ES2323586T3 - Procedimiento de preparacion de hormona del crecimiento y antagonista de la misma que tiene niveles inferiores de impurezas de isoformas. - Google Patents

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Abstract

Un procedimiento para disminuir la cantidad de una impureza de isoforma de trisulfuro producida en la producción recombinante del polipéptido B-2036 antagonista de la hormona del crecimiento de SEC. ID. NO. 1 en células huésped modificadas genéticamente que contienen compuesto(s) celular(es), comprendiendo el procedimiento las etapas de: (a) poner en contacto un agente quelante con una pasta de células o un lisado de pasta de células que comprende (1) dicha impureza, (2) dicho polipéptido antagonista de la hormona del crecimiento, (3) dicho(s) compuesto(s) celular (es) para disminuir la cantidad de dicha impureza, en el que la proporción de los moles de dicho agente quelante con respecto a los moles de dicho polipéptido antagonista de la hormona del crecimiento es desde 20 hasta 1.000 y la temperatura se mantiene desde 0ºC hasta 35ºC.

Description

Procedimiento de preparación de hormona del crecimiento y antagonista de la misma que tiene niveles inferiores de impurezas de isoformas.
Campo de la invención
La presente invención se refiere en general a procedimientos recombinantes para preparar un polipéptido deseado. Este/Estos procedimiento(s) proporciona(n) un producto polipeptídico que contiene niveles reducidos de impurezas de isoforma del mismo. En particular, la presente invención se refiere a un procedimiento recombinante para preparar un antagonista de la hormona del crecimiento, tal como pegvisomant, y su producto intermedio proteico, que tiene también impurezas de isoforma reducidas del mismo. Más específicamente, las impurezas de isoforma que se disminuyen mediante el procedimiento de la presente invención son las impurezas de isoforma de trisulfuro del producto intermedio B-2036 antagonista de la hormona del crecimiento.
Antecedentes de la invención
Pegvisomant (Somavert®; Pharmacia Corp.) es un antagonista del receptor de la hormona del crecimiento humana. Es un análogo de la hormona del crecimiento humana ("hGH") que se ha alterado estructuralmente. La secuencia de aminoácidos del componente/producto intermedio proteico (B-2036) de pegvisomant difiere de la secuencia de aminoácidos de hGH en nueve posiciones. Las sustituciones específicas de aminoácido son tal como sigue: H18D, H21N, G120K, R167N, K168A, D171S, K172R, E174S e I179T. Tal como se reconoce bien en la técnica, la primera letra (es decir, H18D) representa el aminoácido en la secuencia de hGH en la posición numerada (es decir, la 18ª posición de aminoácido tal como se indica mediante H18D) que se sustituye por el aminoácido designado mediante la segunda letra (es decir, H18D). Por tanto, H18D designa una substitución del aminoácido his por el aminoácido asp en la 18ª posición de aminoácido de la secuencia de aminoácidos de hGH de tipo natural.
La figura 1A muestra esquemáticamente la estructura de la secuencia de aminoácidos del componente/producto intermedio proteico (B-2036) de pegvisomant (PEG B-2036) indicando los asteriscos los posibles sitios de unión al polímero polietilenglicol (unidad "PEG"). Adicionalmente, el listado de secuencias de aminoácidos del componente/producto intermedio proteico (B-2036 - sin unión a unidad de PEG) de pegvisomant se identifica en el presente documento como SEC. ID. NO. 1. Para la comparación, el listado de secuencias de aminoácidos de la hormona del crecimiento humana se identifica en el presente documento como SEC. ID. NO. 2. Ambos listados de secuencias se proporcionan junto con el presente documento. Véase también Jorgensen et al., "Quantifying biosynthetic human growth hormone in Escherichia coli with electrophoresis under hydrophobic conditions", J. Chromatography A 817:205-214 (1998) para la secuencia de hGH.
Estructuralmente, pegvisomant es una proteína (que contiene 191 residuos de aminoácido) a la que están unidas de manera covalente, predominantemente de 4 a 6 unidades de PEG. El peso molecular del componente/producto intermedio proteico (B-2036) de pegvisomant es de 21.998 Daltons. El peso molecular de cada unidad de PEG de pegvisomant es de aproximadamente 5000 Daltons. De ese modo, los pesos moleculares predominantes de pegvisomant son aproximadamente de 42.000 (4 unidades de PEG/molécula), 47.000 (5 unidades de PEG/molécula) y 52.000
(6 unidades de PEG/molécula) Daltons.
Con referencia al agonista, y sin restringirse a la teoría, se cree que la hGH endógena activa sus receptores cuando una única molécula de hGH se une a dos de sus moléculas de receptor adyacentes (e idénticas), induciendo homodimerización de receptor mediada por hormona. Véanse las patentes estadounidenses números 5.849.535 y 6.057.292. La actividad de hGH depende de su capacidad para unirse a dos de sus receptores adyacentes (e idénticos) a través de dos sitios de unión separados (sitio 1 y sitio 2) en la misma molécula de hGH. Estos sitios de unión de hGH, designados como sitio 1 y sitio 2, están numerados con 1 y 2 para reflejar el orden de su unión a dos receptores de hGH adyacentes (e idénticos) que median en la homodimerización dependiente de hGH.
Además, sin querer quedar adherido a la teoría, se cree que pegvisomant se une de manera selectiva a receptores de la hormona del crecimiento humana ("receptores de GH") sobre superficies celulares, en las que bloquea la unión de de la hormona del crecimiento humana endógena, interfiriendo de ese modo con la transducción de señales de la hormona del crecimiento humana. Las modificaciones estructurales en la parte proteica (también denominada "componente" o "producto intermedio") de pegvisomant (en relación con la hGH) permiten que pegvisomant bloquee de manera competitiva la interacción entre una molécula de hGH y un receptor de hGH. Pegvisomant se une al receptor de GH, bloqueando por tanto la unión a GH puesto que el receptor está ocupado. Las modificaciones estructurales evitan la dimerización del receptor, como resultado no se produce transducción de señales. Bloqueando así la interacción estrecha requerida entre una molécula de hGH y un receptor de hGH, pegvisomant bloquea la homodimerización mediada por hGH de los receptores de hGH, proporcionando a pegvisomant su actividad antagonista.
Este antagonista se usa para tratar afecciones, incluyendo, pero sin limitarse a, acromegalia en pacientes que no responden adecuadamente a cirugía, radioterapia y/u otros tratamientos médicos convencionales, o que no pueden tolerar de otro modo estos tratamientos. Además, las modificaciones estructurales en la parte proteica (B-2036) de pegvisomant hacen que muestre una afinidad de unión por el receptor de prolactina que es inferior a la de hGH, minimizando de ese modo los efectos secundarios no deseados relacionados con la lactancia asociados con el uso de pegvisomant.
La parte de producto intermedio proteico (B-2036) de pegvisomant se sintetiza mediante una cepa de bacterias Escherichia coli que se ha modificado genéticamente mediante la adición de un plásmido que porta un gen para el antagonista del receptor de la hormona del crecimiento (B-2036). B-2036 se recupera entonces de las células microbianas y se purifica. El B-2036 purificado se pegila entonces para producir pegvisomant (PEG B-2036). Las patentes estadounidenses 5.849.535 y 6.057.292 describen procedimientos de preparación de B-2036 y procedimientos para conjugar una o más unidades de PEG con B-2036, aunque sin detalles en cuanto a cómo disminuir, reducir, eliminar, invertir y/o evitar la formación de niveles inaceptablemente elevados de trisulfuro e impurezas de isoforma des-Phe del mismo.
Uno de los problemas que se encuentran usando procedimientos de preparación recombinantes convencionales para preparar B-2036 es la formación de sus impurezas de isoforma, tales como sus isoformas des-Phe y del trisulfuro. La impureza de isoforma des-Phe es una en la que la molécula B-2036 carece de su fenilalanina amino-terminal. Véase la figura 1A que representa el residuo de fenilalanina amino-terminal objeto (es decir, indicado con la letra "F") adyacente al extremo -NH_{2} de B-2036. La impureza de isoforma de trisulfuro es una en la que la molécula de B-2036 contiene un átomo de azufre adicional que forma un "puente de trisulfuro" dentro de la molécula. Véase el recuadro en la figura 1B. También, véase Andersson et al., "Isolation and characterization of a trisulfide variant of recombinant human growth hormone formed during expression in Escherichia coli", Int. J. Peptide Protein Res. 47:311-321 (1996) y A. Jesperson et al., "Characterisation of a trisulphide derivative of biosynthetic human growth hormone produced in Escherichia coli", Eur. J. Biochem. 219:365-373 (1994). Sin querer restringirse a la teoría, se cree que estas impurezas de isoforma se generan normalmente durante el crecimiento celular (por ejemplo, fermentación) y la expresión (síntesis y secreción) de B-2036 en células huésped modificadas genéticamente, y/o durante la extracción y purificación de la proteína B-2036.
Con respecto a ciertas impurezas, la solicitud internacional WO 94/24157 (publicada el 27 de octubre de 1994) da a conocer un derivado hidrófobo de hGH que comprende un átomo de azufre adicional en comparación con la hGH nativa. Véase el documento WO 94/24157 en la página 3, líneas 3-10. El átomo de azufre adicional del derivado hidrófobo de hGH forma un "puente de trisulfuro" proporcionando una variante de trisulfuro de hGH. Véase el documento WO 94/24157 en la página 7, líneas 11-16. La referencia del documento WO 94/24157 indica además que esta variante de trisulfuro de hGH puede convertirse de nuevo en su forma de hGH nativa tratando la variante de trisulfuro de hGH con un compuesto de mercapto tal como cisteína, glutatión, 2-mercaptoetanol o ditiotreitol. Véase el documento WO 94/24157 en las páginas 4 y 5.
La solicitud internacional WO 96/02570 (publicada el 1 de febrero de 1996) describe otro procedimiento para convertir la variante de trisulfuro de hGH de nuevo en su forma nativa usando sulfito de sodio, sulfito de potasio, sulfito de amonio o bien un sulfito de metal alcalinotérreo tal como sulfito de magnesio o sulfito de calcio. Véase el documento WO 94/24157 en la página 4, líneas 17-21.
La solicitud internacional WO 00/02900 (publicada el 20 de enero de 2000) titulada "Method for the production of recombinant peptides with a low amount of trisulfides" trata de "un procedimiento para la reducción de la cantidad de trisulfuros en la producción de péptidos recombinantes, por ejemplo, tanto proteínas como péptidos más pequeños. La invención se basa en el hallazgo novedoso e inesperado de que la cantidad de trisulfuros en la producción de péptidos recombinantes podría reducirse mediante la adición de una sal de metal, preferiblemente en exceso, ya durante o tras la fermentación y no, tal como se sugirió anteriormente, mediante la conversión de los trisulfuros formados de hormona del crecimiento en la forma nativa". Véase el documento WO 00/02900 en la página 2, líneas 21-27. La referencia del documento WO 00/02900 indica además "[l]a proteína puede ser cualquier proteína recombinante pero preferiblemente es hormona del crecimiento recombinante que puede ser tanto humana como animal tal como hormona del crecimiento humana (hGH), hormona del crecimiento bovina (bGH) y hormona del crecimiento porcina (pGH)". (Énfasis añadido). Véase el documento WO 00/02900 en la página 3, líneas 4-6.
La solicitud internacional número WO 02/057478 (publicada el 25 de julio de 2002) titulada "Methods and Composition For Extracting Proteins From Cells" se refiere a un procedimiento de liberación de una proteína a partir de una célula huésped poniendo en contacto la célula huésped con un agente reductor y un detergente. La referencia indica que el fin del agente reductor es "facilitar[] la recuperación de proteínas en sus conformaciones nativas". Véase el documento WO 02/057478 en la página 2, líneas 16-18. Además, el documento WO 02/057478 describe que el "uno o más agentes reductores son agentes... que reducen enlaces disulfuro y/o mantienen residuos de sulfhidrilo en s[u] forma reducida. Puede usarse cualquier agente o agentes reductores de este tipo. En una realización preferida, el uno o más agentes reductores usados se seleccionan del grupo constituido por, ditiotrietol (DTT); ditioeritritol (DTE); cisteína (Cys) y tris-2-carboxietilfosfina (TCEP)". (Énfasis añadido). Véase el documento WO 02/057478 desde la página 3, línea 24 hasta la página 4, línea 4. Jespersen et al., Eur. J. Biochem. 219, 365-373, 1994 dan a conocer la formación de una isoforma de trisulfuro en la hormona del crecimiento humana (hGH) recombinante y el uso de un compuesto de mercapto, cisteína, para reducir los niveles de isoforma de trisulfuro. El documento US 2001/005750 da a conocer la formación de una isoforma de trisulfuro en la hormona del crecimiento humana recombinante y una purificación usando cromatografía de interacción hidrófoba (Hic).
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Sin embargo, las referencias indicadas anteriormente no mencionan la prevención, inversión, reducción o eliminación de la formación de impurezas de isoforma asociada a un antagonista de la hormona del crecimiento tal como pegvisomant o su parte proteica, B-2036. Por consiguiente, existe una necesidad de procedimientos mejorados de preparación de B-2036 que disminuyan, atenúen, eviten, minimicen, inviertan y/o eliminen la formación de sus impurezas de isoforma de trisulfuro.
Breve descripción de los dibujos
La figura 1A representa la secuencia de aminoácidos de B-2036 que corresponde a la SEC. ID. NO. 1. Los asteriscos (*) en la figura 1A indican nueve (9) sitios potenciales para la unión covalente de unidades de PEG a cada molécula de B-2036. Obsérvese que aunque se identifican nueve (9) posibles sitios, no tienen que estar covalentemente unidos los 9 sitios a unidades de PEG. Preferiblemente, hay 4-6 unidades de PEG por molécula de B-2036.
La figura 1B representa la estructura de la impureza de isoforma de trisulfuro de B-2036 (designada "trisulfuro (+32 amu")) en comparación con su forma deseable (designada "GHA nativa").
Sumario de la invención
En vista de la necesidad anterior de proporcionar un procedimiento mejorado para preparar un antagonista de la hormona del crecimiento recombinante, y/o un antagonista de la hormona del crecimiento humana recombinante, con niveles disminuidos de impurezas de isoforma no deseadas del mismo, la presente invención se refiere a un procedimiento mejorado para producir el polipéptido B-2036 antagonista de la hormona del crecimiento recombinante con niveles disminuidos de impurezas de isoforma de trisulfuro.
Con respecto al polipéptido B-2036 antagonista de la hormona del crecimiento recombinante, su impureza de isoforma de trisulfuro se disminuye mediante el contacto suficiente entre la impureza de isoforma de trisulfuro y (1) un agente quelante, o (2) un compuesto de mercapto tras el contacto con un agente quelante pero en ausencia del agente quelante, respectivamente.
Descripción detallada de las realizaciones preferidas
Las expresiones "antagonista de la hormona del crecimiento" y "antagonista del receptor de la hormona del crecimiento" incluyen (pero no se limitan a) polipéptidos que inhiben o antagonizan de otro modo la unión de la hormona del crecimiento a su receptor de hormona del crecimiento para bloquear el/los efecto(s) biológico(s) de la hormona del crecimiento. En este caso, el "antagonista de la hormona del crecimiento" o el "antagonista del receptor de la hormona del crecimiento" es B-2036.
El término "y" puede significar "y" o "o" según sea apropiado o necesario para referirse a un procedimiento para proporcionar la disminución deseada en el nivel de la impureza de trisulfuro.
El término "o" puede significar "y" o "o" según sea apropiado o necesario para referirse a un procedimiento para proporcionar la disminución deseada en el nivel de la impureza de trisulfuro.
Tal como se usa en el presente documento, a menos que se indique lo contrario, el término "disminuir" (o variaciones evidentes del mismo) significa eliminar, minimizar, reducir, evitar y/o atenuar la cantidad de la impureza de isoforma de trisulfuro.
A menos que se indique lo contrario, la expresión "célula huésped" (o variaciones evidentes de la misma) se refiere a cualquier célula huésped en la que puede formarse B-2036 recombinante. Por consiguiente, la célula huésped puede ser una célula huésped de mamífero, una célula huésped vegetal o una célula huésped microbiana tal como E. coli o incluso células de levadura. Es importante indicar que la célula huésped puede ser una que es suficiente para hacer crecer el componente proteico B-2036 recombinante deseado en la misma. Como tal, no hay ninguna limitación en cuanto a qué puede ser la célula huésped, excepto que sea una que pueda producir de manera recombinante el componente proteico B-2036.
Además, tal como se usa en el presente documento, a menos que se indique lo contrario, la expresión "hacer crecer" (o variaciones evidentes del mismo, por ejemplo, crecimiento) incluye, pero no se limita a, fermentar y cultivar, o hacer de otro modo que la(s) célula(s) huésped prolifere(n) suficientemente como para producir cantidades deseadas del componente proteico B-2036 recombinante.
Además, la presente invención se describe con respecto a B-2036 recombinante y PEG B-2036 recombinante.
Pegvisomant (PEG B-2036) es la forma pegilada de la proteína recombinante (B-2036) producida en células huésped recombinantes (por ejemplo, células huésped de E. coli modificadas genéticamente, recombinantes). La proteína B-2036 se produce durante el crecimiento celular (por ejemplo, mediante fermentación) y la expresión (síntesis y secreción). Tras su producción, B-2036 se aísla (por ejemplo, mediante homogeneización) seguido de purificación (por ejemplo, mediante extracción, centrifugación, cromatografía de intercambio aniónico y de fase inversa, e intercambio de tampón). Sin embargo, tal como se observa durante la producción recombinante de la proteína B-2036, se forman impurezas de isoforma de trisulfuro no deseadas de B-2036.
Tal como se indica, la figura 1A ilustra la secuencia de aminoácidos de B-2036, indicando las abreviaturas de 1 letra convencionales qué aminoácido está presente en cada posición nombrada con letra. Para referencia, véase la tabla 1 a continuación que indica la correspondencia entre la letra y su aminoácido asociado.
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TABLA 1
1
Adicionalmente, la secuencia de aminoácidos de B-2036 se proporciona en el presente documento como SEC. ID. NO. 1 y la secuencia de aminoácidos de hGH se proporciona en el presente documento como SEC. ID. NO. 2.
1. Antagonista de la hormona del crecimiento recombinante y su impureza de isoforma de trisulfuro
Figura 1B ilustra la estructura de la secuencia de aminoácidos de la impureza de isoforma de trisulfuro de B-2036. En particular, la impureza de isoforma de trisulfuro contiene un átomo de azufre adicional en el puente entre las cisteínas en las posiciones 182 y 189 del componente proteico B-2036.
a. Disminución de isoforma de trisulfuro Impureza con compuesto(s) de mercapto (sólo para fines de referencia)
Sin querer quedar adherido a la teoría, se cree que el contacto entre compuesto(s) de mercapto seleccionados y la impureza de isoforma de trisulfuro del antagonista de la hormona del crecimiento recombinante B-2036 da como resultado la conversión del puente de trisulfuro cisteína-S-S-S-cisteína de nuevo en su forma nativa cisteína-S-S-cisteína. Adicionalmente, sin querer restringirse tampoco a la teoría, es posible que la presencia del/de los compuesto(s) de mercapto evite la formación adicional del propio puente de trisulfuro.
Normalmente, el/los compuesto(s) de mercapto se añade(n) a la(s) célula(s) huésped que sintetizan el componente proteico B-2036 recombinante deseado durante o tras (o durante y tras) el crecimiento de la(s) célula(s) huésped. Además, tras haberse realizado las etapas de hacer crecer y de poner en contacto, se prefiere purificar la proteína B-2036. Después, se pegila preferiblemente la proteína purificada para proporcionar PEG B-2036 (pegvisomant). Para procedimientos de pegilación véase la patente estadounidense número 5.849.535.
Puede usarse cualquier compuesto de mercapto en conexión con el procedimiento tal como se describe que, cuando se pone en contacto (preferiblemente, con un mezclado adecuado) con el componente proteico B-2036 junto con su impureza de isoforma de trisulfuro, es uno que es suficiente para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro, preferiblemente sin degradar (o degradar sustancialmente) el rendimiento de B-2036. Los compuestos de mercapto preferidos adecuados para su uso con el procedimiento tal como se describe incluyen, pero no se limitan a, sulfitos, glutatión, beta-mercaptoetanol, ditiotreitol, mercaptoetilamina, ditioeritritol, clorhidrato de tris-(2-carboxietil)-fosfina, cisteína y cisteína en combinación con cistina.
Otros compuestos de mercapto adecuados para su uso con el procedimiento tal como se describe se indican en las siguientes referencias: (1) J. Houk y G.M. Whitesides, "Structure-Reactivity Relations for Tiol-Disulfide Interchange", J. M. Chem. Soc., 109:6825-6836 (1987); (2) Sigmund, M., The Chemistry & Biochemistry of the Sulfhydro Group in Amino Acids, Peptides and Proteins, 1ª Ed. Pergamon, Nueva York (1973). En particular, véase la tabla II de Houk et al. identificada en el punto (1) anterior para un listado de compuestos de mercapto a modo de ejemplo adecuados para su uso con la presente invención.
De los compuestos de mercapto adecuados, cisteína o cisteína en combinación con cistina (cisteína dimerizada), es lo más preferido. La cantidad de cisteína o combinación de cisteína y cistina (cisteína dimerizada, si está presente) que es adecuada para su uso con el procedimiento tal como se describe debe ser cualquier cantidad que sea suficiente para disminuir la impureza de isoforma de trisulfuro en al menos aproximadamente el 10% de su concentración de equilibrio más elevada (o su concentración de equilibrio promedio más elevada, haciéndose el promedio de múltiples lotes) formada. Preferiblemente, la disminución en la cantidad de la impureza de isoforma de trisulfuro es al menos aproximadamente el 20%, 30%, 40% o el 50%, respectivamente, de su concentración de equilibrio más elevada (o su concentración de equilibrio promedio más elevada) formada. La concentración combinada inicial de cisteína y cualquier cistina adecuada para su uso con la presente invención es preferiblemente al menos aproximadamente 0,1 mM, desde aproximadamente 0,1 mM hasta aproximadamente 10 mM, o desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 5 mM, respectivamente.
Se prefiere proporcionar el compuesto de mercapto en un tampón. Preferiblemente, el tampón es uno que es adecuado para su uso con el procedimiento tal como se describe, es decir, no evita la formación del componente proteico B-2036 ni lo degrada una vez se ha formado. Los tampones adecuados para su uso en conexión con la presente invención incluyen, pero no se limitan a, Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina. El tampón preferido es Tris. La concentración de tampón inicial preferida es desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM, más preferiblemente desde aproximadamente 5 mM hasta aproximadamente 100 mM, incluso más preferiblemente desde aproximadamente 8 mM, hasta aproximadamente 70 mM, y lo más preferiblemente desde aproximadamente 10 mM hasta aproximadamente 50 mM. Pueden usarse otros tampones adecuados. Preferiblemente, estos tampones son suficiente para mantener el pH del medio de crecimiento en cualquier punto del intervalo desde aproximadamente 4 hasta aproximadamente 9, desde aproximadamente 7,5 hasta aproximadamente 8,5, o desde aproximadamente 7,5 hasta aproximadamente 8,0, respectivamente. Particularmente, cuando se usan concentraciones más elevadas de compuesto de mercapto, pueden tolerarse niveles de pH más elevados, por ejemplo, tan elevados como aproximadamente 9,5. Por tanto, por ejemplo, si se usa un gran exceso de cisteína con respecto a B-2036, entonces el pH del tampón puede ser tan elevado como aproximadamente 9,5.
Tal como se indicó anteriormente, se prefiere proporcionar el compuesto de mercapto en un tampón. Además, la cantidad del compuesto de mercapto en el tampón debe ser tal que la proporción molar de los moles de compuesto de mercapto con respecto a los moles de proteína B-2036 es desde aproximadamente 0,5 hasta aproximadamente 1.000. Esto es así especialmente cuando el compuesto de mercapto que se usa es una combinación de cisteína y, opcionalmente, cisteína en combinación con cistina. Como alternativa, la proporción molar de los moles de compuesto de mercapto con respecto a los moles de proteína B-2036 puede ser desde aproximadamente 1 hasta aproximadamente 1.000, desde aproximadamente 1 hasta aproximadamente 500, o desde aproximadamente 1 hasta aproximadamente 10, respectivamente.
Normalmente, tras haberse completado el contacto suficiente (para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro) entre el compuesto de mercapto y el componente proteico B-2036 (dentro de o a partir de la(s) célula(s) huésped), el componente proteico B-2036 en el tampón tiene una concentración desde aproximadamente 0,1 mg/ml hasta aproximadamente 30 mg/ml, desde aproximadamente 0,5 mg/ml hasta aproximadamente 20 mg/ml, o desde aproximadamente 1 mg/ml hasta aproximadamente 10 mg/ml, respectivamente.
Además, el intervalo de temperatura del medio de crecimiento junto con el tampón, el/los compuesto(s) de mercapto y su otro contenido incluyendo, pero sin limitarse a, B-2036, debe mantenerse a una temperatura preferiblemente desde aproximadamente 0ºC hasta aproximadamente 25ºC después de haberse añadido el compuesto de mercapto a la(s) célula(s) huésped o lisado de la(s) misma(s) que contiene el componente proteico B-2036. También, preferiblemente, la temperatura de la(s) célula(s) huésped y/o lisado de la(s) misma(s) que contiene el componente B-2036 se mantiene desde aproximadamente 1ºC hasta aproximadamente 15ºC, desde aproximadamente 2ºC hasta aproximadamente 10ºC, o desde aproximadamente 2ºC hasta aproximadamente 8ºC, respectivamente. Es importante observar que la desnaturalización de la proteína B-2036 se produce a aproximadamente +40ºC. Como tal, es deseable mantener la temperatura del homogeneizado (es decir, que contiene células huésped, medio de crecimiento, tampón, compuestos de mercapto y B-2036, etc.) a una temperatura por debajo de la temperatura de desnaturalización de la proteína de B-2036.
Adicionalmente, el tiempo de contacto entre el componente B-2036 y el compuesto de mercapto debe ser durante un tiempo suficiente como para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro. Tiempos de contacto adecuados a modo de ejemplo para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro deben ser durante al menos aproximadamente 30 minutos, desde aproximadamente 1 hora hasta aproximadamente 24 horas, o desde aproximadamente 1 hora hasta aproximadamente 4 horas, respectivamente.
Normalmente, tras el contacto suficiente entre el/los compuesto(s) de mercapto y el componente B-2036, el tampón que contiene los mismos tiene un volumen desde aproximadamente 1 litro hasta aproximadamente 5.000 litros, desde aproximadamente 10 litros hasta aproximadamente 500 litros, o desde 100 litros hasta aproximadamente 300 litros, respectivamente. Otros volúmenes a modo de ejemplo adecuados pueden estar en cualquier punto desde 160 litros hasta aproximadamente 500 litros.
Otros parámetros que pueden ser de interés durante el contacto entre el/los compuesto(s) de mercapto y el componente B-2036 incluyen cosas tales como la tasa de mezclado. La tasa de mezclado debe ser aquélla que es suficiente para formar una mezcla homogénea (de la(s) célula(s) huésped, lisado de la(s) misma(s), tampón, compuesto(s) de mercapto, el componente B-2036 y cualquier otro componente en un medio de crecimiento) mientras que se minimiza la cantidad de espumación que puede formarse. Los expertos habituales pueden determinar fácilmente cuál debe ser una tasa de mezclado suficiente. Obviamente, la tasa de mezclado debe ser tal que la temperatura se mantenga en los intervalos indicados anteriormente y se minimice cualquier degradación del componente proteico B-2036.
b. Disminución de impureza de isoforma de trisulfuro con agente(s) quelante(s)
Sin querer quedar adherido a la teoría, se cree que el contacto entre el/los agente(s) quelante(s) seleccionado(s) y (1) la impureza de isoforma de trisulfuro, (2) el antagonista de la hormona del crecimiento recombinante B-2036, (3) componente(s) celular(es) de célula huésped (para la producción recombinante del antagonista), y (4) todas las combinaciones de (1) - (3) da como resultado la conversión del puente de trisulfuro cisteína-S-S-S-cisteína de nuevo en su forma nativa cisteína-S-S-cisteína o la disminución de los niveles de la impureza. Adicionalmente, también sin querer restringirse a la teoría, es posible que la presencia del/de los agente(s) quelante(s) evite la formación adicional del propio puente de trisulfuro.
El/los agente(s) quelante(s) se añade(n) a la(s) célula(s) huésped que sintetizan el componente proteico B-2036 recombinante deseado durante o tras (o durante y tras) el crecimiento de la(s) célula(s) huésped, es decir, a una pasta de células o un lisado celular. Además, tras haberse realizado las etapas de hacer crecer y de poner en contacto, se prefiere purificar la proteína B-2036. Después, se pegila preferiblemente la proteína purificada para proporcionar PEG B-2036 (pegvisomant). Para procedimientos de pegilación véase la patente estadounidense número 5.849.535.
Según la presente invención, la etapa de purificación (es decir la etapa (b) según la reivindicación 2) puede comprender además la etapa de: (b') poner en contacto dicha impureza con un compuesto de mercapto en ausencia de un agente quelante. Dicho compuesto de mercapto se selecciona preferiblemente del grupo constituido por sulfitos, glutatión, beta-mercaptoetanol, ditiotreitol, mercaptoetilamina, ditioeritritol, clorhidrato de tris(2-carboxietil)fosfina, cisteína y cisteína en combinación con cistina. Lo más preferiblemente, dicho compuesto de mercapto es cisteína o una combinación de cisteína y cistina. Dicho compuesto de mercapto se proporciona preferiblemente en un segundo tampón. En este procedimiento, la concentración de cisteína y cistina combinadas tiene preferiblemente una concentración inicial desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 5 mM. Además, dicho segundo tampón se selecciona preferiblemente del grupo constituido por Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina. Más preferiblemente, dicho segundo tampón es Tris. Lo más preferiblemente, dicho tampón Tris tiene una concentración inicial de Tris desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM.
Puede usarse cualquier agente quelante en conexión con la presente invención que, cuando se pone en contacto (preferiblemente con el mezclado adecuado) con el componente proteico B-2036 junto con su impureza de isoforma de trisulfuro, es uno que es suficiente para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro, preferiblemente sin degradar (o degradar sustancialmente) el rendimiento de B-2036. Los agentes quelantes preferidos adecuados para su uso con la presente invención incluyen, pero no se limitan a, EDTA, EGTA y DTPA. Agentes quelantes adicionales a modo de ejemplo incluyen, pero no se limitan a, deferoxamina, ditiocarbo sódico, edetato cálcico disódico, edetato disódico, edetato sódico, edetato trisódico, penicilamina, pentetato cálcico trisódico, Ácido pentético, succímero y trientina. Obsérvese que edetato sódico es la forma de sal de EDTA.
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Otros agentes quelantes adecuados para su uso con la presente invención se indican en las siguientes referencias: (1) The Merck Index, 12ª edición, S. Budavari (Editor), Merck & Co., Inc., Therapeutic Category and Biological Activity Index, p. THER-19 (en "CHELATING AGENT"), Whitehouse Station, NJ (1996) y todas y cada una de las ediciones posteriores hasta la fecha del mismo; (2) Remington's Pharmaceutical Sciences, 16ª Ed., Arthur Osol (Editor), Mack Publishing Co., Easton, Pensilvania (1980) y todas y cada una de las ediciones posteriores hasta la fecha del mismo; (3) The United States Pharmacopeia, 21ª Revisión (16ª edición), United States Pharmacopeial Convention, Inc., Rockville, Maryland (1985) y todas y cada una de las ediciones posteriores hasta la fecha del mismo; (4) SIGMA, Biochemicals and Reagents for Life Science Research Catalogue, St. Louis, Misuri (2002-2003); y (5) Aldrich, Handbook of Fine Chemicals and Laboratory Equipment, Milwaukee, Wisconsin, ediciones (2000-2001) y (2002-2003) del mismo.
De los agentes quelantes adecuados, EDTA es el más preferido. La cantidad de agente quelante que es adecuada para su uso con la presente invención debe ser aquella cantidad que es suficiente para disminuir la impureza de isoforma de trisulfuro en al menos aproximadamente el 10% de su concentración de equilibrio más elevada (o su concentración de equilibro promedio más elevada, haciéndose el promedio de múltiples lotes) formada. Preferiblemente, la disminución en la cantidad de la impureza de isoforma de trisulfuro es al menos aproximadamente el 20%, 30%, 40% o el 50%, respectivamente, de su concentración de equilibrio más elevada (o su concentración de equilibrio promedio más elevada) formada. La concentración inicial de EDTA adecuada para su uso con la presente invención es preferiblemente al menos aproximadamente 0,01 mM, desde aproximadamente 0,01 mM hasta aproximadamente 100 mM, desde aproximadamente 0,1 mM hasta aproximadamente 20 mM, desde aproximadamente 2 mM hasta aproximadamente 10 mM o desde aproximadamente 2 hasta aproximadamente 5 mM, respectivamente.
Se prefiere proporcionar el agente quelante en un tampón. Preferiblemente, el tampón es uno que es adecuado para su uso con la presente invención, es decir, no evita la formación del componente proteico B-2036 ni lo degrada una vez se ha formado. Los tampones adecuados para su uso en conexión con la presente invención incluyen, pero no se limitan a, Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina. El tampón preferido es Tris. La concentración inicial de tampón preferida es desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM, más preferiblemente desde aproximadamente 5 mM hasta aproximadamente 100 mM, incluso más preferiblemente desde aproximadamente 8 mM hasta aproximadamente 70 mM, y lo más preferiblemente desde aproximadamente 10 mM hasta aproximadamente 50 mM. Pueden usarse otros tampones adecuados. Preferiblemente, estos tampones son suficiente para mantener el pH tras la etapa de poner en contacto (etapa (a) de la reivindicación 1) en el intervalo desde aproximadamente 6 hasta aproximadamente 9, desde aproximadamente 6,5 hasta aproximadamente 7,5, o desde aproximadamente 7,2 hasta aproximadamente 7,5, respectivamente.
Tal como se indicó anteriormente, se prefiere proporcionar el agente quelante en un tampón. Además, la cantidad del agente quelante en el tampón debe ser tal que la proporción de los moles de agente quelante con respecto a los moles de proteína B-2036 es desde 20 hasta 1.000.
Normalmente, tras haberse completado el contacto suficiente (para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro) entre el agente quelante y el componente proteico B-2036 (dentro de o a partir de la(s) célula(s) huésped), el componente proteico B-2036 en el tampón tiene una concentración desde aproximadamente 0,1 mg/ml hasta aproximadamente 20 mg/ml, desde aproximadamente 0,5 mg/ml hasta aproximadamente 5 mg/ml, o desde aproximadamente 1 mg/ml hasta aproximadamente 5 mg/ml, respectivamente.
Además, se mantiene una temperatura desde 0ºC hasta 35ºC cuando el agente quelante se pone en contacto con la pasta de células o el lisado celular que contiene el componente proteico B-2036. También, preferiblemente, la temperatura de la pasta de células y/o lisado celular de las mismas que contiene el componente B-2036 se mantiene desde aproximadamente 1ºC hasta aproximadamente 15ºC, desde aproximadamente 2ºC hasta aproximadamente 10ºC, o, lo más preferiblemente, desde aproximadamente 2ºC hasta aproximadamente 15ºC, respectivamente. Obsérvese que, preferiblemente, con la adición del agente quelante (por ejemplo, EDTA), cuya temperatura es de aproximadamente 4ºC, la temperatura del homogeneizado que contiene el B-2036 aumenta hasta aproximadamente 30ºC con la homogenización. Es importante observar que la desnaturalización de la proteína B-2036 se produce aproximadamente a +40ºC. Como tal, es deseable mantener la temperatura del homogeneizado (es decir, que contiene células huésped, medio de crecimiento, tampón, agentes quelantes y B-2036, etc.) a una temperatura por debajo de la temperatura de desnaturalización de la proteína de B-2036.
Adicionalmente, el tiempo de contacto entre el componente B-2036 y el agente quelante debe ser durante un tiempo suficiente para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro. Tiempos de contacto adecuados a modo de ejemplo para disminuir el nivel de la impureza de isoforma de trisulfuro deben ser durante al menos aproximadamente 30 minutos, desde aproximadamente 1 hora hasta aproximadamente 48 horas, o desde aproximadamente 5 horas hasta aproximadamente 15 horas, respectivamente.
Normalmente, tras el contacto suficiente entre el/los agente(s) quelante(s) y el componente B-2036, el tampón que contiene los mismos tiene un volumen desde aproximadamente 1 litro hasta aproximadamente 5.000 litros, desde aproximadamente 10 litros hasta aproximadamente 500 litros, o desde 100 litros hasta aproximadamente 300 litros, respectivamente. Otros volúmenes a modo de ejemplo adecuados pueden estar en cualquier punto desde 160 litros hasta aproximadamente 500 litros.
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Otros parámetros que pueden ser de interés durante el contacto entre el/los agente(s) quelante(s) y el componente B-2036 incluyen cosas tales como la tasa de mezclado. La tasa de mezclado debe ser aquélla que es suficiente para formar una mezcla homogénea (de la(s) célula(s) huésped, lisado de la(s) misma(s), tampón, agente(s) quelante(s), el componente B-2036 y cualquier otro componente en el medio de crecimiento) mientras que se minimiza la cantidad de espumación que puede formarse. Los expertos habituales pueden determinar fácilmente cuál debe ser una tasa de mezclado suficiente. Obviamente, la tasa de mezclado debe ser tal que la temperatura se mantenga en los intervalos indicados anteriormente y se minimice cualquier degradación del componente proteico B-2036.
Realizaciones de la invención
1.
Un procedimiento para disminuir la cantidad de una impureza de isoforma de trisulfuro producida en la producción recombinante del polipéptido B-2036 antagonista de la hormona del crecimiento de SEC. ID. NO. 1 en células huésped modificadas genéticamente que contienen compuesto(s) celular(es), comprendiendo el procedimiento las etapas de: (a) poner en contacto un agente quelante con una pasta de células o un lisado de pasta de células que comprende (1) dicha impureza, (2) dicho polipéptido antagonista de la hormona del crecimiento, (3) dicho(s) compuesto(s) celular(es) y (4) combinaciones de los mismos para disminuir la cantidad de dicha impureza, en el que la proporción de los moles de dicho agente quelante con respecto a los moles de dicho polipéptido antagonista de la hormona del crecimiento es desde 20 hasta 1.000 y la temperatura se mantiene desde 0ºC hasta 35ºC.
2.
El procedimiento según la reivindicación 1, que comprende además la etapa de: (b) purificar dicho polipéptido para proporcionar un polipéptido purificado.
3.
El procedimiento según la reivindicación 2, que comprende además la etapa de: (c) pegilar dicho polipéptido purificado.
4.
El procedimiento según la reivindicación 1, 2 ó 3, en el que dicho agente quelante se selecciona del grupo constituido por EDTA, EGTA y DTPA.
5.
El procedimiento según la reivindicación 4, en el que dicho agente quelante es EDTA.
6.
El procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 5, en el que dicho agente quelante se proporciona en un tampón.
7.
El procedimiento según la reivindicación 5, en el que dicho EDTA tiene una concentración inicial desde aproximadamente 2 mM hasta aproximadamente 10 mM.
8.
El procedimiento según la reivindicación 6, en el que dicho tampón se selecciona del grupo constituido por Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina.
9.
El procedimiento según la reivindicación 8, en el que dicho tampón es Tris.
10.
El procedimiento según la reivindicación 9, en el que dicho tampón Tris tiene una concentración inicial de Tris desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM.
11.
El procedimiento según una de las reivindicaciones 6 a 10, en el que tras dicha etapa (a) de poner en contacto, dicho tampón tiene un pH desde aproximadamente 6 hasta aproximadamente 9.
12.
El procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 11, en el que dicha temperatura es desde aproximadamente 2ºC hasta aproximadamente 15ºC.
13.
El procedimiento según la reivindicación 2, en el que la etapa (b) de purificación comprende además la etapa de: (b') poner en contacto dicha impureza con un compuesto de mercapto en ausencia de un agente quelante.
14.
El procedimiento según la reivindicación 13, en el que dicho compuesto de mercapto se selecciona del grupo constituido por sulfitos, glutatión, beta-mercaptoetanol, ditiotreitol, mercaptoetilamina, ditioeritritol, clorhidrato de tris(2-carboxietil)fosfina, cisteína y cisteína en combinación con cistina.
15.
El procedimiento según la reivindicación 14, en el que dicho compuesto de mercapto es cisteína o una combinación de cisteína y cistina.
16.
El procedimiento según una de las reivindicaciones 13 a 15, en el que dicho compuesto de mercapto se proporciona en un segundo tampón.
17.
El procedimiento según la reivindicación 15, en el que la concentración de cisteína y cistina combinadas tiene una concentración inicial desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 5 mM.
18.
El procedimiento según la reivindicación 16, en el que dicho segundo tampón se selecciona del grupo constituido por Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina.
19.
El procedimiento según la reivindicación 18, en el que dicho segundo tampón es Tris.
20.
El procedimiento según la reivindicación 19, en el que dicho tampón Tris tiene una concentración inicial de Tris desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM.
Lo que sigue se presenta a modo de ejemplo y no debe interpretarse como una limitación del alcance de la invención.
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Ejemplos Ejemplo 1 Disminución de impureza de isoforma de trisulfuro del antagonista de la hormona del crecimiento (GHA) con compuesto(s) de mercapto
Se logró la reducción del nivel de B-2036-trisulfuro usando el concentrado 1 (véase el diagrama de flujo 1 a continuación) en el procedimiento de purificación de B-2036. Se llevó a cabo la fermentación de E. coli recombinante que expresaba B-2036 tal como se describe por Cunningham et al. en la patente estadounidense número 5.849.535. Se llevaron a cabo las etapas de extracción y purificación iniciales (todas las etapas realizadas antes de obtener el concentrado 1 en el diagrama de flujo 1 a continuación, por ejemplo, todas, resuspensión y homogenización, extracción de dos fases, cromatografía de fase inversa y cromatografía de intercambio aniónico) tal como se describe en el diagrama de flujo 1 adjunto. Tras la primera etapa de ultrafiltración/diafiltración, el producto estaba presente en tampón HEPES 25 mM, pH 7,0 (\sim150 l) a una concentración de proteína de 3,7 g/l. Se enfrió la temperatura de la disolución del producto hasta 2 a 8ºC y se trató con una adición de 1/10 del volumen (\sim15 l) de tampón Tris 200 mM, cisteína 20 mM, pH 8,0 recién preparado que se había enfriado hasta 2 a 8ºC. Se mantuvo la disolución de B-2036/cisteína a 2 a 8ºC y se mezcló durante 174 minutos. Entonces se concentró la mezcla hasta 131 l usando membranas de ultrafiltración Biomax 5 de Millipore y se sometió a diafiltración frente a un volumen 6X de HEPES 25 mM, pH 7,0. Entonces se llevó el producto resultante a través del resto del procedimiento de purificación de B-2036 tal como se describe en el diagrama de flujo 1 a continuación.
Antes de la incubación con cisteína, se midió que el nivel de B-2036/trisulfuro era del 3,7 por ciento del área. Inmediatamente tras la incubación con cisteína, su nivel descendió hasta el 2,0 por ciento del área (disminución de aproximadamente el 46%).
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(Tabla pasa a página siguiente)
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3
4
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Ejemplo 2 Disminución de impureza de isoforma de trisulfuro del antagonista de la hormona del crecimiento con agente(s) quelante(s)
Con respecto al diagrama de flujo 1, se añadieron 165 kg de pasta de células de pasta de células de GHA congelada a \sim1013 litros de Tris 150 mM, EDTA 5 mM, pH 7,2. Cuando la pasta de células había acabado de descongelarse (determinado mediante lecturas de A_{550} estables) se hizo pasar la mezcla a través de un homogeneizador Niro a 950 +/- 50 Bar a un caudal nominal de 250 l/hora. Se recogió el homogeneizado en un tanque en el que se mantuvo la temperatura entre 24ºC y 33ºC. Se añadieron sulfato de amonio y PEG-4600 a la mezcla de lisado formando una concentración del 10% (p/p) de ambos compuestos. Se mezcló la mezcla de dos fases resultante durante 60-120 minutos y entonces se resolvieron estas fases haciendo pasar la disolución a través de una centrífuga de líquido/líquido que descarga los sólidos. La fase superior contenía el producto deseado y se recogió y filtró a través de un tren de filtración constituido por un filtro de "deslipidación", filtro de "profundidad" y un filtro de 0,2 \mum. Se recogió el filtrado en tres recipientes separados y se analizaron muestras de cada uno para detectar B-2036-trisulfuro. Los niveles oscilaban entre el 3,1 y el 3,8 por ciento del área. Entonces se procesó el material resultante para obtener producto intermedio a granel usando el procedimiento resumido en el diagrama de flujo del ejemplo nº 1.
Por comparación, las muestras de lotes procesados mediante el procedimiento indicado anteriormente (pero sin el componente EDTA (agente quelante) en el tampón de lisis y sin tratamiento con cisteína del concentrado 1) proporcionaron un nivel de trisulfuro (n=10) que oscilaba entre el 3,2 y el 6,4 por ciento del área con una media de 5,1 al final de todo el procedimiento del diagrama de flujo 1 anterior. Cuando se incluyó EDTA en el tampón de lisis, y se realizó la etapa de incubación con cisteína del concentrado 1, el nivel de trisulfuro al final de todo el procedimiento del diagrama de flujo 1 fue del 1,5% por ciento del área.
<110> Lyle
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<120> Procedimiento para la preparación de hormona del crecimiento humana y antagonista de la misma que tiene niveles inferiores de impurezas de isoforma
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<130> 161765.00520
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<150> Documento US 60/406.553
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<151> 28-08-2002
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<160> 2
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<170> FastSEQ para Windows Versión 4.0
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<210> 1
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<211> 191
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<400> 1
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6
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<210> 2
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<211> 191
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<400> 2
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7

Claims (20)

1. Un procedimiento para disminuir la cantidad de una impureza de isoforma de trisulfuro producida en la producción recombinante del polipéptido B-2036 antagonista de la hormona del crecimiento de SEC. ID. NO. 1 en células huésped modificadas genéticamente que contienen compuesto(s) celular(es), comprendiendo el procedimiento las etapas de: (a) poner en contacto un agente quelante con una pasta de células o un lisado de pasta de células que comprende (1) dicha impureza, (2) dicho polipéptido antagonista de la hormona del crecimiento, (3) dicho(s) compuesto(s) celular(es) para disminuir la cantidad de dicha impureza, en el que la proporción de los moles de dicho agente quelante con respecto a los moles de dicho polipéptido antagonista de la hormona del crecimiento es desde 20 hasta 1.000 y la temperatura se mantiene desde 0ºC hasta 35ºC.
2. El procedimiento según la reivindicación 1, que comprende además la etapa de: (b) purificar dicho polipéptido para proporcionar un polipéptido purificado.
3. El procedimiento según la reivindicación 2, que comprende además la etapa de: (c) pegilar dicho polipéptido purificado.
4. El procedimiento según la reivindicación 1, 2 ó 3, en el que dicho agente quelante se selecciona del grupo constituido por EDTA, EGTA y DTPA.
5. El procedimiento según la reivindicación 4, en el que dicho agente quelante es EDTA.
6. El procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 5, en el que dicho agente quelante se proporciona en un tampón.
7. El procedimiento según la reivindicación 5, en el que dicho EDTA tiene una concentración inicial desde aproximadamente 2 mM hasta aproximadamente 10 mM.
8. El procedimiento según la reivindicación 6, en el que dicho tampón se selecciona del grupo constituido por Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina.
9. El procedimiento según la reivindicación 8, en el que dicho tampón es Tris.
10. El procedimiento según la reivindicación 9, en el que dicho tampón Tris tiene una concentración inicial de Tris desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM.
11. El procedimiento según una de las reivindicaciones 6 a 10, en el que tras dicha etapa (a) de poner en contacto, dicho tampón tiene un pH desde aproximadamente 6 hasta aproximadamente 9.
12. El procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 11, en el que dicha temperatura es desde aproximadamente 2ºC hasta aproximadamente 15ºC.
13. El procedimiento según la reivindicación 2, en el que la etapa (b) de purificación comprende además la etapa de: (b') poner en contacto dicha impureza con un compuesto de mercapto en ausencia de un agente quelante.
14. El procedimiento según la reivindicación 13, en el que dicho compuesto de mercapto se selecciona del grupo constituido por sulfitos, glutatión, beta-mercaptoetanol, ditiotreitol, mercaptoetilamina, ditioeritritol, clorhidrato de tris(2-carboxietil)fosfina, cisteína y cisteína en combinación con cistina.
15. El procedimiento según la reivindicación 14, en el que dicho compuesto de mercapto es cisteína o una combinación de cisteína y cistina.
16. El procedimiento según una de las reivindicaciones 13 a 15, en el que dicho compuesto de mercapto se proporciona en un segundo tampón.
17. El procedimiento según la reivindicación 15, en el que la concentración de cisteína y cistina combinadas tiene una concentración inicial desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 5 mM.
18. El procedimiento según la reivindicación 16, en el que dicho segundo tampón se selecciona del grupo constituido por Tris, fosfato, HEPES, ácido cítrico, trietilamina e histidina.
19. El procedimiento según la reivindicación 18, en el que dicho segundo tampón es Tris.
20. El procedimiento según la reivindicación 19, en el que dicho tampón Tris tiene una concentración inicial de Tris desde aproximadamente 1 mM hasta aproximadamente 200 mM.
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