JP2829779B2 - 環式ニューロキニンa拮抗剤 - Google Patents
環式ニューロキニンa拮抗剤Info
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Description
ド誘導体に関する。
ンA及びニューロキニンBは、体組織中に広く分布し、
広範囲の生物学的効果をもつことが示された一群の天然
に生ずるペプチド類である。物質PとニューロキニンB
については、作用剤も拮抗剤も知られており、ニューロ
キニンAの作用剤も同様に知られているが、ニューロキ
ニンAの拮抗剤はまだ報告されていなかった。
た。このような化合物類は生化学的観点から興味ぶかい
だけでなく、このような化合物類は価値ある薬理学的及
び医学的有用性をも有している。
入れられるその塩は、ニューロキニンAの拮抗剤であ
る。
原子のアルキル基であり; R1とR2は各々独立にイソプロピル、イソブチル、第二
ブチル、n−ブチル、及び2−(メチルチオ)エチル基
から選ばれる。
ンAの拮抗剤であり、従って有用な抗喘息剤、抗炎症
剤、及び抗関節炎剤である。
下の一般的な略字が本明細書を通じて使用されている。
フェニルアラニン Ac−アセチル Suc−サクシニル Phe(4′−Cl)−パラ−クロロ−フェニルアラニン Phe(4′−NO2)−パラ−ニトロ−フェニルアラニン NMeVel−N−メチル−バリン いずれの場合も、第一字が大文字の場合のアミノ酸に
対する3文字記号は、そのアミノ酸がL−立体配置であ
ることを意味している。同様に、アミノ酸に対する3文
字記号の第一字が小文字の場合は、そのアミノ酸がD−
立体配置であることを意味している。
鎖、分枝鎖又は環式アルキル基、例えばメチル、エチ
ル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、第
三ブチル、ペンチル、イソペンチル、第二ペンチル、シ
クロペンチル、ヘキシル、イソヘキシル、及びシクロペ
ンチルメチルを包含するものとして扱われる。本発明の
フェニルアルキレン基のアルキレン部分は、1−4個の
炭素原子を含有し、直鎖又は分岐鎖、例えばメチレン、
エチレン、プロピレン、ブチレン、イソプロピリデン、
及び第二ブチリデンでありうる。本発明のフェニルアル
キレン基のフェニル部分は、未置換であるか、又はオル
ト、メタ、又は好ましくはパラの位置にモノ置換でき
る。未置換フェニル又はパラヒドロキシフェニルが好ま
しい。2−10個の炭素原子のアシル基は、基当たり1個
又は2個のカルボニル部分をもった直鎖、分枝鎖、環
式、飽和及び不飽和アシル基、例えばアセチル、ベンゾ
イル、サクシニル、マレイル、及びグルタリルを包含す
るものとして扱われる。ハロゲン基はフルオロ、クロ
ロ、ブロモ又はヨード基である。
る。
式1bをもっている。
式1cをもっている。
1dをもっている。
は、構造式1eをもっている。
造式1fをもっている。
式1gをもっている。
ーロキニンAの二つの炭素末端アミノ酸類の正常なペプ
チドアミド結合を変更して、環化を通してA1アミノ酸残
基に結合させた場合のペプチド類を包含していること
は、自明であろう。ペプチド化学者に用いられている命
名法を使用して、R1とR2が各々第二ブチル基で、Bが−
NHCH2−基である場合の式1化合物類(すなわち、A4残
基をA1残基に連結する部分が還元されたアミド結合によ
って結ばれた二つのLeu残基からなっている場合の化合
物類)は、LeuΨ[CH2NH]Leuとして指定できる。この
指定は、末位から二番めのLeuのアミドカルボニル基が
がメチレン基に還元されることを示している。本発明の
ペプチド誘導体の記述に使用されるその他の命名指定
は、Ψ[CH2S]、Ψ[CH2O]、Ψ[CH=CH]、Ψ[C
(O)CH2]、Ψ[CH(OH)CH2]及びΨ[NHC(O)]
である。
然に生ずるアミノ酸類、並びに天然に生ずるペプチドの
合成類似体類つくる時にペプチド化学の当業者に一般に
利用されるその他の「非タンパク」α−アミノ酸類を包
含する。天然に生ずるアミノ酸類はグリシン、アラニ
ン、β−アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、
セリン、メチオニン、スレオニン、フェニルアラニン、
チロシン、トリプトファン、システイン、プロリン、ヒ
スチジン、アスパラギン酸、アスパラギン、グルタミン
酸、グルタミン、アルギニン、オルニチン、及びリシン
である。「非タンパク」α−アミノ酸の例はノルロイシ
ン、ノルバリン、アロイソロイシン、ホモアルギニン、
チアプロリン、デヒドロプロリン、ヒドロキシプロリン
(Hyp)、ホモセリン、シクロヘキシルグリシン(Ch
g)、α−アミノ−n−酪酸(Aba)、シクロヘキシルア
ラニン(Cha)、アミノフェニル酪酸(Pba)、フェニル
部分のオルト、メタ、又はパラ位置が(C1−C4)アルキ
ル、(C1−C4)アルコキシ、ハロゲン、又はニトロ基で
置換されたフェニルアラニン類又はメチレンジオキシ基
で置換されたフェニルアラニン類、β−2−及び3−チ
エニルアラニン、β−2−及び3−フエニルアラニン、
β−2−、3−、及び4−ピリジルアラニン、β−(ベ
ンゾチエニル−2−及び3−イル)アラニン、β−(1
−及び2−ナフチル)アラニン、セリン、スレオニン、
又はチロシンのO−アルキル化誘導体類、S−アルキル
化システイン、チロシンのO−スルフェートエステル、
3,5−ジヨードチロシン、及び天然に生ずるアミノ酸類
のD−異性体類である。
キラル炭素原子を含んでいる。他に特に注意がなけれ
ば、本明細書で言及される光学活性アミノ酸類は、L立
体配置のものである。慣習どおりに、本明細書で描かれ
るペプチド類の構造は、アミノ末端が連鎖の左側、カル
ボキシ末端が連鎖の右側にあるようになっている。
酸と共に製薬上受け入れられる塩類を形成できる。適当
な塩類を形成する例示的な無機酸類は、塩酸、臭化水素
酸、硫酸、燐酸、及びオルト燐酸一水素ナトリウムと硫
酸水素カリウムのような酸金属塩類を包含する。適当な
塩類を形成する例示的な有機酸類は、モノ、ジ及びトリ
カルボン酸類を包含する。このような酸類の例は、例え
ば酢酸、グリコール酸、乳酸、ピルビン酸、マロン酸、
コハク酸、グルタール酸、フマール酸、リンゴ酸、酒石
酸、クエン酸、アスコルビン酸、マレイン酸、ヒドロキ
シマレイン酸、安息香酸、ヒドロキシ安息香酸、フェニ
ル酢酸、桂皮酸、サリチル酸、2−フェノキシ安息香
酸、及びメタンスルホン酸と2−ヒドロキシエタンスル
ホン酸のようなスルホン酸類を包含する。
い。出願人らは、A1がGln、gln、Asn、又はasnの場合の
式1ペプチド誘導体類;A2とA3が各々Trp、trp、Phe、ph
e、Tyr、tyr、Cha、cha、Phg又はphgの場合のペプチド
誘導体類;及びA4がGly、Ala、又はalaの場合のペプチ
ド誘導体類を好ましいと考える。A1がGln、A2とA3が各
々Trp又はPhe、及びA4がGlyの場合のペプチド誘導体類
がいっそう好ましい。
の手順によってつくることができる。このような手順は
自動化ペプチド合成機の使用などの確立された自動化法
を用いて実施できる固体相配列手順を包含している。本
発明のペプチド誘導体類をつくるには、A4に対応する樹
脂結合アミノ酸を使用して、A3、A2及びA1に対応するア
ミノ酸類を次々に付加し、最後にNH2CHR2CO2Hに対応す
るアミノ酸類を付加する。続いて、変更Bアミドリンケ
ージは、NH2CHR1CO2Hに対応するアミノ酸の付加、樹脂
からの除去、及び環化によって形成される。変更ペプチ
ドリンケージの各々をつくるのに使用される手順は、こ
の技術で周知であり、熟練したペプチド化学者に容易に
実施できる。Bが−NHCO−基の場合のペプチド誘導体
類、すなわちΨ[NCCO]化合物類をつくる手順は、コレ
ブ(Chorev)及びグッドマン(Goodman)、Int.J.Pept.
Protein Res.21巻(3号)258−68頁(1983年)から知
られる。Bが−COCH2−又は−CH(OH)CH2−基の場合の
式1のペプチド誘導体類、すなわちそれぞれΨ[CO−CH
2]及びΨ[CH(OH)CH2]化合物類をつくる手順は、ホ
ラデイ(Holladay)及びリッチ(Rich)、Tetrahedron
Letters,24巻(41号)、4401−04頁(1983年)から知ら
れる。Bが−CH2NH−基の場合の式1ペプチド誘導体
類、すなわちΨ[CH2NH]化合物類をつくる手順は、サ
サキ及びコイ(Coy)、Peptides 8巻119−121頁(1987
年)から知られ、下に十分に記述されている。Bが−CH
2S−基の場合の式1ペプチド誘導体類、すなわちΨ[CH
2S]化合物類をつくる手順はスパトーラ(Spatola)及
びダーラク(Darlak)、Tetrahedron Letters,44巻(3
号)821−33頁(1988年)から知られる。Bが−CH2O−
基の場合の式1ペプチド誘導体、すなわちΨ[CH2O]化
合物類をつくる手順は、テンブリンク(TenBrink)、J.
Org.Chem.52巻418−22頁(1987年)から知られる。
の保護基の除去に続いて、線状ペプチドはジメチルホル
ムアミド中のトリエチルアミンとジフェニルホスホニル
アジドでの処理のような慣用手順を用いて環化される。
クロマトグラフィ使用のような通常の方法で粗製環式ペ
プチドを精製するに先立って、任意の残りの保護基と官
能基前駆体は除去又は所望の基へ転化される。
合物類は、式3のN−メトキシ−N−メチルアミドを還
元することによってつくられ、式4のアルデヒドを生ず
る。この還元は、水素化アルミニウムリチウム(LAH)
の使用など、当業者に一般に知られ、容易に実施できる
任意の方法で実施できる。この還元は、LAHの約1モル
当量を、テトラヒドロフラン(THF)やジエチルエーテ
ルのような非反応性溶媒中の式3化合物の冷却(典型的
には約0℃の)溶媒に加えることによって都合よく実施
できる。反応が実質的に完了した後(典型的には30分
後)、例えば10%硫酸水素カリウム又はナトリウム溶
液、次に水の添加によって、反応混合物を停止させる。
次に、例えばジエチルエーテルのような溶媒で混合物水
溶液を抽出し、エーテル相を冷たい希塩酸水溶液で洗
い、乾燥して、溶媒を除去することによって生成物を単
離できる。
せる。初めに形成されるシフ塩基生成物は、例えば水素
化シアノホウ素ナトリウムを使用して現場還元される
と、式7 [式中R、R1及びR2は式1で定義されたとおりであり、 はペプチド樹脂を表わす]の樹脂結合され変更されたジ
ペプチドを生ずる。
るN−Boc保護された酸から通常の方法でつくられる。
ジエチルエーテルのようなエーテル溶媒中のN−Boc保
護されたアミノ酸を乾燥溶液にカルボニルジイミダゾー
ルを添加する。反応混合物を10分から1時間、典型的に
は約15−20分間かきまぜる。DMF中のN,O−ジメチルヒド
ロキシアルミンHClと、ジイソプロピルエチルアミンの
ような立体障害されたアミンを加え、混合物を約6時間
から約24時間まで室温でかきまぜる。次に所望の化合物
を溶媒蒸発によって単離し、粗生成物の生成は例えば塩
化メチレンで溶離するシリカゲル上のフラッシュ・クロ
マトグラフィによって達成できる。
この技術で慣用的に使用される任意適当な樹脂、好まし
くは0.5ないし約3%のジビニルベンゼンで架橋され、
また初期に導入されたα−アミノ保護されたアミノ酸と
のエステル形成用の部位を提供するためにクロロメチル
化又はヒドロキシメチル化されたポリスチレンでありう
る。
danszsky)ら、Chem.Ind.(London)38巻1597−98頁(1
966年)によって記述されている。クロロメチル化樹脂
は、バイオライド研究所(カリフォルニア州リッチモン
ド)から市販されており、このような樹脂の調製はスチ
ュワート(Stewart)ら、「固体相ペプチド合成」(フ
リーマン社、サンフランシスコ1969年)第1章1−6頁
に記述されている。保護アミノ酸は、ジシン(Gisi
n)、Helv.Chem.Acta,56巻1476頁(1973年)の手順によ
って樹脂に結合できる。多くの樹脂結合された保護アミ
ノ酸類が市販されている。一例として、カルボキシ末端
がThr残基の場合の本発明のポリペプチドをつくるに
は、ベンジル化されヒドロキシメチル化されたフェニル
アセトアミドメチル(PAM)樹脂に結合された第三ブチ
ロキシカルボニル(Boc)保護されたThrが使用でき、市
販されている。
グに続いて、保護基は塩化メチレン中のトリフルオロ酢
酸、トリフルオロ酢酸のみ、又はジオキサン中のHClを
使用するなど、任意適当な手順を用いて除去される。脱
保護は0℃と室温の間の温度で実施される。その他の標
準的な開裂試薬と、特定的なα−アミノ保護基の除去条
件を使用できる。α−アミノ保護基の除去後、その他の
アミノ保護されたアミノ酸類は所望の順序で段階的に結
合される。その代わりに、樹脂支持されたアミノ酸配列
とのカップリングに先立って、溶液法によって複数のア
ミノ酸基を結合できる。
るα−アミノ保護基は、この技術で知られた任意のこの
ような保護基でありうる。考えられるα−アミノ保護基
の部類としては、(1)アシル型保護基、例えばホルミ
ル、トリフルオロアセチル、フタリル、トルエンスルホ
ニル(トシル)、ベンゼンスルホニル、ニトロ−フェニ
ルスルフェニル、トリチルスルフェニル、o−ニトロフ
ェノキシアセチル、及びα−クロロブチリル;(2)芳
香族ウレタン型保護基、例えばベンジロキシカルボニル
及び置換ベンジロキシカルボニル、例えばp−クロロベ
ンジロキシカルボニル、p−ニトロベンジロキシカルボ
ニル、p−ブロモベンジロキシカルボニル、p−メトキ
シベンジロキシカルボニル、1−(p−ビフェニル)−
1−メチルエトキシカルボニル、α,α−ジメチル−3,
5−ジメトキシベンジロキシカルボニル及びベンズヒド
ロキシカルボニル;(3)脂肪族ウレタン保護基、例え
ば第三ブチロキシカルボニル(Boc)、ジイソプロピル
メトキシカルボニル、イソプロピロキシカルボニル、エ
トキシカルボニル及びアリロキシカルボニル;(4)シ
クロアルキルウレタン型保護基、例えばシクロペンチロ
キシカルボニル、アダマンチロキシカルボニル、及びシ
クロヘキシロキシカルボニル;(5)フェニルチオカル
ボニルのようなチオウレタン型保護基;(6)トリフェ
ニルメチル(トリチル)とベンジルのようなアルキル型
保護基;及び(7)トリメチルシランのようなトリアル
キルシラン基がある。好ましいα−アミノ保護基は第三
ブチロキシカルボニルである。
ある。添加アミノ酸がGln、Asn又はArgの場合の特に適
したカップリング試薬は、N,N′−ジイソプロピルカル
ボジイミドと1−ヒドロキシベンゾトリアゾールであ
る。これらの試薬の使用はニトリル及びラクタムの形成
を予防する。その他のカップリング剤は(1)カルボジ
イミド(例えばN,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミ
ドとN−メチル−N′−(γ−ジメチルアミノプロピル
カルボジイミド);(2)シアナミド類(例えばN,N′
−ジベンジルシアナミド);(3)ケテンイミン類;
(4)イソキサゾリウム塩(例えばN−エチル−5−フ
ェニル−イソキサゾリウム−3′−スルホネート);
(5)環中に1−4個の窒素を含有する芳香族性で単環
の窒素含有複素環式アミド類、例えばイミダゾリド類、
ピラゾリド類及び1,2,4−トリアゾリド類(有用な特定
的な複素環式アミド類はN,N′−カルボニルジイミダゾ
ールとN,N′−カルボニル−ジ−1,2,4−トリアゾールを
包含する);(6)アルコキシル化アセチレン(例えば
エトキシアセチレン);(7)アミノ酸のカルボキシル
部分と混合無水物を形成する試薬(例えばエチルクロロ
フォルメートとイソブチルクロロフォルメート)又はカ
ップリングしようとするアミノ酸の対称無水物(例えば
Boc−Ala−O−Ala−Boc);及び(8)一つの環窒素上
に1個のヒドロキシ基をもった窒素含有複素環式化合物
類(例えばN−ヒドロキシフタルイミド、N−ヒドロキ
シサクシンイミド及び1−ヒドロキシベンゾトリアゾー
ル)である。その他の活性化試薬と、ペプチドのカップ
リングにおけるそれらの使用は、ケイパー(Kapoor)、
J.Pharm.Sci.59巻1−27頁(1970年)に記述されてい
る。出願人らは、Arg、Asn及びGlnを除き、すべてのア
ミノ酸に対するカップリング試薬として、対称的無水物
の使用を好ましいと考える。
で固体相反応器に導入され、ジメチルホルムアミド:塩
化メチレン(1:1)又はジメチルホルムアミドのみ、又
は好ましくは塩化メチレンのみの媒体中でカップリング
が行なわれる。不完全なカップリングが起こる場合は、
α−アミノ保護基の除去前に、固体相反応器中で次のア
ミノ酸のカップリングに先立って、カップリング手順を
繰り返す。各合成段階でのカップリング反応の成功は、
イー・カイザー(E.Kaiser)ら、Analyt・Biochem.34巻
595頁(1970年)に記述されたとおりに、ニンヒドリン
反応によって監視される。
ら除去される。これは樹脂結合ポリペプチドを無水フッ
化水素酸中の硫化ジメチル、p−クレゾール、及びチオ
クレゾールの溶液で処理するなど加水分解によって行な
うことができる。
ミノ酸類の多くは連鎖生成中に保護を必要とするような
官能基をもっている。適当な保護基の選定と使用は当業
者の能力の範囲内にあり、保護しようとするアミノ酸
と、ペプチド上の他の保護アミノ酸残基の存在に依存し
よう。このような側鎖保護基の選択は、α−アミノ部分
の保護基の開裂中にそれが除去されてはならないという
点で決定的重要性をもっている。例えば、リシンに適し
た側鎖保護基はベンジロキシカルボニル及び置換ベンジ
ロキシカルボニル[この置換基はハロゲン(例えばクロ
ロ、ブロモ、フルオロ)及びニトロ(例えば2−クロロ
ベンジロキシカルボニル、p−ニトロベンジロキシカル
ボニル、3,4−ジクロロベンジロキシカルボニル)から
選ばれる]、トシル、t−アミロキシカルボニル、t−
ブチロキシカルボニル、及びジイソプロピルメトキシカ
ルボニルである。スレオニンとセリンのアルコール性ヒ
ドロキシル基はアセチル、ベンゾイル、第三ブチル、ト
リチル、ベンジル、2,6−ジクロロベンジル又はベンジ
ロキシカルボニル基で保護できる。アスパラギン酸とグ
ルタミン酸のカルボン酸ヒドロキシル基は、ベンジル又
はシクロヘキシル基で保護できる。好ましい保護基はベ
ンジルである。
る。典型的には、保護基の除去はペプチド鎖合成が完了
してから行なわれるが、保護基はその他の任意適当な時
に除去できる。
作用するための能力は、バック(Buck)ら、Science 22
6巻987−989頁(1984年)の方法を使用して、これらの
ペプチドが哺乳類ニューロキニンA(NK2)受容体につ
いてヨウ素化ニューロキニンAと競合する能力により、
またブリストウ(Bristow)ら、British J.Pharmacol.9
0巻211−221頁(1987年)の方法を使用して、このよう
な化合物鎖がニューロキニンAで誘発されるホスファチ
ジルイノシトールの転換を刺激又は抑制する能力によっ
て例証できる。
として作用する能力があるため、化合物類免疫抑制剤と
して、また関節炎、喘息、痛み、炎症、腫瘍成長、胃腸
の運動過剰、ハンチントン秒、精神病、神経炎、神経
痛、片頭痛を含めた頭痛、高血圧、尿失禁、じんまし
ん、カルチノイド症候群、インフルエンザ、及び感冒の
処置に有用である。経口、非経口によらず、有効投与量
は当業者が容易に決定できるものであり、ニューロキニ
ンA(NK2)受容体の拮抗を生ずる投与量である。例え
ば、本発明ペプチドの有効投与量は、一日当たり患者の
体重kg当たり約0.5μgないし約500mgでありうる。化合
物類は活性化合物約1mgないし約500mgを含有する単位適
量形式で都合よく投与され、一日当たり1−4回ないし
それ以上の単位適量形式で投与できる。本明細書で使用
される用語「患者」とは、ヒトを含めた霊長類、羊、
馬、牛、豚、犬、猫、ラット、及びハツカネズミのよう
な哺乳類を意味するものとして扱われる。
て生き残ることもあるが、出願人らは非経口投与、例え
ば皮下、静脈内、筋肉内又は腹膜内;デボー注射による
投与;移植製剤;又は鼻、のど、気管などの粘膜へ、本
発明のペプチド誘導体を含有するアエロゾル缶で、スプ
レー又は乾燥粉末型としての適用が好ましいと考える。
的に受入れられる希釈剤中の化合物の溶液又は懸濁液の
注射可能な適量として投与でき、担体は、表面活性剤そ
の他の製薬上受け入れられる助剤の添加を伴って、又は
伴っていない水や油類のような無菌液体でありうる。こ
れらの製剤に使用できる油類の例は、石油、動植物、又
は合成起源のもの、例えば落花生油、大豆油、及び鉱油
である。概して、水、食塩水、デキストロース水溶液、
及び関連する糖溶液、エタノール及びプロピレングリコ
ールやポリエチレングリコールのようなグリコール類
が、特に注射液用に好ましい液体担体である。
き、これらは活性分の持続的放出を可能とするような方
法で処方できる。活性成分はペレットや小円筒形に圧縮
されて、皮下又は筋肉内にデポー注射剤又は移植剤とし
て移植できる。移植剤は生物劣化可能な重合体類や合成
シリコーン類、例えばダウコーニング・コーポレーショ
ンで製造されるシリコンゴムのシラスチックのような不
活性材料を使用できる。
ている。
よって例証される環式Gln−Trp−Phe−Gly−LeuΨ[CH2
NH]Leu及び環式Gln−Trp−Phe−Gly−LeuΨ[CH2NC
H3]LeuによるニューロキニンA受容体の拮抗 ハムスター数匹の膀胱を集めて刻み、120mM NaCl及び
5mM KClを含有する4℃の50mMトリス−HCl(pH7.4)中
で均質化し、48,000xGで15分の遠心分離にかけた。ペレ
ットを、10mM EDTAと300mMKClを含有する50mMトリス−H
Cl(pH7.4)中で、4℃で30分間に再懸濁した。懸濁液
を上のように遠心分離し、ペレットを混ぜ物のない50mM
トリス−HCl(pH7.4)中で2回洗い、同様な遠心分離に
かけた。次に組織を培養緩衝液中に再懸濁し、各検定試
験管にアリコート(約3−5mgの組織)を加えて検定を
開始した。検定試験管は、50mMトリス−HCl(pH7.4)、
0.02%BSA、40μg/mlバシトラシン、4μg/mlキモスタ
チン、4μg/mlロイペプチン、2mM MnCl2、0.1nM125ヨ
ードヒスチジル1−ニューロキニンA(アマーシャム・
コープ)、及び0.03nMないし100μMの範囲の濃度の表
題化合物又は標準物質からなる培養緩衝液を含有した。
検定は、室温で120分間平衡化させた。この時間の後、
各試験管の内容物を、0.5%BSA中に事前浸漬したホワッ
トマンGF/Bフィルターに通して急いで濾過し、フィルタ
ーを氷冷した混ぜ物のない50mMトリス−HCl(pH7.4)
で、急いで2回洗った。フィルターに結合された放射能
をガンマ計測器で定量した。特異的結合(最大)は、1
μM未標識ニューロキニンA(NKA)の存在下及び不在
下の結合間の差として定義された。ヨウ素化ニューロキ
ニンA結合の試験化合物類又は標準による競合を、この
最大競合の百分率として表わした。IC50値(受容体結合
の50%を抑制するのに要する濃度)は、表題化合物の場
合、0.01−0.5nMであることがわかった(第1図)。
によって例証される、環式Gln−Trp−Phe−Gly−LeuΨ
[CH2NH]Leuと環式Gln−Trp−Phe−Gly−LeuΨ[CH2NC
H3]LeuによるニューロキニンA受容体の拮抗 ハムスター数匹の膀胱を集めて刻み、組織チョッパー
で350μmに刻んだ。刻んだ組織を37℃のクレブス=ヘ
ペス緩衝液中で30分培養し、新しい緩衝液と15分ごとに
代えた。次に、3H−イノシトール100−200μCiを含有す
るこの緩衝液中で37℃で組織を培養した。次に組織を洗
い、クレブス=ヘペス(10mM Li+を含有)中で37℃で更
に30分培養し、15分ごとに新しい緩衝液と取り替えた。
組織塊(検定管当たり約10−20mg)の一部をLi+緩衝液
中に入れ、25μlの中の試験化合物を添加し、次に25μ
l中の種々の濃度のニューロキニンAを加え、最終容量
を250μlとした。ニューロキニンAを1nMないし10μM
の濃度範囲とし、試験化合物を1nMないし100μMの範囲
の濃度で評価した。また、試験化合物の作用活性を試験
するために、指示濃度の試験化合物を単独で評価した。
室温で30分後、ホスファチジルイノシトールの転換をク
ロロホルム:メタノール(1:2)940μlの添加と、これ
に続いてクロロホルム310μlと水310μlの添加によっ
て終了させた。次に各管を15秒間うず巻状にかきまぜ、
次いで相分離のため3000rpmで10分間遠心分離した。上
相(水性)900μlを0.5mlバイオライドAG−1X8(フォ
ルメート)イオン交換カラムに充填した。底相(クロロ
ホルム)50μlを各管から取り出し、計測バイアル中に
入れ、乾燥し、シンチレーション流体中で計測した。カ
ラム上のミネラルを次の順序で洗った。
洗浄液を集め、1mlをACSシンチラント6mlと混合して計
測した。各試料について、これらのカウント(全イノシ
トールホスフェート)と対応する有機相のカウントとの
比を計算した。試験化合物及び/又は標準物質の存在下
における比を、対照検定管(すなわち刺激性作用剤を含
まないもので)での比と比較した。投与量−応答曲線を
作図し、試験化合物がニューロキニンAで誘発されるホ
スファチジルイノシトール転換を刺激ないし抑制する能
力について、グラフ分析により、又はコンピュータプロ
グラムの助けによって決定した。これは第2図から第5
図に例示されている。
−Gly−LeuΨ[CH2NCH3]LeuによるニューロキニンAの
拮抗 ウレタン(1.2g/kg腹膜内)を補充したケタミン塩酸
塩(100mg/kg腹膜内)でラット(雌、スプラーグ・ドー
リー種、150−200g)を麻酔にかけた。ドレイ(Dray)
[J.Pharmacol.Methods 13巻157−165頁(1985年)]の
方法に従って、膀胱をむき出しにし、からにした。膀胱
ドーム頂に針を挿入し、食塩水を毎分100μlの速度で
膀胱に潅流した。膀胱流出液を、尿道に挿入されたポリ
エチレンカニューレから集めた。潅流系と直列に連結し
た流圧トランスデューサを通して、膀胱の収縮を監視し
た。食塩水又は最小限のDMSOを含有する食塩水40−100
μl中の試験化合物を膀胱ドームに適用した。75%まで
のDMSOを含有する適用ビヒクルは、直接の効果をもた
ず、その後のNKAで誘発される収縮に影響を及ぼさなか
った。収縮に対するNKAの限界濃度値は約10μgであ
り、この量は定常的に使用された。KNAの反復適用の5
分前に拮抗剤を同様に膀胱に適用した。NKA10μgの反
復適用は、タキフィラキシーを生じなかった。各動物に
対して、1分の時間間隔で収縮の振幅(力)を連続的に
記録した。自動記録装置の記録例を第6図に示す。
エイ(Fehrentz,J.A.)及びカストロ・ビー(Castro,
B.)Synthesis(1983年)676−678頁]: A.N−t−Boc−ロイシンN−メトキシ−N−メチルアミ
ド Boc−ロイシン水和物15.0ミリモルを乾燥エーテル30m
lに溶解した。溶液を無水MgSO4で乾燥し、固体を濾過に
よって除去した。カルボニルジイミダゾール16.5ミリモ
ルを濾液に加え、反応を室温で20分かきまぜた。生ずる
溶液に、ジメチルホルムアミド15mlとジイソプロピルエ
チルアミン3.9ml中のO,N−ジメチルヒドロキシルアミン
塩酸塩(22.5ミリモル)の懸濁液を添加した。反応混合
物を室温で一夜かきまぜた。反応を酢酸エチル75mlで希
釈し、冷たい1N HCl(3×40ml)、飽和NaHCO3(3×40
ml)及び飽和NaCl(1×40ml)で洗った。有機相をMgSO
4で乾燥し、濾過し、酢酸エチルを真空中で除去した。
分析データ:Rf(シリカゲルf254):0.51(酢酸エチル/
ヘキサン3:2);′H−NMR(CDCl3)TMS int):δ=0.
95ppm(2d,6H,J=6.6 Hz);1.42(s,11H);1.64−1.80
(m,1H);3.20(s,3H);3.80(s,3H);4.72(m,1H);5.
10(d,1H,J=7.5 Hz)質量スペクトル:M+H+:論理値27
5、測定値275。
リモルを乾燥エーテル30mlに溶解した。この溶液に、水
素化アルミニウムリチウム3.2ミリモル(1Mテトラヒド
ロフラン溶液)を添加した。反応を室温で20分かきま
ぜ、次いで水10ml中のNaHSO4(0.6g)の溶液を添加して
注意深く停止させた。反応混合物をエーテル75mlに添加
し、冷たい1N HCl(3×30ml)、飽和NaHCO3(3×30m
l)、及び飽和1N NaCl(3×30ml)で洗った。有機相を
MgSO4で乾燥し、濾過し、溶媒を真空中で除去した。分
析データ:Rf(シリカゲル60 F254):0.68(酢酸エチル
/ヘキサン3:2)。質量スペクトル:M=H+:理論値216、
測定値216。
の合成 Boc−Gly−PAM樹脂(0.5ミリモル)から始めて、自動
化ペプチド合成機での標準的な固体相ペプチド合成手法
を用いた。残りのアミノ酸(Phe、Trp[Ψ(CHO)]、G
ln、Leu)を次々に付加した。次にBoc保護基をトリフル
オロ酢酸で除去し、樹脂をジイソプロピルエチルアミン
で中和した。次に樹脂をジメチルホルムアミド、ジクロ
ロメタンで洗って乾燥した。
アミド10ml中の1%酢酸に溶解し、ペプチド樹脂(0.5
ミリモル、上のIIを参照)を含有する反応容器にこの溶
液を添加した。この混合物に、ジメチルホルムアミド2m
l中のNaCNBH3(150mg)の溶液を添加した。混合物を4
時間振とうし、反応容器から排出し、樹脂をジメチルホ
ルムアミド、及び次にジクロロメタンで洗った。
合成 ペプチドを樹脂から開裂し、無水HF/アニソール(10:
1)を用いて全体的に脱保護した。粗製ペプチド77mgの
一部をジメチルホルムアミド15mlに溶解し、次にトリエ
チルアミン0.2mlとジフェニルホスホニルアジド0.08ml
を加えることによって、ペプチドを環化した。室温で12
時間かきまぜた後、溶媒を真空中で除去した。次に、1:
1アセトニトリル:水(v/v)60mlに粗製環式ペプチドを
溶解し、トリエチルアミン2.0mlを添加することによっ
て、Trp(CHO)残基を脱ホルミル化した。脱ホルミル化
反応を室温で12時間かきまぜてから、溶媒を真空中で除
去した。逆相HPLC手法を使用して粗製環式ペプチドを精
製すると、純粋な化合物が得られた。収量27.9mg,38.2
μモル。分析データ:アミノ酸分析:(HCl消化)Gl×
(0.83)、Phe(0.97)、Gly(1.03)。高速原子衝撃質
量スペクトル分析:(M+H)+.論理値731、測定値73
1;ペプチド含有量:50.7%。
の合成 上のIIIに述べたとおりに、N−メチル−Leu−Gln−T
rp(CHO)−Phe−Gly−PAM樹脂(上のIIに従ってBoc−
N−メチルロイシンから調製)を、Boc−Leuアルデヒド
(2.0ミリモル)と反応させた。次に、上のIVに述べた
とおりに、ペプチド合成を完了させた。分析データ:ア
ミノ酸分析:(HCl消化物)Glx(0.72);Gly(1.04);P
he(0.96).ペプチド含有量:63.7%.高速原子衝撃質
量スペクトル分析:M+H+.計算値745;測定値745。
合成 Boc−Leu[Ψ(CH2NH)]−Leu−Gln−Trp(CHO)−P
he−Gly−PAM−樹脂を上の段階II及びIIIに従って調製
する。次に、上のIIIに述べたとおりに、NaCNBH3の存在
下に、ジメチルホルムアミド中1%HOAc10ml中のR−CH
O(2.5ミリモル)と樹脂を反応させる。次に、上のIVに
述べたとおりに、ペプチド合成を完了させる。
結合と競合する試験化合物の能力によって例証されると
おり、NKA受容体での作用剤の結合に対する環式(Gln−
Trp−Phe−Gly−Leu[Ψ(CH2NH)]−Leu)及び環式
(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu[Ψ(CH2NCH3)]−Leu)
の拮抗能力を示す(実施例1)。横座標(x軸)はニュ
ーロキニンA(NKA)受容体の作用剤又は拮抗剤濃度を
対数で示す。縦座標(y軸)は、最大特異結合の百分率
として測定された。各試験作用剤又は拮抗剤について観
察された特異的結合を示す。値は6−12回の実験のMEAN
±S.E.M.である。IC50値はグラフで50%抑制点から推定
され、図に列挙されている。環式(Gln−Trp−Phe−Gly
−Leu[Ψ(CH2NCH3)]−Leu)は環式(Gln−Trp−Phe
−Gly−Leu[Ψ(CH2NH)]−Leu)より強力な競合物質
であり、作用剤のNKA自体より強力であった。
誘発されるホスファチジルイノシトール(PI)転換の、
投与量と関連した拮抗をつくりだすための、それぞれ環
式(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu[Ψ(CH2NH)]−Leu)
と環式(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu[Ψ(CH2NCH3)]−
Leu)の能力を示す(実施例2)。横座標(x軸)はNKA
受容体の作用剤又は拮抗剤濃度を対数で示す。縦座標
(y軸)は、対照の百分率として観察されたPI転換率を
示す。値は1回の三重試験からのMEAN+S.E.M.である。
各投与量−応答曲線の身元は、図に列挙されたとおりで
ある。10nM及び100nMの濃度の環式(Gln−Trp−Phe−Gl
y−Leu[Ψ(CH2NH)]−Leu)(第2図)と、100nM、
1μM、及び10μMの濃度の環式(Gln−Trp−Phe−Gly
−Leu[Ψ(CH2NCH3)]−Leu)(第3図)は、右寄り
のNKA投与量−応答曲線を生じた。10μMまでの濃度の
化合物のみでは、PI転換を誘発しなかった。
されNKAで誘発されるPI転換(実施例2)に対する環式
(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu−CH2NH−Leu)と環式(Gln
−Trp−Phe−Gly−Leu−CH2NCH3−Leu)の拮抗能力の比
較を示す。横座標(x軸)は、NKA濃度を対数で示す。
縦座標(y軸)は、対照の百分率として観察されたPI転
換率を示す。値は1回の三重試験からのMEAN+S.E.M.で
ある。各投与量−応答曲線の身元は、図に列挙されたと
おりである。100nM(第4図)と1μM(第5図)での
両ペプチド類は、平行な右寄りのNKA投与量−応答曲線
を生じた。各拮抗剤濃度とも、両ペプチドは互いに同等
な能力をもっている。
にNKA(10μg)を直接に適用したとき、これは持続的
な緊張性収縮と回数の増加をもたらした。環式(Gln−T
rp−Phe−Gly−Leu[Ψ(CH2NCH3)]−Leu)(25μ
g)を適用して5分後、第二の同じ適用をしたとき、NK
Aの効果は著しく低下するか、又は2匹の異なるラット
で完全に遮断された。各動物に対して連続記憶を示す。
方法は実施例3に記述されたとおりである。
合と競合する試験化合物の拮抗能力を示すグラフ(実施
例1)。 第2図と第3図は、ハムスターの膀胱でNKAによって誘
発されるPI転換の、投与量と関連した拮抗をつくりだす
環式(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu−CH2NH−Leu)と環式
(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu−CH2NCH3−Leu)の能力を
示すグラフ(実施例2)。 第4図と第5図は、ハムスター膀胱での受容体で媒介さ
れNKAで誘発されるPI転換(実施例2)に対する環式(G
ln−Trp−Phe−Gly−Leu−CH2NH−Leu)と環式(Gln−T
rp−Phe−Gly−Leu−CH2NCH3−Leu)の拮抗能力の比較
を示すグラフ。 第6図は、麻酔ラットの露出膀胱ドームにNKAを直接に
適用したときの接続的な緊張性収縮と回数の増加効果
を、環式(Gln−Trp−Phe−Gly−Leu−CH2NCH3−Leu)
(25μg)適用5分後の第二の同じ適用が、著しく低下
させるか完全に遮断することを示している、各動物に対
する連続記録のグラフ。
Claims (8)
- 【請求項1】式 [式中A1はGlnであり; A2はTrpであり; A3はPheであり; A4はGlyであり; Bは式 の基であって、ここでRは水素原子又は1〜4個の炭素
原子のアルキル基であり; R1とR2は各々独立にイソプロピル、イソブチル、第二ブ
チル、n−ブチル、及び2−(メチルチオ)エチル基か
ら選ばれる。]のペプチド、又は製薬上受け入れられる
その塩。 - 【請求項2】Rが水素である請求項1に記載のペプチ
ド。 - 【請求項3】Rがメチルである請求項1に記載のペプチ
ド - 【請求項4】R1がn−ブチルである、請求項1に記載の
ペプチド。 - 【請求項5】R2がn−ブチル又は2−メチルチオエチル
である、請求項1に記載のペプチド。 - 【請求項6】環状のGln−Trp−Phe−Gly−Leu[CH2NC
H3]Leuである請求項1に記載のペプチド。 - 【請求項7】環状のGln−Trp−Phe−Gly−Leu[CH2NH]
Leuである請求項1に記載のペプチド。 - 【請求項8】請求項1〜7の何れか一に記載のペプチド
の有効量を含む抗喘息剤。
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