ES2345491T3 - Composicion de acaros, uso de la misma, metodo para desarrollar un acaro predatorio phytoseiid, sistema de desarrollo para criar dicho acaro predatorio phytoseiid y procedimientos para el control biologico de pestes en un cultivo. - Google Patents

Composicion de acaros, uso de la misma, metodo para desarrollar un acaro predatorio phytoseiid, sistema de desarrollo para criar dicho acaro predatorio phytoseiid y procedimientos para el control biologico de pestes en un cultivo. Download PDF

Info

Publication number
ES2345491T3
ES2345491T3 ES04808845T ES04808845T ES2345491T3 ES 2345491 T3 ES2345491 T3 ES 2345491T3 ES 04808845 T ES04808845 T ES 04808845T ES 04808845 T ES04808845 T ES 04808845T ES 2345491 T3 ES2345491 T3 ES 2345491T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
euseius
genus
neoseiulus
species
amblyseius
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES04808845T
Other languages
English (en)
Inventor
Karel Jozef Florent Bolckmans
Yvonne Maria Van Houten
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Koppert BV
Original Assignee
Koppert BV
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Koppert BV filed Critical Koppert BV
Application granted granted Critical
Publication of ES2345491T3 publication Critical patent/ES2345491T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K67/00Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
    • A01K67/30Rearing or breeding invertebrates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Catching Or Destruction (AREA)

Abstract

Composición de ácaros que comprende: - una población en crianza de una especie de ácaro predatorio phytoseiid, - una población de hospedantes artificiales, - y opcionalmente un portador para los individuos de dichas poblaciones, caracterizada porque la población de hospedantes artificiales comprende al menos una especie seleccionada de la familia de los Carpoglyphidae tales como del género Carpoglyphus, preferiblemente la especie Carpoglyphus lactis, y en donde la especie de ácaro predatorio phytoseiid es una especie diferente de Amblyseius swirskii seleccionada del grupo que consiste en: la subfamilia de los Amblyseiinae, tales como del género Amblyseius, por ej. Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ej. Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis o Euseius citri, del género Neoseiulus por ej. Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ej. Typhlodromalus limonicus o Typhlodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ej. Typhlodromips montdorensis; - la subfamilia de los Typhlodrominae, tales como del género Galendromus por ej. Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ej. Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.

Description

Composición de ácaros, uso de la misma, método para desarrollar un ácaro predatorio phytoseiid, sistema de desarrollo para criar dicho ácaro predatorio phytoseiid y procedimientos para el control biológico de pestes en un cultivo.
De acuerdo con un primer aspecto, esta invención se refiere a una novedosa composición de ácaros.
De acuerdo con un segundo aspecto, la invención se refiere a un novedoso método para criar una especie de ácaro predatorio phytoseiid.
De acuerdo con un tercer aspecto, la invención se refiere a un novedoso uso de la especie de ácaros Astigmátidos Carpoglyphus lactis como un hospedante artificial, para crianza de una especie de ácaro predatorio phytoseiid.
De acuerdo con un cuarto y quinto aspectos, la invención se refiere a un novedoso sistema de crianza para criar una especie de ácaro predatorio phytoseiid y al uso de este sistema de crianza para el control de plagas de cultivos.
De acuerdo aún con aspectos adicionales, la invención se refiere a un método para control biológico de plagas en un cultivo empleando la composición de ácaros de acuerdo con la invención.
En la siguiente descripción y reivindicaciones las especies phytoseiid y sus nombres de género son como se referencia en de Moraes, G.J., et al., 2004, a menos que se exprese de otra manera. En la Fig. 1 se proporciona una revisión de las familias y especies referenciadas.
Los ácaros predatorios phytoseiid (Phytoseiidae) son ampliamente utilizados para control biológico de ácaros araña y trips en cultivos de invernadero. Las especies de trips más importantes en cultivos de invernadero son Trips de Flores Occidentales (Frankliniella occidentalis) y Trips de la Cebolla (Thrips tabaci). Ellos pueden ser controlados con los ácaros predatorios Amblyseius cucumeris y Amblyseius barkeri (Hansen, L.S. y Geyti, J., 1985; Ramakers, P.M.J. y van Lieburg, M.J., 1982; Ramakers, P.M.J., 1989; Sampson, C., 1998; y Jacobson, R.J., 1995) y Iphiseius degenerans (Ramakers, P.M.J. y Voet, S.J.P., 1996). En ausencia de presas estas especies son capaces de establecerse y mantenerse en los cultivos que proveen una fuente continua de polen, tales como pimientos dulces (Capsicum annuum L.). En cultivos en donde el polen no está libremente disponible, tales como por ejemplo, pepinos y la mayoría de los cultivos ornamentales, estas especies no pueden ser utilizadas a menos que se les provea artificialmente de alimento. Esto puede realizarse espolvoreando polen de plantas sobre el cultivo.
Alternativamente, puede utilizarse un sistema de crianza de liberación controlada (como describe Sampson, C. (1998) o se describe en la GB 2393890) para Amblyseius cucumeris. Este sistema de crianza de liberación controlada consiste de un sachet con un compartimento que contiene una mezcla de alimento, que consiste de salvado, levadura y germen de trigo; una población del ácaro del grano Tyrophagus putrescentiae y una población del ácaro predatorio Amblyseius cucumeris. El ácaro del grano Tyrophagus putrescentiae desarrollará una población activa sobre la mezcla de alimento y sirve como un hospedante artificial para la población del ácaro predatorio. Los sachets son colgados en el cultivo por medio de un gancho y liberarán continuamente ácaros predatorios durante un período de 4 a 6 semanas.
A causa de que el Amblyseius cucumeris tiene una respuesta numérica bastante débil a la presencia de alimento, deben liberarse grandes cantidades de ácaros predatorios dentro de un cultivo de modo de tener un suficiente control de plagas. Esto es económicamente posible porque el Amblyseius cucumeris puede ser criado económicamente en muy grandes cantidades sobre el ácaro del grano Tyrophagus putrescentiae, el cual puede ser criado en cantidades suficientes sobre la mezcla de alimentos anteriormente descripta.
Aunque existen ácaros predatorios mucho más eficientes para control de trips con una mayor tasa predatoria y respuesta numérica, tales como Typhlodromalus limonicus y Iphiseius degenerans, el Amblyseius cucumeris aún es la especie más comúnmente utilizada porque puede ser fácilmente criada en muy grandes cantidades.
El Iphiseius degenerans es criado masivamente sobre Plantas de Poroto de Ricino (Ricinus communis L., Euphorbiaceae) que provee un suministro continuo de polen sobre el cual pueden desarrollarse grandes poblaciones de ácaros. A causa de la gran superficie y elevada inversión en invernaderos necesaria para el crecimiento de las plantas, el costo del Iphiseius degenerans es muy elevado comparado con el Amblyseius cucumeris. Debido a este costo elevado, los agricultores solo pueden liberar muy bajos números, típicamente 1000-2000 ácaros predatorios por hectárea. En consecuencia, la aplicación de Iphiseius degenerans está limitada a los pimientos (Capsicum annuum L.), los cuales proporcionan suficiente polen sobre el cual puede desarrollarse una población de ácaros predatorios, que sea suficiente para el control de plagas. Puede tomar varios meses antes de que la población de Iphiseius degenerans esté en plena fuerza en un cultivo de modo de ser capaz de tener un impacto significativo sobre las poblaciones de plagas de trips.
Los Ácaros Arañuela de Dos Manchas (Tetranychus urticae) son controlados exitosamente en cultivos en invernadero y al aire libre en todo el mundo mediante la liberación de ácaros predatorios. La especies más importante es Phytoseiulus persimilis (Hussey, N.W. y Scopes, N.E.A., 1985), el cual es el ácaro más antiguo disponible comercialmente para control biológico y Neoseiulus californicus (Wei-Lan Ma y Laing, J.E., 1973). Ambos ácaros predatorios son criados masivamente sobre sus hospedantes naturales Tetranychus urticae sobre plantas de porotos (Phaseolus vulgaris) en invernaderos. Castagnoli, M. y Simoni, S. (1999) también describieron un método para criar masivamente Neoseiulus californicus sobre el Acaro del Polvo Hogareño Dermatophagoides farinae. Sin embargo, los Ácaros del Polvo (Dermatophagoides farinae y Dermatophagoides pteronyssinus) producen importantes alergenos, implicados en asma alérgica, rinitis, conjuntivitis y dermatitis. En consecuencia, su uso en sistemas de liberación controlada para liberar ácaros predatorios en cultivos, tiene sus desventajas. Otra desventaja es que cuando los Ácaros del Polvo Hogareños son utilizados para propósitos de crianza masiva, son aconsejables medidas intensas y en ciertos casos necesarias para protección de los trabajadores.
La literatura científica informa varios ácaros predatorios cuyas presas son moscas blancas (Teich, Y. 1966; Swirski, E. y col., 1967; Nomikou, M. y col., 2001). Desafortunadamente, hasta la fecha no hay aún ácaros predatorios comercialmente disponibles para control biológico de moscas blancas. Probablemente porque a pesar de la acción predatoria conocida de los ácaros predatorios sobre las moscas blancas, no ha sido reconocido en el arte su posibilidad de uso como agentes de control biológico aumentativo contra las moscas blancas. En el control biológico aumentativo, se liberan agentes biológicos en un cultivo para el control de una plaga. Aún más importante, no están disponibles en el arte sistemas de crianza masivos económicos, necesarios para permitir la liberación de grandes números de los ácaros predatorios en un cultivo, lo cual es de máxima importancia para su uso como agente de control biológico aumentativo, para aquellas especies de ácaros predatorios que podrían potencialmente ser eficaces contra las moscas blancas.
En cambio, las moscas blancas son controladas liberando avispas parasitoides tales como Encarsia formosa y Eretmocerus eremicus contra la Mosca Blanca de Invernadero Trialeurodes vaporariorum y la avispa parasitoide Eretmocerus mundus contra la Mosca Blanca del Tabaco Bemisia tabaci. También se crían masivamente y liberan diversos predadores, tal como por ejemplo el insecto Mírido predatorio Macropholus caliginosus y al coccinélido Delphastus catalinae. La crianza masiva de todos estos parasitoides y predadores involucra la producción en invernadero de plantas y moscas blancas lo que implica considerables inversiones.
El control biológico de moscas blancas y otras plagas de los cultivos con ácaros predatorios que pueden ser criados económicamente en grandes cantidades sobre un hospedante artificial en un medio de crianza, sería muy ventajoso porque tal sistema de crianza utiliza una superficie limitada. Además, en tal sistema la crianza de ácaros predatorios puede ser llevada a cabo en habitaciones de clima controlado. Como tal, no requiere grandes inversiones en invernaderos y cultivos.
Una investigación reciente ha indicado el potencial del ácaro predatorio Amblyseius swirskii como un agente de control biológico muy eficiente contra los trips (Thrips tabaci y Frankliniella occidentalis) y moscas blancas (Trialeudores vaporariorum y Bemisia tabaci) (Nomikou, M., Janssen, A., Schraag, R. y Sabelis, M.W., 2001; Messelink, G. & Steenpaal, S. 2003; Messelink, G. 2004; Messelink, G. & Steenpaal, S. 2004; Bolckmans, K. & Moerman, M. 2004; Messelink, G. & Pijnakker, J. 2004). El Amblyseius swirskii ha mostrado una respuesta numérica muy fuerte a la presencia de plagas y del polen de plantas. Esto significa que, comparado con Amblyseius cucumeris, deben liberarse números mucho menores de ácaros de modo de adquirir un buen control biológico. En un ensayo, la liberación de 1 Amblyseius swirskii por hoja sobre plantas de pimiento dulce dio por resultado el mismo nivel de control del Trips de Flores Occidental que la liberación de 30 Amblyseius cucumeris por hoja (Bolckmans, K. & Moerman, M. 2004).
El arte previo describe la crianza de Amblyseius cucumeris y Amblyseius barkeri con la ayuda de una especie de ácaro hospedante artificial del género Tyrophagus, en particular Tyrophagus putrescentiae, Tyrophagus tropicus, Tyrophagus casei (Sampson, C., 1998; Jacobson, R.J., 1995; Bennison, J.A. y R. Jacobson, 1991; Karg y col., 1987; y GB 2393890) y del género Acarus, en particular Acarus siro (Beglyarov y col., 1990) y Acarus farris (Hansen, L.S. y J. Geyti, 1985; Ramakers, P.M.J. y van Lieburg, M.J., 1982), todos los cuales pertenecen a la familia de los Acaridea.
El hospedante de crianza más común para Amblyseius cucumeris es Tyrophagus putrescentiae. Una importante desventaja del Tyrophagus putrescentiae es que causa daño en las plantas, en las hojas jóvenes de las plantas, cuando está presente en los cultivos, por ej. cuando se lo utiliza como un hospedante artificial en sachets de crianza de liberación lenta similares a los descriptos por (Sampson, C., 1998) o en la GB 2393890. Este es especialmente el caso en cultivos de pepino durante períodos de elevada humedad, especialmente si esto es combinado con una baja intensidad de luz.
Castagnoli y col. también han descripto la posibilidad de crianza masiva de Neoseiulus californicus (Castagnoli, M. y S. Simoni, 1999) y Amblyseius cucumeris (Castagnoli, M., 1989) sobre el Acaro del Polvo Hogareño Dermatophagoides farinae como hospedante de crianza artificial. Sin embargo, los Ácaros del Polvo Hogareños (Dermatophagoides farinae y Dermatophagoides pteronyssinus) producen importantes alergenos, implicados en asma alérgica, rinitis, conjuntivitis y dermatitis.
En consecuencia, existe una necesidad en el arte de hospedantes artificiales adicionales que puedan ser utilizados para crianza masiva de ácaros beneficiosos, tales como ácaros predatorios. Especialmente para crianza de Amblyseius swirskii. Para este ácaro predatorio se ha descripto en el arte sólo la crianza utilizando polen (Messelink, G. & Pijnakker, J. 2004) o huevos de los lepidópteros Corcyra cephalonica o Ephestia kuehniella (Romeih, A.H.M. y col., 2004).
\newpage
La crianza sobre polen necesita grandes áreas de invernadero para la producción de plantas tales como Plantas de Poroto de Ricino (Ricinus communis) para obtener suficiente polen, o bien recolectar polen de plantas adecuadas tales como de Espadaña (Typpa spp.) al aire libre. La recolección de polen de plantas al aire libre es un trabajo muy intenso y sólo pueden recolectarse cantidades limitadas. El polen de plantas recolectado por abejas mieleras no es adecuado para la crianza de ácaros predatorios.
La crianza sobre huevos de lepidópteros requiere grandes inversiones en instalaciones de producción y en consecuencia es muy costosa.
En vista de lo anterior, existe una necesidad en el arte de ácaros hospedantes artificiales alternativos, que puedan ser empleados en la crianza masiva de ácaros predatorios phytoseiid.
Ahora se ha hallado que la especie de ácaro Astigmátido de la familia de los Carpoglyphydae puede ser utilizada como hospedante artificial para un gran número de especies de ácaros predatorios phytoseiid.
En consecuencia, de acuerdo con un primer aspecto, la invención se refiere a una composición de ácaros que comprende una población criada de una especie de ácaro predatorio phytoseiid y una población hospedante artificial que comprende al menos una especie seleccionada de la familia de los Carpoglyphidae tal como del género Carpoglyphus, preferiblemente del Ácaro de la Fruta Seca Carpoglyphus lactis (Linné, 1758) (Acari: Carpoglyphidae).
Las especies de ácaros predatorios phytoseiid que son más proclives a ser capaces de alimentarse de Carpoglyphidae y en particular Carpoglyphus lactis son las especies de ácaros predatorios phytoseiid oligófagos. Una especie de ácaro predatorio phytoseiid oligófago es una especie de ácaro predatorio phytoseiid que es capaz de utilizar al menos unas pocas especies de presas diferentes como fuente de alimentación para su desarrollo (crecimiento y reproducción). Como tal el término especie de ácaro predatorio oligófago en esta memoria descriptiva incluye una especie de ácaro polífago, siendo un ácaro predatorio que puede utilizar un gran número de especies presa como fuente de alimentación para su desarrollo. En consecuencia, el término especie de ácaro predatorio oligófago debe entenderse que significa una especie de ácaro predatorio no monófago.
Una especie hospedante artificial es una especie que habita un hábitat natural diferente que el ácaro predatorio phytoseiid, pero sin embargo uno o más estadíos de la vida de la especie hospedante son presa adecuada para al menos un estadío en la vida del ácaro predatorio phytoseiid. De manera más importante, el ácaro predatorio phytoseiid tiene la capacidad de desarrollarse y reproducirse cuando se alimenta en base a una dieta del hospedante artificial de modo que puede aumentar el número de individuos en la población en crianza.
Los ácaros predatorios phytoseiid tienen su hábitat natural en plantas en donde hace presa de organismos plaga (insectos y ácaros). Pueden ser aislados de sus hábitats naturales como describen Moraes y col., 2004.
Los Carpoglyphidae son descriptos por Hughes, A.M. (1977). En base a la descripción de este documento, una persona experta en el arte será capaz de aislar especies específicas de esta familia a partir de su hábitat natural. El Carpoglyphus lactis es una especie cosmopolita que se desarrolla en una variedad de materiales orgánicos almacenados. Se la encuentra principalmente en fruta seca, tales como higos, ciruelas, pasas de uva, etc. secos y en los desechos de colmenas de abejas mieleras (Hughes, A.M. 1977; Chmielewski, W., 1971(a); Chmielewski, W., 1971(b)).
En consecuencia, la composición de acuerdo con la invención provee una nueva asociación de ácaros, que no ocurre naturalmente, ya que el ácaro predatorio phytoseiid habita un hábitat diferente del Carpoglyphidae.
La composición de acuerdo con la invención no solamente es adecuada para crianza masiva de un ácaro predatorio phytoseiid. Como también comprende estadíos de vida predatorios móviles de un ácaro predatorio phytoseiid, o estadíos de vida que se desarrollan en estos estadíos de vida móviles, también puede ser empleada como un agente de protección de cultivos biológico.
En una realización preferida, la composición comprende un portador para los individuos de la población. El portador puede ser cualquier material sólido que sea adecuado para proveer una superficie portadora para los individuos. Preferiblemente, el portador provee un medio poroso, que permite intercambios de gases metabólicos y el calor producidos por las poblaciones de ácaros. Ejemplos de portadores adecuados son materiales de plantas tales como salvado (de trigo), cáscaras de trigo sarraceno o alforjón, cáscaras de arroz, aserrín, trozos de mazorca de maíz, etc.
Se prefiere adicionalmente agregar a la composición una sustancia alimenticia adecuada para la población hospedante artificial. Alternativamente, el portador en sí mismo puede comprender una sustancia alimenticia adecuada. Una sustancia alimenticia adecuada puede ser similar a aquella descripta por Parkinson, C.L., 1992; Solomon, M.E. & Cunnington, A.M., 1963; Chmielewski, W, 1971a; Chmielewski, W, 1971b o en la GB 2393890.
De acuerdo con la invención el ácaro predatorio phytoseiid de la composición, es seleccionado de:
- la subfamilia de los Amblyseiinae, tales como del Género Amblyseius, por ej. Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ej. Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis o Euseius citri, del género Neoseiulus por ej. Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ej. Typhlodromalus limonicus o Typhlodromalus peregrinus, del género Typhlodromips por ej. Typhlodromips montdorensis;
- la subfamilia de los Typhlodrominae, tales como del género Galendromus por ej. Galendromus occidentalis, Typhlodromus por ej. Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae. Estas especies de ácaros predatorios phytoseiid pueden ser consideradas como especies de ácaros predatorios oligófagos.
\vskip1.000000\baselineskip
Un ejemplo de un ácaro predatorio phytoseiid es Amblyseius swirskii Athias-Henriot, 1962, (Chant y McMurtry), 2004, (= Typhlodromips swirskii (Athias-Henriot), 1962, De Moraes y col., 2004). Para esta especie no ha sido descripto en el arte su crianza sobre un ácaro hospedante artificial. La presente invención describe ahora por primera vez una composición de ácaros que puede ser utilizada para crianza económica de Amblyseius swirskii utilizando una especie de la familia del Carpoglyphidae como hospedante artificial. Esto hace posible el uso de Amblyseius swirskii como un agente de control de plagas biológico aumentativo. Sin embargo, debe entenderse que en la invención la especie de ácaros predatorios phytoseiid está seleccionada de una especie diferente de Amblyseius swirskii.
Pueden observarse diferencias en la aceptación del hospedante artificial entre diferentes cepas de las especies de ácaro predatorio phytoseiid. Adicionalmente, puede ser posible criar una cepa que está adaptada a un hospedante artificial específico mediante crianza selectiva.
Es esta descripción, el término crianza debe entenderse que incluye la propagación y aumento de una población mediante reproducción sexual.
Una población en crianza puede comprender adultos maduros sexualmente de ambos sexos, y/o individuos de ambos sexos de otros estadíos de vida, por ej. huevos y/o ninfas, que pueden madurar en adultos sexualmente maduros. Alternativamente, la población en crianza puede comprender una o más hembras fertilizadas. En esencia, la población en crianza es capaz de aumentar el número de sus individuos mediante reproducción sexual.
Preferiblemente, la población de hospedantes artificiales es una población en crianza, como se definió anteriormente, de modo que puede sostenerse o incluso desarrollarse en sí misma hasta un cierto grado. Si se provee el hospedante artificial como una población en crianza, preferiblemente también se proporciona una sustancia alimenticia para el hospedante artificial. La sustancia alimenticia puede ser similar a una sustancia alimenticia descripta en Solomon, M.E. y Cunnington, A.M., 1963; Parkinson, C.L., 1992; Ramakers, P.M.J. y van Lieburg, M.J., 1982; GB 2393890.
El hospedante artificial es preferiblemente seleccionado como Carpoglyphus lactis. El Carpoglyphus lactis también llamado el ácaro de la fruta seca es una especie cosmopolita que se desarrolla en una variedad de materiales orgánicos almacenados. Se lo encuentra principalmente en fruta seca, tales como higos, ciruelas, pasas de uvas, etc. secos y en los desechos de colmenas de abejas mieleras (Hughes, A.M., 1977; Chmielewski, W., 1971(a); Chmielewski, W., 1971(b)). Contrariamente al Tyrophagus putrescentiae, el Carpoglyphus lactis no causa daño a los cultivos. En consecuencia, un hospedante artificial de esta selección preferida tendrá beneficios cuando la composición de acuerdo con la invención sea utilizada para protección de cultivos de modo tal que los individuos de la población de hospedantes artificiales pueda estar en contacto con el cultivo, por ej. cuando se aplique directamente sobre, o en la vecindad, del cultivo o cuando se utilice en sachets de liberación lenta/controlada/sostenida.
Un beneficio adicional del Carpoglyphus lactis es que es considerado una especie cosmopolita. Como tal, el comercio internacional de productos que lo comprenden encontrará menos restricciones regulatorias que las que se encuentran en muchos países para especies foráneas.
También se ha hallado que el Carpoglyphus lactis es, en particular, un hospedante artificial adecuado para Amblyseius swirskii ya que este predador puede alimentarse de múltiples estadíos de vida y bajo ciertas circunstancias de todos los estadíos de vida de este hospedante.
En la composición, el número de individuos de la especie de ácaros predatorios phytoseiid en relación con el número de individuos del hospedante artificial puede ser desde aproximadamente 1000:1 a 1:20, tal como aproximadamente 100:1 a 1:20, por ej. 1:1 a 1:10, preferiblemente aproximadamente 1:4, 1:5 ó 1:7.
El número relativo puede depender del uso destinado específico de la composición y/o del estadío de desarrollo de la población de ácaros phytoseiid en el hospedante artificial. En general, las composiciones en donde los individuos del hospedante artificial están presentes en exceso con respecto de los individuos del ácaro phytoseiid, son preferidas para crianza de la especie de ácaros phytoseiid, de modo que se provea suficiente presa al ácaro phytoseiid. Sin embargo, como la población de ácaros phytoseiid aumentará mientras hace presa del hospedante artificial, aumentará el número relativo de individuos de la especie de ácaros phytoseiid.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Una composición que comprende un número relativamente alto del ácaro predatorio phytoseiid puede ser formada a partir de una composición que comprende un número relativo menor y permitiendo que la población en crianza del ácaro predatorio phytoseiid se desarrolle haciendo presa del hospedante artificial. Alternativamente, una composición que comprende un número relativo pequeño del ácaro predatorio phytoseiid puede ser formada mezclando una composición que comprende un mayor número relativo con una composición que comprende un menor número relativo, incluyendo una composición que comprende solamente el hospedante artificial, opcionalmente en combinación con el portador y/o una sustancia alimenticia adecuada para el hospedante artificial.
De acuerdo con un aspecto adicional, la presente invención se refiere a un método para crianza de la especie de ácaro predatorio phytoseiid. El método comprende proveer una composición de acuerdo con la invención y permitir que los individuos de dicho ácaro predatorio phytoseiid hagan presa de los individuos de dicha población de hospedantes artificiales.
Para un óptimo desarrollo del ácaro predatorio phytoseiid, la composición es, por ejemplo, mantenida a 18-35ºC, preferiblemente 20-30ºC, más preferiblemente 20-25ºC, más preferiblemente 22-25ºC. La humedad relativa adecuada está en el rango de entre 75-95%, preferiblemente 80-90%. Estos intervalos de temperatura y humedad relativa son en general también adecuados para mantener la especie de hospedante artificial.
Se prefiere que la composición comprenda un portador que puede proveer un medio poroso y una sustancia alimenticia para la especie de hospedante artificial y que la especie de hospedante artificial sea mantenida como un cultivo tridimensional sobre el portador. En tal cultivo tridimensional, los miembros de la especie hospedante artificial son libres para moverse en tres dimensiones. De este modo pueden infestar un gran volumen del portador y utilizar la sustancia alimenticia más óptimamente. Considerando el tamaño de los estadíos móviles de la especie de ácaro predatorio phytoseiid en relación con los individuos del hospedante artificial, este organismo también infestará en general el volumen total del portador, cuando saquee al hospedante artificial. Preferiblemente, el cultivo tridimensional es obtenido proveyendo el portador en una capa tridimensional, es decir una capa que tiene tres dimensiones, de las cuales dos dimensiones son mayores que una dimensión. Un ejemplo es una capa horizontal con una longitud y ancho en el orden de metros y un cierto espesor en el orden de centímetros. Se prefiere una capa tridimensional porque permitirá suficiente intercambio de calor y gases metabólicos y proveerá un mayor volumen de producción comparada con una capa bidimensional.
De acuerdo con una aspecto adicional, la invención está dirigida al uso de un ácaro Astigmátido seleccionado de la familia de los Carpoglyphidae tal como del género Carpoglyphus, preferiblemente la especie Carpoglyphus lactis, como un hospedante artificial para crianza de un ácaro predatorio phytoseiid.
El ácaro Astigmátido es preferiblemente seleccionado del género Carpoglyphus y más preferiblemente Carpoglyphus lactis, por las razones discutidas anteriormente.
El ácaro predatorio phytoseiid es seleccionado preferiblemente de:
- la subfamilia de los Amblyseiinae, tales como del género Amblyseius, por ej. Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ej. Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis o Euseius citri, del género Neoseiulus por ej. Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ej. Typhlodromalus limonicus o Typhlodromalus peregrinus, del género Typhlodromips por ej. Typhlodromips montdorensis;
- la subfamilia Typhlodrominae, tales como del género Galendromus por ej. Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ej. Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.
\vskip1.000000\baselineskip
De acuerdo con un aspecto adicional, la invención se refiere a un sistema de crianza para criar el ácaro predatorio phytoseiid.
El sistema de crianza comprende un contenedor que sostiene la composición de acuerdo con la invención. El contenedor puede ser de cualquier tipo que sea adecuado para refrenar o restringir los individuos de ambas poblaciones. El sistema de crianza puede comprender medios que facilitan el intercambio de gases y calor metabólicos entre su interior y su exterior tales como orificios de ventilación. Tales orificios de ventilación no deben permitir el escape de individuos de las poblaciones del contenedor. Esto puede ser efectuado cubriendo los orificios de ventilación, por ej. con una malla.
El sistema de crianza puede ser adecuado para crianza masiva de la especie de ácaros phytoseiid. Alternativamente, el sistema de crianza puede también ser utilizado par liberar el ácaro predatorio phytoseiid en un cultivo. En este caso se prefiere que el contenedor pueda ser convertido adecuadamente para liberar estadíos móviles del ácaro predatorio phytoseiid en un cierto momento. Esto puede ser efectuado proveyendo una abertura cerrada en el contenedor la cual puede ser abierta. Alternativamente o en combinación con ella, puede proveerse una abertura de liberación relativamente pequeña, de modo que sea restringido el número de estadíos móviles de phytoseiid que abandonen el contenedor en un dado intervalo de tiempo. De este modo el sistema de crianza puede funcionar en forma similar al sistema de liberación lenta o liberación sostenida descripto por Sampson, C., 1998 y en la GB 2393980.
En tal sistema de crianza para liberar el ácaro predatorio phytoseiid en un cultivo, el contenedor es dimensionado preferiblemente de modo que puede ser colgado en el cultivo o colocado en la base del cultivo. Para colgarlo en el cultivo el contenedor puede estar provisto con medios de colgado, tales como un cordel o un gancho.
De acuerdo con un aspecto adicional, la invención está dirigida al uso de la composición o del sistema de crianza para controlar plagas de cultivos en un cultivo comercial.
La plaga puede estar seleccionada de moscas blancas, tales como Trialeurodes vaporariorum o Bemisia tabaci; trips tales como Thrips tabaci o Frankliniella spp., tal como Frankliniella occidentalis, ácaros arañuela tales como Tetranychus urticae, ácaros tarsonémidos tales como Polyphagotarsonemus latus. El ácaro predatorio phytoseiid Amblyseius swirskii ha mostrado una buena eficacia para controlar estas plagas.
El cultivo puede ser seleccionado de, pero no está restringido a, cultivos de vegetales (invernadero) tales como pimientos (Capsicum annuum, berenjenas (Solanum melogena), Curcubitáceas (Cucurbitaceae) tales como pepinos (Cucumis sativa), melones (Cucumis melo), sandías (Citrullus lanatus); frutas blandas (tales como fresas (Fragaria x ananassa), frambuesas (Rubus ideaus)), cultivos ornamentales (invernadero) (tales como rosas, gerberas, crisantemos) o cultivos de árboles tales como especies Citrus.
La invención se refiere adicionalmente a un método para control de plagas biológicas en un cultivo que comprende proveer una composición de acuerdo con la invención a dicho cultivo.
La plaga puede estar seleccionada de manera similar a la del uso de acuerdo con la invención.
En un método de acuerdo con la invención, la composición puede ser provista mediante aplicación de una cantidad de dicha composición en la vecindad, tal como sobre o en la base de un número de plantas de cultivo. La composición puede ser provista a la planta de cultivo simplemente esparciéndola sobre la planta de cultivo o en la base de la planta de cultivo como es práctica común para el empleo de composiciones de ácaros predatorios para control de plagas biológicas aumentativo. La cantidad de la composición que puede ser provista a cada planta de cultivo individual mediante esparcido, puede estar en el rango de desde 1-20 ml tal como 1-10 ml, preferiblemente 2-5 ml.
Alternativamente, la composición puede ser provista al número de plantas de cultivo en el sistema de crianza de acuerdo con la invención el cual es adecuado para liberar el ácaro predatorio phytoseiid en un cultivo. El sistema de crianza puede ser colocado en la vecindad, tal como en o en la base, de un número de plantas de cultivo.
En el método de control de plagas biológicas de la acuerdo con la invención, puede no ser necesario proveer la composición a todas las plantas de cultivo. Ya que los cultivos comerciales son normalmente cultivados en forma densa. Los ácaros predatorios phytoseiid pueden diseminarse de una planta de cultivo a otra. El número de plantas de cultivo que deben ser provistas con la composición de acuerdo con la invención de modo de proveer una suficiente protección del cultivo puede depender de las circunstancias específicas y puede ser fácilmente determinado por la persona experta en el arte en base a su experiencia en el área. Usualmente es más determinante el número de ácaros predatorios phytoseiid liberados por hectárea. Este número puede estar en el rango de desde 1000-4 millones por hectárea, típicamente 100.000-1 millón ó 50.000-500.000 por hectárea.
En una realización preferida adicional del método para control de plagas biológicas de acuerdo con la invención, el cultivo es seleccionado como se describe en relación con el uso de la composición.
La invención será ahora descripta adicionalmente con referencia a los siguientes ejemplos, los cuales muestran realizaciones no limitativas de diferentes aspectos de la invención.
Ejemplo 1 Crianza masiva de un ácaro Astigmátido Carpoglyphus lactis
Se crió masivamente Carpoglyphus lactis en un medio que contenía levadura para panadería (Chmielewski, W., 1971(a); Chmielewski, W., 1971(b)).
El cultivo es mantenido en contenedores ventilados (por ejemplo cubetas con suficientes orificios de ventilación con gasa de 47 micrones para evitar que los ácaros escapen) a entre 22º y 25ºC y una humedad relativa de 85 a 90%. La crianza masiva puede ser efectuada agregando medio fresco al menos una vez cada semana. La cantidad depende del número de ácaros en el medio pero típicamente se agrega 100 a 300% de medio del volumen original del cultivo. El espesor de la capa de crianza puede ser 1 a 10 cm, pero no demasiado espesor para asegurar óptimo intercambio de gases metabólicos tales como dióxido de carbono y oxígeno y calor metabólico. Se alcanzaron porcentajes de peso de biomasa de ácaros a medio entre 20% y 30% cuando se crió Carpoglyphus lactis en este medio. Típicamente, la población se incrementará 2 a 4 veces cada semana.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 2 Crianza masiva de Amblyseius swirskii en Carpoglyphus lactis
Amblyseius swirskii es criado en contenedores ventilados (por ejemplo cubetas con suficientes orificios de ventilación para asegurar óptimo intercambio de gases y calor metabólicos con gasa de 47 micrones para evitar que los ácaros escapen) con una capa de 5 a 25 cm de cáscaras de trigo sarraceno o alforjón como portador.
\global\parskip1.000000\baselineskip
La capa de portador no debe tener demasiado espesor para asegurar el óptimo intercambio de gases metabólicos tales como dióxido de carbono y oxígeno y calor metabólico. Al menos una vez cada semana se agrega al contenedor una población en crianza de Carpoglyphus lactis con un porcentaje en peso de biomasa de ácaros a medio de 15% a 30%.
La cantidad de Carpoglyphus lactis a ser agregada es calculada en base al número de ácaros predatorios phytoseiid y Carpoglyphus lactis presentes en el contenedor de crianza. Óptimamente, después de agregar Carpoglyphus lactis frescos, la proporción de predadores a presa debe estar entre 1:7 a 1:12. El cultivo es mantenido a una temperatura entre 22º y 25ºC, una humedad relativa de 85 a 90% y un nivel de CO_{2} de 750 ppm máximo en el contenedor de crianza. De este modo una población en crianza de Amblyseius swirskii puede duplicarse o triplicarse cada semana. Pueden lograrse densidades típicamente de 100 a 500 ácaros predatorios por gramo de sustrato de crianza.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 3 Ensayo de puesta de huevos de Amblyseius swirskii en estadíos de vida juveniles y adultos de Carpoglyphus lactis
El objetivo de este experimento es investigar si el Amblyseius swirskii tiene preferencia por estadíos juveniles (huevos, larvas y ninfas) de Carpoglyphus lactis o si sólo puede alimentarse de estadíos de vida adultos de este hospedante artificial. Para esto se crearon diferentes sistemas de crianza de Amblyseius swirskii (algunos de ellos alimentados con estadíos juveniles de Carpoglyphus lactis y otros alimentados con adultos de Carpoglyphus lactis). Las diferencias entre el número promedio de huevos puestos por hembras de Amblyseius swirskii por día en el caso en que la fuente de alimento eran estadíos adultos de Carpoglyphus lactis es comparado con el caso en donde la fuente de alimentación eran estadíos juveniles de Carpoglyphus lactis.
Materiales y métodos
En el comienzo del experimento los Amblyseius swirskii adultos fueron tomados de un cultivo masivo de Amblyseius swirskii que había comenzado unas pocas semanas antes. Se recolectaron 30 hembras y 12 machos adultos jóvenes de este cultivo masivo y se transfirieron a seis contenedores de crianza recién preparados. Se colocaron 5 hembras y 2 machos de Amblyseius swirskii en cada uno. En tres de ellos se colocó como fuente de alimentación una abundante cantidad de estadíos juveniles de Carpoglyphus lactis. Los tres cultivos de ensayo remanentes fueron alimentados con adultos de Carpoglyphus lactis.
Una vez que se prepararon los seis cultivos de ensayo, fueron colocados en un ambiente climatizado bajo condiciones de temperatura (25ºC) y humedad (75%) controladas. Después de dos o tres días en estas condiciones, fueron extraídos. Se prepararon seis nuevos contenedores de crianza, similares a los previos, para transferir los mismos 5 hembras y 2 machos previamente utilizados. Se agregó una abundante cantidad de estadíos juveniles o adultos de Carpoglyphus lactis como fuente de alimentación a cada contenedor de ensayo como en la etapa previa. Después de transferir los machos y las hembras, se contó el número de huevos en los contenedores de crianza desde los cuales fueron transferidos.
Los viejos sistemas de crianza fueron conservados en el ambiente climatizado durante dos o tres días para un segundo conteo de modo de detectar alguna posible descendencia oculta, después de lo cual fueron destruidos. De modo similar a los viejos sistemas de crianza, los nuevos fueron también mantenidos para repetir el mismo procedimiento. Cada día se controló la cantidad residual de Carpoglyphus lactis en cada contenedor de crianza. Si era necesario se agregó una cantidad suficiente.
Cada dos o tres días se obtuvieron datos evaluando el número de la descendencia de ambos, la nueva crianza (primer conteo) y la vieja (segundo conteo). En base al número de hembras y a la cantidad total de descendencia que fue hallada en cada contenedor de crianza, se obtuvo el número promedio de huevos puestos por hembra por día.
Resultados Estadíos adultos de Carpoglyphus lactis como fuente de alimentación
Cuando se compara la evolución del número de huevos puestos por hembra durante el experimento total (realizando una evaluación cada 2-3 días), los promedios están en el rango desde 1,27 a 2,07 huevos/hembra/día.
Para el período completo, el promedio general es 1,80 huevos por hembra por día. La cantidad total de huevos puestos por hembra es aproximadamente 29 durante un período de 16 días. Comparando el número promedio de huevos puestos por hembra por día para el primer, segundo y tercer contenedores de crianza independientes, estos son 1,84, 1,72 y 1,85, respectivamente. Los datos experimentales están presentados en la tabla 1 a continuación.
TABLA 1 Fuente de alimentación: adultos de Carpoglyphus lactis. Datos del número promedio de huevos puestos por hembra de Amblyseius swirskii por día para los tres sistemas de crianza independientes y para el experimento global
1
2
\vskip1.000000\baselineskip
Estadíos juveniles de Carpoglyphus lactis como fuente de alimentación
Si se compara la evolución del número de huevos puestos por hembra durante el experimento total (realizando una evaluación cada 2-3 días), se halló que el promedio está en el rango de desde 1,43 a 2,07 huevos/hembra/día.
Para el período completo, el promedio es 1,84 huevos por hembra por día. La cantidad total de huevos puestos por hembra es aproximadamente 33 durante un período de 18 días. Comparando con el número promedio de huevos puestos por hembra por día para los 3 contenedores de crianza independientes, los promedios para el primer, segundo y tercer sistemas de crianza son 1,72, 1,89 y 1,81, respectivamente. Los resultados se muestran en la tabla 2 a continuación.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 2 Fuente de alimentación: estadíos juveniles de Carpoglyphus lactis. Datos del número promedio de huevos puestos por hembras de Amblyseius swirskii por día para los 3 sistemas de crianza independientes y para el experimento global
3
4
Los resultados muestran que Amblyseius swirskii puede reproducirse en ambos estadíos juvenil y adulto de Carpoglyphus lactis.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 4 Puesta de huevos de Amblyseius cucumeris en Carpoglyphus lactis
Con el mismo esquema experimental general como se describió en el Ejemplo 3, se determinó el número promedio de huevos puestos por hembras de Amblyseius cucumeris cuando se utilizaba Carpoglyphus lactis como fuente de alimentación.
En este experimento, sin embargo, no se hicieron determinaciones discriminatorias para juveniles y adultos del hospedante artificial. En cambio, los individuos de la población de Carpoglyphus lactis fueron agregados no selectivamente.
Resultados
Si se compara la evolución del número de huevos puestos por hembra en el experimento total (realizando una evaluación cada 2-3 días), se aprecia que, evitando el primer período (2 días) en donde el promedio es 1,72 huevos/hembra/día, en los 5 períodos siguientes el promedio está en el rango de desde 2,17 a 2,31 huevos/hembra/día. Para el período completo, el promedio general es 2,13 huevos/hembra/día. Los datos están presentados en la tabla 3 a continuación.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 3 Datos para el número promedio de huevos puestos por hembra por día para los 3 sistemas de crianza independientes y para el experimento global
5
6
Los resultados muestran que Amblyseius cucumeris es capaz de reproducirse en Carpoglyphus lactis.
\vskip1.000000\baselineskip
Referencia
Athias-Henriot, C. (1962) Amblyseius swirskii, un nouveau phytoseiide voisin d'A. andersoni (Acariens anactinotriches). Annales de l'Ecole Nationale d' Agriculture d' Alger, Argelia, 3, 1-7.
Beglyarov y col., 1990, Flour mite for mass breeding of phytoseiids, Zashchita-Rastenii, no. 10, pág. 25. Bennison, J.A. y Jacobson, R., 1991, Integrated control of Frankliniella occidentalis (Pergande) in UK cucumber crops -evaluation of a controlled release system of introducing Amblyseius cucumeris, Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 56/2a, págs. 251-255.
Bolckmans, K. & Moerman, M. 2004, Nieuwe roofmijt verandert bestrijding in paprika. Groenten & Fruit 41: 24-25
Castagnoli, M., 1989, Biologia e prospettive di allevamento massale di Amblyseius cucumeris (Oud.) (Acarina: Pyroglyphidae) com preda.
Castagnoli, M. and Simoni, S., 1999, Effect of long-term feeding history on functional and numerical response of Neoseiulus californicus (Acari: Phytoseiidae), Experimental & Applied Acarology, 23, págs. 217-234.
Castagnoli M., Simoni S., Biliotti N., 1999, Mass-rearing of Amblyseius californicus on two alternative food source - In: J. Bruin, L.P.S. van der Geest y M.W. Sabelis (eds), Ecology and Evolution of the Acari, Kluwer Acad, Publ., Dordrecht, The Nederlands, págs. 425-431.
Chant, D.A., and J.A., McMurtry, 2004, A review of the subfamily Amblyseiinae Muma (Acari: Phytoseiidae): Part III. The tribe Amblyseiini wainstein, subtribe Amblyseiina N. subtribe. Internat. J. Acarol., vol. 30, Nr. 3, p. 171-228.
Chmielewski, W., 1971(a), Wyniki badan morfologicznych, biologicznych i ekologicznych nad roztoczkiem suszowym, Carpoglyphus lactis (L.) (Los resultados de investigaciones sobre la morfología y ecología del ácaro de la fruta seca Carpoglyphus lactis (L.)), Prace-Naukowe-Instytutu-Ochrony-Roslin. 1971, publ. 1972, 13: 1, 87-106.
De Moraes, G.J., McMurtry, J.A., Denmark, H.A. & Campos, C.B., 2004. A revised catalog of the mite family Phytoseiidae. Magnolia Press Auckland Nueva Zelanda 494 pág.
Chmielewski, W., 1971(b), Morfologia, biologia i ekologia Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina) (La morfología, biología y ecología de Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina)), Prace-Naukowe-Instytutu-Ochrony-Roslin. 1971, publ. 1972, 13: 2, 63-166.
Hansen, L.S. y Geyti. J., 1985, Possibilities and limitation of the use of Amblyseius McKenziei Sch. & Pr. For biological control of thrips (Thrips tabaci Lind.) On glasshouse corps of cucumber, Department of Zoology, Danish Research Centre for Plant Protection, Lyngby, Dinamarca, págs. 145-150.
Hughes, A.M., 1977, The mites of stored food and houses. Ministry of Agriculture, Fisheries and Food, Technical Bulletin No. 9: 400 pág.
Hussey, N.W. y N.E.A. Scopes, 1985, Biological Pest Control: the Glasshouse Experience. Poole, UK.: Blandford Press (Ithaca, N.Y..: Cornell University Press).
Jacobson, R.J., 1995, Integrated pest management in cucumbers - prevention of establishment of Frankliniella occidentalis (Pergande), Med. Fac. Landbouww. Univ. Gent, 60/3a, págs. 857-863.
Karg y col., 1987, Advantages of oligophagous predatory mites for biological control, Institute of Plant Protection Klenmachnow, págs. 66-73.
Karg y col., 1989, Fortschritte bei der Anwendung von Raubmilben zur biologischen Schädlingsbekämpfung in Gewächshäusern, Gartenbau, 36, págs. 44-46.
Karg, W., 1989, Die ökologische Differenzierung der Faubmilbarten der Überfamilie Phytoseiidea KARG (Acarina, Parasitiformes), Zool. Jb. Syst. 116, págs. 31-46.
Messelink, G. & Steenpaal, S. 2003, Nieuwe roofmijten tegen trips in komkommer. Groenten & Fruit 43: 34-35.
Messelink, G. 2004, Nieuwe roofmijt wint met overmacht in komkommer. Groenten & Fruit 35: 22-23.
Messelink, G. & Pijnakker, J. 2004, Roofmijten bestrijden wittevlieg. Vakblad voor de Bloemisterij 43: 62.
Messelink, G. & Steenpaal, S. 2004, Roofmijt nu ook kaswittevlieg de baas. Groenten & Fruit 45: 26-27.
McMurtry, J.A. y Croft B.A., 1997, Life-styles of phytoseiid mites and their role in biological control, Annual Review of Entomology, Vol. 42: 291-321.
Nomikou, M., Janssen, A., Schraag, R. y Sabelis, M.W., 2001, Phytoseiid predators as biological control agents for Bemisia tabaci. Exp. Appl. Acarol. 25: 270-290
Parkinson, C.L., 1992, "Culturing free-living astigmatid mites". Arácnidos: Procedimientos de un simposio de un día sobre arañas y sus aliados, llevado a cabo el sábado 21 de noviembre de 1987 en la Zoological Society de Londres, eds. Cooper, J.E., Pearce-Kelly, P, Williams, D.L., págs. 62-70.
Ramakers, P.M.J. y Van Lieburg, M.J., 1982, Start of commercial production and introduction of Amblyseius mckenzei Sch. & Pr. (Acarina: Phytoseiidae) for the control of Thrips tabaci Lind. (Thysanoptera: Thripidae) in glasshouses, Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 47/2, págs. 541-545.
Ramakers, P.M.J., 1989, Large scale introductions of Phytoseiid predators to control thrips on cucumber, Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 54/3a, págs. 923-929.
Ramakers, P.M.J. y Voet, S.J.P., 1996, Introduction of Amblyseius degenerans for thrips control in sweet peppers with potted castor beans as banker plants. IOBC/WPRS working group on integrated control in glasshouses 19(1): 127-130.
Rasmy y col., 1987, A new diet for reproduction of two predaceous mites Amblyseius gossipi and Agistemus exsertus (Acari: Phytoseiidae, Stigmaeidae), Entomophaga 32(3), págs. 277-280.
Romeih, A.H.M., El-Saidy, E.M.A. y El Arnaouty, S.A., 2004, Suitability Of Two Lepidopteran Eggs As Alternative Preys For Rearing Some Predatory Mites. The first Arab Conference of Applied Biological Pest Control, El Cairo, Egipto, 5-7 Abril 2004.
Swirski, E., Amitai, S. y Dorzia, N., 1967, Laboratory studies on the feeding, development and oviposition of the predaceous mite Amblyseius rubini Swirksi and Amitai an Amblyseius swirskii Athias-Henriot (Acarina:Phytoseiidae) on various kiinds of food substances. Israel J. Agric. Res. 17:101-119
Sampson, C., 1998, The commercial development of an Amblyseius cucumeris controlled release method for the control of Frankliniella occidentalis in protected crops, The 1998 Brighton conference - Pests & Diseases, 5B-4, págs. 409-416.
Solomon, M.E. y Cunnington, A.M., 1963, Rearing acaroid mites, Agricultural Research Council, Pest Infestation Laboratory, Slough, Inglaterra, págs. 399-403.
Teich, Y. 1966, Mites of the family of Phytoseiidae as predators of the tobacco whitefly, Bemisia tabaci Gennadius. Israel J. Agric. Res. 16: 141-142.
Wei-Lan Ma y J.E. Laing, 1973, Biology of Amblyseius (Neoseiulus) californicus, Entomophaga, 47-60.
\vskip1.000000\baselineskip
Referencias citadas en la descripción
Esta lista de referencias citadas por el solicitante únicamente es para comodidad del lector. Dicha lista no forma parte del documento de patente europea. Aunque se ha tenido gran cuidado en la recopilación de las referencias, no se pueden excluir errores u omisiones y la EPO rechaza toda responsabilidad a este respecto.
Documentos de patentes citados en la descripción
\bullet GB 2393890 A, Sampson, C. [0008][0033][0039]
\bullet GB 293890 A [0017][0018]
\hskip0.15cm
[0054] Bibliografía no relativa a patentes citada en la descripción
\bulletAthias-Henriot, C. Amblyseius swirskii. Annales de I'Ecole Nationale d' Agriculture d' Alger, 1962, vol. 3, 1-7 [0084]
\bulletBeglyarov et al. Flour mite for mass breeding of phytoseiids. Zashchita-Rastenii, 1990, 25 [0085]
\bulletBennison, J.A.; Jacobson, R. Integrated control of Frankliniella occidentalis (Pergande) in UK cucumber crops - evaluation of a controlled release system of introducing Amblyseius cucumeris. Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1991, vol. 56/2a, 251-255 [0085]
\bulletBolckmans, K.; Moerman, M. Nieuwe roofmijt verandertbestrijding in paprika. Groenten & Fruit, 2004, vol. 41, 24-25 [0086]
\bulletCastagnoli, M. Biologia e prospettive di allevamento massale di Amblyseius cucumeris (Oud.) (Acarina: Pyroglyphidae) com preda, 1989 [0087]
\bulletCastagnoli, M.; Simoni, S. Effectof long-termfeeding history on functional and numerical response of Neoseiulus californicus (Acari: Phytoseiidae). Experimental & Applied Acarology, 1999, vol. 23, 217-234 [0088]
\bullet Mass-rearing of Amblyseius californicus on two alternative food source. Castagnoli NI.; Simoni S.; Biliotti N. Ecology and Evolution of the Acari. Kluwer Acad, Publ, 1999, 425-431 [0089]
\bulletChant, D.A.; J.A., McMurtr. A review of the subfamily Amblyseiinae Muma (Acari: Phytoseiidae): Part III. The tribe Amblyseiini wainstein, subtribe Amblyseiina N. subtribe. Internat. J. Acarol., 2004, vol. 30 (3), 171-228 [0090]
\bulletChmielewski, W. Wyniki badan morfologicznych, biologicznych i ekologicznych nad roztoczkiem suszowym, Carpoglyphus lactis (L.) (The results of investigations on the morphology, biology and ecology of the dried-fruit mite, Carpoglyphus lactis (L.)). Prace-Naukowe-Instytutu-Ochrony-Roslin., 1971, vol. 13(1), 87-106 [0091]
\bullet De Moraes, G. J.; McMurtry, J.A.; Denmark, H.A.; Campos, C.B. A revised catalog of the mite family Phytoseiidae. Magnolia Press Auckland, 2004, 494 [0092]
\bulletChmielewski, W. Morfología, biología i ekologia Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acariña) (The morphology, biology and ecology of Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina)). Prace-Naukowe-Instytutu-Ochrony-Roslin., 1971, vol. 13 (2), 63-166 [0093]
\bulletHansen, L.S.; Gevti. J. Possibilities and limitation of the use of Amblyseius McKenziei Sch. & Pr. for biological control of thrips (Thrips tabaci Lind.) On glasshouse corps of cucumber. Department of Zoology, Danish Research Centre for Plant Protection, Lyngby, 1985, 145-150 [0094]
\bulletHughes, A.M. The mites of stored food and houses. Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. Technical Bulletin, 1977, 400 [0095]
\bulletHussey, N.W.; N.E.A. Scopes. Biological Pest Control: the Glasshouse Experience. Blandford Press, 1985 [0096]
\bulletJacobson, R.J. Integrated pest management in cucumbers - prevention of establishment of Frankliniella occidentalis (Pergande). Med. Fac. Landbouww. Univ. Gent, 1995, vol. 60 (3a), 857-863 [0097]
\bulletKarg et al. Advantages of oligophagous predatory mites for biological control. Institute of Plant Protection Klenmachnow, 1987, 66-73 [0098]
\bulletKarg et al. Fortschritte bei der Anwendung von Raubmilben zur biologischen Schädlingsbekämpfung in Gewächshäusern. Gartenbau, 1989, vol. 36, 44-46 [0099]
\bulletKarg, W. Die ökologische Differenzierung der Faubmilbarten der Überfamilie Phytoseiidea KARG (Acariña, Parasitiformes). Zool. Jb. Syst., 1989, vol. 116, 31-46 [0100]
\bulletMesselink, G.; Steenpaal, S. Nieuwe roofmijten tegen trips in komkommer. Groenten & Fruit, 2003, vol. 43, 34-35 [0101]
\bulletMesselink, G. Nieuwe roofmijt wint met overmacht in komkommer. Groenten & Fruit, 2004, vol. 35, 22-23 [0102]
\bulletMesselink, G.; Pijnakker, J. Roofmijten bestrijden wittevlieg. Vakblad voor de Bloemisterij, 2004, vol. 43, 62 [0103]
\bulletMesselink, G.; Steenpaal, S. Roofmijt nu ook kaswittevlieg de baas. Groenten & Fruit, 2004, vol. 45, 26-27 [0104]
\bulletMcMurtry, J.A.; CroftB. A. Life-styles of phytoseiid mites and their role in biological control. Annual Review of Entomology, 1997, vol. 42, 291-321 [0105]
\bulletNomikou, M.; Janssen, A.; Schraag, R.; Sabelis, M.W. Phytoseiid predators as biological control agents for Bemisia tabaci. Exp. Appl. Acarol., 2001, vol. 25, 270-290 [0106]
\bullet Culturing free-living astigmatid mites. Parkinson, C.L. Arachnida: Proceedings of a one day symposium on spiders and their allies. 21 November 1987, 62-70 [0107]
\bulletRamakers, P.M.J.; Van Lieburg, M.J. Start of commercial production and introduction of Amblyseius mckenzei Sch. & Pr. (Acarina: Phytoseiidae) for the control of Thrips tabaci Lind. (Thysanoptera: Thripidae) in glasshouses. Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1982, vol. 47 (2), 541-545 [0108]
\bulletRamakers, P.M.J. Large scale introductions of Phytoseiid predators to control thrips on cucumber. Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1989, vol. 54 (3a), 923-929 [0109]
\bulletRamakers, P.M.J.; Voet, S.J.P. Introduction of Amblyseius degenerans for thrips control in sweet peppers with potted castor beans as banker plants. IOBC/WPRS working group on integrated control in glasshouses, 1996, vol. 19 (1), 127-130 [0110]
\bulletRasmy et al. A new diet for reproduction of two predaceous mites Amblyseius gossipi and Agistemus exsertus (Acari: Phytoseiidae, Stigmaeidae). Entomophaga, 1987, vol. 32 (3), 277-280 [0111]
\bulletRomeih, A.H.M.; El-Saidy, E.M.A.; E1 Arnaouty, S.A. Suitability Of Two Lepidopteran Eggs As Alternative Preys ForRearing Some Predatory Mites. The first Arab Conference of Applied Biological Pest Control, 05 April 2004 [0112]
Swirski, E.; Amitai, S.; Dorzia, N. Laboratory studies on the feeding, development and oviposition of the predaceous mite Amblyseius rubini Swirksi and Amitai an Amblyseius swirskii Athias-Henriot (Acarina: Phytoseiidae) on various kiinds of food substances. Israel J. Agric. Res., 1967, vol. 17,101-119 [0113]
\bulletSampson, C. The commercial development of an Amblyseius cucumeris controlled release method for the control of Frankliniella occidentalis in protected crops, The 1998 Brighton conference. Pests & Diseases, 1998, vol. 5B-4, 409-416 [0114]
\bulletSolomon, M.E.; Cunnington, A.M. Rearing acaroid mites. Agricultural Research Council, Pest Infestation Laboratory, 1963, 399-403 [0115]
\bulletTeich, Y. Mites of the family of Phytoseiidae as predators of the tobacco whitefly, Bemisia tabaci Gennadius. Israel J. Agrie. Res., 1966, vol. 16, 141-142 [0116]
\bulletWei-Lan Ma; J.E. Laing. Biology - of Amblyseius (Neoseiulus)californicus. Entomophaga, 1973, 47-60 [0117]

Claims (20)

1. Composición de ácaros que comprende:
- una población en crianza de una especie de ácaro predatorio phytoseiid,
- una población de hospedantes artificiales,
- y opcionalmente un portador para los individuos de dichas poblaciones,
caracterizada porque la población de hospedantes artificiales comprende al menos una especie seleccionada de la familia de los Carpoglyphidae tales como del género Carpoglyphus, preferiblemente la especie Carpoglyphus lactis, y en donde la especie de ácaro predatorio phytoseiid es una especie diferente de Amblyseius swirskii seleccionada del grupo que consiste en:
la subfamilia de los Amblyseiinae, tales como del género Amblyseius, por ej. Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ej. Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis o Euseius citri, del género Neoseiulus por ej. Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ej. Typhlodromalus limonicus o Typhlodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ej. Typhlodromips montdorensis;
- la subfamilia de los Typhlodrominae, tales como del género Galendromus por ej. Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ej. Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Composición de acuerdo con la reivindicación 1, que comprende una sustancia alimenticia adecuada para dicha población de hospedantes artificiales.
3. Composición de acuerdo con la reivindicación 1-2, en donde la población de hospedantes artificiales es una población en crianza.
4. Composición de acuerdo con la reivindicación 1-3, en donde el número de individuos de la especie de ácaro predatorio phytoseiid en relación con el número de individuos del hospedante artificial es de aproximadamente 100:1 a 1:20, tal como aproximadamente 1:1 a 1:10, por ej. aproximadamente 1:4, 1:5 ó 1:7.
5. Método para crianza de un ácaro predatorio phytoseiid que comprende:
- proporcionar una composición de acuerdo con la reivindicación 1-4,
- permitir que los individuos de dicho ácaro predatorio phytoseiid hagan presa de los individuos de dicha población de hospedantes artificiales.
\vskip1.000000\baselineskip
6. Método de acuerdo con la reivindicación 5, en donde la composición se mantiene a 18-35ºC y/o humedad relativa de 60-95%.
7. Método de acuerdo con la reivindicación 5-6, en donde dicha composición comprende un portador y una sustancia alimenticia adecuada y la población de hospedantes artificiales se mantiene en un cultivo tridimensional sobre el portador.
8. Uso de un ácaro astigmátido seleccionado de la familia de los Carpoglyphidae tal como del género Carpoglyphus, preferiblemente la especie Carpoglyphus lactis, como un hospedante artificial para crianza de un ácaro predatorio phytoseiid, en donde la especie de ácaro predatorio phytoseiid es una especie diferente de Amblyseius swirskii seleccionado del grupo que consiste en:
la subfamilia de los Amblyseiinae, tal como del género Amblyseius, por ej. Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ej. Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis o Euseius citri, del género Neoseiulus por ej. Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ej. Typhlodromalus limonicus o Typhlodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ej. Typhlodromips montdorensis;
- la subfamilia de los Typhlodrominae, tal como del género Galendromus por ej. Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ej. Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.
\vskip1.000000\baselineskip
9. Sistema de crianza para la crianza de un ácaro predatorio phytoseiid, el sistema comprendiendo un contenedor que sostiene la composición de acuerdo con la reivindicación 1-4.
10. Sistema de crianza de acuerdo con la reivindicación 9, en donde dicho contenedor comprende una salida para al menos un estadío de vida móvil del ácaro phytoseiid.
11. Sistema de crianza de acuerdo con la reivindicación 10, en donde dicha salida es adecuada para proporcionar una liberación sostenida de dicho al menos un estadío de vida móvil.
12. Uso de la composición de acuerdo con la reivindicación 1-4 o del sistema de crianza de acuerdo con la reivindicación 9-11 para controlar una plaga en un cultivo.
13. Uso de acuerdo con la reivindicación 12, en donde la plaga en el cultivo se selecciona de moscas blancas, tales como Trialeurodes vaporariorum o Bemisia tabaci; trips, tal como Thrips tabaci o Frankliniella spp., tal como Frankliniella occidentalis, ácaros araña tales como Tetranychus urticae, ácaros tarsonémidos tal como Polyphagotarsonemus latus.
14. Uso de acuerdo con la reivindicación 13, en donde el cultivo se selecciona de cultivos vegetales (invernadero) tales como pimientos (Capsicum annuum, berenjenas (Solanum melogena), Curcubitáceas (Cucurbitaceae) tales como pepinos (Cucumis sativa), melones (Cucumis melo), sandías (Citrullus lanatus); fruta blanda (tales como fresas (Fragaria x ananassa), frambuesas (Rubus ideaus)), cultivos ornamentales (invernadero) (tales como rosas, gerberas, crisantemos) o cultivos de árboles tales como especies Citrus.
15. Método para controlar una plaga biológica en un cultivo que comprende proporcionar una composición de acuerdo con la reivindicación 1-4 a dicho cultivo.
16. Método de acuerdo con la reivindicación 15 en donde la plaga se selecciona de moscas blancas, tales como Trialeurodes vaporariorum o Bemisia tabaci; trips, tales como Thrips tabaci o Frankliniella spp., tal como Frankliniella occidentalis, ácaros araña tales como Tetranychus urticae, ácaros tarsonémidos tal como Polyphagotarsonemus latus.
17. Método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 15-16, en donde la composición se proporciona aplicando una cantidad de dicha composición en la vecindad, tal como en la base, de un número de plantas de cultivo, preferiblemente de cada planta de cultivo.
18. Método de acuerdo con la reivindicación 17, en donde la cantidad es desde 1-10 ml, preferiblemente 2-5 ml.
19. Método de acuerdo con la reivindicación 15-16, en donde la composición se proporciona en el sistema de crianza de acuerdo con la reivindicación 9-11, colocando dicho sistema de crianza en la vecindad de un número de plantas de cultivo, preferiblemente de cada planta de cultivo, tal como colgando dicho sistema de crianza en dicha planta de cultivo.
20. Método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 15-19, en donde el cultivo se selecciona de cultivos de vegetales (invernadero) tales como pimientos (Capsicum annuum), berenjenas (Solanum melogena), Curcubitáceas (Cucurbitaceae) tales como pepinos (Cucumis sativa), melones (Cucumis melo), sandías (Citrullus lanatus); fruta blanda (tales como fresas (Fragaria x ananassa), frambuesas (Rubus ideaus)), cultivos ornamentales (invernadero) (tales como rosas, gerberas, crisantemos) o cultivos de árboles tales como especies Citrus.
ES04808845T 2004-12-31 2004-12-31 Composicion de acaros, uso de la misma, metodo para desarrollar un acaro predatorio phytoseiid, sistema de desarrollo para criar dicho acaro predatorio phytoseiid y procedimientos para el control biologico de pestes en un cultivo. Expired - Lifetime ES2345491T3 (es)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/NL2004/000929 WO2006071107A1 (en) 2004-12-31 2004-12-31 Mite composition, use thereof, method for rearing a phytoseiid predatory mite, rearing system for rearing said phytoseiid predatory mite and methods for biological pest control on a crop

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2345491T3 true ES2345491T3 (es) 2010-09-24

Family

ID=34960063

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES04808845T Expired - Lifetime ES2345491T3 (es) 2004-12-31 2004-12-31 Composicion de acaros, uso de la misma, metodo para desarrollar un acaro predatorio phytoseiid, sistema de desarrollo para criar dicho acaro predatorio phytoseiid y procedimientos para el control biologico de pestes en un cultivo.

Country Status (22)

Country Link
US (2) US7947269B2 (es)
EP (1) EP1830631B1 (es)
JP (1) JP4972559B2 (es)
KR (1) KR101517309B1 (es)
AP (1) AP2428A (es)
AR (1) AR055708A1 (es)
AT (1) ATE466479T1 (es)
AU (1) AU2004326012C1 (es)
BR (1) BRPI0419258B1 (es)
CA (1) CA2592282C (es)
DE (1) DE602004027094D1 (es)
DK (1) DK1830631T3 (es)
EA (1) EA019149B1 (es)
EC (1) ECSP077553A (es)
ES (1) ES2345491T3 (es)
IL (1) IL184172A (es)
MX (1) MX275245B (es)
NO (1) NO333487B1 (es)
NZ (1) NZ555985A (es)
PL (1) PL1830631T3 (es)
PT (1) PT1830631E (es)
WO (1) WO2006071107A1 (es)

Families Citing this family (35)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2005339589B2 (en) * 2005-12-29 2012-08-23 Koppert B.V. Mite composition comprising Glycyphagidae and phytoseiid mites, use thereof, method for rearing a phytoseiid predatory mite, rearing system for rearing said phytoseiid predatory mite and methods for biological pest control on a crop
GB0703672D0 (en) * 2007-02-26 2007-04-04 Biolog Crop Prot Ltd Mite composition, use thereof, method for rearing a mite, rearing system, use of the composition in biological pest control, and method of biological pest
DK2136619T3 (da) * 2007-03-30 2011-10-03 Alk Abello As Metode til produktion af mider
JP2010187606A (ja) * 2009-02-19 2010-09-02 Agri Soken:Kk 天敵生物の放飼装置
WO2010148498A1 (en) * 2009-06-22 2010-12-29 Universite Laval Method and system for distributing mixture of insects and carrier material on field
NL1039058C2 (en) * 2011-09-20 2013-03-21 Koppert Bv Phytoseiid predatory mite releasing system and method for production.
CN102487896B (zh) * 2011-11-28 2013-09-11 华南农业大学 一种捕食螨以线虫为食的个体发育的观察装置及其制备方法和使用方法
WO2013103295A1 (en) * 2012-01-04 2013-07-11 Koppert B.V. Mite composition, carrier, method for rearing mites and uses related thereto
KR102092754B1 (ko) 2012-01-04 2020-03-25 코퍼트 비.브이. 포식성 응애 및 진균 감소제와 접촉된 고정화된 먹이를 포함하는 응애 조성물 및 상기 조성물의 사용과 관련된 방법 및 용도
FR2992148B1 (fr) * 2012-06-22 2019-12-27 Centre International D'etudes Superieures En Sciences Agronomiques Composition comprenant des arthropodes et des oeufs d'astigmates
CN103238569B (zh) * 2013-05-13 2015-08-12 广东省农业科学院植物保护研究所 一种捕食螨饲养装置及其饲养方法
CN104222017B (zh) * 2013-06-21 2016-09-07 中国农业科学院植物保护研究所 一种大量生产拟长毛钝绥螨的方法
CN104222014B (zh) * 2013-06-21 2016-09-07 中国农业科学院植物保护研究所 一种利用叶螨大量饲养捕食螨的方法
CN104222015B (zh) * 2013-06-21 2016-09-07 中国农业科学院植物保护研究所 捕食螨的连续饲养方法
CN104222016B (zh) * 2013-06-21 2016-09-07 中国农业科学院植物保护研究所 利用替代猎物和叶螨、蓟马饲养捕食螨的方法
JP5681334B1 (ja) * 2013-08-13 2015-03-04 大協技研工業株式会社 天敵昆虫増殖装置
EP2982242B1 (en) 2014-08-06 2019-04-24 Agrobio S.L. Mite composition, the rearing thereof and methods for application of the composition in biological control systems.
PT3326463T (pt) 2015-02-09 2020-06-30 Agrobio S L Composição de ácaros e sua utilização como agentes de controlo biológico
NL2016103B1 (en) 2016-01-15 2017-08-02 Koppert Bv System for releasing beneficial mites and uses thereof.
WO2019017776A1 (en) 2017-07-16 2019-01-24 Koppert B.V. SYSTEM FOR RELEASING USEFUL MITES AND USES THEREOF
IL257892A (en) 2018-03-05 2018-05-02 Bio Bee Sde Eliyahu Ltd Novel methods for rearing and controlled release of biological control agents
FR3084562B1 (fr) * 2018-07-31 2021-04-02 Bioline France Systeme de lutte biologique comprenant des acariens predateurs dans un etui
BE1026685B1 (nl) 2018-10-05 2020-05-07 Biobest Group N V Mijtensamenstelling en werkwijze voor het kweken van mijten
FR3100102A1 (fr) 2019-09-03 2021-03-05 Bio-Bee Sde Eliyahu Ltd. Nouveaux procédés d’élevage et de libération contrôlée d’acariens prédateurs
BE1027502B1 (fr) 2019-09-03 2021-05-18 Bio Bee Sde Eliyahu Ltd Nouveaux procédés d'élevage et de libération contrôlée d'acariens prédateurs
NL2023756B1 (en) 2019-09-03 2021-10-12 Bio Bee Sde Eliyahu Ltd Novel methods for rearing and controlled release of predatory mites
IL291108A (en) 2019-09-03 2025-01-01 Biobee Sde Eliyahu Ltd New methods for breeding and controlled release of predatory mites
BE1027819B1 (nl) 2019-12-04 2021-07-06 Biobest Group N V Mijtensamenstelling en werkwijze voor het kweken van mijten
WO2021133368A1 (ru) * 2019-12-23 2021-07-01 Ярослав Олегович ИВАНОВ Способ разведения хищных клещей neoseiulus reductus
BE1029947B1 (nl) 2021-11-23 2023-06-19 The Real Ipm Co Kenya Ltd Mijtsamenstellingen en werkwijzen voor het voeden van mijten
BE1030252B1 (nl) 2021-12-08 2023-09-04 The Real Ipm Co Kenya Ltd Mijtsamenstelling en werkwijze voor het voeden van roofmijten
WO2023117121A1 (en) 2021-12-23 2023-06-29 Biobest Group N.V. Mite composition and method for rearing mites
BE1030324B1 (nl) 2022-03-08 2023-10-09 Biobest Group N V Mijtsamenstelling en werkwijze voor het voeden van roofmijten
UA151249U (uk) * 2022-05-24 2022-06-22 Ярослав Олегович Іванов Спосіб розведення хижих кліщів родини phytoseiidae
WO2024223807A1 (en) 2023-04-28 2024-10-31 Agrobío, S.L. Combinations of astigmatid mites for rearing predatory insects and mites

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2168680B (en) 1984-12-21 1989-06-14 Bunting Peter Eric Distribution of living arthropods or the like
US4646683A (en) 1985-10-11 1987-03-03 Biofac, Inc. Method and apparatus for producing parasitic mites
JPH03108433A (ja) * 1989-09-21 1991-05-08 Hokkaido Univ 微小天敵カブリダニ類の増殖に好適な容器と、この容器を用いた天敵カブリダニ類の大量増殖法と、この容器を用いた天敵カブリダニ類の保存あるいは輸送方法
IE913279A1 (en) 1990-09-26 1992-04-08 Astra Ab (2-Thienyl)alkylamine Derivatives Having Neuroprotective¹Properties
US5192546A (en) * 1991-01-15 1993-03-09 Mycogen Corporation Synergistic pesticidal compositions
JP3547173B2 (ja) 1994-07-28 2004-07-28 農薬バイオテクノロジー開発技術研究組合 ダニ類の増殖方法
US6129935A (en) * 1998-05-15 2000-10-10 Entomos, Llc Methods for rearing insects, mites, and other beneficial organisms
EP1483966A4 (en) * 2002-02-07 2005-04-06 Kuraray Co PROCEDURE FOR COMBATING ACARIAN AND A DEVICE USED THEREOF
US7051672B2 (en) * 2004-02-17 2006-05-30 Syngenta Participations Ag System for providing beneficial insects or mites
GB2393890B (en) * 2004-02-17 2004-08-25 Syngenta Bioline Ltd System for providing beneficial insects or mites

Also Published As

Publication number Publication date
AU2004326012C1 (en) 2012-01-19
DE602004027094D1 (de) 2010-06-17
AP2428A (en) 2012-08-31
NO333487B1 (no) 2013-06-24
WO2006071107A8 (en) 2006-08-10
PT1830631E (pt) 2010-08-11
BRPI0419258A (pt) 2007-12-18
IL184172A (en) 2014-04-30
JP4972559B2 (ja) 2012-07-11
CA2592282C (en) 2018-09-25
NZ555985A (en) 2009-11-27
MX2007008023A (es) 2008-03-13
US20080118476A1 (en) 2008-05-22
US20110277042A1 (en) 2011-11-10
AR055708A1 (es) 2007-09-05
AU2004326012B2 (en) 2011-08-04
PL1830631T3 (pl) 2011-03-31
NO20073905L (no) 2007-10-01
MX275245B (es) 2010-04-16
CA2592282A1 (en) 2006-07-06
US7947269B2 (en) 2011-05-24
AU2004326012A1 (en) 2006-07-06
BRPI0419258B1 (pt) 2016-03-01
IL184172A0 (en) 2007-10-31
AP2007004045A0 (en) 2007-06-30
DK1830631T3 (da) 2010-08-16
ECSP077553A (es) 2008-02-20
EA200701427A1 (ru) 2008-02-28
EP1830631B1 (en) 2010-05-05
JP2008526198A (ja) 2008-07-24
KR20130017103A (ko) 2013-02-19
ATE466479T1 (de) 2010-05-15
KR101517309B1 (ko) 2015-05-04
EA019149B1 (ru) 2014-01-30
WO2006071107A1 (en) 2006-07-06
EP1830631A1 (en) 2007-09-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2345491T3 (es) Composicion de acaros, uso de la misma, metodo para desarrollar un acaro predatorio phytoseiid, sistema de desarrollo para criar dicho acaro predatorio phytoseiid y procedimientos para el control biologico de pestes en un cultivo.
ES2314486T3 (es) Composicion de acaros, usos de los mismos, metodos de cria del acaro depredador fitoseido amblyseius swirskii, sistema para la cria de dicho acaro fitoseido y metodo para el control de las plagas en un cultivo.
ES2349941T3 (es) Composición de ácaros que comprende ácaros glycyphagidae y fitoseidos, su uso, método para la cría de un ácaro depredador fitoseido, sistema de cría de dicho ácaro depredador fitoseido y métodos para el control biológico de plagas en una cosecha.
CN101111148A (zh) 螨组合物,其用途,用于饲养捕食性植绥螨的方法,用于饲养所述捕食性植绥螨的饲养系统和用于作物上害虫生物防治的方法
KR20070110008A (ko) 응애 조성물, 그의 용도, 포식성 이리응애의 사육 방법,상기 포식성 이리응애를 사육하는 사육 시스템 및작물에서의 생물학적 해충 방제 방법