JP2000501746A

JP2000501746A - 神経刺激性ペプチド

Info

Publication number: JP2000501746A
Application number: JP9541206A
Authority: JP
Inventors: アール．モスカル、ジョゼフ; ヤマモト、ヒロタカ; エイ．コーリー、パトリシア
Original assignee: ニューロセラピューティクスエル．ピー．
Priority date: 1996-05-17
Filing date: 1997-05-16
Publication date: 2000-02-15
Also published as: AU3209097A; CA2255659C; DE69703449D1; WO1997043306A1; EP0914331B1; ATE197307T1; GR3035227T3; ES2153671T3; DE69703449T2; DK0914331T3; CA2255659A1; EP1077217A3; US6107271A; PT914331E; US5763393A; EP0914331A1; EP1077217A2

Abstract

(57)【要約】ＮＭＤＡレセブタの特異的同定ならびにＮＭＤＡグリシンコアゴニスト生物活性の特異的同定と操作のための組成および方法を述べる。

Description

【発明の詳細な説明】神経剌激性ペプチド関連出願本出願は、１９９６年５月１７日出願の米国特許出願連続番号第０８／６４９，２７２号に対して優先権を主張するものであり、前記特許出願の明細書は、その全体を参照としてここに引用する。発明の背景発明の分野本発明は、神経刺激性ペプチド、蛋白、あるいはアミノ酸組成物の分野に関する。従来の技術現在、哺乳類の中枢神経系（ＣＮＳ）が、脳および脊髄内で特殊なシグナル伝達を行うために多くの神経刺激性ペプチドを用いていることはよく知られている。中でも広く知られている神経剌激性ペプチドは、ソマトスタチン、コレシストキニン、ＶＩＰ、サブスタンスＰ、エンケファリン、神経ペプチドＹ（ＮＰＹ）、ニューロテンシン、ＴＲＨ、ＣＣＫ、およびダイノルフィンである（一般に、 The Biochemical Basis of Neuropharmacology,Cooper，Bloom and Roth，5th e d.，Oxford University Press,New York,1986参照）。ＣＮＳ内で働く複雑なシグナリング経路を綿密に説明するためには、特異的神経刺激性ペプチドとそれらの個々の特性の同定と特性付け、ならびに神経学的に重要な特異的レセプタの特性付けと位置確認が必要である。部分的にあるいは全面的に、共調してあるいは独立して作用するＣＮＳレセプタの作動薬（アゴニスト）と拮抗薬（アンタゴニスト）の同定は、より多くの特異的神経刺激性ペプチドの存在が知られるほど、ＣＮＳレセプタ蛋白およびＣＮＳレセプタ複合体の挙動により広い範囲の操作を施すことができるという意味で有用である。重要な点として、ユニークな作動薬あるいは拮抗薬を同定することにより、神経剌激性ペプチドレセプタのサブセットを、これらの作動薬あるいは拮抗薬との結合を通して詳細に特性付けすることや、位置決定することが可能になる。神経剌激性ペプチドを同定し、それらを用いて既知のレセプタ複合体の作用を特異的に変化させることによって、レセプタ複合体についてより詳しい理解が得られるようになる。さらに、新しい神経刺激性ペプチドは、既知のＣＮＳレセプタ複合体の作用を変化させる代替手段を提供し、またこれまで知られていないレセプタ複合体の発見あるいは既知のレセプタの未知の性質の発見を可能にする。神経変性障害、発作に関連する脳細胞死、痙攣性障害、学習および記憶に関係づけられてきたＮ - メチル - Ｄ - アスパラギン酸（N-methyl-D-aspartate、ＮＭＤＡ）レセプタが、ヒト組織からクローン化された（Hoffman,M.,1991,Science,254:801 ・2参照）。ＮＭＤＡに結合して活性化されることに加えて、ＮＭＤＡレセプタはグルタミン酸（Ｇｌｕ）およびアスパラギン酸（Ａｓｐ）によっても活性化され、同時に、Ｄ - ２ - アミノ - ５ - ホスホノバレエート（D-2-amino-5-phos phonovalerate ,．Ｄ - ＡＰ５；Ｄ - ＡＰＶ）によって競合的に拮抗され、あるいはフェニルサイクリジン（phenylcyclidine、ＰＣＰ）およびＭＫ−８０１によって非競合的に拮抗される。しかしながら、最も興味深いことは、ＮＭＤＡレセプタがグリシン（Ｇ１ｙ）により、共活性化される（Kozikowskiら、1990,J ournal of Medicinal Chemistry 33:1561 1571）ことである。ＮＭＤＡレセプタ複合体上のアロステリック調節部位にグリシンが結合すると、ＮＭＤＡレセプタチャネルの開放時間が延長し、開放頻度が劇的に上昇する。ＮＭＤＡレセプタは長期強化（long-term potentiation、ＬＴＰ）の中心をなすとみなされており、これは学習と記憶の基礎と考えられている神経の結合の持続的な強化である（総説については、Bliss and Collingridge,1993,Nature 361 :31 - 39 参照）。たとえば発作の際に起こりうるＣＮＳの損傷は、グルタミン酸あるいはアスパラギン酸を溢出させることによってＮＭＤＡレセプタを有する細胞の過度の興奮を引き起こし、そのような過度に興奮した細胞の約８０％を死に導くと思われる。ＮＭＤＡレセプタを有する細胞の大部分は脳の皮質と海馬領域に存在し、過度な興奮による細胞の死後、患者は新しい事柄を学習することができなくなるが、長期記憶にある事柄はまだ思い出すことができる。ＰＣＰ乱用に関連するヒトの記憶喪失はＰＣＰの作用と結びつけられており、ＮＭＤＡレセプタを通るカルシウム流出の阻害の予想される結果である。ＮＭＤＡレセプタを遮断するか、あるいはさもなければその作用を変化させることができる薬剤は、過度の興奮による細胞死あるいはＮＭＤＡレセプタに関連する記憶障害から細胞を保護しうると考えられる。ＮＭＤＡレセプタと相互作用する他の薬剤は、ＬＴＰを形成する細胞の能力を強化し、従って学習と記憶を高めると考えられる。ＮＭＤＡレセプタの重要性のゆえに、ＮＭＤＡレセプタの、組織分布の微細なマッピングやサブセットの特性付け、微妙な操作を可能にし、また、ＮＭＤＡレセプタの他の作動薬あるいは拮抗薬の作用を特性付けることができる特異的なペプチド性作動薬あるいは拮抗薬を得ることは極めて有用であろう。発明の要約本発明は、ＮＭＤＡレセプタと結合する能力を特徴付けられるいくつかの特異的な神経剌激性ペプチドを提供する。本発明は、グリシンコアゴニスト（co-ago nist）部位でＮＭＤＡレセプタに結合し、少なくともグリシンの結合と同じ程度の生物活性をＮＭＤＡレセプタが生じるような特異的なポリペプチドあるいはアミノ酸組成物を提供する。本発明は、天然の組織、体液あるいは細胞から精製されるポリペプチドあるいはアミノ酸組成物を提供する。本発明は、従来の生化学的方法あるいは分子生物学的手法を用いた、本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物の化学的合成を提供する。本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物は、ＮＭＤＡレセプタ活性の分離と特性付けおよび組織での局在化を調べるのに有用であるので、安定性が高められるように基本骨格には修飾したペプチドが組み込まれているか、あるいはペプチドフラグメントの三次元コンフォメーションを安定化するか、あるいは強化することができるように基本骨格に修飾を付け加えることにより得られる、安定なポリペプチドあるいはアミノ酸組成物が提供される。本発明はまた、環化したポリペプチドあるいはアミノ酸組成物も提供する。本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物の他の利益は、サイズが小さいため血液脳関門を超える能力が高く、そのためインビボでの投与と検出に適していることである。たとえば本発明は、放射性マーカ、ＭＲＩマーカ、金属イオンマーカ、酵素マーカ、化学発光性マーカ、あるいは該ポリペプチドあるいはアミノ酸組成物の検出を可能にするそのような何らかのマーカと結合した本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物を含む。本発明はまた、生体被験者に投与することができるように適切な製薬上のキャリヤ中の、本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物の製薬製剤も含む。そのような投与は、ｉ．ｐ．、ｉ．ｖ．、ｉ．ｍ．、あるいは他の何らかの適当な手段によって行いうる。本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物を、インビトロで組織切片や染色のようなスクリーニングを用いてＮＭＤＡレセプタの検出に使用する場合には、結合させるマーカは、上記の適当なマーカに加えて、蛋白、抗体、アビジン、ビオチン、ならびにスクリーニングアッセイあるいは染色工程においてポリペプチドあるいはアミノ酸組成物の存在を検出することができる他の何らかのそのようなマーカも含みうる。本発明はまた、本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物と、結合したレセプタとポリペプチドあるいはアミノ酸組成物を検出のための適切なマーカとを用いて、ＮＭＤＡレセプタを検出する方法も提供する。そのような方法は、使用する検出条件に従ってインビトロでもインビボでも実施することができる。そのような方法を用いて実施することができる特定手法としては、ＭＲＩ、ＣＡＴスキャン、Ｘ線、ソノグラム、および他の非侵襲的検出法を含むが、これらには限定されない。侵襲的手法、すなわち生検あるいは組織切片を考慮する場合には、標準的な免疫学的スクリーニング法を使用して、結合したレセプタ／ポリペプチドの存在を検出することができ、また、免疫学的染色を通して、もしくは広い範囲の利用できるマーカ／検出系を用いる他の検出手段を通してそのような結合を特異的に視覚化することができる。それ故、本発明はまた、本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物と接触するＮＭＤＡレセプタである、ＮＭＤＡレセプタの生物学的活性を調整する方法も提供する。以下の実施例におけるアッセイデータにより有効と予測されるものとして、特に下記の表１にリストされたアミノ酸配列を持つペプチドが含まれる。図面の簡単な説明図１は、 [ ³Ｈ］ＭＫ８０１アッセイを用いたＮＭＤＡ結合に関する試験の結果を比較した３つのグラフを示す。図１ＡはＤ - シクロセリンの活性を示し、図１Ｂはモノクローナル抗体Ｂ６Ｂ２１の活性を示し、図１ＣはペプチドＮＴ - ３の活性を示している。結果は、選択的グリシン部位作動薬である７ - クロロキヌレン酸の存在下での、試験成分の濃度対［ ³Ｈ］ＭＫ８０１の抑制の結合のパーセンテージとして表わされている。図２は、［ ³Ｈ］ＭＫ８０１結合アッセイで測定したように、ペプチドＮＴ - １３を薬理学的なＮＭＤＡ特異的機能アッセイにおいて部分的作動薬として試験した結果を示す。図３は、電気生理学的なＮＭＤＡ特異的機能アッセイにおいてペプチドＮＴ - １３を部分的作動薬として試験した結果を示す。図３Ａはパッチクランプ測定の結果を示す。図３Ｂ - Ｄは、ペプチドＮＴ - １３が部分的なグリシン作動薬の特性を持つことを示している。図３Ｂは、ＮＴ - １３はグリシンを擬態するが、あまり有効ではないことを示す。図３Ｃは、ＮＴ - １３が標準的なＮＭＤＡ＋グリシンの電流を阻害することを示している。図３Ｄは、ＮＴ - １３が誘発するＮＭＤＡ電流が、選択的グリシン部位拮抗薬である７ - クロロキヌレン酸によって遮断されることを示している。図４は、脳脊髄液（ＣＳＦ）の対照とｍＡｂＢ６Ｂ２１とを比較した、挙動的ＮＭＤＡ特異的機能アッセイにおいて部分的作動薬としてＮＴ - １３を試験した結果を示す。図４は、水没した台に泳ぎつくまでの短い潜伏時間（図４Ａ）、台までの経路の長さ（図４Ｂ）、ならびにトレーニング８日目のプローブトライアルの際の標的までの減少した平均距離（図４Ｃ）によって測定されたように、ペプチドＮＴ - １３がモリスの水中迷路課題において何らかの認知強化を生じさせることを示している。図５は、Ｂ６Ｂ２１モノクローナル抗体（ｍＡｂ）で処置した後の高齢ウサギにおける眼のまばたき反応の結果を示す。挿入図は、最大条件反応（ＣＲ）が達成された時の習得に関するデータを示す。図６Ａは、放射標識アンチピリン、スクロースおよび水と比較した、放射標識ペプチドＮＴ - １３の相対的血液脳関門透過性を示すグラフである。図６Ｂは、水（１００％値）と比較した脳内での％数をグラフで示したものである。図７は、経鼻投与の５分後に脳内で測定された放射標識ＮＴ - １３の量をグラフで示している。データは、経鼻的にデリバリーされた放射標識ＮＴ - １３のｍｇに対する脳内の放射標識ＮＴ - １３のμｇとして表わされている。図８は、ｉ．ｐ．注射の２０分後に脳内で測定された放射標識ＮＴ - １３の量をグラフで示したものである。データは、ｉ．ｐ．注射を通してデリバリーされた放射標識ＮＴ - １３のｍｇに対する脳内の放射標識ＮＴ - １３のμｇで表わされている。発明の詳細な説明実施例１ＮＭＤＡレセプタに特異的なモノクローナル抗体モノクローナル抗体は、標準的なブロトコールに従って（MoskalとSchaffner, 1986,The Journal of Neuroscience,6(7):2045 - 2053 参照）、５日齢の新生児ラットから分離した歯状回組織でマウスを免疫化することによって得た。組織化学的方法により歯状回組織（dentate gyrus tissue）への結合に関してハイブリドーマをスクリーニングした後、有望な候補クローンを分離した。分離したクローンの中で、ラット海馬切片においてＬＴＰの産生を遮断し、海馬と歯状回の両方のＣＡ１領域で確立されたＬＴＰを抑制することが認められたのは、モノクローナル抗体Ｂ６Ｅ１１であった（Stanton,SarveyおよびMoskal,1987,Proceedings of the Natio nal Academyof Science,U.S.A.,84:1684 - 1688参照）。モノクローナル抗体Ｂ６Ｅ１１は、増強する入力により接合する先端突起に適用した時にはＬＴＰを遮断する上で有効であるが、細胞体あるいはＣＡ１の基底突起に適用した時には有効でないことが認められた。これに対し、同じ免疫グロブリンクラスの同じパネルからのものであり、同じように標的組織に結合する第二のモノクローナル抗体、Ｇ６Ｅ３は、ＬＴＰに全く影響を及ぼさなかった。もうひとつのモノクローナル抗体、Ｂ６Ｂ２１は、ＮＭＤＡレセプタのグリシン様モジュレーションによってＬＴＰを強化することが認められた（Haring,Sta nton,Scheideler,およびMoskal,1991,Journal of Neurochemistry,57(1):323 - 332参照）。このユニークなモノクローナル抗体は、ラットの海馬切片においてＣＡ１錐体細胞の先端突起に適用した時、Ｎ - （ -１-（２ - チエニル）シクロヘキシル） - ３，４ - ［ ³Ｈ］ピペリジン（［ ³Ｈ］ - ＴＣＰ）の結合増加によって検出されるように、ＬＴＰを有意に上昇させることができた。最大濃度のグルタミン酸、グリシンおよびマグネシウムを混合して添加してＮＭＤＡレセプタを最大飽和させることにより、この作用は排除された。最も重要な点として、モノクローナル抗体Ｂ６Ｂ２１は［ ³Ｈ］ - ＴＣＰ結合の７ - クロロキヌレン酸による阻害を排除したが、ＡＰＶによる［ ³Ｈ］ - ＴＣＰ結合の阻害には影響を及ぼさなかった。モノクローナル抗体Ｂ６Ｂ２１による［ ³Ｈ］ - ＴＣＰの結合強化は、グルタミン酸によって増大したが、グリシンによっては増大しなかった。海馬依存性の学習は、ウサギの眼まばたき条件付け試験を用いたインビボ実験において、ＮＭＤＡレセプタに特異的に結合する、Ｂ６Ｂ２１の結合あるいはＤ - シクロセリンの両者の添加によって促進されることが認められた（Thompson, MoskalおよびDisterhoft,1992,Nature,359:638 - 641参照）。Ｂ６Ｂ２１の脳室内（脳室の内部への）注入は、ウサギでの海馬依存性の痕跡眼まばたき（trace eye-blink）条件付けにおける習得率を有意に上昇させ、８０％条件反応の判定基準に達するのに要するトライアルの数を半減させた。血液脳関門を越える、ＮＭＤＡレセプタ上のグリシン部位の部分的作動薬であるＤ - シクロセリンの末梢注射も、ウサギの学習率を二倍にした。モノクローナル抗体Ｂ６Ｂ２１の試験から、我々はｍＡｂＢ６Ｂ２１の作用、従ってグリシンコアゴニスト作用を擬態することができるポリペプチドあるいはアミノ酸組成物のパネル（表１）を作製することができた。実施例２薬理学的なＮＭＤＡ特異的活性 - ［ ³Ｈ］ＭＫ８０１アッセイ本発明のペプチドは、グリシンコアゴニスト部位で哺乳類のＮＭＤＡレセプタに特異的に結合することができる。驚くべきことに、本発明のペプチドはグリシン（Ｇｌｙ、Ｇ）アミノ酸の存在を必要としない。ＮＭＤＡレセプタが哺乳類の脳において果たす重要な役割のゆえに、特異的作動薬は、ＮＭＤＡレセプタの組織分布、ならびに疾患、損傷あるいは他の薬理学的作用との相関の詳細なマッピングのために非常に有用である。特異的で小さなペプチド作動薬は、バイオアベイラビリティーを高め、血液脳関門を越えて運搬されるようにさらに修正することができるという点で特に有用である。本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物を、これまでに有効性が確認されている［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１結合アッセイを用いて、ＮＭＤＡレセプタへのグリシンコアゴニスト作用を擬態する能力に関して試験した。この機能検定は、ＮＭＤＡレセプタによる［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１結合の増加はレセプタ結合チャネルが開いている時にだけ起こりうるという事実を利用している。これは、ＭＫ - ８０１結合部位がＮＭＤＡレセプタ複合体のイオノフォアの内側に位置しており、そのためレセプタ複合体チャネルの開放時にしかアクセスできないからである。従って［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１の結合増加は、このアッセイでは、本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物のグリシンコアゴニスト結合部位への結合が引き金となるチャネル開放の増加と直接相関している。アッセイをさらに改善するために、ＮＭＤＡレセプタチャネル複合体のグリシン結合部位の選択的拮抗薬をアッセイに加える。７ - クロロキヌレン酸の通常の作用は、グリシン部位に選択的に結合して、ＮＭＤＡレセプタチャネルの開放を阻害し、従って［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１がＮＭＤＡレセプタ複合体に結合するのを阻害することである。ペプチドＮＴ - １３の付加は［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１の結合阻害を排除し、従って本発明のポリペプチドあるいはアミノ酸組成物がグリシン結合部位に結合するという事実と相関する。膜の調製アッセイで使用する粗シナプス膜を、ラットの海馬組織（雄性のスブラーグーダウリー（ Sprague-Dawly）ラットを用いて調製し、以前に述べられている方法を用いて十分に洗浄した（Haringら、1991,Ｊ.Neurochem.57:323 - 331）。簡単に述べると、−８０℃で保存しておいた組織をＢｒｉｎｋｍａｎＰｏｌｙｔｒｏｎを用いて氷冷５ｍＭトリス（Tris）（ｐＨ７.４）中でホモジナイズし、次に４８，０００ｇで２０分間遠心分離にかけてぺレット化する。生じた上清を廃棄し、膜を低温緩衝液で３回洗浄する。次にペレットを５ｍＭＥＤＴＡ、１５ｍＭＴｒｉｓ（ｐＨ７．４）に再懸濁し、３７℃で１時間インキュベートする。膜懸濁液を４８，０００ｇで２０分間遠心分離にかけてペレット化し、アッセイで使用するまで−８０℃で保存する。レセプタ結合アッセイ凍結ペレットを室温で解凍し、５ｍＭＴｒｉｓ（ｐＨ７．４）に懸濁して遠心分離にかけることにより３回洗浄する。最終的なペレットを２〜３ｍｇ／ｍｌの濃度で５ｍＭＴｒｉｓ緩衝液（ｐＨ７．４）に懸濁する。新たに調製した膜２００μｇを、一連のぺプチド濃度と６０μＭ７−クロロキヌレン酸の存在下に２５℃で、１ｎＭ［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１を含む反応混合物（最終容量約１ｍｌ）に加えて、結合反応を開始させる。１０μＭの標識していないＭＫ - ８０１を用いて非特異的結合を測定する。Ｂｒａｎｄｅｌ２４ウエル細胞ハーベスターを通して、あらかじめ０．２５％ポリエチレンイミンに３０分間液浸しておいたＷｈａｔｍａｎＧＦ／Ｂガラスフィルターで濾過して結合反応を終了させる。データの解析／解釈Ｄ - シクロセリンの有効用量に等しいかまたはそれ以下の濃度（１０^-5）で［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１結合を刺激するペプチドは、ＮＭＤＡレセプタ複合体のグリシン部位に結合する能力に関して陽性とみなされる。図１は、Ｄ - シクロセリン（図１Ａ）、ｍＡｂＢ６Ｂ２１（図１Ｂ）、およびペプチドＮＴ - ３（図１Ｃ）を用いた結合データを比較したデータを示す。図１Ｃは、ペブチドＮＴ - ３が明らかにｍＡｂＢ６Ｂ２１およびＤ - シクロセリンと同じようにＮＭＤＡレセプタのグリシン部位に結合することを明確に示している。データは、被検物質の濃度に対する７ - クロロキヌレン酸存在下での結合抑制の％として報告されている。図２は、上記と同じくペプチドＮＴ - １３の結合活性を示す。データは、被検物質の濃度に対する７ - クロロキヌレン酸存在下での結合抑制の％として報告されている。以下の表２は、本発明のペプチドを用いたアッセイからの結果をリストしたものである。 ^* １０μＭＬ - グルタミン酸の存在下表２は、ラット海馬アッセイにおいて［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１結合によって測定したペプチドＮＴ - １からＮＴ- １８のＮＭＤＡレセプタ活性化への影響を示しており、ペプチドの様々な濃度での結合抑制のパーセンテージ（±Ｓ．Ｅ．Ｍ．）として報告されている。ペプチドＮＴ - １５からＮＴ - １８に関して報告されたデータおよび各点についての実験誤差から、これらのペプチドのうちのいずれもが意味のある生物活性を持つ可能性は低い。有効濃度に関して、ミリモル範囲に近い（１００ｍＭ）１０^-5Ｍのペプチド濃度は、ペプチドが生物学的に活性であることの信頼しうるインジケータとみなすには高すぎることを強調しておかねばならない。そのような高濃度では、特異結合に比べて非特異的結合作用が拡大され、レセプタ／リガンドの結合平衡がゆがめられる可能性が高い。従って、１０^-5Ｍの濃度範囲で至適結合活性を示すペプチドは有望な候補物質とはみなされない。たとえば、ＮＴ - １４とＮＴ - １５は試験したいずれの濃度でも作用を示さず、またＮＴ - １６、ＮＴ - １７およびＮＴ - １８は１０^-5Ｍで最も有効である。濃度と実験誤差を考慮に入れると、これらのペプチドは生物学的に活性ではないものとして除外することが妥当である。しかし、Ｄ - シクロセリンはＮＭＤＡレセプタのグリシン部位における部分的作動薬であり、認知エンハンサーとして働きうることが認められている（Thom pson,Moskal,およびDisterhoft,1992,Nature,359:638 - 641）。セリンとトレオニンは多くの構造的特徴を共有しており、トレオニンがセリンと同様の強化特性を持つことは可能であると考えられる。それゆえ、ＮＴ - ３とＮＴ - １３のトレオニン部分をセリンで置き換えると活性なペプチドを生じると予測することは可能である。実施例３電気生理学的なＮＭＤＡ特異的活性アッセイ本発明のペプチドのＮＭＤＡレセプタ機能に対する影響の直接電気生理学的測定は、強力で明白であり、且つコストおよび時間的に効果的なスクリーニング法である。最初に［ ³Ｈ］ＭＫ - ８０１結合アッセイを通して好ましいと選択された本発明のペプチドを電気生理学的スクリーニングに供する。方法二電極電位固定法と標準卵母細胞発現系標品を用いて電気生理学的記録を行う（LeonardとKelso,1990,Neruon 4:53・60;Kelsoら,1992,J.Physiology 4 49:705 - 718 参照）。卵母細胞を分離し、マウスＮＭＤＡレセプタサブユニットについてのｍＲＮＡを注入する：ｚ１（ξ１）ＲＮＡ７０ｎ１を等しい量のｅ１（ε１）ＲＮＡと同時注入する。２日間インキュベートした後、膜電位を− ８０ｍＶに固定して記録を行う。基準記録溶液は、９５ｍＭＮａＣｌ、２ｍＭＫＣ１、３．８ｍＭＢａＣｌ₂、および５ｍＭＨＥＰＥＳを含む。Ｍｇ²⁺ は一部の電位でＮＭＤＡ電流を遮断するので除外する；Ｃａ²⁺は卵母細胞の内因性Ｃａ²⁺依存性塩化物電流を生じさせるので除外する。ＮＭＤＡ含有溶液３〜５ｍｌを持続注入することによって応答を惹起する。記録室は約４００ｍｌの容量を持つ。一部の実験では、７ - クロロキヌレン酸を潅流液に加えて、被検ペプチドあるいはアミノ酸組成物がグリシン結合部位で競合し、作用することができることを明らかにする。データの解析／解釈図３Ａは、ペプチドＮＴ - １３がＮＭＤＡ電流に用量依存性作用を及ぼすことを示す。高い濃度は高い電流を生じさせる。図３Ｂは、ペプチドＮＴ - １３がグリシンの不在下でＮＭＤＡ電流を増強することを示す。ここでは、１０μＭグリシンと１００μＭＮＭＤＡは大きな電流を誘発した（約２８４ｎＡ、線の下向き偏向）。次の相では、１００μＭのペプチドＮＴ - １３と１００μＭＮＭＤＡは、飽和グリシン＋ＮＭＤＡ応答の約４０％の有意の電流を誘発した。この同じ細胞において、ＮＭＤＡ単独ではごくわずかな応答しか示さなかった（約７ｎＡ）。図３Ｃは、高いグリシン濃度でペプチドＮＴ - １３を加えるとＮＭＤＡ電流を低下させることを示しており、ここではＮＭＤＡと飽和グリシンに対する対照応答の約９１％の低下を示している。このデータは、該ペプチドがグリシン結合部位で競合するという結論をさらに裏付けている。図３Ｄは、グリシン不在下で、ペプチドＮＴ - １３の作用が拮抗薬７ - クロロキヌレン酸の選択的付加によって遮断されたことを示している。実施例４挙動的なＮＭＤＡ特異的活性アッセイ - モリスの水中迷路モリス（Morris）水中迷路２種類の海馬（ＨＰＣ）依存性連合学習がある；時間依存性および空間依存性。モリスの水中迷路（Morris,1984,J.Neurosci.Met h.11:47・60;Brandeisら,1989,Int.J.Neurosci.48:29 - 69）は空間依存性学習を測定するための広く確立されたパラダイムであり、そのため時間的学習を測定する眼まばたき試験のような他の挙動アッセイを補足する。両方のタイプの学習が加齢によって影響され、ＮＭＤＡレセプタの活性化に依存する（Morris,1989,J. Neurosci.9:3040 - 3057）。アプローチの方法すべての実験で成熟雄性スプラーグ−ダウレイ（Sprague- Dawley）ラットを使用する。１群当り合計８〜１０匹の動物を使用する。１群当りの動物数は、同様の研究で得られたこれまでのデータのべき関数分析に基づいて選択した。これら過去の試験の結果に基づき、生化学的および挙動的エンドポイントに関する誤差分散の現実的見積もりを得た。この情報を使用し、数値をｐ＜０．０５と設定して、許容しうるレベルの統計力を与えるサンプルサイズを選択した。見積もりは、Keppel（Design and Analysis,Prentice Hall,NY,1973 ）の中で示された提案に基づいた。すべての場合に、最小数の動物から引き出される情報の量を最大にするように試験をデザインした。ラットの左右の側脳室内にステンレススチールのガイドカニューレを移植する。ラットを２週間休息させた後、挙動試験を開始する。以下に述べる水中迷路課題における各日のトレーニングセッションの１５分前に、ラットに適当な濃度のペプチドあるいは人工脳脊髄液対照賦形剤（ａＣＳＦ）を注入する。ＰＥ - １０チューブでＣＭＡＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓの精密注入ポンプにすえつけた１０ｍｌハミルトン注射器に接続した３０ゲージの注射用カニューレを用いて、溶液を約１．０ｍｌ／分の速度で脳室に注入する（ｉ．ｃ．ｖ．）。合計約３．０ｍｌを各々の脳室に注入する。拡散を促進するために、注射用カニューレを注入後２分間そのままの位置に残す。個々の処置 - 試験間隔を維持するように急性注射処置を使用する。注射処置自体の成績への影響を評価するため、注射していない対照群を含める。水中迷路課題ｉ．ｃ．ｖ．注射の１５分後に、モリスの水中迷路課題（ＭＷＭ）でラットを試験する。この課題は、ラットにおける空間記憶の挙動特性と神経生物学的基質を評価するために広く使用される。速やかに習得される行動であり、食物遮断によって動機づけされないことから一般的になった。数多くの試験が、この課題の成績は無傷の海馬および海馬中隔のコリン作動性回路に依存することを明らかにしている。課題の成績は、ＨＰＣあるいはそのコリン作動性神経支配の（ｉ）外科的あるいは（ｉｉ）薬理的分断によって、あるいは（ｉｉｉ）老化によって損なわれる。この課題が海馬中隔経路とＨＰＣの機能的完全性について感受性のある有用な挙動アッセイを提供することが認められている（Opelloら、1993、Physiol. Behav.54(6):1227 - 1233）。標準的なＭＷＭ課題は、ラットに、不透明な水の入った円形プールの中の水没した台まで泳ぐことを学習することを求めるものである。プールの縁に沿った４つの等間隔の点をスタート地点として定め、プールを４つの等しい四分円に分ける。水没した避難台は、トレーニング期間を通して四分円のうちのひとつに位置する。各々のトレーニングトライアルは、４つのスタート地点のひとつでラットを水に入れることからなる。ラットは６０秒間まで水没した台を捜すことが許され、また３０秒間台上にとどまることが認められる。連続１５日間、１日２回のトライアルでラットを試験する。プールの周囲の異なるスタート地点を無作為の順序で指定する。水没した台に泳ぎつくまでの潜伏時間が習得の測定となる。これらの試験パラメータは、処置が誘発する空間記憶の改善と損傷の両方に感受性のある課題を提供する。試験の第二の構成要素は、２、１４、２６および３８回のトライアル後のプローブトライアルの導入を含む。プローブトライアルの間は、避難台を取り除き、ラットの挙動を３０秒間ビデオテープに録画する。自動ビデオトラッキングシステムによって次の測定を導く：（ｉ）正しい四分円内に泳ぎつくのに要した時間のパーセント、（ｉｉ）プローブトライアル中の標的からの平均距離、および（ｉｉｉ）泳ぐ速さ。この連続的なプローブトライアル法の使用は、空間学習の異なる構成要素の評価を可能にする；海馬機能に関連しない記憶形態である手続的記憶、およびＨＰＣ依存性過程である宣言的記憶。老化、アルツハイマー病およびＡＦ６４Ａモデルでは宣言的記憶だけが損なわれるので、これら２つの認知形態を評価することは重要である（Opelloら、 199 3,Physiol.Behav.54(6)：1227 - 1233）。組織学的分析挙動試験の終了後、ラットを犠牲剖検し、組織学的検査用に調製する。ペプチドの反復注入がＨＰＣにおいて興奮毒性損傷の徴候を生じさせるかどうかを調べるための分析を行う。ＨＰＣの塊を、１０％ホルマリンと３０％スクロースを含む０．１Ｍリン酸緩衝液中に垂下固定する。冠状切断して、クレシルバイオレットで染色し、ＣＡ３およびＣＡ１の錐体細胞層の染色を画像分析システムで測定する。データの解析／解釈混合型分散分析（ＡＮＯＶＡ）に従い、複数因子あるいは反復測定の発生率によって、一方向あるいは二方向分散分析（ＡＮＯＶＡ）のいずれかを用いて全体的な処置の影響を評価する。フィッシャーの最小有意差（ＬＳＤ）検定を用いて適当な対応比較を実施する。許容される統計的有意性はｐ＜０．０５であり、ポスト - ホック検定はすべて両側検定である。結果図４は、脳脊髄液対照（ＣＳＦ）およびｍＡｂＢ６Ｂ２１と比較して、挙動的ＮＭＤＡ特異的機能アッセイにおいてＮＴ - １３を部分的作動薬として試験した結果を示す。結果は、ペプチドＮＴ - １３が、水没した台に泳ぎつくまでの短い潜伏時間（図４Ａ）、台までの経路の短さ（図４Ｂ）、ならびにトレーニング８日目のプローブトライアルの際の標的までの減少した平均距離（図４Ｃ）によって測定されるように、ぺプチドＮＴ- １３がモリスの水中迷路課題において何らかの認知強化を生じさせたことを示している。図４Ａのデータは、各々の被検処置について秒で表わした避難潜伏時間として示されている。ここではペプチドＮＴ - １３で処置したラットは、ＣＳＦ対照（約１９秒）およびｍＡｂＢ６Ｂ２１処置動物（約１６．２５秒）と比較して著明に改善された避難潜伏時間（約１０．７５秒）を示した。図４Ｂのデータは、各々の被検処置についてセンチメートルで表わした経路の長さとして提示されており、ペプチドＮＴ - １３で処置したラットは、対照ＣＳＦ処置動物（約４２０ｃｍ）およびｍＡｂＢ６Ｂ２１処置動物（約３３０ｃｍ）の比較して、標的までの経路の長さの短縮（約３００ｃｍ）を示した。図４Ｃのデータは、各々の被検処置についてセンチメートルで表わした標的までの距離として示されており、プローブトライアルの間取り除かれた標的からの平均距離を記銘についての測定として用いる。ここでは、ペプチドＮＴ - １３で処置したラットは取り除かれた標的の位置の非常に近く、約３１ｃｍの平均距離にとどまったのに対し、対照ＣＳＦおよびｍＡＢＢ６Ｂ２１処置動物は各々３６．２５ｃｍ、３５ｃｍそれた。これらのデータは、本発明のペプチドによる処置が哺乳類において体内での挙動効果、特にモリスの水中迷路課題での成績改善によって明らかにされたような認知強化を誘発しうることを示している。実施例５挙動的ＮＭＤＡ特異的活性アッセイ - 痕跡眼まばたき痕跡眼まばたき条件付け眼まばたきあるいは瞬膜（nictitating membrane）条件付けは、いくつかの検査施設により、学習の神経基質の分析において使用される「モデル挙動システム」として適合されてきた（Disterhoftら、 1977,Brai n Res.137:127 - 143;Thompson,1976,American Psychologist 31(3):209 - 227 ）。中でもこのシステムの利点は、挙動パラダイムの相対的単純さ、使用しうる卓越した管理方法、連合学習が分析されるという事実、条件刺激と無条件刺激の適用と管理の容易さ、厳密な挙動的および神経生理学的測定の容易さ、ならびにこの準備のために使用できる挙動的データの豊富さである（Gormezano,1966,in Classical Conditioning,J.B.Sidowdki編集、McGraw Hi ll,New York,385 - 420;Goremzanoら、1987,Clasｓical Conditioning,Hillsdal e,New Jersey ）。このシステムは、加齢に関連する記憶障害（Solomonら、1988 ,Neurobiol.Aging 9:535 - 546）、カルシウム欠損と老化（Disterhoftら、1994 ,Annals NY Acad.Sci.747:382 - 406）、健忘症（Gabrieliら、1995,Behav.Neur osci.109:819 - 827）、およびコルサコフ健忘症患者と回復したアルコール依存者（McGlinchey - Berrothら、1995,Alcoholism:Clin.and Exp.Resch.19:1127 - 1132 ）を含めて、いくつかの疾病と相関していた。アプローチの方法雌性成熟白子ウサギ、Ｏｒｙｃｔｏｌａｇｕｓｃｕｎｉｃｕｌｕｓ側脳室ガイドカニューレを左右両側に外科的に移植し、拘束へッドボルトを取り付けた。手術は少なくとも到着から１週間後に実施し、体重に従って麻酔のための用量を計算した（塩酸ケタミン６０ｍｇ／ｋｇ、キシラジン１０ｍｇ／ｋｇ）。手術から約１０日後、被検動物にトレーニング環境への馴化の１時間のセッションを１回実施した。２日間の休息後にトレーニングを開始した。前後に牽引ひもの付いたスナッグバッグを用いてウサギを拘束し、個別の防音室でトレーニングした。頭部拘束のためのバーの付いた、Gormezanoら（1996,in Classical Con ditioning,J.B.Sidowdiki編集、McGraw Hill,New York,385 - 420頁）が述べたのと同様のパッドを敷いたブレキシガラスストックにウサギを入れた。眼瞼はドレスホックで開いたままに保持し、瞬膜の伸展を赤外線ｒｅｌｅｃｔｉｖｅセンサーで測定した（Thompsonら、1994,J.Neurosci.Meth．54:109 - 117）。各トレーニングセッションの前に、対のウサギに、人工脳脊髄液（ａＣＳＦ；１２４ｍＭＮａＣｌ、２６ｍＭＮａＨＣＯ₃、３ｍＭＫＣｌ、２．４ｍＭＣａＣｌ₂、１，３ｍＭＭｇＳＯ₄、１．２４ｍＭＮａＨ₂Ｏ₄、１０ｍＭＤ - グルコース；ｐＨ７．４）に懸濁したＢ６Ｂ２１あるいはａＣＳＦ単独のいずれか５μｌを１μｌ／分／脳室の速度で左右両側に注入した。３つの濃度のＢ６Ｂ２１を使用した；０．３μｇ／μｌ、１．０μｇ／μｌあるいは３．０μ ｇ／μｌ。実験の実施者は投与された溶液の内容物を知らされなかった。カニューレを挿入したウサギを、４つの処置群間で釣り合いをとり、各群最大６匹の動物として対でトレーニングした。注入後直ちに痕跡瞬膜条件付けを開始した。トレーニングは８０トライアル／日で１５日間実施した（ＣＳ：６ｋＨｚ、９０ｄＢ、１００ｍｓｅｃ、５ｍｓｅｃ上昇／下降時間；ＵＣＳ：３．５ｐｓｉトーン、１５０ｍｓｅｃ）。痕跡間隔は、課題を海馬依存性にするため５００ミリセカンドとした（Moyerら、1990,Be hav.Neurosci.104(2):243 - 252）。トライアルは、３０ - ６０秒の変動するトライアル間隔を置いて、ＩＢＭＰＣ - コンパチブルコンピュータシステムによって制御した（Akaseら、1994;J.Neurosci.Method.54:119 - 130;Thomp sonら、 1994,J.Neurosci．Meth．，54:109 - 117）。データの解析／解釈混合型ＡＮＯＶＡに従い、複数因子あるいは反復測定の発生率によって、一方向あるいは二方向分散分析（ＡＮＯＶＡ）のいずれかを用いて全体的な処置の影響を評価する。フィッシャーの最小有意差（ＬＳＤ）検定を用いて適当な対応比較を実施する。許容される統計的有意性はｐ＜０．０５あり、ポスト- ホック検定はすべて両側検定である。結果投与された抗体Ｂ６Ｂ２１の用量に基づいて挙動測定を比較するため、各日に投与されたＢ６Ｂ２１の総量に従ってウサギを群に分けた；ａＣＳＦ対照、１．５μg、3．０ - ５．０μｇ、および１０．０ -１５．０μｇ。１．５μ ｇＢ６Ｂ２１投与群は被検動物を１匹しか含まなかったので、統計分析には含めなかった。最終的な結果は、Ｂ６Ｂ２１の投与が高齢のウサギにおいて用量依存的に痕跡眼まばたき条件反応の習得を強化させたことを示した（図５）。同じ痕跡条件付けプロトコールを用いて、Thompsonら（1995,Neurobiol.Aging747:382 - 406）は、３６ヵ月齢以上のウサギの４０％（ｎ＝５０）がトレーニング２５日以内に８０％ＣＲの判定基準に達したことを報告した。残りの６０％のウサギは＞３０％のレベルに達することができず、「重度損傷」とされた。本試験におけるａＣＳＦ対照（ｎ＝２）はThompsonの「重度損傷」動物と同様の成績であり、１．５μｇのＢ６Ｂ２１（低用量；ｎ＝１、データは示していない）を摂取した１匹の動物も同様であった。本試験において１０．０ - １５．０μｇＢ６Ｂ２１（高用量；ｎ＝３）を摂取したウサギのいずれも、１５日以内に８０％ＣＲには達しなかった。しかし、３．０−５．０μｇＢ６Ｂ２１（中間用量；ｎ＝４）を摂取したウサギは、他のすべての群と比較して５日目により高い習得を示し始め、達成された最大ＣＲによって測定すると、対照よりも高い習得を示した（スチューデントｔ検定：ｔ（４）＝３．３４、ｐ＜０．０５、図５の挿入部分参照）。学習を測定するため、トレーニングの最後の週のＣＲの平均パーセンテージを各群について計算した。対照と実験群との間の一方向ＡＮＯＶＡは、群平均の間で有意差を示した（Ｆ（３，１２）＝３．９、ｐ＜０．０５ｐ＝０．０３７）。対照と３．０ - ５．０μｇ群の間でのフィッシャーのＰＬＳＴポスト - ホックＴ検定の比較は学習の強化を示したが（Ｐ（Ｔ≦ｔ）片側＝０．０３、ｐ＜０．０５）、より高用量の群は同じポスト - ホックｔ検定において習得に有意差を示さなかった（Ｐ（Ｔ≦ｔ）片側＝０．０９）。統計分析に使用した全体的な動物数は少なかったが、これらの結果は、ｍＡｂＢ６Ｂ２１が高齢ウサギにおいて用量依存的に、痕跡眼まばたき条件付けの習得を有意に強化させることを明らかに示している。これらの結果は、生物学的に活性なＢ６Ｂ２１ペプチドミメティック（擬態物質）を開発する上での成功が妥当に予想されることを示している。モノクローナル抗体Ｂ６Ｂ２１を産生するハイブリドーマ細胞系は、ブタペスト条約の下にAmerican Type Culture Collecti on(ATCC,Bethesda,MD,USA）に…年…月…日にアクセス番号……として寄託されている。実施例６体内投与血液脳関門の透過性本発明のペプチドの血液脳関門透過性を調べるための実験を行った。アッセイは、本発明のペプチドを体内で内頚動脈に注射してから１５秒後の測定とラットの脳における検出を含み、投与した放射標識化合物のパーセンテージとして報告した。標識被検物質と標準物質の混合物をラットの頚動脈に注射し、１５秒後に断頭した。脳組織中の［¹⁴Ｃ］対［ ³Ｈ］の比率を、投与した最初の混合物中の¹⁴Ｃ対 ³Ｈの比率と比較して、脳の微小循環を通しての単回通過で脳組織で失われた被検物質の量を決定した。得られるデータは比率であるので、測定は回収された被検サンブルの量とは独立した正確な評価である。被検混合物は、対照として、標識した¹⁴Ｃ−アンチピリンあるいは¹⁴Ｃ - スクロースを ³Ｈ−ペプチドＮＴ - １３あるいは ³Ｈ - 水と組み合わせた。¹⁴Ｃ - アンチピリンと¹⁴Ｃ - スクロースはそれぞれ拡散性と非拡散性の対照である（図６Ａ）。データは、 ³Ｈ - 水を標準物質として用いて規準化した。ニコチン、イソプロパノール、ヘロインおよびコデインについて報告した図６Ｂの追加データは、Bradburyら、1975,Amer.J.Physiol.299:1110 からとったものである。経鼻投与本発明のペプチドの投与は、エアロゾル組成あるいは点滴剤として鼻経路で実施できる。本発明のペプチドの経鼻適用後の脳への移動の有効性を明らかにするための実験を行った。雄性Sprague-Dawleyラットを塩酸ケタミンで麻酔した。ペプチド溶液は、０．０５ - ０．１ｍｇの ³Ｈ - ＮＴ - １３とリンガー緩衝液に溶解した一連の濃度の低温（未標識）ＮＴ - １３（ｐＨ約７．８）である。ピペットを用いて片方の鼻孔に２０μｌを２回の用量で投与溶液を投与した。２度目の投与は最初の投与から２分後に行い、３分後に動物を断頭した。脳を除去し、可溶化のために四等分した。可溶化した後、液体シンチレーション計数のためのサンプルを調製した。データは図７に報告されており、経鼻的に投与した標識ＮＴ - １３のｍｇに対する脳内で測定された標識ＮＴ - １３のμ ｇをグラフで示している。ペブチドのｉ．ｐ．注射本発明の標識ペプチドのｉ．ｐ．注射後に脳に供給デリバリーされたペプチドの量を調べるための実験を行った。雄性Sprague-Dawl eyラットに、水に溶解した ³Ｈ - ＮＴ - １３を注射した。注射から２０分後に動物を犠牲剖検し、液体シンチレーション計数のために脳を可溶化した。図８は、ｉ．ｐ．注射した ³Ｈ - ＮＴ - １３のｍｇに対する脳内で測定された ³Ｈ - ＮＴ - １３のμｇで表わした結果を示すグラフである。これらの実験が示すように、本発明のペプチドの体内投与は様々な経路を通して有効に実施することができる。実施例７仮定的アプローチ挙動的ＮＭＤＡ特異的活性アッセイ - ラットにおける痕跡眼まばたきアプローチの方法年齢に関連する疾病が少なく（Bronson，1990，in Genet ic Effects on Aging II，Harrison，D.E.編集、Telford Press,Caldwell,N ew Jersey）、眼まばたき条件付けにおける年齢に関連した障害も少ない（Weiss とThompson,1992,Neurobiol.Aging 13:319 - 323 ）、Ｆｉｓｈｅｒ３４４ｘＢｒｏｗｎＮｏｒｗａｙラットのＦ１雑種を使用する。実験では９カ月齢のバージンの雄性ラットを使用する。ペントバルビタールナトリウム（６５ｍｇ／ｋｇ体重）の腹腔内注射によってラットを麻酔する。頭部の先端を毛剃りし、アルコールとべタジンで洗浄する。ガス麻酔アダプターと無外傷性耳バー（鼓膜を保護するため）を備えた脳定位固定装置を使用する。動物を慎重に固定した後、頭皮上で正中切開を行う。ｐｅｒｅｏｓｔｅｕｍの皮膚を後退させ、頭蓋を洗浄して乾燥させる。頭蓋を通してブレグマの約０．８ｍｍ後方、正中線の右と左から１．３ｍｍのところに穴をあける（水平頭部座標）。次に硬膜を貫通して、２５ゲージのカニューレを各々の穴の中に皮質表面の下４．０ｍｍの深さまで下げる（Tonkis sとRawlins,1991,Exp.Brain Res.85:349 - 358）。これらのガイドカニューレを歯科用アクリル樹脂で頭蓋に接合する。ストリップコネクタをカニューレの前方で頭蓋に接合する。コネクタは、１本の接地線、ＥＭＧ活性を測定するために上眼瞼内に皮下移植する２本のワイヤ（テフロン被覆のステンレススチール）、および眼窩周囲のショックを与えるために移植する２本のワイヤを含む。被検動物には馴化の前に１週間の回復期間を与える。以下に述べる各日のトレーニングセッションの１５分前に、ラットに適当な濃度のペプチドあるいは人工脳脊髄液対照賦形剤（ａＣＳＦ）を注入する。ＰＥ - １０チューブでＣＭＡＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓの精密注入ポンプにすえつけた１０ｍｌハミルトン注射器に接続した３０ゲージの注射用カニューレを用いて、溶液を約１．０ｍｌ／分の速度で脳室に注入する（ｉ．ｃ．ｖ．）。合計約３．０ｍｌを各々の脳室に注入する。拡散を促進するため、注射用カニューレを注入後２分間そのままの位置に残す。個々の処置 - 試験間隔を維持するように急性注射処置を使用する。注射処置自体の成績への影響を評価するため、注射していない対照群を含める。ラットをスピーカーと換気扇のある防音室内の小さなケージに入れる。次に実験装置と頭部に移植したストリップコネクタをケーブルで接続する。条件剌激は、ＰＣコンパチブルコンピュータでのソフトウエアの使用とＣｏｕｌｂｏｕｒｎＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓからの電子モジュールによって制御する（Akaseら、1 994,J.Neurosci.Meth.54:119 - 130）。ＥＭＧ活性を増幅し、フィルターし、４５ｍｓの時定数で全波整流する（Skelton,1988,Behav.Neurosci.102:586 - 590 ）。データ収集と解析のためシグナルをコンピュータに送る（Thompsonら、1994 ,Ｊ．Neurosci.Meth.54:109 - 117）。 WeissとThompson（1992,Neurobiol.Aging 13:319 - 323）が報告した修正手法を用いて眼まばたき条件付けを行う。トレーニングセッションの前に４５分間のセッションを１回行ってラットを条件付け装置に慣れさせる。痕跡５００パラダイムあるいは偽条件付けのための対応のない対照パラダイムのいずれかにより、動物を対で１５日間毎日トレーニングする。トーン条件剌激（ＣＳ、１００ｍｓ、１ＫＨｚ、８５ｄＢ、５ｍｓ上昇／下降時間）と眼窩周囲ショックの無条件剌激（ＵＳ、１５０ｍｓ、２ｍＡＡＣ）を用いてラットを痕跡眼まばたき条件付ける。課題を海馬依存性にするため、刺激のない痕跡期間を５００ｍｓとする（Moyerら、1990,Behav.Neur osci.104(2):243 - 252）。条件付けれるラットは、３０ - ６０秒の無作為の間隔（ＩＴＩ）で対合したトーンとショックにより８０回のトライアルを受ける。対照ラットは、１５ - ３０秒の無作為ＩＴＩでトーン単独あるいはショック単独のいずれかにより１６０回のトライアルを受ける。条件付けセッションの後、各ラットは、３０−６０秒ＩＴＩでのトーン単独トライアルの８０セッションからなる消去トレーニングを５日間受ける。組織学的分析挙動試験の終了後、ラットを犠牲剖検し、組織学的検査用に調製する。ペプチドの反復注入がＨＰＣにおいて興奮毒性損傷の徴候を生じさせるかどうかを調べるための分析を行う。ＨＰＣの塊を、１０％ホルマリンと３０％スクロースを含む０．１Ｍリン酸緩衝液中に垂下固定する。冠状切断して、クレシルバイオレットで染色する。ＣＡ３およびＣＡ１の錐体細胞層の染色を画像分析システムで測定する。データの解析／解釈データは、群（条件付けに対する対照）ｘ用量（ＡＣＳＦおよび３つの用量）のＡＮＯＶＡ（一方向または二方向分散分析）で解析する。反復測定もＡＮＯＶＡで分析する。習得に関するＡＮＯＶＡは、ＡＮＯＶＡの１５レベルを含む。消去についてのＡＮＯＶＡは５レベルを含む。この要因分析法は、信頼しうる統計分析に使用される、群当り約１０匹の動物として８群の動物を生じる。実施例８今後のオートラジオグラフィ試験本発明のペプチドは、生物学的に活性なペプチドの脳組織分布の精緻な試験を可能にする。試験の方法 Bekensteinら（1990）のオートラジオグラフ法を本発明のペプチドに適合させることにより、脳の海馬領域ならびにの組織全体の局所結合特異性を検討することができる。最初の試験では、プレインキュベーションと洗浄、乾燥方法、時間経過の平衡性、飽和、および２３℃での結合部位の薬理学に関して、至適結合条件を開発する。未処置のラットを犠牲剖検し、速やかに脳を除去してＯＣＴに包埋し、切断の前に−２０℃で２- メチルブタン中で凍結する。低温槽で１０μｇの冠状切片を切断し、ポリ - Ｄ - リシンで被覆したカバーガラスに解凍封入する。連続切断により、海馬の中隔側頭および背腹側範囲全体に沿った結合勾配を評価することができる。特定の海馬領域あるいは細胞個体群内で（それらを越えてではなく）結合勾配が認められる場合は、そのような勾配のない領域内でのみスキャッチャード分析を実施するように特に注意を払う。ニッスル染色した組織学的検査と非特異的結合の測定には隣接切片を使用する。個々の切片を数回反復容量の２０ｍＭＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．４）中でプレインキュベートし、内因性あるいは外因性リガンドの濃度を低下させる。組織を至適濃度の本発明の［ ³Ｈ］ - ペプチドと共に２０ｍＭＨＥＰＥＳ緩衝液中で様々な時間インキュベートし、飽和試験に対する平衡結合を決定する。飽和実験のために、脳切片を種々の濃度の本発明の［ ³Ｈ］ - ペプチドと共に２０ｍＭＨＥＰＥＳ緩衝液中でインキュベートする。過剰の低温ペプチドを加えて非特異的結合を測定する。解析／解釈組織切片を［ ³Ｈ］ - Ｕｌｔｒｏｆｉｌｍ（Amersham）に付着させ、フィルムの線形暴露のための必要に応じてメタクリレート包埋したトリチウム標準物質と同時暴露する。これらの試験にはＢｉｏＲａｄＰｈｏｓｐｈｏｒｉｍａｇｅＡｎａｌｙｓｅｒを使用する。定量的デンシトメトリー分析は、ＭａｃｉｎｔｏｓｈＩＩｆｘワークステーションで８ビットのグレイスケールスキャナーおよびＮＩＭＨで開発されたｐｕｂｌｉｃｄｏｍａｉｎ画像分析ソフトウエア（Ｉｍａｇｅｖ．１．２９）を用いて実施する。本明細書および実施例は例示であり、制限を意味しないことは明白に了解されている。当業者は、本発明の教示するところから、他の特定具体例が本発明の真意と範囲内に含まれることを理解し、判断できるであろう。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｇ０１Ｎ 33/566 Ｇ０１Ｎ 33/566 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者コーリー、パトリシアエイ. アメリカ合衆国 60631 イリノイ州シカゴオザナムアヴェニュー 6551

Claims

【特許請求の範囲】１．次のものからなるグループから選択されるアミノ酸配列を有する分離されたポリペプチド： Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO:3);Val-Tyr-Tyr-Ser-Gln-Gln -His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO:4);Glu-Asp-Leu-Ala-Val-Tyr-Tyr-Se r-Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO:5);Gln-Gln-His-Tyr-Ser-T hr-Pro-Pro-Thr-Phe-Gly-Gly-Gly-Thr-Lys-Leu-Glu(SEQ ID.N0:9); Ser-Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr-Ser(SEQ ID.NO:11);Gln-Gln-His-Ty r-Ser(SEQ ID.NO:12);およびThr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO:13). ２．請求項１の分離されたポリペプチドの、有効なＮＭＤＡレセプタ結合量を含む製薬組成物。３．試験する組織を請求項１の標識したポリペプチドと接触させ、かかる標識ポリペプチドの組織への特異的結合を検出することを備える、組織中のＮＭＤＡレセプタの存在を検出するための方法。４．前記のＮＭＤＡレセプタを、請求項２のポリペプチドあるいは請求項２の製薬組成物と接触させることを備える、ＮＭＤＡレセプタの生物活性を変化させるための方法。５．有効なＮＭＤＡレセプタ結合量のポリペプチドを、少なくとも１０^-5Ｍから該ポリペプチドが溶解する限界までの濃度で含み、かかるポリペプチドが次のものからなるグループから選択される製薬組成： Lys-Ala-Ser-Gln-Asp-Val-Ser-Thr-Thr-Val-Ala(SEQ ID.N0:1);Ser-Ala-Ser-Tyr -Arg-Tyr-Thr(SEQ ID.NO:2);Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO: 3).Val-Tyr-Tyr-Ser-Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO:4);Glu- Asp-Leu-Ala-Val-Tyr-Tyr-Ser-Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.N 0:5);Ser-Val-Gln-Ala-Glu-Leu-Asp-Leu-Ala-Val-Tyr-Tyr-Ser-Gln-Gln-His-Tyr -Ser-Thr-Pro-Pro-Thr (SEQ ID.N0:6);Phe-Thr-Ile-Ser-Ser-Val-Gln-Ala-Glu-Leu-Asp-Leu-Ala-Val-Ty r-Tyr-Ser-Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.N0:7);Gln-Gln-His-T yr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr-Phe-Gly-Gly-Gly(SEQ ID.NO:8);Gln-Gln-His-Tyr-Ser- Thr-Pro-Pro-Thr-Phe-Gly-Gly-Gly-Thr-Lys-Leu-Glu(SEQ ID.NO:9); Ser-Gln-Gln-His-Tyr-Ser-Thr-Pro-Pro-Thr-Ser(SEQ ID.NO:11);Gln-Gln-His-Ty r-Ser(SEQ ID.NO:12);Thr-Pro-Pro-Thr(SEQ ID.N0:13);Thr-Pro-Pro(SEQ ID.NO: 14);Pro-Pro-Thr(SEQ ID.NO:15);Pro-Pro(SEQ ID.NO:16);Thr-Pro-Thr(SEQ ID.N O:17);および Thr(SEQ ID.NO:18).