ES2647238T3 - Sistema y procedimiento para medir un analito en una muestra - Google Patents

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ES2647238T3 ES09251507.1T ES09251507T ES2647238T3 ES 2647238 T3 ES2647238 T3 ES 2647238T3 ES 09251507 T ES09251507 T ES 09251507T ES 2647238 T3 ES2647238 T3 ES 2647238T3
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Alastair Mcindoe Hodges
Ronald C. Chatelier
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    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/28Electrolytic cell components
    • G01N27/30Electrodes, e.g. test electrodes; Half-cells
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    • G01N27/3271Amperometric enzyme electrodes for analytes in body fluids, e.g. glucose in blood
    • G01N27/3274Corrective measures, e.g. error detection, compensation for temperature or hematocrit, calibration

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Abstract

Un procedimiento para medir una concentración de glucosa corregida con la temperatura sobre un intervalo de temperaturas, el método comprendiendo: aplicar (2002) en un medidor de prueba un primer voltaje de prueba durante un primer intervalo de tiempo entre un primer electrodo y un segundo electrodo en comunicación con una muestra dispuesta en una tira reactiva dentro del medidor de prueba, el primer intervalo de tiempo siendo suficiente para oxidar un mediador reducido en el segundo electrodo; tras la aplicación del primer voltaje de prueba, aplicar (2006) un segundo voltaje de prueba durante un segundo intervalo de tiempo entre el primer electrodo y el segundo electrodo suficiente para oxidar el mediador reducido en el primer electrodo; calcular (2014) una primera concentración de glucosa en base a los valores de corriente de prueba durante el primer intervalo de tiempo y el segundo intervalo de tiempo; y caracterizado porque: medir (1910) un valor de temperatura usando un dispositivo de lectura de temperatura incorporado en el medidor de prueba que recibe la tira reactiva; y calcular una concentración de glucosa corregida con la temperatura en base a la primera concentración de glucosa y el valor de temperatura, en el que la etapa de calcular la concentración corregida con la temperatura incluye: calcular un valor de corrección en base al valor de la temperatura y la primera concentración de glucosa, en el que el calor de corrección se calcula (1914) con una primera función si el valor de la temperatura es mayor que un primer umbral de temperatura, y en el que el valor de corrección se calcula (1916) con una segunda función si el valor de la temperatura no es mayor que un primer umbral de temperatura; calcular la concentración corregida con la temperatura en base a la primera concentración de glucosa y el valor de corrección, en el que la primera función es una primera ecuación que es: en la que Corr2 es el valor de corrección, K1 es una primera constante, T es un valor de temperatura, TRT es un valor de temperatura ambiente, K2 es una segunda constante, y G1 es la primera concentración de glucosa; y en el que la segunda función es una segunda ecuación, la segunda ecuación siendo: en la que Corr2 es el valor de corrección, K3 es una tercera constante, T es un valor de temperatura, TRT es un valor de temperatura ambiente, K4 es una cuarta constante, y G1 es la primera concentración de glucosa, K5 es una quinta constante, T1 es un primer umbral de temperatura, y K6 es una sexta constante.

Description

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Sistema y procedimiento para medir un analito en una muestra Descripción
SOLICITUDES RELACIONADAS
Esta solicitud está relacionada con las siguientes solicitudes de patente: Publicación de Solicitud de Patente U.S. N° 2007/0235347, titulada "Sistemas y Procedimientos para Discriminar la Solución de Control de una Muestra Fisiológica" y presentada el 31 de Marzo del 2006; Publicación de Solicitud de Patente U.S. N° 2009/0084687, titulada "Sistemas y Métodos para Discriminar la Solución de Control de una Muestra Fisiológica" y presentada el 16 de Septiembre del 2008, y Publicación de Solicitud de Patente U.S. N° 2009/0184004, titulada "Sistema y Método para Medir un Analito en una Muestra" presentada el 6 de Enero del 2009.
CAMPO
La presente divulgación se refiere a procedimientos y sistemas para determinar concentración de analito de una muestra.
ANTECEDENTES
La detección de analitos en fluidos fisiológicos, por ejemplo, sangre o productos derivados de la sangre, es de importancia cada vez mayor para la sociedad de hoy en día. Los ensayos de detección de analitos se usan en una variedad de aplicaciones, que incluyen pruebas de laboratorio clínico, pruebas en casa, etc., en los que los resultados de tales pruebas desempeñan una función importante en el diagnóstico y tratamiento en una variedad de condiciones de enfermedad. Los analitos de interés incluyen glucosa para el tratamiento de diabetes, colesterol y similares. En respuesta a esta importancia creciente de la detección de analitos, se ha desarrollado una variedad de protocolos de detección de analitos y dispositivos para uso tanto clínico como doméstico.
Un tipo de procedimiento que se emplea para la detección de analitos es un procedimiento electroquímico. En tales procedimientos, una muestra de líquido acuoso se coloca en una cámara receptora de muestra en una celda electroquímica que incluye dos electrodos, por ejemplo, un contraelectrodo y un electrodo de trabajo. El analito se deja reaccionar con un reactivo rédox para formar una sustancia oxidable (o reducible) en una cantidad correspondiente a la concentración de analito. La cantidad de sustancia oxidable (o reducible) presente se estima entonces electroquímicamente y se relaciona con la cantidad de analito presente en la muestra inicial.
Tales sistemas son susceptibles a diversos modos de ineficiencia y/o error. Por ejemplo, variaciones en las temperaturas pueden afectar los resultados del procedimiento. Esto es especialmente relevante cuando el procedimiento se lleve a cabo en un entorno sin controlar, como es frecuentemente el caso en aplicaciones en casa o en países del tercer mundo. También pueden producirse errores cuando el tamaño de muestra sea insuficiente para conseguir un resultado exacto. Las tiras reactivas parcialmente llenas pueden dar posiblemente un resultado inexacto debido a que las corrientes de prueba medidas son proporcionales al área del electrodo de trabajo que está humedecido con la muestra. Así, las tiras reactivas parcialmente llenas pueden bajo ciertas condiciones proporcionar una concentración de glucosa que está negativamente sesgada. Un usuario puede tener dificultad en determinar si un área de electrodo de una tira reactiva está completamente cubierta o no por una muestra. Muchas tiras reactivas, que incluyen las descritas en el presente documento, tienen un volumen relativamente pequeño (< un microlitro), dificultando que un usuario lea y juzgue si hay o no una pequeña área de un electrodo que está sin humedecer. Esto puede ser especialmente un problema para personas con diabetes que frecuentemente tienen mala agudeza visual.
El documento WO 2005/098424 A1 divulga un procedimiento y aparato para implementar funciones de correción basadas en el umbral para biosensores.
RESUMEN
Se proporcionan diversos aspectos de un procedimiento para calcular una concentración de analito de una muestra. En particular, la presente invención proporciona un procedimiento para medir una concentración de glucosa corregida con la temperatura sobre un intervalo de temperatura como se expone en las reivindicaciones.
En otro aspecto, que no cae dentro del alcance de la presente invención, se divulga un procedimiento para calcular una concentración de analito en una muestra, el método está configurado para determinar si una tira reactiva está lo suficientemente llena con una muestra. El procedimiento incluye aplicar un primer voltaje de prueba entre un primer electrodo y un segundo electrodo de una tira reactiva. El primer voltaje de prube puede tener tanto un componente de voltaje de CA como un componente de voltaje de CC. El componente de voltaje de CA puede aplicarse a una cantidad predeterminada de tiempo después de la aplicación del primer voltaje de prueba el componente de voltaje de CC puede tener una magnitud suficiente para una corriente de prueba de limitación en el segundo electrodo. Por consiguiente, puede procesarse una porción de la corriente de prueba resultante del
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componente de voltaje de CA en un valor de capacitancia BREVE DESCRIPCIÓN DE LOS DIBUJOS
La presente divulgación se entenderá más completamente a partir de la siguiente descripción detallada tomada conjuntamente con los dibujos adjuntos, en los que:
La FIG. 1A es una vista en perspectiva de una tira reactiva;
la FIG. 1B es una vista en perspectiva en despiece ordenado de la tira reactiva de la FIG. 1A;
la FIG. 1C es una vista en perspectiva de una porción distal de la tira reactiva de la FIG. 1A;
la FIG. 2 es una vista en planta desde abajo de la tira reactiva de la FIG. 1A;
la FIG. 3 es una vista en planta lateral de la tira reactiva de la FIG. 1A;
la FIG. 4A es una vista en planta desde arriba de la tira reactiva de la FIG. 1A;
la FIG. 4B es una vista lateral parcial de la porción distal de la tira reactiva de acuerdo con las flechas 4B-4B de la FIG. 4A;
la FIG. 5 es un esquema simplificado que muestra un medidor de prueba que se conecta eléctricamente con las almohadillas de contacto de la tira reactiva;
la FIG. 6 muestra una forma de onda del voltaje de prueba en la que el medidor de prueba aplica una pluralidad de voltajes de prueba durante intervalos de tiempo indicados;
la FIG. 7 muestra una corriente transitoria de prueba generada con la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6;
la FIG. 8 es un diagrama de flujo que muestra una realización de un procedimiento de determinación de una concentración de glucosa;
la FIG. 9 es un diagrama de flujo que muestra una realización a modo de ejemplo de un algoritmo de glucosa en sangre y una corrección de hematocrito;
la FIG. 10 es un gráfico que muestra una correlación entre niveles de hematocrito medidos usando un procedimiento de referencia y niveles de hematocrito medidos usando la tira reactiva de la FIG. 1; la FIG. 11 es una representación del sesgo que muestra una pluralidad de tiras reactivas que se probaron con muestras de sangre que tienen un amplio intervalo de niveles de hematocrito;
la FIG. 12 es un diagrama de flujo que muestra una realización de un procedimiento de aplicación de una corrección de la temperatura cuando una muestra es sangre;
la FIG. 13 es una representación del sesgo que muestra una pluralidad de tiras reactivas que se probaron con muestras de sangre que tienen un amplio intervalo de niveles de hematocrito, un amplio intervalo de niveles de glucosa y un amplio intervalo de niveles de temperatura sin corrección de la temperatura; la FIG. 14 es una representación del sesgo que muestra una pluralidad de tiras reactivas que se probaron con muestras de sangre que tienen un amplio intervalo de niveles de hematocrito, un amplio intervalo de niveles de glucosa y un amplio intervalo de niveles de temperatura con corrección de la temperatura; la FIG. 15 es un diagrama de flujo que muestra una realización de un procedimiento de aplicación de una corrección de la temperatura cuando una muestra es disolución de control;
la FIG. 16 es una representación del sesgo que muestra una pluralidad de tiras reactivas que se probaron con muestras de disolución de control que tienen un amplio intervalo de niveles de glucosa y un amplio intervalo de niveles de temperatura sin corrección de la temperatura;
la FIG. 17 es una representación del sesgo que muestra una pluralidad de tiras reactivas que se probaron con muestras de disolución de control que tienen un amplio intervalo de niveles de glucosa y un amplio intervalo de niveles de temperatura con corrección de la temperatura;
la FIG. 18 es un diagrama de flujo que representa una realización de un procedimiento de identificación de errores del sistema;
la FIG. 19 es un gráfico que muestra una correlación de la capacitancia y el sesgo con una medición de glucosa de referencia (YSI, Yellow Springs Instrument) en el que los valores de capacitancia se midieron para muestras de sangre durante el tercer voltaje de prueba de la FIG. 6;
la FIG. 20 es un gráfico que muestra una correlación de la capacitancia y el sesgo con una medición de glucosa de referencia (YSI, Yellow Springs Instrument) en el que los valores de capacitancia se midieron para muestras de sangre durante el segundo voltaje de prueba de la FIG. 6 (por ejemplo, después de aproximadamente 1,3 segundos);
la FIG. 21 es un gráfico que muestra una correlación de la capacitancia y el sesgo con una medición de glucosa de referencia (YSI, Yellow Springs Instrument) en el que los valores de capacitancia se midieron para muestras de disolución de control durante el segundo voltaje de prueba de la FIG. 6 (por ejemplo, después de aproximadamente 1,3 segundos);
la FIG. 22 muestra una corriente transitoria de prueba del segundo intervalo de tiempo de prueba cuando un usuario realiza una dosis doble (línea continua) y no realiza una dosis doble (línea discontinua); la FIG. 23 muestra una corriente transitoria de prueba del segundo intervalo de tiempo de prueba cuando se produce un error de inicio tardío (línea continua) y no se produce (línea discontinua) con el medidor de prueba; la FIG. 24 muestra una corriente transitoria de prueba del tercer intervalo de tiempo de prueba para una tira reactiva que tiene una trayectoria de alta resistencia (cuadrados) y una trayectoria de baja resistencia (triángulos);
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la FIG. 25 es un gráfico que muestra una pluralidad de valores de relación que indican que un lote de tiras reactivas de alta resistencia puede distinguirse de un lote de tiras reactivas de baja resistencia; la FIG. 26 muestra una pluralidad de corrientes transitorias de prueba para un lote de tiras reactivas que tiene fuga entre un separador y el primer electrodo (cuadrados) y para lotes de tiras reactivas que tienen una cantidad suficientemente baja de fuga (círculos y triángulos); y
la FIG. 27 es un gráfico que muestra una pluralidad de valores de relación para identificar fuga de líquido para lotes de tiras reactivas preparados con diferentes condiciones de fabricación.
DESCRIPCIÓN DETALLADA
Ciertas realizaciones a modo de ejemplo se describirán ahora para proporcionar un entendimiento global de los principios de la estructura, función, fabricación y uso de los dispositivos, sistemas y procedimientos desvelados en el presente documento. Uno o más ejemplos de estas realizaciones se ilustran en los dibujos adjuntos. Aquellos expertos en la materia entenderán que los dispositivos y procedimientos específicamente descritos en el presente documento e ilustrados en los dibujos adjuntos son realizaciones a modo de ejemplo no limitantes y que el alcance de la presente divulgación se define únicamente por las reivindicaciones. Las características ilustradas o descritas a propósito de una realización a modo de ejemplo pueden combinarse con las características de otras realizaciones. Tales modificaciones y variaciones pretenden incluirse dentro del alcance de la presente divulgación.
Los sistemas y procedimientos objeto son adecuados para su uso en la determinación de una amplia variedad de analitos en una amplia variedad de muestras, y son particularmente aptos para uso en la determinación de analitos en sangre completa, plasma, suero, líquido intersticial, o derivados de los mismos. En una realización a modo de ejemplo, un sistema de prueba de glucosa basado en un diseño de celda de capa delgada con electrodos opuestos y detección electroquímica de tri-pulso que es rápido (por ejemplo, tiempo de análisis de aproximadamente 5 segundos), requiere una pequeña muestra (por ejemplo, aproximadamente 0,4 jl) y puede proporcionar fiabilidad y exactitud mejoradas de medidas de glucosa en sangre. En la celda de reacción, la glucosa en la muestra puede oxidarse a gluconolactona usando glucosa deshidrogenasa y puede usarse un mediador electroquímicamente activo para transportar electrones de la enzima a un electrodo de trabajo de paladio. Puede utilizarse un potenciostato para aplicar una forma de onda de potencial de tri-pulso a los electrodos de trabajo y contraelectrodos, produciendo corrientes transitorias de prueba usadas para calcular la concentración de glucosa. Además, puede usarse información adicional obtenida de las corrientes transitorias de prueba para discriminar entre matrices de muestra y corregir la variabilidad en muestras de sangre debido a hematocrito, la variación de temperatura, componentes electroquímicamente activos e identificar posibles errores del sistema.
Los procedimientos objeto pueden usarse, en principio, con cualquier tipo de celda electroquímica que tenga primero y segundo electrodos separados y una capa de reactivo. Por ejemplo, una celda electroquímica puede estar en forma de una tira reactiva. En un aspecto, la tira reactiva puede incluir dos electrodos opuestos separados por un separador delgado para definir una cámara receptora de muestra o zona en la que se localiza una capa de reactivo. Un experto en la materia apreciará que otros tipos de tiras reactivas, que incluyen, por ejemplo, tiras reactivas con electrodos co-planares también pueden usarse con los procedimientos descritos en el presente documento.
Las FIG. 1A a 4B muestran diversas vistas de una tira reactiva a modo de ejemplo 62 adecuada para su uso con los procedimientos y sistemas descritos en el presente documento. En una realización a modo de ejemplo se proporciona una tira reactiva 62 que incluye un cuerpo alargado que se extiende de un extremo distal 80 a un extremo proximal 82, y que tiene bordes laterales 56, 58, como se ilustra en la FIG. 1A. Como se muestra en la FIG. 1B, la tira reactiva 62 también incluye una primera capa de electrodo 66, una segunda capa de electrodo 64 y un separador 60 emparedado entre las dos capas de electrodos 64 y 66. La primera capa de electrodo 66 puede incluir un primer electrodo 166, una primera vía de conexión 76 y una primera almohadilla de contacto 67, en la que la primera vía de conexión 76 conecta eléctricamente el primer electrodo 166 con la primera almohadilla de contacto 67, como se muestra en las FIG. 1B y 4B. Obsérvese que el primer electrodo 166 es una porción de la primera capa de electrodo 66 que está inmediatamente debajo de la capa de reactivo 72, como se indica por las FIG. 1B y 4B. Similarmente, la segunda capa de electrodo 64 puede incluir un segundo electrodo 164, una segunda vía de conexión 78 y una segunda almohadilla de contacto 63, en la que la segunda vía de conexión 78 conecta eléctricamente el segundo electrodo 164 con la segunda almohadilla de contacto 63, como se muestra en las FIG. 1B, 2 y 4B. Obsérvese que el segundo electrodo 164 es una porción de la segunda capa de electrodo 64 que está por encima de la capa de reactivo 72, como se indica por la FIG. 4B.
Como se muestra, la cámara receptora de muestra 61 se define por el primer electrodo 166, el segundo electrodo 164 y el separador 60 próximo al extremo distal 80 de la tira reactiva 62, como se muestra en la FIG. 1B y 4B. El primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164 pueden definir la parte inferior y la parte superior de la cámara receptora de muestra 61, respectivamente, como se ilustra en la FIG. 4B. Un área de corte 68 del separador 60 puede definir las paredes laterales de la cámara receptora de muestra 61, como se ilustra en la FIG. 4B. En un aspecto, la cámara receptora de muestra 61 puede incluir puertos 70 que proporcionan una entrada de muestra y/o una ventilación, como se muestra en las FIG. 1A a 1C. Por ejemplo, uno de los puertos puede permitir que una
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muestra de fluido entre y el otro puerto puede permitir que salga aire.
En una realización a modo de ejemplo, la cámara receptora de muestra 61 puede tener un volumen pequeño. Por ejemplo, la cámara 61 puede tener un volumen en el intervalo de aproximadamente 0,1 microlitros a aproximadamente 5 microlitros, aproximadamente 0,2 microlitros a aproximadamente 3 microlitros, o, preferentemente, aproximadamente 0,3 microlitros a aproximadamente 1 microlitro. Para proporcionar el pequeño volumen de muestra, el corte 68 puede tener un área que oscila de aproximadamente 0,01 cm2 a aproximadamente 0,2 cm2, aproximadamente 0,02 cm2 a aproximadamente 0,15 cm2, o, preferentemente, aproximadamente 0,03 cm2 a aproximadamente 0,08 cm2. Además, el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164 pueden estar separados en el intervalo de aproximadamente 1 micrómetro a aproximadamente 500 micrómetros, preferentemente entre aproximadamente 10 micrómetros y aproximadamente 400 micrómetros, y más preferentemente entre aproximadamente 40 micrómetros y aproximadamente 200 micrómetros. La separación relativamente estrecha de los electrodos también puede permitir que se produzca ciclo rédox, en el que el mediador oxidado generado en el primer electrodo 166 puede difundir al segundo electrodo 164 para que se reduzca, y posteriormente difundir de nuevo al primer electrodo 166 para oxidarse de nuevo. Aquellos expertos en la técnica apreciarán que varios volúmenes, áreas y/o separación de los electrodos están dentro del espíritu y alcance de la presente divulgación.
En una realización, la primera capa de electrodo 66 y la segunda capa de electrodo 64 pueden ser un material conductor formado de materiales tales como oro, paladio, carbono, plata, platino, óxido de estaño, iridio, indio o combinaciones de los mismos (por ejemplo, óxido de estaño dopado con indio). Además, los electrodos pueden formarse disponiendo un material conductor sobre una hoja aislante (no mostrada) por un procedimiento de pulverización iónica, chapado sin corriente o estampado serigráfico. En una realización a modo de ejemplo, la primera capa de electrodo 66 y la segunda capa de electrodo 64 pueden hacerse de paladio pulverizado iónicamente y oro pulverizado iónicamente, respectivamente. Materiales adecuados que pueden emplearse como separador 60 incluyen una variedad de materiales aislantes, tales como, por ejemplo, plásticos (por ejemplo, pEt, PETG, poliimida, policarbonato, poliestireno), silicona, cerámica, vidrio, adhesivos y combinaciones de los mismos. En una realización, el separador 60 puede estar en forma de un adhesivo de doble cara recubierto sobre caras opuestas de una hoja de poliéster en la que el adhesivo puede ser sensible a la presión o activado por calor. Aquellos expertos en la materia apreciarán que diversos otros materiales para la primera capa de electrodo 66, la segunda capa de electrodo 64 y/o el separador 60 están dentro del espíritu y alcance de la presente divulgación.
Pueden utilizarse diversos mecanismos y/o procedimientos para disponer una capa de reactivo 72 dentro de la cámara receptora de muestra 61. Por ejemplo, la capa de reactivo 72 puede disponerse dentro de la cámara receptora de muestra 61 usando un procedimiento tal como recubrimiento por ranura, dispensando del extremo de un tubo, inyectando tinta y estampando serigráficamente. En una realización, la capa de reactivo 72 puede incluir al menos un mediador y una enzima y se deposita sobre el primer electrodo 166. Ejemplos de mediadores adecuados incluyen ferricianuro, ferroceno, derivados de ferroceno, complejos de osmio-bipiridilo y derivados de quinona. Ejemplos de enzimas adecuadas incluyen glucosa oxidasa, glucosa deshidrogenasa (GDH) usando un co-factor de pirroloquinolina quinona (PQQ), GDH usando un co-factor de nicotinamida adenina dinucleótido (NAD) y GDH usando un co-factor de flavina adenina dinucleótido (FAD) [E.C.1.1.99.10]. La capa de reactivo 72 puede prepararse a partir de una formulación que contiene citraconato de potasio 33 mM, pH 6,8, 0,033 % de Pluronic P103, 0,017 % de Pluronic F87, CaCl2 0,85 mM, sacarosa 30 mM, PQQ 286 pM, 15 mg/ml de apo-GDH y ferricianuro 0,6 M. Alternativamente, la PQQ puede dejarse fuera de la formulación y la apo-GDH puede sustituirse con FAD-GDH. Pluronics son un copolímero de bloques basado en óxido de etileno y óxido de propileno que puede servir de agentes antiespumantes y/o agentes humectantes.
La formulación puede aplicarse a 570 pl/min usando una aguja de 13 de calibre en equilibrio aproximadamente 150 pm por encima de una banda de paladio que se mueve a aproximadamente 10 m/min. Alternativamente, la concentración de los sólidos en el reactivo puede aumentarse el 50 % y la velocidad de flujo puede reducirse a 380 pl/min con el fin de mantener una densidad de recubrimiento de reactivo constante. Antes de recubrir la banda de paladio con la formulación de enzima puede recubrirse con ácido 2-mercaptoetanosulfónico (MESA). Un separador de 95 pm de espesor con un corte de canal de 1,2 mm de ancho puede laminarse a la capa de reactivo y la banda de paladio a 70 °C. A continuación, una banda de oro recubierta con MESA puede laminarse a la otra cara del separador. El separador puede prepararse a partir de PET recubierto en ambas caras con un termoplástico tal como Vitel, que es una resina de copoliéster saturada lineal que tiene un peso molecular relativamente alto. El laminado resultante puede cortarse de forma que la vía de llenado de la cámara receptora de muestra tenga aproximadamente 3,5 mm de largo, dando así un volumen total de aproximadamente 0,4 pl.
En una realización, la capa de reactivo 72 puede tener un área mayor que el área de los primeros electrodos 166. Como resultado, una porción del separador 60 puede solapar y tocar la capa de reactivo 72. El separador 60 puede configurarse para formar una junta impermeable al líquido con el primer electrodo 166 aún cuando una porción de la capa de reactivo 72 esté entre el separador 60 y el primer electrodo 166. El separador 60 puede entremezclarse o disolver parcialmente una porción de la capa de reactivo 72 para formar una unión impermeable al líquido con el primer electrodo 166 suficiente para definir el área del electrodo durante al menos el tiempo de prueba total. En ciertas circunstancias en las que la capa de reactivo 72 no está suficientemente seca, el
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separador 60 puede no ser capaz de formar una junta impermeable al líquido y, como resultado, el líquido puede filtrarse entre el separador 60 y el primer electrodo 166. Un evento de fuga tal puede hacer que se produzca una medición de glucosa inexacta.
Tanto el primer electrodo 166 como el segundo electrodo 164 pueden realizar la función de un electrodo de trabajo dependiendo de la magnitud y/o polaridad del voltaje de prueba aplicado. El electrodo de trabajo puede medir una corriente de prueba limitante que es proporcional a la concentración de mediador reducido. Por ejemplo, si la especie limitante del voltaje es un mediador reducido (por ejemplo, ferrocianuro), entonces puede oxidarse en el primer electrodo 166 mientras que el voltaje de prueba sea suficientemente superior al potencial del mediador rédox con respecto al segundo electrodo 164. En una situación tal, el primer electrodo 166 realiza la función del electrodo de trabajo y el segundo electrodo 164 realiza la función de un contraelectrodo/electrodo de referencia. Obsérvese que un experto en la materia puede referirse a un contraelectrodo/electrodo de referencia simplemente como un electrodo de referencia o un contraelectrodo. Se produce una oxidación limitante cuando todo el mediador reducido se ha agotado en la superficie del electrodo de trabajo de forma que la corriente de oxidación medida es proporcional al flujo de mediador reducido que difunde de la disolución en masa hacia la superficie del electrodo de trabajo. El término disolución en masa se refiere a una porción de la disolución suficientemente alejada del electrodo de trabajo en la que el mediador reducido no está localizado dentro de una zona de agotamiento. Debe observarse que, a menos que se establezca de otro modo para la tira reactiva 62, todos los potenciales aplicados por el medidor de prueba 100 se establecerán en lo sucesivo con respecto al segundo electrodo 164.
Similarmente, si el voltaje de prueba es suficientemente inferior al potencial del mediador rédox, entonces el mediador reducido puede oxidarse en el segundo electrodo 164 como corriente limitante. En una situación tal, el segundo electrodo 164 realiza la función del electrodo de trabajo y el primer electrodo 166 realiza la función del contraelectrodo/electrodo de referencia.
Inicialmente, el realizar un análisis puede incluir introducir una cantidad de una muestra fluida en una cámara receptora de muestra 61 mediante un puerto 70. En un aspecto, el puerto 70 y/o la cámara receptora de muestra 61 pueden configurarse de forma que la acción capilar haga que la muestra fluida llene la cámara receptora de muestra 61. El primer electrodo 166 y/o segundo electrodo 164 pueden recubrirse con un reactivo hidrófilo para promover la capilaridad de la cámara receptora de muestra 61. Por ejemplo, reactivos derivatizados con tiol que tienen un resto hidrófilo tal como ácido 2-mercaptoetanosulfónico pueden recubrirse sobre el primer electrodo y/o el segundo electrodo.
La FIG. 5 proporciona un esquema simplificado que muestra un medidor de prueba 100 que se conecta con una primera almohadilla de contacto 67a, 67b y una segunda almohadilla de contacto 63. La segunda almohadilla de contacto 63 puede usarse para establecer una conexión eléctrica con el medidor de prueba mediante una muesca en forma de U 65, como se ilustra en la FIG. 2. En una realización, el medidor de prueba 100 puede incluir un segundo conector de electrodo 101 y primeros conectores de electrodos (102a, 102b), una unidad de voltaje de prueba 106, una unidad de medición de corriente 107, un procesador 212, una unidad de memoria 210 y una unidad de visualización 202, como se muestra en la FIG. 5. La primera almohadilla de contacto 67 puede incluir dos dientes indicados como 67a y 67b. En una realización a modo de ejemplo, los primeros conectores de electrodos 102a y 102b se conectan por separado a los dientes 67a y 67b, respectivamente. El segundo conector de electrodo 101 puede conectarse a la segunda almohadilla de contacto 63. El medidor de prueba 100 puede medir la resistencia o continuidad eléctrica entre los dientes 67a y 67b para determinar si la tira reactiva 62 está eléctricamente conectada o no al medidor de prueba 100. Un experto en la materia apreciará que el medidor de prueba 100 puede usar una variedad de sensores y circuitos para determinar cuándo la tira reactiva 62 está apropiadamente colocada con respecto al medidor de prueba 100.
En una realización, el medidor de prueba 100 puede aplicar un voltaje de prueba y/o una corriente entre la primera almohadilla de contacto 67 y la segunda almohadilla de contacto 63. Una vez el medidor de prueba 100 reconoce que la tira 62 se ha insertado, el medidor de prueba 100 se enciende e inicia un modo de detección de fluido. En una realización, el modo de detección de fluido hace que el medidor de prueba 100 aplique una corriente constante de aproximadamente 1 microamperio entre el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164. Debido a que la tira reactiva 62 está inicialmente seca, el medidor de prueba 100 mide un voltaje relativamente grande, que puede limitarse por el conversor analógico a digital (A/D) dentro del medidor de prueba 100. Cuando la muestra de fluido conecta el hueco entre el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164 durante el procedimiento de dosificación, el medidor de prueba 100 medirá una disminución en el voltaje medido que es inferior a un umbral predeterminado que hace que el medidor de prueba 100 inicie automáticamente la prueba de glucosa.
En una realización, el medidor de prueba 100 puede realizar una prueba de glucosa aplicando una pluralidad de voltajes de prueba durante intervalos indicados, como se muestra en la FIG. 6. La pluralidad de voltajes de prueba puede incluir un primer voltaje de prueba Vi durante un primer intervalo de tiempo ti, un segundo voltaje de prueba V2 durante un segundo intervalo de tiempo t2 y un tercer voltaje de prueba V3 durante un tercer intervalo de tiempo t3. Un intervalo de tiempo de prueba de glucosa tG representa una cantidad de tiempo para realizar la prueba de glucosa (pero no necesariamente todos los cálculos asociados a la prueba de glucosa). El intervalo de
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tiempo de prueba de glucosa tG puede oscilar de aproximadamente 1 segundo a aproximadamente 5 segundos. Además, como se ilustra en la FIG. 6, el segundo voltaje de prueba V2 puede incluir un componente de voltaje de prueba constante (CC) y un componente de voltaje de prueba alterno superpuesto (CA), u oscilante. El componente de voltaje de prueba alterno superpuesto puede aplicarse durante un intervalo de tiempo indicado por tcap. El recuadro de la FIG. 6 aumenta el componente de CA de alta frecuencia.
La pluralidad de valores de corriente de prueba medidos durante cualquiera de los intervalos de tiempo puede realizarse a una frecuencia que oscila de aproximadamente 1 medición por nanosegundo a aproximadamente una medición por 100 milisegundos. Aunque se describe una realización usando tres voltajes de prueba en un modo en serie, un experto en la materia apreciará que la prueba de glucosa puede incluir diferentes números de voltajes de circuito abierto y de prueba. Por ejemplo, como realización alternativa, la prueba de glucosa podría incluir un circuito abierto durante un primer intervalo de tiempo, un segundo voltaje de prueba durante un segundo intervalo de tiempo y un tercer voltaje de prueba durante un tercer intervalo de tiempo. Un experto en la materia apreciará que los nombres “primero”, “segundo” y “tercero” se eligen por comodidad y no reflejan necesariamente el orden en el que se aplican los voltajes de prueba. Por ejemplo, una realización puede tener una forma de onda de potencial en la que el tercer voltaje de prueba puede aplicarse antes de la aplicación del primer y segundo voltaje de prueba.
Una vez se ha iniciado el ensayo de glucosa, el medidor de prueba 100 puede aplicar un primer voltaje de prueba Vi (por ejemplo, -20 mV en la FIG. 6) durante un primer intervalo de tiempo ti (por ejemplo, 1 segundo en la FIG. 6). El primer intervalo de tiempo ti puede oscilar de aproximadamente 0,1 segundos a aproximadamente 3 segundos y preferentemente oscila de aproximadamente 0,2 segundos a aproximadamente 2 segundos, y lo más preferentemente oscila de aproximadamente 0,3 segundos a aproximadamente 1 segundo.
El primer intervalo de tiempo ti puede ser suficientemente largo de manera que la cámara receptora de muestra 61 pueda llenarse completamente con muestra y también de manera que la capa de reactivo 72 pueda al menos parcialmente disolverse o solvatarse. En un aspecto, el primer voltaje de prueba Vi puede ser un valor relativamente próximo al potencial rédox del mediador de manera que se mide una cantidad relativamente pequeña de una corriente de reducción u oxidación. La FIG. 7 muestra que una cantidad relativamente pequeña de corriente se observa durante el primer intervalo de tiempo ti en comparación con el segundo y tercer intervalos de tiempo t2 y t3. Por ejemplo, si se usa ferricianuro y/o ferrocianuro como mediador, el primer voltaje de prueba Vi puede oscilar de aproximadamente -100 mV a aproximadamente -1 mV, preferentemente oscila de aproximadamente -50 mV a aproximadamente -5 mV, y lo más preferentemente oscila de aproximadamente -30 mV a aproximadamente -10 mV.
Después de aplicar el primer voltaje de prueba Vi, el medidor de prueba 100 aplica un segundo voltaje de prueba V2 entre el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164 (por ejemplo, -0,3 voltios en la FIG. 6), durante un segundo intervalo de tiempo t2 (por ejemplo, aproximadamente 3 segundos en la FIG. 6). El segundo voltaje de prueba V2 puede ser un valor suficientemente negativo del potencial rédox del mediador de manera que se mide una corriente de oxidación limitante en el segundo electrodo 164. Por ejemplo, si se usa ferricianuro y/o ferrocianuro como mediador, el segundo voltaje de prueba V2 puede oscilar de aproximadamente -600 mV a aproximadamente cero mV, preferentemente oscila de aproximadamente -600 mV a aproximadamente -100 mV, y más preferentemente es aproximadamente -300 mV.
El segundo intervalo de tiempo t2 debe ser suficientemente largo de manera que la tasa de generación de mediador reducido (por ejemplo, ferrocianuro) pueda monitorizarse basándose en la magnitud de una corriente de oxidación limitante. El mediador reducido se genera por reacciones enzimáticas con la capa de reactivo 72. Durante el segundo intervalo de tiempo t2, una cantidad limitante de mediador reducido se oxida en el segundo electrodo 164 y una cantidad no limitante de mediador oxidado se reduce en el primer electrodo 166 para formar un gradiente de concentración entre el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164.
En una realización a modo de ejemplo, el segundo intervalo de tiempo t2 debe también ser suficientemente largo de manera que pueda generarse una cantidad suficiente de ferricianuro en el segundo electrodo 164. Se requiere una cantidad suficiente de ferricianuro en el segundo electrodo 164 de manera que una corriente limitante pueda medirse para oxidar ferrocianuro en el primer electrodo 166 durante el tercer voltaje de prueba V3. El segundo intervalo de tiempo t2 puede ser inferior a aproximadamente 60 segundos, y preferentemente puede oscilar de aproximadamente 1 segundo a aproximadamente 10 segundos, y más preferentemente oscila de aproximadamente 2 segundos a aproximadamente 5 segundos. Asimismo, el intervalo de tiempo indicado como tcap en la FIG. 6 puede también durar más de un intervalo de tiempos, pero en una realización a modo de ejemplo tiene una duración de aproximadamente 20 milisegundos. En una realización a modo de ejemplo, el componente de voltaje de prueba alterno superpuesto se aplica después de aproximadamente 0,3 segundos a aproximadamente 0,4 segundos después de la aplicación del segundo voltaje de prueba V2, e induce una onda sinusoidal que tiene una frecuencia de aproximadamente 109 Hz con una amplitud de aproximadamente +/- 50 mV.
La FIG. 7 muestra un pico relativamente pequeño ipb al principio del segundo intervalo de tiempo t2 seguido de un aumento gradual de un valor absoluto de una corriente de oxidación durante el segundo intervalo de tiempo t2. El pico pequeño ipb se produce debido a un agotamiento inicial de mediador reducido en aproximadamente 1
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segundo. El aumento absoluto gradual en la corriente de oxidación después del pico pequeño ipb se produce por la generación de ferrocianuro por la capa de reactivo 72, que luego difunde al segundo electrodo 164.
Después de aplicar el segundo voltaje de prueba V2, el medidor de prueba 100 aplica un tercer voltaje de prueba V3 entre el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164 (por ejemplo, aproximadamente +0,3 voltios en la FIG. 6) durante un tercer intervalo de tiempo t3 (por ejemplo, 1 segundo en la FIG. 6). El tercer voltaje de prueba V3 puede ser un valor suficientemente positivo del potencial rédox del mediador de manera que se mide una corriente de oxidación limitante en el primer electrodo 166. Por ejemplo, si se usa ferricianuro y/o ferrocianuro como mediador, el tercer voltaje de prueba V3 puede oscilar de aproximadamente cero mV a aproximadamente 600 mV, preferentemente oscila de aproximadamente 100 mV a aproximadamente 600 mV, y más preferentemente es aproximadamente 300 mV.
El tercer intervalo de tiempo t3 puede ser suficientemente largo para monitorizar la difusión del mediador reducido (por ejemplo, ferrocianuro) próxima al primer electrodo 166 basándose en la magnitud de la corriente de oxidación. Durante el tercer intervalo de tiempo t3, una cantidad limitante de mediador reducido se oxida en el primer electrodo 166 y una cantidad no limitante de mediador oxidado se reduce en el segundo electrodo 164. El tercer intervalo de tiempo t3 puede oscilar de aproximadamente 0,1 segundos a aproximadamente 5 segundos y preferentemente oscila de aproximadamente 0,3 segundos a aproximadamente 3 segundos, y más preferentemente oscila de aproximadamente 0,5 segundos a aproximadamente 2 segundos.
La FIG. 7 muestra un pico relativamente grande ipc al principio del tercer intervalo de tiempo t3 seguido de una disminución a un valor de corriente en estado estacionario iss. En una realización, el segundo voltaje de prueba V2 puede tener una primera polaridad y el tercer voltaje de prueba V3 puede tener una segunda polaridad que es opuesta a la primera polaridad. En otra realización, el segundo voltaje de prueba V2 puede ser suficientemente negativo del potencial rédox del mediador y el tercer voltaje de prueba V3 puede ser suficientemente positivo del potencial rédox del mediador. El tercer voltaje de prueba V3 puede aplicarse inmediatamente después del segundo voltaje de prueba V2. Sin embargo, un experto en la materia apreciará que la magnitud y polaridad del segundo y tercer voltajes de prueba pueden elegirse dependiendo del modo en el que se determina la concentración de analito.
La FIG. 8 ilustra un procedimiento de determinación de una concentración de glucosa a modo de un diagrama de flujo. Un usuario puede insertar una tira reactiva en un medidor de prueba y luego aplicar una muestra a la tira reactiva. El medidor de prueba detecta la presencia de la muestra y aplica una voltaje de prueba, como se muestra en una etapa 1802. En respuesta al voltaje de prueba, el medidor de prueba mide una corriente de prueba, como se muestra en una etapa 1804. Un microprocesador del medidor de prueba puede entonces procesar los valores de la corriente de prueba resultantes de manera que pueda determinarse una medición de glucosa exacta y para garantizar que no haya errores del sistema.
Otra etapa en el procedimiento, como se muestra en la etapa 1806, puede ser realizar una prueba de discriminación de disolución de control (DC)/sangre. Como se indica en la etapa 1808, si la prueba de discriminación de DC/sangre determina que la muestra es sangre, entonces el procedimiento 1800 se mueve a una serie de etapas que incluyen: la aplicación de un algoritmo de glucosa en sangre 1810, corrección de hematocrito 1812, corrección de la temperatura de la sangre 1814 y comprobaciones de errores 1000; y si la prueba de discriminación de DC/sangre determina que la muestra es DC (es decir, no sangre), entonces el procedimiento 1800 se mueve a una serie de etapas que incluyen: la aplicación de un algoritmo de DC-glucosa 1824, corrección de la temperatura de DC 1826 y comprobaciones de errores 1000. Después de realizar las comprobaciones de errores 1000, la etapa 1818 puede realizarse para determinar si hay algún error. Si no hay errores, entonces el medidor de prueba genera una concentración de glucosa, como se muestra en una etapa 1820, pero si hay errores, entonces la prueba genera un mensaje de error, como se muestra en una etapa 1822.
Prueba de discriminación de disolución de control (DC)/sangre
La prueba de discriminación de DC/sangre 1806 puede incluir un primer valor de referencia y un segundo valor de referencia. El primer valor de referencia puede basarse en valores de corriente durante el primer intervalo de tiempo ti y el segundo valor de referencia puede basarse en valores de corriente durante tanto el segundo intervalo de tiempo t2 como el tercer intervalo de tiempo t3. En una realización, el primer valor de referencia puede obtenerse realizando una suma de los valores de corriente obtenidos durante el primer tiempo de corriente transitoria si se usa la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6. A modo de ejemplo no limitante, un primer valor de referencia isum puede representarse por la Ecuación 1:
Ec. 1
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en la que el término isum es la suma de los valores de corriente y t es un tiempo. El segundo valor de referencia,
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algunas veces denominado el índice de reacción residual, puede obtenerse por una séptima relación R7 de valores de corriente durante el segundo intervalo de tiempo y el tercer intervalo de tiempo, como se muestra en la Ec. 2:
Ec. 2
imagen2
/
= abs
\
Mi
¡(4.15) J
en la que abs representa una función absoluta y 3,8 y 4,15 representan el tiempo en segundos del segundo y tercer intervalos de tiempo, respectivamente, para este ejemplo particular. Puede usarse un criterio de discriminación para determinar si la muestra es tanto disolución de control como sangre basándose en el primer valor de referencia de la Ec. 1 y la segunda referencia de la Ec. 2. Por ejemplo, el primer valor de referencia de la Ec. 1 puede compararse con un umbral predeterminado y el segundo valor de referencia de la Ec. 2 puede compararse con una ecuación de umbral predeterminado. El umbral predeterminado puede ser aproximadamente 12 microamperios. La ecuación de umbral predeterminado puede basarse en una función usando el primer valor de referencia de la Ec. 1. Más específicamente, como se ilustra por la Ec. 3, la ecuación de umbral predeterminado puede ser:
Ec-3 ^*0™» 12)
en la que Z1 puede ser una constante tal como, por ejemplo, aproximadamente 0,2. Así, la prueba de discriminación de DC/sangre 1806 puede identificar una muestra como sangre si
¡_>12
y si
r7 <
Z, *(>•„,-12)
si no, la muestra es una disolución de control.
Algoritmo de glucosa en sangre
Si la muestra se identifica como una muestra de sangre, el algoritmo de glucosa en sangre de la etapa 1810 puede realizarse en los valores de la corriente de prueba. Una primera concentración de glucosa Gi puede calcularse usando un algoritmo de glucosa como se muestra en la Ecuación 4:
Ec. 4
imagen3
en la que ii es un primer valor de corriente de prueba, Í2 es un segundo valor de corriente de prueba, Í3 es un tercer valor de corriente de prueba, y los términos a, p y z pueden ser constantes de calibración empíricamente derivadas. Todos los valores de corriente de prueba (por ejemplo, ii, Í2 e Í3) en la Ecuación 4 usan el valor absoluto de la corriente. El primer valor de corriente de prueba ii y el segundo valor de corriente de prueba Í2 pueden cada uno definirse por un promedio o suma de uno o más valores de corriente de prueba predeterminados que se producen durante el tercer intervalo de tiempo t3. El tercer valor de corriente de prueba Í3 puede definirse por un promedio o suma de uno o más valores de corriente de prueba predeterminados que se producen durante el segundo intervalo de tiempo t2. Un experto en la materia apreciará que los nombres “primero”, “segundo” y “tercero” se eligen por comodidad y no reflejan necesariamente el orden en el que los valores de corriente se calculan.
La Ecuación 4 puede modificarse para proporcionar una concentración de glucosa incluso más exacta. En lugar de usar un simple promedio o suma de valores de corriente de prueba, puede definirse que el término ii incluye valores de corriente pico ipb e ipc y la corriente en estado estacionario iss, como se muestra en la Ecuación 5:
Ec. 5
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en la que un cálculo de la corriente en estado estacionario iss puede basarse en un modelo matemático, una extrapolación, un promedio en un intervalo de tiempo predeterminado, una combinación de los mismos, o cualquier número de otras formas para calcular una corriente en estado estacionario. Algunos ejemplos de procedimientos para calcular iss pueden encontrarse en las patentes de EE.UU. n° 5.942.402 y 6.413.410, cada una de las cuales se incorpora por la presente por referencia en su totalidad.
Alternativamente, iss puede estimarse multiplicando el valor de corriente de prueba a 5 segundos con una constante K8 (por ejemplo, 0,678). Así, iss- i(5) x K8). El término K8 puede estimarse usando la Ecuación 6:
Ec. 6
imagen5
en la que el número 0,975 es aproximadamente el tiempo en segundos después de aplicar el tercer voltaje de prueba V3 que se corresponde con i(5) que, suponiendo una variación lineal con el tiempo entre aproximadamente 0,95 segundos y 1 segundo, es la corriente promedio entre 0,95 y 1 segundo, el término D se supone que es aproximadamente 5 x 10-6 cm2/s como coeficiente de difusión típico en sangre y el término L se supone que es aproximadamente 0,0095 cm, que representa la altura del separador 60.
Volviendo de nuevo a la Ec. 5, ipc puede ser el valor de corriente de prueba a 4,1 segundos, e ipb puede ser el valor de corriente de prueba a 1,1 segundos, basándose en el voltaje de prueba y las formas de onda de la corriente de prueba en las FIG. 6 y 7.
Volviendo de nuevo a la Ec. 4, i2 puede definirse como
h = ¿i(0
1=4.4
e i3 puede definirse como
Í3 = EÍW‘
t=1.4
La Ecuación 5 puede combinarse con la Ecuación 4 para dar una ecuación para determinar una concentración de glucosa más exacta que pueda compensar la presencia de interferentes endógenos y/o exógenos en una muestra de sangre, como se muestra en la Ecuación 7:
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Ec. 7
en la que la primera concentración de glucosa Gi es la salida del algoritmo de glucosa en sangre y los términos a, p y z son constantes que pueden derivarse empíricamente.
Algoritmo de DC-glucosa
Si la muestra se identifica como una DC, el algoritmo de DC-glucosa de la etapa 1824 puede realizarse en los valores de la corriente de prueba. Una primera concentración de glucosa Gi para DC puede calcularse usando la Ecuación 7 anterior, aunque los valores para a, p y z para DC pueden ser diferentes de aquellos para sangre.
Detección de analitos en niveles de hematocrito extremos:
Además de interferentes endógenos, niveles de hematocrito extremos en ciertas circunstancias pueden afectar la exactitud de una medida de glucosa. Así, la corrección de hematocrito 1812 puede aplicarse modificando Gi para proporcionar una segunda concentración de glucosa G2 que es exacta incluso si la muestra tiene un nivel de hematocrito extremo (por ejemplo, aproximadamente el 20 % o aproximadamente el 60 %).
Procedimientos y sistemas de medir con exactitud las concentraciones de glucosa en muestras de hematocrito extremo se proporcionan en el presente documento. Por ejemplo, la FIG. 9 es un diagrama de flujo que representa un procedimiento 2000 de cálculo de una concentración de glucosa exacta que representa muestras de sangre que tienen un nivel de hematocrito extremo. Un usuario puede iniciar una prueba aplicando una muestra a la tira reactiva, como se muestra en una etapa 2001. Un primer voltaje de prueba Vi puede aplicarse durante un primer intervalo de tiempo ti, como se muestra en una etapa 2002. La corriente de prueba resultante se mide entonces durante el primer intervalo de tiempo ti, como se muestra en una etapa 2004. Después del primer intervalo de tiempo ti, el segundo voltaje de prueba V2 se aplica durante un segundo intervalo de tiempo t2, como se muestra en una etapa 2006. La corriente de prueba resultante se mide entonces durante el segundo intervalo de tiempo t2, como se muestra en una etapa 2008. Después del segundo intervalo de tiempo t2, el tercer voltaje de prueba V3 se aplica durante un tercer intervalo de tiempo t3, como se muestra en una etapa 2010. La corriente de prueba resultante se mide entonces durante el tercer intervalo de tiempo t3, como se muestra en una etapa 2012.
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Ahora que los valores de corriente de prueba se han recogido por un medidor, puede calcularse una primera concentración de glucosa Gi, como se muestra en una etapa 2014. La primera concentración de glucosa Gi puede calcularse usando las Ecuaciones 4 ó 7. A continuación puede calcularse un nivel de hematocrito H, como se muestra en una etapa 2016.
El nivel de hematocrito puede estimarse usando valores de corriente de prueba adquiridos durante el intervalo de tiempo de la prueba de glucosa tG. Alternativamente, el nivel de hematocrito H puede estimarse usando valores de corriente de prueba adquiridos durante el segundo intervalo de tiempo t2 y el tercer intervalo de tiempo t3. En una realización, el nivel de hematocrito H puede estimarse usando una ecuación de hematocrito basada en la primera concentración de glucosa Gi e Í2. Una ecuación de hematocrito a modo de ejemplo se muestra en la Ecuación 8:
ec.8 H = ln(|Í2|) + Kg Jn(Gj) + K?
en la que H es el nivel de hematocrito, i2 es al menos un valor de corriente durante el segundo intervalo de tiempo, K5 es una quinta constante, K6 es una sexta constante y K7 es una séptima constante. Si GDH-PQQ es la enzima, K5, K6 y K7 pueden ser aproximadamente -76, 56 y 250, respectivamente. Si FAD-GDH es la enzima, K5, K6 y K7 pueden ser aproximadamente -73,5, 58,8 y 213, respectivamente. La FIG. 10 muestra que los niveles de hematocrito estimados usando la Ecuación 8 tienen una correlación aproximadamente lineal con los niveles de hematocrito reales medidos con un procedimiento de referencia.
Una vez el nivel de hematocrito H se ha calculado en la etapa 2016, se compara con un nivel de hematocrito predeterminado inferior Hl, como se muestra en una etapa 2018. El nivel de hematocrito predeterminado inferior Hl puede ser aproximadamente el 30 %. Si el nivel de hematocrito H es inferior al nivel de hematocrito predeterminado inferior HL, entonces la primera concentración de glucosa Gi se compara con una concentración de glucosa predeterminada superior Gu, como se muestra en una etapa 2020. La concentración de glucosa predeterminada superior Gu puede ser aproximadamente 300 mg/dl. Si el nivel de hematocrito H no es inferior al nivel de hematocrito predeterminado inferior Hl, entonces el nivel de hematocrito H se compara con un nivel de hematocrito predeterminado superior Hu, como se muestra en una etapa 2022. El nivel de hematocrito predeterminado superior Hu puede ser aproximadamente el 50 %. Si el nivel de hematocrito H es superior a Hu, entonces la primera concentración de glucosa Gi se compara con una concentración de glucosa predeterminada inferior Gl, como se muestra en una etapa 2028. La concentración de glucosa predeterminada inferior Gl puede ser aproximadamente 100 mg/dl. Las etapas 2018 y 2022 indican que el procedimiento 2000 dará como salida una primera concentración de glucosa Gi, como se muestra en una etapa 2034, si el nivel de hematocrito H no es inferior a Hl y no superior a Hu.
Puede usarse una primera función para calcular un valor de corrección Corr, como se muestra en una etapa 2024, si la primera concentración de glucosa Gi es inferior a la concentración de glucosa predeterminada superior Gu. La primera función puede estar en forma de la Ecuación 9:
Ec. 9
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en la que Ki es una primera constante y HL es el nivel de hematocrito predeterminado inferior. En una realización, Ki y Hl pueden ser aproximadamente -0,004 y aproximadamente el 30 %, respectivamente.
Sin embargo, si la primera concentración de glucosa Gi no es inferior a la concentración de glucosa predeterminada superior Gu, entonces la segunda función puede usarse para calcular el valor de corrección Corr, como se muestra en una etapa 2026. La segunda función puede estar en forma de la Ecuación 10:
Ec. i0
Coít = K2(Hl -H) (G max " G ])
en la que K2 es una segunda constante y Gmáx es una concentración de glucosa máxima predeterminada. En una realización, K2 y Gmáx pueden ser aproximadamente -0,004 y aproximadamente 600 mg/dl, respectivamente. El valor de corrección Corr para las Ecuaciones 9 y 10 puede limitarse a un intervalo de aproximadamente -5 a aproximadamente cero. Así, si Corr es inferior a -5, entonces Corr se fija a -5 y si Corr es mayor que cero, entonces Corr se fija a cero.
Puede usarse una tercera función para calcular un valor de corrección Corr, como se muestra en una etapa 2030, si la primera concentración de glucosa Gi es inferior a la concentración de glucosa predeterminada inferior Gl. La tercera función puede estar en forma de la Ecuación 11:
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Ec-11 Con = 0
sin embargo, si la primera concentración de glucosa Gi no es inferior a la concentración de glucosa predeterminada inferior Gl, entonces la cuarta función puede usarse para calcular el valor de corrección Corr, como se muestra en una etapa 2032. La cuarta función puede estar en forma de la Ecuación 12:
Ec. 12
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en la que K4 es la cuarta constante, que puede ser aproximadamente 0,011. El valor de corrección Corr para la Ecuación 12 puede limitarse a un intervalo de aproximadamente cero a aproximadamente seis. Así, si Corr es inferior a cero, entonces Corr se fija a cero y si Corr es mayor que seis, entonces Corr se fija a seis.
Después de calcular Corr con la primera función en la etapa 2024, la primera concentración de glucosa se compara con 100 mg/dl en una etapa 2036. Si la primera concentración de glucosa es inferior a 100 mg/dl, entonces la segunda concentración de glucosa G2 se calcula usando una primera ecuación de corrección, como se muestra en una etapa 2038. Obsérvese que los 100 mg/dl representan un umbral de glucosa y no deben interpretarse como un número limitante. En una realización, el umbral de glucosa puede oscilar de aproximadamente 70 mg/dl a aproximadamente 100 mg/dl. La primera ecuación de corrección puede estar en forma de la Ecuación 13:
Ec. 13
Si la primera concentración de glucosa Gi no es inferior a 100 mg/dl basándose en la etapa 2036, entonces la segunda concentración de glucosa G2 se calcula usando una segunda ecuación de corrección, como se muestra en una etapa 2040. La segunda ecuación de corrección puede estar en forma de la Ecuación 14:
Ec. 14
Después de calcular la segunda concentración de glucosa G2 en tanto las etapas 2038 como 2040, se genera como una lectura de glucosa en una etapa 2042.
Después de calcular Corr en la etapa 2026, 2030 ó 2032, la segunda concentración de glucosa G2 puede calcularse usando la Ecuación 14, como se muestra en la etapa 2040. Si Corr es igual a cero (como para la tercera función), la segunda concentración de glucosa G2 es igual a la primera concentración de glucosa Gi, que puede entonces generarse como una lectura de glucosa en la etapa 2042.
El procedimiento 2000 para calcular concentraciones de glucosa exactas en muestras de sangre que tienen niveles de hematocrito extremo se verificó usando sangre de varios donantes. La FIG. 11 muestra una representación del sesgo para una pluralidad de tiras reactivas que se probaron con muestras de sangre que tienen un amplio intervalo de niveles de hematocrito y concentraciones de glucosa. Más específicamente, la FIG. 11 muestra el efecto de muestras de sangre completa que tienen un amplio intervalo de hematocrito sobre la exactitud y precisión del nuevo sistema de prueba. Como se muestra, el sesgo de la respuesta del sensor con respecto a YSI 2700 (Yellow Springs Instruments, Yellow Springs, Ohio) se representa contra la concentración de glucosa en plasma. Los datos se obtuvieron con 3 lotes de sensores y 4 donantes de sangre. El hematocrito se ajustó al 20 % (cuadrados), 37-45 % (círculos) o 60 % (triángulos) antes de enriquecer las muestras con glucosa. Estos datos sugieren que la delgada capa de células y el enfoque de tri-pulso para la medición electroquímica ofrecen la oportunidad de rendimiento analítico mejorado con sistemas de prueba de glucosa en sangre. Así, el uso del valor de corrección Corr, que depende del nivel de hematocrito H y la primera concentración de glucosa Gi, permite la determinación de una segunda concentración de glucosa más exacta G2, aunque la muestra de sangre tenga un nivel de hematocrito extremo.
Corrección de la temperatura de la sangre:
Volviendo de nuevo a la FIG. 8, la corrección de la temperatura de la sangre 1814 puede aplicarse a los valores de la corriente de prueba para proporcionar una concentración de glucosa con una exactitud mejorada debido a un efecto reducido de la temperatura. Un procedimiento para calcular una concentración de glucosa corregida con la temperatura puede incluir medir un valor de temperatura y calcular un segundo valor de corrección Corr2. El segundo valor de corrección Corr2 puede basarse en un valor de temperatura y tanto la primera concentración de glucosa G1 como la segunda concentración de glucosa G2, ambas de las cuales como se describen previamente, no incluyen una corrección de la temperatura. Por consiguiente, el segundo valor de
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corrección Corr2 puede entonces usarse para corregir la concentración de glucosa Gi o G2 para temperatura.
La FIG. 12 es un diagrama de flujo que representa una realización del procedimiento 1814 de aplicar una corrección de la temperatura de la sangre. Inicialmente, puede obtenerse una concentración de glucosa sin corregir para la temperatura tal como la primera concentración de glucosa Gi de la etapa 1810 o una segunda concentración de glucosa G2 de la etapa 1812. Aunque una corrección de la temperatura de la sangre puede aplicarse a tanto Gi como G2, por simplicidad la corrección de la temperatura de la sangre se describirá usando G2.
Como se muestra en una etapa 1910 del procedimiento 1814, puede medirse un valor de temperatura. La temperatura puede medirse usando un termistor u otro dispositivo de lectura de la temperatura que se incorpora en un medidor, o a modo de cualquier número de otros mecanismos o medios. Posteriormente, puede realizarse una determinación para determinar si el valor de temperatura T es mayor o no que un primer umbral de temperatura Ti. Como se ilustra en la FIG. 12, el umbral de temperatura Ti es aproximadamente 15 °C. Si el valor de temperatura T es superior a 15 °C, entonces puede aplicarse una primera función de temperatura para determinar el segundo valor de corrección Corr2, como se muestra en una etapa 1914. Si el valor de temperatura T no es superior a 15 °C, entonces puede aplicarse una segunda función de temperatura para determinar el segundo valor de corrección Corr2, como se muestra en una etapa 1916.
La primera función de temperatura para calcular el segundo valor de corrección Corr2 está en forma de la Ecuación 15:
Ec. i5
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en la que Corr2 es el valor de corrección, K9 es una novena constante (por ejemplo, 0,57 para GDH-PQQ y 0,89 para fAD-GDH), T es un valor de temperatura, Trt es un valor de temperatura ambiente (por ejemplo, 22 °C), Kio es una décima constante (por ejemplo, 0,00023 para GDH-PQQ y 0,00077 para FAD-GdH) y G2 es la segunda concentración de glucosa. Si T es aproximadamente igual a TRt, Corr2 es aproximadamente cero. En algunos casos, la primera función de temperatura puede configurarse para no tener esencialmente corrección a temperatura ambiente de forma que la variación pueda reducirse bajo condiciones ambiente rutinarias. La segunda función de temperatura para calcular el segundo valor de corrección Corr2 está en forma de la Ecuación 16:
'6 C01T2 = -K,i(T - Trt) + K]2 x Gj(T - Trt) - K13 x G2(T -
Ti) + KhxG2(T-T,)
en la que Corr2 es el valor de corrección, Kii es una undécima constante (por ejemplo, 0,57 para GDH-PQQ y 0,89 para FAD-GDH), T es un valor de temperatura, Trt es un valor de temperatura ambiente, Ki2 es una duodécima constante (por ejemplo, 0,00023 para GDH-PQQ y 0,00077 para FAD-GDH), Gi es una primera concentración de glucosa, Ki3 es una decimotercera constante (por ejemplo, 0,63 para GDH-PQQ y 1,65 para FAD-GDH),Ti es un primer umbral de temperatura y Ki4 es una decimocuarta constante (por ejemplo, 0,0038 para GDH-PQQ y 0,0029 para FAD-GDH).
Después de calcular Corr2 usando tanto la etapa 1914 como 1916, pueden realizarse un par de funciones de truncamiento para garantizar que Corr2 esté limitado a un intervalo predeterminado, mitigando así el riesgo de un valor atípico. En una realización, Corr2 puede limitarse a tener un intervalo de -10 a +10 usando una etapa 1918 y/o una etapa 1922. En la etapa 1918 puede realizarse una determinación para determinar si Corr2 es mayor o no que 10. Si Corr2 es mayor que 10, Corr2 se fija a 10, como se muestra en una etapa 1920. Si Corr2 no es superior a 10, entonces se realiza una determinación para determinar si Corr2 es inferior o no a -10, como se muestra en una etapa 1922. Corr2 puede fijarse a -10 si Corr2 es inferior a -10, como se muestra en una etapa 1924. Si Corr2 es un valor ya en entre -10 y +10, entonces generalmente no hay necesidad de truncamiento.
Una vez se determina Corr2, una concentración de glucosa corregida con la temperatura puede calcularse usando tanto una etapa 1928 como una etapa 1930. En una etapa 1926 puede realizarse una determinación para determinar si la concentración de glucosa sin corregir para la temperatura (por ejemplo, G2) es inferior o no a 100 mg/dl. Si G2 es inferior a 100 mg/dl, entonces puede usarse una Ecuación 17 para calcular la concentración de glucosa corregida con la temperatura G3 añadiendo el valor de corrección Corr2 a la segunda concentración de glucosa G2:
Ec. 17 G3 = G2+ C0JT2.
Si G2 no es inferior a 100 mg/dl, entonces puede usarse una Ecuación 18 para calcular la concentración de glucosa corregida con la temperatura G3 dividiendo Corr2 entre cien, añadiendo uno; y luego multiplicando por la segunda concentración de glucosa G2:
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Ec. 18 =63^^12- [± H=-OvO I-X-G0IT2 ]
Una vez se ha determinado una tercera concentración de glucosa que se ha corregido para los efectos de temperatura, la tercera concentración de glucosa puede generarse, como se muestra en una etapa 1932.
El procedimiento 1814 para la corrección de la temperatura de la sangre se verificó usando sangre en una cámara sellada con guantes con respecto a un intervalo de temperatura de aproximadamente 5 °C a 45 °C. Las muestras de sangre tenían un intervalo de hematocrito de aproximadamente el 20-50 % de hematocrito y un intervalo de glucosa de aproximadamente 20-600 mg/dl de concentración de glucosa en plasma equivalente. La cámara sellada con guantes era una cámara cerrada que podía mantener una temperatura constante predeterminada. La porción de guante de la cámara sellada con guantes permitió que un probador fuera de la cámara sellada con guantes realizara una prueba de glucosa dentro de la cámara sellada con guantes. El probador insertó tiras reactivas en un medidor de prueba y muestreó dosis en un entorno que tenía tanto una temperatura como humedad relativa (HR) controladas. La HR se mantuvo a aproximadamente el 60 % con el fin de mantener la evaporación de las gotitas de muestra a un nivel relativamente bajo durante la prueba. Generalmente, la HR no debe ser suficientemente alta como para prevenir que se produzca la condensación en el medidor. La sangre se equilibró a 37 °C fuera de la cámara sellada con guantes, se separó en alícuotas sobre Parafilm, rápidamente se movió a la cámara sellada con guantes y se aplicó a las tiras. Este procedimiento particular permitió la simulación de dosificar sangre capilar de un dedo. La FIG. 13 muestra que la temperatura tiene un sesgo sustancial sobre los resultados de la sangre cuando no hay función de compensación de temperatura en los medidores debido a que solo aproximadamente el 83,4 % de los sesgos estuvieron dentro del 15 % o 15 mg/dl del valor de glucosa de referencia. A diferencia, como se observa en la FIG. 14, hay mucho menos sesgo en los resultados de la sangre cuando hay una compensación de temperatura en los medidores de prueba debido a que muchos menos sesgos en términos de porcentaje se localizaron fuera del intervalo del 15 % o 15 mg/dl del valor de glucosa de referencia cuando se comparó con los resultados de la FIG. 13.
Corrección de la temperatura de la disolución de control:
La FIG. 15 es un diagrama de flujo que representa una realización del procedimiento 1826 de aplicar una corrección de la temperatura de DC. La corrección de la temperatura de DC es similar a la corrección de la temperatura de la sangre, excepto que la función de temperatura para calcular Corr2 es diferente.
Inicialmente, puede obtenerse una concentración de glucosa sin corregir para la temperatura tal como la primera concentración de glucosa Gi de la etapa 1824. A continuación puede medirse un valor de temperatura, como se muestra en una etapa 1910. Puede aplicarse una tercera función de temperatura para determinar el segundo valor de corrección Corr2 para DC, como se muestra en una etapa 1934. La tercera función de temperatura para calcular el segundo valor de corrección Corr2 puede estar en forma de la Ecuación 19:
Ec. 19
en la que K15 es una decimoquinta constante (por ejemplo, 0,27 para GDH-PQQ y 0,275 para FAD-GDH), T es un valor de temperatura, Trt es un valor de temperatura ambiente (por ejemplo, 22 °C), Ki6 es una decimosexta constante (por ejemplo, 0,0011 para GDH-PQQ y 0,00014 para FAD-GDH) y G2 es la segunda concentración de glucosa.
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Después de calcular Corr2 usando la etapa 1934 pueden realizarse un par de funciones de truncamiento para garantizar que Corr2 esté limitado a un intervalo predeterminado. En una realización, Corr2 puede limitarse a estar en un intervalo de -10 a +10 usando una etapa 1918 y/o una etapa 1922, como se muestra en la FIG. 20. En la etapa 1918 puede realizarse una determinación para determinar si Corr2 es mayor o no que 10. Si Corr2 es mayor que 10, Corr2 puede fijarse a 10, como se muestra en una etapa 1920. Si Corr2 no es superior a 10, entonces puede realizarse una determinación para determinar si Corr2 es inferior o no a -10, como se muestra en una etapa 1922. Corr2 puede fijarse a -10 si Corr2 es inferior a -10, como se muestra en una etapa 1924.
Una vez se determina Corr2, una concentración de glucosa corregida con la temperatura para DC puede calcularse usando tanto una etapa 1928 como una etapa 1930. En una etapa 1926 puede realizarse una determinación para determinar si la concentración de glucosa sin corregir para la temperatura (por ejemplo, Gi) es inferior o no a 100 mg/dl. Si Gi es inferior a 100 mg/dl, entonces la tercera concentración de glucosa G3 puede calcularse sumando Gi + Corr2, como se muestra en la etapa 1928. Si Gi no es inferior a 100 mg/dl, entonces la tercera concentración de glucosa G3 puede calcularse dividiendo Corr2 entre cien, añadiendo uno, y luego multiplicando por la segunda concentración de glucosa para dar una concentración corregida con la temperatura, como se muestra en la etapa 1930. Una vez se ha determinado una tercera concentración de glucosa para DC que se ha corregido para los efectos de la temperatura, la tercera concentración de glucosa puede generarse, como se muestra en una etapa 1932, para tanto la siguiente etapa en procedimiento 1800 como para comprobaciones de
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errores 1000.
El procedimiento 1826 para la corrección de la temperatura de DC se verificó en una cámara sellada con guantes durante un intervalo de temperatura de aproximadamente 5 °C a 45 °C. La humedad relativa (HR) se mantuvo a aproximadamente el 60 %. La FIG. 16 muestra que la temperatura tiene un sesgo sustancial en los resultados de DC cuando no hay función de compensación de la temperatura en los medidores de prueba debido a que una cantidad justa de los resultados se encuentran fuera del 15 % o 15 mg/dl del valor de glucosa de referencia. A diferencia, como se observa en la FIG. 17, hay mucho menos sesgo en los resultados de la sangre cuando hay una compensación de temperatura en los medidores de prueba debido a que ninguno de los resultados se localizaron fuera del intervalo de 15 % o 15 mg/dl del valor de glucosa.
Identificación de errores del sistema:
También se proporcionan diversas realizaciones de un procedimiento para identificar diversos errores del sistema, que pueden incluir errores del usuario cuando se realiza una prueba, errores del medidor de prueba y tiras reactivas defectuosas. El sistema puede configurarse para identificar una prueba que utiliza un llenado parcial o doble llenado de una cámara de muestra. Por tanto, el sistema puede configurarse para identificar aquella situación en la que la muestra puede fugarse de la muestra cámara, comprometiendo así la integridad de la prueba y/o aquellas situaciones en las que alguna porción del sistema (por ejemplo, la tira reactiva) esté dañada.
Por ejemplo, la FIG. 18 es un diagrama de flujo que representa una realización a modo de ejemplo de un procedimiento 1000 de identificación de errores del sistema en la realización de una medida de analito. Como se muestra, un usuario puede iniciar una prueba aplicando una muestra a una tira reactiva, como se muestra en una etapa 1002. Después de dosificarse la muestra, el medidor de prueba aplica un primer voltaje de prueba Vi durante un primer intervalo de tiempo ti, como se muestra en una etapa 1004a. Entonces se mide una corriente de prueba resultante durante el primer intervalo de tiempo ti, como se muestra en una etapa 1005a. Durante el primer intervalo de tiempo ti, el medidor de prueba puede realizar un comprobación de dosis doble 1006a y una comprobación de corriente máxima 1012a. Si fracasa tanto la comprobación de dosis doble 1006a como la comprobación de corriente máxima 1012a, entonces el medidor de prueba mostrará un mensaje de error, como se muestra en una etapa 1028. Si se pasan tanto la comprobación de dosis doble 1006a como la comprobación de corriente máxima 1012a, entonces el medidor de prueba puede aplicar un segundo voltaje de prueba V2 durante un segundo intervalo de tiempo t2, como se muestra en una etapa 1004b.
Una corriente de prueba resultante se mide durante el segundo intervalo de tiempo t2, como se muestra en una etapa 1005b. Durante la aplicación del segundo voltaje de prueba V2, el medidor de prueba puede realizar una comprobación de volumen suficiente 1030, una comprobación de dosis doble 1006b, una comprobación de corriente máxima 1012b y una comprobación de corriente mínima 1014b. Si una de las comprobaciones 1030, 1006b, 1012b o 1014b fracasa, entonces el medidor de prueba mostrará un mensaje de error, como se muestra en la etapa 1028. Si se pasan todas las comprobaciones 1030, 1006b, 1012b y 1014b, entonces el medidor de prueba aplicará un tercer voltaje de prueba V3, como se muestra en una etapa 1004c.
Una corriente de prueba resultante se mide durante el tercer intervalo de tiempo t3, como se muestra en una etapa 1005c. Durante la aplicación del tercer voltaje de prueba V3, el medidor de prueba puede realizar una comprobación de dosis doble 1006c, comprobación de corriente máxima 1012c, una comprobación de corriente mínima 1014c, una comprobación de alta resistencia 1022c y una comprobación de fuga de muestra 1024c. Si se pasan todas las comprobaciones 1006c, 1012c, 1014c, 1022c y 1024c, entonces el medidor de prueba mostrará una concentración de glucosa, como se muestra en una etapa 1026. Si fracasa una de las comprobaciones 1006c, 1012c, 1014c, 1022c y 1024c, entonces el medidor de prueba mostrará un mensaje de error, como se muestra en la etapa 1028. Lo siguiente describirá las comprobaciones del sistema y cómo los errores pueden identificarse usando tales comprobaciones del sistema.
Comprobación de volumen suficiente
En una realización para realizar una comprobación de volumen suficiente se usa una medición de capacitancia. La medición de capacitancia puede medir esencialmente una capacitancia de doble capa iónica resultante de la formación de capas iónicas en la interfase electrodo-líquido. Una magnitud de la capacitancia puede ser proporcional al área de un electrodo recubierto con muestra. Una vez se ha medido la magnitud de la capacitancia, si el valor es mayor que un umbral y así la tira reactiva tiene un volumen de líquido suficiente para una medición precisa, puede generarse una concentración de glucosa, pero si el valor no es superior a un umbral y así la tira reactiva tiene un volumen de líquido insuficiente para una medición precisa, entonces puede generarse un mensaje de error.
A modo de ejemplo no limitante, procedimientos y mecanismos para realizar mediciones de capacitancia en tiras reactivas pueden encontrarse en las patentes de EE.UU. n° 7.195.704 y 7.199.594. En un procedimiento para medir la capacitancia, un voltaje de prueba que tiene un componente constante y un componente oscilante se aplica
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a la tira reactiva. En tal caso, la corriente de prueba resultante puede procesarse matemáticamente, como se describe en más detalle a continuación, para determinar un valor de capacitancia.
Generalmente, cuando una corriente de prueba limitante se produce en un electrodo de trabajo que tiene un área bien definida (es decir, un área que no cambia durante la medición de la capacitancia), pueden realizarse las mediciones de capacitancia más exactas y precisas en una tira reactiva electroquímica. Un área de electrodo bien definida que no cambia con el tiempo puede producirse cuando hay una junta estrecha entre el electrodo y el separador. La corriente de prueba es relativamente constante cuando la corriente no está cambiando rápidamente debido tanto a la oxidación de la glucosa como al deterioro electroquímico. Alternativamente, cualquier periodo de tiempo cuando un aumento en la señal, que se vería debido a la oxidación de glucosa, se equilibra eficazmente por una disminución en la señal, que acompaña al deterioro electroquímico, también puede ser un intervalo de tiempo apropiado para medir la capacitancia.
Un área del primer electrodo 166 puede cambiar posiblemente con el tiempo después de dosificar la muestra si la muestra se filtra entre el separador 60 y el primer electrodo 166. En una realización de una tira reactiva, la capa de reactivo 72 puede tener un área mayor que el área de corte 68 que hace que una porción de la capa de reactivo 72 esté entre el separador 60 y la primera capa de electrodo 66. En ciertas circunstancias, el interponer una porción de la capa de reactivo 72 entre el separador 60 y la primera capa de electrodo 66 puede permitir que el área de electrodo humedecido aumente durante una prueba. Como resultado, puede producirse una fuga durante una prueba que hace que el área del primer electrodo aumente con el tiempo, que a su vez puede distorsionar una medición de capacitancia.
A diferencia, un área del segundo electrodo 164 puede ser más estable con el tiempo en comparación con el primer electrodo 166 debido a que no hay capa de reactivo entre el segundo electrodo 164 y el separador 60. Así, es menos probable que la muestra se filtre entre el separador 60 y el segundo electrodo 164. Una medición de capacitancia que usa una corriente de prueba limitante en el segundo electrodo 164 puede así ser más precisa debido a que el área no cambia durante la prueba.
Con referencia de nuevo a la FIG. 6, una vez se detecta líquido en la tira reactiva, un primer voltaje de prueba Vi (por ejemplo, -20 mV) puede aplicarse entre los electrodos durante aproximadamente 1 segundo para monitorizar el comportamiento de llenado del líquido y para distinguir entre disolución de control y sangre. En la Ecuación 1 se usan corrientes de prueba de aproximadamente 0,05 a 1 segundo. Este primer voltaje de prueba Vi puede ser relativamente bajo (es decir, el voltaje de prueba es similar en magnitud al potencial rédox del mediador) de forma que la distribución de ferrocianuro en la célula se perturba tan poco como sea posible por las reacciones electroquímicas que se producen en el primer y segundo electrodos.
Un segundo voltaje de prueba V2 (por ejemplo, -300 mV) que tiene una mayor magnitud absoluta puede aplicarse después del primer voltaje de prueba Vi de forma que pueda medirse una corriente limitante en el segundo electrodo 164. El segundo voltaje de prueba V2 puede incluir un componente de voltaje de CA y un componente de voltaje de CC. El componente de voltaje de CA puede aplicarse a una cantidad predeterminada de tiempo después de la aplicación del segundo voltaje de prueba V2, y además, puede ser una onda sinusoidal que tiene una frecuencia de aproximadamente 109 hercios y una amplitud de aproximadamente +/-50 milivoltios. En una realización preferida, la cantidad predeterminada de tiempo puede oscilar de aproximadamente 0,3 segundos a aproximadamente 0,4 segundos después de la aplicación del segundo voltaje de prueba V2. Alternativamente, la cantidad predeterminada de tiempo puede ser un tiempo en el que una corriente transitoria de prueba en función del tiempo tiene una pendiente de aproximadamente cero. En otra realización, la cantidad predeterminada de tiempo puede ser un tiempo requerido para que el valor pico de la corriente (por ejemplo, ipb) disminuya aproximadamente el 50 %. En cuanto al voltaje de CC, puede aplicarse al inicio del primer voltaje de prueba. El componente de voltaje de CC puede tener una magnitud suficiente para producir una corriente de prueba limitante en el segundo electrodo tal como, por ejemplo, aproximadamente -0,3 voltios con respecto al segundo electrodo.
De acuerdo con la FIG. 4B, la capa de reactivo 72 no está recubierta sobre el segundo electrodo 164, que hace que la magnitud de la corriente pico absoluta ipb sea relativamente baja en comparación con la magnitud de la corriente pico absoluta ipc. La capa de reactivo 72 puede configurarse para generar un mediador reducido en presencia de un analito, y la cantidad del mediador reducido próxima al primer electrodo puede contribuir a la corriente pico absoluta ipc relativamente alta. En una realización, al menos la porción de enzima de la capa de reactivo 72 puede configurarse para no difundir sustancialmente del primer electrodo al segundo electrodo cuando se introduce una muestra en la tira reactiva.
Las corrientes de prueba después de ipb tienden a llegar a una región plana en aproximadamente 1,3 segundos, y entonces la corriente aumenta de nuevo a medida que el mediador reducido generado en el primer electrodo 166, que puede recubrirse con la capa de reactivo 72, difunde al segundo electrodo 164, que no está recubierto con la capa de reactivo 72. Generalmente, el algoritmo de glucosa requiere valores de corriente de prueba tanto antes como después del intervalo de prueba de aproximadamente 1,3 a aproximadamente 1,4 segundos. Por ejemplo, ipb se mide a 1,1 segundos en la Ecuación 7 y las corrientes de prueba se miden a 1,4 segundos más
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adelante para
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t= L .4
En una realización, una medición de capacitancia puede realizarse en una región relativamente plana de los valores de la corriente de prueba, que puede realizarse en aproximadamente 1,3 segundos a aproximadamente 1,4 segundos. Generalmente, si la capacitancia se mide antes de 1 segundo, entonces la medición de la capacitancia puede interferir con el primer voltaje de prueba Vi relativamente bajo que puede usarse en la prueba de discriminación de DC/sangre 1806. Por ejemplo, un componente de voltaje oscilante del orden de +/- 50 mV superpuesto sobre un componente de voltaje constante de -20 mV puede producir perturbación significativa de la corriente de prueba medida. No solo el componente de voltaje oscilante interfiere con el primer voltaje de prueba Vi, sino que también puede perturbar significativamente las corrientes de prueba medidas después de 1,4 segundos, que a su vez puede interferir con el algoritmo de glucosa en sangre 1810. Tras muchas pruebas y experimentación, finalmente se determinó que, sorprendentemente, el medir la capacitancia en aproximadamente 1,3 segundos a aproximadamente 1,4 segundos produjo mediciones exactas y precisas que no interfirieron con la prueba de discriminación de DC/sangre o el algoritmo de glucosa.
Después del segundo voltaje de prueba V2, el tercer voltaje de prueba V3 (por ejemplo, +300 mV) puede aplicarse haciendo que la corriente de prueba se mida en el primer electrodo 166, que puede recubrirse con la capa de reactivo 72. La presencia de una capa de reactivo sobre el primer electrodo puede permitir la penetración de líquido entre la capa de separador y la capa de electrodo, que puede hacer que aumente el área del electrodo.
Como se ilustra en la FIG. 6, en una realización a modo de ejemplo, un voltaje de prueba de CA de109 Hz (± 50 mV pico a pico) puede aplicarse durante 2 ciclos durante el intervalo de tiempo tcap. El primer ciclo puede usarse como pulso de acondicionamiento y el segundo ciclo puede usarse para determinar la capacitancia. El cálculo estimado de la capacitancia puede obtenerse sumando la corriente de prueba con respecto a una porción de la onda de corriente alterna (CA), restando el desplazamiento de la corriente continua (Cc) y normalizando el resultado usando la amplitud del voltaje de prueba de CA y la frecuencia de CA. Este cálculo proporciona una medida de la capacitancia de la tira, que está dominada por la cámara de muestra de la tira cuando está llena de una muestra.
En una realización, la capacitancia puede medirse sumando la corriente de prueba con respecto a un cuarto de la longitud de onda de CA en cualquier lado del punto en el tiempo en el que el voltaje de CA de entrada cruza el desplazamiento de CC, es decir, cuando el componente de CA del voltaje de entrada es cero (el punto de cruce cero). Una derivación de cómo esto se traduce a una medida de la capacitancia se describe en más detalle más adelante. La Ecuación 20 puede mostrar la magnitud de la corriente de prueba en función del tiempo durante el intervalo de tiempo tcap!
Ec. 20
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en la que los términos io + st representan la corriente de prueba producida por el componente de voltaje de prueba constante. Generalmente, el componente de corriente Cc se considera que cambia linealmente con el tiempo (debido a la reacción de glucosa en curso que genera ferrocianuro) y así se representa por una constante io, que es la corriente CC a tiempo cero (el punto de cruce cero), y s, la pendiente del cambio de corriente CC con el tiempo. El componente de corriente CA se representa por Isen(u>t + 9), en la que I es la amplitud de la onda de corriente, w es su frecuencia y 9 es su desplazamiento de fase con respecto a la onda de voltaje de entrada. El término w también puede expresarse como 2nf, en la que f es la frecuencia de la onda de CA en hercios. El término I también puede expresarse como se muestra en la Ecuación 21:
Ec. 21
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en la que V es la amplitud de la señal de voltaje aplicada y |Z| es la magnitud de la impedancia compleja. El término |Z| también puede expresarse como se muestra en la Ecuación 22:
Ec. 22
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en la que R es la parte real de la impedancia y C es la capacitancia.
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La Ecuación 20 puede integrarse de un cuarto de la longitud de onda antes del punto de cruce cero a un cuarto de la longitud de onda después del punto de cruce cero dando la Ecuación 23:
Ec. 23
que puede simplificarse a la Ecuación 24:
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Ec. 24
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Sustituyendo la Ec. 21 en la Ec. 20, luego en la Ec. 23, y luego reorganizando resulta la Ecuación 25:
Ec. 25
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El término integral en la Ecuación 25 puede aproximarse usando una suma de corrientes mostrada en una Ecuación 26:
Ec. 26
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en la que las corrientes de prueba ik se suman de un cuarto de la longitud de onda antes del punto de cruce cero a un cuarto de la longitud de onda después del punto de cruce cero. Sustituyendo la Ecuación 26 en la Ecuación 25 da la Ecuación 27:
Ec. 27
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en la que la corriente de desplazamiento de CC io puede obtenerse promediando la corriente de prueba durante un ciclo sinusoidal completo alrededor del punto de cruce cero.
En otra realización, las mediciones de capacitancia pueden obtenerse sumando las corrientes no alrededor del punto de cruce de voltaje cero, sino alrededor del componente de CA máxima de la corriente. Así, en la Ecuación 26, en vez de sumar un cuarto de la longitud de onda a cualquier lado del punto de cruce de voltaje cero, a la corriente de prueba puede sumarse un cuarto de la longitud de onda alrededor de la máximo corriente. Esto es equivalente a asumir que el elemento de circuito que responde a la excitación de CA es un puro capacitor, así y es n/2. Así, la Ecuación 24 puede reducirse a la Ecuación 28:
Ec. 28
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Esto es una suposición razonable en este caso ya que el electrodo sin recubrir está polarizado de forma que el componente de CC, o real, de la corriente que circula es independiente del voltaje aplicado durante el intervalo de voltajes usados en la excitación de CA. Por consiguiente, la parte real de la impedancia que responde a la excitación de Ca es infinita, que implica un elemento capacitivo puro. La Ecuación 28 puede entonces usarse con la Ecuación 25 para dar una ecuación de capacitancia simplificada que no requiere una aproximación integral. El resultado neto es que las mediciones de capacitancia cuando se suman las corrientes no alrededor del punto de cruce de voltaje, sino alrededor del componente de CA máxima de la corriente, fueron más precisas.
En una realización a modo de ejemplo, el microprocesador del medidor de prueba puede tener una carga pesada con el cálculo de la concentración de glucosa. En un caso tal, debido a que la adquisición de datos de capacitancia necesita hacerse a mitad de camino de la prueba en vez de a su comienzo, puede ser necesario aplazar el procesamiento de los datos de medición de capacitancia hasta después de que se complete la
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determinación de la concentración de glucosa. Así, una vez se ha completado la parte de medida de la glucosa de la prueba, la capacitancia puede calcularse, y si la capacitancia está por debajo de un umbral predeterminado, puede marcar un error de llenado parcial.
En ciertas circunstancias, la medición de capacitancia puede depender de la temperatura del entorno. Para medir la capacitancia de una manera exacta y precisa para determinar los volúmenes de llenado de los electrodos, el efecto de la temperatura puede reducirse usando una corrección de la temperatura para la sangre como se muestra en la Ecuación 29:
Ec. 29
en la que Capcorr es el valor de capacitancia corregido con la temperatura, Cap es la capacitancia y T es la temperatura.
El efecto de la temperatura puede eliminarse usando una corrección de la temperatura para DC como se muestra en la Ecuación 30:
Ec. 30
Los valores de capacitancia corregidos con la temperatura de las Ecuaciones 29 y 30 pueden usarse para identificar tiras reactivas parcialmente llenas.
Como se ilustra por la siguiente Tabla 1, se requerirá un valor umbral de capacitancia corregido con la temperatura diferente para sangre y disolución de control. El umbral debe fijarse generalmente cuatro (4) unidades de desviación estándar por debajo de la media. Estadísticamente, esto es igual a un 99,994 % de probabilidad de que el llenado completo se identifique como un llenado parcial. El valor umbral de capacitancia corregido con la temperatura para la sangre será aproximadamente 450 nF, y el valor correspondiente para la disolución de control será aproximadamente 560 nF. Estos valores pueden programarse en una porción de memoria de los medidores de prueba. En una realización alternativa, el valor umbral puede ajustarse por el operario dependiendo del uso previsto.
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Tabla 1 - Valores de capacitancia corregidos con la temperatura para llenados completos
Parámetro
Todos los resultados sanguíneos Todos los resultados CS
Capacitancia significativa (nF)
515 664
SD (nF)
16 57
Significativa -4*SD (nF)
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El diagrama de la FIG. 19 muestra una correlación de capacitancia y sesgo con una medición de glucosa de referencia (YSI, Yellow Springs Instrument). Las concentraciones de glucosa medidas se convirtieron en un sesgo comparándolas con una medida de glucosa realizada con un instrumento de referencia. Se llenaron varias tiras reactivas con diversos volúmenes de sangre, y la capacitancia y concentraciones de glucosa se midieron con la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6. Más particularmente, la capacitancia se midió durante el tercer voltaje de prueba V3 en el que la corriente de prueba es relativamente grande y disminuye rápidamente con el tiempo. Adicionalmente se realizaron mediciones de capacitancia en las que la corriente de prueba limitante se produce sobre el primer electrodo, que tiene una recubrimiento de capa de reactivo.
Si se supone que el principal contribuyente al sesgo para YSI se produce por el porcentaje de cobertura parcial de los electrodos con líquido, entonces los valores de capacitancia deben formar una línea recta con relativamente poca dispersión cuando se correlacionan con la sesgo de YSI. Por ejemplo, un sesgo negativo del 50 % para YSI se correspondería con una disminución del 50 % en la capacitancia en comparación con una tira reactiva completamente llena. Así, si también se supone que la variación tira a tira en el sesgo es relativamente pequeña, entonces la dispersión relativamente grande de puntos de datos en la FIG 19 puede atribuirse a una variación relativamente grande en las mediciones de capacitancia. Se encontró que la variación de capacitancia se produjo realizando la medición de capacitancia durante el tercer voltaje de prueba en el que los valores de la corriente de prueba no son generalmente relativamente constantes.
Una dispersión relativamente grande en las mediciones de capacitancia podría hacer que se rechazara un número significativo de tiras reactivas completamente llenas. Además, una gran variación de capacitancia puede hacer que algunas mediciones de capacitancia se sesguen poco y así estén por debajo de un umbral suficientemente lleno que produce un llenado parcial falsamente identificado.
El diagrama de la FIG. 20 muestra una correlación de la capacitancia (medida en aproximadamente 1,3 segundos) y el sesgo con una medición de glucosa de referencia (YSI, Yellow Springs Instrument). Se llenaron
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varias tiras reactivas con diversos volúmenes de sangre, y la capacitancia y las concentraciones de glucosa se midieron con la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6. Más particularmente, la capacitancia se midió durante el segundo voltaje de prueba V2 en el que la corriente de prueba es relativamente constante. Además, se realizó la medición de la capacitancia en la que la corriente de prueba limitante se produce en el segundo electrodo, que no tuvo un recubrimiento de capa de reactivo. A diferencia de la FIG. 19, los datos en la FIG. 20 muestran que los valores de capacitancia están menos dispersos.
El diagrama de la FIG. 21 muestra una correlación de la capacitancia (medida en aproximadamente 1,3 segundos) y el sesgo con una medición de glucosa de referencia (YSI, Yellow Springs Instrument). Se llenaron varias tiras reactivas con diversos volúmenes de DC, y la capacitancia y las concentraciones de glucosa se midieron con la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6. Similar a la FIG. 20, los datos en la FIG. 21 muestran que los valores de capacitancia tienen una cantidad relativamente baja de variación cuando se realizan durante este intervalo de tiempo.
Eventos de dosificación doble
Se produce una dosis doble cuando un usuario aplica un volumen insuficiente de sangre a una cámara receptora de muestra y entonces aplica un bolo posterior de sangre para llenar adicionalmente la cámara receptora de muestra. Un volumen insuficiente de sangre expresado en una punta del dedo del usuario o un dedo tembloroso puede producir la aparición de un evento de dosificación doble. El sistema y procedimiento actualmente desvelado puede configurarse para identificar tales eventos de doble llenado. Por ejemplo, la FIG. 22 muestra una corriente transitoria de prueba en la que un usuario realizó un evento de dosificación doble durante el segundo intervalo de tiempo de prueba t2 que provocó que se observara un pico (véase la línea continua). Cuando no hay evento de dosificación doble, la corriente transitoria de prueba no tiene un pico (véase la línea discontinua de la FIG. 22).
Un evento de dosificación doble puede hacer que una prueba de glucosa tenga una lectura inexacta. Así, es normalmente deseable identificar un evento de dosificación doble y que luego la salida del medidor tenga un mensaje de error en lugar de dar una lectura posiblemente inexacta. Un evento de dosificación doble hace inicialmente que la corriente de prueba medida sea de baja magnitud debido a que el área del electrodo disminuye eficazmente cuando solo una porción se humedece con muestra. Una vez el usuario aplica la segunda dosis se produce un pico de corriente debido a un aumento repentino en el área eficaz del electrodo y también debido a que la turbulencia hace que más mediador reducido se transporte próximo al electrodo de trabajo. Además, se generará menos ferrocianuro debido a que una porción de la capa de reactivo no está humedecida por la muestra durante el todo el tiempo de prueba. Así, puede resultar una lectura de glucosa inexacta si un valor de corriente de prueba usado en el algoritmo de glucosa disminuye o se eleva como resultado de la dosificación doble.
Un procedimiento de identificación de un evento de dosificación doble (1006a, 1006b, o 1006c) puede incluir medir una segunda corriente de prueba y una tercera corriente de prueba en el que la segunda corriente de prueba se produce antes de la tercera corriente de prueba. Puede usarse una ecuación para identificar eventos de dosificación doble basándose en una diferencia entre el valor absoluto de la tercera corriente de prueba y el valor absoluto de la segunda corriente de prueba. Si la diferencia es mayor que un umbral predeterminado, el medidor de prueba puede dar un mensaje de error indicativo de un evento de dosificación doble. El procedimiento de identificación del evento de dosificación doble puede realizarse múltiples veces en serie ya que los valores de la corriente de prueba se recogen por el medidor. La ecuación puede estar en forma de la Ecuación 31 para calcular un valor de diferencia Z2 para determinar si se ha producido o no un evento de dosificación doble:
Ec. 31 = abs(í(t+x)) - abs(i(t»
en la que i(t) es una segunda corriente de prueba, i(t+x) es una tercera corriente de prueba, t es un tiempo para la segunda corriente de prueba y x es un incremento de tiempo entre mediciones de corriente. Si el valor Z2 es mayor que un umbral predeterminado de aproximadamente tres (3) microamperios, entonces el medidor de prueba puede generar un mensaje de error debido a un evento de dosificación doble. Los umbrales predeterminados desvelados en el presente documento son ilustrativos para uso con la tira reactiva 100 y con la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6 en la que el electrodo de trabajo y el electrodo de referencia tienen tanto un área de aproximadamente 0,042 cm2 como una distancia entre los dos electrodos que oscila de aproximadamente 90 micrómetros a aproximadamente 100 micrómetros. Debe ser obvio para un experto en la materia que tales umbrales predeterminados pueden cambiar basándose en el diseño de la tira reactiva, la forma de onda del voltaje de prueba, y otros factores.
En otra realización para identificar un evento de dosificación doble (por ejemplo, 1006a, 1006b o 1006c), un procedimiento puede incluir medir una primera corriente de prueba, una segunda corriente de prueba y tercera corriente de prueba en la que la primera corriente de prueba se produce antes de la segunda corriente de prueba y la tercera corriente de prueba se produce después de la segunda corriente de prueba. Puede usarse una ecuación para identificar eventos de dosificación doble basándose en dos veces el valor absoluto de la segunda corriente de
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prueba menos el valor absoluto de la primera corriente de prueba y menos el valor absoluto de la tercera corriente de prueba. La ecuación puede estar en forma de la Ecuación 32 para calcular un valor de suma Y para determinar si se ha producido o no un evento de dosificación doble:
ec. 32 Y = 2*abs(i(t)) - abs(/(t-x)) - abs{¿(t+x))
en la que i(t) es una segunda corriente de prueba, i(t-x) es un primera corriente de prueba, i(t+x) es una tercera corriente de prueba, t es un tiempo para la segunda corriente de prueba y x es un incremento de tiempo entre mediciones, y abs representa una función absoluta. Si el valor de suma Y es mayor que un umbral predeterminado, entonces el medidor de prueba puede generar un mensaje de error debido a un evento de dosificación doble. El umbral predeterminado puede fijarse a un valor diferente para el primer intervalo de tiempo ti, segundo intervalo de tiempo t2 y tercer intervalo de tiempo t3.
En una realización, el umbral predeterminado puede ser aproximadamente dos (2) microamperios para el primer intervalo de tiempo ti, aproximadamente dos (2) microamperios para el segundo intervalo de tiempo t2 y aproximadamente tres (3) microamperios para el tercer intervalo de tiempo t3. Los umbrales predeterminados pueden ajustarse como resultado de los siguientes factores tales como ruido en el medidor, mediciones de la frecuencia de la corriente de prueba, el área de los electrodos, la distancia entre los electrodos, la probabilidad de una identificación de positivos falsos de un evento de dosificación doble y la probabilidad de una identificación de negativos falsos de un evento de dosificación doble. El procedimiento de identificación del evento de dosificación doble usando la Ecuación 32 puede realizarse para múltiples porciones de la corriente transitoria de prueba. Debe observarse que la Ecuación 32 puede ser más exacta que la Ecuación 31 para identificar eventos de dosificación doble debido a que la primera corriente de prueba y la tercera corriente de prueba proporcionan una corrección del nivel inicial. Si se usa la forma de onda del voltaje de prueba de la FIG. 6, la comprobación de la dosificación doble puede realizarse en un periodo de tiempo justo después de comenzar el primer, segundo y tercer intervalos de tiempo debido a que normalmente se produce un pico al principio de los intervalos de tiempo. Por ejemplo, las corrientes de prueba medidas en cero segundos a aproximadamente 0,3, 1,05 y 4,05 segundos deben excluirse de la comprobación de dosificación doble.
Comprobación de corriente máxima
Como se menciona en las etapas 1012a, 1012b y 1012c de la FIG. 18, una comprobación de corriente máxima puede usarse para identificar un error del medidor de prueba o un defecto de la tira reactiva. Un ejemplo de un error del medidor de prueba se produce cuando la sangre se detecta tarde después de dosificarse. Un ejemplo de una tira reactiva defectuosa se producen cuando el primer y segundo electrodo provocan un cortocircuito juntos. La FIG. 23 muestra una corriente transitoria de prueba en la que el medidor de prueba no detectó inmediatamente la dosificación de sangre en la tira reactiva (véase la línea continua). En un escenario tal, un inicio tardío generará una cantidad significativa de ferrocianuro antes de que el segundo voltaje de prueba V2 se aplique, haciendo que se observe un valor de corriente de prueba relativamente grande. A diferencia, cuando el medidor de prueba inicia adecuadamente la forma de onda del voltaje de prueba una vez se aplica sangre, los valores de la corriente de prueba para el segundo intervalo de tiempo son mucho más pequeños, como se ilustra por la línea discontinua en la FIG. 23.
Un evento de inicio tardío puede producir una lectura de glucosa inexacta. Así, se desearía identificar un evento de inicio tardío y que luego la salida de medidor de prueba tuviera un mensaje de error en lugar de dar una lectura inexacta. Un evento de inicio tardío hace que la corriente de prueba medida sea de mayor magnitud debido a que hay más tiempo para que la capa de reactivo genere ferrocianuro. Así, el aumento de los valores de corriente de prueba probablemente distorsionará la exactitud de la concentración de glucosa.
Además de un error del medidor, un corto entre el primer y segundo electrodo puede hacer que aumente la corriente de prueba. La magnitud de este aumento depende de la magnitud de la resistencia de derivación entre el primer y segundo electrodo. Si la resistencia de derivación es relativamente baja, un sesgo positivo relativamente grande se añadirá a la corriente de prueba causando una respuesta de glucosa posiblemente inexacta.
La comprobación de la corriente máxima (1012a, 1012b y 1012c) puede realizarse comparando el valor absoluto de todos los valores de corriente de prueba medidos con un umbral predeterminado y dando un mensaje de error si el valor absoluto de uno de los valores de corriente de prueba medidos es mayor que el umbral predeterminado. El umbral predeterminado puede fijarse a un valor diferente para el primer, segundo y tercer intervalos de tiempo de prueba (ti, t2 y t3). En una realización, el umbral predeterminado puede ser aproximadamente 50 microamperios para el primer intervalo de tiempo ti, aproximadamente 300 microamperios para el segundo intervalo de tiempo t2 y aproximadamente 3000 microamperios para el tercer intervalo de tiempo t3.
Comprobación de corriente mínima:
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Como se menciona en las etapas 1014b y 1014c de la FIG. 18, una comprobación de corriente mínima puede usarse para identificar un inicio falso de una prueba de glucosa, un desplazamiento de tiempo inapropiado por un medidor y una retirada prematura de la tira reactiva. Un inicio falso puede producirse cuando el medidor de prueba inicia una prueba de glucosa aún cuando no se ha aplicado muestra a la tira reactiva. Ejemplos de situaciones que hacen que un medidor de prueba inicie involuntariamente una prueba son un evento de descarga electrostática (ESD) o un corto temporal entre el primer y segundo electrodos. Tales eventos pueden hacer que se observe una corriente relativamente grande durante al menos un momento corto en el tiempo que inicia una prueba aún cuando no se ha introducido muestra líquida en la tira reactiva.
Un inicio involuntario de una prueba de glucosa puede hacer que un medidor de prueba genere una baja concentración de glucosa aún cuando todavía no se ha aplicado una muestra a la tira reactiva. Así, se desearía identificar un inicio involuntario de una prueba de glucosa de manera que el medidor de prueba no genere una lectura de glucosa falsamente baja. En su lugar, el medidor de prueba debe proporcionar un mensaje de error que indique al usuario que vuelva insertar la misma tira reactiva o inserte una nueva tira reactiva para realizar la prueba de nuevo.
Puede producirse un error de desplazamiento de tiempo por el medidor de prueba cuando el tercer voltaje de prueba V3 se aplica pronto o tarde. Una aplicación temprana del tercer voltaje de prueba V3 debe hacer que el valor de corriente de prueba al final del segundo intervalo de tiempo t2 sea un valor de corriente relativamente grande con una polaridad positiva en lugar de un valor relativamente pequeño de corriente con una polaridad negativa. Una aplicación tardía del tercer voltaje de prueba V3 debe hacer que el valor de corriente de prueba al principio del tercer intervalo de tiempo sea un valor de corriente relativamente pequeño con una polaridad negativa en lugar de un valor de corriente relativamente grande con una polaridad positiva. Para tanto la aplicación temprana como tardía del tercer voltaje de prueba V3 hay un posibilidad de provocar un resultado de glucosa inexacto. Por tanto, se desearía identificar un error de desplazamiento del tiempo por el medidor de prueba usando la comprobación de corriente mínima de manera que no se produjera una lectura de glucosa inexacta.
Una retirada prematura de una tira reactiva del medidor de prueba antes del final de una prueba de glucosa también puede hacer que se produzca una lectura de glucosa inexacta. Una retirada de la tira reactiva haría que la corriente de prueba cambiara a un valor próximo a cero causando posiblemente una salida de glucosa inexacta. Por consiguiente, también se desearía identificar una retirada de la tira prematura usando una comprobación de corriente mínima de manera que pueda proporcionarse un mensaje de error en lugar de mostrar una lectura de glucosa inexacta.
La comprobación de corriente mínima puede realizarse comparando el valor absoluto de todos los valores de corriente de prueba medidos durante el segundo y tercer intervalos de tiempo (t2 y t3) con un umbral predeterminado y dando un mensaje de error si el valor absoluto de uno de los valores de corriente de prueba medidos es inferior a un umbral predeterminado. El umbral predeterminado puede fijarse a un valor diferente para el segundo y tercer intervalos de tiempo de prueba. Sin embargo, en una realización, el umbral predeterminado puede ser aproximadamente 1 microamperio para el primer intervalo de tiempo ti y el segundo intervalo de tiempo t2. Obsérvese que la comprobación de corriente mínima no se realizó para el primer intervalo de tiempo debido a que los valores de la corriente de prueba son relativamente pequeños debido a que el primer voltaje de prueba Vi es próximo en magnitud al potencial rédox del mediador.
Vía de alta resistencia:
Como se menciona en la etapa 1022c de la FIG. 18, una vía de alta resistencia puede detectarse sobre una tira reactiva que puede producir una lectura de glucosa inexacta. Una vía de alta resistencia puede producirse sobre una tira reactiva que tiene un arañazo aislante o una superficie de electrodo ensuciada. Para la situación en la que las capas de electrodos están hechas de una película de oro pulverizada iónicamente o película de paladio pulverizada iónicamente, los arañazos pueden fácilmente producirse durante la manipulación y fabricación de la tira reactiva. Por ejemplo, un arañazo que va de un borde lateral 56 a otro borde lateral 58 sobre la primera capa de electrodo 66 puede producir una elevada resistencia entre las primeras almohadillas de contacto 67 y el primer electrodo 166. Las partículas de metal pulverizadas iónicamente tienden a ser muy delgadas (por ejemplo, 10 a 50 nm), haciéndolas propensas a arañazos durante la manipulación y fabricación de la tira reactiva. Además, las partículas de metal pulverizadas iónicamente pueden ensuciarse por la exposición a compuestos volátiles tales como hidrocarburos. Esta exposición hace que se forme una película aislante sobre la superficie del electrodo, que aumenta la resistencia. Otro escenario que puede producir una vía de alta resistencia es cuando la película de metal pulverizada iónicamente es demasiado delgada (por ejemplo, <<10 nm). Todavía otro escenario que puede producir una vía de alta resistencia es cuando los conectores del medidor de prueba no forman un contacto suficientemente conductor con las almohadillas de contacto de la tira reactiva. Por ejemplo, la presencia de sangre seca sobre los conectores del medidor de prueba puede prevenir un contacto suficientemente conductor con las almohadillas de contacto de la tira reactiva.
La FIG. 24 muestra dos corrientes transitorias de prueba durante un tercer intervalo de tiempo t3 para una
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tira reactiva que tiene una vía de alta resistencia (cuadrados) y una vía de baja resistencia (triángulos). Una resistencia de la vía suficientemente alta R que está entre el electrodo y la almohadilla de contacto del electrodo puede atenuar sustancialmente la magnitud del voltaje de prueba eficazmente aplicado Veff, que a su vez puede atenuar la magnitud de la corriente de prueba resultante. El voltaje de prueba eficaz Veff puede describirse por la Ecuación 33:
Ec. 33
Generalmente, Veff será más atenuado al principio del tercer intervalo de tiempo t3 en el que la corriente de prueba tendrá generalmente la mayor magnitud. La combinación de una R relativamente grande y una corriente de prueba relativamente grande al principio del tercer intervalo de tiempo t3 puede producir una atenuación significativa en el voltaje de prueba aplicado. A su vez, esto podría producir una atenuación de la corriente de prueba resultante al principio del tercer intervalo de tiempo t3, como se ilustra en la FIG. 24 a t=4,05 segundos. Tal atenuación en la corriente pico inmediatamente a aproximadamente 4,05 segundos puede hacer que la concentración calculada de glucosa sea inexacta. Con el fin de evitar la significativa atenuación en el voltaje de prueba aplicado, R debe ser un valor relativamente pequeño (es decir, resistencia de la vía baja). En una realización, una vía de baja resistencia puede representarse por una capa de electrodo que tiene una resistividad inferior a aproximadamente 12 ohmios por cuadrado y una vía de alta resistencia puede representarse por una capa de electrodo que tiene una resistividad superior a aproximadamente 40 ohmios por cuadrado.
Una determinación de si una tira reactiva tiene o no una alta resistencia de la vía puede usar una ecuación basada en una primera corriente de prueba ii y una segunda corriente de prueba Í2 que ambas se producen durante el tercer intervalo de tiempo t3. La primera corriente de prueba ii puede medirse a aproximadamente el principio del tercer intervalo de tiempo t3 (por ejemplo, 4,05 segundos) en el que la magnitud está en un máximo o próxima al máximo. La segunda corriente de prueba Í2 puede medirse a aproximadamente un final del tercer intervalo de tiempo t3 (por ejemplo, 5 segundos) en el que la magnitud está en el mínimo o próximo al mínimo.
La ecuación para identificar una alta resistencia de la vía puede estar en forma de la Ecuación 34:
Ec. 34
Si la primera relación Ri es mayor que un umbral predeterminado, entonces el medidor de prueba pueda generar un mensaje de error debido a que la tira reactiva tiene una vía de alta resistencia. El umbral predeterminado puede ser aproximadamente 1,2. Es significativo que la primera corriente de prueba ii sea aproximadamente un valor de corriente máximo debido a que es el más sensible a variaciones de resistencia según la Ecuación 33. Si una primera corriente de prueba ii se mide a un tiempo que era más próximo al valor de corriente mínimo, entonces la Ecuación 34 sería menos sensible para determinar si estaba presente o no una vía de alta resistencia. Es ventajoso tener variación relativamente baja en la primera relación Ri cuando se prueban tiras reactivas de baja resistencia. La variación relativamente baja disminuye la probabilidad de identificar erróneamente una tira reactiva de vía de alta resistencia. Como se ha determinado y descrito en el presente documento, la variación de los primeros valores de relación Ri para tiras reactivas que tienen una vía de baja resistencia es aproximadamente cuatro veces inferior cuando un primer valor de corriente de prueba ii se definió como un valor de corriente inmediatamente después de la aplicación del tercer voltaje de prueba V3, a diferencia de ser una suma de valores de corriente durante el tercer intervalo de tiempo t3. Cuando hay una alta variación en los primeros valores de relación Ri para tiras reactivas de baja resistencia, la probabilidad de identificar erróneamente una vía de alta resistencia aumenta.
La FIG. 25 es un gráfico que muestra una pluralidad de valores de Ri calculados con la Ecuación 34 para dos lotes de tiras reactivas en los que un lote tiene una vía de alta resistencia y el otro lote tiene una vía de baja resistencia. Un lote de la tira reactiva se fabricó intencionadamente con una vía de alta resistencia usando electrodos de paladio que se ensuciaron intencionadamente por una exposición a hidrocarburos que contienen gas durante varias semanas. El segundo lote de tiras reactivas se fabricó sin ensuciar intencionadamente la superficie del electrodo. Para prevenir el ensuciamiento, un rodillo de paladio recubierto pulverizado iónicamente se recubrió con MESA antes del recubrimiento con la capa de reactivo. Todas las tiras reactivas de baja resistencia, que no se ensuciaron, tuvieron valores de Ri inferiores a 1,1 que indica que la Ecuación 34 podría identificar tiras reactivas de baja resistencia de vía. Similarmente, esencialmente todas las tiras reactivas de alta resistencia, que se ensuciaron intencionadamente, tuvieron valores de Ri superiores a 1,1 que indica que la Ecuación 34 podría identificar tiras reactivas de alta resistencia de la vía.
Fuga
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Como se ha citado previamente en la etapa 1024c en la FIG. 18, una fuga puede detectarse en una tira reactiva cuando el separador 60 no forma una junta impermeable al líquido suficientemente fuerte con la primera
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capa de electrodo 66. Una fuga se produce cuando el líquido se filtra entre el separador 60 y el primer electrodo 166 y/o el segundo electrodo 164. Obsérvese que la FIG. 4B muestra una capa de reactivo 72 que es inmediatamente adyacente a las paredes del separador 60. Sin embargo, en otra realización (no mostrada) en la que es más probable que se produzca la fuga, la capa de reactivo 72 puede tener un área superior al área de corte 68 que hace que una porción de la capa de reactivo 72 esté entre el separador 60 y la primera capa de electrodo 66. En ciertas circunstancias, el interponer una porción de la capa de reactivo 72 entre el separador 60 y la primera capa de electrodo 66 puede prevenir la formación de una junta impermeable al líquido. Como resultado, puede producirse una fuga que crea un área eficazmente mayor sobre cualquier lado del primer electrodo 166, que a su vez puede producir una lectura de glucosa inexacta. Una asimetría en el área entre el primer electrodo 166 y el segundo electrodo 164 puede distorsionar la corriente transitoria de prueba en la que una joroba adicional aparece durante el tercer intervalo de tiempo t3, como se ilustra en la FIG. 26.
La FIG. 16 muestra las corrientes transitorias de prueba durante un tercer intervalo de tiempo t3 para tres tipos diferentes de lotes de tiras reactivas en los que el lote de tiras reactivas 1 (cuadrados) tiene una fuga de líquido entre el separador y el primer electrodo. El lote de tiras reactivas 1 se construyó usando un entorno de secadora que no secó suficientemente la capa de reactivo y también se laminó con un entorno de presión que no fue suficiente para formar una junta impermeable al líquido con los electrodos. Normalmente, la capa de reactivo se secó suficientemente de manera que una porción adhesiva del separador 60 pudiera entremezclarse con la capa de reactivo y todavía formar una junta impermeable al líquido con la primera capa de electrodo 166. Además, debe aplicarse suficiente presión de manera que la porción adhesiva del separador 60 pueda formar la junta impermeable al líquido con la primera capa de electrodo 166. El lote de tiras reactivas 2 se preparó similarmente al lote de tiras reactivas 1, excepto que se almacenaron a aproximadamente 37 grados Celsius durante aproximadamente dos semanas. El almacenamiento del lote de tiras reactivas 2 hizo que el separador se modificara creando una junta impermeable al líquido con los electrodos. El lote de tiras reactivas 3 se construyó usando un entorno de secadora que fue suficiente para secar la capa de reactivo y también se laminó con un entorno de presión suficiente para formar una junta impermeable al líquido. Ambos lotes de tiras reactivas 2 y 3 (triángulos y círculos, respectivamente) muestran una disminución más rápida en la magnitud de la corriente de prueba con el tiempo en comparación con la tira reactiva 1 (cuadrados), como se ilustra en la FIG. 26.
Una determinación de si una tira reactiva fuga o no puede realizarse usando una ecuación basada en una primera corriente de prueba, una segunda corriente de prueba, una tercera corriente de prueba y una cuarta corriente de prueba que se producen durante el tercer intervalo de tiempo de prueba. Un primer logaritmo de una segunda relación puede calcularse basándose en una primera corriente de prueba ii y una segunda corriente de prueba Í2. Un segundo logaritmo de una tercera relación puede calcularse basándose en una tercera corriente de prueba Í3 y una cuarta corriente de prueba Í4. Puede usarse una ecuación para calcular una cuarta relación R4 basándose en el primer logaritmo y el segundo logaritmo. Si la cuarta relación R4 es inferior a una relación predeterminada, entonces el medidor de prueba dará un mensaje de error debido a fuga. El umbral predeterminado puede oscilar de aproximadamente 0,95 a aproximadamente 1. La ecuación para identificar la fuga puede estar en forma de la Ecuación 35:
Ec. 35
En una realización, la primera corriente de prueba ii y la segunda corriente de prueba i2 pueden ser aproximadamente los dos valores de corriente mayores que se producen en el tercer intervalo de tiempo t3, la cuarta corriente de prueba Í4 puede ser el valor de corriente más pequeño que se produce en el tercer intervalo de tiempo t3 y la tercera corriente de prueba Í3 puede seleccionarse en un tercer tiempo de prueba de manera que una diferencia entre el cuarto tiempo de prueba y un tercer tiempo de prueba sea mayor que una diferencia entre un segundo tiempo de prueba y un primer tiempo de prueba. En una realización ilustrativa, la primera corriente de prueba, la segunda corriente de prueba, la tercera corriente de prueba y la cuarta corriente de prueba pueden medirse a aproximadamente 4,1 segundos, 4,2 segundos, 4,5 segundos y 5 segundos, respectivamente.
La FIG. 27 es un gráfico que muestra una pluralidad de valores de R4 calculados con la Ecuación 35 para los tres lotes de tiras reactivas descritos para la FIG. 26. Por consiguiente, el lote de tiras reactivas 1 tiene cuartos valores de relación inferiores a uno y ambos lotes de tiras reactivas 2 y 3 tienen cuartos valores de relación R4 superiores a uno que indica que la Ecuación 35 puede identificar satisfactoriamente fugas de tiras.
En una realización alternativa, una determinación de si una tira reactiva tiene o no una fuga puede realizarse usando una ecuación basada en solo tres valores de corriente de prueba en lugar de usando cuatro valores de corriente de prueba como se muestra en la Ecuación 35. Los tres valores de corriente de prueba pueden
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incluir una primera corriente de prueba ii, una tercera corriente de prueba Í3 y una cuarta corriente de prueba Í4 que todas se producen durante el tercer intervalo de tiempo de prueba t3. Un tercer logaritmo de una quinta relación puede calcularse basándose en la primera corriente de prueba ii y la tercera corriente de prueba Í3. Un segundo logaritmo de una tercera relación puede calcularse basándose en la tercera corriente de prueba Í3 y la cuarta corriente de prueba Í4. Puede usarse una ecuación para calcular una sexta relación R6 basándose en el tercer logaritmo y el segundo logaritmo. Si R6 es inferior a una relación predeterminada, entonces el medidor de prueba generará un mensaje de error debido a fuga. La ecuación para identificar la fuga puede estar en forma de la Ecuación 36:
Ec. 36
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Un experto en la técnica apreciará características y ventajas adicionales de la presente divulgación basándose en las realizaciones anteriormente descritas. Por consiguiente, la presente divulgación no está limitada por lo que se ha mostrado y descrito particularmente, excepto como se indica en las reivindicaciones añadidas.

Claims (8)

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    Reivindicaciones
    1. Un procedimiento para medir una concentración de glucosa corregida con la temperatura sobre un intervalo de temperaturas, el método comprendiendo:
    aplicar (2002) en un medidor de prueba un primer voltaje de prueba durante un primer intervalo de tiempo entre un primer electrodo y un segundo electrodo en comunicación con una muestra dispuesta en una tira reactiva dentro del medidor de prueba, el primer intervalo de tiempo siendo suficiente para oxidar un mediador reducido en el segundo electrodo;
    tras la aplicación del primer voltaje de prueba, aplicar (2006) un segundo voltaje de prueba durante un segundo intervalo de tiempo entre el primer electrodo y el segundo electrodo suficiente para oxidar el mediador reducido en el primer electrodo;
    calcular (2014) una primera concentración de glucosa en base a los valores de corriente de prueba durante el primer intervalo de tiempo y el segundo intervalo de tiempo; y caracterizado porque:
    medir (1910) un valor de temperatura usando un dispositivo de lectura de temperatura incorporado en el medidor de prueba que recibe la tira reactiva; y
    calcular una concentración de glucosa corregida con la temperatura en base a la primera concentración de glucosa y el valor de temperatura, en el que la etapa de calcular la concentración corregida con la temperatura incluye:
    calcular un valor de corrección en base al valor de la temperatura y la primera concentración de glucosa, en el que el calor de corrección se calcula (1914) con una primera función si el valor de la temperatura es mayor que un primer umbral de temperatura, y en el que el valor de corrección se calcula (1916) con una segunda función si el valor de la temperatura no es mayor que un primer umbral de temperatura;
    calcular la concentración corregida con la temperatura en base a la primera concentración de glucosa y el valor de corrección,
    en el que la primera función es una primera ecuación que es:
    imagen1
    en la que Corr2 es el valor de corrección, Ki es una primera constante, T es un valor de temperatura, Trt es un valor de temperatura ambiente, K2 es una segunda constante, y Gi es la primera concentración de glucosa; y en el que la segunda función es una segunda ecuación, la segunda ecuación siendo:
    imagen2
    en la que Corr2 es el valor de corrección, K3 es una tercera constante, T es un valor de temperatura, Trt es un valor de temperatura ambiente, K4 es una cuarta constante, y Gi es la primera concentración de glucosa, K5 es una quinta constante, Ti es un primer umbral de temperatura, y K6 es una sexta constante.
  2. 2. El procedimiento de la reivindicación 1, en el que la etapa de calcular la concentración corregida con la temperatura comprende además:
    añadir (1928) el valor de corrección a la primera concentración de glucosa para dar la concentración corregida con la temperatura si la primera concentración de glucosa es menor que un umbral de glucosa.
  3. 3. El procedimiento de la reivindicación 1, en el que la etapa de calcular la concentración corregida con la temperatura comprende además (1930):
    dividir el valor de corrección por cien y añadir uno para dar un término intermedio; y
    multiplicar el término intermedio por la primera concentración de glucosa para dar una concentración corregida con la temperatura.
  4. 4. El procedimiento de la reivindicación 1 que comprende además la etapa siguiente:
    determinar (1918) si el valor de corrección es mayor que un valor umbral, después (establecer) el valor de corrección con el valor umbral, donde el valor umbral es diez.
  5. 5. El procedimiento de la reivindicación 1, en el que el valor de corrección es cero cuando el valor de temperatura es igual a un valor de temperatura ambiente.
  6. 6. El procedimiento de la reivindicación 5, en el que el valor de temperatura ambiente es 22 grados Celsius.
    5
    10
    15
    20
    25
    30
    35
    40
    45
    50
    55
    60
    65
  7. 7. El procedimiento de la reivindicación 1, que comprende además determinar si la muestra aplicada es una solución de control; y
    calcular el valor de corrección con una tercera función si la muestra aplicada es solución de control.
  8. 8. El procedimiento de la reivindicación 7, en el que la tercera función es una tercera ecuación, la tercera ecuación siendo:
    imagen3
    en la que Corr2 es el valor de corrección, K7 es una séptima constante, T es un valor de temperatura, Trt es un valor de temperatura ambiente, Ks es una octava constante, y Gi es la primera concentración de glucosa.
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Families Citing this family (135)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6391005B1 (en) 1998-03-30 2002-05-21 Agilent Technologies, Inc. Apparatus and method for penetration with shaft having a sensor for sensing penetration depth
US8641644B2 (en) 2000-11-21 2014-02-04 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means
US9795747B2 (en) 2010-06-02 2017-10-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Methods and apparatus for lancet actuation
ES2336081T3 (es) 2001-06-12 2010-04-08 Pelikan Technologies Inc. Dispositivo de puncion de auto-optimizacion con medios de adaptacion a variaciones temporales en las propiedades cutaneas.
US8337419B2 (en) 2002-04-19 2012-12-25 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US9226699B2 (en) 2002-04-19 2016-01-05 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface
US7981056B2 (en) 2002-04-19 2011-07-19 Pelikan Technologies, Inc. Methods and apparatus for lancet actuation
ATE485766T1 (de) 2001-06-12 2010-11-15 Pelikan Technologies Inc Elektrisches betätigungselement für eine lanzette
AU2002348683A1 (en) 2001-06-12 2002-12-23 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for lancet launching device integrated onto a blood-sampling cartridge
US7041068B2 (en) 2001-06-12 2006-05-09 Pelikan Technologies, Inc. Sampling module device and method
US9427532B2 (en) 2001-06-12 2016-08-30 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US7004928B2 (en) 2002-02-08 2006-02-28 Rosedale Medical, Inc. Autonomous, ambulatory analyte monitor or drug delivery device
US8579831B2 (en) 2002-04-19 2013-11-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US9795334B2 (en) 2002-04-19 2017-10-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US7547287B2 (en) 2002-04-19 2009-06-16 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8372016B2 (en) 2002-04-19 2013-02-12 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US8221334B2 (en) 2002-04-19 2012-07-17 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US7901362B2 (en) 2002-04-19 2011-03-08 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7674232B2 (en) 2002-04-19 2010-03-09 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US9248267B2 (en) 2002-04-19 2016-02-02 Sanofi-Aventis Deustchland Gmbh Tissue penetration device
US7297122B2 (en) 2002-04-19 2007-11-20 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7175642B2 (en) 2002-04-19 2007-02-13 Pelikan Technologies, Inc. Methods and apparatus for lancet actuation
US7232451B2 (en) 2002-04-19 2007-06-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8360992B2 (en) 2002-04-19 2013-01-29 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for penetrating tissue
US8702624B2 (en) 2006-09-29 2014-04-22 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Analyte measurement device with a single shot actuator
US7491178B2 (en) 2002-04-19 2009-02-17 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8267870B2 (en) 2002-04-19 2012-09-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation
US7892183B2 (en) 2002-04-19 2011-02-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
US7909778B2 (en) 2002-04-19 2011-03-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US7976476B2 (en) 2002-04-19 2011-07-12 Pelikan Technologies, Inc. Device and method for variable speed lancet
US7229458B2 (en) 2002-04-19 2007-06-12 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8784335B2 (en) 2002-04-19 2014-07-22 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Body fluid sampling device with a capacitive sensor
US7226461B2 (en) 2002-04-19 2007-06-05 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device with sterility barrier release
US9314194B2 (en) 2002-04-19 2016-04-19 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US7331931B2 (en) 2002-04-19 2008-02-19 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for penetrating tissue
US8574895B2 (en) 2002-12-30 2013-11-05 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels
EP1628567B1 (en) 2003-05-30 2010-08-04 Pelikan Technologies Inc. Method and apparatus for fluid injection
EP1633235B1 (en) 2003-06-06 2014-05-21 Sanofi-Aventis Deutschland GmbH Apparatus for body fluid sampling and analyte sensing
WO2006001797A1 (en) 2004-06-14 2006-01-05 Pelikan Technologies, Inc. Low pain penetrating
EP1671096A4 (en) 2003-09-29 2009-09-16 Pelikan Technologies Inc METHOD AND APPARATUS FOR PROVIDING IMPROVED SAMPLE CAPTURING DEVICE
US9351680B2 (en) 2003-10-14 2016-05-31 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for a variable user interface
US7822454B1 (en) 2005-01-03 2010-10-26 Pelikan Technologies, Inc. Fluid sampling device with improved analyte detecting member configuration
EP1706026B1 (en) 2003-12-31 2017-03-01 Sanofi-Aventis Deutschland GmbH Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture
WO2006011062A2 (en) 2004-05-20 2006-02-02 Albatros Technologies Gmbh & Co. Kg Printable hydrogel for biosensors
WO2005120365A1 (en) 2004-06-03 2005-12-22 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for a fluid sampling device
US9775553B2 (en) 2004-06-03 2017-10-03 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for a fluid sampling device
US8652831B2 (en) 2004-12-30 2014-02-18 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Method and apparatus for analyte measurement test time
US20060281187A1 (en) 2005-06-13 2006-12-14 Rosedale Medical, Inc. Analyte detection devices and methods with hematocrit/volume correction and feedback control
WO2007041355A2 (en) 2005-09-30 2007-04-12 Intuity Medical, Inc. Catalysts for body fluid sample extraction
US8801631B2 (en) 2005-09-30 2014-08-12 Intuity Medical, Inc. Devices and methods for facilitating fluid transport
US8529751B2 (en) 2006-03-31 2013-09-10 Lifescan, Inc. Systems and methods for discriminating control solution from a physiological sample
US8778168B2 (en) 2007-09-28 2014-07-15 Lifescan, Inc. Systems and methods of discriminating control solution from a physiological sample
CN101999073B (zh) * 2007-12-10 2013-12-18 拜尔健康护理有限责任公司 斜率式补偿
US8603768B2 (en) 2008-01-17 2013-12-10 Lifescan, Inc. System and method for measuring an analyte in a sample
WO2009126900A1 (en) 2008-04-11 2009-10-15 Pelikan Technologies, Inc. Method and apparatus for analyte detecting device
US9833183B2 (en) 2008-05-30 2017-12-05 Intuity Medical, Inc. Body fluid sampling device—sampling site interface
EP3639744B1 (en) 2008-06-06 2021-11-24 Intuity Medical, Inc. Blood glucose meter and method of operating
WO2009148624A1 (en) * 2008-06-06 2009-12-10 Intuity Medical, Inc. Detection meter and mode of operation
US8551320B2 (en) 2008-06-09 2013-10-08 Lifescan, Inc. System and method for measuring an analyte in a sample
US9375169B2 (en) 2009-01-30 2016-06-28 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system
US9476849B2 (en) * 2009-05-29 2016-10-25 Panasonic Healthcare Holdings Co., Ltd. Biosensor system and method for measuring concentration of analyte
US8323467B2 (en) * 2009-10-27 2012-12-04 Lifescan Scotland Limited Dual chamber, multi-analyte test strip with opposing electrodes
US8919605B2 (en) 2009-11-30 2014-12-30 Intuity Medical, Inc. Calibration material delivery devices and methods
KR100980316B1 (ko) * 2009-12-09 2010-09-06 동진메디칼 주식회사 온도보상 기능을 구비한 스트립 및 이를 이용한 혈당측정방법
IL209760A (en) 2009-12-11 2015-05-31 Lifescan Scotland Ltd A system and method for measuring filling is satisfactory
US8877034B2 (en) * 2009-12-30 2014-11-04 Lifescan, Inc. Systems, devices, and methods for measuring whole blood hematocrit based on initial fill velocity
US8101065B2 (en) * 2009-12-30 2012-01-24 Lifescan, Inc. Systems, devices, and methods for improving accuracy of biosensors using fill time
US8391940B2 (en) * 2010-02-04 2013-03-05 Lifescan, Inc. Methods and systems to correct for hematocrit effects
US20110208435A1 (en) 2010-02-25 2011-08-25 Lifescan Scotland Ltd. Capacitance detection in electrochemical assays
CA2791120A1 (en) 2010-02-25 2011-09-01 Lifescan Scotland Limited Capacitance detection in electrochemical assay
US8742773B2 (en) 2010-02-25 2014-06-03 Lifescan Scotland Limited Capacitance detection in electrochemical assay with improved response
US8773106B2 (en) 2010-02-25 2014-07-08 Lifescan Scotland Limited Capacitance detection in electrochemical assay with improved sampling time offset
US9588210B2 (en) * 2010-02-26 2017-03-07 Arkray, Inc. Analysis apparatus, analysis method and analysis system
KR20130014053A (ko) * 2010-03-31 2013-02-06 라이프스캔 스코트랜드 리미티드 전기화학 분석물 측정 방법 및 시스템
US8965476B2 (en) 2010-04-16 2015-02-24 Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh Tissue penetration device
US10330667B2 (en) 2010-06-25 2019-06-25 Intuity Medical, Inc. Analyte monitoring methods and systems
RU2596501C2 (ru) * 2010-07-19 2016-09-10 Цилаг Гмбх Интернэшнл Система и способ измерения аналита в образце
KR20130092571A (ko) * 2010-08-02 2013-08-20 시락 게엠베하 인터내셔날 대조 용액에 대한 글루코스 결과의 온도 보정의 정확도 개선을 위한 시스템 및 방법
US8603323B2 (en) 2010-09-20 2013-12-10 Lifescan, Inc. Apparatus and process for improved measurements of a monitoring device
US8617370B2 (en) * 2010-09-30 2013-12-31 Cilag Gmbh International Systems and methods of discriminating between a control sample and a test fluid using capacitance
US8932445B2 (en) * 2010-09-30 2015-01-13 Cilag Gmbh International Systems and methods for improved stability of electrochemical sensors
EP3901624B1 (en) * 2010-12-22 2024-01-31 Roche Diabetes Care GmbH Methods to compensate for sources of error during electrochemical testing
RU2564923C2 (ru) * 2010-12-31 2015-10-10 Цилаг Гмбх Интернэшнл Системы и способы измерений аналита с высокой точностью
JP5728568B2 (ja) 2011-02-23 2015-06-03 パナソニックヘルスケアホールディングス株式会社 生体試料測定装置
RU2605292C2 (ru) * 2011-05-27 2016-12-20 Лайфскэн Скотлэнд Лимитед Коррекция способом смещения по времени от пика для тест-полоски, используемой для измерения содержания аналита
WO2013020103A1 (en) 2011-08-03 2013-02-07 Intuity Medical, Inc. Devices and methods for body fluid sampling and analysis
US8580576B2 (en) 2011-08-04 2013-11-12 Cilag Gmbh International Method for bodily fluid sample transfer during analyte determination
US8475733B2 (en) 2011-08-04 2013-07-02 Cilag Gmbh International Hand-held test meter and analytical test strip cartridge assembly with desiccant vial
US20130084590A1 (en) * 2011-09-30 2013-04-04 Lifescan Scotland Ltd. Analytical test strip with bodily fluid phase-shift measurement electrodes
US8840776B2 (en) * 2011-10-25 2014-09-23 Bionime Corporation Method and sensor strip for analysis of a sample
EP2781914A1 (en) * 2011-11-18 2014-09-24 Murata Manufacturing Co., Ltd. Method for measuring hematocrit levels, quantitative analysis method using said measurement method, and sensor chip
US9903830B2 (en) 2011-12-29 2018-02-27 Lifescan Scotland Limited Accurate analyte measurements for electrochemical test strip based on sensed physical characteristic(s) of the sample containing the analyte
US8709232B2 (en) * 2012-04-30 2014-04-29 Cilag Gmbh International Analyte measurement technique and system
US9201038B2 (en) * 2012-07-24 2015-12-01 Lifescan Scotland Limited System and methods to account for interferents in a glucose biosensor
CA2879841C (en) * 2012-07-27 2018-06-12 Bern Harrison System and method for detecting used and dried sensors
US9816957B2 (en) 2012-12-12 2017-11-14 Panasonic Healthcare Holdings Co., Ltd. Blood component measuring device, method for measuring blood component, and bio-sensor
EP3388823B1 (en) * 2013-03-15 2024-07-10 Roche Diabetes Care GmbH Method of scaling data used to construct biosensor algorithms
EP2972269B1 (en) 2013-03-15 2018-07-11 Roche Diabetes Care GmbH Methods of detecting high antioxidant levels during electrochemical measurements and failsafing an analyte concentration therefrom
JP6356708B2 (ja) 2013-03-15 2018-07-11 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft パルスdcブロックを有するテスト・シーケンスで分析物を電気化学的に測定する方法およびデバイス、装置とそれらを組み込むシステム
WO2014140173A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Roche Diagnostics Gmbh Descriptor-based methods of electrochemically measuring an analyte as well as devices, apparatuses and systems incoporating the same
WO2014140172A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Roche Diagnostics Gmbh Methods of failsafing electrochemical measurements of an analyte as well as devices, apparatuses and systems incorporating the same
KR101736651B1 (ko) 2013-03-15 2017-05-16 에프. 호프만-라 로슈 아게 전기화학적 분석물질 측정에서 회복 펄스로부터 정보를 이용하는 방법들 뿐만 아니라 이를 통합한 기기들, 장치들 및 시스템들
US20140299483A1 (en) 2013-04-05 2014-10-09 Lifescan Scotland Limited Analyte meter and method of operation
US20140318987A1 (en) 2013-04-30 2014-10-30 Lifescan Scotland Limited Analyte meter test strip detection
US9274098B2 (en) 2013-04-30 2016-03-01 Lifescan Scotland Limited Analyte meter digital sample detection
GB2515299B (en) 2013-06-18 2015-12-30 Suresensors Ltd Methods and apparatus for determining analyte in a sample
US9354194B2 (en) 2013-06-19 2016-05-31 Cilag Gmbh International Orientation independent meter
US10729386B2 (en) 2013-06-21 2020-08-04 Intuity Medical, Inc. Analyte monitoring system with audible feedback
US9835578B2 (en) * 2013-06-27 2017-12-05 Lifescan Scotland Limited Temperature compensation for an analyte measurement determined from a specified sampling time derived from a sensed physical characteristic of the sample containing the analyte
US9435762B2 (en) * 2013-06-27 2016-09-06 Lifescan Scotland Limited Fill error trap for an analyte measurement determined from a specified sampling time derived from a sensed physical characteristic of the sample containing the analyte
US20150050678A1 (en) 2013-08-13 2015-02-19 Lifescan Scotland Limited Modular analytical test meter
US9383332B2 (en) 2013-09-24 2016-07-05 Lifescan Scotland Limited Analytical test strip with integrated battery
US20150144507A1 (en) * 2013-11-22 2015-05-28 Cilag Gmbh International Folded biosensor
US9575051B2 (en) 2013-12-23 2017-02-21 Cilag Gmbh International Test strip connector contact protection
US20150176049A1 (en) 2013-12-23 2015-06-25 Cilag Gmbh International Determining usability of analytical test strip
US20150177256A1 (en) 2013-12-23 2015-06-25 Cilag Gmbh International Test strip sample application video system
US20150176053A1 (en) 2013-12-23 2015-06-25 Cilag Gmbh International Test strip insertion drive mechanism for analyte meter
US9500616B2 (en) * 2013-12-23 2016-11-22 Cilag Gmbh International Multi-orientation test strip
US9442089B2 (en) 2013-12-23 2016-09-13 Lifescan Scotland Limited Analyte meter test strip detection
TWI512287B (zh) * 2014-03-31 2015-12-11 Taidoc Technology Corp 具有樣品偵測功能的電化學生物感測器裝置、系統以及偵測方法
US20160091451A1 (en) * 2014-09-25 2016-03-31 Lifescan Scotland Limited Accurate analyte measurements for electrochemical test strip to determine analyte measurement time based on measured temperature, physical characteristic and estimated analyte value
JP6654383B2 (ja) * 2014-10-03 2020-02-26 アークレイ株式会社 測定装置、検知方法、電気化学センサ及び測定システム
US20160178574A1 (en) * 2014-12-17 2016-06-23 Cilag Gmbh International Test strip and method to determine test strip compatibility
US20160178559A1 (en) 2014-12-17 2016-06-23 Lifescan Scotland Limited Universal strip port connector
KR20190091569A (ko) * 2014-12-19 2019-08-06 에프. 호프만-라 로슈 아게 적어도 하나의 분석물을 전기 화학적으로 검출하기 위한 테스트 엘리먼트
US10369567B2 (en) * 2015-11-04 2019-08-06 International Business Machines Corporation Continuous, capacitance-based monitoring of liquid flows in a microfluidic device
JP6403653B2 (ja) * 2015-11-05 2018-10-10 シラグ・ゲーエムベーハー・インターナショナルCilag GMBH International 高精度分析物測定用システム及び方法
JP6680702B2 (ja) * 2017-01-27 2020-04-15 シラグ・ゲーエムベーハー・インターナショナルCilag GMBH International 高精度分析物測定用システム及び方法
US11408881B2 (en) * 2017-05-04 2022-08-09 Roche Diabetes Care, Inc. Test meter and method for detecting undue pressure applied to an inserated test strip
CN207528678U (zh) * 2017-12-05 2018-06-22 禅谱科技股份有限公司 电化学分析仪
JP6609001B2 (ja) * 2018-06-04 2019-11-20 シラグ・ゲーエムベーハー・インターナショナル 高精度分析物測定用システム及び方法
US11035819B2 (en) 2018-06-28 2021-06-15 Lifescan Ip Holdings, Llc Method for determining analyte concentration in a sample technical field
CN109884150B (zh) * 2019-03-08 2021-05-14 武汉璟泓科技股份有限公司 一种红细胞积压校正方法及存储介质
US20200378917A1 (en) * 2019-05-29 2020-12-03 Hach Company Electrochemistry sensor housing
CN115426608B (zh) * 2022-09-26 2025-04-04 深圳市豪恩声学股份有限公司 耳机运行测试采集方法、装置、计算机设备和存储介质

Family Cites Families (215)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US797861A (en) * 1905-05-16 1905-08-22 Augustine Melgarejo Car-platform.
BE758318A (fr) 1969-12-01 1971-04-30 Technicon Instr Procede et appareil pour la determination automatique de haute precision de l'hematocrite d'echantillons de sang total
SE399768B (sv) * 1975-09-29 1978-02-27 Lilja Jan E Kyvett for provtagning, blandning av, provet med ett reagensmedel och direkt utforande av, serskilt optisk, analys av det med reagensmedlet blandade provet
JPS5912135B2 (ja) * 1977-09-28 1984-03-21 松下電器産業株式会社 酵素電極
NL7903113A (nl) 1978-05-05 1979-11-07 Baker Chem Co J T Kinetische meting van glucoseconcentraties in lichaamsvloeistoffen en daartoe te gebruiken preparaten.
US4250257A (en) 1978-08-24 1981-02-10 Technicon Instruments Corporation Whole blood analyses in porous media
US4233029A (en) 1978-10-25 1980-11-11 Eastman Kodak Company Liquid transport device and method
US4254083A (en) * 1979-07-23 1981-03-03 Eastman Kodak Company Structural configuration for transport of a liquid drop through an ingress aperture
JPS5594560U (es) * 1978-12-20 1980-06-30
DE2913553C2 (de) * 1979-04-04 1981-09-17 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten
US4307188A (en) 1979-09-06 1981-12-22 Miles Laboratories, Inc. Precursor indicator compositions
US4303887A (en) 1979-10-29 1981-12-01 United States Surgical Corporation Electrical liquid conductivity measuring system
US4301414A (en) 1979-10-29 1981-11-17 United States Surgical Corporation Disposable sample card and method of making same
US4301412A (en) 1979-10-29 1981-11-17 United States Surgical Corporation Liquid conductivity measuring system and sample cards therefor
SE419903B (sv) * 1980-03-05 1981-08-31 Enfors Sven Olof Enzymelektrod
US4774039A (en) * 1980-03-14 1988-09-27 Brunswick Corporation Dispersing casting of integral skinned highly asymmetric polymer membranes
US4629563B1 (en) 1980-03-14 1997-06-03 Memtec North America Asymmetric membranes
US4404066A (en) * 1980-08-25 1983-09-13 The Yellow Springs Instrument Company Method for quantitatively determining a particular substrate catalyzed by a multisubstrate enzyme
US4436812A (en) 1980-10-29 1984-03-13 Fuji Electric Co., Ltd. Process of calibrating a blood sugar analyzing apparatus
DE3103464C2 (de) 1981-02-02 1984-10-11 Gkss - Forschungszentrum Geesthacht Gmbh, 2054 Geesthacht Dichtungsrahmen für Elektrodialyse-Membranstapel
EP0078636B2 (en) * 1981-10-23 1997-04-02 MediSense, Inc. Sensor for components of a liquid mixture
US4431004A (en) * 1981-10-27 1984-02-14 Bessman Samuel P Implantable glucose sensor
DE3202067C2 (de) 1982-01-23 1984-06-20 Holger Dr. 5100 Aachen Kiesewetter Vorrichtung zur Bestimmung des Hämatokritwertes
DE3228542A1 (de) * 1982-07-30 1984-02-02 Siemens AG, 1000 Berlin und 8000 München Verfahren zur bestimmung der konzentration elektrochemisch umsetzbarer stoffe
US4552840A (en) 1982-12-02 1985-11-12 California And Hawaiian Sugar Company Enzyme electrode and method for dextran analysis
CA1226036A (en) 1983-05-05 1987-08-25 Irving J. Higgins Analytical equipment and sensor electrodes therefor
CA1219040A (en) 1983-05-05 1987-03-10 Elliot V. Plotkin Measurement of enzyme-catalysed reactions
US5509410A (en) * 1983-06-06 1996-04-23 Medisense, Inc. Strip electrode including screen printing of a single layer
US4533440A (en) * 1983-08-04 1985-08-06 General Electric Company Method for continuous measurement of the sulfite/sulfate ratio
US4517291A (en) * 1983-08-15 1985-05-14 E. I. Du Pont De Nemours And Company Biological detection process using polymer-coated electrodes
SE8305704D0 (sv) * 1983-10-18 1983-10-18 Leo Ab Cuvette
GB8330268D0 (en) 1983-11-12 1983-12-21 Lion Lab Ltd Discriminant analysis of gas constituents
US4508613A (en) * 1983-12-19 1985-04-02 Gould Inc. Miniaturized potassium ion sensor
GB2154735B (en) 1984-01-27 1987-07-15 Menarini Sas Reagent for determining blood glucose content
US5141868A (en) * 1984-06-13 1992-08-25 Internationale Octrooi Maatschappij "Octropa" Bv Device for use in chemical test procedures
SE8403628D0 (sv) 1984-07-09 1984-07-09 Cerac Inst Sa Vetskefordelningsanordning vid forskremningsmaskiner
US5171689A (en) 1984-11-08 1992-12-15 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Solid state bio-sensor
US4686479A (en) 1985-07-22 1987-08-11 Young Chung C Apparatus and control kit for analyzing blood sample values including hematocrit
US4664119A (en) * 1985-12-04 1987-05-12 University Of Southern California Transcutaneous galvanic electrode oxygen sensor
SU1351627A2 (ru) 1986-03-27 1987-11-15 Томский инженерно-строительный институт Фильтрующий элемент
JPS636451A (ja) 1986-06-27 1988-01-12 Terumo Corp 酵素センサ
GB8618022D0 (en) 1986-07-23 1986-08-28 Unilever Plc Electrochemical measurements
US4828705A (en) 1986-10-31 1989-05-09 Kingston Technologies, Inc. Pressure-dependent anisotropic-transport membrane system
US4900424A (en) * 1986-11-28 1990-02-13 Unilever Patent Holdings B.V. Electrochemical measurement cell
EP0278647A3 (en) 1987-02-09 1989-09-20 AT&T Corp. Electronchemical processes involving enzymes
GB2201248B (en) 1987-02-24 1991-04-17 Ici Plc Enzyme electrode sensors
US4955947A (en) 1987-05-14 1990-09-11 Ace Orthopedic Manufacturing Pressure sensor
US4963815A (en) * 1987-07-10 1990-10-16 Molecular Devices Corporation Photoresponsive electrode for determination of redox potential
US4812221A (en) 1987-07-15 1989-03-14 Sri International Fast response time microsensors for gaseous and vaporous species
US5064516A (en) 1987-07-16 1991-11-12 Gas Research Institute Measuring gas levels
US4790925A (en) 1987-09-18 1988-12-13 Mine Safety Appliances Company Electrochemical gas sensor
US5108564A (en) * 1988-03-15 1992-04-28 Tall Oak Ventures Method and apparatus for amperometric diagnostic analysis
US5128015A (en) 1988-03-15 1992-07-07 Tall Oak Ventures Method and apparatus for amperometric diagnostic analysis
EP0359831B2 (en) 1988-03-31 2007-06-20 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biosensor and process for its production
FR2630546B1 (fr) 1988-04-20 1993-07-30 Centre Nat Rech Scient Electrode enzymatique et son procede de preparation
CA1316572C (en) 1988-07-18 1993-04-20 Martin J. Patko Precalibrated, disposable, electrochemical sensors
GB8817421D0 (en) * 1988-07-21 1988-08-24 Medisense Inc Bioelectrochemical electrodes
US5089320A (en) 1989-01-09 1992-02-18 James River Ii, Inc. Resealable packaging material
US5312590A (en) * 1989-04-24 1994-05-17 National University Of Singapore Amperometric sensor for single and multicomponent analysis
EP0400918A1 (en) 1989-05-31 1990-12-05 Nakano Vinegar Co., Ltd. Enzyme sensor
US5272060A (en) 1989-07-13 1993-12-21 Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd. Method for determination of glucose concentration in whole blood
GB2235050B (en) 1989-08-14 1994-01-05 Sieger Ltd Electrochemical gas sensor
JP2665806B2 (ja) 1989-09-13 1997-10-22 株式会社豊田中央研究所 ヘマトクリット測定装置
DE68925727T2 (de) 1989-09-15 1996-07-04 Hewlett Packard Gmbh Methode zur Bestimmung der optimalen Arbeitsbedingungen in einem elektrochemischen Detektor und elektrochemischer Detektor, diese Methode benutzend
GB8922126D0 (en) * 1989-10-02 1989-11-15 Normalair Garrett Ltd Oxygen monitoring method and apparatus
DE69025134T2 (de) * 1989-11-24 1996-08-14 Matsushita Electric Ind Co Ltd Verfahren zur Herstellung eines Biosensors
JPH0758270B2 (ja) 1989-11-27 1995-06-21 山武ハネウエル株式会社 感湿素子の製造方法
US5508171A (en) * 1989-12-15 1996-04-16 Boehringer Mannheim Corporation Assay method with enzyme electrode system
US5243516A (en) 1989-12-15 1993-09-07 Boehringer Mannheim Corporation Biosensing instrument and method
DE4003194A1 (de) * 1990-02-03 1991-08-08 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und sensorelektrodensystem zur elektrochemischen bestimmung eines analyts oder einer oxidoreduktase sowie verwendung hierfuer geeigneter verbindungen
CA2036435A1 (en) 1990-03-26 1991-09-27 Paul J. Anderson Reagent unit
US5059908A (en) * 1990-05-31 1991-10-22 Capital Controls Company, Inc. Amperimetric measurement with cell electrode deplating
JPH0466112A (ja) 1990-07-03 1992-03-02 Ube Ind Ltd 膜輸送における輸送条件の決定方法
US5320732A (en) * 1990-07-20 1994-06-14 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biosensor and measuring apparatus using the same
US5642734A (en) 1990-10-04 1997-07-01 Microcor, Inc. Method and apparatus for noninvasively determining hematocrit
ATE182369T1 (de) 1991-02-27 1999-08-15 Boehringer Mannheim Corp Stabilisierung eines enzym enthaltenden reagenz zur bestimmung eines analyten
US5192415A (en) * 1991-03-04 1993-03-09 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Biosensor utilizing enzyme and a method for producing the same
JPH04343065A (ja) 1991-05-17 1992-11-30 Ngk Spark Plug Co Ltd バイオセンサ
JP3118015B2 (ja) * 1991-05-17 2000-12-18 アークレイ株式会社 バイオセンサーおよびそれを用いた分離定量方法
JP2992603B2 (ja) 1991-06-24 1999-12-20 日本電信電話株式会社 ウォールジェット型電気化学的検出器およびその製造方法
DE4123348A1 (de) * 1991-07-15 1993-01-21 Boehringer Mannheim Gmbh Elektrochemisches analysesystem
US5388163A (en) * 1991-12-23 1995-02-07 At&T Corp. Electret transducer array and fabrication technique
AU3104293A (en) 1992-01-14 1993-07-15 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Viscometer
US6319471B1 (en) * 1992-07-10 2001-11-20 Gambro, Inc. Apparatus for producing blood component products
DE69318332T2 (de) 1992-03-12 1998-09-03 Matsushita Electric Ind Co Ltd Biosensor mit einem Katalysator aus Phosphat
GB9215972D0 (en) 1992-07-28 1992-09-09 Univ Manchester Improved analytical method
JP2541081B2 (ja) * 1992-08-28 1996-10-09 日本電気株式会社 バイオセンサ及びバイオセンサの製造・使用方法
FR2695481B1 (fr) * 1992-09-07 1994-12-02 Cylergie Gie Dispositif de mesure ampérométrique comportant un capteur électrochimique.
EP0600607A3 (en) * 1992-10-28 1996-07-03 Nakano Vinegar Co Ltd Coulometric analysis method and a device therefor.
US5469369A (en) 1992-11-02 1995-11-21 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Smart sensor system and method using a surface acoustic wave vapor sensor array and pattern recognition for selective trace organic vapor detection
JP3167464B2 (ja) 1992-11-26 2001-05-21 富士電機株式会社 インバータの故障診断装置
JPH06222874A (ja) 1993-01-26 1994-08-12 Sharp Corp 位置入力装置
FR2701117B1 (fr) 1993-02-04 1995-03-10 Asulab Sa Système de mesures électrochimiques à capteur multizones, et son application au dosage du glucose.
US5385846A (en) * 1993-06-03 1995-01-31 Boehringer Mannheim Corporation Biosensor and method for hematocrit determination
US5352351A (en) * 1993-06-08 1994-10-04 Boehringer Mannheim Corporation Biosensing meter with fail/safe procedures to prevent erroneous indications
US5405511A (en) * 1993-06-08 1995-04-11 Boehringer Mannheim Corporation Biosensing meter with ambient temperature estimation method and system
US5413690A (en) * 1993-07-23 1995-05-09 Boehringer Mannheim Corporation Potentiometric biosensor and the method of its use
US5508203A (en) 1993-08-06 1996-04-16 Fuller; Milton E. Apparatus and method for radio frequency spectroscopy using spectral analysis
GB9325189D0 (en) 1993-12-08 1994-02-09 Unilever Plc Methods and apparatus for electrochemical measurements
EP0752099A1 (en) * 1994-02-09 1997-01-08 Abbott Laboratories Diagnostic flow cell device
US5762770A (en) 1994-02-21 1998-06-09 Boehringer Mannheim Corporation Electrochemical biosensor test strip
US5437999A (en) * 1994-02-22 1995-08-01 Boehringer Mannheim Corporation Electrochemical sensor
JP3099254B2 (ja) 1994-02-28 2000-10-16 安藤電気株式会社 浮動機構つき吸着ハンドおよび搬送接触機構
GB9415499D0 (en) 1994-08-01 1994-09-21 Bartlett Philip N Electrodes and their use in analysis
DE4445948C2 (de) * 1994-12-22 1998-04-02 Draegerwerk Ag Verfahren zum Betreiben einer amperometrischen Meßzelle
US6153069A (en) 1995-02-09 2000-11-28 Tall Oak Ventures Apparatus for amperometric Diagnostic analysis
US5527446A (en) * 1995-04-13 1996-06-18 United States Of America As Represented By The Secretary Of The Air Force Gas sensor
US5620579A (en) * 1995-05-05 1997-04-15 Bayer Corporation Apparatus for reduction of bias in amperometric sensors
US5567302A (en) * 1995-06-07 1996-10-22 Molecular Devices Corporation Electrochemical system for rapid detection of biochemical agents that catalyze a redox potential change
US6413410B1 (en) * 1996-06-19 2002-07-02 Lifescan, Inc. Electrochemical cell
AUPN363995A0 (en) 1995-06-19 1995-07-13 Memtec Limited Electrochemical cell
US5628890A (en) * 1995-09-27 1997-05-13 Medisense, Inc. Electrochemical sensor
US6058934A (en) 1995-11-02 2000-05-09 Chiron Diagnostics Corporation Planar hematocrit sensor incorporating a seven-electrode conductivity measurement cell
AUPN661995A0 (en) 1995-11-16 1995-12-07 Memtec America Corporation Electrochemical cell 2
US6863801B2 (en) * 1995-11-16 2005-03-08 Lifescan, Inc. Electrochemical cell
US5723284A (en) 1996-04-01 1998-03-03 Bayer Corporation Control solution and method for testing the performance of an electrochemical device for determining the concentration of an analyte in blood
US5962215A (en) 1996-04-05 1999-10-05 Mercury Diagnostics, Inc. Methods for testing the concentration of an analyte in a body fluid
US5869971A (en) 1996-05-17 1999-02-09 Sendx Medical, Inc. Method and apparatus for ratiometric measurement of hematocrit
US5660791A (en) 1996-06-06 1997-08-26 Bayer Corporation Fluid testing sensor for use in dispensing instrument
AUPO581397A0 (en) * 1997-03-21 1997-04-17 Memtec America Corporation Sensor connection means
US6391645B1 (en) * 1997-05-12 2002-05-21 Bayer Corporation Method and apparatus for correcting ambient temperature effect in biosensors
US6071391A (en) * 1997-09-12 2000-06-06 Nok Corporation Enzyme electrode structure
US5997817A (en) 1997-12-05 1999-12-07 Roche Diagnostics Corporation Electrochemical biosensor test strip
US7494816B2 (en) 1997-12-22 2009-02-24 Roche Diagnostic Operations, Inc. System and method for determining a temperature during analyte measurement
EP1042667B1 (en) 1997-12-22 2009-06-17 Roche Diagnostics Operations, Inc. Meter
US7407811B2 (en) 1997-12-22 2008-08-05 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for analyte measurement using AC excitation
US7390667B2 (en) 1997-12-22 2008-06-24 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for analyte measurement using AC phase angle measurements
JP3991173B2 (ja) 1998-02-17 2007-10-17 アークレイ株式会社 液体サンプルとコントロール液の弁別の方法
DE69914319T2 (de) * 1998-05-13 2004-11-18 Cygnus, Inc., Redwood City Signalverarbeitung zur messung von physiologischen analyten
WO1999060391A1 (fr) * 1998-05-20 1999-11-25 Arkray, Inc. Procede et appareil de mesures electrochimiques recourant a des methodes statistiques
US6830934B1 (en) 1999-06-15 2004-12-14 Lifescan, Inc. Microdroplet dispensing for a medical diagnostic device
US6251260B1 (en) * 1998-08-24 2001-06-26 Therasense, Inc. Potentiometric sensors for analytic determination
US6338790B1 (en) 1998-10-08 2002-01-15 Therasense, Inc. Small volume in vitro analyte sensor with diffusible or non-leachable redox mediator
JP4066112B2 (ja) 1999-01-28 2008-03-26 株式会社スーパーシリコン研究所 ワイヤソーの制御方法及びワイヤソー
US6475372B1 (en) 2000-02-02 2002-11-05 Lifescan, Inc. Electrochemical methods and devices for use in the determination of hematocrit corrected analyte concentrations
US6287451B1 (en) * 1999-06-02 2001-09-11 Handani Winarta Disposable sensor and method of making
US6193873B1 (en) * 1999-06-15 2001-02-27 Lifescan, Inc. Sample detection to initiate timing of an electrochemical assay
GB2351153B (en) * 1999-06-18 2003-03-26 Abbott Lab Electrochemical sensor for analysis of liquid samples
JP2001066274A (ja) 1999-08-27 2001-03-16 Omron Corp バイオセンサの評価方法
JP4050434B2 (ja) 1999-11-29 2008-02-20 松下電器産業株式会社 サンプルの弁別方法
JP3982133B2 (ja) 2000-01-25 2007-09-26 松下電器産業株式会社 バイオセンサを用いた測定装置並びにそれに使用されるバイオセンサおよび専用標準液
KR100340173B1 (ko) * 2000-03-22 2002-06-12 이동준 전기화학적 바이오센서 측정기
US20030036202A1 (en) 2001-08-01 2003-02-20 Maria Teodorcyzk Methods and devices for use in analyte concentration determination assays
EP1438648A2 (en) 2001-10-09 2004-07-21 Koninklijke Philips Electronics N.V. Device having touch sensitivity functionality
US6797150B2 (en) 2001-10-10 2004-09-28 Lifescan, Inc. Determination of sample volume adequacy in biosensor devices
US7018843B2 (en) 2001-11-07 2006-03-28 Roche Diagnostics Operations, Inc. Instrument
EP1455182B1 (en) 2001-11-20 2015-08-26 ARKRAY, Inc. Fail judging method and analyzer
US7083712B2 (en) * 2001-11-20 2006-08-01 Arkray, Inc. Fail judging method for analysis and analyzer
US6689411B2 (en) * 2001-11-28 2004-02-10 Lifescan, Inc. Solution striping system
US6749887B1 (en) * 2001-11-28 2004-06-15 Lifescan, Inc. Solution drying system
US6872299B2 (en) * 2001-12-10 2005-03-29 Lifescan, Inc. Passive sample detection to initiate timing of an assay
US6856125B2 (en) 2001-12-12 2005-02-15 Lifescan, Inc. Biosensor apparatus and method with sample type and volume detection
US6682933B2 (en) * 2002-03-14 2004-01-27 Lifescan, Inc. Test strip qualification system
US6942770B2 (en) * 2002-04-19 2005-09-13 Nova Biomedical Corporation Disposable sub-microliter volume biosensor with enhanced sample inlet
US6964871B2 (en) 2002-04-25 2005-11-15 Home Diagnostics, Inc. Systems and methods for blood glucose sensing
US6946299B2 (en) 2002-04-25 2005-09-20 Home Diagnostics, Inc. Systems and methods for blood glucose sensing
US6743635B2 (en) 2002-04-25 2004-06-01 Home Diagnostics, Inc. System and methods for blood glucose sensing
AU2003234944A1 (en) 2002-08-27 2004-03-18 Bayer Healthcare, Llc Methods of Determining Glucose Concentration in Whole Blood Samples
JP4313310B2 (ja) 2002-10-31 2009-08-12 パナソニック株式会社 検体液種を自動的に判別する定量方法
AU2003280660A1 (en) * 2002-11-01 2004-05-25 Arkray, Inc. Measuring instrument provided with sold component concentrating means
EP1422523B1 (en) * 2002-11-21 2007-05-23 Lifescan, Inc. Determination of sample volume adequacy in biosensors
US20040120848A1 (en) * 2002-12-20 2004-06-24 Maria Teodorczyk Method for manufacturing a sterilized and calibrated biosensor-based medical device
US7132041B2 (en) 2003-02-11 2006-11-07 Bayer Healthcare Llc Methods of determining the concentration of an analyte in a fluid test sample
EP1467206A1 (en) * 2003-04-08 2004-10-13 Roche Diagnostics GmbH Biosensor system
US8148164B2 (en) 2003-06-20 2012-04-03 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for determining the concentration of an analyte in a sample fluid
US7488601B2 (en) 2003-06-20 2009-02-10 Roche Diagnostic Operations, Inc. System and method for determining an abused sensor during analyte measurement
US7645421B2 (en) 2003-06-20 2010-01-12 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
US7452457B2 (en) 2003-06-20 2008-11-18 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for analyte measurement using dose sufficiency electrodes
US7597793B2 (en) 2003-06-20 2009-10-06 Roche Operations Ltd. System and method for analyte measurement employing maximum dosing time delay
US7718439B2 (en) 2003-06-20 2010-05-18 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
TR201810169T4 (tr) 2003-06-20 2018-08-27 Hoffmann La Roche Dar, homojen belirteç şeritlerinin üretilmesi için yöntem ve belirteç.
US7645373B2 (en) 2003-06-20 2010-01-12 Roche Diagnostic Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
US7604721B2 (en) 2003-06-20 2009-10-20 Roche Diagnostics Operations, Inc. System and method for coding information on a biosensor test strip
US20050036906A1 (en) 2003-08-11 2005-02-17 Toray Industries, Inc. Biosensor
JP4449431B2 (ja) 2003-11-19 2010-04-14 パナソニック株式会社 基質濃度の測定方法
GB0400394D0 (en) 2004-01-09 2004-02-11 Hypoguard Ltd Biosensor and method of manufacture
BRPI0509296A (pt) 2004-03-31 2007-09-18 Bayer Healthcare Llc método e aparelho para implementar funções corretivas baseadas em limiares para biossensores
EP3115777B1 (en) 2004-04-19 2020-01-08 PHC Holdings Corporation Method for measuring blood components
WO2005114163A1 (en) 2004-05-14 2005-12-01 Bayer Healthcare Llc Methods for performing hematocrit adjustment in glucose assays and devices for same
US7862341B2 (en) * 2004-06-17 2011-01-04 Krueger International, Inc. Marker board
US7556723B2 (en) 2004-06-18 2009-07-07 Roche Diagnostics Operations, Inc. Electrode design for biosensor
CA2603542C (en) * 2005-04-08 2014-01-14 Bayer Healthcare Llc Oxidizable species as an internal reference in control solutions for biosensors
US7344626B2 (en) 2005-04-15 2008-03-18 Agamatrix, Inc. Method and apparatus for detection of abnormal traces during electrochemical analyte detection
US7964089B2 (en) * 2005-04-15 2011-06-21 Agamatrix, Inc. Analyte determination method and analyte meter
US7645374B2 (en) * 2005-04-15 2010-01-12 Agamatrix, Inc. Method for determination of analyte concentrations and related apparatus
US7547382B2 (en) * 2005-04-15 2009-06-16 Agamatrix, Inc. Determination of partial fill in electrochemical strips
US7695600B2 (en) * 2005-06-03 2010-04-13 Hypoguard Limited Test system
US20070017824A1 (en) * 2005-07-19 2007-01-25 Rippeth John J Biosensor and method of manufacture
JP4481909B2 (ja) 2005-09-21 2010-06-16 日立オートモティブシステムズ株式会社 コネクタに用いる接続端子の製造方法
US7749371B2 (en) 2005-09-30 2010-07-06 Lifescan, Inc. Method and apparatus for rapid electrochemical analysis
WO2007040913A1 (en) 2005-09-30 2007-04-12 Bayer Healthcare Llc Gated voltammetry
US7429865B2 (en) * 2005-10-05 2008-09-30 Roche Diagnostics Operations, Inc. Method and system for error checking an electrochemical sensor
US7468125B2 (en) 2005-10-17 2008-12-23 Lifescan, Inc. System and method of processing a current sample for calculating a glucose concentration
JP2007133985A (ja) 2005-11-11 2007-05-31 Hitachi Ltd 磁気記録・光記録ディスク検査装置
CA2643163C (en) 2006-02-27 2020-01-28 Bayer Healthcare Llc Temperature-adjusted analyte determination for biosensor systems
US20070205114A1 (en) * 2006-03-01 2007-09-06 Mathur Vijaywanth P Method of detecting biosensor filling
JP2007248281A (ja) 2006-03-16 2007-09-27 Matsushita Electric Ind Co Ltd 電極チップ及びその製造方法
US8529751B2 (en) 2006-03-31 2013-09-10 Lifescan, Inc. Systems and methods for discriminating control solution from a physiological sample
US8163162B2 (en) 2006-03-31 2012-04-24 Lifescan, Inc. Methods and apparatus for analyzing a sample in the presence of interferents
US20070235346A1 (en) * 2006-04-11 2007-10-11 Popovich Natasha D System and methods for providing corrected analyte concentration measurements
RU2441223C2 (ru) 2006-05-03 2012-01-27 БАЙЕР ХЕЛТКЭА ЭлЭлСи Система обнаружения состояния недостаточного заполнения для электрохимического биосенсора
US7909983B2 (en) 2006-05-04 2011-03-22 Nipro Diagnostics, Inc. System and methods for automatically recognizing a control solution
CN101437443B (zh) 2006-05-08 2011-11-30 拜尔健康护理有限责任公司 生物传感器用的异常输出检测系统
EP1860432B1 (en) * 2006-05-24 2017-12-13 Bionime GmbH A method for operating a measuring meter and a measuring meter
JP5018777B2 (ja) 2006-07-05 2012-09-05 パナソニック株式会社 液体試料測定方法および装置
US20080083618A1 (en) 2006-09-05 2008-04-10 Neel Gary T System and Methods for Determining an Analyte Concentration Incorporating a Hematocrit Correction
WO2008047842A1 (en) 2006-10-19 2008-04-24 Panasonic Corporation Method for measuring hematocrit value of blood sample, method for measuring concentration of analyte in blood sample, sensor chip and sensor unit
US8409424B2 (en) 2006-12-19 2013-04-02 Apex Biotechnology Corp. Electrochemical test strip, electrochemical test system, and measurement method using the same
KR101001902B1 (ko) 2007-09-27 2010-12-17 주식회사 필로시스 바이오센서 측정결과 오류의 보정방법 및 이를 이용한 장치
US8778168B2 (en) * 2007-09-28 2014-07-15 Lifescan, Inc. Systems and methods of discriminating control solution from a physiological sample
US8603768B2 (en) 2008-01-17 2013-12-10 Lifescan, Inc. System and method for measuring an analyte in a sample
US8551320B2 (en) * 2008-06-09 2013-10-08 Lifescan, Inc. System and method for measuring an analyte in a sample
EP2373984B1 (en) 2008-12-08 2022-11-30 Ascensia Diabetes Care Holdings AG Biosensor signal adjustment
BR112012031166A2 (pt) 2010-06-07 2018-02-27 Bayer Healthcare Llc compensação baseada eminclinação incluindo sinais de saída secundários
JP3167464U (ja) 2010-10-20 2011-04-28 由英 高藤 生理ナプキンのパッケージとケース

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