ES2935172T3 - Formulaciones secas de vacunas contra el parvovirus que son estables a la temperatura ambiente - Google Patents

Formulaciones secas de vacunas contra el parvovirus que son estables a la temperatura ambiente Download PDF

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Abstract

La presente invención describe formulaciones secas de vacunas estables a temperatura ambiente que comprenden un virus vivo atenuado, un estabilizador de azúcar y un estabilizador de aminoácidos. La presente invención también describe la fabricación de tales vacunas y métodos para proteger a un animal mediante la administración de tales vacunas. (Traducción automática con Google Translate, sin valor legal)

Description

DESCRIPCIÓN
Formulaciones secas de vacunas contra el parvovirus que son estables a la temperatura ambiente
Campo de la invención
La presente invención concierne a formulaciones secas de vacunas estables a la temperatura ambiente que comprenden un parvovirus canino atenuado vivo (CPV).
Antecedentes
Los virus vivos atenuados son inestables cuando se almacenan a la temperatura ambiente durante periodos prolongados de tiempo. Por lo tanto, la mayoría de las vacunas de virus vivos atenuados están liofilizadas y refrigeradas antes de su uso. Sin embargo, el transporte y el almacenamiento de dichas vacunas da lugar a significativos costes adicionales que deben ser trasladados a los dispensarios de vacunas, veterinarios, manipuladores de ganado/granjeros, y finalmente al propietario de la mascota o al consumidor. Dichos costes pueden resultar ser prohibitivos en las comunidades pobres y en los países del tercer mundo. Consecuentemente, la OMS requiere una supervivencia mínima de > 20 % después de 28 días a 37 °C para la vacuna BCG humana [véase, por ejemplo, Jin et al, Vaccine 29: 4848- 4852 (2011)].
Existe una cantidad significativa de virus que puede infectar tanto a los animales de compañía (tales como perros, gatos y caballos) como al ganado (tales como aves, ganado vacuno y porcino). Por ejemplo, mientras que los síntomas debidos a las correspondientes infecciones víricas pueden incluir unos leves síntomas similares a los de un resfriado, otros pueden ser rápidamente mortales, como el caso de infecciones por el virus del moquillo canino (CDV) [véase, por ejemplo, el documento US2010/0196420]. De hecho, el CDV desencadena una infección multisistémica que puede implicar los sistemas ocular, respiratorio, gastrointestinal, tegumentario y nervioso. El índice de mortalidad por el parvovirus canino (CPV) también es relativamente alto [véase, por ejemplo, el documento US2009/0010955]. El CPV es un patógeno fundamentalmente entérico que infecta a perros, especialmente a perros jóvenes, y se caracteriza por una diarrea aguda, fiebre y leucopenia en perros y cachorros de más de entre 4 y 5 semanas de edad. Incluso los cachorros más jóvenes pueden sufrir una enfermedad miocárdica. El virus canino del moquillo y el parvovirus canino son los dos virus caninos más importantes contra los que hay que proteger a los cachorros/perros.
Algunos virus caninos adicionales incluyen: el virus paragripal canino (CPI), que es un virus muy contagioso que causa enfermedades respiratorias que contribuyen a contraer enfermedades del tracto respiratorio superior y traqueobronquitis infecciosas; el adenovirus canino tipo-1 (CAVI) que da lugar a una hepatitis infecciosa; y el virus de la gripe canina (CIV) que es muy contagioso y puede causar una grave enfermedad de tipo respiratorio. Se ha notificado que el CIV es capaz de causar una infección del 100 % con una morbilidad del 80 % y una mortalidad de hasta el 5-8% en las infecciones graves [Crawford et al, Science 310 (5747): 482-485 (2005); documento U.S.
7.959.929 B2], De forma análoga, existen diversos virus felinos que afectan a los gatos, incluyendo el calicivirus felino (FCV), el virus de la leucemia felina (FeLV), el virus de la panleucopenia felina (FPLV), el coronavirus felino (FCoV) y el virus de la rinotraqueítis felina (FVR).
También existe una cantidad significativa de virus que pueden infectar al ganado vacuno. Dichos virus incluyen los virus de la diarrea bovina de los tipos 1 y 2 (BVDV1 y BVDV2), el virus de la rinotraqueítis infecciosa bovina (IBR), el paragripal de tipo 3 (PI3), el virus respiratorio sincitial bovino (BRSV) y el coronavirus respiratorio bovino (BRCV). Además, existen numerosas bacterias que pueden infectar también al ganado vacuno, que incluyen Pasteurella multocida, Mannheimia haemolytica, Histophilus somni y Mycoplasma bovis.
De forma análoga, existe una cantidad significativa de virus que pueden infectar a las aves. Dichos virus incluyen el virus de la bronquitis infecciosa (IBV), el virus de la enfermedad infecciosa de las bolsas sinoviales (IBDV), el virus de la enfermedad de Newcastle (NDV), el de la laringotraqueítis infecciosa (ILTV), el virus de la enfermedad de Marek (MDV), el herpes virus de los pavos (HVT) que también se conoce como MDV3, y los metaneumovirus de las aves (aMPV). Además, existen numerosas bacterias que pueden infectar también a las aves, que incluyen Pasteurella multocida, Salmonella ssp., Escherichia coli, Mycoplasma ssp., Avibacterium paragallinararum, Erysipelas ssp., Campylobacter ssp., Vibrio ssp., Clostridium perfringens, y parásitos tales como Eimeria.
Además, existen numerosos virus que pueden infectar al ganado porcino. Dichos virus incluyen el virus del síndrome reproductor y respiratorio porcino (PRRS), el circovirus porcino (PCV), el virus transmisible de la gastroenteritis (TGE), el virus de la seudorrabia porcina (PPRV), el parvovirus porcino (PPV), el virus de la gripe porcina (SIV), el rotavirus porcino (PRV) y el virus de la diarrea epidémica porcina (PED). Además, existen numerosas bacterias que pueden infectar también al ganado porcino, que incluyen Pasteurella multocida de múltiples serotipos, Salmonella ssp., Escherichia coli de múltiples tipos de pillus, Haemophilus parasuis, Lawsonia intracellularis, Mycoplasma ssp., Bordetella bronchiseptica, Erysipelas ssp., Campylobacter ssp., Actinobacillus pleuropneumonia, Clostridium perfringens y Clostridium difficile.
Ahora está ampliamente aceptado que la mejor forma de prevenir una enfermedad debida a infecciones por virus en un animal es la vacunación de ese animal frente a esos virus. Únicamente como un ejemplo, en los perros, las vacunas contra el virus del moquillo canino han reducido significativamente la prevalencia de la correspondiente enfermedad. De forma análoga, la hepatitis infecciosa canina ha sido extremadamente limitada por las vacunas contra el adenovirus canino-2 (CAV2). El uso de un CAV2 vivo atenuado en vacunas en lugar del estrechamente relacionado CAV1 elimina las preocupaciones relativas a la nefritis intersticial y la opacidad corneal observada en los perros que han sido inoculados con el CAV1 vivo atenuado [Taguchi et al, Can Vet J. 52 (9): 983-986 (2011)]. Además, las vacunas multivalentes de virus vivos atenuados pueden ser administradas de una forma segura que limita el número de inyecciones necesarias de la vacuna. Consecuentemente, existen numerosas vacunas multivalentes de virus vivos atenuados caninos disponibles comercialmente que protegen frente al moquillo canino, la hepatitis infecciosa canina, el parvovirus canino y el virus paragripal canino. Además, las nuevas vacunas multivalentes protegen adicionalmente también contra el virus de la gripe canina. Sin embargo, sigue habiendo una gran necesidad de vacunas de virus atenuados vivos, tales como vacunas de virus caninos, que puedan ser transportadas y almacenadas a la temperatura ambiente. El documento WO03/087327 proporciona métodos y composiciones para la preservación de materiales bioactivos en una matriz de espuma seca.
El documento WO2007/03455 divulga formulaciones secas contra el moquillo atenuado canino (CDVI) y paramixovirus canino tipo 2 (cPi2) que comprende un 20-50 % de monosacárido reductor (sacarosa y/o rafinosa), un 2-6 % de antioxidante (es decir, estabilizante aminoácido) tal como glutamato o aspartato y un 15-70 % de agente de volumen.
Sumario de la invención
Con objeto de superar las deficiencias de las vacunas actuales, la presente invención proporciona nuevas formulaciones secas estables de vacunas contra el parvovirus atenuado canino (CPV) con microbios vivos, por ejemplo, vacunas contra virus, que pueden ser transportadas y/o almacenadas a la temperatura ambiente, así como sus correspondientes composiciones inmunógenas. Estas formulaciones secas siguen siendo eficaces a 27 °C durante periodos prolongados, tales como de 12 meses, de 18 meses, o incluso más largos (por ejemplo, de entre 1,5 y 3 años).
En ciertas realizaciones, la vacuna atenuada con microbios vivos comprende un virus recombinante. En algunas realizaciones en particular de este tipo, el virus recombinante se emplea como un vector recombinante que codifica una proteína heteróloga. En algunas realizaciones más en particular de este tipo, la proteína heteróloga es un antígeno vírico o bacteriano. La presente invención también proporciona métodos para la elaboración de las formulaciones secas estables de la presente invención. La presente invención también proporciona métodos para el almacenamiento de las vacunas de la presente invención antes de su uso a 27 °C durante periodos prolongados, tales como de 12 meses o más largos (por ejemplo, de entre 1,5 y 3 años) en forma de formulaciones secas estables.
Las formulaciones secas estables de la presente invención pueden usarse en métodos de administración de dichas formulaciones a un animal. La formulación seca estable puede ser reconstituida en una vacuna líquida antes de su administración. Algunos métodos adicionales para la prevención de una enfermedad en un animal pueden llevarse a cabo a través de la administración de la formulación seca (por ejemplo, en forma de un polvo) y/o de la vacuna reconstituida líquida de la presente invención.
El animal de compañía es un canino.
Consecuentemente, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas que son estables a la temperatura ambiente que comprenden un parvovirus canino (CPV) atenuado como se define en las reivindicaciones adjuntas. En realizaciones particulares, las formulaciones secas de la vacuna comprenden un estabilizante de azúcar. En realizaciones relacionadas de este tipo, la vacuna comprende entre un 15 % y un 80 % (p/p) de estabilizante de azúcar. En realizaciones particulares, las formulaciones secas de la vacuna comprenden entre un 30 % y un 80 % (p/p) del estabilizante de azúcar. En algunas otras realizaciones en particular, la vacuna comprende entre un 40 % y un 80 % (p/p) del estabilizante de azúcar. En ciertas realizaciones, la vacuna comprende entre un 25 % y un 50 % (p/p) del estabilizante de azúcar. En algunas realizaciones relacionadas la vacuna comprende entre un 30 % y un 70 % (p/p) del estabilizante de azúcar. En algunas realizaciones aún más en particular, la vacuna comprende entre un 40 % y un 60 % (p/p) del estabilizante de azúcar.
En ciertas realizaciones, el estabilizante de azúcar es un oligosacárido no reductor. En algunas realizaciones en particular de este tipo, el oligosacárido no reductor es sacarosa. En otras realizaciones más, el oligosacárido no reductor es trehalosa. En otras realizaciones más, el oligosacárido no reductor es rafinosa. En otras realizaciones, el estabilizante de azúcar es un alcohol de azúcar. En una realización en particular de este tipo, el alcohol de azúcar es sorbitol. En otras realizaciones, el alcohol de azúcar es xilitol. En otras realizaciones más, el alcohol de azúcar es maltitol.
En algunas realizaciones alternativas, el estabilizante de azúcar es realmente una combinación de dos o más estabilizantes de azúcar. En algunas realizaciones en particular de este tipo, el estabilizante de azúcar es una combinación de sacarosa y sorbitol. En ciertas realizaciones, el estabilizante de azúcar es una combinación de sacarosa y trehalosa. En otras realizaciones más, el estabilizante de azúcar es una combinación de trehalosa y sorbitol.
En otras realizaciones más, el estabilizante de azúcar es una combinación de sacarosa, trehalosa y sorbitol.
Las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención comprenden adicionalmente uno o más estabilizantes de volumen como se define en las reivindicaciones adjuntas.
En ciertas realizaciones, el estabilizante de volumen es manitol. En algunas realizaciones relacionadas, el estabilizante de volumen es glicina. En algunas realizaciones en particular, el estabilizante de volumen es dextrano. En ciertas realizaciones, el estabilizante de volumen es maltodextrina. En algunas realizaciones en particular, el estabilizante de volumen es dextrosa. En otras realizaciones, el estabilizante de volumen es polivinilpirrolidona. En otras realizaciones más, el estabilizante de volumen es hidroxietil almidón. En otras realizaciones más, las vacunas comprenden una combinación de estabilizantes de volumen. En ciertas realizaciones, el estabilizante de volumen comprende dos o más de los siguientes: dextrano, manitol, glicina, maltodextrina, polivinilpirrolidona e hidroxietil almidón. En algunas realizaciones en particular de este tipo, el estabilizante de volumen comprende manitol y glicina. En algunas realizaciones relacionadas, el estabilizante de volumen comprende dextrano y glicina. En otras realizaciones más de este tipo, el estabilizante de volumen comprende manitol, dextrano y glicina.
En algunas realizaciones en particular, el estabilizante proteico es gelatina. En otras realizaciones, el estabilizante proteico es un hidrolizado de caseína completa. En algunas realizaciones en particular, el hidrolizado de caseína completa es un hidrolizado proteolítico de caseína completa. En otras realizaciones más, el estabilizante proteico es una combinación tanto de gelatina como de un hidrolizado proteolítico de caseína completa.
Las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención varían en el pH entre un pH de 6,0 y un pH de 8,0. En ciertas realizaciones, el intervalo de pH es entre un pH de 6,5 y un pH de 7,8. En algunas realizaciones en particular, el intervalo de pH es entre un pH de 6,8 y un pH de 7,5. En otras realizaciones el intervalo de pH es entre un pH de 6,0 y un pH de 7,6. En otras realizaciones más, el intervalo de pH es entre un pH de 6,0 y un pH de 6,8. En otras algunas realizaciones más en particular, el intervalo de pH es entre un pH de 7,0 y un pH de 7,4. En algunas realizaciones más en particular, el pH es pH 7,2. En algunas otras realizaciones más en particular, el pH es un pH de 6,5.
Las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención pueden comprender un tampón. En una realización en particular de este tipo, el tampón comprende entre un 0,1 % y un 2 % (p/p) de histidina (entre 2,5 y 50 mM antes de su secado). En una realización relacionada, el tampón comprende entre un 0,2 % y un 1 % (p/p) de histidina. En algunas realizaciones en particular, el tampón comprende entre un 0,25 % y un 0,75% (p/p) de histidina. En algunas realizaciones más en particular, el tampón comprende un 0,5% (p/p) de histidina.
En otras realizaciones, el tampón comprende entre un 0,1 % y un 2 % (p/p) de fosfato (de fosfato de sodio, de fosfato de potasio, o de una mezcla de los dos; entre 2,5 y 50 mM antes de su secado). En algunas realizaciones relacionadas, el tampón comprende entre un 0,2 % y un 1 % (p/p) de fosfato. En algunas realizaciones en particular, el tampón comprende entre un 0,25% y un 0,75% (p/p) de fosfato. En algunas realizaciones más específicas el tampón comprende un 0,5 % (p/p) de fosfato.
En otras realizaciones más, el tampón puede comprender entre 2,5 y 50 mM de Tris. En algunas realizaciones en particular, el tampón comprende entre 2,5 y 50 mM de Tris y entre 2,5 y 50 mM de histidina. En algunas realizaciones más en particular, el tampón comprende entre 5 y 20 mM de Tris y entre 5 y 20 mM de histidina. En algunas realizaciones aún más en particular, el tampón comprende entre 7,5 y 15 mM de Tris y entre 7,5 y 15 mM de histidina.
Las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención también pueden comprender un estabilizante aminoácido. En algunas realizaciones en particular, el estabilizante aminoácido es arginina. En otras realizaciones más, el estabilizante aminoácido es ácido glutámico. En otras realizaciones más, el estabilizante aminoácido es ácido aspártico. En otras realizaciones más, el estabilizante aminoácido es lisina. En algunas realizaciones relacionadas, las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención comprenden dos o más estabilizantes aminoácidos. En una realización en particular de este tipo, el estabilizante aminoácido es arginina y glutamato.
En ciertas realizaciones, la concentración del estabilizante aminoácido en la vacuna es de 0,1-0,4 M en la formulación líquida [del 10% - 40% (p/p) en la formulación seca]. En algunas realizaciones en particular, la concentración del estabilizante aminoácido en la vacuna es de 0,25-0,35 M en la formulación líquida. En algunas realizaciones más en particular, la concentración del estabilizante aminoácido en la vacuna es de 0,25-0,35 M en la formulación líquida. En algunas realizaciones aún más en particular, el estabilizante aminoácido es 0,3 M de arginina en la formulación líquida.
Las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención también comprenden un estabilizante proteico. El estabilizante proteico puede ser una proteína intacta y/o un hidrolizado de proteína. En algunas realizaciones en particular, el estabilizante proteico es gelatina. En algunas realizaciones alternativas, el estabilizante proteico es un hidrolizado de caseína completa. En ciertas realizaciones, el hidrolizado de caseína completa es un hidrolizado proteolítico de caseína completa. La formulación seca comprende entre un 4 % y un 50 % (p/p) del estabilizante proteico. En algunas realizaciones en particular, el estabilizante proteico comprende entre un 1 % y un 10 % (p/p) de gelatina. En algunas otras realizaciones más en particular, el estabilizante proteico comprende entre un 1 % y un 10 % (p/p) de un hidrolizado de caseína completa.
Las formulaciones secas de vacunas de la presente invención también pueden comprender un estabilizante proteico que incluya tanto gelatina como un hidrolizado de caseína completa. En algunas realizaciones en particular de este tipo, el estabilizante proteico comprende entre un 1 % y un 10 % (p/p) de gelatina y entre un 1 % y un 10 % (p/p) de un hidrolizado de caseína completa. En algunas realizaciones más en particular, el estabilizante proteico comprende entre un 2 % y un 5 % (p/p) de gelatina y entre un 2 % y un 6 % (p/p) de un hidrolizado de caseína completa. En algunas otras realizaciones en particular, el estabilizante proteico comprende entre un 0,4 % y un 3,0 % de gelatina (p/p) y entre un 0,5 % y un 3,0 % (p/p) de un hidrolizado de caseína completa. En algunas realizaciones específicas, el estabilizante proteico comprende un 2,3 % (p/p) de gelatina y un 2,8 % (p/p) de un hidrolizado de caseína completa. En otras realizaciones específicas, el estabilizante proteico comprende un 3,3 % (p/p/) de gelatina y un 4,2 % (p/p) de un hidrolizado de caseína completa.
Cualquiera de las formulaciones secas de la presente invención puede comprender adicionalmente entre un 0,02 % y un 1 % (p/p) de una sal de un catión divalente. En algunas realizaciones en particular, el catión divalente es entre 1 mM - 5 mM en la forma líquida y entre 0,1 % - 0,5 % (p/p) en la formulación seca. En ciertas realizaciones, el catión divalente es magnesio (Mg++). En otras realizaciones el catión divalente es calcio (Ca++). En otras realizaciones más, el catión divalente es cinc (Zn++). En otras realizaciones más, el catión divalente es una mezcla de Mg++ y/o Ca++ y/o Zn++.
Cualquiera de las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención puede comprender adicionalmente uno o más osmolitos. En algunas realizaciones en particular, el osmolito es ectoína. En algunas otras realizaciones en particular, el osmolito es hidroxiectoína. En otras realizaciones más, el osmolito es una combinación de ectoína y hidroxiectoína. En algunas realizaciones en particular, el porcentaje del osmolito en la formulación es de entre un 0,2 % y un 7,5 % (p/p). En algunas realizaciones más en particular, el porcentaje del osmolito en la formulación es de entre un 0,5 % y un 5 % (p/p). En algunas realizaciones aún más en particular, el porcentaje del osmolito en la formulación es de entre un 1 % y un 3 % (p/p).
Las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la presente invención comprenden un virus canino atenuado vivo.
El virus canino atenuado vivo es el parvovirus canino (CPV). En una particular realización de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2 (CPV-2). En otra realización en particular de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2a (CPV-2a). En otra realización más en particular de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2b (CPV-2b). En otra realización aún más en particular de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2c (CPV-2c). En una realización específica de este tipo, el CPV-2c es el n° de registro de la ATCC PTA-13492. En otra realización más, el parvovirus canino es un parvovirus canino recombinante que se ha construido para que comprenda un genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2, es decir, la región que codifica las proteínas de la cápside es de una cepa del CPV-2c, y la región que codifica las proteínas no estructurales es de una cepa del CPV-2 [véase el documento U.S. 2012/0328652 A1, en el que la secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de la cápside en el genoma del CPV-2 ha sido sustituida por la secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de la cápside de un CPV-2c, dando así como resultado el genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2]. En otras realizaciones más, el virus canino atenuado vivo es virus paragripal canino (CPI).
La presente invención también incluye vectores víricos recombinantes.
Además, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas estables a la temperatura ambiente que son vacunas multivalentes. En algunas realizaciones en particular, las vacunas multivalentes de la presente invención comprenden únicamente vacunas de un virus vivo atenuado. Dichas vacunas multivalentes pueden contener cualquier combinación de virus vivos atenuados. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo y el parvovirus canino atenuado vivo. En algunas realizaciones relacionadas, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo, el parvovirus canino atenuado vivo y el virus paragripal canino atenuado vivo. En otras realizaciones más, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo, el parvovirus canino atenuado vivo y el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2. En otras realizaciones más, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo, el parvovirus canino atenuado vivo, el virus paragripal canino atenuado vivo y el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2. En algunas realizaciones en particular, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo, el parvovirus canino atenuado vivo, el virus paragripal canino atenuado vivo, el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2 y el coronavirus canino atenuado vivo. En algunas realizaciones relacionadas, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo, el parvovirus canino atenuado vivo, el virus paragripal canino atenuado vivo, el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2 y el coronavirus vivo atenuado felino. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la vacuna multivalente comprende el virus del moquillo canino atenuado vivo, el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2, el parvovirus canino atenuado vivo, el virus paragripal canino atenuado vivo y el virus de la gripe canino atenuado vivo.
En otras realizaciones, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas multivalentes estables a la temperatura ambiente que comprenden el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2 y el parvovirus canino atenuado vivo. En otras realizaciones más, la vacuna multivalente comprende el parvovirus canino atenuado vivo y el virus paragripal canino atenuado vivo. En otras realizaciones más la vacuna multivalente comprende el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2, el parvovirus canino atenuado vivo y el virus paragripal canino atenuado vivo. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la vacuna multivalente comprende el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2, el parvovirus canino atenuado vivo, el virus paragripal canino atenuado vivo y el virus de la gripe canino atenuado vivo.
En otras realizaciones, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas multivalentes estables a la temperatura ambiente que comprenden el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2 y el parvovirus canino atenuado vivo. En otras realizaciones más, la vacuna multivalente comprende el parvovirus canino atenuado vivo y el virus paragripal canino atenuado vivo. En otras realizaciones más, la vacuna multivalente comprende el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2, el parvovirus canino atenuado vivo y el virus paragripal canino atenuado vivo. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la vacuna multivalente comprende el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2, el parvovirus canino atenuado vivo, el virus paragripal canino atenuado vivo y el virus de la gripe canino atenuado vivo.
En cualquiera de las realizaciones mencionadas anteriormente, el virus canino atenuado vivo puede ser un vector vírico recombinante. En algunas realizaciones en particular, el vector vírico recombinante es un vector de parvovirus recombinante canino. En algunas realizaciones en particular de este tipo, el vector de parvovirus recombinante canino codifica y expresa un antígeno heterólogo.
En otras realizaciones específicas, las formulaciones secas de una vacuna multivalente que comprenden un parvovirus canino (CPV) pueden comprender adicionalmente entre un 0,5 % y un 5 % (p/p) de sorbitol.
En algunas realizaciones en particular, el título de un virus vivo atenuado en las formulaciones secas de una vacuna (o de cada uno de los virus en una vacuna multivalente) de la presente invención es de entre 1 x 103 y 1 x 1010. En algunas realizaciones más en particular, el título es de entre 1 x 104 y 1 x 109. En algunas realizaciones aún más en particular, el título es de entre 5 x 104 y 1 x 108.
Consecuentemente, la presente invención proporciona formulaciones secas de una vacuna que comprenden un parvovirus canino atenuado vivo (CPV), entre un 30 % y un 80 % (p/p) de un oligosacárido no reductor, entre un 6 % y un 40 % (p/p) de un estabilizante aminoácido, entre un 4 % y un 50 % (p/p) de un estabilizante proteico y un tampón que tiene un pH de entre 6,8 y 8,0. En algunas realizaciones en particular, las formulaciones secas siguen siendo eficaces durante al menos 18 meses a 27 °C. Las formulaciones secas comprenden adicionalmente entre un 10 % y un 70 % (p/p) de un estabilizante de volumen. En unas realizaciones en particular, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor y/o el alcohol de azúcar es de entre 0,025 y 0,60. En unas realizaciones más en particular, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor y/o el alcohol de azúcar es de entre 0,05 y 0,40. En algunas realizaciones aún más en particular, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor y/o el alcohol de azúcar es de entre 0,075 y 0,30. En algunas realizaciones aún más en particular, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor y/o el alcohol de azúcar es de entre 0,1 y 0,25.
En algunas realizaciones en particular, un oligosacárido no reductor de una formulación seca de una vacuna de la presente invención comprende sacarosa y/o trehalosa y/o rafinosa. En ciertas realizaciones de este tipo, el pH de la formulación seca es un pH de entre 6,8 y 7,6. En algunas realizaciones en particular de la presente invención, el estabilizante de volumen es manitol. En algunas realizaciones relacionadas, el estabilizante aminoácido es arginina. En ciertas realizaciones de este tipo, el estabilizante aminoácido comprende adicionalmente glutamato.
En algunas realizaciones específicas, la formulación seca de una vacuna de la presente invención comprende una combinación de entre un 20 % y un 80 % (p/p) de sacarosa y entre un 18 % y un 66 % (p/p) de trehalosa como el oligosacárido no reductor, entre un 5 % y un 20 % (p/p) de manitol como el estabilizante de volumen, entre un 9 % y un 34 % (p/p) del estabilizante aminoácido, una combinación de entre un 2 % y un 5 % (p/p) de gelatina y entre un 2 % y un 6 % (p/p) de un hidrolizado proteolítico de caseína completa como el estabilizante proteico, y un tampón a un pH de entre 6,2 y 7,5. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor es de entre 0,08 y 0,37.
En algunas realizaciones más específicas, el oligosacárido no reductor es una combinación de entre un 45 % y un 60 % (p/p) de sacarosa y entre un 15 % y un 25 % (p/p) de trehalosa, el estabilizante de volumen es entre un 5 % y un 17 % (p/p) de manitol, el estabilizante aminoácido es entre un 10 % y un 25 % (p/p) de arginina; el estabilizante proteico comprende entre un 1,5 % y un 3,5 % (p/p) de gelatina y entre un 2 % y un 4 % (p/p) de un hidrolizado proteolítico de caseína completa, y un tampón a un pH de entre 6,2 y 7,5. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor es de entre 0,1 y 0,3.
La presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas que comprenden un parvovirus canino atenuado vivo (CPV), entre un l0 % y un 80 % (p/p) de un alcohol de azúcar, entre un 10 % y un 70 % (p/p) de un estabilizante de volumen, entre un 4 % y un 50 % (p/p) de un estabilizante proteico y un tampón que tiene un pH de entre 6,8 y 8,0. En algunas realizaciones en particular de este tipo, la formulación seca comprende adicionalmente entre un 10 % y un 50 % (p/p) de un estabilizante aminoácido. En ciertas realizaciones, la formulación seca de la vacuna sigue siendo eficaz durante al menos 18 meses a 27 °C.
En algunas realizaciones más en particular, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas que comprenden un parvovirus canino atenuado vivo (CPV), entre un 23 % y un 49 % (p/p) de un alcohol de azúcar, entre un 16 % y un 50 % (p/p) de un estabilizante de volumen, entre un 7 % y un 36 % (p/p) de un estabilizante proteico y un tampón que tiene un pH de entre 7,0 y 7,4. En algunas realizaciones aún más en particular de este tipo, la formulación seca comprende adicionalmente entre un 25 % y un 36 % (p/p) de un estabilizante aminoácido. En ciertas realizaciones, la formulación seca de la vacuna sigue siendo eficaz durante al menos 18 meses a 27 °C.
El alcohol de azúcar de las formulaciones secas de estas vacunas monovalentes del CPV, puede ser sorbitol, manitol, xilitol, maltitol y combinaciones de los mismos, el estabilizante de volumen puede ser dextrano, maltodextrina, polivinilpirrolidona, hidroxietil almidón, glicina, o cualquier combinación de los mismos. El estabilizante proteico puede ser gelatina, un hidrolizado de caseína completa, o una combinación de los dos. En ciertas realizaciones de este tipo, el hidrolizado de caseína completa es un hidrolizado proteolítico de caseína completa. En algunas realizaciones en particular, el alcohol de azúcar es sorbitol, el estabilizante de volumen es una combinación de dextrano y glicina, y el estabilizante proteico es una combinación de gelatina y un hidrolizado proteolítico de caseína completa.
En algunas realizaciones más en particular, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas que comprenden un parvovirus canino atenuado vivo (CPV), entre un 10 % y un 80 % (p/p) de sorbitol como el alcohol de azúcar, una combinación de entre un 5 % y un 30 % (p/p) de glicina y entre un 5 % y un 40 % (p/p) de dextrano como el estabilizante de volumen, una combinación de entre un 2 % y un 25 % (p/p) de gelatina con entre un 2 % y un 25 % (p/p) de un hidrolizado proteolítico de caseína completa como el estabilizante proteico; y un tampón que tiene un pH de entre 6,5 y 7,8. En ciertas realizaciones de este tipo, se incluye entre un 10 % y un 50 % (p/p) de arginina como un estabilizante aminoácido. En algunas realizaciones específicas, el tampón es entre un 0,2 % y un 5 % (p/p) de fosfato de potasio o de sodio, a un pH de entre 6,5 y 7,8. En ciertas realizaciones, la formulación seca de la vacuna sigue siendo eficaz durante al menos 18 meses a 27 °C.
En algunas realizaciones aún más en particular, la presente invención proporciona formulaciones secas de vacunas que comprenden un parvovirus canino atenuado vivo (CPV), entre un 23 % y un 49 % (p/p) de sorbitol como el alcohol de azúcar, una combinación de entre un 8 % y un 17 % (p/p) de glicina y entre un 8 % y un 33 % (p/p) de dextrano como el estabilizante de volumen, una combinación de entre un 3 % y un 18 % (p/p) de gelatina con entre un 4 % y un 18 % (p/p) de un hidrolizado proteolítico de caseína completa como el estabilizante proteico; y un tampón que tiene un pH de entre 7,0 y 7,4. En ciertas realizaciones de este tipo, se incluye entre un 25 % y un 36 % (p/p) de arginina como un estabilizante aminoácido. En algunas realizaciones específicas, el tampón es entre un 0,5 % y un 2 % (p/p) de fosfato de potasio o de sodio, a un pH de entre 7,0 y 7,4. En ciertas realizaciones, la formulación seca de la vacuna sigue siendo eficaz durante al menos 18 meses a 27 °C.
En algunas realizaciones en particular, el parvovirus canino (CPV) es un parvovirus canino 2 (CPV-2). En otra realización en particular de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2a (CPV-2a). En otra realización más en particular de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2b (CPV-2b). En otra realización aún más en particular de este tipo, el parvovirus canino es un parvovirus canino 2c (CPV-2c). En una realización específica de este tipo, el CPV-2c es el n° de registro de la ATCC PTA-13492. En otra realización más, el parvovirus canino es un parvovirus canino recombinante que ha sido construido para que comprenda un genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2, es decir, la región que codifica las proteínas de la cápside es de una cepa del CPV-2c, y la región que codifica las proteínas no estructurales es de una cepa del CPV-2 [véase el documento U.S. 2012/0328652 A1, en el que la secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de la cápside en el genoma del CPV-2 ha sido sustituida por la secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de la cápside de un CPV-2c, dando así como resultado el genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2].
Como parte del proceso para la elaboración de las formulaciones secas estables de vacunas con microbios vivos atenuados de la presente invención, las correspondientes formulaciones de vacuna líquida pueden ser aplicadas a una membrana y/o congeladas en microesferas y/o congeladas en recipientes tales como viales y/o secadas por pulverización y/o liofilizadas por pulverización y/o inducidas a espuma y/o colocadas en un implante de liberación retardada.
Las formulaciones secas estables de la presente invención pueden ser usadas en métodos para ayudar en la protección de un canino frente a una enfermedad clínica que aparece por una infección (por ejemplo, por un virus canino) que comprende la administración de una vacuna reconstituida de la presente invención al animal. La administración puede llevarse a cabo mucosalmente, parenteralmente, intradérmicamente o transdérmicamente. Una vacuna de la presente invención puede ser administrada al animal subcutáneamente, intramuscularmente. Las formulaciones secas estables de la presente invención también pueden ser usadas como vacunas primarias y/o de refuerzo.
La cantidad terapéuticamente eficaz de un virus vivo atenuado es una cantidad terapéuticamente eficaz de un parvovirus canino atenuado vivo.
Adecuadamente, el sujeto animal es un camino y el método comprende la administración al canino de una vacuna reconstituida estable a la temperatura ambiente de la presente invención que comprende un parovirus canino atenuado vivo.
En realizaciones específicas, la vacuna estable a la temperatura ambiente comprende el virus vivo atenuado del moquillo canino, el adenovirus canino atenuado vivo de tipo 2, el virus paragripal canino atenuado vivo y el parvovirus canino atenuado vivo, o como alternativa, tanto el virus vivo atenuado de la gripe canino como el parvovirus canino atenuado vivo.
Consecuentemente, la presente invención también proporciona una vacuna reconstituida formada por una cualquiera o más de las formulaciones secas según se proporcionan en el presente documento y un vehículo farmacéuticamente aceptable. En algunas realizaciones en particular, la presente invención proporciona una vacuna multivalente elaborada a partir de la combinación de una formulación seca de una vacuna trivalente del CDV, el CAV2 y el CPI con una formulación seca aparte de una vacuna monovalente del CPV, y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
También se describen en el presente documento, pero no forman parte de él, los métodos para la elaboración y/o el almacenamiento a la temperatura ambiente (por ejemplo, a 22-27 °C) de cualquiera y todas las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de la invención. El método comprende la preparación de una formulación de vacuna mediante la combinación de una cantidad terapéuticamente eficaz de un virus vivo atenuado felino o canino con entre un 8 % y un 30 % (p/v) de un oligosacárido no reductor, entre 0,1 M y 0,5 M de un estabilizante aminoácido, entre un 0,9 % y un 10 % (p/v) de un estabilizante proteico y un tampón que tiene un pH de entre 6,0 y 8,0. En general a continuación, pero no siempre, la formulación de vacuna se congela y después se seca a vacío para elaborar una formulación seca estable a la temperatura ambiente. La temperatura en el interior del liofilizador puede aumentarse durante este proceso para acelerar la eliminación de la humedad. Preferiblemente, la formulación seca de la vacuna sigue siendo eficaz durante al menos 18 meses cuando se almacena a 27 °C.
La formulación de vacuna de este tipo puede comprender además entre un 1 % y un 6 % (p/v) de un estabilizante de volumen. En particular, la proporción del estabilizante de volumen al oligosacárido no reductor es entre 0,05 y 0,40. La formulación de vacuna de este tipo puede incluir además entre un 0,5 % y un 5 % (p/v) de sorbitol. El estabilizante de volumen puede ser manitol. El estabilizante aminoácido puede ser una arginina, glutamato o una combinación de arginina y glutamato.
Los métodos de elaboración de cualquiera y todas las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas pueden incluir, antes de su secado, la aplicación de la formulación de vacuna líquida a una membrana, y/o su congelación en microesferas, y/o su congelación en viales, y/o su secado por pulverización, y/o su liofilización por pulverización y/o inducirla a espuma.
En particular, el método comprende la combinación de una cantidad terapéuticamente eficaz de un virus vivo atenuado con el oligosacárido no reductor, que es una combinación de entre un 5 % y un 18 % (p/v) de sacarosa y 5 % y un 18 % (p/v) de trehalosa, entre un 2 % y un 4 % (p/v) del estabilizante de volumen, entre 0,1 M y 0,3 M del estabilizante aminoácido y entre un 1,5 % y un 6 % (p/v) del estabilizante proteico. De manera más particular, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor es de entre 0,08 y 0,37.
El virus vivo atenuado puede ser un virus canino atenuado vivo o un virus vivo atenuado felino.
Estos y otros aspectos de la presente invención se apreciarán mejor mediante referencia a la siguiente descripción detallada.
Descripción detallada de la invención
La presente invención proporciona vacunas de virus vivos atenuados y/o composiciones inmunógenas seguras y eficaces que pueden ser almacenadas en forma de formulaciones secas a la temperatura ambiente y seguir siendo seguras y eficaces durante 12, o 18, o incluso 24 meses o más tiempo. Consecuentemente, una ventaja importante de las vacunas de las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de la presente invención es que pueden eliminar la necesidad de su almacenamiento tanto en una nevera como en un congelador. Esto reduce significativamente el gasto de almacenamiento, particularmente en ubicaciones remotas, y adicionalmente elimina la necesidad de estimar si la vacuna ha permanecido segura y eficaz después del almacenamiento en una nevera o en un congelador que se ha estropeado.
Además, sorprendentemente, las formulaciones secas estables a la temperatura ambiente de las vacunas de virus vivos de la presente invención incluyen virus caninos atenuados.. La presente invención también proporciona vacunas estables a la temperatura ambiente que son vacunas multivalentes. Además, las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención pueden comprender adicionalmente un virus muerto y/o una bacteria muerta (por ejemplo, una vacuna bacteriana) y/o una sub-fracción de una vacuna bacteriana, y/o una subunidad del virus o de la bacteria (por ejemplo, un antígeno proteico).
Además, las formulaciones de virus vivos estables a la temperatura ambiente de la presente invención pueden comprender vectores recombinantes, tales como vectores víricos recombinantes (incluyendo baculovirus recombinantes) que están solos, y/o con otros de dichos vectores víricos recombinantes, y/o con virus vivos atenuados y/o junto con bacterias muertas y/o virus muertos, por ejemplo, virus caninos muertos. Dichos vectores víricos recombinantes pueden codificar adicionalmente uno o más antígenos heterólogos víricos o bacterianos. Un ejemplo en particular de dicho vector recombinante es un virus paragripal recombinante, por ejemplo, un virus paragripal canino. Un vector vírico paragripal recombinante es un Virus paragripal recombinante 5, que recientemente ha sido descrito por Li et al., [J. of Virology 87 (10) 5985-5993 (2013)]. Dichos vectores víricos recombinantes, por ejemplo, un Virus paragripal recombinante 5 o un vector vírico paragripal recombinante canino, pueden codificar un antígeno heterólogo de un virus canino.
Las fracciones inmunógenas activas de las vacunas monovalentes o multivalentes pueden comprender uno o más virus y/o bacterias. Consecuentemente, las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención pueden ser liofilizadas (o de otro modo reducidas en volumen de líquido) para su almacenamiento, y después reconstituidas en un vehículo líquido, por ejemplo, con un vehículo farmacéuticamente aceptable tal como agua para vacunas u otro diluyente, antes o en el momento de la administración. En algunas realizaciones en particular, el diluyente comprende uno o más de otros antígenos víricos y/o bacterianos. Alternativamente, las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención pueden ser inyectadas en forma de un sólido, por ejemplo, cuando el sólido es un polvo y el inyector es un inyector de polvo sin aguja, tal como PowderJect®.
El uso de los términos en singular por conveniencia en la descripción no pretende en modo alguno estar limitado a los mismos. Por lo tanto, por ejemplo, la referencia a un “estabilizante de azúcar” incluye la referencia a uno o más de dichos estabilizantes de azúcar, salvo que se especifique de otro modo. El uso de los términos en plural tampoco pretende ser limitante, salvo que se especifique de otro modo.
De forma análoga, un compuesto químico que pueda estar indicado como un ácido o su correspondiente base cuando se representa en el presente documento como cualquiera de los dos, pretende indicar cualquiera de las formas del compuesto, salvo que se especifique de otro modo. Por lo tanto, el uso del término ácido glutámico pretende incluir el glutamato, y viceversa.
Según se usa en el presente documento, una “vacuna” es una composición que es adecuada para su aplicación a un animal (incluyendo, en ciertas realizaciones, los seres humanos) que, tras la administración al animal, induce una respuesta inmunitaria lo suficientemente fuerte como para ayudar mínimamente en la protección frente a una enfermedad clínica que aparece debido a una infección por un microorganismo natural, es decir, lo suficientemente fuerte para ayudar en la prevención de la enfermedad clínica, y/o en la prevención, la mejora o la curación de la enfermedad clínica. Salvo que expresamente se indique de otro modo, el uso del término vacuna incluye vacunas multivalentes.
Según se usa en el presente documento, una vacuna “eficaz” conserva un título suficiente de un antígeno dado para cumplir con los requisitos normativos para ese antígeno para la jurisdicción en la que se administra la vacuna, por ejemplo, la administración de una vacuna animal en los Estados Unidos está gobernada por el Departamento de Agricultura de los Estados Unidos (USDA).
Según se usa en el presente documento, una “vacuna multivalente” es una vacuna que comprende dos o más antígenos diferentes. En una realización en particular de este tipo, la vacuna multivalente estimula el sistema inmunitario del receptor frente a dos o más patógenos diferentes.
Según se usa en el presente documento, una formulación seca “estable a la temperatura ambiente” de una vacuna es una formulación seca de una vacuna (incluyendo una vacuna multivalente) que sigue siendo eficaz durante al menos un año cuando se almacena a 27 °C. En algunas realizaciones en particular, una formulación seca de una vacuna estable a la temperatura ambiente sigue siendo eficaz cuando se almacena a 27 °C durante al menos 1,5 años. En algunas realizaciones más en particular, una formulación seca de una vacuna estable a la temperatura ambiente sigue siendo eficaz cuando se almacena a 27 °C durante al menos 2 años. En algunas realizaciones aún más en particular, una formulación seca de una vacuna estable a la temperatura ambiente sigue siendo eficaz cuando se almacena a 27 °C durante al menos entre 2,5 y 3 años.
Según se usa en el presente documento, una “formulación seca” de una vacuna se prepara mediante la eliminación del líquido de una vacuna que ha sido formulada en una solución. La eliminación del líquido puede llevarse a cabo, por ejemplo, mediante una evaporación, tal como mediante la aplicación de la vacuna líquida sobre un sustrato sólido y la evaporación del líquido, y/o mediante una sublimación tal como mediante una liofilización. Las vacunas de la presente invención se almacenan en forma de formulaciones secas generalmente con entre un 0,5 % y un 10,0 % (p/p) de contenido en humedad residual (RMC). Las formulaciones secas pueden ser reconstituidas en un vehículo farmacéuticamente aceptable antes de su administración. En algunas realizaciones en particular, las vacunas de la presente invención se almacenan en forma de formulaciones secas que comprenden entre un 0,5 % y un 5 % (p/p) de contenido en humedad residual. En algunas realizaciones más en particular, las vacunas de la presente invención se almacenan en forma de formulaciones secas que comprenden entre un 0,5 % y un 3 % (p/p) de contenido en humedad residual.
Debido a que las vacunas de la presente invención se almacenan en forma de formulaciones secas, una “vacuna” de la presente invención también se refiere a las formulaciones que comprenden uno o más antígenos que son almacenados en forma de formulaciones secas. Según se ha establecido más arriba, poco tiempo antes de su administración, estas formulaciones secas pueden combinarse con un vehículo farmacéuticamente aceptable. Los antígenos de una vacuna multivalente pueden ser almacenados en la misma formulación seca o en formulaciones secas individuales. Consecuentemente, para ciertas vacunas multivalentes, los antígenos de vacuna individuales se almacenan por separado en forma de formulaciones secas individuales, y después, después antes de su administración, se combinan junto con un vehículo farmacéuticamente aceptable para formar la vacuna multivalente. Alternativamente, pueden combinarse y almacenarse múltiples antígenos de vacuna en forma de una formulación seca individual y después, antes de su administración, pueden mezclarse con un vehículo farmacéuticamente aceptable y uno o más de otros antígenos de vacuna que hayan sido almacenados en una o más formulación(es) seca(s) individual(es).
Según se usa en el presente documento, el término “vehículo” se refiere a un diluyente, un adyuvante, un excipiente o un soporte con el que se administra el compuesto.
Según se usa en el presente documento, el término “farmacéuticamente aceptable” se usa en forma adjetiva para significar que el pronombre modificado es apropiado para su uso en un producto farmacéutico. Cuando se usa, por ejemplo, para describir un excipiente en una vacuna farmacéutica, caracteriza el excipiente por ser compatible con los demás ingredientes de la composición y por no ser desventajosamente perjudicial para el receptor previsto, por ejemplo, un vehículo farmacéuticamente aceptable. Los vehículos farmacéuticamente aceptables pueden ser líquidos estériles, tales como agua y/o aceites, incluyendo los que tienen como origen el petróleo, animal, vegetal o sintético, tales como aceite de cacahuete, aceite de soja, aceite mineral, aceite de sésamo y similares. Puede emplearse agua o soluciones salinas de una solución acuosa y soluciones acuosas de dextrosa y glicerol como vehículos, particularmente para soluciones inyectables. En algunas realizaciones en particular, el vehículo farmacéuticamente aceptable es, y/o contiene, un adyuvante. En ciertas realizaciones, un vehículo farmacéuticamente aceptable puede comprender adicionalmente uno o más antígenos de vacuna que, antes de su administración, pueden ser combinados con una formulación seca de una vacuna de la presente invención.
Según se usa en el presente documento, un “adyuvante” es una sustancia que es capaz de favorecer o de amplificar la cascada de acontecimientos inmunológicos, dando lugar finalmente a una mejor respuesta inmunológica, es decir, la respuesta integrada del cuerpo frente a un antígeno. Un adyuvante, en general, no es necesario para que se produzca la respuesta inmunológica, pero favorece o amplifica esta respuesta.
Según se usa en el presente documento, los términos “proteger”, “protegiendo”, “proporcionar protección a”, “proporcionando protección a” y “ayuda a la protección” no requieren una protección completa frente a cualquier señal de infección. Por ejemplo, “ayuda a la protección” puede significar que la protección es suficiente de forma que, después de la exposición, los síntomas de la infección subyacente son al menos reducidos, y/o que una o más de las causas celulares, fisiológicas o bioquímicas subyacentes o los mecanismos que causan los síntomas se reducen y/o se eliminan. Se entiende que “reducido”, según se usa en este contexto, significa relativo al estado de la infección, incluyendo el estado molecular de la infección, no solo el estado fisiológico de la infección.
Según se usa en el presente documento, el término “cantidad terapéuticamente eficaz” es una cantidad de un antígeno dado, por ejemplo, de un virus vivo atenuado, que es suficiente para proporcionar protección a, y/o ayudar en, la protección frente al patógeno cuyo antígeno se está administrando frente al cual hay que proteger, cuando se proporciona en una única administración y/o cuando esté previsto, proporcionado en forma de una administración inicial con una o más administraciones de refuerzo posteriores.
Según se usa en el presente documento, “administración sistémica” es la administración en el sistema circulatorio del cuerpo (que comprende el sistema cardiovascular y el linfático), afectando por lo tanto al cuerpo como un todo en lugar de a un lugar específico, tal como el tracto gastrointestinal (a través, por ejemplo, de una administración oral o rectal) y al sistema respiratorio (a través, por ejemplo, de una administración intranasal). La administración sistémica puede llevarse a cabo, por ejemplo, mediante la administración en un tejido muscular (intramuscular), en la dermis (intradérmica, transdérmica o supradérmica), por debajo de la piel (subcutánea), por debajo de la mucosa (submucosa), en las venas (intravenosa) etc. La “administración parenteral” incluye inyecciones subcutáneas, inyecciones submucosas, inyecciones intravenosas, inyecciones intramusculares, inyecciones intradérmicas e infusión.
Según se usa en el presente documento, los términos 'ganado” y “animal de ganado” incluyen ganado vacuno, cerdos y aves. Según se usa en el presente documento, los términos “bovino” y “ganado vacuno” se usan de forma intercambiable, salvo que se indique de otro modo. De forma análoga, los términos “porcino” y “cerdo” se usan de forma intercambiable, salvo que se indique de otro modo. Según se usa en el presente documento los términos, “aviar” y “ave” se usan de forma intercambiable, pretendiendo incluir ambos términos las aves. Según se usa en el presente documento, el término “aves” puede incluir pollos, patos, patos, gansos, perdiz y faisanes.
Según se usa en el presente documento el término “animal de compañía” incluye caninos, felinos y equinos.
Según se usa en el presente documento, el término “felino” se refiere a cualquier miembro de la familia Felidae. Algunos miembros de esta familia incluyen miembros salvajes, de zoo y domésticos, tales como cualquier miembro de las subfamilias Felinae, por ejemplo, gatos, leones, tigres, pumas, jaguares, leopardos, leopardos de nieve, panteras, leones de la montaña de Norteamérica, guepardos, linces, gatos monteses, caracales o cualquier cruce de los mismos. Los gatos también incluyen los gatos domésticos, los gatos de compañía de pura raza y/o mestizos, los gatos de exhibiciones, los gatos de laboratorio, los gatos clonados y los gatos salvajes o silvestres.
Según se usa en el presente documento, el término “canino” incluye todos los perros domésticos, Canis lupus familiaris o Canis familiaris, salvo que se indique de otro modo.
El parvovirus canino “CPV” se aisló por primera vez en 1978 y se denominó CPV-2 para distinguirlo del virus diminuto del parvovirus canino (CMV o CPV-1). Aproximadamente un año después del aislamiento inicial del CPV-2, se identificó una variante genética, el CPV-2a. A mediados de los años 80 se identificó una segunda variante genética, el CPV-2b. El CPV-2a y el CPV-2b pronto desplazaron completamente al CPV-2. Hoy en día, el CPV-2a ya no se detecta en los Estados Unidos [Parrish y Kawaoka, Annu Rev. Microbiol, 59: 553-586 (2005)]. Una cuarta variante del CPV en esta familia, el CPV-2c, fue descrita por primera vez en 2000 [véase el documento U.S. 8.227.593; el documento U.S. 8.258.274; Hong et al., J. Vet. Diagn. Invest. (5): 535-9 (2007)]. Las solicitudes provisionales de Estados Unidos 61/739.067, presentada el 19 de diciembre de 2012, y 61/778.751, presentada el 16 de marzo de 2013, describen una cepa específica atenuada del CPV-2c (n° de registro de la ATCC PTA-13492) que fue depositada el 24 de enero de 2013 en la American Type Culture Collection (ATCC) 10801 University Boulevard, Manassas, Va.
20110-2209, Estados Unidos, en unas condiciones que cumplen los requisitos del Tratado de Budapest sobre el Reconocimiento Internacional del Depósito de Microorganismos con Fines de Procedimiento de Patente. Además, se ha construido un parvovirus canino recombinante que comprende un genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2, es decir, la región que codifica las proteínas de la cápside de una cepa del CPV-2c y la región que codifica las proteínas no estructurales de una cepa del CPV-2 [documento WO2011107534 (A1); documento u S 20120328652; documento WO2012007589 (A1), en el que la secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de la cápside en el genoma del CPV-2 ha sido sustituida por la secuencia de nucleótidos que codifica la proteína de la cápside de un CPV-2c, dando así como resultado el genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2]. Según se usa en el presente documento, una vacuna de la presente invención que comprende un “parvovirus canino” puede comprender uno o más de estos tipos/variantes/cepas del CPV, incluyendo el recientemente construido parvovirus canino recombinante que comprende el genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2.
Según se usa en el presente documento, un “oligosacárido no reductor” es un carbohidrato que consiste en entre dos y diez residuos de monosacárido unidos a través de enlaces glicosídicos y que, en un medio acuoso básico, no generan ningún compuesto que contenga un grupo aldehído. Algunos ejemplos de oligosacáridos no reductores de la presente invención incluyen sacarosa, trehalosa y rafinosa.
Según se usa en el presente documento, un “estabilizante de azúcar” es un oligosacárido no reductor (por ejemplo, véase más arriba) o un “alcohol de azúcar”/poliol (por ejemplo, sorbitol, manitol, arabitol, inositol, maltitol).
Según se usa en el presente documento, un “estabilizante de volumen” es un compuesto que ayuda en la estabilización de una vacuna a unas temperaturas elevadas, es decir, a 25 °- 30 °C o más. Algunos ejemplos de dichos estabilizantes de volumen son manitol, glicina, dextrano, maltodextrina, polivinilpirrolidona, hidroxietil almidón, polietilenglicol (PEG, con un intervalo de peso molecular de entre 400 daltons y 20 kilodaltons), o cualquier combinación de los mismos. En algunas realizaciones en particular, el “estabilizante de volumen” es manitol. Según se usa en el presente documento, salvo que específicamente se establezca lo contrario, el porcentaje (%) de un aditivo sólido, por ejemplo, de un oligosacárido no reductor o de un estabilizante proteico, en una vacuna, puede ser proporcionado en peso/peso (p/p) y/o basado en una solución al 1 % que es 1 g de sólido/100 ml de volumen de vacuna, peso/volumen (p/v).
Según se usa en el presente documento, salvo que específicamente se establezca lo contrario, el porcentaje (%) de un aditivo líquido, por ejemplo, etanol, en una vacuna se basa en una solución al 1 % que es 1 ml de aditivo líquido /100 ml de volumen de vacuna (v/v).
Según se proporciona en el presente documento, una proporción de los dos reactivos en una formulación dada, por ejemplo, la proporción entre el estabilizante de volumen y el oligosacárido no reductor y/o el alcohol de azúcar, está basada en reactivos que tienen unas unidades idénticas, por ejemplo, (p/p).
Según se usa en el presente documento, un “estabilizante aminoácido” es un aminoácido con carga, es decir, arginina, lisina, ácido glutámico y ácido aspártico.
Según se usa en el presente documento, un “estabilizante proteico” puede ser una proteína intacta y/o un hidrolizado de proteína. En algunas realizaciones en particular, el “estabilizante proteico” de la presente invención es bien caseína hidrolizada o bien colágeno/un derivado de colágeno, tal como gelatina. El hidrolizado de caseína completa que puede usarse en las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención puede obtenerse mediante diversos procedimientos que incluyen, por ejemplo, en forma de un hidrolizado ácido o de un hidrolizado enzimático. Dichos hidrolizados contienen, en forma de mezclas de aminoácidos y péptidos, todos los aminoácidos presentes originalmente en la caseína. Un hidrolizado pancreático de caseína completa que puede usarse en las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención se vende como CASEIN HYDROLYSATE ENZYMATIC® en MP Biomedicals. Algunos productos comparables se venden con el nombre de NZ-AMINE®, NZ-AMINE® A, NZ-AMINE® AS, NZ-AMINE® B y Tryptone en Sigma-Aldrich.
Debido a que las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención idealmente varían en su pH entre un pH de 5,5 y un pH de 8,5, las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención comprenden un agente tamponante, es decir, un tampón. Los tampones para su uso en las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención incluyen, pero no se limitan a: fosposfato de histidina, de potasio y/o de sodio, pirofosfato de sodio o de potasio, imidazol, Tris, Tris-Histidina, BIS-Tris y los buenos tampones: BIS-Tris-Propano (BTP), PIPES, ACES, Mo Ps , MOPSO, BES, TES, tricina, glicilglicina y HEPES. Los tampones pueden ser llevados al pH deseado mediante el uso de cualquier contraión adecuado.
Según se usa en el presente documento, cuando se proporciona un pH de un tampón en una formulación seca de una vacuna de la presente invención, ese pH es el pH de la formulación de vacuna que comprende el tampón antes de la eliminación de esencialmente todo el líquido de la vacuna (es decir, el secado) para hacerla una formulación seca. Según se usa en el presente documento, salvo que específicamente se establezca lo contrario, el valor del pH proporcionado es el valor del pH determinado/medido a 25 °C.
Vacunas multivalentes: la presente invención proporciona vacunas multivalentes estables a la temperatura ambiente que comprenden virus caninos, según se detalla en el presente documento.
Algunos ejemplos de vacunas multivalentes caninas estables a la temperatura ambiente de la presente invención, incluyen, pero en modo alguno se limitan a: dos o más de los siguientes virus vivos atenuados o vectores recombinantes: el virus del moquillo canino, el adenovirus canino de tipo 2, el parvovirus canino, el virus paragripal canino, el virus de la gripe canino, el neumovirus canino, el coronavirus canino, el herpes virus canino, el virus de la hepatitis infecciosa canina, el virus diminuto canino, el virus de la rabia, el virus de la seudorrabia, un vector vírico recombinante, por ejemplo, un vector vírico recombinante canino o felino, que codifica y expresa un antígeno heterólogo de un patógeno canino y/o de un patógeno felino e incluyen al menos un parvovirus canino atenuado vivo.
Además, las vacunas caninas estables a la temperatura ambiente de la presente invención pueden contener adicionalmente, y/o pueden ser posteriormente combinadas con, uno o más antígenos atenuados o muertos tales como Bordetella bronchiseptica, una especie de Mycoplasma, Ehrlichia canis, una especie de Anaplasma, Leptospira canicola, Leptospira grippotyfosa, Leptospira hardjo, Leptospira icterohaemorrhagiae, Leptospira pomona, Leptospira interrogans, Leptospira autmnalis o Leptospira Bratislava; o un virus de la gripe canina muerto, o un coronavirus canino muerto, antes de su administración.
Las vacunas estables a la temperatura ambiente y las vacunas multivalentes de la presente invención se almacenan en forma de formulaciones secas, y por lo tanto, los antígenos individuales puede ser envasados y almacenados tanto por separado como en cualquier combinación antes de su mezcla con un vehículo farmacéuticamente aceptable y su administración al receptor animal. En uno de dichos ejemplos, una vacuna multivalente que comprende un antígeno del virus del moquillo canino antígeno, del virus paragripal canino y del adenovirus canino de tipo 2, se almacena en una formulación seca individual, y el antígeno de un parvovirus canino se almacena en una segunda formulación seca. Antes de la administración al receptor canino, se combinan las dos formulaciones secas con un vehículo para elaborar una vacuna multivalente del virus del moquillo canino, el virus paragripal canino, el adenovirus canino de tipo 2 y el parvovirus canino.
Administración de la vacuna: después de ser mezcladas con un vehículo, las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención pueden ser administradas a través de cualquier medio convencional, por ejemplo, mediante una administración sistémica, o mediante una administración parenteral tal como, sin limitación, una administración subcutánea o intramuscular. Después de ser mezcladas con un vehículo, las vacunas estables a la temperatura ambiente de la presente invención también pueden ser administradas mediante una administración mucosa, tal como mediante una administración intranasal, oral, intratraqueal, rectal y/u ocular. Alternativamente, las vacunas pueden ser administradas a través de un parche cutáneo, una escarificación o una administración tópica. Se contempla que una vacuna estable a la temperatura ambiente de la presente invención también pueda ser administrada a través del agua de bebida y/o de alimentos al receptor. Adicionalmente se contempla que dichas vacunas puedan ser administradas en forma de un premio o un juguete.
Las vacunas (incluyendo las vacunas multivalentes) de la presente invención también pueden ser administradas como parte de una terapia de combinación, es decir, una terapia que incluye, además de la propia vacuna, la administración de uno o más agentes activos adicionales, terapias, etc. En ese caso, debería reconocerse que la cantidad de vacuna que constituye una cantidad “terapéuticamente eficaz” puede ser mayor o menor que la cantidad de vacuna que constituiría una cantidad “terapéuticamente eficaz” si la vacuna se fuera a administrar sola. Otras terapias pueden incluir aquellas conocidas en la materia, tales como, por ejemplo, analgésicos, antipiréticos, expectorantes, medicamentos antiinflamatorios, antihistamínicos y/o administración de fluidos.
El nivel de inmunogenicidad puede ser determinado experimentalmente mediante técnicas de estudio de ajustes de la dosis de exposición conocidas generalmente en la materia. Dichas técnicas normalmente incluyen la vacunación de varios sujetos animales con la vacuna a diferentes dosis, y después la exposición de los sujetos animales al virus virulento para determinar la dosis protectora mínima.
Algunos factores que afectan al régimen de dosificación preferido pueden incluir, por ejemplo, la especie o la raza (de un canino), la edad, el peso, el sexo, la dieta, la actividad, el tamaño de los pulmones y el estado del sujeto; la vía de administración; y la eficacia, la seguridad y los perfiles de duración de la inmunidad de la vacuna en particular usada; si se usa un sistema de administración; y si la vacuna es administrada como parte de una combinación de fármacos y/o de vacunas. Por lo tanto, la dosis realmente empleada puede variar para algunos animales específicos, y por lo tanto, puede desviarse de las dosis típicas establecidas más arriba. La determinación de dichos ajustes de la dosis está generalmente en la pericia de los expertos en la materia del desarrollo de vacunas mediante el uso de los medios convencionales.
De forma análoga, el volumen con el que puede ser administrada dicha dosis normalmente está entre 0,1 ml (típico para una aplicación intradérmica o transdérmica) y 5,0 ml. Un intervalo típico del volumen de administración es de entre 0,2 y 2,0 ml, y de entre 1,0 y 2,0 ml para una administración intramuscular o subcutánea.
Se contempla que la vacuna pueda ser administrada al receptor de la vacuna en una única vez, o como alternativa, dos o más veces durante días, semanas, meses o años. En algunas realizaciones, la vacuna se administra al menos dos veces. En ciertas realizaciones de este tipo, por ejemplo, la vacuna se administra dos veces, administrándose la segunda dosis (por ejemplo, un refuerzo) al menos 2 semanas después de la primera dosis. En realizaciones particulares, la vacuna se administra dos veces, administrándose la segunda dosis no más de 8 semanas después de la primera dosis. En otras realizaciones, la segunda dosis se administra entre 1 semana y 2 años después de la primera dosis, entre 1,5 semanas y 8 semanas después de la primera dosis o entre 2 y 4 semanas después de la primera dosis. En otras realizaciones, la segunda dosis también se administra 3 semanas después de la primera dosis.
En las realizaciones anteriores, la primera dosis y las posteriores pueden variar, tal como en la cantidad y/o en la forma. A menudo, sin embargo, las dosis son iguales en cantidad y en forma. Cuando se administra sólo una dosis, la cantidad de vacuna de esa dosis única comprende generalmente una cantidad terapéuticamente eficaz de la vacuna. Sin embargo, cuando se administra más de una dosis, las cantidades de la vacuna en esas dosis pueden constituir conjuntamente una cantidad terapéuticamente eficaz. Además, una vacuna puede ser administrada inicialmente, y después puede administrarse un refuerzo. Las posteriores administraciones de la vacuna también pueden realizarse sobre una base anual (1 año) o bianual (2 años), independientemente de si se administró o no un refuerzo.
La presente invención puede comprenderse mejor mediante referencia a los siguientes Ejemplos no limitantes, que se proporcionan como a modo de ejemplo de la invención. Los siguientes Ejemplos se presentan con objeto de ilustrar más completamente las realizaciones de la invención. Sin embargo, no deberían ser interpretados en modo alguno como limitantes del ámbito de la invención que se define en las reivindicaciones adjuntas.
EJEMPLOS
Materiales y métodos
Materiales: la sacarosa y el sorbitol de calidad mínima para ACS se adquieren en Fisher Scientific. El clorhidrato de L-arginina, la L-metionina, la L-histidina, el manitol, el sulfato de magnesio, la ectoína, la hidroxiectoína, la glicina y el cloruro de sodio de calidad molecular con una pureza mayor del 98 % se adquieren en Sigma. El dextrano con un peso molecular medio de 70.000 y una pureza > 95 % se adquiere en Sigma. Las soluciones de Tris 1,0 M (pH de 8,0) y EDTA (pH de 8,0) de calidad para biología molecular se adquieren en Sigma. La solución de gelatina bloom 250 al 20 % y la solución de NZ Amine AS se prepararon a partir de los mejores proveedores comerciales disponibles.
Preparación de la solución madre: se han preparado las siguientes soluciones y se han esterilizado mediante una filtración a 0,2 pm: sacarosa al 80 %, sorbitol al 70 %, L-arginina 1,0 M (pH de 7,2), L-metionina al 5 % y sulfato de dextrano 5 mM. Los antígenos a granel del CDV, del CAV2, del CPV y del CPI, que tienen unos títulos de entre 6,5 y 9,5, se congelaron a -80 °C para ser descongelados inmediatamente antes de la mezcla.
Mezcla, envasado y secado de la vacuna: los antígenos víricos y los estabilizantes se mezclan hasta la concentración final de cada componente según se recoge en la tabla de formulación. Se usa agua desionizada para llevar la solución hasta el volumen objetivo. Todos los componentes de las mezclas de vacunas se mezclan concienzudamente mediante agitación durante al menos 10 minutos en una placa de agitación. Para las vacunas secas en viales, la mezcla se dispensa en viales de vidrio de 2,2 cc a 0,5 ml por vial, después se liofiliza en un liofilizador usando un ciclo de secado desarrollado según se muestra en la Tabla 4. Para las vacunas secas en microesferas (por ejemplo, liosferas/esfereones), la mezcla se dispensó en moldes de acero inoxidable ultra fríos a 100 ul por gota para obtener microesferas esféricas congeladas. Las microesferas congeladas se transfirieron a una bandeja y se liofilizaron en el liofilizador mediante el uso del ciclo de secado optimizado según se muestra en la Tabla 5. Para las vacunas secas sobre membranas, la mezcla de vacuna se dispensa sobre una membrana y después la membrana se seca en una cámara con un vacío controlado a entre 100 y 1.000 mTorr durante aproximadamente 16 horas a 25 °C.
Pruebas de estabilidad a temperatura acelerada y en tiempo real:
Las pruebas de estabilidad acelerada a 45 °C y a 37 °C se usan para cribar las diferentes formulaciones. Las formulaciones destacadas son monitorizadas en pruebas de estabilidad a largo plazo en tiempo real a 27 °C, cuando se desee. En el punto temporal indicado, se recuperan 3 muestras de cada formulación y se miden los títulos de cada antígeno mediante un ensayo de titulación basado en un cultivo celular, y se notifican como la dosis infecciosa mediana en cultivo tisular (TCID50) y/o como la dosis infecciosa de anticuerpo fluorescente al 50 % (FAID50).
Métodos analíticos:
Potencia del CPI: las diluciones de las muestras de virus se inocularon en células de riñón de perro (DK). Después de 4- 6 días, las monocapas se fijan y se tiñen con un antisuero de CPI conjugado con fluoresceína y el título de virus se calcula mediante el método de Spearman-Karber [Cunningham, C. H., A Laboratory Guide in Virology, 7a edición, Burgess Publishing Co., Minneapolis, MN. (1973); Kaplan, M. M. y Koprowski, H., Laboratory Techniques in Rabies, World Health Organization, Suiza, (1973)].
Potencia del CDV: las diluciones de las muestras de virus se inocularon en células Vero. Después de 5-7 días, las monocapas se observan para evaluar el efecto citopático y el título del virus se calcula mediante el método Spearman-Karber, como se ha citado más arriba.
Potencia del CAV2: las diluciones de las muestras de virus se inocularon en células DK. Después de 7 días, las monocapas se observan para evaluar el efecto citopático y el título del virus se calcula mediante el método Spearman-Karber, como se ha citado más arriba.
Potencia del CPV: las diluciones de las muestras de virus se inocularon en células DK. Después de 3 días, las monocapas se tiñen con un antisuero de CPV conjugado con fluoresceína y el título del virus se calcula mediante el método Spearman-Karber, como se ha citado más arriba.
Análisis térmico y de la humedad de la vacuna seca: la humedad de la vacuna liofilizada en viales o en microesferas se determinó usando el tradicional método gravimétrico en un horno de vacío o el método de Karl-Fischer. [Se averiguó que el contenido en humedad residual (RMC) de las muestras liofilizadas variaba entre un 0,5 % y un 3 % (p/p)]. La temperatura de transición vítrea de las microesferas o de las tortas liofilizadas en viales se determinaron con un instrumento de calorimetría diferencial de barrido (DSC). Salvo que se indique de otro modo, el RMC se proporciona en forma de un porcentaje (p/p) en las formulaciones liofilizadas.
EJEMPLO 1
PREPARACIÓN DE LOS ESTABILIZANTES
La concentración objetivo final (p/p) de cada componente en la vacuna seca final de cada formulación se muestra en las Tablas 1a y 2a. La concentración final de cada componente en la mezcla de vacuna de cada formulación se muestra en las Tablas 1b y 2b. Para la vacuna seca en forma de microesferas (por ejemplo, liosferas/esfereones) en una bandeja de plástico, el volumen de cada dosis de vacuna es de 100 pl o de 250 pl. Para las vacunas secas en forma de una torta en un vial de vidrio, el volumen de la dosis es de 250 pl o de 100 pl o de 1.000 pl. Para los estabilizantes en las vacunas secas mostradas en la Tabla 1a y 2a, todas las unidades de concentración son en peso en peso (p/p) excepto la vacuna con la dosis total, que está en mg. Para los estabilizantes en las mezclas de vacunas mostradas en las Tablas 1b y 2b: la concentración para el azúcar y la proteína son el porcentaje de peso por volumen (p/v), la concentración para los aminoácidos, los cationes y los tampones son molar (M) o milimolar (mM), la concentración para la ectoína y la hidroxiectoína son en peso por volumen (p/v). Todas las concentraciones mostradas en las Tablas 1b y 2b son la concentración final en la mezcla de vacuna con los antígenos víricos. La L-arginina en las formulaciones SP33 y SP34 es la sal de fosfato o de acetato, respectivamente. Todas las demás formulaciones de L-arginina son la sal de cloruro. El pH es el pH final de la mezcla de vacuna con los antígenos víricos. Todos los tampones en la formulación tienen una concentración final de 10 mM. El KPO4 es el tampón de fosfato de potasio que comprende fosfato de potasio monobásico y dibásico con el pH objetivo de 7,2. Los estabilizantes recogidos en las Tablas 1b y 2b se mezclan concienzudamente con la cantidad apropiada de agua, después se añaden los antígenos víricos y se mezclan concienzudamente antes de que la mezcla de vacuna resultante sea dispensada, congelada y liofilizada bien en microesferas o bien en viales.
EJEMPLO 2
CORRELACIÓN DE LOS ESTUDIOS DE ESTABILIDAD A 27 °C CON LOS ESTUDIOS A 37 °C Y A 45 °C
Las pruebas de estabilidad acelerada a temperaturas elevadas se usan para cribar diferentes estabilizantes. En estos estudios se usan unas temperaturas elevadas de 45 °C y de 37 °C para las pruebas de estabilidad acelerada. Las pruebas de estabilidad a largo plazo en tiempo real se llevan a cabo a 27 °C. Para investigar si pueden usarse las pruebas de estabilidad acelerada a 45 °C y a 37 °C para el cribado de diferentes estabilizantes o formulaciones, se comparó el perfil de estabilidad de al menos tres formulaciones para cada virus a 45 °C, a 37 °C y a 27 °C (Tabla 3). La estabilidad relativa del virus en las diferentes formulaciones se clasifica sobre la base del título de virus en cada punto temporal, y también de la tendencia global de pérdida de título. Se usa una clasificación similar para las mismas formulaciones a diferentes temperaturas. Según se observa en la Tabla 3, existe una estrecha correlación entre las pruebas de estabilidad acelerada y en tiempo real a las 3 temperaturas. El comportamiento de estabilidad relativa a 45 °C, a 37 °C y a 27 °C siempre es coherente para la totalidad de los cuatro virus de las diferentes formulaciones. Para la mayoría de las formulaciones, la clasificación es coherente para las tres temperaturas. Por lo tanto, los datos indican que a 45 °C y a 37 °C puede ser un método de cribado acelerado fiable para la formulación, particularmente para distinguir las mejores y las peores formulaciones en el grupo. Para algunas formulaciones con unos perfiles de estabilidad muy similares a unas temperaturas elevadas de 45 °C y de 37 °C, no es tan fácil predecir cuál proporcionará la mejor estabilidad a 27 °C (en tiempo real). En el cribado de la formulación para el DHPPi (el CDV, el Ca V2, el CPV y el CPI), las pruebas de estabilidad acelerada a 45 °C y a 37 °C se usan para cribar los diferentes estabilizantes y excipientes, para identificar las formulaciones destacadas. Después, las formulaciones destacadas pueden ser confirmadas con pruebas de estabilidad a largo plazo en tiempo real a 27 °C, cuando se desee.
EJEMPLO 3
Proceso de secado para virus en diferentes formulaciones
Después de mezclar concienzudamente los estabilizantes y los antígenos víricos, se midió la principal temperatura de transición vítrea (Tg) de la mezcla de vacuna con un calorímetro diferencial de barrido (Perkin Elmer). Todas las formulaciones de las Tablas 1 y 2 tienen una Tg principal mayor de -40 °C. Tomando como base estos resultados, se usa el ciclo de secado de las Tablas 4 y 5 para secar las microesferas de la vacuna congelada y el líquido de los viales, respectivamente.
Para la preparación de las vacunas en microesferas secas, se preparan en primer lugar las microesferas de la vacuna congelada con 100 pl por microesfera colocando gotas de la mezcla de vacuna en los pocillos de placas de acero inoxidable previamente enfriadas (a entre -110 °C y 130 °C). Las microesferas congeladas se recogieron en una bandeja y se almacenaron a -80 °C hasta su secado en el liofilizador. Inmediatamente antes de la liofilización de las microesferas de la vacuna, la estantería del liofilizador se enfría previamente a -20 °C y las microesferas de la vacuna de las bandejas se cargan rápidamente en la estantería. Después de la liofilización con un ciclo de secado mostrado en la Tabla 4, el vacío se libera usando argón seco o nitrógeno gaseoso seco. Las bandejas secas de las microesferas se envasan al vacío en bolsas de aluminio con argón o nitrógeno seco.
Para la preparación de las vacunas en forma de tortas en viales, la mezcla de vacuna se dispensó en viales de vidrio de 2,2 cc a 250 pl por vial. Después, el vial rellenado se tapó y se transfirió a la estantería previamente enfriada a 4 °C del liofilizador. Se usó el ciclo de secado de la Tabla 5 para la liofilización de las vacunas en los viales. Después de la liofilización, se liberó el vacío y los viales se rellenaron con argón o nitrógeno gaseoso. Después, los viales se envasaron completamente al vacío con un tapón de caucho, y después se taparon adicionalmente con un engarzador.
EJEMPLO 4
RESULTADOS DE ESTABILIDAD DE LOS CDV, CAV2, CPI Y CPV LIOFILIZADOS
Para los virus secos en microesferas, las microesferas liofilizadas con los antígenos son envasadas en recipientes en una caja seca con nitrógeno seco [< 1,0 % de humedad relativa (HR)] y después se probó la estabilidad a diferentes temperaturas. Para las muestras secas en forma de torta en viales, el vial precintado se coloca en una caja de almacenamiento y después se prueba la estabilidad en estufas de incubación a diferentes temperaturas. En diferentes puntos temporales, las muestras son recuperadas de la estufa de incubación y se titula la potencia de cada una mediante el uso de los ensayos de titulación basados en un cultivo celular.
En cada punto temporal se recuperaron al menos tres viales de la misma formulación y se reconstituyeron con 1 ml de PBS por vial para un ensayo de potencia. La potencia de los virus se determinó mediante el uso de la metodología de TCID50 y/o FAID50 basados en un cultivo celular. Los cribados de la formulación se llevan a cabo etapa por etapa en diferentes estudios. Cada estudio incluye al menos una formulación del momento inicial, para comparar con otros estudios. En cada estudio se puntuaron las diferentes formulaciones con uno o más “+”, y después se clasificaron sobre la base de los datos de estabilidad relativa en múltiples puntos temporales. Cuanto mayor es el número de , mejor es la estabilidad relativa del virus en particular probado en la muestra.
Para la mayor parte de las formulaciones SPxx, la estabilidad física de las microesferas (por ejemplo, liosferas/esfereones) son aceptables sin cambios en el aspecto de la microesfera o de la torta durante el almacenamiento a largo plazo, por lo que no se recoge ninguna clasificación de estabilidad física. Para las formulaciones SPCPVxx, la estabilidad física variaba dependiendo de los componentes de la formulación. La estabilidad física de la vacuna seca se clasificó según la Tg y mediante una inspección visual del aspecto físico.
La Tabla 6 muestra la estabilidad de los cuatro virus a 27 °C en diferentes formulaciones y con su periodo de validez proyectado a 27 °C. En estas pruebas, el título aportado de antígeno objetivo [Logio (TCID50)] para el CDV, el CPI, el CAV2 y el CPV era de 7,0, de 7,0, de 4,0 y de 5,0, respectivamente. El título mínimo en la caducidad para cada antígeno se estableció como de 4,7, de 5,0, de 3,3 y de 4,5 para el CDV, el CPI, el CAV2 y el CPV, respectivamente. El periodo de validez estimado para el virus DHPPi en las diferentes formulaciones se calcula a partir de la tendencia del cambio del título en múltiples puntos temporales durante los estudios de estabilidad. El periodo de validez estimado para el CPI se basa en el título mínimo en la caducidad, que es de 5,0, y el aporte de antígeno para el CPI es 0,5 log mayor. En otros estudios, numerosas formulaciones destacadas mostraron una estabilidad mejorada a 45 °C y a 37 °C para las formulaciones recogidas en la Tabla 6. Estas formulaciones destacadas pueden ser probadas de nuevo mediante unas pruebas de estabilidad a largo plazo en tiempo real a 27 °C. Los datos mostrados en la Tabla 6 indican que, mediante el uso de las actuales especificaciones para la elaboración de la vacuna, la formulación SP10 puede proporcionar mínimamente 18 meses o más de periodo de validez a 27 °C para el CDV, el CAV2 y el CPI (con un aporte del antígeno del CPI 0,5 log mayor).
La Tabla 7 muestra varias formulaciones destacadas identificadas mediante el uso de las pruebas de estabilidad acelerada a 45 °C. Los virus CDV, CAV2, CPI y CPV se mezclan en estas formulaciones y después se liofilizan en microesferas. Las microesferas se envasaron al vacío en viales con nitrógeno seco y después se llevaron a las pruebas de estabilidad a 45 °C. De forma análoga, la clasificación de la estabilidad se basa en el título en cada punto temporal y el índice de cambio en el título con el transcurso del tiempo. Según se muestra en la Tabla 7, las formulaciones SP43 y SP44 proporcionan una estabilidad significativamente mejor para el CDV y el CPI que la SP10. Existe una mejora de más de un semilog en las semanas 1, 2 y 4 tanto para el CDV como para el CPI en la SP44 con respecto a la de la SP10. De forma análoga, la SP44 también proporciona una estabilidad significativamente mejor para el CAV2 que la SP10. Las mejoras en la estabilidad para la formulación SP44 con respecto a la SP10 pueden ser extrapoladas para producir una vacuna estable de CDV, CAV2 y CPI (vacuna DHPi) que tenga un periodo de validez de 24 meses o más largo a 27 °C, cuando se comparan los datos obtenidos a partir de los estudios acelerados a 45 °C para la SP44 con los obtenidos a 27 °C para la SP10.
Los efectos de los estabilizantes o de los excipientes sobre la estabilidad del virus se han evaluado concienzudamente durante el cribado de la formulación del CDV, del CPI, del CAV2 y del CPV. Varios ejemplos de cribado se recogen en las Tablas 8-13.
El efecto del tampón y del pH sobre la estabilidad del virus se muestra en la Tabla 8. En el estudio descrito en la Tabla 8, las vacunas se liofilizaron en forma de tortas en viales. Se mezcló la totalidad de los cuatro virus en las formulaciones como en la tabla, se introdujeron en viales de vidrio y después se liofilizaron en un liofilizador según se describe en los métodos, usando el ciclo de secado mostrado en la Tabla 5. Excepto para la diferencia en el tampón [tampón de fosfato de potasio (KPO4), histidina, tampón de bis-tris propano (BTP) y MOPS (ácido 3-(N-morfolino) propansulfónico)] y el pH recogidos, todas las formulaciones de este estudio contenían un 4 % de manitol, un 5 % de sacarosa, un 0,8 % de gelatina, un 1,0 % de NZ Amine y MgSO4 2 mM. Todas las formulaciones de este estudio también contenían tampón 10 mM con un pH final recogido en la tabla. Los datos de estabilidad a 45 °C y a 37 °C para cada virus se usan para la clasificación de las formulaciones.
Los datos proporcionados en la Tabla 8 indican que el CDV, el CPI y el CAV2 tienen una mayor estabilidad a un pH menor (6,5) que a un pH neutro o mayor, mientras que el CPV tiene una mayor estabilidad a un pH neutro o mayor (7,6). El CDV y el CPI son más estables en KPO4 o en histidina que en los otros dos tampones probados, mientras que la estabilidad del CAV2 y del CPV parece ser menos dependiente del tampón usado.
Se investigó el efecto de la concentración y de la combinación de azúcar sobre la estabilidad de los virus según se muestra en las Tablas 9a y 9b. Las concentraciones de azúcar están recogidas en la Tabla 9a, y la estabilidad de los virus en estas formulaciones a 45 °C y a 37 °C están recogidas en la Tabla 9b. En este estudio, todas las formulaciones tenían el mismo aporte de antígeno vírico en volumen, y los virus de estas formulaciones estaban liofilizados en microesferas. La clasificación de la estabilidad relativa se basa en los datos de estabilidad tanto a 45 °C como a 37 °C y en múltiples puntos temporales para cada virus en las diferentes formulaciones. Los datos de las Tablas 9a y 9b sugieren que la estabilidad del CDV, del CPI y del CAV2 tienen una fuerte dependencia en la concentración de azúcar, con una mayor estabilidad de los virus a una mayor concentración de azúcar en el intervalo del 4-30 %. Los datos también sugieren que la combinación de sacarosa y trehalosa (Suc TrH) parece funcionar mejor que tanto la sacarosa como la trehalosa solas. También se investigó el efecto de la concentración de L-arginina sobre la estabilidad de los virus (Tabla 10). Las formulaciones SP02B, SP26 y SP27 difieren únicamente en la concentración de clorhidrato de Larginina. [Para algunos puntos de datos, los datos no están disponibles debido a la invalidez del ensayo (n/a)]. Tomando como base los datos obtenidos a 45 °C y a 37 °C, parece que la estabilidad del CDV, del CPI y del CAV2 depende de la concentración de arginina, siendo más estables con mayores concentraciones de arginina (Tabla 10).
Se investigó adicionalmente el efecto de diferentes sales de arginina o concentraciones de arginina junto con ácido glutámico (Tablas 11a y 11b). La Tabla 11a muestra la concentración y la sal de arginina y la concentración de ácido glutámico en cada formulación y el correspondiente inicio de la Tg de la vacuna seca. Todas las formulaciones son iguales, excepto por las diferencias mencionadas anteriormente en arginina y ácido glutámico. La L-arginina se ajustó a un pH de 7,2 con diferentes ácidos para producir las diferentes sales de arginina. El inicio de la Tg es el inicio de la temperatura de transición vítrea de las microesferas de la vacuna liofilizada de la formulación. El inicio de la Tg se determina mediante una calorimetría diferencial de barrido y es el promedio de al menos 3 réplicas. Los datos de la estabilidad a 45 °C y a 37 °C de las formulaciones recogidas en la Tabla 11a se muestran en la Tabla 11b.
La estabilidad relativa también está clasificada y recogida en la Tabla 11b. Según se muestra en la Tabla 11a y 11b, las diferentes sales de L-arginina pueden tener diferentes efectos de estabilidad. Aunque el fosfato de arginina en la formulación SP33 proporciona una Tg mucho mayor, la estabilidad de los 3 virus disminuyó con respecto a las otras sales de arginina. La combinación de cloruro de arginina 0,15 M con ácido glutámico de sodio monobásico 0,15 M en la formulación SP35 mejoró ligeramente la estabilidad de los tres virus con respecto a la encontrada en la SP10.
La ectoína y la hidroxiectoína son compuestos naturales que se encuentran en los microorganismos halófilos. Ambos son solutos compatibles que sirven como sustancia protectora actuando como un osmolito, y por lo tanto ayudan a los organismos a sobrevivir en un estrés osmótico extremo confiriendo resistencia frente al estrés por sal y temperatura. Tanto la ectoína como la hidroxiectoína han demostrado ser potentes estabilizantes de las proteínas, así como otros muchos productos biológicos. Por lo tanto, se probó su efecto estabilizante sobre la estabilidad del CDV, del CPI y del CAV2. Las formulaciones SP39 y SP40 son idénticas a la formulación SP10 excepto porque además contienen bien ectoína o bien hidroxiectoína, respectivamente (Tabla 13). Se usaron los datos de estabilidad a tres temperaturas de almacenamiento para evaluar sus efectos estabilizantes. La mezcla de vacuna que contiene estas 3 fracciones de virus se liofilizó en microesferas usando el mismo ciclo de secado.
La clasificación de estabilidad se basa en los datos de estabilidad a partir de las 3 temperaturas (a 45 °C, a 37 °C y a 27 °C). Los datos de estabilidad y la clasificación de estabilidad de la Tabla 13 indican que tanto la ectoína como la hidroxiectoína pueden mejorar la estabilidad del CDV y del CPI a 37 °C y a 27 °C, aunque los efectos estabilizantes a 45 °C no son tan significativos. El efecto estabilizante de la ectoína y de la hidroxiectoína sobre el CAV2 es difícil de determinar debido a su baja curva de degradación.
EJEMPLO 5
RESULTADOS DE ESTABILIDAD DEL CPV LIOFILIZADO
También se ha evaluado la estabilidad del CPV monovalente en diferentes formulaciones. Aunque el CPV puede ser incluido junto con los otros tres virus caninos en una formulación viable estable a la temperatura ambiente, por ejemplo, las formulaciones SPCPV-02 y SPCPV-03 pueden proporcionar alrededor de 18 meses de periodo de validez a 27 °C para el CPV, de los cuatro virus caninos diferentes probados, el CPV difiere de la mayoría con respecto a su estabilidad óptima a la temperatura ambiente.
Consecuentemente, el CPV tiene una preferencia diferente hacia los azúcares que el CDV, el CPI o el CAV2, por ejemplo, siendo más estable con un alcohol de azúcar tal como sorbitol, que con un azúcar reductor. Sin embargo, incluso en presencia de sorbitol, la estabilidad física de cualquiera de las microesferas o tortas liofilizadas puede dar lugar a menudo a un encogimiento o colapsado de las microesferas secas durante el almacenamiento. Por lo tanto, se monitorizaron tanto la estabilidad de la potencia como la estabilidad física de las formulaciones secas del CPV durante el cribado de la formulación. Notablemente, el cribado de las formulaciones de la vacuna monovalente del CPV demostraron ser un modelo de estudio para conseguir un producto de vacuna que equilibra la estabilidad de la potencia del virus con la estabilidad física del producto seco.
La Tabla 14 muestra los datos de estabilidad del CPV a 45 °C, a 37 °C y a 27 °C en cinco formulaciones diferentes. El CPV monovalente se mezcla en estas formulaciones y después se liofiliza en forma de microesferas de 100 ul de tamaño. Todas las formulaciones de este estudio contenían KPO4 10 mM a pH 7,2 como tampón, y dextrano 70k al 2 % y glicina al 2 % como estabilizantes de volumen. La concentración de sorbitol (p/v) de cada formulación se muestra en la tabla. Todas las formulaciones también contenían proteínas estabilizantes “GN” (gelatina y NZ-Amine). 1x de GN es gelatina al 0,8 % y NZ Amine al 1,0 %; mientras que 2,5x de GN es: gelatina al 2,5 % y NZ Amine al 2,5 %. La clasificación de la estabilidad de la potencia se basa en el cambio del título del virus a 45 °C, a 37 °C y a 27 °C. La clasificación de la estabilidad física se basa en la temperatura de transición vítrea (Tg) y en el aspecto de la estructura física de las microesferas liofilizadas después de la liofilización y durante el estudio de estabilidad. Una mayor Tg y una mayor tendencia a mantener la estructura física de las microesferas da lugar a una mayor puntuación en estabilidad física.
Los datos de estabilidad de la Tabla 14 indican que una mayor concentración de sorbitol beneficia a la estabilidad de la potencia del CPV, pero reduce la estabilidad física de las vacunas; mientras que una mayor concentración de proteína es beneficiosa para la estabilidad física. Además, la inclusión de L-arginina no tuvo ningún efecto negativo sobre la estabilidad del CPV.
Se evaluó adicionalmente el efecto del dextrano y de diferentes concentraciones de sorbitol en un estudio resumido en la Tabla 15. Todas las formulaciones de la Tabla 15 contienen glicina al 2 %, gelatina al 2,5 % y NZ Amine al 2,5 %. y tampón de KPO4 10 mM a un pH de 7,2. Adicionalmente, todas las formulaciones contienen sorbitol y dextrano 70k. El CPV monovalente se mezcla en estas formulaciones y después se liofiliza en forma de microesferas de 100 ul de tamaño. La potencia y la estabilidad física de estas formulaciones se clasifica de una forma similar a la del estudio de la Tabla 15. Los datos de la Tabla 15 indican que la mayor concentración de dextrano 70k es beneficiosa para la estabilidad física de las microesferas de CPV liofilizadas, pero deteriora la estabilidad de la potencia al 6 %. Por otro lado, una mayor concentración de sorbitol es beneficiosa para la estabilidad de la potencia, pero necesita una concentración del medio de dextrano 70k para mantener su estructura. Los datos de este estudio sugieren que es necesaria una combinación óptima de sorbitol y dextrano 70k para que una vacuna de CPV liofilizada óptima tenga tanto una elevada potencia como una elevada estabilidad física.
EJEMPLO 6
EFECTOS DE LOS DIFERENTES FORMATOS DE SECADO SOBRE LA ESTABILIDAD DEL VIRUS
Para investigar si las vacunas secadas en diferentes formatos tienen diferentes perfiles de estabilidad, los virus de la misma formulación se secaron bien en forma de una torta en un vial o bien en forma de microesferas en una bandeja, y se comparó su estabilidad. La Tabla 16 muestra los resultados de las pruebas de estabilidad del CDV, del CAV2 y del CPI en microesferas en la SP02B y en una torta en la FDIV-03. (La SP02B y la FDIV-03 son, de hecho, la misma formulación). Según se observa a partir de la Tabla 16, la estabilidad del CDV, del CPI y del CAV2 en un vial era equivalente (o ligeramente mejor que) la observada en las microesferas. Los datos de este estudio sugieren que las formulaciones óptimas identificadas en las microesferas también pueden ser usadas para las vacunas de virus secos en forma de tortas en viales.
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Claims (8)

REIVINDICACIONES
1. Una formulación seca de una vacuna que comprende un parvovirus canino atenuado vivo (CPV), entre un 10 % y un 80 % (p/p) de un alcohol de azúcar, entre un 10 % y un 70 % (p/p) de un estabilizante de volumen, entre un 4 % y un 50 % (p/p) de un estabilizante proteico y un tampón que tiene un pH de entre 6,8 y 8,0.
2. La formulación seca de la reivindicación 1 en donde el alcohol de azúcar se selecciona entre el grupo que consiste en sorbitol, manitol, xilitol, maltitol y combinaciones de los mismos, en donde el estabilizante de volumen se selecciona entre el grupo que consiste en dextrano, maltodextrina, polivinilpirrolidona, hidroxietil almidón, glicina, manitol, o combinaciones de los mismos, en donde el estabilizante proteico se selecciona entre el grupo que consiste en gelatina, un hidrolizado proteolítico de caseína completa, o una combinación de los mismos.
3. La formulación seca de la reivindicación 2, en donde el alcohol de azúcar es sorbitol, el estabilizante de volumen es una combinación de dextrano y glicina, el estabilizante proteico es una combinación de gelatina y un hidrolizado proteolítico de caseína completa.
4. La formulación seca de una cualquiera de la reivindicación 1 a 3 en donde el CPV se selecciona entre el grupo que consiste en CPV-2, CPV-2a, CPV-2b, CPV-2c y un CPV recombinante que comprende un genoma heterogéneo CPV-2c/CPV-2.
5. La formulación seca de la reivindicación 4, en donde el CPV-2c tiene un n.° de registro de ATCC PTA-13492.
6. La formulación seca de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, que comprende además un osmolito seleccionado entre el grupo que consiste en ectoína, hidroxiectoína o una combinación de las mismas.
7. Una vacuna que comprende la formulación seca de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 y un vehículo líquido farmacéuticamente aceptable.
8. La formulación seca de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 para su uso en un método de vacunación de un canino contra un parvovirus canino que comprende mezclar la formulación seca y un vehículo líquido farmacéuticamente aceptable para formar una vacuna líquida y después administrar la vacuna líquida al canino.
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Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9314519B2 (en) 2012-08-21 2016-04-19 Intervet Inc. Liquid stable virus vaccines
US9480739B2 (en) 2013-03-15 2016-11-01 Intervet Inc. Bovine virus vaccines that are liquid stable
US9393298B2 (en) 2013-03-15 2016-07-19 Intervet Inc. Liquid stable bovine virus vaccines
AR097762A1 (es) 2013-09-27 2016-04-13 Intervet Int Bv Formulaciones secas de vacunas que son estables a temperatura ambiente
AR099470A1 (es) 2014-02-17 2016-07-27 Intervet Int Bv Vacunas de virus de aves de corral líquidas
TWI670085B (zh) 2014-02-19 2019-09-01 荷蘭商英特威國際公司 液體穩定之豬病毒疫苗
TWI745278B (zh) 2014-10-10 2021-11-11 以色列商艾畢克生物實驗有限公司 發泡性降低之疫苗組合物
CN109803640B (zh) * 2016-08-10 2022-01-04 赛特瑞恩股份有限公司 稳定的液体抗流感病毒抗体医药调配物
GB201701239D0 (en) * 2017-01-25 2017-03-08 Glaxosmithkline Biologicals Sa Novel formulation
CN108245669B (zh) * 2018-02-06 2022-03-18 昆明龙津药业股份有限公司 一种稳定的降纤酶注射剂及制备方法
CN119488586A (zh) * 2018-03-26 2025-02-21 勃林格殷格翰动物保健美国有限公司 制备免疫原性组合物的方法
AU2020206984A1 (en) 2019-01-09 2021-07-15 Ziccum Ab Stabilized non-enveloped virus compositions
CN110801436B (zh) * 2019-11-19 2021-06-22 畜科生物工程有限公司 一种猪传染性胃肠炎、猪流行性腹泻二联活疫苗冻干保护剂及二联活疫苗
JP7657287B2 (ja) * 2020-07-24 2025-04-04 ベーリンガー インゲルハイム アニマル ヘルス ユーエスエイ インコーポレイテッド 組合せブタワクチン
AU2021325149A1 (en) * 2020-08-14 2023-03-02 ILiAD Biotechnologies, Inc. Lyophilized live bordetella vaccines
EP4216996A4 (en) * 2020-09-24 2025-06-11 Nant Holdings IP, LLC VACCINE COMPOSITIONS FOR MUCOSAL IMMUNE RESPONSE
US11672761B2 (en) 2020-11-16 2023-06-13 Orcosa Inc. Rapidly infusing platform and compositions for therapeutic treatment in humans
WO2022103639A1 (en) 2020-11-16 2022-05-19 Orcosa Inc. Methods of treating autoimmune or inflammatory conditions with cannabidiol or its derivatives/analogs
CN112370531B (zh) * 2020-11-18 2022-09-23 金宇保灵生物药品有限公司 一种犬瘟热、犬细小、犬腺病毒、犬副流感四联活疫苗耐热保护剂及其制备方法和应用
CN114617972B (zh) * 2020-12-11 2023-12-01 康希诺生物股份公司 一种药物组合物及其应用
CN116421733B (zh) * 2023-06-08 2023-09-12 金宇保灵生物药品有限公司 可用于猪多杀性巴氏杆菌病活疫苗的疫苗耐热保护剂

Family Cites Families (85)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3155589A (en) 1958-04-14 1964-11-03 Upjohn Co Parenteral extravascular injectable vaccines for simultaneous immunization of canidae against rabies, canine distemper, and infectious canine hepatitis
US3133001A (en) 1959-11-26 1964-05-12 Muset Pedro Puig Stabilization of enzymes
US3526696A (en) 1968-02-14 1970-09-01 Lilly Co Eli Shipping fever vaccine
GB1575155A (en) 1978-04-11 1980-09-17 Merck & Co Inc Vaccine stabilizer
PT71926B (en) 1979-10-29 1982-03-31 Merck & Co Inc Process for preparing a liquid vaccine comprising a stabilizer
US4337242A (en) 1980-02-05 1982-06-29 Merck & Co., Inc. Vaccine stabilizer containing L-glutamic acid and L-arginine
JPS589688A (ja) 1981-07-06 1983-01-20 Toyobo Co Ltd 安定な酵素組成物
JPS6153227A (ja) 1984-08-23 1986-03-17 Biseibutsu Kagaku Kenkyusho:Kk 日本脳炎・豚パルボウイルス感染症混合生ワクチン
US4867975A (en) 1988-01-27 1989-09-19 University Of Delaware Live attenuated temperature-sensitive avian infectious bronchitis virus vaccines and preparation and use thereof
CA2075521C (en) 1992-05-05 1995-11-28 Kuniaki Koyama Stabilized live vaccine
US5443959A (en) 1992-09-09 1995-08-22 Tokuyama Corporation Method of assaying fibrinogen, dry reagent therefor, and process for the preparation thereof
EP0650734B1 (en) 1993-10-28 1999-03-10 Division Of Microbiology, Kyoto Biken Laboratories, Inc. Pentavalent live viral vaccine
FR2719479B1 (fr) 1994-05-04 1996-07-26 Sanofi Elf Formulation stable lyophilisée comprenant une protéine: kit de dosage.
US5593824A (en) 1994-09-02 1997-01-14 Pharmacia Biotech, Inc. Biological reagent spheres
US5565318A (en) 1994-09-02 1996-10-15 Pharmacia Biotech, Inc. Room temperature stable reagent semi-spheres
US5814510A (en) * 1994-11-08 1998-09-29 Cornell Research Foundation, Inc. Attenuated canine parvovirus vaccine
ES2434840T3 (es) 1995-07-27 2013-12-17 Genentech, Inc. Formulación de proteína liofilizada isotónica estable
FR2742756B1 (fr) 1995-12-22 1998-04-03 Pasteur Merieux Serums Vacc Stabilisants pour vaccins vivants, vaccins les contenant et procedes pour leur preparation
US5932223A (en) 1996-09-26 1999-08-03 Merck & Co., Inc. Rotavirus vaccine formulations
AU4133397A (en) * 1996-10-28 1998-05-22 Pfizer Inc. Oral vaccines for young animals with an enteric coating
WO1998054572A1 (en) * 1997-05-30 1998-12-03 Creative Biomolecules, Inc. Methods for evaluating tissue morphogenesis and activity
NZ503463A (en) 1997-09-25 2002-10-25 Biotechnology Res & Dev Leukotoxin deletion mutant of Pasteurella haemolytica
CZ20001603A3 (cs) * 1997-11-21 2001-10-17 The Procter & Gamble Company Kapalný detergentní prostředek a způsob zvětąení objemu mydlin
CN1053590C (zh) 1998-10-19 2000-06-21 卫生部长春生物制品研究所 冻干甲型肝炎减毒活疫苗及其保护剂
JP5490972B2 (ja) 2000-08-04 2014-05-14 中外製薬株式会社 タンパク質注射製剤
CA2418960A1 (en) * 2000-08-07 2002-02-14 Inhale Therapeutic Systems, Inc. Inhaleable spray dried 4-helix bundle protein powders having minimized aggregation
US20040042972A1 (en) 2002-04-11 2004-03-04 Medimmune Vaccines, Inc. Spray freeze dry of compositions for intranasal administration
US7923029B2 (en) 2002-04-11 2011-04-12 Medimmune Llc Spray freeze dry of compositions for pulmonary administration
WO2003087327A2 (en) * 2002-04-11 2003-10-23 Medimmune Vaccines, Inc. Preservation of bioactive materials by freeze dried foam
RS20050177A (sr) 2002-08-26 2007-06-04 Pfizer Products Inc., Vakcina za infekcije respiratornog i reproduktivnog sistema kod stoke
US7229976B2 (en) 2002-09-26 2007-06-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. Modulation of forkhead box O1A expression
US6931888B2 (en) 2003-02-07 2005-08-23 Ferro Corporation Lyophilization method and apparatus for producing particles
EP2481819A1 (en) 2003-02-25 2012-08-01 MedImmune Vaccines, Inc. Cross flow filtration in the production of stabilized influenza vaccine compositions
EP1638598B1 (en) 2003-07-02 2006-12-06 Biotechnology Research And Development Corporation ACAPSULAR i P. MULTOCIDA HYAE /i DELETION MUTANTS
WO2005052116A2 (en) 2003-11-19 2005-06-09 Merck & Co., Inc. Preservative-containing virus formulations
EP1708747A2 (en) 2004-01-15 2006-10-11 Intervet International BV Non-animal origin stabilizers and processes for producing the same
RU2259214C1 (ru) * 2004-01-28 2005-08-27 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации Способ получения вакцины оспенной инактивированной сухой "оспавир"
US20060099567A1 (en) * 2004-04-08 2006-05-11 Biomatrica, Inc. Integration of sample storage and sample management for life science
EP1750760B1 (en) * 2004-06-02 2017-06-28 Universal Stabilization Technologies, Inc. Preservation by vaporization
DK2368975T3 (en) 2004-12-23 2015-01-05 Medimmune Llc Non-tumorigenic MDCK cell line for the propagation of viruses
GB0503337D0 (en) 2005-02-17 2005-03-23 Glaxosmithkline Biolog Sa Compositions
US7959929B2 (en) 2005-04-21 2011-06-14 University Of Florida Research Foundation, Inc. Materials and methods for respiratory disease control in canines
EP1896610A2 (en) 2005-05-03 2008-03-12 Handylab, Inc. Lyophilized pellets
KR101347503B1 (ko) 2005-09-09 2014-01-02 인터벳 인터내셔널 비.브이. Ｐｃｖ-2 백신
EP1954308B1 (en) * 2005-09-16 2011-09-07 Merial Ltd. Stabilizers for freeze-dried vaccines
KR101357685B1 (ko) 2005-11-21 2014-02-06 사노피 파스퇴르 리미티드 / 사노피 파스퇴르 리미떼 재조합 바이러스용 안정화 제형
WO2007064191A1 (en) 2005-12-02 2007-06-07 Stichting Katholieke Universiteit Method for obtaining hollow particles
CN101404980A (zh) 2006-01-24 2009-04-08 耐百生物制药有限公司 大分子微球的制备技术
MX2008014391A (es) * 2006-05-12 2009-03-06 Bharat Biotech Int Ltd Una composicion util como vacuna.
AU2013224732A1 (en) 2006-09-15 2013-09-26 Medimmune, Llc Mdck cell lines supporting viral growth to high titers and bioreactor process using the same
BRPI0808259A2 (pt) 2007-03-05 2014-07-08 Cadila Healthcare Ltd. , "formulação, processo de liofilização, formulação liofilizada, e processo para preparar uma formulação liofilizada"
WO2009014774A1 (en) 2007-04-06 2009-01-29 Inviragen, Inc. Methods and compositions for live attenuated viruses
CN101755044B (zh) 2007-05-18 2014-06-11 米迪缪尼有限公司 通过冻干泡沫保存生物活性材料
NZ582019A (en) 2007-06-14 2012-07-27 Univ Oklahoma State Vaccines containing canine parvovirus genetic variants
TWI436789B (zh) 2008-01-21 2014-05-11 Intervet Int Bv 含有藥學化合物的顆粒之冷凍乾燥方法及含有此顆粒的藥學包
CN101959527B (zh) 2008-03-05 2016-04-20 赛诺菲巴斯德有限公司 一种使含佐剂的疫苗组合物稳定的方法
EP2143440A1 (fr) 2008-07-09 2010-01-13 Sanofi Pasteur Agent stabilisant et composition vaccinale comprenant un ou plusieurs flavivirus vivants atténués
CN102089607A (zh) 2008-07-10 2011-06-08 株式会社爱发科 冷冻干燥装置
US7998488B2 (en) 2008-11-14 2011-08-16 Baxter International Inc. Vaccine formulations and uses thereof
JP5730211B2 (ja) 2008-11-20 2015-06-03 バイオジェン アイデック エムエー インコーポレイティドＢｉｏｇｅｎ Ｉｄｅｃ Ｉｎｃ． ウイルスのアルギニン不活化
JP2012519471A (ja) 2009-01-30 2012-08-30 ザ・ボード・オブ・リージェンツ・フォー・オクラホマ・ステート・ユニバーシティ 北米のイヌにおいて広まっているイヌジステンパーウイルスに基づく免疫原性組成物、ワクチンおよび診断法
TWI471127B (zh) 2009-04-29 2015-02-01 Intervet Int Bv 供人類使用之口服崩解錠劑的製備方法、所製得之口服崩解錠劑、以及含有該口服崩解錠劑的包裝物
TWI468157B (zh) 2009-04-29 2015-01-11 Intervet Int Bv 形成錠劑的方法，進行該方法的系統及包含該錠劑的包裝物
US20110064723A1 (en) 2009-09-14 2011-03-17 Aridis Pharmaceuticals Formulation for room temperature stabilization of a live attenuated bacterial vaccine
US20110243988A1 (en) 2009-10-01 2011-10-06 Aridis Pharmaceuticals Methods and Compositions for Stabilization of a Virus Vaccine
US8557253B2 (en) 2009-10-07 2013-10-15 Sanofi Pasteur Sa Stabilizing excipient for inactivated whole virus vaccine
DK2509634T3 (en) 2009-12-11 2019-04-23 Pfizer Stable formulations for lyophilization of therapeutic particles
DK2542260T3 (en) 2010-03-05 2016-06-06 Intervet Int Bv Recombinantly weakening parvovirus
EP3199178B1 (en) 2010-07-16 2020-02-19 Intervet International B.V. Live attenuated parvovirus
ES2550258T3 (es) 2011-02-17 2015-11-05 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh Nueva cepa del PRRSV europea
CN102166362B (zh) 2011-04-13 2012-10-10 武汉中博生物股份有限公司 猪繁殖与呼吸综合征活疫苗耐热冻干保护剂及制备方法
EP2699265B1 (en) * 2011-04-20 2019-10-16 Sandoz AG STABLE PHARMACEUTICAL LIQUID FORMULATIONS OF THE FUSION PROTEIN TNFR:Fc
CA3206983A1 (en) 2011-10-21 2013-04-25 Intervet International B.V. Recombinant non-pathogenic marek's disease virus constructs encoding infectious laryngotracheitis virus and newcastle disease virus antigens
WO2013057235A1 (en) 2011-10-21 2013-04-25 Intervet International B.V. Recombinant nonpathogenic mdv vector providing multivalent immunity
US20140017318A1 (en) 2012-07-10 2014-01-16 Kevin O'Connell Method to produce a medicinal product comprising a biologically active protein and the resulting product
US9314519B2 (en) 2012-08-21 2016-04-19 Intervet Inc. Liquid stable virus vaccines
WO2014095956A1 (en) 2012-12-19 2014-06-26 Intervet International B.V. CANINE PARVOVIRUS TYPE 2c ISOLATES AND METHODS OF USE
CN103041383B (zh) 2013-01-07 2014-02-05 江苏省农业科学院 一种活疫苗的耐热冻干保护剂、活疫苗冻干粉及其制备方法
CN103041399B (zh) 2013-01-07 2014-10-08 江苏省农业科学院 一种耐热保护剂及其应用
US9480739B2 (en) 2013-03-15 2016-11-01 Intervet Inc. Bovine virus vaccines that are liquid stable
US9393298B2 (en) 2013-03-15 2016-07-19 Intervet Inc. Liquid stable bovine virus vaccines
AR097762A1 (es) 2013-09-27 2016-04-13 Intervet Int Bv Formulaciones secas de vacunas que son estables a temperatura ambiente
AR099470A1 (es) 2014-02-17 2016-07-27 Intervet Int Bv Vacunas de virus de aves de corral líquidas
TWI670085B (zh) 2014-02-19 2019-09-01 荷蘭商英特威國際公司 液體穩定之豬病毒疫苗
CN103893776B (zh) 2014-03-18 2016-04-06 中国农业科学院兰州兽医研究所 羊传染性脓疱病毒细胞弱毒疫苗耐热冻干保护剂及其制备方法和应用

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