ITPD20010031A1 - Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. - Google Patents
Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. Download PDFInfo
- Publication number
- ITPD20010031A1 ITPD20010031A1 IT2001PD000031A ITPD20010031A ITPD20010031A1 IT PD20010031 A1 ITPD20010031 A1 IT PD20010031A1 IT 2001PD000031 A IT2001PD000031 A IT 2001PD000031A IT PD20010031 A ITPD20010031 A IT PD20010031A IT PD20010031 A1 ITPD20010031 A1 IT PD20010031A1
- Authority
- IT
- Italy
- Prior art keywords
- process according
- serine
- phosphatidyl
- phosphatide
- food
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 46
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 27
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 title claims description 8
- 235000013305 food Nutrition 0.000 title description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 47
- 102000011420 Phospholipase D Human genes 0.000 claims abstract description 23
- 108090000553 Phospholipase D Proteins 0.000 claims abstract description 23
- 150000003904 phospholipids Chemical class 0.000 claims abstract description 13
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims abstract description 6
- 239000008344 egg yolk phospholipid Substances 0.000 claims abstract description 6
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 claims abstract description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 23
- 229960001153 serine Drugs 0.000 claims description 17
- 235000015872 dietary supplement Nutrition 0.000 claims description 16
- 239000008347 soybean phospholipid Substances 0.000 claims description 12
- PZNPLUBHRSSFHT-RRHRGVEJSA-N 1-hexadecanoyl-2-octadecanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)O[C@@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)COC(=O)CCCCCCCCCCCCCCC PZNPLUBHRSSFHT-RRHRGVEJSA-N 0.000 claims description 11
- 238000005502 peroxidation Methods 0.000 claims description 9
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 claims description 6
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 claims description 6
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 claims description 6
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 claims description 6
- 239000008194 pharmaceutical composition Substances 0.000 claims description 6
- JZNWSCPGTDBMEW-UHFFFAOYSA-N Glycerophosphorylethanolamin Natural products NCCOP(O)(=O)OCC(O)CO JZNWSCPGTDBMEW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 235000019629 palatability Nutrition 0.000 claims description 5
- 150000008104 phosphatidylethanolamines Chemical class 0.000 claims description 5
- 239000008187 granular material Substances 0.000 claims description 4
- 229960002591 hydroxyproline Drugs 0.000 claims description 4
- 241000936729 Streptomyces hachijoensis Species 0.000 claims description 3
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 claims description 3
- 230000002051 biphasic effect Effects 0.000 claims description 3
- 239000002775 capsule Substances 0.000 claims description 3
- 239000003826 tablet Substances 0.000 claims description 3
- OIWCYIUQAVBPGV-OMQYGGJPSA-N (2R)-2-amino-3-[[(2R)-3-hexadecanoyloxy-2-[(Z)-octadec-9-enoyl]oxypropoxy]-hydroxyphosphoryl]oxypropanoic acid Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP(O)(=O)OC[C@@H](N)C(O)=O)OC(=O)CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC OIWCYIUQAVBPGV-OMQYGGJPSA-N 0.000 claims description 2
- 201000004624 Dermatitis Diseases 0.000 claims description 2
- ATBOMIWRCZXYSZ-XZBBILGWSA-N [1-[2,3-dihydroxypropoxy(hydroxy)phosphoryl]oxy-3-hexadecanoyloxypropan-2-yl] (9e,12e)-octadeca-9,12-dienoate Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OCC(COP(O)(=O)OCC(O)CO)OC(=O)CCCCCCC\C=C\C\C=C\CCCCC ATBOMIWRCZXYSZ-XZBBILGWSA-N 0.000 claims description 2
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims description 2
- AWUCVROLDVIAJX-UHFFFAOYSA-N alpha-glycerophosphate Natural products OCC(O)COP(O)(O)=O AWUCVROLDVIAJX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 239000006071 cream Substances 0.000 claims description 2
- PMMYEEVYMWASQN-UHFFFAOYSA-N dl-hydroxyproline Natural products OC1C[NH2+]C(C([O-])=O)C1 PMMYEEVYMWASQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 239000000499 gel Substances 0.000 claims description 2
- 230000002757 inflammatory effect Effects 0.000 claims description 2
- -1 phosphatidyl hydroxyproline Chemical compound 0.000 claims description 2
- 230000035790 physiological processes and functions Effects 0.000 claims description 2
- 239000011347 resin Substances 0.000 claims description 2
- 229920005989 resin Polymers 0.000 claims description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 claims description 2
- FGMPLJWBKKVCDB-UHFFFAOYSA-N trans-L-hydroxy-proline Natural products ON1CCCC1C(O)=O FGMPLJWBKKVCDB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- YDNKGFDKKRUKPY-JHOUSYSJSA-N C16 ceramide Chemical group CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)N[C@@H](CO)[C@H](O)C=CCCCCCCCCCCCCC YDNKGFDKKRUKPY-JHOUSYSJSA-N 0.000 claims 3
- 229940106189 ceramide Drugs 0.000 claims 3
- ZVEQCJWYRWKARO-UHFFFAOYSA-N ceramide Chemical group CCCCCCCCCCCCCCC(O)C(=O)NC(CO)C(O)C=CCCC=C(C)CCCCCCCCC ZVEQCJWYRWKARO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 3
- 125000003374 diacylglycerol group Chemical group 0.000 claims 3
- VVGIYYKRAMHVLU-UHFFFAOYSA-N newbouldiamide Chemical group CCCCCCCCCCCCCCCCCCCC(O)C(O)C(O)C(CO)NC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC VVGIYYKRAMHVLU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 3
- CRJGESKKUOMBCT-VQTJNVASSA-N N-acetylsphinganine Chemical group CCCCCCCCCCCCCCC[C@@H](O)[C@H](CO)NC(C)=O CRJGESKKUOMBCT-VQTJNVASSA-N 0.000 claims 2
- 125000001549 ceramide group Chemical group 0.000 claims 2
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 claims 2
- NWUYHJFMYQTDRP-UHFFFAOYSA-N 1,2-bis(ethenyl)benzene;1-ethenyl-2-ethylbenzene;styrene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1.CCC1=CC=CC=C1C=C.C=CC1=CC=CC=C1C=C NWUYHJFMYQTDRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 claims 1
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 claims 1
- FFBHFFJDDLITSX-UHFFFAOYSA-N benzyl N-[2-hydroxy-4-(3-oxomorpholin-4-yl)phenyl]carbamate Chemical compound OC1=C(NC(=O)OCC2=CC=CC=C2)C=CC(=C1)N1CCOCC1=O FFBHFFJDDLITSX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 239000003729 cation exchange resin Substances 0.000 claims 1
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 claims 1
- 150000001982 diacylglycerols Chemical class 0.000 claims 1
- 230000000378 dietary effect Effects 0.000 claims 1
- 150000003138 primary alcohols Chemical class 0.000 claims 1
- 150000003410 sphingosines Chemical class 0.000 claims 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 abstract description 8
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 abstract 1
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 abstract 1
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 abstract 1
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N Isopropanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 68
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 40
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 36
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 27
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 26
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 18
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- VLKZOEOYAKHREP-UHFFFAOYSA-N n-Hexane Chemical compound CCCCCC VLKZOEOYAKHREP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 239000012074 organic phase Substances 0.000 description 16
- MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N (2S)-2-Amino-3-hydroxypropansäure Chemical compound OC[C@H](N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N 0.000 description 14
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 14
- TZCPCKNHXULUIY-RGULYWFUSA-N 1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoserine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP(O)(=O)OC[C@H](N)C(O)=O)OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCCCC TZCPCKNHXULUIY-RGULYWFUSA-N 0.000 description 12
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- ZWZWYGMENQVNFU-UHFFFAOYSA-N Glycerophosphorylserin Natural products OC(=O)C(N)COP(O)(=O)OCC(O)CO ZWZWYGMENQVNFU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 11
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 10
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M Sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 10
- 239000008351 acetate buffer Substances 0.000 description 10
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 10
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 10
- 239000000047 product Substances 0.000 description 10
- 238000010992 reflux Methods 0.000 description 10
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 description 10
- PORPENFLTBBHSG-MGBGTMOVSA-N 1,2-dihexadecanoyl-sn-glycerol-3-phosphate Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP(O)(O)=O)OC(=O)CCCCCCCCCCCCCCC PORPENFLTBBHSG-MGBGTMOVSA-N 0.000 description 8
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 8
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 8
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 8
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 description 8
- 230000007928 solubilization Effects 0.000 description 8
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 description 7
- XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N Ethyl acetate Chemical compound CCOC(C)=O XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 5
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 4
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 4
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N Serine Natural products OCC(N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 3
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 3
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 3
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- ASWBNKHCZGQVJV-HSZRJFAPSA-N 1-hexadecanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@@H](O)COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C ASWBNKHCZGQVJV-HSZRJFAPSA-N 0.000 description 2
- HZAXFHJVJLSVMW-UHFFFAOYSA-N 2-Aminoethan-1-ol Chemical compound NCCO HZAXFHJVJLSVMW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- XDTMQSROBMDMFD-UHFFFAOYSA-N Cyclohexane Chemical compound C1CCCCC1 XDTMQSROBMDMFD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- MTCFGRXMJLQNBG-UWTATZPHSA-N D-Serine Chemical compound OC[C@@H](N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-UWTATZPHSA-N 0.000 description 2
- 229930195711 D-Serine Natural products 0.000 description 2
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000001143 conditioned effect Effects 0.000 description 2
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 2
- 230000008025 crystallization Effects 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 2
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 2
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- WTJKGGKOPKCXLL-RRHRGVEJSA-N phosphatidylcholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCCCCCCC=CCCCCCCCC WTJKGGKOPKCXLL-RRHRGVEJSA-N 0.000 description 2
- BASFCYQUMIYNBI-UHFFFAOYSA-N platinum Chemical compound [Pt] BASFCYQUMIYNBI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 239000000741 silica gel Substances 0.000 description 2
- 229910002027 silica gel Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000012265 solid product Substances 0.000 description 2
- UKAUYVFTDYCKQA-UHFFFAOYSA-N -2-Amino-4-hydroxybutanoic acid Natural products OC(=O)C(N)CCO UKAUYVFTDYCKQA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IIZPXYDJLKNOIY-JXPKJXOSSA-N 1-palmitoyl-2-arachidonoyl-sn-glycero-3-phosphocholine Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC(=O)OC[C@H](COP([O-])(=O)OCC[N+](C)(C)C)OC(=O)CCC\C=C/C\C=C/C\C=C/C\C=C/CCCCC IIZPXYDJLKNOIY-JXPKJXOSSA-N 0.000 description 1
- BDKLKNJTMLIAFE-UHFFFAOYSA-N 2-(3-fluorophenyl)-1,3-oxazole-4-carbaldehyde Chemical compound FC1=CC=CC(C=2OC=C(C=O)N=2)=C1 BDKLKNJTMLIAFE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 1
- PMMYEEVYMWASQN-DMTCNVIQSA-N Hydroxyproline Chemical compound O[C@H]1CN[C@H](C(O)=O)C1 PMMYEEVYMWASQN-DMTCNVIQSA-N 0.000 description 1
- UKAUYVFTDYCKQA-VKHMYHEASA-N L-homoserine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCO UKAUYVFTDYCKQA-VKHMYHEASA-N 0.000 description 1
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 description 1
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 description 1
- 239000000370 acceptor Substances 0.000 description 1
- 229960000583 acetic acid Drugs 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 239000003957 anion exchange resin Substances 0.000 description 1
- 239000002518 antifoaming agent Substances 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012455 biphasic mixture Substances 0.000 description 1
- KISBHDLCXWCSEM-UHFFFAOYSA-L calcium dichloride trihydrate Chemical compound O.O.O.[Cl-].[Cl-].[Ca+2] KISBHDLCXWCSEM-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000005341 cation exchange Methods 0.000 description 1
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 1
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 1
- 125000001495 ethyl group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([H])* 0.000 description 1
- 235000013376 functional food Nutrition 0.000 description 1
- 239000012362 glacial acetic acid Substances 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 239000000787 lecithin Substances 0.000 description 1
- 229940067606 lecithin Drugs 0.000 description 1
- 235000010445 lecithin Nutrition 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 239000002417 nutraceutical Substances 0.000 description 1
- 235000021436 nutraceutical agent Nutrition 0.000 description 1
- 235000014593 oils and fats Nutrition 0.000 description 1
- 239000003791 organic solvent mixture Substances 0.000 description 1
- 230000001590 oxidative effect Effects 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052697 platinum Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 1
- 125000000075 primary alcohol group Chemical group 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 239000012429 reaction media Substances 0.000 description 1
- 238000004064 recycling Methods 0.000 description 1
- 238000001226 reprecipitation Methods 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 238000013341 scale-up Methods 0.000 description 1
- 229940087562 sodium acetate trihydrate Drugs 0.000 description 1
- 238000000638 solvent extraction Methods 0.000 description 1
- 150000003626 triacylglycerols Chemical class 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07F—ACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
- C07F9/00—Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
- C07F9/02—Phosphorus compounds
- C07F9/06—Phosphorus compounds without P—C bonds
- C07F9/08—Esters of oxyacids of phosphorus
- C07F9/09—Esters of phosphoric acids
- C07F9/10—Phosphatides, e.g. lecithin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K8/00—Cosmetics or similar toiletry preparations
- A61K8/18—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition
- A61K8/30—Cosmetics or similar toiletry preparations characterised by the composition containing organic compounds
- A61K8/55—Phosphorus compounds
- A61K8/553—Phospholipids, e.g. lecithin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
- A61P17/02—Drugs for dermatological disorders for treating wounds, ulcers, burns, scars, keloids, or the like
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
- A61P17/16—Emollients or protectives, e.g. against radiation
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
- A61P25/28—Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
- A61P3/02—Nutrients, e.g. vitamins, minerals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61Q—SPECIFIC USE OF COSMETICS OR SIMILAR TOILETRY PREPARATIONS
- A61Q19/00—Preparations for care of the skin
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
- C12P13/06—Alanine; Leucine; Isoleucine; Serine; Homoserine
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P9/00—Preparation of organic compounds containing a metal or atom other than H, N, C, O, S or halogen
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Neurology (AREA)
- Neurosurgery (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Pain & Pain Management (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Nutrition Science (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Psychiatry (AREA)
- Hospice & Palliative Care (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Diabetes (AREA)
- Birds (AREA)
- Obesity (AREA)
- Hematology (AREA)
- Cosmetics (AREA)
Description
Descrizione di una invenzione industriale dal titolo “Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare”
OGGETTO DELLΊNVENZIONE
La presente invenzione si riferisce ad un processo per la preparazione di fosfatidi puri a partire da miscele di fosfatidi naturali, o singoli loro componenti, quali la lecitina di soia o di uovo o fosfolipidi animali, o da fosfatidi sintetici facendoli reagire con fosfolipasi D, avente attività di transfosfatidilizzazione, in ambiente acquoso in presenza di definiti substrati contenenti un gruppo alcolico primario.
L’invenzione si riferisce, inoltre, ad un processo per la preparazione di derivati fosfoceramidici a partire da sfingomielina naturale facendola reagire con fosfolipasi D, avente attività di transfosfatidilizzazione, in ambiente idro-organico bifasico in presenza di definiti substrati contenenti un gruppo alcolico primario. Un altro aspetto della presente invenzione riguarda la preparazione, la purificazione e la caratterizzazione della fosfolipasi D utilizzata nel processo.
CAMPO DELL'INVENZIONE
La sintesi, in particolare su scala industriale, di fosfolipidi puri è un problema particolarmente sentito, tanto che esistono numerose pubblicazioni scientifiche e brevetti, anche molto recenti, che descrivono diverse metodologie. In genere questi metodi utilizzano le proprietà di transfosfatidilizzazione della fosfolipasi D per l’ottenimento di fosfatidi otticamente attivi. Uno dei maggiori problemi è il fatto che ognuno di questi metodi è adatto per la preparazione di uno specifico fosfatide e non si presta, invece, in modo universale per la sintesi di tutta la classe di composti. Generalmente il fosfolipide più studiato è la fosfatidilserina (PS) in quanto ampiamente utilizzato nella preparazione di composizioni farmaceutiche, nella preparazioni di formulazioni liposomiali oltre che di integratori alimentari. Relativamente poco o nulla si riporta per quanto riguarda la sintesi degli sfingofosfolipidi.
Una limitazione di tutte le metodiche riportate in letteratura, sia scientifica che brevettuale, consiste nel fatto che la reazione di transfosfatidilizzazione avviene in sistemi bifasici acqua/ solvente organico, il che comporta una serie di problematiche di tipo tecnico per quanto riguarda l'uso di grandi quantità di solventi, specialmente qualora il processo industriale sia di natura chimica e si cerchi la qualità del prodotto finale. Nella domanda di brevetto DE 19917249 Al viene, in realtà, descritto un metodo che utilizza la sola fase acquosa, ma non vengono riportate né le rese né il grado di purezza della PS ottenuta. Inoltre non viene descritto se si possono ottenere altri fosfolipidi, oltre alla PS, mediante la tecnica e a partire dai substrati impiegati o se nelle condizioni descritte altri fosfolipidi possono fungere da substrato di reazione. Anche nel brevetto JP 2130088 viene riportato nel sommario l’uso di sola acqua oltre a quello consolidato di una miscela acqua/ solvente organico come mezzo di reazione, però nella descrizione pratica degli esempi si riportano unicamente processi che utilizzano una miscela bifasica di acqua ed etere etilico.
La genericità o assenza di insegnamenti nelle suddette anteriorità riguardo all’applicabilità della reazione di transfosfatidilizzazione della fosfolipasi D in sola fase acquosa non potevano certo far pensare all’esperto del ramo che questa fosse la via percorribile per la soluzione del problema. Del resto, la consapevolezza dell’importanza di rimuovere impurezze derivanti dall’impiego di solventi organici nei processi di produzione di prodotti destinati ad impieghi in campo alimentare e farmaceutico è un dato degli ultimi anni, anche in seguito alle limitazioni poste daUTJSP e dalle Linee Guida Europee (CPMP/CH/283/95).
Un altro punto critico, che non viene valutato in modo approfondito né nella letteratura scientifica né tanto meno in quella brevettuale, riguarda la perossidazione dei prodotti a causa dell’uso di fasi eterogenee acqua/ solvente in emulsione durante la reazione di transfosfatidilizzazione, delle condizioni di reazione impiegate e della conseguente necessità di procedere attraverso numerosi fasi nel processo (riprecipitazioni, lavaggi ed eventualmente anche cromatografie) necessari per l’ottenimento dei prodotti stessi ad alto grado di purezza. Molti dei solventi utilizzabili per queste reazioni in fase eterogenea non garantiscono l’assenza di precursori radicalici tipici dell’iniziazione della reazione di perossidazione, e le condizioni di agitazione/ miscelazione necessarie per l’esecuzione di una reazione in fase eterogenea aumentano di fatto il possibile contatto con l’ossigeno atmosferico ed il conseguente scatenamento dei fenomeni ossidativi. Questa perossidazione ha, inoltre, il caratteristico comportamento della reazione a catena, per la quale anche fasi di innesco iniziali trascurabili possono dare risultati devastanti nel tempo, nonostante siano state eliminate o minimizzate le condizioni scatenanti. La perossidazione di una sostanza “grassa”, come sono i trigliceridi (oli e grassi) ed anche i fosfolipidi, comporta il cosiddetto irrancidimento degli acidi grassi con conseguente formazione di odore e gusto sgradevoli. L’ottenimento di prodotti di alto grado di palatabilità (odore e gusto) è invece di particolare importanza qualora i prodotti, in particolare la PS, vengano utilizzati per la preparazione di integratori alimentari (nutraceuticals) aventi particolari formulazioni come, per esempio, i granulati, o dei cosiddetti “functional food”, nei quali il prodotto viene aggiunto per arricchire alimenti. Di conseguenza, sarà importante che i prodotti ottenuti, in particolare la PS, siano caratterizzati chimicamente in modo chiaro sia per quanto riguarda la composizione chimica degli acidi grassi, sia per il loro grado di perossidazione e la conseguente palatabilità.
E’ da rilevare, infine, che gli enzimi fosfolipasi D commercialmente disponibili hanno attività di transfosfatidilizzazione solamente sulla frazione fosfatidilcolinica della miscela fosfolipidica, mentre gli altri componenti quali, per esempio, la fosfatidiletanolamina (PE), subiscono la reazione di idrolisi ad acido fosfatidico riducendo sia la resa che il grado di purezza del prodotto finale o, nel caso della sfingomielina, non subiscono reazione di transfosfatidilizzazione .
DESCRIZIONE DETTAGLIATA DELL’INVENZIONE
Sorprendentemente la richiedente ha scoperto che, utilizzando una frazione purificata di fosfolipasi D da Streptoverticillium hachijoense, è possibile ottenere la reazione di transfosfatidilizzazione con diversi accettori alcolici a partire da una miscela di fosfatidi naturali o loro frazioni purificate in ambiente acquoso con alte rese di prodotto, un alto grado di purezza ed un indice di perossidi (grado di perossidazione), determinato secondo la European Pharmacopoeia - Suppl. 2000, pag. 41 (method A), inferiore a 5 mediante un unico passaggio di reazione ed un’unica precipitazione.
La reazione di transfosfatidilizzazione può essere condotta in varie condizioni di temperatura e di concentrazione dei substrati, variando la prima fra 20 e 60°C, preferibilmente 45°C, e la seconda fra 10 e 500 mg/ml, preferibilmente 150 mg/ml, anche in funzione della disperdibilità/ solubilità dei substrati.
Un secondo aspetto della presente invenzione consiste nel fattq che questa particolare preparazione enzimatica agisce con attività di transfosfatidilizzazione ad alte rese anche su substrati diversi dalla fosfatidilcolina (lecitina), rendendo quindi il processo utilizzabile anche con materie prime non purificate e di basso costo.
Un terzo aspetto consiste nella preparazione di fosfolipidi non naturali, in particolare di derivati della sfingomielina.
Un quarto aspetto della presente invenzione riguarda la preparazione di composizioni farmaceutiche e cosmetiche e di integratori alimentari e dietetici a base di fosfolipidi, ottenuti secondo il processo sopra descritto, aventi un grado di perossidazione inferiore a 5 ed un alto grado di palatabilità, tali da renderli preferibili rispetto a prodotti similari, commercialmente disponibili, ma non aventi le suddette caratteristiche.
Le composizioni farmaceutiche e gli integratori alimentari e dietetici sono particolarmente indicate /i nel trattamento delle condizioni di stress psico-fisico con difficoltà di attenzione, concentrazione e memorizzazione, spesso associate al progredire dell'età, e possono essere preparate, ad esempio, in forma di capsule, compresse e granulati.
Le composizioni cosmetiche trovano maggiore applicazione nel trattamento della pelle alterata nelle sue funzioni fisiologiche e come coadiuvanti nella terapia delle dermatiti di tipo eczematoso e/o infiammatorio e possono essere preparate, ad esempio, in forma di creme o gel. , A scopo puramente illustrativo riportiamo alcuni esempi di preparazione della Fosfolipasi D e di fosfolipidi da essa derivanti secondo la presente invenzione.
Esempio 1 - Preparazione di Fosfolipasi D
Viene utilizzato il ceppo Streptoverticillium hachijoense ATCC 19769.
La preparazione dell’inoculo da utilizzare nella prova di fermentazione inizia con il prelievo di una colonia su terreno solido in capsule di Petri. La composizione del terreno solido è la seguente: 21,0 gr/lt Y.M., 2% agar. Il prelievo dei batteri da capsule di Petri viene usato per iniziare un sistema di “scale up” in beuta secondo la seguente procedura:
- i batteri vengono prelevati dal terreno solido per mezzo di un’ansa di platino sterile ed inoculati in una beuta da 100 ml contenente 20 ml di medio della seguente composizione: 21,0 gr/lt di Y.M. broth;
- la beuta viene posta in incubatore shaker a 30°C, 150 rpm per 48 ore;
- si trasferiscono i 20 ml di coltura in una beuta da 5,0 lt contenente 2,5 lt di medio avente composizione come sopra; - la beuta viene posta in incubatore shaker a 30°C, 150 rpm per 72 ore.
A questo punto la coltura è pronta per essere inoculata nel fermentatore. Questa operazione è resa possibile grazie al fatto che la coltura si trova in una beuta attrezzata di un tubo al silicone con un sistema ad ago. Viene utilizzato un fermentatore di 50 lt (Braun Biostat U). La composizione del medio utilizzato è la seguente: Y.M. broth 21,0 gr/lt, pH 6,5 (il medio viene sterilizzato direttamente in fermentatore) con l’aggiunta di antischiuma); i parametri di fermentazione sono i seguenti: agitazione 200 rpm, temperatura 30°C, flusso d’aria 0,5 vvm.
Dopo 72 ore la fermentazione viene interrotta, la produzione massima di enzima raggiunta è di 5.000 U/lt e l’attività enzimatica viene determinata con il metodo descritto in letteratura di Kato et al. Modificato (K. Shimbo et al., Agric. Biol. Chem. 54(5), 1189-93, 1990).
Il brodo di coltura viene filtrato per eliminare la biomassa, il sunatante viene concentrato utilizzando una cartuccia a spirale in acetato di cellulosa con cut-off di 10.000 D e dializzato contro tampone Tris-HCl 50 mM, pH 8,0. Il campione ottenuto viene caricato su colonna cromatografica (i.d. = 10 cm, h = 50 cm) impaccata con 500 gr di resina a scambio anionico DE-52 Whatman pre-equilibrata con lo stesso tampone utilizzato per la dialisi. L’enzima non viene adsorbito, eluisce dalla colonna, viene dializzato contro tampone Na- fosfato 20 mM, pH 5,4 e quindi caricato su una colonna cromatografica (i.d. = 10 cm, h = 50 cm) impaccata con 50 gr di resina a scambio cationico CM-Sephadex C-50 Pharmacia pre-equilibrata con lo stesso tampone dell’enzima. L’enzima viene eluito con un gradiente di pH da 5,4 a 7,0 utilizzando un tampone Na-fosfato 20 mM, pH 7,0. La frazione che eluisce a pH 6,2 viene raccolta, concentrata e dializzata contro tampone Tris-HCl 50 mM, pH 8,0 fino ad una concentrazione di 100 U/ml e quindi liofilizzata.
, ,
Esempio 2 - Preparazione di PS da PC
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono sciolti in 10 lt di acqua 272 gr di sodio acetato triidrato e 59 gr di calcio cloruro triidrato; si porta il pH a 5,6 (tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6) indi si aggiungono 5,0 kg di L-serina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto. A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 1,5 kg di lecitina purificata di soia avente la seguente composizione: PC 95%, PA 4%, liso-PC 1%; dopo 10 mln si aggiungono 16.100 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C. Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 10 lt di una miscela di n-esano/isopropanolo/ acqua (60/80/ 15); si lascia in agitazione fino a dissoluzione della massa nel reattore indi si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene raccolta ed avviata al recupero della L-, serina non reagita mediante cristallizzazione per raffreddamento. La fase superiore viene lavata con 6.950 ml di HCl 1 N e 1.113 mi di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 10 lt di una miscela di nesano/ isopropanolo /acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 7 lt di acqua e 6 lt di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto e precipitate per aggiunta lenta ad una soluzione di 450 ml di sodio acetato 4,5 M in acqua in 33,2 lt di etanolo.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 1,14 kg di fosfatidilserina con titolo superiore al 95% con contenuto di acido fosfatidico inferiore al 5% e indice di perossidi inferiore a 5.
Dopo cristallizzazione ed essiccamento vengono recuperati 3,25 kg di L-serina.
Esempio 3 - Preparazione di PS da lecitina di uovo
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 180 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6, indi si aggiungono 90 gr di L-serina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 27 gr di lecitina purificata di uovo (contenuto in PC > 95%); dopo 10 min si aggiungono 290 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di una miscela di n-esano/isopropanolo/ acqua (60/80/ 15); si lascia in agitazione fino a dissoluzione della massa nel reattore, indi si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/ isopropanolo /acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto e precipitate per aggiunta lenta ad una soluzione di 8 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua in 600 ml di etanolo.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 20,8 gr di fosfatidilserina con titolo superiore al 95% con contenuto di acido fosfatidico inferiore al 5% e indice di perossidi inferiore a 5.
Esempio 4 - Preparazione di fosfatidilserina da lecitina grezza di soia
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 180 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6, indi si aggiungono 90 gr di L-serina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 27 gr di lecitina grezza di soia avente la seguente composizione percentuale: PC 60,6 / PE 29,5 / PA 3,4 / liso-PC 2,5 / altri 3,9. Dopo 10 min si aggiungono 290 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di una miscela di n-esano/isopropanolo/acqua (60/80/ 15); si lascia in agitazione fino a dissoluzione della massa nel reattore indi si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/ isopropanolo /acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto e precipitate per aggiunta lenta ad una soluzione di 8 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua in 6000 mi di etanolo.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 19 gr di fosfatidilserina con titolo 83,5% (PA 7,7%, liso-PS 2,3%, PE 1,0%, altri 4,5%) e indice di perossidi inferiore a 5.
Esempio 5 - Preparazione fosfatidil-D-serina
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 180 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6, indi si aggiungono 90 gr di D-serina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 27 gr di lecitina purificata di soia come descritta nell’esempio 2; dopo 10 min si aggiungono 290 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di una miscela di n-esano/isopropanolo/acqua (60/80/ 15); si lascia in agitazione fino a dissoluzione della massa nel reattore indi si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/ isopropanolo /acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto e precipitate per aggiunta lenta ad una soluzione di 8 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua in 600 ml di etanolo.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 18,7 gr di fosfatidil-D-serina con titolo superiore al 95 % con contenuto di acido fosfatidico inferiore al 5 % e indice di perossidi inferiore a 5.
Esempio 6 - Preparazione di fosfatiriiletanolamima (PEI da PC In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 200 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
Si aggiungono 58 gr di etanolamina e si regola il pH a 5,6 con acido acetico glaciale termostatando a 30°C.
Al termine dell'operazione si scalda a 45 °C, si aggiungono 30 gr di di lecitina purificata di soia come descritta nell’esempio 2; dopo 10min aggiungono 325 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 400 ml di una miscela di n-esano/isopropanolo/ acqua (60/80/ 15); si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/isopropanolo/ acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo, poi con 100 ml di sodio acetato 1 N e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto.
Si purifica mediante cromatografia su gel di silice usando un cromatografo a pressione assiale con una colonna da 1 lt condizionata con cloroformio /metanolo (80/20); si eluisce a gradiente fino a cloroformio /metanolo /acqua (70/30/3).
Si evaporano le frazioni pure, si sciolgono in 250 ml di cicloesano e si liofilizza ottenendo 24 gr di prodotto solido giallo pallido esente da acido fosfatidico e lisoderivati con purezza superiore al 99%.
Esempio 7 - Preparazione di fosfatidil-omoserina da PC
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 180 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6, indi si aggiungono 102 gr di omoserina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 27 gr di di lecitina purificata di soia come descritta nell’esempio 2; dopo 10 min ggiungono 290 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di una miscela di n-esano/ isopropanolo/ acqua (60/80/ 15); si lascia in agitazione fino a dissoluzione della massa nel reattore, indi si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/isopropanolo/ acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto e precipitate per aggiunta lenta ad una soluzione di 8 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua in 600 ml di etanolo.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 22,6 gr di fosfatidil-omoserina con titolo superiore al 95% con contenuto di acido fosfatidico inferiore al 5 % e indice di perossidi inferiore a 5.
Esempio 8 - Preparazione di fosfatidil-idrossiprolina da PC
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 180 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6, indi si aggiungono 112 gr di idrossiprolina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 27 gr di di lecitina purificata di soia come descritta nell’esempio 2; dopo 10 min si aggiungono 290 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di una miscela di n-esano/isopropanolo/ acqua (60/80/ 15); si lascia in agitazione fino a dissoluzione della massa nel reattore indi si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/ isopropanolo/ acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto e precipitate per aggiunta lenta ad una soluzione di 8 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua in 600 ml di etanolo.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 18,4 gr di fosfatidil-idrossiprolina con titolo superiore al 95% con contenuto di acido fosfatidico inferiore al 5% e indice di perossidi inferiore a 5.
Esempio 9 - Preparazione di fosfatidilglicerolo da PC
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 200 ml di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6. Tutto il processo viene effettuato sotto azoto.
Si aggiungono 80 gr di glicerolo; si scalda a 45°C e si aggiungono 30 gr di di lecitina purificata di soia come descritta nell’esempio 2; dopo 10' min si aggiungono 325 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 400 ml di una miscela di n-esano/isopropanolo/acqua (60/80/ 15); si ferma l'agitazione e si lasciano separare le due fasi.
La fase inferiore viene scartata.
La fase superiore viene lavata con 150 ml di HCl 1 N e 30 ml di isopropanolo a 5°C.
La fase acida viene controestratta con 180 ml di una miscela di nesano/isopropanolo/acqua (60/80/ 15), indi le due fasi organiche vengono lavate a cascata con miscela di 100 ml di acqua e 130 ml di isopropanolo, poi con 100 ml di sodio acetato 1 N e 130 ml di isopropanolo.
Le fasi organiche vengono concentrate sotto vuoto.
Si purifica mediante cromatografia su gel di silice usando un cromatografo a pressione assiale con una colonna da 1 lt condizionata con cloroformio/metanolo (80/20); si eluisce a gradiente fino a cloroformio /metanolo /acqua (70/30/3).
Si evaporano le frazioni pure, si sciolgono in 250 ml di cicloesano e si liofilizza ottenendo 22,2 gr di prodotto solido bianco esente da acido fosfatidico e liso derivati con purezza superiore al 95%.
Esempio 10 - Preparazione di ceramido-fosfo-L-serina da sfingomielina
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 33 mi di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6 e 33 mi di etile acetato, indi si aggiungono 16,7 gr di L-serina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 2,0 gr di sfingomielina pura; dopo 10 min si aggiungono 20 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di miscela 1/ 1 di cloroformio /metanolo e 50 ml di HCl 1 N.
Si lava con HCl 1 N fino ad eliminazione della serina residua indi si evapora il solvente, si riprende in 500 ml di etanolo e si aggiungono 3 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 1,7 gr di ceramido-fosfo-L-serina con titolo superiore al 95% senza impurezze fosforopositive.
Esempio 11 - Preparazione di ceramido-fosfo-D-serina da sfingomielina
In un reattore con camicia dotato di agitazione e condensatore di riflusso vengono introdotti 33 mi di tampone acetato 0,2 M calcio cloruro 0,04 M pH 5,6 e 33 mi di etile acetato indi si aggiungono 16,7 gr di D-serina che viene portata in soluzione riscaldando a 45°C.
A solubilizzazione avvenuta si aggiungono 2,0 gr di sfingomielina pura; dopo 10 min si aggiungono 20 U di fosfolipasi D dell’esempio 1 e si lascia reagire per 24 ore a 45°C.
Terminata la reazione si scarica aggiungendo nel reattore 200 ml di miscela 1/ 1 di cloroformio /metanolo e 50 ml di HCl 1 N.
Si lava con HCl 1 N fino ad eliminazione della serina residua indi si evapora il solvente, si riprende in 500 ml di etanolo e si aggiungono 3 mi di sodio acetato 4,5 M in acqua.
Si filtra e si secca.
Si ottengono 1,7 gr di ceramido-fosfo-D-serina con titolo superiore al 95% senza impurezze fosforopositive.
Esempio 12 - Recupero e riciclo di L-serina
Le acque madri provenienti dal primo partizionamento della reazione enzimatica dell'esempio 2 vengono raffreddate a 0°C per 24 ore, indi si filtra il cristallizzato. Si lava con etanolo e si secca ottenendo aghi bianchi di prodotto puro identico all'originale.
Si reintegra la quantità mancante (circa 20 %) e si riutilizza normalmente.
Essendo l’invenzione così descritta, è chiaro che questi metodi possono essere modificati in vari modi. Tali modificazioni non sono da considerarsi come divergenze dallo spirito e dalle prospettive dell’invenzione e tutte le modifiche che apparirebbero evidenti ad un esperto nel campo sono comprese nell’ambito delle seguenti rivendicazioni .
Claims (1)
- RIVENDICAZIONI 1 . Processo per la preparazioni di fosfatidi di formula generalein cui R1 è diacilglicerolo o ceramide ed R2 un gruppo alcolico e secondo il quale si fa reagire un fosfatide di formula generalein cui R1 ha il significato di cui sopra ed R3 è CH2 - CH2 - NH2 o CH2 - CH2 - N(CH3)3 nel caso in cui R1 è diacilglicerolo ed è CH2 - CH2 - N(CH3)3 quando R1 è ceramide, con un alcool primario avente lunghezza di catena da C2 a C3 eventualmente sostituito da uno o più gruppi polari quali il gruppo amminico eventualmente sostituito, il gruppo alcolico o il gruppo carbossilico in presenza di fosfolipasi D avente attività di transfosfatidilizzazione 2. Processo secondo la rivendicazione 1 in cui il diacilglicerolo è costituito da due acidi grassi uguali o distinti, saturi o insaturi, avente lunghezza compresa fra C12 e C24 ed il ceramide è costituito da sfingosine sature od insature avente lunghezza di catena di C18 o C20 e da un acido grasso avente lunghezza compresa fra C12 e C24. 3. Processo secondo le rivendicazioni 1 e 2 in cui il processo viene condotto in una unica fase acquosa quando R1 è un gruppo diacilglicerolico . 4. Processo secondo la rivendicazione 1 in cui il processo viene condotto in soluzione bifasica idro-organica quando R1 è un gruppo ceramidico. 5. Processo secondo le rivendicazioni da 1 a 4 in cui la temperatura di reazione è di 45°C 5°C. 6. Processo secondo la rivendicazione 1 in cui la fosfolipasi D è prodotta dal ceppo Streptoverticillium hachijoense ATCC 19769 e la stessa è purificata su resina a scambio anionico e cationico. 7. Processo secondo la rivendicazione 6 in cui la frazione di fosfolipasi D utilizzata viene eluita a pH 6.2 dalla resina a scambio cationico. 8. Processo secondo la rivendicazione 3 in cui il fosfatide ottenuto è la fosfatidil-L-serina ed il fosfatide originario è la lecitina purificata di soia. 9. Processo secondo la rivendicazione 3 in cui il fosfatide ottenuto è la fosfatidil-L-serina ed il fosfatide originario è la lecitina grezza di soia. 10. Processo secondo la rivendicazione 3 in cui il fosfatide ottenuto è la fosfatidil-L-serina ed il fosfatide originario è la lecitina di uovo. 11. Processo secondo le rivendicazioni 6 e 7 in cui la fosfatidil-L-serina ha composizione in acidi grassi identica a quella della lecitina di soia e grado di perossidazione inferiore a 5. 12. Processo secondo le rivendicazioni 6 e 7 in cui la fosfatidil-L-serina ha composizione in acidi grassi identica a quella della lecitina di uovo e grado di perossidazione inferiore a 5. 13. Processo 1econdo la rivendicazione 6 in cui il fosfatide ottenuto è costituito dalla fosfatidil-D-serina o dalla fosfatidiletanolamina o dalla fosfatidil-omoserina o dalla fosfatidilidrossiprolina o dal fosfatidilglicerolo. 14. Processo secondo la rivendicazione 4 in cui il fosfatide ottenuto è la ceramido-fosfo-L-serina ed il fosfatide originario è la sfmgomielina. 15. Composizioni farmaceutiche contenenti fosfolipidi ottenuti mediante il processo secondo le rivendicazione da 1 a 4. 16. Composizioni cosmetiche contenenti fosfolipidi ottenuti mediante il processo secondo le rivendicazione da 1 a 4. 17. Integratori alimentari e dietetici contenenti fosfolipidi ottenuti mediante il processo secondo le rivendicazione da 1 a 4. 18. Integratori alimentari e dietetici contenenti fosfatidil-L-serina ottenuta mediante il processo secondo le rivendicazione da 8 a 10. 19. Composizioni farmaceutiche contenenti fosfatidil-L-serina aventi le caratteristiche di cui alle rivendicazioni 11-12, in grado di conferire un alto grado di palatabilità in termini di odore e gusto e da somministrarsi per via orale. 20. Composizioni cosmetiche contenenti fosfatidil-L-serina aventi le caratteristiche di cui alle rivendicazioni 11-12, da somministrarsi per via topica. 2 1.Integratori alimentari e dietetici contenenti fosfatidil-L-serina aventi le caratteristiche di cui alle rivendicazioni 11-12, in grado di conferire un alto grado di palatabilità in termini di odore e gusto e da somministrarsi per via orale. 22. Uso di composizioni farmaceutiche di cui alle rivendicazioni precedenti nel trattamento delle condizioni di stress psico-fisico con difficoltà di attenzione, concentrazione e memorizzazione, spesso associate al progredire dell'età. 23. Uso di composizioni cosmetiche di cui alle rivendicazioni precedenti nel trattamento della pelle alterata nelle sue funzioni fisiologiche e come coadiuvanti nella terapia delle dermatiti di tipo eczematoso e/o infiammatorio. 24. Uso di integratori dietetici ed alimentari di cui alle rivendicazioni precedenti nel trattamento delle condizioni di stress psico-fisico con difficoltà di attenzione, concentrazione e memorizzazione, spesso associate al progredire dell'età. 25. Composizioni farmaceutiche di cui alle rivendicazioni 18 e 22 in forma di capsule, compresse e granulati. 26. Composizioni cosmetiche di cui alle rivendicazioni 20 e 23 in forma di creme e gel. 27. Integratori alimentari e dietetici di cui alle rivendicazioni 21 e 24 in forma di capsule, compresse e granula
Priority Applications (17)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| IT2001PD000031A ITPD20010031A1 (it) | 2001-02-09 | 2001-02-09 | Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. |
| JP2001279612A JP2002253288A (ja) | 2001-02-09 | 2001-09-14 | ホスファチドの製造と使用 |
| NO20020019A NO317429B1 (no) | 2001-02-09 | 2002-01-03 | Fremgangsmate til fremstilling av rene fostatider |
| AU10064/02A AU766891B2 (en) | 2001-02-09 | 2002-01-07 | Procedure for the preparation of pure phosphatides and their use in the cosmetic, pharmaceutical and alimentary fields |
| CA002366705A CA2366705C (en) | 2001-02-09 | 2002-01-08 | Procedure for the preparation of pure phosphatides and their use in the cosmetic, pharmaceutical and alimentary fields |
| DK02002360T DK1231213T3 (da) | 2001-02-09 | 2002-01-31 | Fremgangsmåde til fremstilling af rene phosphatider og anvendelse deraf i kosmetika, på det farmaceutiske område og til næringsmidler |
| ES02002360T ES2225662T3 (es) | 2001-02-09 | 2002-01-31 | Procedimiento para la preparacion de fosfatidos puros y su utilizacion en los sectores cosmetico, farmaceutico y alimenticio. |
| AT02002360T ATE273313T1 (de) | 2001-02-09 | 2002-01-31 | Verfahren zur herstellung von reinen phosphatiden und deren verwendung in der kosmetik, im pharmazeutischen gebiet und im bereich der nahrungsmittel |
| EP02002360A EP1231213B1 (en) | 2001-02-09 | 2002-01-31 | Procedure for the preparation of pure phosphatides and their use in the cosmetic, pharmaceutical and alimentary fields |
| DE60200895T DE60200895T2 (de) | 2001-02-09 | 2002-01-31 | Verfahren zur Herstellung von reinen Phosphatiden und deren Verwendung in der Kosmetik, im pharmazeutischen Gebiet und im Bereich der Nahrungsmittel |
| PCT/EP2002/001358 WO2002064603A1 (en) | 2001-02-09 | 2002-02-08 | Procedure for the preparation of pure phosphatides and their use in the cosmetic, pharmaceutical and alimentary fields |
| HU0303977A HUP0303977A3 (en) | 2001-02-09 | 2002-02-08 | Procedure for the preparation of pure phosphatides and their use in the cosmetic, pharmaceutical nad alimentary fields |
| RU2003125183/13A RU2289625C2 (ru) | 2001-02-09 | 2002-02-08 | Способ получения чистых фосфатидов и их применение в области косметики, фармацевтики и питания |
| CZ20032137A CZ20032137A3 (cs) | 2001-02-09 | 2002-02-08 | Postup přípravy čistých fosfatidů a jejich použití v kosmetických a farmaceutických prostředcích a potravinových a dietních doplňcích |
| PL02362845A PL362845A1 (en) | 2001-02-09 | 2002-02-08 | Procedure for the preparation of pure phosphatides and their use in the cosmetic, pharmaceutical and alimentary fields |
| HK03100860.4A HK1049166B (en) | 2001-02-09 | 2003-02-06 | The process of making pure phospholipids and the use of phospholipids in cosmetics, medicine and nutrition |
| JP2007176369A JP2007259866A (ja) | 2001-02-09 | 2007-07-04 | ホスファチドの製造と使用 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| IT2001PD000031A ITPD20010031A1 (it) | 2001-02-09 | 2001-02-09 | Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ITPD20010031A1 true ITPD20010031A1 (it) | 2002-08-09 |
Family
ID=11452205
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| IT2001PD000031A ITPD20010031A1 (it) | 2001-02-09 | 2001-02-09 | Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. |
Country Status (16)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP1231213B1 (it) |
| JP (2) | JP2002253288A (it) |
| AT (1) | ATE273313T1 (it) |
| AU (1) | AU766891B2 (it) |
| CA (1) | CA2366705C (it) |
| CZ (1) | CZ20032137A3 (it) |
| DE (1) | DE60200895T2 (it) |
| DK (1) | DK1231213T3 (it) |
| ES (1) | ES2225662T3 (it) |
| HK (1) | HK1049166B (it) |
| HU (1) | HUP0303977A3 (it) |
| IT (1) | ITPD20010031A1 (it) |
| NO (1) | NO317429B1 (it) |
| PL (1) | PL362845A1 (it) |
| RU (1) | RU2289625C2 (it) |
| WO (1) | WO2002064603A1 (it) |
Families Citing this family (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10142014B4 (de) * | 2001-08-28 | 2004-11-11 | Degussa Bioactives Deutschland Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin |
| IL150240A (en) * | 2002-06-16 | 2005-07-25 | Lipogen Ltd | Infant formula supplemented with phospholipids |
| DE102004002053A1 (de) * | 2004-01-15 | 2005-08-04 | Bioghurt Biogarde Gmbh & Co. Kg | Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin und dessen Reinigung durch Extraktion |
| US20050158835A1 (en) * | 2004-01-21 | 2005-07-21 | Su Chen | Preparation of highly polyunsaturated fatty acid-containing phosphatidylserine and phosphatidic acid |
| JP2005318827A (ja) * | 2004-05-07 | 2005-11-17 | Nisshin Oillio Group Ltd | セリンの回収方法 |
| WO2006043788A1 (en) * | 2004-10-20 | 2006-04-27 | Doosan Corporation | Composition for protection and improvement of skin, or reinforcing skin barrier function comprising phosphatidylserine |
| ITPD20050164A1 (it) | 2005-05-30 | 2006-11-30 | Fidia Farmaceutici | Processo per la preparazione e l'isolamento di fosfatidi |
| US20080187511A1 (en) * | 2006-10-25 | 2008-08-07 | University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth | Ointment for cancer treatment |
| RU2482186C2 (ru) * | 2008-05-15 | 2013-05-20 | Лодерс Кроклан Б.В. | Способ получения фосфатидилсерина |
| US8546104B2 (en) | 2008-08-07 | 2013-10-01 | Lipogen Ltd. | Processes for the preparation of phosphatide salts |
| JP5432563B2 (ja) * | 2009-03-31 | 2014-03-05 | 株式会社ファンケル | ホスファチジルセリン含有カプセル及びカプセル充填用ホスファチジルセリン組成物 |
| CN103074390A (zh) * | 2011-11-02 | 2013-05-01 | 江南大学 | 一种酶法制备不含溶血磷脂和磷脂酸的磷脂酰丙醇的方法 |
| ITPD20120021A1 (it) | 2012-01-26 | 2013-07-27 | Fidia Farmaceutici | "nuove composizioni farmaceutiche contenenti fosfatidilserina e curcumina". |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6098995A (ja) * | 1983-11-04 | 1985-06-01 | Microbial Chem Res Found | 光学活性3−(3,4−ジヒドロキシフエニル)セリン,およびその誘導体の製造法 |
| US5700668A (en) * | 1995-12-08 | 1997-12-23 | Italfarmaco Sud S.P.A. | Process for the industrial preparation of phosphatidylserine |
| DE19917249C2 (de) * | 1999-02-26 | 2001-09-27 | Meyer Lucas Gmbh & Co | Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin-Produkten |
| IT1311929B1 (it) * | 1999-04-28 | 2002-03-20 | Chemi Spa | Procedimento per la preparazione di fosfatidilserine. |
-
2001
- 2001-02-09 IT IT2001PD000031A patent/ITPD20010031A1/it unknown
- 2001-09-14 JP JP2001279612A patent/JP2002253288A/ja active Pending
-
2002
- 2002-01-03 NO NO20020019A patent/NO317429B1/no not_active IP Right Cessation
- 2002-01-07 AU AU10064/02A patent/AU766891B2/en not_active Ceased
- 2002-01-08 CA CA002366705A patent/CA2366705C/en not_active Expired - Fee Related
- 2002-01-31 AT AT02002360T patent/ATE273313T1/de active
- 2002-01-31 ES ES02002360T patent/ES2225662T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2002-01-31 DK DK02002360T patent/DK1231213T3/da active
- 2002-01-31 EP EP02002360A patent/EP1231213B1/en not_active Revoked
- 2002-01-31 DE DE60200895T patent/DE60200895T2/de not_active Expired - Lifetime
- 2002-02-08 RU RU2003125183/13A patent/RU2289625C2/ru not_active IP Right Cessation
- 2002-02-08 HU HU0303977A patent/HUP0303977A3/hu unknown
- 2002-02-08 WO PCT/EP2002/001358 patent/WO2002064603A1/en not_active Ceased
- 2002-02-08 PL PL02362845A patent/PL362845A1/xx not_active Application Discontinuation
- 2002-02-08 CZ CZ20032137A patent/CZ20032137A3/cs unknown
-
2003
- 2003-02-06 HK HK03100860.4A patent/HK1049166B/en unknown
-
2007
- 2007-07-04 JP JP2007176369A patent/JP2007259866A/ja active Pending
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CZ20032137A3 (cs) | 2004-02-18 |
| DE60200895D1 (de) | 2004-09-16 |
| HUP0303977A2 (hu) | 2004-03-29 |
| EP1231213B1 (en) | 2004-08-11 |
| NO20020019D0 (no) | 2002-01-03 |
| PL362845A1 (en) | 2004-11-02 |
| AU1006402A (en) | 2002-08-15 |
| ATE273313T1 (de) | 2004-08-15 |
| ES2225662T3 (es) | 2005-03-16 |
| WO2002064603A1 (en) | 2002-08-22 |
| AU766891B2 (en) | 2003-10-23 |
| CA2366705A1 (en) | 2002-08-09 |
| HK1049166B (en) | 2005-04-22 |
| DK1231213T3 (da) | 2004-12-06 |
| DE60200895T2 (de) | 2005-09-01 |
| HK1049166A1 (en) | 2003-05-02 |
| RU2289625C2 (ru) | 2006-12-20 |
| JP2007259866A (ja) | 2007-10-11 |
| NO317429B1 (no) | 2004-10-25 |
| EP1231213A1 (en) | 2002-08-14 |
| HUP0303977A3 (en) | 2011-01-28 |
| JP2002253288A (ja) | 2002-09-10 |
| NO20020019L (no) | 2002-08-12 |
| RU2003125183A (ru) | 2005-03-20 |
| CA2366705C (en) | 2006-09-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4159988A (en) | Synthetic phospholipids, a process for their manufacture and their use | |
| ITPD20010031A1 (it) | Procedimento per la preparazione di fosfatidi puri e loro impiego in campo cosmetico, farmaceutico ed alimentare. | |
| ES2165115T5 (es) | Un procedimiento para la purificacion de fosfatidinilserina. | |
| ES2206099T3 (es) | Un procedimiento para la preparacion de fosfatidilserinas. | |
| CN1097124A (zh) | 含不饱和脂肪酸的制剂 | |
| AU2012321073A1 (en) | Methods for the synthesis of plasmalogens and plasmalogen derivatives, and therapeutic uses thereof | |
| CN103435676B (zh) | 植物甾醇磷酰化氨基酸酯衍生物及其合成方法 | |
| JPH0368038B2 (it) | ||
| US6635456B2 (en) | Procedure for the preparation of pure phosphatides with phospholipase D | |
| IL187749A (en) | Process for the preparation and isolation of phosphatidylserine | |
| CN1839143A (zh) | 抗坏血酸衍生物及美白化妆材料 | |
| ITMI20002631A1 (it) | Processo di purificazione di fosfatidilserina | |
| FR2593505A1 (fr) | Ester phosphorique substitue par la serine et son procede de fabrication | |
| IE41597B1 (en) | Synthetic phospholipids a process for their manufacture and their use | |
| JP2001186898A (ja) | 多価不飽和脂肪酸残基をもつホスファチジルセリンの製造法 | |
| KR101019728B1 (ko) | 라세믹 또는 광학적으로 활성이 있는 α―포스파티딜콜린 유도체의 제조방법 | |
| CA1202586A (en) | Method for the preparation of physiological effectors | |
| JPS6188886A (ja) | 酵素法リン脂質長鎖アルコ−ル誘導体の製法 | |
| JPH04117392A (ja) | アスコルビン酸リン脂質誘導体及びその製造方法 | |
| KR101055094B1 (ko) | 양배추 포스포리파아제 d에 의한 난황 인지질로부터 포스파티딜세린의 생합성 방법 | |
| EP1562609B1 (en) | Inositolized phospholipids | |
| KR100450308B1 (ko) | 난황에서 포스파티딜콜린 결정화 방법 | |
| CN102066388A (zh) | 用于生产n-酰基-磷脂酰-乙醇胺的方法 | |
| JPWO2019189133A1 (ja) | スフィンゴミエリン誘導脂質およびその製造方法 | |
| FR3006313A1 (fr) | Composes naturels et leurs derives, leur preparation et leur utilisation dans le traitement de maladies neurodegeneratives et cardiovasculaires, du cancer, et pour des applications alimentaires ou cosmetiques. |