ES2335569T3 - Uso de leptina junto con un inhibidor de vegf y/o un inhibidor de angiogenesis para la inhibicion de la proliferacion de celulas endonteliales. - Google Patents
Uso de leptina junto con un inhibidor de vegf y/o un inhibidor de angiogenesis para la inhibicion de la proliferacion de celulas endonteliales. Download PDFInfo
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Abstract
El uso de leptina o un homólogo o derivado de leptina opcionalmente junto con un inhibidor de la acción del VEGF o de la síntesis del VEGF y/o un inhibidor de la angiogénesis, en la preparación de un medicamento para inhibir la angiogénesis induciendo Ang-2, en donde dicho homólogo de leptina tiene actividad similar a la leptina, y en donde dicho derivado de leptina induce actividad inhibidora endotelial.
Description
Uso de leptina junto con un inhibidor de VEGF
y/o un inhibidor de angiogénesis para la inhibición de la
proliferación de células endoteliales.
La presente invención se refiere a la inhibición
reversible de la proliferación de células endoteliales y a la
modulación de la angiogénesis en el sistema reproductor de las
hembras. Más particularmente, la presente invención se refiere al
uso de leptina u homólogos o derivados de leptina, opcionalmente
junto con inhibidores de la acción del factor de crecimiento
endotelial vascular (abreviadamente en lo sucesivo VEGF por sus
iniciales en inglés Vascular Endothelial Growth Factor) o
inhibidores de la síntesis del VEGF, en la preparación de un
medicamento para inhibir la angiogénesis o modular procesos
angiogénicos. La presente invención se refiere además a una
composición farmacéutica que comprende leptina un homólogo o
derivado de leptina junto con un inhibidor de la acción del VEGF o
de la síntesis del VEGF y/o un inhibidor de la angiogénesis.
Como se usa en la presente memoria, el término
"angiogénesis" significa la generación de nuevos vasos
sanguíneos en un tejido u órgano. En estados fisiológicos normales,
los seres humanos o los animales experimentan angiogénesis
solamente en situaciones específicas muy restringidas. Por ejemplo,
la angiogénesis se observa normalmente en la curación de heridas,
el desarrollo del feto y del embrión, la formación del cuerpo lúteo,
el endometrio y la placenta y el crecimiento de tejido adiposo.
El término "endotelio" significa una capa
delgada de células epiteliales planas que reviste las cavidades
serosas, los vasos linfáticos, y los vasos sanguíneos. La
angiogénesis tanto la controlada como la no controlada se piensa
que transcurren de un modo similar. Las células endoteliales y los
pericitos, rodeados por una membrana basal, forman los vasos
sanguíneos capilares. La angiogénesis comienza con la erosión de la
membrana basal por enzimas liberadas por las células endoteliales y
los leucocitos. Las células endoteliales, que revisten el lumen de
los vasos sanguíneos, luego sobresalen a través de la membrana
basal. Los estimulantes angiogénicos inducen a las células
endoteliales a migrar a través de la membrana basal erosionada. Las
células que emigran forman un "brote" del vaso
sanguíneo precursor, en donde las células endoteliales experimentan
mitosis y proliferan. Los brotes endoteliales se unen entre sí
formando bucles o lazos capilares, que crean el nuevo vaso
sanguíneo.
La angiogénesis no regulada persistente ocurre
en una multiplicidad de estados morbosos, metástasis de tumores y
crecimiento anormal por células endoteliales y da cuenta del daño
patológico visto en estos estados. Los diversos estados morbosos
patológicos en los cuales está presente la angiogénesis no regulada
se han agrupado como enfermedades dependientes de angiogénesis o
asociadas a angiogénesis. La hipótesis de que el crecimiento
tumoral es dependiente de angiogénesis fue propuesto primeramente en
1971. (Folkman J., Tumor angiogenesis: Therapeutic implications.
N. Engl. J. Med. 285:1182-1186, 1971). En sus
términos más sencillos establece: "Una vez que prende un tumor,
cada aumento en la población de células tumorales debe ser precedido
por el aumento de nuevos capilares que convergen, en el tumor."
El "prendimiento" de un tumor se entiende corrientemente que
indica una fase pre-vascular de crecimiento del
tumor en la cual una población de células tumorales que ocupa un
volumen de unos cuantos milímetros cúbicos y que no sobrepasa unos
cuántos millones de células, puede sobrevivir en microvasos
hospedantes existentes. La expansión del volumen del tumor más allá
de esta fase requiere la inducción de nuevos vasos sanguíneos
capilares. Por ejemplo, las micro-metástasis
pulmonares en la fase pre-vascular temprana en
ratones sería indetectable excepto por microscopía de alta
resolución en secciones histológicas.
La morfogénesis vascular está regulada por el
factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF) inducido por
hipoxia y sus receptores celulares endoteliales FIkd y Flt 1. Se han
identificado otros dos factores angiogénicos,
angiopoyetina-1 y 2 (Ang1 y Ang2), que se unen a un
receptor celular endotelial común (Tie2), (S. Davis, et al.,
Cell 87, 1161-1169, 1996; P. C. Maisonpierre,
et al., Science 277, 55-60, 1997). Ang1 es un
agonista del receptor (C. Suri, et al., Science 282,
468-471, 1998), expresado constitutivamente en
muchos tejidos, mientras que Ang2 es un antagonista del receptor,
cuya expresión está limitada a sitios de remodelación vascular.
Hasta ahora, Ang2 se identificó en tejidos fetales, en células
endoteliales, en células de la musculatura lisa y en órganos
reproductivos de hembras de ratones adultos y seres humanos (P. C.
Maisonpierre, et al., Science 277, 55-60,
1997; B. Witzenbichier, P. C. Maisonpierre, P. Jones, G. D.
Yancopoulos, J. M. Isner, J. Biol. Chem. 273,
18514-18521, 1998; S. J. Mandriota, M. S. Pepper,
Circ. Res. 83, 852-859, 1998). Tanto el VEGF
como Ang2 están sobre-regulados en órganos
reproductivos de hembras en la morfogénesis vascular, mientras que
solamente Ang2 se expresa en la regresión de los vasos sanguíneos.
Ang2 probablemente marca estos vasos para regresión por un
mecanismo apoptótico, aunque no se ha obtenido inducción de la
apoptosis por Ang2 en células endoteliales cultivadas (B.
Witzenbichler, P. C. Maisonpierre, P. Jones, G. D. Yancopoulos, J.
M. Isner, J. Biol. Chem. 273, 18514-18521,
1998; J. Holash, et al., Science 284,
1994-1998, 1999; D. Hanahan, Science 277,
48-50, 1997).
Un anticuerpo específico contra el VEGF reduce
la densidad de los microvasos y causa una inhibición
"significativa o acusada" del crecimiento de tres tumores
humanos, que dependen del VEGF como su único mediador de la
angiogénesis (en ratones atímicos). El anticuerpo no inhibe el
crecimiento de las células tumorales in vitro. (Kim K J,
et al., Inhibition of vascular endothelial growth
factor-induced angiogenesis suppresses tumor growth
in vivo. Nature 362:841-844, 1993).
Un inhibidor específico de la angiogénesis
(AGM-1470) inhibe el crecimiento tumoral y la
metástasis in vivo, pero es mucho menos activo en inhibir la
proliferación de células tumorales in vitro. Inhibe la
proliferación de células endoteliales vasculares la mitad del
máximo a un concentración logarítmica 4 veces inferior a la que
inhibe la proliferación de células tumorales. (Ingber D, et al.,
Angioinhibins: Synthetic analogues of fumagillin which inhibit
angiogenesis and suppress tumor growth. Nature,
48:555-557, 1990). También hay una evidencia
clínica indirecta de que el crecimiento es dependiente de la
angiogénesis.
La microcirculación en el tejido adiposo es
única dentro del sistema vascular debido a la capacidad de este
sistema de crecer durante la mayor parte de la vida de un adulto (D.
L. Crandall, G. J. Hausman, J. G. Kral, Microcirculation 4,
211-232, 1997). Realmente, los tejidos adiposos
pardos y blancos tienen una microvasculatura extensa y expresan
altos niveles de VEGF (K. P. Claffey, W. O. Wilkison, B. M.
Spiegelman, J. Biol. Chem. 267,
16317-16322, 1992; Q. X. Zhang, et al., J. Surg.
Res. 67, 147-154, 1997). Por tanto, es evidente
que la angiogénesis desempeña un papel principal en el crecimiento y
mantenimiento del tejido adiposo. Si esta actividad angiogénica
pudiera ser reprimida o eliminada, entonces entraría en regresión el
tejido adiposo.
La obesidad, definida como un exceso de grasa
del cuerpo con respecto a una masa corporal delgada, está asociada
con morbilidades sicológicas y médicas importantes, incluyendo estas
últimas hipertensión, elevados lípidos en sangre, y diabetes
mellitus de tipo II o no dependiente de insulina (NIDDM). Hay
6-10 millones de personas con NIDDM en EE.UU.,
incluyendo 18% de la población de 65 años (Hanis et al., Ira. J.
Obes., 11:275-283, 1987). Aproximadamente 45%
de los varones y 70% de las mujeres con NIDDM son obesos, y su
diabetes se mejora sustancialmente o se elimina mediante reducción
del peso (Harris, Diabetes Care,
14(3):639-648, 1991).
Y. Zhang et al (Nature, 372,
425-431, 1994) sugieren que una de las moléculas que
desempeña un papel clave en la regulación del balance energético es
la proteína ob también denominada leptina. Zhang et
al., también describen la clonación y secuenciación de la
leptina, tanto de ratón como humana. La memoria de la patente GB Nº
2292382 se refiere entre otras cosas a polipéptidos, polipéptidos ob
o sus variantes alélicas o análogos y a su uso para modular el peso
corporal. En particular, dicha patente GB 2292382 describe que las
leptinas y algunos de sus análogos, tales como agonistas, serían
útiles para el tratamiento de la obesidad. Realmente, se encontró
que la leptina derivada de adipocitos regula la ingesta de alimentos
en roedores a través de su acción sobre un receptor hipotalámico.
Además, estudios posteriores han mostrado que la leptina del suero
está elevada en individuos obesos y que hay una correlación directa
entre la leptina en suero y el índice de masa corporal (peso en kg
dividido por el cuadrado de la altura en metros). La discrepancia
entre el efecto de la leptina como un inhibidor de la ingesta de
alimentos y los altos niveles de leptina en individuos obesos
condujo a la teoría de "resistencia a la leptina", una
expresión que sugiere que los individuos obesos no responden a sus
elevados niveles de leptina y mantienen su alta masa corporal. Por
tanto, está claro que la leptina por sí misma no es eficaz en
reducir la masa de tejido adiposo (P. Prole, M. L. Wong, J. Licinio,
Int. J. Biochem. Cell Biol. 30, 1285-1290,
1998).
Por tanto, existe la necesidad de una
composición y método que pueda inhibir el crecimiento indeseado de
vasos sanguíneos, especialmente en tumores y tejidos adiposos. La
composición también debe ser capaz de modular la formación de
capilares en otros procesos angiogénicos, tales como la curación de
heridas y la reproducción. La composición y el método para inhibir
la angiogénesis deben ser preferiblemente no tóxicos y producir
pocos efectos secundarios. Si la actividad angiogénica pudiera
reprimirse o eliminarse, entonces el tumor, aunque presente, no
crecería y el tejido adiposo entraría en regresión. En el estado
morboso, la prevención de la angiogénesis podría evitar el daño
causado por la invasión del nuevo sistema microvascular. Las
terapias dirigidas al control de los procesos angiogénicos podrían
conducir a la abrogación o mitigación de estas enfermedades.
Los ratones carentes de leptina no son fértiles
debido a que se requiere la leptina para la liberación por el
hipotálamo de la hormona liberadora de la gonadotropina (GNRH). La
GNRH actúa sobre la glándula pituitaria y es esencial para la
liberación de las gonadotropinas FSH y LH. De hecho, la inyección de
leptina a ratones deficientes en leptina restableció su
esterilidad. Las hembras que tienen una baja masa de tejido adiposo,
como es el caso de las atletas o las pacientes con anorexia
nerviosa no son fértiles debido a un nivel insuficiente de leptina
producida por el tejido adiposo.
Una de las características del ciclo del estro
es la angiogénesis de los ovarios, que tiene lugar durante la
maduración del folículo en el ovario. La ruptura del folículo y la
formación del cuerpo lúteo están asociadas con una regresión
extensa de los vasos sanguíneos. Se mostró que estos tejidos
expresan VEGF y Ang2. Las terapias dirigidas al control de los
procesos angiogénicos en el sistema reproductor de hembras podría
regular la fertilidad.
La presente invención se refiere al uso de
leptina, un homólogo o un derivado de leptina, opcionalmente junto
con un inhibidor de la acción del VEGF o de la síntesis del VEGF y/o
un inhibidor de la angiogénesis, en la preparación de un
medicamento para inhibir la angiogénesis por inducción de Ang2, en
donde dicho homólogo de leptina tiene una actividad similar a la
leptina, y en donde dicho derivado de leptina induce la actividad
inhibidora endotelial.
Se puede emplear de acuerdo con la invención
cualquier inhibidor del VEFG conocido farmacéuticamente
aceptable.
La invención se refiere también a composiciones
farmacéuticas que comprenden leptina, un homólogo de leptina o un
derivado de leptina junto con un inhibidor de la acción del VEGF o
de la síntesis del VEGF y/o un inhibidor de la angiogénesis, en
donde dicho homólogo de leptina tiene una actividad sustancialmente
similar a la leptina, y en donde dicho derivado de leptina induce
actividad inhibidora endotelial.
Preferiblemente la composición se emplea en
enfermedades mediadas por angiogénesis.
La Figura 1 muestra una regresión de un vaso
sanguíneo inducida por leptina y la apoptosis en tejidos adiposos de
ratones C57BL-ob^{-/-}. Los ratones
C57BL-ob^{-/-} fueron inyectados con leptina de
múrido (2x1 \mug/g) en los tiempos 0 y 9 horas. Los tejidos
adiposos abdominales se retiraron a las 24 y 48 horas. Se
visualizaron los vasos sanguíneos en secciones de tejidos por
inmuno-tinción con anticuerpos para el Factor VIII
(DAKO A/S, Dinamarca). Adviértase que el número de vasos sanguíneos
teñidos ha disminuido en 24 y 48 horas tras la inyección.
La Figura 2 muestra un gráfico de
dosis-respuesta de la regresión de vasos sanguíneos
en tejido adiposo de ratones ob^{-/-} 24 y 48 horas después
de la inyección de leptina.
La Figura 3 muestra el transcurso de tiempo de
la regresión de vasos sanguíneos en tejidos adiposos de ratones
ob^{-/-} inyectados con leptina de múrido (2x1
\mug/g).
La Figura 4 muestra una inducción mediada por
lectina de angiopoyetina-2 (Ang2) según se analizó
PCR con transcripción inversa de RNA de tejidos adiposos. Pista 1,
control (sin RNA); pista 2, RNA de tejido adiposo de ratón C57BL
normal; pista 3, RNA de tejido adiposo de ratón C57BL inyectado con
leptina (2x5 \mug/g); pista 4, RNA de tejido adiposo de ratón
C57BL-ob^{-/-}; pista 5, RNA de tejido adiposo de ratón
C57BL-ob^{-/-} inyectado con leptina (2x5 \mug/g). Las
reacciones PCR se terminaron antes de la saturación. Los cebadores
para PCR de Ang2, nº de acceso en GeneBank AF004326, correspondían a
las posiciones 637-657 (sentido) y
1167-1147 (inversa).
La Figura 5 muestra el transcurso del tiempo de
la inducción de Ang2 por leptina en tejido adiposo de ratones
ob^{-/-}. La leptina (2x5 \mug/g) se administró a ratones
C57BL-ob^{-/-}, se extrajo el RNA adiposo total en los
tiempos indicados y se analizó por transferencia de RNA con sondas
para Ang2 de ratón, VEGF y actina.
La Figura 6 muestra un gráfico de
dosis-respuesta de inducción de Ang2 en tejido
adiposo de ratones ob^{-/-}. La leptina se administró a los
ratones C57BL-ob^{-/-} y las proteínas adiposas se
extrajeron a 48 horas. Se determinó Ang2 por análisis de
inmunotransferencia (50 \mug proteína/pista) con antisuero
específico (Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, CA). La banda no
específica (N.S.) sirve para la normalización de la
inmunotransferencia.
La Figura 7 muestra la inducción de Ang2 por
leptina en adipocitos cultivados. Los cultivos de
pre-adipocitos de ratón no diferenciados
3T3-F442A y adipocitos diferenciados fueron
inducidos con leptina (1 \mug/ml). El RNA total se extrajo en
diferentes tiempos y se sometió a transferencia de RNA con sondas
para Ang2 de ratón, VEGF y actina. Adviértase la inducción puntuada
de Ang2 en adipocitos a las 24 horas y la reducción en el nivel de
VEGF después de la diferenciación de pre-adipocitos
en adipocitos maduros.
Recientemente, se ha descrito que la leptina
actúa como factor angiogénico. Indujo la proliferación celular
endotelial in vitro en la vena umbilical humana, aumentó la
formación de tubos similares a capilares in vitro e indujo
la neovascularización en córneas de ratones y en una membrana
corioalantoica de pollo (M. R. Sierra-Honigrnann,
et al., Science 281., 1683-1686, 1998; A.
Bouloumie, H. C. Drexler, M. Lafontan, R. Busse, Circ. Res.
83, 1059-1066, 1998). Aunque estos estudios
sugirieron que la leptina puede inducir la angiogénesis en su sitio
de producción, todavía no se ha estudiado el papel de la leptina
como factor angiogénico en tejido adiposo y en tumores.
De acuerdo con la presente invención se ha
encontrado que la leptina, opcionalmente junto con otros agentes,
actúa como inductor de la regresión de los vasos sanguíneos en
tejidos y en tumores. La potencia de la leptina induce la expresión
del factor angiostático angiopoyetina-2 (Ang2) en
diversos tejidos, incluyendo los tejidos adiposos y tumorales. La
Ang2 es angiostática en ausencia de VEGF. Por tanto la leptina es
eficaz para modular la angiogénesis, e inhibir la angiogénesis no
deseada, especialmente la angiogénesis relacionada con el
crecimiento tumoral, el crecimiento del tejido adiposo y el ciclo
del estro.
La presente invención incluye el uso de leptina
u homólogos de leptina, o derivados de leptina, opcionalmente junto
con uno o más inhibidores de la producción del VEGF o la acción del
VEGF (en lo sucesivo: "inhibidores de VEGF") como inhibidores
de angiogénesis tumoral y moduladores de la angiogénesis en los
órganos reproductivos de hembras.
\newpage
La presente invención también incluye el uso de
leptina u homólogos de leptina, o derivados de leptina, junto con
inhibidores del VEGF para inducir la regresión de tejido adiposo y
modular la angiogénesis en los órganos reproductivos de hembras.
La administración de leptina u homólogos de
leptina o derivados de leptina, bien solos o junto con inhibidores
del VEGF a un ser humano o animal con tumores metastizados
prevascularizados impedirá el crecimiento o expansión de dichos
tumores.
La administración de leptina u homólogos de
leptina o derivados de leptina; en combinación con inhibidores del
VEGF u otros inhibidores de la angiogénesis a hembras modulará la
angiogénesis en sus órganos reproductores.
Las enfermedades y procesos que están mediados
por la angiogénesis incluyen, pero sin limitación, hemangioma,
tumores sólidos , tumores llevados por la sangre, leucemia,
metástasis, telangiectasia, psoriasis, escleroderma, granuloma
piógeno, angiogénesis del miocardio, enfermedad de Crohn,
neovascularización de placas, colaterales de coronarias,
colaterales cerebrales, malformaciones
arterio-venosas, angiogénesis isquémicas del limbo,
enfermedades de la córnea, rubeosis, glaucoma neovascular,
retinopatía diabética, fibroplasia retrolental, artritis,
neovascularización diabética, degeneración macular, curación de
heridas, úlcera péptica, enfermedades relacionadas con
Helicobacter, fracturas, queloides, vasculogénesis,
hematopoyesis, ovulación, menstruación, placentación, y fiebre por
arañazo de gato.
La administración de leptina u homólogos de
leptina o derivados de leptina, junto con inhibidores del VEGF u
otros inhibidores de la angiogénesis a un ser humano o un animal
reducirá la angiogénesis aberrante asociada con las enfermedades
antes mencionadas más eficazmente que el inhibidor del VEGF solo u
otros inhibidores de la angiogénesis cuando se aplican sin leptina.
También es posible modular los procesos angiogénicos por terapia de
genes como se describirá más adelante.
La presente invención incluye un uso de leptina
u homólogos de leptina o derivados de leptina, opcionalmente junto
con inhibidores del VEGF u otros inhibidores de la angiogénesis para
la preparación de un medicamento para tratar una enfermedad mediada
por la angiogénesis. La cantidad eficaz de leptina u homólogos de
leptina o derivados de leptina, opcionalmente junto con inhibidores
del VEGF u otros inhibidores de la angiogénesis se administra a los
pacientes en una composición farmacéuticamente aceptable.
Ha de entenderse que en la presente invención se
contempla incluir el uso de cualquiera de los homólogos de leptina
que induzcan la actividad inhibidora endotelial. Los homólogos de
leptina se refieren a proteínas, en las cuales uno o más de los
residuos de aminoácidos de una leptina natural están reemplazados
por diferentes residuos de aminoácidos o están delecionados, o uno
o más residuos de aminoácidos están añadidos a la secuencia natural
de leptina, sin cambiar considerablemente la actividad de los
productos resultantes en comparación con una leptina de tipo
natural. Estos homólogos se preparan por síntesis conocidas y/o por
técnicas de mutagénesis dirigidas al sitio, o cualesquiera otras
técnicas conocidas adecuadas.
Cualquiera de tales homólogos tiene
preferiblemente una secuencia de aminoácidos suficientemente
duplicativa de la de la leptina, de tal modo que tiene una
actividad sustancialmente similar a la de la leptina. Una de tales
actividades es la capacidad de un homólogo de leptina de reducir el
peso corporal de ratones ob/ob. Por tanto, se puede
determinar si cualquier homólogo dado tiene sustancialmente la misma
actividad que la leptina por medio de experimentación habitual.
En una realización preferida, cualquiera de
tales muteínas tiene al menos 40% de identidad de secuencia u
homología con la secuencia de cualquier leptina. Más
preferiblemente, tiene al menos 50%, al menos 60%, al menos 70%, al
menos 80% o, más preferiblemente al menos 90% de identidad de
secuencia u homología.
Los homólogos de los polipéptidos de leptina,
que se pueden usar de acuerdo con la presente invención, o los
ácidos nucleicos que los codifican, incluyen un conjunto finito de
secuencias sustancialmente correspondientes como péptidos o
polinucleótidos de sustitución que pueden ser obtenidos por métodos
usuales por un experto ordinario en la técnica, sin experimentación
indebida, basándose en las enseñanzas y directrices presentadas en
esta memoria. Para una descripción detallada de la química y
estructura de las proteínas, véase Schulz, G.E. et al.,
Principles of Protein Structure,
Springer-Verlag, New York, 1978; y Creighton, T.E.,
Proteins: Structure and Molecular Properties, W.H. Freeman
& Co., San Francisco, 1983, que se incorporan en la presente
memoria como referencia. Para una presentación de sustituciones de
secuencias de nucleótidos, tales como preferencia de codones, véase
Ausubel et al, supra, en \NAK\NAK
A.1.1-A.1.24, y Sambrook et al, supra, en los
Apéndices C y D.
Los cambios preferidos para homólogos de acuerdo
con la presente invención son las que son conocidos como
sustituciones "conservadoras". Las sustituciones conservadoras
de aminoácidos de polipéptidos de leptina pueden incluir
aminoácidos sinónimos dentro de un grupo que tenga propiedades
físico-químicas suficientemente similares a la
sustitución entre miembros del grupo que conservarán la función
biológica de la molécula, Grantham, Science, Vol. 185, pp.
862-864 (1974). Es evidente que también pueden
hacerse inserciones y deleciones de aminoácidos en las secuencias
antes definidas sin alterar su función, particularmente si las
inserciones o deleciones sólo implican unos cuantos aminoácidos,
por ejemplo, menos de treinta, y preferiblemente menos de diez, y
no eliminan o desplazan aminoácidos que son críticos para una
conformación funcional, por ejemplo, residuos de cisteína,
Anfinsen, "Principles That Govern The Folding of Protein
Chains", Science, Vol. 181, pp.
223-230 (1973). Las proteínas y muteínas producidas
por tales deleciones y/o inserciones caen dentro del alcance de la
presente invención.
Preferiblemente, los grupos aminoácidos
sinónimos son los definidos en la Tabla I. Más preferiblemente, los
grupos aminoácidos sinónimos son los definidos en la Tabla II; y más
preferiblemente los grupos aminoácidos sinónimos son los definidos
en la Tabla III.
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Ejemplos de producción de sustituciones de
aminoácidos en proteínas que se pueden usar para obtener homólogos
de polipéptidos o proteínas de leptina para uso en la presente
invención incluyen etapas de métodos conocidos, tales como las
presentadas en las patentes de EE.UU. RE 33.653, 4.959.314,
4.588.585 y 4.737.462 de Mark et al; 5.116.943 de Koths
et al., 4.965.195 de Namen et al; 4.879.111 de Chong
et al; y 5.017.691 de Lee et al; y proteínas
sustituidas con lisina presentadas en la patente de EE.UU. 4.904.584
(Shaw et al).
En otra realización preferida de la presente
invención, un homólogo de leptina tiene una secuencia de aminoácidos
esencialmente correspondiente a la de la leptina. La expresión
"esencialmente correspondiente a" pretende abarcar las
proteínas con cambios secundarios en la secuencia de la proteína
natural que no afectan a las características básicas de las
proteínas naturales, particularmente en lo que se refiere a su
capacidad para inducir actividad angiostática. El tipo de cambios
que se considera generalmente que caen dentro del significado de la
expresión "esencialmente correspondiente a" son aquellos que
resultarían de técnicas de mutagénesis convencionales del DNA que
codifica estas proteínas, dando como resultado unas cuantas
modificaciones secundarias, y el escrutinio de la actividad deseada
del modo antes indicado.
Ha de entenderse que la presente invención
contempla incluir el uso de los de cualquiera de los derivados de
leptina que inducen actividad inhibidora endotelial cuando se
aplican opcionalmente junto con un inhibidor del VEGF u otros
inhibidores de la angiogénesis. La presente invención incluye el uso
de una proteína de leptina completa, el uso de derivados de la
proteína leptina y el uso de fragmento biológicamente activos de la
proteína leptina. Los derivados de leptina de acuerdo con la
invención tienen uno o más restos químicos unidos a ellos,
incluyendo polímeros solubles en agua tales como polietilenglicol.
Los derivados de polietilenglicol derivatizados pueden ser mono-,
di-, tri- o tetra-pegilados, por ejemplo,
monopegilados N-terminales. Los derivados
monopegilados N-terminales preferidos de leptina,
tienen opcionalmente una metionina (pegilada) en el extremo N.
\newpage
Se han descrito diversos inhibidores de la
actividad de VEGF o la producción de VEGF y se pueden usar en
combinación con leptina para inhibir la angiogénesis. Entre estos
inhibidores están
3,7-dimetil-1-propargilxantina
(DMPX), un antagonista A2,
7-(beta-hidroxietil)teofilina,
8-fenilteofilina, el antagonista del receptor A2 de
adenosina CSC (8-(3-cloroestiril)cafeína),
teobromina, una variante antagonística del VEGF, el receptor de VEGF
soluble sFLT-1, Tranilast, ácido
8-(3-oxo-4,5,6-trihidroxi-3H-xanten-9-il)-1-naptoico,
suramina y el factor 4 de plaquetas (E. Hashimoto, et al.,
Biochem. Biophys. Res. Commun. 204, 318-24,
1994; S. Fischer, R. Knoll, D. Renz, G. F. Karliczek, W. Schaper,
Endothelium 5, 155-165, 1997; H. Takagi, G.
L. King, G. S. Robinson, N. Ferrara, L. P. Aiello, Invest.
Ophthalmol, Vis. Sci. 37, 2165-2176, 1996; E.
Barcz, et al., Oncol. Rep. 5, 517-520, 1998;
G. Siemeister, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95,
4625-4629, 1998; W. Roeckl, et al., Exp. Cell
Res. 241, 161-170, 1998, S. Komaya et al.,
Br. J. Pharmacol. 127, 537-545, 1999: K.
lgarashi et al., Int. J. Mol. Med. 2,
211-215, 1998; J. Waltenberger et al., J. Mol.
Cell Cardiol. 28, 1523-1529, 1996; S.
Grengrinovitch et al., J. Biol. Chem. 270,
15059-15065, 1995).
Se han descrito diversos inhibidores de
angiogénesis y se pueden usar en combinación con leptina para
inhibir la angiogénesis más eficazmente que cuando se usa sola.
Entre estos inhibidores están K1-5 (Cao, R. et
al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 96, 5728-5733,
1999), angiostatina, endostatina, BB-94 y
AGM-1470 (Bergers G. et al., Science 284,
808-812, 1999).
También está comprendido en la presente
invención el uso de vectores de expresión que codifican leptina u
homólogos de leptina, proporcionados por terapia génica, junto con
inhibidores de la acción o producción de VEGF u otros inhibidores
de la angiogénesis para preparar medicamentos para la inhibición de
la angiogénesis en tumores. Tales medicamentos pueden ser empleados
en métodos terapéuticos que implican sistemas de administración
intravenosa, intra-arterial, intraperitoneal,
intramuscular, subcutánea, nasal, oral o pulmonar.
También está comprendido en la presente
invención el uso de vectores de expresión que codifican leptina u
homólogos de leptina, proporcionados por terapia génica, en
combinación con inhibidores de la acción o la producción del VEGF
un otros inhibidores de angiogénesis para preparar medicamentos para
la regresión de tejidos adiposos. Dicho uso puede ser útil para
tratar un trastorno seleccionado del grupo que consiste en diabetes,
alta presión de la sangre y alto colesterol y como parte de una
terapia de combinación con un medicamento para tratar dichos
trastornos. Dichos medicamentos se pueden emplear en métodos
terapéuticos que implican sistemas de administración intravenosa,
intra-arterial, intraperitoneal, intramuscular,
subcutánea, nasal, oral o pulmonar.
Las enfermedades mediadas por angiogénesis
incluyen, pero sin limitación, obesidad; tumores sólidos; tumores
llevados por la sangre, tal como leucemias; metástasis tumoral;
tumores benignos, por ejemplo hemangiomas, neuromas acústicos,
neurofibromas, tracomas, y granulomas piógenos; artritis reumatoide;
psoriasis; enfermedades angiogénicas oculares, por ejemplo,
retinopatía diabética, retinopatía de prematuridad, degeneración
macular, rechazo de injerto de córnea, glaucoma neovascular,
fibroplasia retrolental, rubeosis; síndrome de
Osler-Webber; angiogénesis del miocardio;
neovascularización de placas; telangiectasia; articulaciones
hemofiliacas, angiofibroma; y granulación de heridas.
La leptina o los homólogos de leptina, o los
derivados de leptina, junto con VEGF u otros inhibidores de la
angiogénesis son útiles en la preparación de medicamentos para el
tratamiento de enfermedades con una estimulación excesiva o anormal
de las células endoteliales. Estas enfermedades incluyen, pero sin
limitación, adherencias intestinales, enfermedad de Crohn,
arteriosclerosis, escleroderma y cicatrices hipertróficas, es decir,
queloides.
La leptina o los homólogos de leptina o los
derivados de leptina, junto con inhibidores del VEGF u otros
inhibidores de la angiogénesis pueden usarse en combinación con
otras composiciones y métodos para preparar medicamentos para el
tratamiento de enfermedades. Por ejemplo, un tumor se puede tratar
convencionalmente por cirugía, radiación o quimioterapia combinadas
con leptina u homólogos de leptina o derivados de leptina,
opcionalmente junto con inhibidores del VEGF u otros inhibidores
de la angiogénesis y luego se pueden administrar al paciente
leptina u homólogos de leptina o derivados de leptina, opcionalmente
junto con inhibidores del VEGF u otros inhibidores de la
angiogénesis para extender la dormición de las micrometástasis y
estabilizar e inhibir el crecimiento de cualquier tumor primario
residual.
Adicionalmente, la leptina o los homólogos de
leptina o los derivados de leptina, junto con inhibidores del VEGF
u otros inhibidores de la angiogénesis, se combinan con excipientes
farmacéuticamente aceptables. Las composiciones adecuadas para
administración parenteral incluyen soluciones inyectables estériles
acuosas y no acuosas que pueden contener antioxidantes, tampones,
bacteriostáticos y solutos que hacen a la composición isotónica con
la sangre del receptor al que van destinadas; y suspensiones
estériles acuosas y no acuosas que pueden incluir agentes de
suspensión y agentes espesantes. Las composiciones pueden ser
presentadas en recipientes de monodosis o multidosis, por ejemplo,
ampollas herméticamente cerradas y viales, y pueden ser conservadas
estado secado por congelación (liofilizado) que sólo requiere la
adición de vehículo líquido estéril, por ejemplo, agua para
inyecciones, inmediatamente antes de su uso. Las soluciones y
suspensiones para inyección extemporánea se pueden preparar a
partir de polvos estériles, gránulos y comprimidos de la clase
previamente descrita.
Las composiciones pueden incluir opcionalmente
una matriz de liberación prolongada, tal como polímeros
biodegradables, para formar composiciones terapéuticas. Una matriz
de liberación prolongada, tal como se usa en la presente memoria es
una matriz hecha de materiales, usualmente polímeros, que son
degradables por hidrólisis enzimática o con ácido/base o por
disolución. Una vez insertada en el cuerpo, la matriz es activada
por las enzimas y los fluidos corporales. La matriz de liberación
prolongada se elige deseablemente de materias biocompatibles, tales
como liposomas, polilactidas [poli(ácido láctico)], poliglicolida
(polímero de ácido glicólico), polilactida
co-glicolida (co-polímeros de ácido
láctico y ácido glicólico), polianhídridos,
poli(orto)ésteres, polipéptidos, ácido hialurónico,
colágeno, sulfato de condroitina, ácidos carboxílicos, ácidos
grasos, fosfolípidos, polisacáridos, ácidos nucleicos,
poliaminoácidos, aminoácidos tales como fenilalanina, tirosina,
isoleucina, polinucleótidos y polivinilpirrolidona.
Una matriz biodegradable preferida es una matriz
de uno de polilactida, poliglicolida o polilactida
co-glicolida (co-polímeros de ácido
láctico y ácido glicólico). Los polímeros que se implantan en las
proximidades donde se desea la administración del fármaco, por
ejemplo, en el tejido adiposo o en un sitio de un tumor o se
implantan de modo que la leptina o derivados de leptina,
opcionalmente junto con inhibidores del VEGF u otros inhibidores de
la angiogénesis se libera lentamente de modo sistémico. Los
polímeros biodegradable y su uso están descritos por ejemplo, en
detalle en Brem et al., J. Neurosurg.
74:441-446 (1991), que se incorpora en la presente
memoria como referencia en su totalidad.
Las composiciones farmacéuticas moduladoras de
la angiogénesis de acuerdo con la presente invención pueden ser un
sólido, líquido o aerosol y se pueden administrar por cualquier ruta
conocida de administración. Ejemplos de composiciones terapéuticas
sólidas incluyen píldoras, cremas y unidades de dosificación
implantables. Las píldoras se pueden administrar por vía oral; las
cremas terapéuticas se pueden administrar tópicamente. Las unidades
de dosificación implantables se pueden administrar localmente, por
ejemplo en un sitio de tumor, o pueden ser implantadas para
liberación sistémica de la composición terapéutica moduladora de la
angiogénesis, por ejemplo subcutáneamente. Ejemplos de
composiciones líquidas incluyen composiciones adaptadas para la
inyección subcutánea, intravenosa, intra-arterial y
composiciones para administración tópica e intraocular. Ejemplos de
composiciones en aerosol incluyen una composición de inhalador para
administración a los pulmones.
Debe entenderse que además de los ingredientes,
mencionados específicamente antes, las composiciones de acuerdo con
la presente invención pueden incluir otros agentes convencionales en
la técnica en relación con el tipo de composición en cuestión.
Opcionalmente, se pueden incorporar, o combinar de otro modo, con
leptina u homólogos de leptina o derivados de leptina agentes
citotóxicos, opcionalmente junto con inhibidores del VEGF u otros
inhibidores de la angiogénesis, para proporcionar una terapia dual
al paciente.
Las composiciones de acuerdo con la invención se
pueden administrar por las vías normales. En general, las
combinaciones pueden ser administradas por las vías tópica
(incluyendo la bucal y sublingual), o parenteral (incluyendo la
subcutánea, intraperitoneal, intramuscular, intravenosa,
intradérmica, intracerebral, intracerebroventricular, intracraneal,
intraespinal, intratraqueal y epidural), transdérmica, intravaginal,
intrauterina, oral, rectal, oftálmica (incluyendo intravitreal o
intracameral) o intranasal.
Las minibombas osmóticas también se pueden usar
para proporcionar la administración controlada de altas
concentraciones de leptina o derivados de leptina, opcionalmente
junto con inhibidores del VEGF u otros inhibidores de la
angiogénesis a través de cánulas al sitio de interés, tal como
directamente en un crecimiento metastásico o en la administración
vascular a ese tumor.
La dosificación de la leptina o los derivados de
leptina, junto con inhibidores del VEGF u otros inhibidores de la
angiogénesis de la presente invención dependerá del estado o
condición de la enfermedad que se trata y otros factores clínicos
como el peso y el estado del ser humano o animal que se trata y la
vía de administración del compuesto. Para tratar seres humanos o
animales pueden administrarse entre aproximadamente 0,5 mg/kilogramo
a 10 mg/kilogramo de la leptina u homólogo de leptina o derivado de
leptina, opcionalmente junto con una dosis adecuada de un inhibidor
de VEGF o un inhibidor de la producción de VEGF u otros inhibidores
de la angiogénesis. Dependiendo de la semi-vida de
la leptina o el homólogo de leptina o el derivado de leptina en el
animal o ser humano particular, la leptina o el homólogo de leptina
o el derivado de leptina pueden ser administrados entre varias
veces al día y una vez a la semana. Las composiciones de unidades de
dosis preferidas son las que contienen una dosis o unidad diaria,
una sub-dosis diaria, o una de sus fracciones
apropiadas, del ingrediente administrado. Los métodos de la
presente invención contemplan las administraciones sencillas o
múltiples, dadas bien sea simultáneamente o durante un periodo
prolongado de tiempo.
Las composiciones leptina u homólogo de leptina
o de derivado de leptina pueden presentarse convenientemente en una
forma de dosificación unitaria y pueden prepararse por técnicas
farmacéuticas convencionales. Dichas técnicas incluyen la etapa de
poner en asociación el ingrediente activo y los vehículo(s) o
excipiente(s) farmacéuticos. En general, las composiciones
se preparan poniendo en asociación uniforme e íntimamente el
ingrediente activo con vehículos líquidos o con los vehículos
sólidos finamente divididos, y si es necesario, conformando el
producto.
Las composiciones de dosis unitaria preferidas
son las que contienen una dosis o unidad diaria, una
sub-dosis diaria o una de sus fracciones
apropiadas, del ingrediente administrado. Debe entenderse que además
de los ingredientes, específicamente mencionados antes, las
composiciones de la presente invención pueden incluir otros agentes
convencionales en la técnica con respecto al tipo de composición en
cuestión.
Ha de entenderse que la presente invención tiene
aplicación tanto para uso humano como veterinario.
Esta invención se ilustra adicionalmente por los
siguientes ejemplos.
\vskip1.000000\baselineskip
Para analizar el efecto de las leptinas en la
homeostasis de vasos sanguíneos en tejido adiposo adulto, se
inyectó leptina de múrido (0,1-5 \mug/g) en los
tiempos 0 y 9 horas a ratones hembras obesas
(C57BL-ob^{-/-}) de 8-10
semanas, que carecían de leptina endógena. Se observó una apreciable
pérdida de peso a las 48 horas en ratones que recibieron >2x1
\mug/g de leptina (65,4\pm0,5 g vs. 62,7\pm1,0 g, n=6).Se
retiró y fijó la grasa abdominal 24 y 48 h después de la primera
inyección, y se contaron los vasos sanguíneos después de teñir
secciones de parafina con anticuerpos para el Factor VIII (D.D.
Wagner et al., J. Cell Biol. 95, 355-360
(1982)). Se observó una reducción significativa en el número de
vasos sanguíneos (198\pm1 vasos por 5 campos de alta potencia
(abreviadamente HPF en la figura 3 de los dibujos por la expresión
inglesa High Power Fields con 400 aumentos) en ratones
testigos; 159\pm2,5 vasos por 5 HPF en ratones tratados con
leptina (2x1 \mug/g) a las 24 horas y 106\pm7,5 vasos por 5 HPF
a las 48 horas. La Figura 1 muestra micrografías de los vasos
sanguíneos en secciones del tejido adiposo. La Figure 2 muestra el
gráfico de dosis-respuesta de la regresión de vasos
sanguíneos y la Figura 3 muestra el transcurso del tiempo de esta
regresión.
\vskip1.000000\baselineskip
Se estudió el mecanismo mediante el cual la
leptina indujo la regresión de vasos sanguíneos en tejidos adiposos
midiendo su efecto en el nivel de expresión de los factores
angiogénicos y angiostáticos. Se aisló el RNA total de tejido
adiposo de ratones C57BL y C57BL-ob^{-/-} en los tiempos 0
y 24 horas después de la primera administración de leptina. El RNA
total se aisló con el reactivo TRI. La transcripción inversa se
llevó a cabo en un volumen de 20 \mul usando RNasa
H-transcriptasa inversa (SuperScript II,
GIBCO-BRL) con 1 \mug de cebador aleatorio
(N)_{6} (New England Biolabs) de acuerdo con las
instrucciones del fabricante. Se usó una parte alícuota de (2
\mul) del producto de la transcripción inversa usado para la PCR
con DNA-polimerasa VENT (New England Biolabs) y los
siguientes cebadores con sentido y antisentido: mRNA de
muAng-2, Nº de acceso en GeneBank AF4326
nucleótidos 637-657 y 1147-1167;
muVEGF, Nº de acceso en GeneBank M95200 nucleótidos
385-406 y 962-980; mRNA de
muActina, Nº de acceso en GeneBank J00691 nucleótidos
1670-1691 y 2452-2431. Las
reacciones por PCR se terminaron antes de la saturación. Se
encontró que el mRNA de Ang2 se expresa en el tejido adiposo de
ratones normales y en el de ratones ob^{-/-}. Además, la
inyección de leptina indujo la expresión de Ang2 en ambos tipos de
ratones (Figura 4). Estos resultados demuestran que la leptina es un
potente inductor del factor angiostático factor Ang2.
Luego se estudiaron los niveles y la inducción
de mRNA de Ang2 por leptina en el tejido adiposo de ratones
ob^{-/-} por transferencia de RNA con sondas específicas
para Ang2 y VEGF. El RNA total del tejido adiposo se aisló con el
kit de reactivos TRI (Molecular Research Center Inc.). Muestras de
RNA (15 \mug) se resolvieron por electroforesis a través de gel
de agarosa al 1% en tampón de MOPS-formaldehído, se
transfirieron a una membrana de nilón (Hybond N, Amersham) en
tampón 20XSSC y la membrana se calentó luego durante 2 horas a 80ºC
en una estufa de vacío. La membrana se pre-hibridó
(6 h, 42ºC) con DNA de esperma de salmón desnaturalizado (100
\mug/ml en formamida al 50%, 5xSSC, solución 4xDenhard y SDS al
0,5%). Luego se añadió una sonda de DNA [^{32}P] dCTP (1x10^{6}
cpm/ml), preparada por cebado al azar y la hibridación continuó
durante 18 horas a 42ºC. La membrana se lavó luego a temperatura
ambiente (1xSSC, dos veces con SDS al 0,1%, 0,25xSSC, SDS al 0,1% y
0,1xSSC, SDS al 0,1% dos veces, siendo cada lavado de 30 minutos) y
se auto-radiografió. Las manchas se
re-hibridaron luego con una sonda marcada con
^{32}P correspondiente a actina de ratón mostrando cantidades
iguales de RNA en la mancha. Se obtuvo una inducción significativa
de Ang2 después de la administración de leptina (2,9\pm0,4 veces,
P<0,05, n=3 a 24 horas y 16,0\pm0,31 veces, P<0,01, n=3 a 48
horas; (Figura 5). La cinética de la expresión de Ang2 correspondía
a la de apoptosis y regresión de vasos sanguíneos. El nivel de mRNA
de VEGF se indujo sólo ligeramente (1,4-0,1 veces,
n=3 a 48 hora; Figura 5).
El gráfico dosis-respuesta de
Ang2 inducida por leptina en tejidos adiposos se estudió por
inmunotransferencia 48 horas después de la primera inyección de
leptina. Los extractos celulares del tejido adiposo se aislaron
usando el kit de reactivos TRI (Molecular Research Center Inc.) en
paralelo a la extracción del RNA total. Cincuenta microgramos de
proteína se separaron en un gel de SDS al 10%-poliacrilamida. El
análisis por inmunotransferencia se llevó a cabo con 5 \mug de un
anticuerpo anti Ang2 humana de cabra específico. El Ang2 estuvo por
debajo del nivel de detección en el tejido adiposo de control de
ratones ob^{-/-}, mientras que la administración de 2x1 \mug/g
de leptina fue suficiente para una alto nivel de inducción de Ang2
(Figura 6).
\vskip1.000000\baselineskip
Varias actividades periféricas de leptina han
sido descritas previamente (M. R. Sierra-Honigmann,
et al., Science 281, 1683-1686, 1998; A.
Bouloumie, H. C. Drexler, M. Lafontan. R. Busse, Circ. Res.
83, 1059-1066,1998; B. Cohen, D. Novick, M.
Rubinstein, Science 274, 1185-1188, 1996; D.
Barkan, et al., Endocrinology 140,
1731-1738, 1999). Para analizar si una leptina puede
actuar directamente sobre los, adipocitos los autores de la
invención estudiamos el efecto de la leptina sobre
pre-adipocitos 3T3-F442A de múridos,
que se sabe que dan lugar a un tejido similar al adiposo por
implantación en ratones atímicos (H. Green, O. Kehinde, J. Cell
Physiol. 101, 169-171, 1979); S. Mandrup, T. M.
Loftus, O. A. MacDougald, F. P. Kuhajda, M. D. Lane, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 94, 4300-4305,1997).
Pre-adipocitos de ratones suizos 3T3 F442A (H.
Green, O. Kehinde. Cell 5, 19-27, 1975) se
hicieron crecer en DMEM (GIBCO) y suero de ternera al 10%. Para la
diferenciación se mantuvieron células confluentes en DMEM
suplementado con suero bovino fetal (FBS) al 10% durante seis días.
El medio se reemplazó cada 48 horas. Al final del periodo la mayoría
de las células había adquirido la morfología de adipocitos
característica como se determinó por criterios bioquímicos y
morfológicos. Se añadió leptina (1 \mug/ml) a los cultivos de
células diferenciadas y no diferenciadas. El RNA se aisló de las
células cultivadas como se describió para los tejidos adiposos del
Ejemplo 2 y se sometió a análisis por transferencia de RNA. Se
encontró que la leptina indujo la expresión de mRNA de Ang2 en
adipocitos 3T3-F442A diferenciados y no en los
pre-adipocitos. El RNA de Ang2 apareció punteado a
las 24 horas. El mRNA del VEGF se expresó constitutivamente en los
pre-adipocitos y fue más inducido por leptina. El
nivel mRNA del VEGF era significativamente menor en los adipocitos
maduros y no fue significativamente inducido por leptina (Figura
7). Estos resultados sugieren que la leptina induce una señal
angiostática en adipocitos maduros y señales angiogénicas en
pre-adipocitos.
\vskip1.000000\baselineskip
La actividad angiostática de Ang2 inducida por
leptina se invierte en presencia de VEGF. Además, se advirtió una
modesta inducción de VEGF por leptina en los ejemplos previos. Por
tanto, se inyecta leptina de múridos (0,1-5
\mug/g) intraperitonealmente en los tiempos 0 y 9 h a ratones
(C57BL-ob^{-/-}) obesos hembras de 8-10
semanas, que carecen de leptina endógena. En paralelo, ratones
(C57BL-ob^{-/-}) obesos hembras de 8-10
semanas se inyectaron en los tiempos 0 y 9 horas
intraperitonealmente con leptina de múridos (0,1-5
\mug/g) junto con el antagonista del receptor 2 de adenosina, CSC,
que se sabe que funciona como un inhibidor del VEGF (H. Takagi, G.
L. King, G. S. Robinson, N. Ferrara, L. P. Aiello, Invest.
Ophthalmol. Vis. Sci. 37, 2165-2176, 1996). Se
observó una pérdida de peso apreciable a la 48 horas en ratones que
recibieron > 2x1 \mug/g de leptina sola (65,4\pm0,5 g vs.
62,7\pm 1,0 g, n=6). Se observó una pérdida de peso
significativamente superior en ratones tratados con una combinación
de leptina y CSC.
Claims (8)
1. El uso de leptina o un homólogo o derivado de
leptina opcionalmente junto con un inhibidor de la acción del VEGF o
de la síntesis del VEGF y/o un inhibidor de la angiogénesis, en la
preparación de un medicamento para inhibir la angiogénesis
induciendo Ang-2, en donde dicho homólogo de leptina
tiene actividad similar a la leptina, y en donde dicho derivado de
leptina induce actividad inhibidora endotelial.
2. El uso de acuerdo con la reivindicación 1,
para inhibir la angiogénesis en tejido adiposo.
3. El uso de acuerdo con la reivindicación 1 ó
2, que incluye un inhibidor de la angiogénesis.
4. El uso de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en donde el inhibidor del VEGF se
selecciona de DMPX, un A2-antagonista
7-(beta-hidroxietil)teofilina,
8-fenilteofilina, el antagonista del receptor A2 de
adenosina CSC, teobromina, una variante del VEGF antagonística,
sFLT-1, Tranilast, ácido
8-(3-oxo-4,5,6-trihidroxi-3H-xanten-9-il)-1-naftoico,
suramina y factor-4 plaquetario.
5. Una composición farmacéutica que comprende
leptina o un homólogo o derivado de leptina junto con un inhibidor
de la acción del VEGF o de la síntesis de VEGF y/o un inhibidor de
la angiogénesis, en donde dicho homólogo de leptina tiene actividad
similar a la leptina, y en donde dicho derivado de leptina induce
actividad inhibidora endotelial.
6. Una composición farmacéutica de acuerdo con
la reivindicación 5, para modular procesos angiogénicos.
7. Una composición farmacéutica de acuerdo con
la reivindicación 6, para inhibir la angiogénesis.
8. Una mezcla que comprende leptina y un
inhibidor del VEGF.
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