en E. coli en el Ensayo de
verificación 1.
La Figura 9 es una imagen de electroforesis que
muestra el polimorfismo de DNA en la 2ª generación filial híbrida
para Kendall x SBOU2 en el Ensayo de verificación 2.
La Figura 10 es una tabla que resume el
polimorfismo de DNA en la segunda generación filial del híbrido y
la actividad de LOX en la tercera generación filial del híbrido para
Kendall x SBOU2 en el Ensayo de Verificación 9.
La Figura 11 es una imagen de electroforesis que
muestra los resultados del análisis de una variedad/línea de cebada
general por el método que emplea AfaI según el Ejemplo 1.
La Figura 12 es una imagen de electroforesis que
muestra los resultados del análisis de una cebada deficiente en
LOX-1 por el método que emplea AfaI según el Ejemplo
2.
La Figura 13 es un par de gráficas que ilustran
los resultados de actividad de LOX en semillas de cebada deficiente
en LOX-1 de acuerdo con el Ejemplo 2. La gráfica A
muestra los resultados para un tiempo de reacción enzimática de 5
minutos y la gráfica B muestra los resultados para un tiempo de
reacción enzimática de 90 minutos.
La Figura 14 es una tabla que muestra los
resultados del análisis de malta de las semillas de la población
LOX+F4 y la población LOX-F4 según el Ejemplo 5.
La Figura 15 es una gráfica de puntos que
ilustra las concentraciones de
trans-2-nonenal y los potenciales
de nonenal para el mosto en el Ejemplo 5.
La presente invención se explicará ahora con
mayor detalle.
Para empezar, se explicará el gen
LOX-1 mutante de la invención.
El gen LOX-1 mutante de la
presente invención es un nuevo gen descubierto por los inventores de
la presente y se caracteriza porque la 60ª base G del gen
LOX-1 de cebada conocido (SEQ ID NO: 1) está
reemplazada por A (SEQ ID NO: 2). Puesto que las bases
60-61 de la SEQ ID NO:1 constituyen el sitio donador
de empalme (5'-GT-3'), esta
sustitución de bases produce una aberración en el empalme de
LOX-1, de modo que no se puede expresar la
LOX-1 activa.
La secuencia de nucleótidos de la región del 5º
intrón del gen LOX-1 conocido de cebada se lista
como SEQ ID NO: 1 en el Listado de Secuencias y la secuencia de
nucleótidos de la porción del gen LOX-1 mutante de
la presente invención correspondiente a la región del 5º intrón del
gen LOX-1 se lista como SEQ ID NO: 2.
Se explicará ahora el método de selección de
cebada deficiente en LOX-1 de acuerdo con la
presente invención.
El método de selección de cebada deficiente en
LOX-1 de acuerdo con la presente invención se
caracteriza por distinguir cebada deficiente en
LOX-1 basándose en sí o no la guanina situada en el
sitio donador de empalme del 5º intrón del gen
LOX-1 está mutada a una base diferente.
El método para seleccionar cebada deficiente en
LOX-1 utilizando la mutación de bases antes
mencionada puede ser, por ejemplo, un método que consiste en usar
un cebador que contiene el sitio de mutación antes mencionado ya
sea en el extremo 3' de la secuencia del cebador o dentro de la
secuencia de cebador para amplificación de DNA, detectar la
mutación de bases basándose en la presencia de amplificación o en la
eficiencia de amplificación y seleccionar la cebada deficiente en
LOX-1, o bien un método de amplificar un fragmento
de DNA que contiene el sitio de la mutación antes mencionado,
determinar la secuencia de nucleótidos para detectar la mutación de
bases y seleccionar la cebada deficiente en
LOX-1.
No hay restricciones particulares en cuanto al
método de detectar la mutación de la secuencia de nucleótidos,
siempre que el método permita la detección de fragmentos de DNA,
aunque los métodos adecuados para emplear incluyen la
electroforesis en gel de agarosa y la electroforesis en gel de
poliacrilamida. Cuando se ha detectar la mutación de DNA basándose
en la presencia de amplificación o la eficiencia de la
amplificación, se puede utilizar PCR cuantitativa como el método
TAQMAN en lugar de electroforesis.
El método de selección de la cebada deficiente
en LOX-1 de la presente invención se caracteriza
porque comprende: preferiblemente, una etapa de extracción de DNA
genómico en donde se extrae el DNA genómico de una muestra de
cebada; una etapa de amplificación de un fragmento de DNA en donde
se amplifica, a partir del DNA genómico extraído, un fragmento de
DNA que contiene el sitio donador de empalme del 5º intrón del gen
LOX-1; y una etapa de detección de un fragmento de
DNA en donde se escinde, con una enzima de restricción, el fragmento
de DNA que contiene el sitio donador de empalme del 5º intrón del
gen LOX-1 amplificado en la etapa de amplificación
de fragmentos de DNA; se detecta un fragmento de DNA con el número
de bases prescrito y se distingue cebada deficiente en
LOX-1 de cebada basándose en si está mutada o no, a
una base diferente, la guanina situada en el sitio donador de
empalme.
Se pasa a explicar primeramente la etapa de
extracción de DNA genómico de la presente invención.
No hay restricciones particulares con respecto
al método de extracción del DNA genómico de la muestra para el
ensayo de cebada y se puede emplear cualquier método conocido
públicamente. Específicamente, la extracción se puede llevar a
cabo, por ejemplo por el método CTAB (Murria et al., 1980,
Nucleic Acids Res. 8: 4321-4325) o por el
método del bromuro de etidio (Varadarajan y Prakash 1991, Plant
Mol. Biol. Rep. 9: 6-12). El tejido
empleado para la extracción del DNA genómico no está limitado a las
semillas de cebada, sino que también puede consistir en hojas,
tallos, raíces o similares. Por ejemplo, se pueden utilizar para la
selección las hojas de un lote de individuos en generaciones de
retrocruzamiento.
A continuación se explica la etapa de
amplificación de fragmentos de DNA.
No hay restricciones particulares con respecto
al método de amplificar fragmentos de DNA y se puede emplear, por
ejemplo, la PCR (reacción en cadena de la polimerasa). Los cebadores
empleados para el método de PCR no están limitados específicamente
en cuanto a sus secuencias de nucleótidos, siempre que sea una
región que permita la amplificación de un fragmento de DNA que
contiene el sitio donador de empalme del 5º intrón del gen
LOX-1 y, específicamente, tienen preferiblemente
10-60 bases continuas y más preferiblemente
15-30 bases continuas del gen
LOX-1. En general, la secuencia de nucleótidos del
cebador tiene preferiblemente un contenido de GC de
40-60%. Además, la diferencia de los valores de Tm
de los dos cebadores empleados para el método de PCR es
preferiblemente cero o muy pequeña. Los cebadores preferiblemente no
forman entre sí una estructura
secundaria.
secundaria.
Se pasa a explicar ahora la etapa de detección
de fragmentos de DNA.
El gen LOX-1 mutante de acuerdo
con la presente invención tiene una secuencia de nucleótidos
diferente de la del LOX-1 conocido como se ha
explicado anteriormente y, por lo tanto, si se utiliza una enzima de
restricción que reconoce o escinde la porción diferente para
escindir el producto de la amplificación, se advertirá evidentemente
una diferencia en los tamaños de los fragmentos de DNA obtenidos.
No hay limitaciones particulares con respecto a la enzima de
restricción empleada para la presente invención, siempre que
reconozca o escinda la porción diferente, aunque son preferibles
las enzimas AfaI y/o RsaI, que ya han demostrado exhibir dicha
actividad.
En otras palabras, puesto que el gen
LOX-1 mutante de la presente invención tiene mutada
la guanina, situada en el sitio del donador de empalme, a una base
diferente, carece del sitio de escisión para las enzimas de
restricción AfaI y/o RsaI
(5'-GTAC-3': nucleótidos
60-63 del 5º intrón) que están presentes en el gen
LOX-1 conocido. Como resultado de ello, su patrón
de escisión cuando se escinde el producto de la amplificación
génica que contiene el sitio de escisión con AfaI y/o RsaI diferirá
del gen LOX-1 conocido, permitiendo así la
identificación del gen LOX-1 mutante.
El fragmento de DNA que contiene el número
prescrito de bases no está limitado su número de bases, siempre que
sea un fragmento de DNA en donde la presencia de la porción
diferente de como resultado una diferencia del tamaño del fragmento
de DNA obtenido mediante la escisión del producto de la
amplificación con la enzima de restricción.
La detección en esta etapa no está
particularmente restringida, siempre que sea un método que permita
la detección del fragmento de DNA escindido por la enzima de
restricción y, específicamente, se puede lograr la detección, por
ejemplo, por electroforesis en gel de agarosa o electroforesis en
gel de poliacrilamida.
Se procede a explicar ahora el material para
bebidas alcohólicas de malta de la presente invención.
El material para bebidas alcohólicas de malta de
la presente invención se caracteriza por consistir en una semilla,
una malta, extracto de malta, producto de descomposición de cebada o
cebada procesada derivado de cebada que tiene el gen
LOX-1 mutante de acuerdo con la presente invención
y, al ser una semilla, una malta, extracto de malta, producto de
descomposición de cebada o cebada procesada derivado de cebada
seleccionado por un método de selección de cebada deficiente en
LOX-1 de acuerdo con la presente invención.
El extracto de malta es el extracto de la malta
y se pueden mencionar, como ejemplos, el extracto de los componentes
de azúcar o los componentes proteicos de la malta. El producto de
la descomposición de cebada es el producto de la descomposición de
cebada con enzimas o similares, e incluye cebada braceada y
similares. Cebada procesada se refiere a cebada molida empleada
como material aditivo para bebidas alcohólicas de malta.
Puesto que el material para las bebidas
alcohólicas de malta de acuerdo con la presente invención no
contiene LOX-1, no tiene lugar fácilmente la
producción de ácido 9-hidroperoxioctadecadienoico a
partir del ácido linoleico y, en consecuencia, tampoco tiene lugar
fácilmente la producción de THOD y
trans-2-nonenal durante el método
de producción de bebidas alcohólicas de malta; por lo tanto es
posible obtener bebidas alcohólicas de malta con sabor y
estabilidad de espuma mejorados.
A continuación, se pasa a explicar el método de
producción de bebidas alcohólicas de malta.
El método de producción de bebidas alcohólicas
de malta de acuerdo con la presente invención se caracteriza por
usar un material para bebidas alcohólicas de malta de acuerdo con la
presente invención.
Se explica, en primer lugar, la etapa de
malteado de acuerdo con la presente invención.
La etapa de malteado de acuerdo con la presente
invención es una etapa de obtención de la malta, caracterizada por
usar cebada deficiente en LOX-1 y el método no se
limita particularmente y puede ser un método públicamente conocido.
Más específicamente, por ejemplo, la maceración hasta un grado de
maceración de 40-45% va seguida por la germinación
a 10-20ºC durante 3-6 días y el
secado en horno para obtener la malta.
Se explica ahora la etapa de braceado de acuerdo
con la presente invención.
La etapa de braceado de acuerdo con la presente
invención es una etapa para obtener el mosto braceando la malta
antes mencionada. Más específicamente, consiste en las siguientes
cuatro etapas.
La primera etapa es una etapa de braceado en la
cual el material que contiene malta se mezcla con agua, la mezcla
obtenida se calienta para bracear la malta y se obtiene el mosto de
la malta sacarificada.
La malta empleada para esta etapa se obtiene
preferiblemente por adición de agua y aire a la cebada para la
germinación, seguido por el secado para eliminar las radículas. La
malta es la fuente de las enzimas necesarias para la producción del
mosto, así como la principal fuente de almidón como material para el
braceado. Además, la malta germinada secada en horno se utiliza
para la producción del mosto a fin de impartir el sabor y color
característicos de una bebida alcohólica de malta. Además a dicha
malta, se pueden añadir materiales aditivos, tales como cebada
deficiente en LOX-1 de acuerdo con la presente
invención y/o cebada ordinaria, almidón de maíz, sémola de maíz,
arroz, sacáridos o similares.
En la etapa de producción del mosto antes
descrita, el extracto de malta, el producto de la descomposición de
cebada o cebada procesada preparada a partir de cebada deficiente en
LOX-1 de la presente invención y/o cebada corriente
se mezclan con el agua de braceado y se añaden los materiales
aditivos antes mencionados según sea necesario para obtener el
mosto.
La malta se mezcla después de la adición al agua
de braceado. También se añaden los materiales aditivos y también se
pueden mezclar en este momento. Los sacáridos se pueden añadir antes
de la ebullición descrita más adelante. No hay ninguna restricción
particular respecto al agua de braceado y se puede añadir el agua
necesaria para la producción de la bebida alcohólica de malta. El
braceado se puede llevar a cabo básicamente en las condiciones
convencionales. Después de la clarificación de la malta braceada
obtenida de esta manera, se añaden los materiales que imparten
sabor o amargor, tales como lúpulos o hierbas y se hierve la mezcla
y luego se la enfría para obtener un mosto refrigerado.
La segunda etapa es una etapa de adición de
levadura al mosto refrigerado para la fermentación, a fin de obtener
los productos intermedios de una bebida alcohólica de malta.
La levadura empleada en esta etapa puede ser
cualquier levadura de cerveza para la fermentación alcohólica, que
metabolice los azúcares del mosto obtenido por el braceado de la
malta para producir alcohol y dióxido de carbono gaseoso y,
específicamente se puede mencionar, por ejemplo, Saccharomyces
cerevisiae y Saccharomyces uvarum.
La fermentación se realiza enfriando el mosto
obtenido en la etapa de braceado y añadiendo al mismo la levadura.
Las condiciones de fermentación pueden ser básicamente las mismas
que para la fermentación convencional y, por ejemplo, la
temperatura de fermentación habitualmente no es superior a 15ºC y
preferiblemente de 8-10ºC, mientras que el período
de fermentación es preferiblemente 8-10 días.
La tercera etapa es una etapa de conservación
(almacenamiento) en la cual se conservan los productos intermedios
de la bebida alcohólica de malta obtenida en la etapa de
fermentación.
En esta etapa la solución de fermentación que ha
completado la fermentación alcohólica se transfiere a un depósito
hermético y se conserva. La fermentación secundaria es básicamente
igual a las condiciones convencionales, por ejemplo, la temperatura
de conservación es preferiblemente 0-2ºC y el tiempo
de conservación es preferiblemente 20-90 días. La
conservación de la solución fermentada permite que se produzca la
re-fermentación y maduración del extracto
residual.
La cuarta etapa consiste en una etapa de
filtración en la cual los productos intermedios de la bebida
alcohólica de malta obtenida en la etapa de conservación se filtran
para obtener una bebida alcohólica de malta.
Las condiciones de filtración son básicamente
las mismas que las condiciones convencionales y el material de
filtración puede ser, por ejemplo, tierra de diatomeas, PVPP
(polivinilpirrolidona), gel de sílice, polvo de celulosa o similar
y la temperatura puede ser 0 \pm 1ºC.
Este procedimiento produce una bebida alcohólica
de malta. Luego la bebida alcohólica de malta filtrada se introduce
en un depósito, barril, botella o lata para su envío al mercado, ya
sea directamente o después de filtración estéril o tratamiento
térmico.
La proporción de malta empleada para la
producción de la bebida alcohólica de cebada no está restringida
particularmente, y la bebida alcohólica puede ser cualquiera de las
producidas utilizando malta como material. Se pueden mencionar
específicamente, por ejemplo, la bebida y el licor de malta
espumoso. También se consideran bebidas alcohólicas de malta la
cerveza sin alcohol y el licor de malta espumoso no alcohólico,
puesto que el método de producción empleado es similar al de las
bebidas alcohólicas de malta como la cerveza.
Puesto que el material de acuerdo con la
presente invención no contiene LOX-1, no tiene lugar
fácilmente la producción de ácido
9-hidroperoxioctadecadienoico a partir del ácido
linoleico y, en consecuencia se inhibe la producción de THOD y
trans-2-nonenal durante el
transcurso del método de producción de bebidas alcohólicas de
malta, y por lo tanto es posible obtener bebidas alcohólicas de
malta con sabor y estabilidad de espuma mejorados.
A continuación se explica el ácido nucleico y el
método para detectar la presencia de actividad de
LOX-1 en cebada de acuerdo con la invención.
El ácido nucleico de la invención se caracteriza
por comprender la secuencia de nucleótidos que se expone en la SEQ
ID NO: 11. La SEQ ID NO: 11 representa la secuencia genómica para el
LOX-1 mutante en la variedad de cebada SBOU2
deficiente en actividad de LOX-1. Es decir, el gen
LOX-1 mutante de la invención se caracteriza por
estar representado por la SEQ ID NO: 11. La base correspondiente a
la posición 3178 es G en el gen LOX-1 auténtico,
mientras que la base 3178ª está mutada a A en el gen
LOX-1 mutante. Esta base también es la primera base
del 5º intrón del gen LOX-1 auténtico, y la
secuencia GT como la secuencia de bases 3178-3179
corresponde al sitio donador de empalme (Fig. 5). En el gen
LOX-1mutante, sin embargo, la secuencia de bases
3178-3179 correspondiente al sitio donador de
empalme es AT, y por tanto ocurre una aberración de empalme que
impide el empalme. Además, la secuencia de bases
3176-3178 es TGA que es un codón de parada, y por
tanto la traducción termina en este punto.
Puesto que la proteína LOX-1
mutante expresada del gen LOX-1 mutante solo posee
la porción correspondiente al 5º exón, carece de los residuos de
aminoácidos en el extremo C-terminal desde el 5º
exón de la proteína LOX-1 auténtica. El peso
molecular de la proteína LOX-1 auténtica es 95 kD,
mientras que el de la proteína LOX-1 mutante es 57
kD. La proteína LOX-1 mutante es deficiente en
actividad de lipoxigenasa, y esto está correlacionado con el hecho
conocido de que el dominio correspondiente a la región del exón
cerca del 5º intrón en la proteína LOX-1 auténtica
es el centro activo de LOX de la planta (Shibata y Axelrod (1995)
J. Lipid Mediators and Cell Signaling
12:213-218).
Consecuentemente, si la cebada que posee el gen
LOX-1 mutante se usa como materia prima para la
producción de bebidas alcohólicas de malta, no estará presente
proteína LOX-1 en la materia prima, y por tanto será
reducida la producción de ácido
9-hidroperoxioctadecadienoico a partir de ácido
linoleico durante el método de producción para las bebidas
alcohólicas de malta, de modo que como resultado puede conseguirse
la inhibición de THOD y la producción de
trans-2-nonenal para obtener bebidas
alcohólicas de malta con estabilidad de sabor y estabilidad de
espumas mejoradas. Por tanto, el ácido nucleico que comprende la
secuencia de nucleótidos que se expone en la SEQ ID NO: 11 de
acuerdo con la invención es altamente útil para obtener bebidas
alcohólicas de malta con estabilidad de sabor y estabilidad de
espumas mejoradas.
El ácido nucleico de la invención proporciona
una secuencia de ácido nucleico que comprende la secuencia de
nucleótidos de 10 a 60 bases continuas incluyendo la base 3178ª en
la secuencia de nucleótidos como se expone en la SEQ ID NO: 11. El
ácido nucleico puede ser usado como sonda para distinguir entre las
formas auténticas y mutantes del gen LOX-1 de
cebada. Es decir, puesto que la base 3178ª del gen
LOX-1 auténtico es G, el desapareamiento resultante
puede ser utilizado para distinguir entre las formas auténtica y
mutante basándose en la diferencia en hibridación. Por ejemplo,
formando híbridos entre estos ácidos nucleicos y el ácido nucleico
del gen LOX-1, aumentando gradualmente la
temperatura y midiendo la temperatura de fusión de los híbridos, es
posible distinguir fácilmente entre el gen LOX-1
auténtico y el gen LOX-1 mutante, puesto que
diferirán sus temperaturas de fusión. El ácido nucleico también
puede utilizarse para distinguir entre las formas del gen
LOX-1 (formas auténticas/mutantes) por métodos
conocidos por los expertos en la técnica. Desde el punto de vista de
la especificidad, el ácido nucleico comprende preferiblemente una
secuencia de nucleótidos de 20-50 bases continuas
incluyendo la base 3178ª, y preferiblemente incluye las bases
3178-3181. El ácido nucleico también puede estar
marcado con una sustancia fluorescente, radioisótopo o similar.
El método para detector la presencia de
actividad de LOX-1 en cebada de acuerdo con la
invención comprende una etapa de aislar un DNA genómico de una
muestra de cebada, y una etapa de detectar la base 3178ª de la
secuencia de nucleótidos que se expone en la SEQ ID NO: 11, en donde
la presencia de la base es un indicador de la presencia de
actividad de LOX-1 en la cebada. De acuerdo con este
método, es posible distinguir sin o no la cebada analizada tiene el
rasgo de actividad deficiente en LOX-1.
La muestra de cebada no está restringida a
semillas de cebada, y puede ser hojas, tallos, raíces o similares
de cebada. El ácido nucleico puede aislarse por un método
públicamente conocido, y por ejemplo, puede usarse el método CTAB o
el método del bromuro de etidio.
La detección de la base 3178ª de la secuencia de
nucleótidos que se expone en la SEQ ID NO: 11 puede conseguirse por
un método conocido por los expertos en la técnica. Si es necesario,
por ejemplo, un ácido nucleico que contiene la base 3178ª de la
secuencia de nucleótidos representada por la SEQ ID NO: 11 puede ser
amplificado por un método de amplificación de ácidos nucleicos, tal
como PCR. La identidad de la base en la posición 3178 del ácido
nucleico aislado o un fragmento del ácido nucleico amplificado puede
ser discriminada, por ejemplo, usando un ácido nucleico que
comprende la secuencia de nucleótidos representada por la SEQ ID NO:
11 en donde el ácido nucleico comprende una secuencia de
10-60 bases continuas que incluye la base 3178ª,
como se ha descrito antes.
Sin embargo, es más conveniente y eficaz un
método para detectar la base 3178ª utilizando la diferencia en las
bases 3178-3181 del gen LOX-1. El
sitio de las bases 3178-3181 es el sitio de escisión
para las enzimas de restricción Afal/Rsal en el gen
LOX-1 auténtico, pero debido a que la base 3178ª es
A en el gen LOX-1 mutante, no forma un sitio de
escisión para las enzimas de restricción Afal/Rsal (Fig. 5). En
otras palabras, si un fragmento de ácido nucleico aislado o
amplificado se trata con las enzimas de restricción Afal/Rsal, se
escindirá el ácido nucleico auténtico LOX-1,
mientras que no se escindirá el ácido nucleico de
LOX-1 mutante. El análisis electroforético de la
muestra de ácido nucleico tratada con las enzimas de restricción
dejará que la forma del gen LOX-1 (auténtico o
mutante) sea distinguida basándose en la diferencia en los patrones
de electroforesis, de modo que puede ser discriminada la identidad
de la _{.}base en la posición 3178. Además, usando un ácido
nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos de
10-60 bases continuas incluyendo las bases
3178-3181 como una sonda para la hibridación con el
ácido nucleico tratado con las enzimas de restricción, es posible
distinguir la forma del gen LOX-1 y por tanto
permitir que se discrimine la identidad de la base 3178ª base.
Si, como resultado de discriminar la base 3178ª
de esta manera, se encuentra que la base es G, entonces puede
llegarse a la conclusión que la cebada analizada tiene actividad de
LOX-1 y no es adecuada como materia prima para
bebidas alcohólicas de malta con estabilidad de sabor y estabilidad
de espuma mejoradas. Por otro lado, si la base es A, entonces se
puede llegar a la conclusión que la cebada analizada no tiene la
actividad de LOX-1 y, por lo tanto, es adecuada
como materia prima para bebidas alcohólicas de malta con estabilidad
de sabor y estabilidad de espuma mejoradas.
El ácido nucleico de la invención también se
caracteriza por comprender la secuencia de nucleótidos desde la
posición 1 a 1554 que se expone en la SEQ ID NO: 10. La SEQ ID NO:
10 representa la secuencia de cDNA para la LOX-1
mutante expresada por la variedad de cebada SBOU2 deficiente en
actividad de LOX-1. La secuencia de nucleótidos
desde la posición 1 a 1554 representa la región codificadora. Como
se ha explicado antes, la proteína LOX-1 mutante
codificada por este cDNA carece de los residuos de aminoácidos en el
extremo C-terminal del 5º exón de la proteína
LOX-1 auténtica, su peso molecular es 57 kD, y
carece de actividad de lipoxigenasa.
Consecuentemente, la cebada que expresa este
ácido nucleico puede usarse como materia prima para la producción
de bebidas alcohólicas de malta, para obtener bebidas alcohólicas de
malta con estabilidad de sabor y estabilidad de espuma mejoradas,
como se ha mencionado anteriormente.
\vskip1.000000\baselineskip
A continuación se explica la presente invención
con mayor detalle por medio de los siguientes ejemplos, con la
salvedad de que estos ejemplos no son, en modo alguno, limitativos
de la invención.
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Ensayo de búsqueda
1
Se midió la actividad enzimática de
LOX-1 por el método descrito a continuación, y se
llevó a cabo una búsqueda de la cebada deficiente en
LOX-1 a partir de recursos o colecciones de genes de
cebada.
En primer lugar, se extrajo una solución de
enzimas en bruto de semillas de cebada por el siguiente método. Se
trituró una semilla de cebada madura con un martillo y se utilizaron
500 \mul de tampón de extracción (tampón de acetato de sodio 0,1
M (pH 5,5)) para la extracción con agitación a 4ºC durante 30
minutos. El extracto obtenido se centrifugó durante 10 minutos a
15.000 r.p.m. y luego se recogió el líquido sobrenadante como
solución enzimática en bruto.
Seguidamente, se añadieron 5 \mul de solución
sustrato (ácido linoleico 40 mM en solución acuosa de Tween 20 al
1,0% (p/v)) y 85 \mul de tampón de extracción a 10 \mul de la
solución enzimática en bruto y se mezcló con la misma, y a
continuación se llevó a cabo la reacción a 24ºC durante 5 minutos.
La reacción se terminó añadiendo y mezclando 100 \mul de solución
de detención
(2,6-di-t-butil-p-cresol
80 mM en solución en metanol). Después de dejar que la mezcla de
reacción reposara a -20ºC durante 30 minutos, se centrifugó a 3000
r.p.m. durante 20 minutos y se utilizó el líquido sobrenadante en la
siguiente reacción de desarrollo de color. Se añadió una porción de
200 \mul de una solución de desarrollo de color (solución en
metanol acuoso al 90% de
2,6-di-t-butil-p-cresol
4 mM, ácido sulfúrico 25 mM, sulfato de amonio y hierro (II)
hexahidrato 0,25 mM, naranja de xilenol 100 mM) a 20 \mul del
líquido sobrenadante obtenido y después de reposar durante 30
minutos, se midió la absorbancia a 550 nm. Como control negativo se
llevó a cabo la reacción de la misma manera empleando la solución
de enzima en bruto tratada térmicamente a 100ºC durante 5 minutos
para la inactivación de la LOX-1, en tanto que,
como control positivo, se utilizaron semillas de la variedad de
cebada Kendall.
Como se muestra en la Fig. 1, la búsqueda de
recursos génicos reveló que había actividad significativa de
LOX-1 en las semillas de SBOU2. Puesto que SBOU2 es
una variedad del terreno (land race), es una mutante
espontánea en lugar de una línea mutagenizada artificialmente.
\vskip1.000000\baselineskip
Ensayo de verificación
1
Se examinaron las soluciones en bruto de enzimas
de SBOU2 para determinar la presencia o ausencia de actividad
inhibidora de la LOX-1.
Se añadieron soluciones de enzimas de SBOU2 en
bruto (10 \mul, 20 \mul, 50 \mul) a una solución de enzimas
en bruto que exhibía actividad de LOX-1 (control
positivo: abreviadamente PC por las iniciales en inglés positive
control) y se examinaron los cambios en la actividad de
LOX-1. La actividad de LOX-1
permaneció inalterada con la adición de la solución de enzimas de
SBOU2 en bruto, y por lo tanto las soluciones de enzimas de SBOU2
en bruto no exhibieron actividad inhibidora de LOX-1
(Fig. 2). Esto sugirió que la causa de la deficiencia de actividad
de LOX-1 en SBOU2 no se debía a una sustancia
inhibidora de la actividad de LOX.
\vskip1.000000\baselineskip
Ensayo de Verificación
2
Se utilizó un anticuerpo
anti-LOX-1 para determinar si se
expresa, o no, la proteína LOX-1 en las semillas de
SBOU2.
Se preparó, en primer lugar, un anticuerpo
anti-LOX-1. Se obtuvo la proteína
LOX-1 utilizada como antígeno purificando la
proteína LOX-1 expresada por E. coli (Kuroda
et al., (2002) J. Bioscience and Bioengineering 93:
73-77). Se utilizó la proteína purificada para
inmunizar conejos para la producción del anticuerpo
LOX-1. Este anticuerpo reconoce tanto la
LOX-1 como la LOX-2.
Luego se llevó a cabo la transferencia Western
de la siguiente manera para examinar la expresión de la proteína
LOX-1 en las semillas de SBOU2. Se fraccionó una
porción de 3 \mug de proteína soluble total extraída de las SBOU2
utilizando tampón de acetato de sodio 0,1M (pH 5,5) mediante
electroforesis en geles de SDS-poliacrilamida
(SDS-PAGE) y luego se transfirió a una membrana PVDF
(Millipore). Se lavó la membrana con TTBS (Tris-HCl
20 mM (pH 7,5)), cloruro de sodio 0,15M, Tween 20 al 0,05% (p/v),
0,05% (p/v) de azida sódica) y seguidamente se hizo reaccionar con
una solución de anticuerpo de LOX-1 (dilución 1000
veces/TTBS) durante 30 minutos. Se lavó la membrana con TTBS tres
veces durante 5 minutos cada vez, después de lo cual se llevó a cabo
la reacción durante 30 minutos con solución de anticuerpo IgG
anti-conejo de cabra marcado con fosfatasa alcalina
(Santa Cruz Biotechnology, solución de TTBS en una dilución de 1000
veces). Después de lavar la membrana con TTBS durante 5 min x 2 y
luego con AP9.5 (Tris-HCl 10 mM (pH 9,5), cloruro de
sodio 0,1 M, cloruro de magnesio 5 mM) durante 5 min x 1, se
efectuó la reacción con la solución sustrato con fosfatasa alcalina
(1 mg/ml de nitroazul de tetrazolio, 0,5 mg/ml de BCIP, solución de
AP9.5) para desarrollo del color. Como resultado, se obtuvo una
banda oscura con un peso molecular de aproximadamente 95 kD con la
variedad control (Kendall), mientras que se detectaron dos bandas
muy tenues en las regiones de peso molecular de aproximadamente 95
kD y aproximadamente 57 kD con las semillas de SBOU2 (Fig. 3A).
Luego la muestra de extracción se sometió a
enfoque isoeléctrico (IEF, pI 3-9) utilizando un
PhastSystem (Amersham Pharmacia) y se sometió a análisis Western de
modo similar al descrito anteriormente. Como resultado del análisis
con SBOU2, se detectó una banda en la posición de pI de
LOX-2, pero no había ninguna banda clara presente
en la posición de pI de LOX-1 (Fig. 3B). Esto
sugirió que la banda de aproximadamente 95 kD que aparecía con la
proteína extraída de las semillas de SBOU2 era la proteína
LOX-2.
Estos resultados confirmaron que las semillas de
SBOU2 virtualmente no expresan proteína LOX-1
auténtica.
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Ensayo de verificación
3
Se llevó a cabo la RT-PCR
utilizando como molde RNA total extraído de semillas de SBOU2 de
aproximadamente 4 semanas de maduración y semillas germinadas de 3
días. La reacción se llevó a cabo utilizando kits existentes en el
comercio (Roche Diagnostics, Parking Elmer), de acuerdo con los
manuales de los kits. Los cebadores fueron
5'-GGAGAGGAGGCCAAGAACAAGATG-3' (SEQ
ID NO: 3) y
5'-GGTTGCCGATGGCTTAGAT-3' (SEQ ID
NO: 4), diseñados sobre la base de la secuencia publicada (DNA
Databank: Nº de acceso L35931). Después de la incubación a 94ºC
durante 2 min, se llevó a cabo la PCR con reacción a 94ºC, 1 min,
60ºC, 2 min y 72ºC, 4 min, se repitió 31 veces, seguido por
reacción de extensión a 72ºC, 7 min.
Tras la electroforesis del DNA amplificado, se
detectó la amplificación de una banda de aproximadamente 2,5 Kb del
RNA de las semillas en maduración y germinación, si bien en una
cantidad ligeramente menor que el control (variedad Kendall) (Fig.
4). Esto indicaba que el gen LOX-1 se había
transcrito correctamente.
Puesto que los resultados antes mencionados para
las semillas de SBOU2 indicaron que no se había detectado (1)
actividad de LOX-1, (2) sólo estaba presente una
cantidad traza de proteína antigénica que reaccionaba con el
anticuerpo LOX-1, (3) se detectó la presencia de una
proteína con un peso molecular de aproximadamente 57 kD y (4) se
detectó RNA de LOX-1, se concluyó que el mecanismo
de la deficiencia de actividad de LOX-1 en SBOU2
era una aberración posterior a la transcripción.
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Ensayo de verificación
4
Para analizar la estructura de las regiones de
intrones y exones del gen LOX-1, se aisló DNA
genómico de una región que comprendía todos los exones. Se utilizó
como molde DNA total de SBOU2. Los cebadores
(5'-CACGTCGCCGTCCGATCCATC-3' (SEQ
ID NO: 5), 5'-GGTTGCCGATGGCTTAGAT-3'
(SEQ ID NO: 4)) se diseñaron basándose en la secuencia descrita
(DNA Databank: Nº de acceso U83904, L35931). Se llevó a cabo la PCR
con reacción a 94ºC, 1 min, 65ºC, 2 min y 72ºC, 3 min; se repitió
31 veces, seguidas por la reacción de extensión a 72ºC, 7 min. El
fragmento de DNA obtenido se clonó en PCR2.1 (pGLXABAL1) para usar
como patrón para el análisis estructural. El análisis estructural
se llevó a cabo utilizando un secuenciador ABI y la reacción de
secuenciación se llevó a cabo por el método del terminador con
colorante. La estructura completa se muestra en SEQ.ID NO: 1 en el
Listado de secuencias.
La SEQ ID NO: 1 del Listado de Secuencias
muestra la estructura de la región de la secuencia de nucleótidos
publicada del gen LOX-1 (WO 02053721) que contiene
el 5º intrón. El sitio donador de empalme es la secuencia de
nucleótidos 5'-GT-3' en las
posiciones 60-61.
La secuencia de nucleótidos de la región
correspondiente de SBOU2 determinada por los resultados del análisis
se lista como SEQ ID NO: 2. Claramente en SBOU2, la guanina de la
posición 60 del sitio donador de empalme está mutada a adenina.
El reemplazo de la 60ª base de la SEQ ID NO: 2
con adenina forma un nuevo codón de parada (la secuencia de
nucleótidos 5'-TGA-3' en las
posiciones 58-60 de la SEQ ID NO: 2) y, por lo
tanto, presumiblemente la traducción de la proteína
LOX-1 termina en ese punto si el sitio de empalme no
cambia nunca hacia el extremo 5' (Fig. 5).
Se sabe que la región de exón cercana al 5º
intrón es el centro activo de la LOX vegetal (Shibata y Axelrod
(1995), J. Lipid Mediators and Cell Signaling 12:
213-228) y se cree que la aberración de empalme
antes mencionada tiene un efecto principal sobre la actividad de la
enzima LOX-1,
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Ensayo de Verificación
5
Se llevó a cabo el análisis por
RT-PCR para confirmar que realmente se había
producido la aberración de empalme en el 5º intrón.
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Se extrajo RNA total de SBOU2 y la variedad
Kendall en germinación y se utilizó un kit existente en el comercio
(Roche Diagnostics) para la síntesis de CDNA para preparar molde de
DNA. Se llevó a cabo la PCR utilizando dos cebadores diferentes
(5'CCATCACGCAGGGCATCCTG-3' (SEQ ID NO: 6),
5'-GCGTTGATGAGCGTCTGCCG-3' (SEQ ID
NO: 7)) diseñados para dar un fragmento amplificado que contenía el
3er intrón (106 pb), el 4º intrón (132 pb) y el 5º intrón (79 pb)
en la secuencia de DNA genómico. La PCR se llevó a cabo con la
reacción a 94ºC, 1 min, 65ºC, 2 min y 72ºC, 3 min, se repitió 31
veces, seguido por la reacción de extensión a 72ºC, 7 min. La
electroforesis en gel de agarosa de los fragmentos de DNA
amplificados indicó que el fragmento amplificado de SBOU2 era
aproximadamente 80 pb más grande que el fragmento amplificado de la
variedad Kendall (Fig. 6A). Se amplificó un fragmento de 1,2 Kb de
DNA genómico de SBOU2, sugiriendo que los resultados de la
RT-PCR eran los resultados del RNA expresado.
A continuación, para investigar en cuál de los
intrones se había producido la aberración de empalme (el 3er intrón
(106 pb), el 4º intrón (132 pb) o el 5º intrón (79 pb)), el
fragmento amplificado se digirió en el sitio de la enzima de
restricción StuI presente en la región de exón entre el 4º intrón
(132 pb) y el 5º intrón. Como resultado, el fragmento de DNA que
contenía el 5º intrón tuvo una movilidad a grandes rasgos
equivalente a la de uno de los fragmentos de amplificación de DNA
genómico y, por lo tanto, se había producido evidentemente una
aberración en el empalme del 5º intrón que había impedido el empalme
o había desplazado el sitio de empalme hacia el extremo 3' (Fig.
6B). Es decir, que claramente el codón de terminación recién formado
como se muestra en la Fig. 5 había detenido la traducción de la
proteína LOX-1 de SBOU2 en ese codón, dando lugar a
la pérdida de actividad de LOX-1.
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Ensayo de verificación
6
Para establecer la estructura de
LOX-1 derivada de SBOU2, se aisló el cDNA por el
mismo método descrito anteriormente. La amplificación se llevó a
cabo usando un cebador que comprende el sitio BamHI y el codón de
iniciación
(5'-GGATCCATGCTGCTGGGAGGGCTG-3'
(SEQ ID NO: 8)) y un cebador diseñado para incluir el sitio HindIII
y el codón de parada
(5'-AAGCTTTTAGATGGAGATGCTGTTG-3'
(SEQ ID NO: 9). El fragmento amplificado se clonó en el vector pT7
Blue T (Novagen) (pBDC1) y luego proporcionó el análisis
estructural. Los resultados del análisis estructural proporcionaron
la secuencia de nucleótidos del cDNA mostrada como SEQ ID NO: 10.
Este clon de cDNA incluye claramente la región completa del 5º
intrón (bases 1554 a 1632 de la SEQ ID NO: 10).
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Ensayo de verificación
7
Para la expresión de LOX-1
derivada de la variedad Steptoe que retiene el
LOX-1 de tipo silvestre, también se aisló el cDNA
derivado de Steptoe del mismo modo que antes y se clonó en
E. coli (pSDC1), separadamente de SBOU2. El fragmento
BamHI-HindIII se cortó de cada uno de los clones
pSDC1 y pBDC1 y cada uno de los fragmentos obtenidos se insertó en
el sitio BamHI-HindIII del vector de expresión en
E. coli pQE80L (Qiagen) para obtener vectores de expresión
en E. coli (pSQE1 (cDNA insertado en Steptoe) y pBQE1
(cDNA insertado en SBOU2)). Estos vectores se usaron para
transformar E. coli JM109, y luego se indujo la expresión por
TTG de acuerdo con el manual de instrucciones de Qiagen. Como
resultado se indujo la expresión de una banda de aproximadamente 95
kD con pSQE1/TM109, mientras que se indujo la expresión de una banda
de aproximadamente 57 kD con pBQE1/JM109 (Fig. 7). Las células de
E. coli se rompieron por tratamiento con ultrasonidos y se
analizaron las actividades de LOX de los extractos enzimáticos en
bruto. Como resultado se encontró alta actividad de LOX con
pSQE1/JM109, mientras que no se encontró actividad de LOX con
pBQE1/JM109 (Fig. 8). Estos resultados igualan perfectamente la
actividad de LOX-1 y los resultados de los análisis
de la proteína LOX-1 para plantas de SBOU2, lo que
indica que la deficiencia en LOX-1 de SBOU2 puede
ser reproducida en E. coli.
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Ensayo de verificación
8
A continuación, un fragmento
Pstl-Stul que contenía una mutación en sitio donador
de empalme del 5º intrón de pBQE1 (el sitio Stul está en las bases
1502-1507 de la SEQ ID NO: 10, y el sitio Pstl está
en las bases 2048-2053 de la SEQ ID NO: 10) fue
mutuamente intercambiado con el fragmento Pstl-Stul
de pSQE1 de tipo silvestre (pSQE1+BPS, pBQE1+SPS), y se indujo la
expresión en E. coli del mismo modo descrito antes. Como
resultado, con pSQE1+BPS/JM109 que tiene el fragmento
Pstl-Stul derivado de pBQE1 que contenía una
mutación en el sitio donador de empalme del 5º intrón insertado en
pSQE1, se indujo la expresión de una proteína de aproximadamente 57
kD (Fig. 7) y se perdió la actividad de LOX (Fig. 8), similar a
pBQE1/JM109. Inversamente, con pBQE1+SPS/JM109 que tiene el
fragmento Pstl-Stul derivado de pSQE1 insertado en
pBQE1, se restableció la expresión de una proteína de
aproximadamente 95 kD (Fig. 7) y actividad de LOX (Fig. 8), similar
a pSQE1/JlVI109. La secuencia de nucleótidos del fragmento
Pstl-Stul de pBQE1 era exactamente idéntica al gen
de LOX-1 silvestre excepto el sitio donador de
empalme del 5º intrón (G está sustituido por A en la base 1554ª de
la SEQ ID NO: 10). Estos resultados demuestran claramente que la
presencia o ausencia de la mutación en el sitio donador de empalme
del 5º intrón de SBOU2 determina si está presente actividad de
LOX-1.
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Ensayo de verificación
9
En la secuencia de nucleótidos de
LOX-1 descrita, una secuencia que contiene el sitio
donador de empalme del 5º intrón (nucleótidos 60-63
de SEQ ID NO: 1: 5'-GTAC-3') puede
ser digerida por la enzima de restricción AfaI (o RsaI) que
reconoce la secuencia GTAC. Se cartografió el gen deficiente en
LOX-1 utilizando el hecho de que está presente una
mutación en la secuencia de esta región en la línea SBOU2
(nucleótidos 60-63 de la SEQ ID NO: 2:
5'-ATAC-3') que impide la digestión
por AfaI y/o RsaI (Fig. 5). Se extrajo DNA de las hojas de 144
individuos de un híbrido de la segunda generación filial (F2) de un
cruce entre Kendall y la línea SBOU2 y se llevó a cabo la PCR
utilizando dos cebadores diferentes
(5'-CCATCACGCAGGGCATCCTG-3' (SEQ ID
NO: 6), 5'-GCGTTGATGAGCGTCTGCCG-3'
(SEQ ID NO: 7)) diseñados de manera que el fragmento amplificado
pudiera contener el sitio AfaI. La PCR se llevó a cabo con reacción
a 94ºC, 1 min, 65ºC, 2 min y 72ºC, 3 min, repitiendo 31 veces, para
luego realizar la reacción de extensión a 72ºC, 7 min. Se escindió
cada uno de los fragmentos amplificados con AfaI y se analizó por
electroforesis en geles de agarosa al 2,5% (en adelante este método
se denomina "método AfaI"). Como resultado, fue posible
distinguir fácilmente entre los tipos SBOU2, Kendall y heterogéneos
(Fig. 9). Además del estudio del polimorfismo por el método AfaI,
también se examinó el polimorfismo de cada variedad utilizando un
marcador de DNA (JBC970) cerca del locus del gen LOXA del gen
LOX-1 que lleva el cromosoma 4H de cebada (Fig.
10).
Se utilizó una semilla madura de cada uno de los
individuos de F2 para examinar la actividad de LOX de las semillas.
En el caso de las líneas que no exhibían actividad de LOX en
absoluto, se midió la actividad utilizando varias semillas
(4-7) (Fig. 10).
Como resultado del examen de los polimorfismos
por el método AfaI de la generación F2 y la medición de la
actividad de LOX de las semillas F3, la segregación del rasgo
deficiente en LOX-1 coincidió perfectamente con la
segregación del polimorfismo por el método AfaI. Por consiguiente,
esta serie de análisis genéticos demostró claramente que el gen
deficiente en LOX-1 de SBOU2 está en el locus
del gen LOXA.
Los resultados también demostraron que el uso
del método AfaI como ejemplo de un método de selección de cebada
utilizando la mutación de DNA permite la selección de las líneas de
progenie deficientes en LOX-1 en la etapa temprana
de crecimiento de la cebada, eliminando la necesidad de esperar
hasta que las semillas hayan madurado.
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Ejemplo
1
Se utilizaron variedades/líneas de cebadas
generales para el examen de los polimorfismos AfaI. Se utilizó un
total de 32 variedades/líneas: Mikamo Golden, Golden Melon, Haruna
Nijo, Myogi Nijo, Sakitama Nijo, Wasedori Nijo, Agurimochi, Harupin
Nijo, Ryofu, Hokuiku 33, Hokuiku 35, Prior, Schooner, Sloop, Lofty
Nijo, Franklin, Betzes, Harrington, Manley, B1251, CDC Kendall, CDC
Stratus, CDC Copeland, Hanna, Merit, AC Metcalfe, TR145, Chariot,
Stirling, Proctor, Koral y Heartland. Como resultado del examen de
polimorfismos por el método AfaI, se determinó que las variedades
analizadas no eran el tipo SBOU2, sino que eran digeridas en el
sitio de la enzima de restricción AfaI que contenía el sitio
donador de empalme del 5º intrón (nucleótidos 60-63
de la SEQ ID NO: 1: 5'-GTAC-3')
(Fig. 11). Esto indicó que estas líneas viables no poseían una
mutación de DNA en el sitio AfaI (nucleótidos 60-63
de la SEQ ID NO: 1: 5'-GTAC-3') y,
por lo tanto, que el método AfaI puede ser empleado con eficacia
para la selección de genes deficientes en LOX-1
entre las líneas de la progenie.
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Ejemplo
2
Se examinaron recursos génicos de cebada de todo
el mundo (variedades de la tierra) conservados en la Universidad de
Okayama por el método AfaI. Como resultado, se descubrieron cinco
nuevas líneas (SBOU1, SBOU3, SBOU4, SBOU5 y SBOU6 conservados en la
Universidad de Okayama) que no fueron digeridas en el sitio de la
enzima de restricción AfaI que contenía el sitio donador de empalme
del 5º intrón (nucleótidos 60-63 de la SEQ ID NO: 1:
5'-GTAC-3') (Fig. 12).
Se midió la actividad de LOX-1
de las semillas de estas líneas por el método descrito en la Ensayo
de búsqueda 1. La medición de actividad, en el caso de SBOU5 y
SBOU6, se llevó a cabo por reacción durante 5 minutos (Fig. 13A),
mientras que la medición de actividad en SBOU1, SBOU3 y SBOU4 se
realizó con un tiempo de reacción estimado de 90 minutos para una
identificación clara de la actividad (Fig. 13B). Como resultado, no
se encontró actividad significativa en ninguna de las líneas (Fig.
13).
Esto demostró claramente que así como SBOU2,
SBOU1, SBOU3, SBOU4, SBOU5 y SBOU6 (el tipo de cebada SBOU2
deficiente en LOX-1) eran líneas de cebada
deficientes en LOX-1. Puesto que todas las líneas
eran landrace y no eran líneas que habían sido sometidas a
mutagénesis, estas representan mutantes espontáneas del gen
LOX-1.
Los resultados antes descritos demostraron que
el método AfaI, como ejemplo de método de selección de cebada
utilizando la mutación de DNA es una técnica que permite no sólo la
selección de las líneas de progenie de la cebada deficientes en
LOX-1, sino también una selección eficaz de la
cebada deficiente en LOX-1 entre los recursos
génicos.
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Ejemplo
3
Se cruzó una variedad de cebada, Taishomugi, con
SBOU2 y la primera generación filial obtenida (F1) fue
autopolinizada para obtener una generación F2. El rasgo deficiente
en LOX-1 fue confirmado por el método de medición de
la actividad enzimática de LOX-1 descrito en el
Ensayo de búsqueda 1 y el método AfaI descrito en el Ensayo de
verificación 7 antes expuestos y se proporcionaron el grupo de
líneas deficientes en LOX-1 y el grupo de líneas
que retenían LOX-1 como poblaciones para la
propagación de las semillas descrita a continuación.
Se llevó a cabo la propagación de las semillas
de cada línea (población) utilizando una parcela uniforme o
invernadero hasta obtener las semillas F4. Cuando se analizó la
actividad de la enzima LOX-1 de las semillas F4, se
encontró que se mantenían los rasgos de actividad de la
LOX-1 respectiva de los individuos F2, indicando
que el rasgo de deficiencia de LOX-1 se transmite a
la progenie de forma estable.
Se utilizaron las semillas F4 para el siguiente
ensayo de producción de malta y el ensayo de producción de bebidas
alcohólicas de malta.
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Ejemplo
4
Se prepararon y utilizaron para el malteado una
población F4 de cebada deficiente en LOX-1
(LOX-F4) que comprendía semillas de cebada sin
actividad de LOX-1 y una población de cebada F4 que
retenía actividad de LOX (LOX+F4) de semillas de cebada con
LOX-1, ambas derivadas del cruce de Taishomugi x
SBOU2.
El malteado se llevó a cabo utilizando un
Automatic Micromalting System (Phoenix Systems) en
condiciones de temperatura de maceración de 16ºC durante un total
de 82 horas (ciclo de 5 h HUMEDO/7 h SECO), germinación a 15ºC
durante 139 horas y secado en horno durante 29 horas (55ºC durante
13,5 h, 65ºC durante 8 h, 75ºC durante 3,5 h, 83ºC durante 4
h).
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Ejemplo
5
La malta se analizó de acuerdo con el método
estándar de EBC (European Brewery Convención ed., Analytica EBC
(4th Ed.), 1987). Como resultado, no se encontró diferencia
significativa en valores analíticos de malta entre las maltas que
empleaban LOX-F4 y LOX+F4, lo que demostró que se
las puede utilizar para la elaboración de bebidas alcohólicas de
malta con el fin de comparar la presencia o ausencia de actividad de
LOX-1 (Fig. 14).
A continuación, se utilizaron 50 g de la malta
para producir mosto por el Método Congreso (European Brewery
Convención ed., Analytica EBC (4th Ed.), 1987) y se analizó la
oxidación de los lípidos en el mosto congreso.
En primer lugar, se midió la cantidad de
trans-2-nonenal en el mosto congreso
por el siguiente método. Se colocó una muestra de mosto de 8 ml en
un vial, se añadieron 3 g de NaCl y se tapó el vial. A continuación,
se insertó una fibra de polidimetilsiloxano SPME (Supelco, Inc.) en
el espacio de cabeza del vial y se incubó el vial a 40ºC durante 15
minutos.
Luego se insertó la fibra en un orificio de
inyección de un equipo de cromatografía de gases/espectrometría de
masas equipado con una columna J&W DB-1 como
columna capilar (30 m x 0,25 mm, espesor de la película: 1 \mum).
Se empleó helio como gas portador (1 ml/min) y las condiciones del
horno eran 60ºC a 225ºC (5ºC/min) en el modo de ion seleccionado
(m/z: 70). La cuantificación se realizó por el método de adición
estándar utilizando trans-2-nonenal
(Sigma) como muestra estándar.
Como resultado, las concentraciones de
trans-2-nonenal de los mostos de
tipo congreso producidos utilizando LOX-F4 y LOX+F4
fueron 0,36 ppmm y 3,85 ppmm, respectivamente. De esa manera se
demostró que la producción de mosto utilizando la malta de acuerdo
con la presente invención permite que se inhiba la producción de
trans-2-nonenal en tanto como la
décima parte o menos de la malta convencional.
Se midió el potencial de nonenal del mosto
congreso mediante el siguiente método: En primer lugar, se hirvió
el mosto congreso durante 2 horas según el método de Drost et
al., (Drost, B.W., Van der Berg, R., Freijee, F.J.M., Van der
Velde, E.G. y Hollemans M., J. Am. Soc. Brew. Chem., 48,
124-131, 1990). Luego se midió la cantidad de
trans-2-nonenal en la mezcla por el
método de medición de
trans-2-nonenal antes descrito y se
calculó el potencial de nonenal del mosto congreso.
Como resultado, los potenciales de nonenal de
los mostos de tipo congreso producidos con el uso de
LOX-F y LOX+F4 fueron 2,74 ppmm y 11,9 ppmm,
respectivamente. Puesto que el potencial de nonenal se conoce como
índice del envejecimiento del producto (Drost, B.W. et al.,
J. Am. Soc. Brew. Chem., 48, 124-131, 1990;
Ueda et al. (2001) EBC-Proceedings
55:p3 28th Congress), la malta producida a partir de la cebada de
acuerdo con la presente invención puede ser utilizada para la
elaboración de bebidas de malta para mejorar significativamente la
estabilidad del sabor de las bebidas alcohólicas de malta.
En la Fig. 15 se muestran las concentraciones de
trans-2-nonenal y los potenciales de
nonenal de los mostos de tipo congreso producidos utilizando
LOX-F4 en comparación con los de los mostos de tipo
congreso producidos utilizando la malta existente en el comercio.
Como es claro de los resultados expuestos en la Fig. 15, los mostos
de la presente invención exhibieron valores que no se podían
alcanzar con la cebada convencional.
Esos resultados demostraron que el uso de la
cebada de acuerdo con la presente invención permite la producción
de malta con nivel de calidad superior que no exhibían los productos
convencionales.
Las concentraciones de THOD de los mostos de
tipo congreso se determinaron por análisis de cromatografía líquida
de alta resolución-espectrometría de masas
(HPLC-MS). Las condiciones de HPLC fueron las
siguientes: El caudal de la fase móvil era 0,3 ml/min, utilizando
una solución mixta de ácido acético al 0,5% (solución A) y
acetonitrilo (solución B) como fase móvil, con un gradiente de
solución A:solución B = 35:65 (0 min) a solución A:solución B =
5:95 (30 min). La columna empleada fue una columna Waters Asymmetry
(Nº 106005; C18, 3,5 \mum: 2,1 x 150 mm), la temperatura de la
columna fue 50ºC y se utilizó un sistema HPLC Modelo 1100
(Hewlett-Packard) para la separación de 5 \mul de
muestra de mosto o bebida alcohólica de malta. Se realizó el
análisis de masas empleando una columna Waters ZQ, con
monitorización de masa 329 en módulo de ionización negativa ES. La
solución patrón de THOD empleada era una muestra de extracto de
cerveza (Kobayashi, N., et al., J. Biosci. Bioeng.
90, 69-73, 2000).
Como resultado, las concentraciones de THOD del
mosto congreso producido usando LOX-F4 y LOX+F4
fueron 6,5 ppm y 14,7 ppm, respectivamente, demostrando así que la
producción de mosto usando la malta de acuerdo con la presente
invención puede inhibir la concentración de THOD del mosto a la
mitad o menos.
Como se mencionó anteriormente, el THOD se
produce por la conversión del ácido linoleico por la acción de la
LOX-1 de malta y la actividad de peroxigenasa de la
malta en la etapa de braceado, pero puesto que se piensa que la
actividad de peroxigenasa de la malta es la etapa limitante de la
velocidad para la producción de THOD (Kuroda, H. et al.,
J. Biosci. Bioeng. 93, 73-77, 2002), no
resultaba claro hasta qué punto la actividad de
LOX-1 de malta reducida inhibe la producción de
THOD. Sin embargo, los resultados de los ejemplos presentados en la
presente memoria descriptiva han demostrado que el uso de la malta
producida a partir de las semillas de cebada sin actividad de
LOX-1 reduce la concentración de THOD en el mosto.
Puesto el THOD sobrevive al producto final sin ser metabolizado por
la levadura (Kobayashi, N., et al., J. Inst. Brew.
106, 107-110 (2000)), el uso de la malta derivada
de la cebada de acuerdo con la presente invención puede dar lugar
claramente a la producción de bebidas alcohólicas de malta con
buena calidad de sabor y calidad de espuma.
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\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
6
Se bracearon la malta de LOX-F4
y la malta de LOX+F4 obtenidas en el Ejemplo 4 anterior con un
aparato de braceado a escala de 50 litros de acuerdo con los
métodos de braceados estándares para la bebida alcohólica debajo
contenido en malta espumante Happoshu (contenido de malta: 24%). Las
condiciones de braceado fueron las siguientes.
Se bracearon 1,5 kg de cada malta sola con 15
litros de agua de braceado de acuerdo con un diagrama de 50ºC
durante 20 min, 65ºC durante 30 min y 75ºC durante 3 min. Después
del malteado, se llevó a cabo la clarificación del mosto con un
tonel de clarificación. Se obtuvieron 35 litros de mostos
clarificados.
Antes de la ebullición, se mezcló el mosto
clarificado con 5 kg de jarabe de almidón (75% de sacáridos). Se
añadieron 13 g de pelets de lúpulo (unidad de amargor: 87,0 BU
(EBC)) al mosto. Después de 70 minutos de ebullición, se enfrió el
mosto hervido a 10ºC. El contenido de extracto de los mostos
enfriados se ajustó a 11,6-11,8% por adición de
agua.
Los mostos obtenidos fueron analizados de
acuerdo con el Método estándar de la EBC [(European Brewery
Convention (Convención Europea de Cerveceros) Ed. Analytica EBC
(4th Ed), 1987]. Los valores del análisis están recogidos en la
Tabla 1. Como se aprecia en la Tabla 1, no se encontraron
diferencias marcadas entre LOX-F4 y LOX+F4 con
respecto a los parámetros.
El mosto obtenido anteriormente en el apartado 1
anterior se transfirió a un depósito
cilíndrico-cónico a escala de 30 litros y luego se
añadió levadura a una concentración inicial de 30 millones de
células/ml para la fermentación principal a 13ºC. Cuando el
contenido del extracto en el líquido de fermentación cayó a 2,5%,
se transfirió a un nuevo depósito similar para la etapa de
conservación. La etapa de conservación se llevó a cabo a 13ºC
durante los primeros 6 días y luego a 0ºC durante las 2 semanas
posteriores.
Una vez concluida la etapa de conservación, se
introdujo el líquido de fermentación en un aparato de filtración y
llenado de cerveza. Luego la bebida alcohólica de malta se filtró y
envasó en botellas.
La bebida alcohólica de malta obtenida en el
apartado 2, precedente se analizó como sigue.
El análisis de acuerdo con el método estándar de
la EBC no encontró diferencias significativas entre
LOX-F4 y LOX+F4 en términos de parámetros de
análisis general distintos de los parámetros de oxidación de lípidos
(Tabla 2).
La estabilidad de la espuma de la bebida
alcohólica de malta obtenida en 2 precedentemente se analizó por el
siguiente método.
El análisis de la estabilidad de la espuma se
llevó a cabo por el método NIBEM. Después del análisis de la
estabilidad de la espuma empleando un Analizador de la Estabilidad
de Espuma Haffman (Tabla 3), la cebada LOX-F4 tenía
claramente mayor estabilidad de la espuma, con un valor NIBEM de 21
puntos más que la cebada de LOX+F4.
Además, como resultado de la medición de la
concentración de THOD por el método descrito en el Ejemplo 5
anterior, el contenido de THOD de LOX-F4 exhibió
una reducción a menos de la mitad de la correspondiente a LOX+F4
(Tabla 3).
Estos resultados demostraron claramente que las
bebidas alcohólicas de malta producidas por el método de producción
de la presente invención permiten producir la bebida alcohólica de
malta con contenido reducido de THOD y mejor retención de
espuma.
Luego se sometió la bebida alcohólica de malta
obtenida en el apartado anterior 2 al siguiente ensayo realizado
por 13 catadores para comparar la estabilidad del sabor.
En primer lugar, se conservaron las bebidas
alcohólicas de malta LOX-F4 y LOX+F4 a 37ºC durante
una semana. Luego se las vertió en copas a la temperatura normal de
consumo y se las presentó a los catadores del ensayo sensorial para
la evaluación de sabor desagradable y ranciedad total en una escala
de 0-4 (en la que un valor más elevado representaba
el envejecimiento progresivo) (Tablas 4A, B).
Como resultado, 10 de los 13 catadores asignaron
menores puntuaciones a LOX-F4 en cuanto al sabor
desagradable y, por lo tanto, LOX-F4 exhibió una
puntuación menor (valor medio) que LOX+F4. Se determinó que la
diferencia de acuerdo con una ensayo t pareado era significativa al
nivel de probabilidad de 5% (Tabla 4A).
En cuanto a la ranciedad total, 11 de los 13
catadores asignaron puntuaciones menores a LOX-F4 y,
por lo tanto, LOX-F4 exhibió una puntuación menor
(valor medio) que LOX+F4. Se determinó que la diferencia de acuerdo
con una ensayo t pareado era significativa al nivel de probabilidad
de 5% (Tabla 4B).
El ensayo sensorial anterior y el análisis
estadístico demostraron que LOX-F4 tenía menos sabor
desagradable y ranciedad total que LOX+F4.
\vskip1.000000\baselineskip
Como resultado de la medición del contenido de
trans-2-nonenal de la bebida
alcohólica de malta obtenida en el punto 2 anterior,
LOX-F4 tenía un menor contenido de
trans-2-nonenal que LOX+F4 antes y
después de la conservación a 37ºC durante una semana. El contenido
de trans-2-nonenal de
LOX-F4 se redujo a aproximadamente un tercio en
comparación con el de LOX+F4 después de la conservación (Tabla
5).
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\vskip1.000000\baselineskip
Estos resultados del ensayo sensorial y los
resultados del análisis del contenido de
trans-2-nonenal en las bebidas
alcohólicas de malta demostraron que el método de producción de
bebidas alcohólicas de malta de la presente invención permite la
producción de bebidas alcohólicas de malta con estabilidad de sabor
mejorada.
Por último, el cuerpo y la suavidad de la bebida
alcohólica de malta obtenida en el apartado 2 anterior fueron
analizados por un ensayo sensorial con un sensor de membrana
lipídica.
En primer lugar, se llevó a cabo un ensayo
sensorial con 13 catadores expertos para la comparación de la
calidad del sabor. Se ofrecieron bebidas alcohólicas de malta
LOX-F4 y LOX+F4 para el ensayo sensorial, y se
evaluaron el cuerpo y la suavidad en una escala de
0-4 (donde las puntuaciones más elevadas
correspondían a cuerpo más completo y mejor suavidad (Tabla 6).
En cuanto al cuerpo, no se encontró diferencia
significativa (nivel de probabilidades de 5%) entre
LOX-F4 y LOX+F4 (Tabla 6A).
Con respecto a la suavidad, 8 de los 13
catadores asignaron puntuaciones más altas a LOX-F4
(Tabla 6B). LOX-F4 tuvo una puntuación más alta
(valor medio) que LOX+F4 y se determinó que la diferencia de acuerdo
con el ensayo t pareado era significativa en el nivel de
probabilidad del 5%.
Estos resultados demostraron que la elaboración
de bebidas alcohólicas de malta utilizando LOX-F4
puede mejorar la suavidad sin afectar el cuerpo.
\vskip1.000000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
También se evaluaron el cuerpo y la suavidad
utilizando un sensor de membrana lipídica de acuerdo con el método
de Kaneda et al., (Kaneda, H. et al., J. Biosci.
Bioeng. 92, 221-226, 2001) (Tabla 7).
Se evaluó el cuerpo basándose en la adsorción en
la membrana lipídica y los resultados no arrojaron diferencias
significativas (nivel de probabilidad del 5%) entre la adsorción con
LOX-F4 y LOX+F4 (Tabla 7A).
La suavidad se evaluó basándose en la duración
de la absorción en la membrana lipídica (donde una mayor duración
de la adsorción indicaba peor suavidad) y LOX-F4
exhibió un residuo de aproximadamente la cuarta parte en
comparación con LOX+F4, con una diferencia significativa en el nivel
de probabilidad del 1% (Tabla 7B).
(Sin diferencia significativa en el nivel de
probabilidad del 5%)
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\vskip1.000000\baselineskip
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(Diferencias significativas en el nivel de
probabilidad del 1%).
\vskip1.000000\baselineskip
Hasta ahora no se había encontrado ninguna
correlación entre la actividad de LOX-1 de la cebada
y los niveles de producción de THOD en las etapas de braceado
(Kobayashi, N., et al., (2000) J. Biosci. Bioeng. 90,
69-73), y no resultaba claro en qué medida se reduce
la producción de THOD por la inhibición de la LOX-1
de la cebada. Más aún, no había sido posible en la técnica anterior
predecir si se puede mejorar la suavidad como resultado de dicha
inhibición de la LOX-1 de la cebada. Sin embargo,
los resultados de las ensayos sensoriales y los análisis del cuerpo
y suavidad del producto utilizando un sensor de membrana lipídica en
los ejemplos descritos en la presente memoria descriptiva han
demostrado, por primera vez, que se puede utilizar la cebada que
contiene el gen reivindicado en la presente para mejorar la suavidad
del producto sin afectar al cuerpo de dicho producto.
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Ejemplo
7
Usando cebada procesada de
LOX-F5 y LOX+F5, las siguientes generaciones de las
líneas de obtenidas en el Ejemplo 3 anterior, se llevó a cabo un
braceado aditivo con un aparato de braceado a escala de 50 litros de
acuerdo con los métodos de braceado estándares para Happoshu,
bebida alcohólica de bajo contenido en malta (contenido en malta:
24%, contenido en cebada procesada: 76%). Las condiciones fueron
como sigue.
1,2 kg de una malta comercialmente disponible
para la cerveza y 38 kg de cada cebada procesada se bracearon con
20 litros de agua de braceado de acuerdo con un diagrama de 50ºC
durante 30 minutos, 65ºC durante 60 minutos y 75ºC durante 3
minutos (se añadieron enzimas, tales como
\alpha-amilasa y \beta-glucanasa
debido al alto contenido de cebada procesada). Después del
braceado, se llevó a cabo la clarificación del mosto con un tonel
de clarificación. Se obtuvieron 40 litros de mostos
clarificados.
Se añadieron 53 g de pelets de lúpulo (unidad de
amargor: 25,6 BU (EBC)) a los mostos clarificados obtenidos.
Después de ebullición durante 80 minutos, el mosto hervido se enfrió
a 10ºC. Los contenidos de extracto de los mostos se ajustaron por
adición de agua hasta 7,5-7,6%.
Los mostos obtenidos se analizaron de acuerdo
con el método estándar de EBC. Los valores del análisis se
muestran en la Tabla 8. Como puede verse en la Tabla 8, no se
encontraron diferencias distintas entre LOX-F5 y
LOX+F5 con respecto a los parámetros.
El mosto obtenido en 1 anteriormente se
transfirió a un depósito cilindro-cónico a escala de
30 litros, y luego se añadió levadura a una concentración inicial
de 30 millones de células/ml para la fermentación principal a
15ºC. Cuando el contenido de extracto en el líquido de fermentación
cayó a 1,3%, se transfirió a un nuevo depósito similar para una
etapa de conservación. La etapa de conservación se llevó a cabo a
13ºC durante los primeros 5 días y luego a 0ºC durante las 2
semanas siguientes.
Tras acabar la etapa de conservación, el líquido
de fermentación se suministró a un aparato de filtración y llenado
de cerveza. La bebida alcohólica de malta se filtró y envasó en
botellas.
La bebida de malta alcohólica obtenida en 2
anteriormente se analizó como sigue.
El análisis de acuerdo con el método estándar de
EBC muestra que no se encontraron diferencias significativas entre
LOX-F5 y LOX+F5 en términos de los parámetros del
análisis general distintos de los parámetros de la oxidación de
lípidos (Tabla 9).
La estabilidad de espuma de la bebida de
alcohólica de malta obtenida en 2 se analizó por el método
siguiente.
El análisis de estabilidad de la espuma se
realizó por el método NIBEM. Por el análisis de estabilidad de la
espuma usando un aparato de ensayo de Estabilidad de la espuma
Haffmans (Tabla 10), la cebada de LOX-F5 tenía
claramente superior estabilidad de la espuma, con un valor NIBEM de
17 puntos más que la cebada de LOX+F5.
También como resultado de medir la concentración
de THOD por el método descrito en el Ejemplo 5 anterior, el
contenido de THOD en la bebida alcohólica de malta de
LOX-F5 exhibió una reducción hasta menos de la mitad
del valor de la LOX+F5.
Estos resultados demuestran claramente que el
método de producción de bebida alcohólica de malta de la invención
permite producir la bebida alcohólica de malta con contenido de THOD
reducido y retención de espuma mejorada.
Los valores de THOD indican los valores
relativos, en donde las áreas de los picos de los patrones internos
son 100.
La bebida alcohólica de malta obtenida en 2
anteriormente se sometió luego al siguiente ensayo sensorial por 13
catadores para comparación de la estabilidad del sabor. El método
específico del ensayo sensorial es el mismo que el descrito en el
Ejemplo 6.
Como resultado, 11 de los 13 catadores asignaron
puntuaciones inferiores a LOX-F5 para el sabor
desagradable, y por lo tanto LOX-F5 exhibió una
puntuación inferior (valor medio) que LOX+F5. La diferencia de
acuerdo con un ensayo t pareado se determinó que era significativa
en una probabilidad de 5% (Tabla 11A).
Para la ranciedad total, 12 de los 13 catadores
asignaron puntuaciones inferiores a LOX-F5, y por
tanto LOX-F5 exhibió una puntuación inferior (valor
medio) que LOX+F5. La diferencia de acuerdo con un ensayo t pareado
se determinó que era significativa a un nivel de probabilidad de 5%
(Tabla 11B).
El ensayo sensorial y el análisis estadístico
demostraron que LOX-F5 tenía un valor inferior del
sabor desagradable y de la ranciedad total que LOX+F5.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Como resultado de medir el contenido de
trans-2-nonenal de la bebida
alcohólica de malta obtenida en 2 anteriormente, antes y después de
la conservación a 37ºC durante un semana, LOX-F5
tenía un contenido similar de
trans-2-nonenal al de LOX+F5 antes
de la conservación. El contenido de
trans-2-nonenal de
LOX-F5 se redujo a aproximadamente la mitad
comparado con el de LOX+F5 después de la conservación (Tabla
12).
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\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
8
La malta de LOX-F4 y la malta de
LOX+F4 obtenidas por el mismo método que el descrito en el Ejemplo 4
anterior se bracearon con un aparato a escala de 50 litros de
acuerdo con los métodos de braceado estándares para cerveza
(contenido de malta: 71%). las condiciones de braceado fueron como
sigue.
5,0 kg de la malta de ensayo anterior y 2,0 kg
de material aditivo (almidón de maíz, sémola de maíz y arroz
triturado) se bracearon con 23 litros de agua de braceado de acuerdo
con un diagrama de 50ºC durante 20 minutos, 65ºC durante 40 minutos
y 75ºC durante 3 minutos. Después de bracear, se llevó a cabo la
clarificación del mosto con un tonel de clarificación. Se
obtuvieron 40 litros de mostos clarificados.
Se añadieron 40 g de pelets de lúpulo (unidad de
amargor: 44.9 BU (EBC)) a los mostos clarificados obtenidos.
Después de hervir durante 90 minutos, el mosto hervido se enfrió a
10ºC. El contenido de extracto de los mostos enfriados se ajustó
por adición de agua a 10,8-11.1%.
Los mostos obtenidos se analizaron de acuerdo
con el método estándar de EBC. Los valores del análisis se muestran
en la Tabla 13. Como se ve en la Tabla 13, no se encontró una
diferencia significativa entre LOX-F4 y LOX+F4 con
respecto a los parámetros.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
El mosto obtenido en 1 anterior se transfirió a
un depósito cilindro-cónico esterilizado con vapor
de agua a escala de 30 litros, y luego se añadió levadura a una
concentración inicial de 15 millones de células/ml para la
fermentación principal a 10,5ºC. Cuando el contenido de extracto en
el líquido de fermentación cayó a 2,5%, se transfirió a un nuevo
depósito similar para una nueva etapa de conservación. La etapa de
conservación se llevó a cabo a 8ºC durante los primeros 8 días y
luego a 0ºC durante 2 semanas más.
Tras terminar la etapa de conservación, el
líquido de fermentación se suministró a un aparato de filtración y
envasado de cerveza. La bebida alcohólica de malta se filtró y
envasó en botellas.
\vskip1.000000\baselineskip
La estabilidad de la espuma de la bebida
alcohólica de malta obtenida en 2 anterior se analizó por el método
siguiente. El análisis de estabilidad de la espuma se realizó por el
método NIBEM. Tras el análisis de la estabilidad de la espuma
usando un aparato de ensayo de estabilidad de la espuma Haffinans
(Tabla 14), la cebada de LOX-F4 tenía claramente
mayor estabilidad, con un valor NIBEM de 30 puntos más que la
cebada de LOX+F4.
También, como resultado de medir la
concentración de THOD por el método descrito en el Ejemplo 5
anterior, el contenido de THOD de la bebida de malta alcohólica de
LOX-F4 exhibió una reducción a menos de la mitad
del correspondiente a LOX+F4.
Estos resultados demuestran claramente que el
método de producción de bebidas de alcohólicas de malta de la
invención permite producir la bebida alcohólica de malta con un
contenido reducido de THOD y retención de espuma mejorada.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Los valores de THOD indican los valores
relativos, donde las áreas de los picos de los patrones internos son
100.
La bebida alcohólica de malta obtenida en 2
anteriormente se sometió luego al siguiente ensayo sensorial por
13 catadores para la comparación de la estabilidad del sabor. El
método específico del ensayo sensorial es el mismo que el descrito
en el Ejemplo 6.
Como resultado, 11 de los 13 catadores asignaron
puntuaciones inferiores a LOX-F4 en cuanto a sabor
desagradable, y por tanto la LOX-F4 exhibió una
puntuación inferior (valores medios) a la LOX+F4. La diferencia de
acuerdo con un ensayo t pareado se determinó que era significativa
a una probabilidad de 5% (Tabla 15A).
Para la ranciedad total, 12 de los 13 catadores
asignaron puntuaciones inferiores a LOX-F4, y por lo
tanto LOX-F4 exhibió una puntuación inferior (valor
medio) a la LOX+F4. La diferencia de acuerdo con el ensayo t
pareado se determinó que era significativa a un nivel de
probabilidad de 5% (Tabla 15B).
El ensayo sensorial anterior y el análisis
estadístico demostró que LOX-F4 tenía menores sabor
desagradable y ranciedad total que LOX+F4.
\vskip1.000000\baselineskip
Estos resultados del ensayo sensorial y los
resultados del análisis del contenido de
trans-2-nonenal en las bebidas
alcohólicas de malta demostraron que el método de producción de las
bebidas alcohólicas de malta de la invención permite producir
bebidas alcohólicas de malta con estabilidad de sabor mejorada.
Es posible producir un gen LOX-1
mutante ventajoso para la producción de bebidas alcohólicas de malta
que exhiben estabilidad del sabor y estabilidad de la espuma
mejoradas sin manipulación génica, un método de selección de la
cebada deficiente en LOX-1, materiales para bebidas
alcohólicas de malta derivados de la cebada obtenidos por el método
de selección y un método para la producción de bebidas alcohólicas
de malta usando los materiales para bebidas alcohólicas de
malta.
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> SAPP0R0 BREWERIES LTD.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Gen de
lipoxigenasa-1 de cebada. Método de selección para
cebada. Materiales para bebidas alcohólicas de malta y Método para
la producción de bebidas alcohólicas de malta
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> FP04-0052
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> JP 2003-083924
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2003-03-25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> Versión PatentIn 3.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 240
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Hordeum vulgare
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 240
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Hordeum vulgare
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
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<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para LOX-1
con sitio BamHI
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para LOX-1
con sitio BamHIII
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
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\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2668
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
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<213> Hordeum vulgare
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<400> 10
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\hskip1cm
\hskip1cm
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<210> 11
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<211> 4393
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<212> DNA
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<213> Hordeum vulgare
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\hskip1cm
\hskip1cm
Claims (13)
1. Un gen mutante de
lipoxigenasa-1 de cebada, en donde la guanina del
sitio donador de empalme (5'-GT-3')
del 5º intrón del gen de lipoxigenasa-1 de la cebada
está mutada a una base diferente.
2. Un gen mutante de
lipoxigenasa-1 de cebada de acuerdo con la
reivindicación 1, en donde la base diferente es adenina.
3. Un método de selección para cebada deficiente
en lipoxigenasa-1 de cebada, que comprende una etapa
de distinguir la cebada deficiente en
lipoxigenasa-1 de cebada comprobando sí o no la
guanina del sitio donador de empalme del 5º intrón del gen de
lipoxigenasa-1 de cebada está mutada a una base
diferente.
4. Un método de selección de cebada deficiente
en lipoxigenasa-1 de la cebada de acuerdo con la
reivindicación 3, en donde la base diferente es adenina.
5. Un método de selección de cebada deficiente
en lipoxigenasa-1 de cebada de acuerdo con la
reivindicación 3 ó 4, que comprende:
una etapa de extracción de DNA genómico en donde
el DNA genómico se extrae de una muestra de cebada,
una etapa de amplificación de un fragmento de
DNA en donde, a partir del DNA genómico extraído, se amplifica un
fragmento de DNA que contiene el sitio donador de empalme del 5º
intrón del gen de lipoxigenasa-1 de cebada y
una etapa de detección del fragmento de DNA en
donde, se escinde con una enzima de restricción, el fragmento de
DNA que contiene el sitio donador de empalme del 5º intrón del gen
lipoxigenasa-1 de cebada amplificado en la etapa de
amplificación de un fragmento de DNA, se detecta el fragmento de DNA
que tiene el número de bases prescrito y se diferencia la cebada
deficiente en lipoxigenasa-1 de cebada comprobando
sí o no la guanina situada en el sitio donador de empalme está
mutada a una base diferente.
6. Un método de selección de cebada deficiente
en lipoxigenasa-1 de cebada de acuerdo con la
reivindicación 5, en donde la enzima de restricción utilizada en la
etapa de detección de fragmentos de DNA es AfaI y/o RsaI, que
reconocen la secuencia de nucleótidos
5'-GTAC-3'.
7. Un material para bebidas alcohólicas de
malta, en donde el material se selecciona del grupo que consiste en
una semilla, una malta, un extracto de malta, un producto de
descomposición de la cebada o un derivado de cebada procesada,
derivado de una cebada que contiene un gen mutante de
lipoxigenasa-1 de la cebada de acuerdo con la
reivindicación 1 ó 2, en donde dicha cebada es completamente
deficiente en actividad de LOX-1.
8. Un material para bebidas alcohólicas de
malta, en donde el material se selecciona del grupo que consiste en
una semilla, una malta, un extracto de malta, un producto de
descomposición de cebada o un derivado de cebada procesada, de
cebada seleccionada por un método de selección de acuerdo con
cualquiera de las reivindicaciones 3 a 6, en donde dicha cebada es
completamente deficiente en actividad de LOX-1.
9. Un método para la producción de bebidas
alcohólicas de malta, caracterizado por utilizar un material
para bebidas alcohólicas de malta de acuerdo con la reivindicación
7 u 8.
10. Un ácido nucleico que comprende la secuencia
de nucleótidos desde la posición 1 hasta 1554 como se expone en la
SEQ ID NO: 10.
11. Un ácido nucleico que comprende la secuencia
de nucleótidos que se expone en la SEQ ID NO: 11.
12. Un ácido nucleico que comprende la
secuencia de nucleótidos de 10 a 60 bases continuas, incluyendo la
base 3178ª en la secuencia de nucleótidos que se expone en la SEQ ID
NO: 11.
13. Un método para detectar la ausencia de
actividad de LOX-1 en cebada, que comprende:
una etapa de aislar un DNA genómico de una
muestra de cebada, y
una etapa de detectar la base 3178ª de la
secuencia de nucleótidos que se expone en la SEQ ID NO: 11, en donde
la presencia de la base es un indicador de la ausencia de actividad
de LOX-1 en la cebada.
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