JP5484732B2 - 過敏症の治療のための免疫賦活性核酸パッケージ粒子 - Google Patents
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Description
本発明は、免疫学の分野及び免疫学的に活性な組成物による過敏症の治療に関する。本発明の組成物は、免疫賦活性核酸がパッケージされた粒子、好ましくはウイルス様粒子、ナノ粒子、微小粒子(マイクロ粒子)又はリポソームを含有する。本発明の組成物は過敏症、好ましくはアレルギーで、アトピー性湿疹、喘息及びIgE依存性アレルギー(I型アレルギー)、特に花粉アレルギー(花粉症)のような疾患を含むものの治療において有用である。
最初の側面では、本発明は医薬として使用される組成物であって、粒子と免疫賦活性核酸(ISS-NA)を含むか、本質的にこれらからなるか、又はこれらからなり、該粒子が前記免疫賦活性核酸と共にパッケージされている組成物を提供する。
本発明の組成物が過敏症、好ましくはアレルギーの予防的及び治療的処置において有用であることが意外にも見出された。更なる側面では、よって本発明は動物の過敏症、好ましくはアレルギーを治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物は粒子と免疫賦活性核酸(ISS-NA)を含み、該粒子は前記ISS-NAと共にパッケージされている。特定の側面では、本発明は動物の過敏症、好ましくはアレルギーを治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物はウイルス様粒子と非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含み、該ウイルス様粒子は前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドと共にパッケージされている。好ましい実施態様では、前記過敏症はアレルギー、好ましくはIgE依存性喘息、アトピー性湿疹又はIgE依存性アレルギー(I型アレルギー)である。更に好ましい実施態様では、前記粒子はナノ粒子、微小粒子及びリポソームから選択される。更に好ましい実施態様では、前記粒子はVLP、好ましくはRNA-バクテリオファージのVLP、また好ましくはバクテリオファージQβのVLPである。更に好ましい実施態様では、前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドはホスホジエステル結合ヌクレオチド、最も好ましくはG10(配列番号27)のものから専らなる。
更なる側面では、本発明は、動物の過敏症を治療する方法に使用される組成物の製造方法を提供し、該組成物は(a)ウイルス様粒子と;(b)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含み;ここで、該ウイルス様粒子(a)は前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)と共にパッケージされ、該方法は、(i)前記VLPをリボヌクレアーゼと共にインキュベートする工程と;(ii)前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加える工程と;(iii)前記組成物を精製する工程を含む。
更なる側面では、本発明は、動物の過敏症を治療する方法に使用される組成物の製造方法を提供し、該組成物は(a)ウイルス様粒子と;(b)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含み;ここで、該ウイルス様粒子(a)は前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)と共にパッケージされ、該方法は、(i)前記VLPを前記VLPの核酸を加水分解可能な金属イオンを含む溶液と共にインキュベートする工程と;(ii)前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加える工程と;(iii)前記組成物を精製する工程を含み、ここで好ましくは工程(i)の前記金属イオンは、(a)亜鉛(Zn)イオン;(b)銅(Cu)イオン;(c)鉄(Fe)イオン;(d)(a)、(b)及び/又は(c)の少なくとも一つのイオンの任意の混合物からなる群から選択される。
更なる側面では、本発明は、動物の過敏症を治療する方法に使用される組成物の製造方法を提供し、該組成物は(a)ウイルス様粒子と;(b)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含み;ここで、該ウイルス様粒子(a)は前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)と共にパッケージされ、該方法は、(i)前記VLPを前記VLPを不安定化可能な溶液と共にインキュベートし、ここで前記VLPがバクテリオファージQβのVLPである工程と;(ii)前記溶液からコートタンパク質を精製する工程と;(iii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド及び酸化剤の存在下で前記コートタンパク質をVLPと再構築する工程を含む。
更なる側面では、本発明は医薬として使用される組成物を提供し、ここで該組成物は、(i)VLPをリボヌクレアーゼと共にインキュベートする工程と;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加える工程と;(iii)組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができる。
更なる側面では、本発明は医薬として使用される組成物を提供し、ここで該組成物は、(i)VLPを分解する工程と;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加える工程と;(iii)前記VLPを再構築する工程を含む方法によって得ることができる。
更なる側面では、本発明は動物のアレルギーの治療方法に使用される組成物を提供し、ここで該組成物は、(i)VLPを非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドと共にインキュベートする工程と;(ii)リボヌクレアーゼを加える工程と;(iii)前記組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができる。
更なる側面では、本発明は動物のアレルギーの治療方法に使用される組成物を提供し、ここで該組成物は、(i)VLPをリボヌクレアーゼと共にインキュベートする工程と;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドリボヌクレアーゼを加える工程と;(iii)前記組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができる。
更なる側面では、本発明は動物のアレルギーの治療方法に使用される組成物を提供し、ここで該組成物は、(i)VLPを分解する工程と;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加える工程と;(iii)前記VLPを再構築する工程を含む方法によって得ることができる。
更なる側面では、本発明は本発明の組成物を含有する薬学的組成物を提供する。
更なる側面では、本発明は動物の過敏症、好ましくはアレルギーを治療する方法を提供し、該方法は本発明の組成物を前記動物に導入することを含む。
本発明の更なる側面は、動物の過敏症の治療のための医薬の製造における本発明の組成物又は本発明の薬学的組成物の使用であって、ここで、好ましくは前記過敏症はアレルギーであり、更に好ましくは前記アレルギーは、(a)IgE依存性喘息;(b)アトピー性湿疹;及び(c)IgE依存性アレルギー(I型アレルギー)、好ましくは花粉アレルギー又はハウスダストアレルギーからなる群から選択される。
別段の定義をしない限り、ここで使用される全ての技術及び科学用語は、本発明が属する分野の当業者によって通常理解されるものと同じ意味を有する。
更に好ましくは、過敏症は、(a)喘息、(b)鼻炎、(c)結膜炎、(d)鼻結膜炎、(e)皮膚炎、(e)蕁麻疹、(e)食物過敏症、(e)薬物過敏症、(e)昆虫刺傷又は虫刺され過敏症、及び(e)アナフィラキシーからなる群から選択される疾患のアレルギー性形態を意味する。特に、過敏症はまた任意のタイプのアレルギーを含む。
典型的には、また好ましくは、ISS-NAがパッケージ化された粒子は分解から、好ましくはDNエース又はRNエース加水分解から上記ISS-NAを保護する。従って、好ましい意味では、「パッケージ化」なる用語は、パッケージされた状態のISS-NA、好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがDNエース又はRNエース加水分解から隔絶されている。より好ましくは、「パッケージ化」なる用語は、ISS-NA、好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがDNエース又はRNエース加水分解から隔絶され、更に好ましくはDNエースはDNエースI又はベンゾナーゼである。皿により好ましくは、「パッケージ化」なる用語は、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがベンゾナーゼ加水分解から隔絶されている。
非常に好ましい意味では、粒子は、バクテリオファージ、好ましくはRNAバクテリオファージ、更に好ましくはRNAバクテリオファージQβのウイルス粒子又はウイルス様粒子、最も好ましくはRNAバクテリオファージQβのウイルス粒子であり、上記ISS-NAが非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド、好ましくはA型CpG、更に好ましくは配列番号72である場合、「パッケージ化」なる用語は、上記ISS-NAがパッケージされた粒子が、上記バクテリオファージ、好ましくは上記RNAバクテリオファージ、更に好ましくは大腸菌中でのコートタンパク質の組換え発現により得られた上記RNAバクテリオファージQβのウイルス粒子と同じ保持時間で溶出することを示しており、好ましくは上記保持時間は、好ましくは本願の実施例4に記載されているようなサイズ排除クロマトグラフィーによって決定され、好ましくは本願の実施例4に記載されているようにして決定される上記ISS-NAを含む。
上で特定したアッセイ条件下、特に国際公開第2003/024481A2号の実施例11−17のものでは、上記ISS-NAがパッケージされる幾つかの合成粒子は、ある限られた量のISS-NAを放出し得、該放出は典型的には二相又はより多相の動態に従い、該動態は速やかな初期のバースト放出相と少なくとも一つの遅い放出相を含みうる。例えば、合成粒子にパッケージされたISS-NAの合成粒子は、生理バッファー中でインビトロで37℃又は30℃にてインキュベートされた場合に、バースト放出相で放出されうる。この場合、バースト放出相には少なくとも一つの遅い放出相が続く。ある場合には、I第二の放出相がフラットであり、これは、その相では合成粒子からISS-NAが放出されないか非常に限られた量しか放出されないことを意味する。二以上の相が、合成粒子からのISS-NAの放出動態の試験によって特定される。典型的には、初期のバースト放出相は24時間まで続く場合があり、遅い放出相は2−3日から6日又はそれ以上続く場合がある。ある場合には、遅い放出相はほぼフラットであり、バースト放出相後にISS-NAは放出されないか殆ど放出されない。あるいは、初期バースト相が存在せず、むしろ一又は複数の遅い放出相が存在しうる。 バースト放出相はパッケージ化を評価するアッセイにおいてヌクレアーゼ又は血清曝露に付随しうるので、このあっせいで評価されるヌクレアーゼ又は血清による分解からの保護は完全でない場合がある。保護を試験するためのアッセイで使用される条件下におけるオリゴヌクレオチドの初期バースト放出相の場合では、遅い放出相に対応するアッセイの時間スパンの間、保護が評価される。よって、ウイルス粒子又はウイルス様粒子ではなく合成粒子である粒子に関して「パッケージ化」なる用語は、合成粒子とISS-NAを含むか、本質的にそれからなるか、又はそれからなる組成物をまた包含し、上記合成粒子による ISS-NAの放出が起こるが、但し、上記合成粒子にパッケージされたISS-NAの少なくとも30%、好ましくは少なくとも40%、より好ましくは少なくとも50%、更により好ましくは少なくとも60%、更により好ましくは少なくとも70%、最も好ましくは少なくとも80%がアッセイの終わりに上記合成粒子に付随して残る。
好ましい実施態様では、上記分子は、合成分子、ウイルス粒子及びVLPからなる群から選択される。
より好ましい実施態様では、上記合成粒子、好ましくは上記ナノ粒子は、(a)ポリエステル類、好ましくはPLA、ポリ(グリコール酸)及びPECLから選択されるもの、(b)ポリエステル類のコポリマー、好ましくはPLGA、(c)ポリエステルとPEGのブロックコポリマー、(d)ポリオルトエステル、(e)ポリ(無水物)、(f)ポリ(セバシン酸)、(g)アミノ酸を導入したセバシン酸モノマーに基づくポリ無水物、(h)ポリ無水物エステル、(i)ポリホスファゼン、好ましくは加水分解に敏感なエステル基を含むポリホスファゼン(Andrianov A.K.及びPayne LG, Microparticulate systems for the delivery of proteins and vaccines, S. Cohen及びHoward Bernstein編, Marcel Dekker, New York 1996, p127-147)、(j)ポリアミド、(k)好ましくはタンパク質から選択される巨大分子及び生物由来の変性巨大分子(例えばゼラチン、ヒト血清アルブミン)及び多糖類(例えばデキストラン、キトサン、アルギン酸塩、シゾフィラン(Schyzofyllan))からなる群から選択される生物分解性材料を含むか、好ましくはそれらから本質的になるか、最も好ましくはそれらからなる。
更に好ましい実施態様では、上記粒子、好ましくは上記合成粒子、最も好ましくは上記ナノ粒子は、少なくとも一、好ましくは正確に三、より好ましくは正確に二、最も好ましくは正確に一の生物分解性ポリマーを含むか、好ましくはそれらから本質的になり、好ましくは、上記ポリマーは生物分解性の非毒性ポリマーに分解し、更により好ましくは、上記生物分解性ポリマーはポリエステルである(Maria J. Alonso等, Microparticulate systems for the delivery of proteins and vaccines, S. Cohen及びHoward Bernstein編, Marcel Dekker, New York 1996, p 203-242)。
更に好ましい実施態様では、上記ナノ粒子はポリプレックス(polyplex)である。ポリプレックスナノ粒子は、PEI、PLL又はPEG-PLLのような錯化剤とISS-NAの直接の会合が、いわゆるポリプレックスを形成することによって、形成される(Boeckle S.等 J Gene Med 2004; 6:1102-1111;Wagner E.等 Adv Genet. 2005;53:333-54;Walker G.等 Mol Ther. 2005;11:418-25)。
溶媒抽出及び蒸発法は、例えば温度を増大させ、真空を形成し、又はイソプロパノール(例えば2%)のようなアルコールを外部水相に加えてその外部水相中における有機溶媒の溶解度を増加させることによって、更に加速させることができる。例えば、ロータリーエバポレーター(rotavapor)を用いて溶媒抽出及び蒸発を加速させることができる。
他のポリマー沈殿法は、溶媒置換又はナノ沈殿法である。それは、外部水相に完全に可溶性である有機溶媒の使用を伴う。ポリマーは、アセトン、エタノール又はメタノールに溶解させ、例えばポロキサマー188のような界面活性剤の水溶液中に撹拌しながら導入する際に沈殿する。
更なる高分子沈殿法は、塩析技術である。この方法では、ポリマーは例えばアセトンに溶解させられ、PVAの飽和水溶液を撹拌下で加えて、水中油エマルジョンを形成する。水を更に加え、アセトンが外部水相に拡散すると、ポリマーが沈殿してナノ粒子を形成する。
PLA/PEG及びPLGA/PEGの変動は、製造されるナノ粒子の構造を操作することを可能にする。 例えば、低比率はより動的なタイプの粒子を生成するが、より高い比率はより固体状の構造を生成する。より短いPLA又はPLGA鎖長(x≦30)はミセル形成過程を経てナノ粒子形成をもたらしうる一方、より長い鎖長では、集塊-沈殿過程が起こる、Avgoustakis K(Curr Drug Deliv. 2004;1:321-33)。
更に好ましい実施態様では、上記ナノ粒子はゼラチンナノ粒子であり、好ましくは上記ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドである。ゼラチンナノ粒子は、低pHでNa2SO4でのコアセルベーション法によって、Truong-Le VL等 Hum Gene Ther.1998; 9:1709-1717によって記載されているようにして調製され、その粒子はEDCで架橋されるが反応混合物中のトランスフェリンを省く。サイズ300−600nmの粒子がTruong-Le等によって得られた。好ましい実施態様では、上記ナノ粒子はゼラチン-コールアミンナノ粒子である。
更に好ましい実施態様では、上記ナノ粒子はメタクリレート系ハイドロゲルナノ粒子である。このようなナノ粒子の調製並びにISS-NAの吸着は、Jain S.等(Biomacromolecules. 2005;6:2590-600)によって記載され、約500nmのサイズの粒子が得られている。これらのナノ粒子は、Jain S.等によって記載されたようにして、二相微小エマルジョン(miniemulsion)重合プロセスによって調製され、但し卵白アルブミンはプロセスに含まれていない。PEG-メタクリレート、メタクリル酸及びPEG-ジメタクリレートが撹拌下でプルロニック塩溶液に添加される。得られた溶液を40℃に加熱し、相分離及び乳化を生じさせ、重合が過硫酸アンモニウム及びメタ重亜硫酸ナトリウムの添加により開始される。ナノ粒子は遠心分離により単離され、ポリ(L-アルギニン)と続いてISS-NAが疎水性ナノ粒子上に吸着される。
更に好ましい実施態様では、上記ナノ粒子はPLL変性シリカナノ粒子である。ナノ粒子の調製は、Zhu SG.等(Biotechnol Appl Biochem 2004; 39:179-187)によって記載され、20nmのサイズのナノ粒子が得られている。ナノ粒子は、油中水マイクロエマルジョンを使用して調製され、テトラエトキシシランの加水分解及び縮合反応が水酸化アンモニウムで開始される。シリカナノ粒子が、PLLの添加前に炭酸塩バッファー中で活性化され、ISS-NAは洗浄されたPLL-シリカナノ粒子と共に更にインキュベートされる。
好ましい実施態様では、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを有するナノ粒子は、G10オリゴヌクレオチドがパッケージされたQβと同様な形で実施例11に記載された細胞アッセイにおいてBMDCの活性化を誘導し、Qβ-VLP又は20−500nmサイズのポリスチレンビードと同様の動態でマウス足蹠中への皮下注射時にリンパ節に達する(実施例7及び9参照)。G10オリゴヌクレオチドがパッケージされたQβと同様な形でのBMDCの活性化とは、ナノ粒子中のG10オリゴヌクレオチドパッケージの同一用量が、QβにパッケージされたG10オリゴヌクレオチドの同じ用量によって誘導される量の80%、好ましくは60%、より好ましくは50%、40%、30%内でIL-12分泌の最大半量をもたらすことを表すことを意味する。更に好ましい実施態様では、ナノ粒子は実施例に記載されたアレルギーの動物モデルにおいて保護性である。
ナノ粒子の調製方法は、Microparticulate systems for the delivery of proteins and vaccines, S. Cohen及びH. Bernstein編, Marcel Dekker, New York 1996に概説されている。そこに記載されている微小粒子には、ポリエステル微小粒子、ペグ化ポリエステル微小粒子、ポリホスファゼン微小粒子、リポスフィア及びゼラチン微小粒子が含まれる。更なる微小粒子には、アルギネート微小粒子(Aggarwal N.等 Can J Vet Res. 1999;63:148-52)、(キトサン微小粒子(Aral C及びAkbuga J. J Pharm Pharm Sci. 2003;6:321-6;Xu W.等 Vaccine. 2004; 22:3603-12)が含まれる。当該分野でよく知られているように、得られた粒子サイズがナノ粒子の調製に使用されるエマルジョン内の液滴のサイズによって決まるナノ粒子の調製に使用される方法は、微小粒子の調製に容易に適合化させることができ、そこでは、混合、ボルテックス化、高速ホモジナイゼーション工程が、微小粒子が生産されるように変更される。またスプレードライ法が、微小粒子が作製されるように適合化されうる。本発明の実施に有用な微小粒子は、Kumar MNVR (J Pharm Pharmaceut Sci 2000; 3:234-258)に記載された微小粒子をまた含む。
ポリエステルミクロスフィア、特にPLGAミクロスフィアの性質、並びにそれらを製造する方法は、例えばKisselT及びKonebergR(Microparticulate systems for the delivery of proteins and vaccines, S. Cohen及びH. Bernstein編, Marcel Dekker, New York 1996, p.51-87)によって概説され記載されている。これらの方法には、スプレードライ法、水中油中水エマルジョン溶媒蒸発法及び相分離法が含まれる。PLGAを構成するモノマーの好ましいモル比は50モル%LA及び50モル%GAである。モノマーの何れかの割合を増加させると、ポリマーの分解が遅くなる。例えば、85:15のLA:GAの比率を有するポリマーは、50:50の比率のものよりおよそ2.5倍遅い分解速度を有する。よって、PLGAポリマーの性質はモノマーの割合を変えることによって操作することができる。
好ましい実施態様では、リポソームは、標的細胞とのリポソームの相互作用を容易にするために正電荷を示す。ある実施態様では、リポソームは、カチオン性脂質、コリピド(colipid)、及び安定化添加剤を含む。他の実施態様では、リポソームは、ジメチルアミノエタン-カルバモール-コリステロール、及び/又はジオレオイルホスファチジルエタノールアミン、及び/又はポリエチレングリコール誘導体化ホスファチジルエタノールアミンを含む。好ましい実施態様では、リポソームはホスファチジルコリン、及び/又はコレステロール、及び/又はDL-α-トコフェロール、好ましくはホスファチジルコリン、コレステロール、及びDL-α-トコフェロールを含む。このようなリポソームの作製は、例えばBangham等, (1965), J.Mol.Biol., 13, 238-252;Gursel等 (2001), J Immunol 167: 3324;又はLudewig等, (2000), Vaccine, 19, 23-32によく確立されており、その開示は出典明示によりその全体をここに援用する。
更なる実施態様では、上記合成粒子はビロソームであり、好ましくは上記ビロソームはインフルエンザウイルスの再構成されたウイルス外被であり、更に好ましくは上記インフルエンザウイルスはインフルエンザAウイルスであり、また更に好ましくは上記インフルエンザAウイルスはインフルエンザA型/シンガポールウイルスである。カチオン性(正に荷電)脂質を含むビロソームが特に核酸を標的細胞に送達するのに適している。更なる実施態様では、上記合成粒子はビロソームであり、該ビロソームは脂質膜を含み、上記脂質膜はカチオン性脂質を含むか、好ましくはそれから本質的になる。非常に好ましい実施態様では、上記合成粒子はビロソームであり、上記ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドはG10(配列番号27)であり、更に好ましくは、上記ビロソームは脂質膜を含み、該脂質膜はカチオン性脂質を含むか、好ましくはそれから本質的になる。更に好ましい実施態様では、上記ビロソームは脂質膜を含み、該脂質膜は抗体又はその断片を含み、好ましくは該抗体は標的細胞のレセプターと特異的に相互作用する。
本発明の合成粒子、好ましくは微小粒子及びナノ粒子、最も好ましくはナノ粒子は、皮下的、静脈内、皮内、腹腔内に注射され、鼻腔内、経口、経皮的、又は吸入投与されうる。
一実施態様では、上記ウイルス粒子又はVLP、好ましくはVLPは、ウイルスのウイルス粒子又はVLP、好ましくはVLPであり、上記ウイルスは、DNA逆転写ウイルスを含むDNAウイルス又はRNAウイルスでありうる。好ましい実施態様では、上記ウイルスはDNAウイルスであり、該DNAウイルスは一本鎖DNAウイルスであり、該一本鎖DNAウイルスは、好ましくは、(a)パルボウイルス、好ましくはパルボウイルスB19、ブタパルボウイルス(PPV)又はイヌパルボウイルス(CPV)、(b)エリスロウイルス、(c)ディペンドウイルス、(d)ネコ汎血球減少症ウイルス(FPV)とCPVの組換え体(Saliki. T.J.等 (1992) J. Gen. Virol 73:369ff)、(e)アデノ随伴ウイルス2型(AAV-2)、(f)ミンク腸炎パルボウイルス(MEV)、(g)タイワンアヒルパルボウイルス(DPV)、(h)マウス微小ウイルス(MVM)、(i) アリューシャンミンク病パルボウイルス(ADV)、及び(j)ハチノスツヅリガデンソウイルス(GMDNV)からなる群から選択される。
更に好ましい実施態様では、上記ウイルス粒子又はVLPはウイルス粒子又はウイルスのVLPであり、上記ウイルスはバクテリオファージであり、上記バクテリオファージはDNAバクテリオファージ又はRNAバクテリオファージでありうる。
好ましい実施態様では、上記レビウイルス科の代表例は、レビウイルスであり、好ましくは上記レビウイルスは、(a)バクテリオファージBZ13、(b)バクテリオファージGA、(c)バクテリオファージJP34、(d)バクテリオファージKU1、(d)バクテリオファージTH1、(e)バクテリオファージMS2、(f)バクテリオファージf2、(g)バクテリオファージfr、(h)バクテリオファージJP501、(i)バクテリオファージM12、(j)バクテリオファージR17、及び(k)バクテリオファージPP7からなる群から選択される。
更に好ましい実施態様では、上記RNAバクテリオファージは、(a)バクテリオファージBZ13、(b)バクテリオファージGA、(c)バクテリオファージJP34、(d)バクテリオファージKU1、(d)バクテリオファージTH1、(e)バクテリオファージMS2、(f)バクテリオファージf2、(g)バクテリオファージfr、(h)バクテリオファージJP501、(i)バクテリオファージM12、(j)バクテリオファージR17、(k)バクテリオファージPP7、(l)バクテリオファージFI、(m)バクテリオファージID2、(n)バクテリオファージNL95、(o)バクテリオファージSP、(p)バクテリオファージTW28、(q)バクテリオファージQβ、(r)バクテリオファージM11、(s)バクテリオファージMX1、(t)バクテリオファージST、(u)バクテリオファージTW18、及び(v)バクテリオファージVKからなる群から選択される。更に好ましい実施態様では、上記RNAバクテリオファージは、(a)バクテリオファージQβ、(b)バクテリオファージR17、(c)バクテリオファージfr、(d)バクテリオファージGA、(e)バクテリオファージSP、(f)バクテリオファージMS2、(g)バクテリオファージM11、(h)バクテリオファージMX1、(i)バクテリオファージNL95、(k)バクテリオファージf2、(l)バクテリオファージPP7、及び(m)バクテリオファージAP205からなる群から選択される。
好ましい実施態様では、上記粒子はバクテリオファージのウイルス粒子であり、好ましくは上記バクテリオファージはRNAバクテリオファージであり、更に好ましくは上記RNAバクテリオファージは一本鎖ポジティブセンスRNAバクテリオファージであり、更により好ましくは上記一本鎖ポジティブセンスRNAバクテリオファージは、(a)バクテリオファージQβ、(b)バクテリオファージfr、(c)バクテリオファージGA、及び(d)バクテリオファージAP205から選択される一本鎖ポジティブセンスRNAウイルスであり、最も好ましくは上記一本鎖ポジティブセンスRNAバクテリオファージはQβである。
非常に好ましい実施態様では、上記粒子はVLP、好ましくはRNAウイルスのVLP、より好ましくは一本鎖ポジティブセンスRNAウイルスのVLP、最も好ましくはRNAバクテリオファージのVLPである。
更に好ましい実施態様では、上記粒子はバクテリオファージのVLP、より好ましくはエンテロバクテリオファージのVLP、更により好ましくはレビウイルス科の代表例のVLP,最も好ましくはレビウイルス又はアロレビウイルスのVLPである。非常に好ましい実施態様では、上記VLPはアロレビウイルスのVLPである。
更に好ましい実施態様では、VLPは組換えVLPである。宿主中においてコートタンパク質を組換え的に発現することによるVLPの調製は当業者の技術常識の範囲内である。そのコート又はカプシドタンパク質をVLPの調製に使用することができる例示的なDNA又はRNAウイルスは国際公開第2004/009124号の25頁10−21行、26頁11−28行、28頁4行から31頁4行に開示されている。これらの開示は出典明示によりここに援用する。
好適な一実施態様では、上記VLPは、ウイルスの組換えタンパク質、その変異体又は断片を含むか、あるいはそれからなり、好ましくは上記ウイルスは上に列挙した任意のウイルスから選択される。非常に好ましい実施態様では、上記VLPは、ウイルスの組換えタンパク質、その変異体又は断片を含むか、あるいはそれからなり、上記ウイルスは、(a)RNAバクテリオファージ;(b)バクテリオファージ、(c)B型肝炎ウイルス、好ましくはそのカプシドタンパク質(Ulrich, 等, Virus Res. 50: 141-182 (1998))又はその表面タンパク質(国際公開第92/11291号)、(d)はしかウイルス(Warnes等, Gene 160:173-178 (1995))、(e)シンドビスウイルス;(f)ロタウイルス(米国特許第5071651号及び米国特許第5374426号)、(g)口蹄疫ウイルス(Twomey 等, Vaccine 13:1603 1610, (1995))、(h)ノーウォークウイルス(Jiang, X.等, Science 250:1580 1583 (1990);Matsui, S.M.等, J. Clin. Invest. 87:1456 1461 (1991))、(i)アルファウイルス属、(j)レトロウイルス、好ましくはそのGAGタンパク質(国際公開第96/30523号)、(k)レトロトランスポゾンTy、好ましくはタンパク質p1;(l)ヒトパピローマウイルス(国際公開第98/15631号)、(m)ポリオーマウイルス、(n)タバコモザイク病ウイルス、及び(o)Flockハウスウイルスからなる群から選択される。非常に好ましい実施態様では、上記VLPは、ウイルスの組換えタンパク質、その変異体又は断片を含むか、あるいはそれからなり、上記ウイルスは、(a)B型肝炎ウイルス、及び(b)ポリオーマウイルスからなる群から選択される。
好ましい一実施態様では、VLPは、組換えタンパク質、その変異体又は断片の一より多いアミノ酸配列、好ましくは二つのアミノ酸配列を含むか、あるいはそれからなる。一を越えるアミノ酸配列を含むか、又はそれからなるVLPは、本出願では、モザイクVLPと呼ばれる。
「組換えタンパク質の断片」又は「コートタンパク質の断片」なる用語は、上で定義された「組換えタンパク質の断片」又は「コートタンパク質の断片」のそれぞれと、少なくとも80%、好ましくは90%、更により好ましくは95%のアミノ酸配列同一性を有し、好ましくはウイルス様粒子内に集合化することができるポリペプチドを更に包含する。
好適な一実施態様では、本発明のVLPはB型肝炎ウイルスのVLPである。B型肝炎ウイルス様粒子の調製は、特に国際公開第00/32227号、同第01/85208号、同第01/056905号及び同第2004/000351号に開示されている。これら4つすべての文献は出典明示により明示的にここに援用される。本発明の実施に使用するのに適したHBcAgの他の変異体は、国際公開第01/056905号の34−39頁に開示されている。特に好ましいB型肝炎ウイルスVLPは国際公開第2004/000351号の43頁、12行から49頁、8行と、国際公開第2004/000351号の配列番号19−68、71及び97に記載されている。本発明の更に好ましい一実施態様では、リジン残基がHBcAgポリペプチドに導入される。好ましい実施態様では、本発明のVLP及び組成物は、配列番号1のアミノ酸1−144又は1−149、1−185を含むか、あるいはこれからなるHBcAgを用いて調製され、このアミノ酸は、79番目と80番目のアミノ酸がGly-Gly-Lys-Gly-Gly(配列番号24)のアミノ酸配列を有するペプチドに置き換えられるように修飾されている。この修飾により配列番号1から配列番号2に変化する。更なる好ましい実施態様では、配列番号2の48番目と110番目のシステイン残基、又はその対応する断片、好ましくは1−144又は1−149がセリンに変異される。本発明は、上記の対応するアミノ酸変異を有するB型肝炎コアタンパク質変異を含有する組成物を更に含む。本発明は、配列番号2と少なくとも80%、85%、90%、95%、97%又は99%の同一性であるアミノ酸配列を含むか、あるいはこれからなるHBcAgポリペプチドを含む組成物及び薬学的組成物をそれぞれ含む。
本発明の好適な一実施態様では、VLPは、RNAバクテリオファージのコートタンパク質、その変異体又は断片の一を越えるアミノ酸配列、好ましくは2つのアミノ酸配列を含むか、あるいはそれらからなるモザイクVLPである。
一実施態様では、ウイルス粒子又はVLPはバクテリオファージfr又はGAのVLPである。組換えVLPの形態のfrコートタンパク質はPushko P等((1993) Prot Engin 6:883-891)によって記載されているようにして得ることができ、GA VLPは、例えば国際公開第2004/007538号に記載されているGAファージからpQb185への逆転写によって単離されたGAコートタンパク質cDNAをクローニングすることによって得ることができる。Fr及びGA VLPの分解は、0.1Mの濃度で酢酸が補填されていてもよい7Mの尿素中でVLPをインキュベートすることによって直ぐになすことができる。核酸は、核酸が保持されながらコートタンパク質の有意な量が流れるpHか、又はコートタンパク質がまたカラムに吸着され続いて塩勾配で溶離されるpHで、イオン交換クロマトグラフィーによってコートタンパク質から更に精製される。ISS-NAとのfr及びGAコートタンパク質の組立は、本質的には国際公開第2003/024481号に記載されているようにして、ゆっくりした透析によって実施され、ここで、上記ISS-NAは好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド、より好ましくはG10(配列番号27)、更により好ましくは実施例2に記載したHPLC条件下でQβカプシド標準に対して80から120%、最も好ましくは80から95%の保持時間を有する凝集G10(配列番号27)である。再構築反応の終わりに、再構築混合物は、例えばNETバッファー中の50%(v/v)グリセロール溶液に対する透析(国際公開第2003/024481号)によって濃縮され、例えばセファロースCL-4Bカラムでのゲル濾過法によって更に精製される。更なる精製法には、CsCl勾配又はスクロースクッションでの超遠心が含まれる。Fr及びGA VLPの分解及び組立のための更なるプロトコルは本願の実施例5及び6に開示されている。
本発明の好適な実施態様では、本発明のウイルス様粒子は、RNA-バクテリオファージQβ、fr、AP205又はGAの組換えコートタンパク質、その変異体又は断片を含むか、又はそれらから本質的になるか、又はそれらからなる。
好適な一実施態様では、本発明のVLPはRNAバクテリオファージQβのVLPである。Qβのカプシド又はウイルス様粒子は、直径25nmで、T=3の疑似対称体の、正二十面体ファージ様カプシド構造を示す。カプシドは、ジスルフィド架橋により共有結合性の五量体及び六量体で結合して(Golmohammadi, R等, Structure 4:543-5554(1996))、際だって安定したQβカプシドとなるコートタンパク質の180のコピーを含む。しかしながら、組換えQβコートタンパク質から作製されるカプシド又はVLPは、カプシド内の他のサブユニットへ、ジスルフィド結合を介して結合していないか、又は不完全に結合するサブユニットを含んでいてもよい。
他の好適な実施態様では、本発明のVLPは、RNAバクテリオファージAP205のVLPである。アミノ酸5のプロリンがスレオニンに置換しているAP205コートタンパク質を含む、AP205VLPの集合体コンピテント変異体型をまた本発明の実施に使用してもよく、本発明の他の好ましい実施態様となる。国際公開第2004/007538号の特に実施例1及び実施例2には、AP205コートタンパク質を含むVLPの取得方法、とりわけその発現と精製について記載されている。国際公開第2004/007538号は出典明示によってここに援用される。更に好ましい実施態様では、上記ウイルス粒子又はVLPはRNAバクテリオファージAP205のウイルス粒子又はVLPであり、上記ISS-NAは好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド、より好ましくはG10(配列番号27)、更により好ましくは実施例2に記載したHPLC条件下でQβカプシド標準に対して80から120%、最も好ましくは80から95%の保持時間を有する凝集G10(配列番号27)である。
更に好ましい実施態様では、上記ウイルス粒子又はVLPはRNAバクテリオファージQβのウイルス粒子又はVLPであり、上記ISS-NAは好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド、より好ましくはG10(配列番号27)、更により好ましくは実施例2に記載したHPLC条件下でQβカプシド標準に対して80から120%、最も好ましくは80から95%の保持時間を有する凝集G10(配列番号27)である。QβVLPの分解及び組立は実施例1及び3に実証されている。
更にRNAバクテリオファージコートタンパク質はまた細菌宿主内で発現すると自己集合体化することが示されている(Kastelein, RA.等, Gene 23:245-254 (1983)、Kozlovskaya, TM.等, Dokl. Akad. Nauk SSSR 287:452-455 (1986)、Adhin, MR.等, Virology 170:238-242 (1989)、Priano, C.等, J. Mol. Biol. 249:283-297 (1995))。特に、GA (Ni, CZ.,等, Protein Sci. 5: 2485-2493 (1996)、Tars, K等, J. Mol.Biol. 271:759-773(1997))及びfr (Pushko P. 等, Prot. Eng. 6: 883-891 (1993)、Liljas, L等 J Mol. Biol. 244:279-290, (1994))の生物学的及び生化学的性質は開示されている。幾つかのRNAバクテリオファージの結晶構造が決定されている(Golmohammadi, R.等, Structure 4:543-554 (1996))。
他の実施態様では、上記ISS-NAはオリゴヌクレオチドであり、上記オリゴヌクレオチドは好ましくは、(a)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド;及び(b)非メチル化CpGモチーフを含まないオリゴヌクレオチドからなる群から選択される。好ましくは、上記ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドである。特異的フランキング塩基内の非メチル化CpG-ジヌクレオチド(CpGモチーフと呼ぶ)は免疫応答を亢進する微生物成分の重要なメンバーを表す。Toll様レセプター9(TLR9)は、細菌DNAによって、特に非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドによって活性化される。一般に、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、配列:5’X1X2CGX3X4 3’を含み、ここでX1、X2、X3及びX4は任意のヌクレオチドである。好ましい非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、更に、約6から約100000ヌクレオチド、より好ましくは、約6から約2000ヌクレオチド、更により好ましくは約20から約2000ヌクレオチド、更により好ましくは約20から約300のヌクレオチドを含む。更に好ましい非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、100から約2000ヌクレオチド、好ましくは100から約1000ヌクレオチド、より好ましくは100から約500ヌクレオチドを含む。本発明において、特に好ましいオリゴヌクレオチド、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは20から40、好ましくは26、27、28、29、30、31又は32ヌクレオチド、最も好ましくは30ヌクレオチドを含む。
CpG含有オリゴヌクレオチドはまた組換え、ゲノム、合成、cDNA、プラスミド由来、及び一本鎖又は二本鎖でありうる。本発明での使用に対して、核酸は当該分野でよく知られている多くの手順の何れかを使用して新規合成することができる。例えば、b-シアノエチルホスホラミダイト法(Beaucage, S. L.,及びCaruthers, M. H., Tet. Let. 22:1859 (1981);ヌクレオシドH-ホスホネート法(Garegg等, Tet. Let. 27:4051-4054 (1986);Froehler等., Nucl. Acid. Res. 14:5399-5407 (1986);Garegg等, Tet. Let. 27:4055-4058 (1986), Gaffney等, Tet. Let. 29:2619-2622 (1988))である。これらの化学は市場で入手できる様々な自動オリゴヌクレオチド合成機によって実施することができる。あるいは、CpGは、患者への投与後にオリゴヌクレオチドに分解するプラスミド中で大規模に製造することができる(Sambrook, T.等 “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” Cold Spring Harbor laboratory Press, New York, 1989参照)。オリゴヌクレオチドは、制限酵素、エキソヌクレアーゼ又はエンドヌクレアーゼを用いるもののような既知の技術を使用して既存の核酸配列(例えばゲノム又はcDNA)から調製することができる。
一実施態様では、ISS-NA、好ましくは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、粒子、好ましくは上記VLPに、結合部位、好ましくは(a)オリゴヌクレオチド結合部位(天然に生じるか又は非天然のもの)、(b)DNA結合部位、及び(c)RNA結合部位から選択される結合部位にて結合される。他の実施態様では、VLP結合部位はアルギニンリッチリピート又はリジンリッチリピートを含む。
好ましい実施態様では、上記ISS-NAはA型CpG又はC型CpGである。好ましくは、上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドはA型CpGであり、好ましくはヌクレオチドは専らホスホジエステル結合によって結合している。更に好ましい実施態様では、上記ISS-NAはパリンドローム配列を含むA型CpGであり、好ましくは上記パリンドローム配列は、(a)GACGTC(配列番号35)、(b)AGCGCT(配列番号36)、(c)AACGTT(配列番号37)、(d)ATCGAT(配列番号38);(e)CGATCG(配列番号39);(f)CGTACG(配列番号40);(g)CGCGCG(配列番号41);(h)GCGCGC(配列番号42);(i)TCGCGA(配列番号43);(j)ACGATCGT(配列番号44);(k)CGACGATCGTCG(配列番号45);(l)CGACGACGATCGTCGTCG(配列番号46);(m)GACGATCGTC(配列番号28),(n)CGACGACGATCGTCGTCG(配列番号47);(o)AACGTT(配列番号48);(p)CAACGTTG(配列番号49);(q)ACAACGTTGT(配列番号50);(r)AACAACGTTGTT(配列番号51);及び(s)CAACAACGTTGTTG(配列番号52)からなる群から選択される。更に好ましい実施態様では、上記ISS-NAははパリンドローム配列を含むA型CpGであり、該パリンドローム配列は、GACGATCGTC(配列番号28)である。
特に好ましい実施態様では、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、「G10」(配列番号27)を含むか、あるいはそれらから本質的になるか、あるいはそれらからなり、好ましくは上記G10は専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなり、更に好ましくは、上記G10は、実施例2に記載したHPLC条件下でQβカプシド標準に対して80から120%、最も好ましくは80から95%の保持時間を有する凝集G10である。
更に特に好ましい実施態様では、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、「G9-9」(配列番号26)を含むか、あるいはそれらから本質的になるか、あるいはそれらからなる。更に特に好ましい実施態様では、非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、「G8-8」(配列番号25)を含むか、あるいはそれらから本質的になるか、あるいはそれらからなる。
本発明の更に好ましい実施態様では、ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、該非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドのCpGモチーフはパリンドローム配列の一部であり、該パリンドローム配列はGACGATCGTC(配列番号28)であり、該パリンドローム配列には、その5’末端に少なくとも4で多くとも9のグアノシン体が隣接し、また 該パリンドローム配列には、その3’末端に少なくとも6で多くとも9のグアノシン体が隣接する。
本発明の他の好ましい実施態様では、ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、該非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドのCpGモチーフはパリンドローム配列の一部であり、該非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは、(a)“G4−6”GGGGGACGATCGTCGGGGGG(配列番号30);(b)“G5−6”GGGGGGACGATCGTCGGGGGG(配列番号31);(c)「G6−6」GGGGGGGACGATCGTCGGGGGG(配列番号32);(d)「G7−7」GGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGG(配列番号33);(e)「G8−8」GGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGG(配列番号25);及び(f)「G9−9」GGGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGGG(配列番号26)から選択される核酸配列を有する。
実験データは、上記ISS-NA、好ましくはグアノシンが隣接したパリンドローム性の非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであって、パリンドローム配列がGACGATCGTC(配列番号28)で、該パリンドローム配列には、その3’末端と5’末端に10未満のグアノシン体が隣接したものを、粒子、好ましくはVLP中にパッケージする容易さが、パリンドローム配列に更に少ないグアノシン体が隣接する場合に増加することを示している。しかしながら、パリンドローム配列に隣接するグアノシン体の数を減少させると、インビトロでの血球細胞の刺激を減少させる。従って、パッケージ性は、示された発明の免疫賦活性物質の生物学的活性の減少によって賄われる。よって、好ましい実施態様はパッケージ性と生物学的活性の折衷である。
本発明の非常に好ましい実施態様では、ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドのCpGモチーフはパリンドローム配列の一部であり、上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは配列番号25(G8-8)の核酸配列を有している。
上で述べたように、VLP中へのパッケージ化に使用される最適な配列はパッケージ性と生物学的活性の折衷である。このことを考慮に入れると、G8-8免疫賦活性物質は、なお合理的に良好にパッケージ化されていながら生物学的に高い活性を有するので、本発明の更なる非常に好ましい実施態様である。
好ましい実施態様では、上記過敏症は、(a)喘息、(b)鼻炎、(c)結膜炎、(d)骨結膜炎、(e)皮膚炎、(f)蕁麻疹、及び(g)アナフィラキシーからなる群から選択される。
更に好ましい実施態様では、上記過敏症はアレルギーであり、上記アレルギーは好ましくはIgE依存性アレルギー及び非IgE依存性アレルギーから選択される。好ましい実施態様では、上記過敏症は喘息、好ましくはIgE依存性喘息であり、ここで、上記喘息は間欠又は慢性喘息でありうる。非常に好ましい実施態様では、上記過敏症はアトピー性喘息である。
更に好ましい実施態様では、上記過敏症は皮膚炎、好ましくは湿疹、最も好ましくはアトピー性湿疹である。
非常に好ましい実施態様では、上記過敏症はIgE依存性アレルギー(I型アレルギー)であり、好ましくは上記IgE依存性アレルギーは天然に生じるアレルゲン、つまり花粉、獣皮、ハウスダスト、チリダニ等のような天然源に生じるアレルゲンに対するIgE依存性アレルギーである。
好ましい実施態様では、上記アレルギー、好ましくはIgE依存性アレルギーは、(a)花粉アレルギー(花粉症)、(b)ハウスダストアレルギー、(c)食物アレルギー、(d)薬物アレルギー、(e)昆虫毒アレルギー、好ましくは蜂毒アレルギー、及び(f)動物アレルギー、好ましくはネコアレルギーからなる群から選択される。
更に好ましい実施態様では、上記アレルギー、好ましくは上記IgE依存性アレルギーは、ネコアレルゲンに対するアレルギー、好ましくはFelD1抗原に対するアレルギーである。更に好ましい実施態様では、上記アレルギー、好ましくは上記IgE依存性アレルギーは、チリダニに対するアレルギーであり、好ましくは上記チリダニは、(a)ヤケヒョウヒダニ、(b)コナヒョウヒダニ、(c)デルマトフィルス・ミクロセラス(D. microceras)、(d)ユーログリファス・マイネイ(Euroglyphus maynei)、(e)Glycyphagus sp.、(f)キナコダニ、(g)ネッタイタマニクダニから選択される。
更に好ましい実施態様では、上記アレルギー、好ましくは上記IgE依存性アレルギーは、花粉アレルギー(花粉症)である。更に好ましい実施態様では、上記アレルギー、好ましくは上記IgE依存性アレルギーはハウスダストアレルギー、好ましくはハウスダストに含まれるチリダニアレルゲンに対するIgE依存性アレルギーであり、上記チリダニアレルゲンは好ましくは(a)Der p 1;(b)Der f 2;及び(c)DerP 2からなる群から選択される。
従って、本発明の好ましい実施態様は、動物、好ましくは哺乳動物、最も好ましくはヒトにおける過敏症を治療し又は予防する方法に使用される組成物であり、該組成物はVLPと非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含有し、上記VLPに上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがパッケージされている。
本発明の更に好ましい実施態様は、ヒトにおけるアレルギーを治療し又は予防する方法に使用される組成物であり、該組成物はRNAバクテリオファージのVLPと非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含み、上記RNAバクテリオファージのVLPに上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがパッケージされ、好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがG10(配列番号27)である。
本発明の非常に好ましい実施態様は、ヒトにおけるアレルギーを治療し又は予防する方法に使用される組成物であり、該組成物はRNAバクテリオファージQβのVLPと非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドG10(配列番号27)を含有し、上記RNAバクテリオファージQβのVLPに上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドG10がパッケージされている。
本発明は、動物における過敏症の治療方法に使用される組成物を製造する方法を提供し、該組成物はVLPと非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含有し、上記VLPには上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがパッケージされ、上記方法は(i)上記VLP(a)を上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)と共にインキュベートし、(ii)RNエースを添加し;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。他の好ましい実施態様では、上記RNエースはRNエースAである。
更に好ましい実施態様では、上記方法は、(i)上記VLPをRNエースと共にインキュベートし、(ii)上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチを添加し;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。他の好ましい実施態様では、上記RNエースはRNエースAである。
更に好ましい実施態様では、上記方法は、(i)上記VLPの核酸を加水分解可能な金属イオンを含む溶液中で上記VLPをインキュベートし;(ii)上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加え;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含み、好ましくは工程(i)の上記金属イオンは、(a)亜鉛(Zn)イオン;(b)銅(Cu)イオン;(c)鉄(Fe)イオン;(d)(a)、(b)及び/又は(c)の少なくとも一つのイオンの任意の混合物からなる群から選択される。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。
更に好ましい実施態様では、上記方法は、(i)上記VLPの核酸を加水分解可能な金属イオンを含む溶液と共に上記VLPをインキュベートし;(ii)上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加え;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含み、好ましくは工程(i)の上記金属イオンは、(a)亜鉛(Zn)イオン;(b)銅(Cu)イオン;(c)鉄(Fe)イオン;(d)(a)、(b)及び/又は(c)の少なくとも一つのイオンの任意の混合物からなる群から選択される。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。
更に好ましい実施態様では、上記方法は、(i)上記VLPをアルカリ性条件下、好ましくはNaOHの存在下、最も好ましくは約25mMのNaOHの存在下でインキュベートし;(ii)上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを加え;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む。
上述の本発明の組成物の製造方法は上記VLPの代わりにウイルス粒子を使用して実施することもまたでき、該ウイルス粒子は、好ましくは、バクテリオファージ、好ましくはRNAバクテリオファージのウイルス粒子である。
特に、本発明は動物における過敏症を治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物は、(i)VLPを非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドと共にインキュベートし;(ii)RNエースを添加し;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができる。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。他の好ましい実施態様では、上記RNエースはTNエースAである。
本発明は更に動物における過敏症を治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物は、(i)VLPをRNエースと共にインキュベートし;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを添加し;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができる。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。他の好ましい実施態様では、上記RNエースはTNエースAである。
本発明は更に動物における過敏症を治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物は、(i)VLPを、該VLPの核酸を加水分解可能な金属イオンを含む溶液と共にインキュベートし;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを添加し;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができ、好ましくは工程(i)の上記金属イオンは、(a)亜鉛(Zn)イオン;(b)銅(Cu)イオン;(c)鉄(Fe)イオン;(d)(a)、(b)及び/又は(c)の少なくとも一つのイオンの任意の混合物からなる群から選択される。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。
本発明は更に動物における過敏症を治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物は、(i)VLPを、該VLPの核酸を加水分解可能な金属イオンを含む溶液と共にインキュベートし;(ii)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを添加し;及び(iii)上記組成物を精製する工程を含む方法によって得ることができ、好ましくは工程(i)の上記金属イオンは、(a)亜鉛(Zn)イオン;(b)銅(Cu)イオン;(c)鉄(Fe)イオン;(d)マグネシウム(Mg)イオン;及び(e)(a)、(b)、(c)及び/又は(d)の少なくとも一つのイオンの任意の混合物からなる群から選択される。好ましい実施態様では、上記VLPは細菌発現系において産生される。
本発明は更に医薬として使用される組成物を提供し、該組成物は本発明の方法の何れか一つによって得ることができ、上記組成物は粒子とISS-NAを含み、上記粒子には上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドがパッケージされ、上記粒子は好ましくはRNAバクテリオファージ、最も好ましくはRNAバクテリオファージQβのVLPであり、好ましくは上記ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは好ましくは専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなり、更に好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは配列番号28のパリンドローム配列を含み、最も好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドはG10(配列番号27)である。
本発明は更に動物における過敏症、好ましくはアレルギー、最も好ましくはアトピー性喘息、アトピー性湿疹、花粉アレルギー、ハウスダスト又はチリダニアレルギーを治療する方法に使用される組成物を提供し、該組成物は本発明の方法の何れか一つによって得ることができ、上記組成物は(a)VLPと(b)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含み、上記ウイルス様粒子(a)には上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)がパッケージされ、上記VLPは好ましくはRNAバクテリオファージ、最も好ましくはRNAバクテリオファージQβのVLPであり、上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは好ましくは専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなり、更に好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは配列番号28のパリンドローム配列を含み、最も好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドはG10(配列番号27)である。
本発明はまた動物における過敏症を治療し、予防し及び/又は減弱する方法に使用される薬学的組成物を提供する。本発明の薬学的組成物は、免疫学的に有効な量の本発明組成物を薬学的に許容可能な希釈剤、担体又は賦形剤と共に含有し、あるいはそれらからなる。薬学的組成物はまたアジュバントを含有していてもよい。
更なる実施態様では、上記薬学的組成物は本発明の組成物の徐放製剤を含む。徐放製剤は当該分野でよく知られている。典型的で好ましい徐放製剤は、微小粒子、エマルジョン、及びゲルとして製剤された本発明の組成物である。
一実施態様では、本発明はアトピー性湿疹を治療し又は予防するための薬学的組成物を提供する。他の実施態様では、本発明は喘息を治療し又は予防するための薬学的組成物を提供する。他の実施態様では、本発明はIgE依存性アレルギー(I型アレルギー)、好ましくは花粉アレルギー、ハウスダスト又はチリダストアレルギーを治療し又は予防するための薬学的組成物を提供する。
様々なアジュバントが宿主の種に応じて免疫学的応答を増加させるために使用され得、限定するものではないが、フロイント(完全及び不完全)、ミネラルゲル、例えば水酸化アルミニウム、界面活性剤、例えばリゾレシチン、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、油性エマルジョン、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、及び潜在的に有用なヒトアジュバント、例えばBCC(カルメット・ゲラン桿菌)及びコリネバクテリウム・パルバムが含まれる。このようなアジュバントはまた当該分野でよく知られている。 本発明の組成物と共に投与することができる更なるアジュバントには、限定されるものではないが、モノホスホリル脂質免疫調節物質、AdjuVax100a、QS−21、QS−18、CRL1005、アルミニウム塩(Alum)、MF−59、OM−174、OM−197、OM−294、イソマトリックス(isomatrix)、及びビロソームアジュバント技術が含まれる。アジュバントはまたこれらの物質の混合物を含みうる。
南アフリカの木Quillaja(キラヤ)Saponaria Molinaの樹皮から得られたアジュバント活性を有する免疫学的に活性なサポニン画分は当該分野で知られている。例えばQA21としても知られているQS21はQuillaja Saponaria Molinaの木からのHplc精製画分であり、その製造方法は(QA21として)米国特許第5057540号に開示されている。キラヤサポニンはまたScott等, Int. Archs. Allergy Appl. Immun., 1985, 77, 409によってアジュバントとして開示されている。モノホスホリル脂質Aとその誘導体は当該分野で知られている。好ましい誘導体は3デ-O-アシル化モノホスホリル脂質Aであり、英国特許第2220211号から知られている。更に好ましいアジュバントは、その開示を出典明示によりここに援用する国際公開第00/00462号に記載されている。
本発明の組成物は、当該分野で知られている様々な方法によって投与することができる。選択される特定の形式は、選択される特定の組成物、治療される症状の重篤度、及び治療効果に必要とされる用量に当然ながら依存する。本発明の方法は、一般的に述べると、臨床上許容されない副作用を引き起こさずに有効レベルの活性化合物を生じる任意の形態を意味する、医学的に許容される投与形式の任意のものを使用して実施することができる。このような投与形式には、経口、直腸、非経口、大槽内、膣内、腹膜内、局所(粉末、軟膏、滴下剤又は経皮パッチによって)、頬投与、あるいは経口又は点鼻薬としての投与がある。ここで使用される「非経口的」なる用語は、静脈内、筋肉内、腹膜内、胸骨内、皮下及び関節内注射及び注入を含む投与形式を指す。本発明の組成物は、リンパ節に直接注射することもできる。微小粒子を含む組成物は好ましくは皮下、静脈内、皮内、腹腔内に注射され、鼻腔内、経口、経皮又は吸入投与される。
用量レベルは、投与形式、患者の性質、及び担体/アジュバント製剤の質に依存する。典型的な量は、患者当たり約0.001μgから約20mgの範囲内である。好ましい量は、一回の投与当たり50μgから1000μg、より好ましくは100μgから600μg、最も好ましくは300μgの本発明の組成物である。少なくとも約10μg〜約500μgである。被験者を免疫化するために多重投与が好ましく、プロトコルは、問題の被験者に適合させた当分野の標準的なものである。更に好ましい量は、一患者当たり少なくとも約50μgから約500μg、最も好ましくは一患者当たり300μgである。患者を治療するためには複数回の投与が好ましく、プロトコルは当該患者に適合させた当該分野で標準的なものである。上記組成物又は上記薬学的組成物の投与は、数回、好ましくは少なくとも3回から10回、最も好ましくは3回から5回、毎週、毎月又は毎年の間隔で、好ましくは約1週間から約1ヶ月、より好ましくは2週間に一回、最も好ましくは毎週の間隔で繰り返される。非常に好ましい実施態様では、上記組成物又は上記薬学的組成物の投与は毎週間隔で6回繰り返され、好ましくはそれぞれの場合に50μgから約500μg、最も好ましくは約300μgが投与される。
経口投与に適した組成物は、カプセル、錠剤又はトローチ剤などの、分離した単位として提供でき、それぞれが予め定まった量の本発明の組成物を含む。他の組成物には、水性液体又は非水性液体に懸濁させた懸濁液、例えばシロップ、エリキシル剤又はエマルジョンなどがある。
他の送達系は、時間放出、遅延放出又は徐放送達系を含みうる。このような系によって、上述の本発明の組成物の繰返し投与を避けることができ、患者及び医師に対する利便性が高まる。多くのタイプの放出送達系が利用可能であり、当業者に知られている。
本発明の好ましい実施態様は、動物におけるアレルギーの治療方法であり、上記方法は、(a)VLP;及び(b)非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドを含有する組成物を上記動物に導入することを含み、上記ウイルス様粒子(a)には上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)がパッケージされ、上記アレルギーが好ましくはアトピー性湿疹、喘息又はI型アレルギー、好ましくは花粉アレルギー(花粉症)であり、更に上記VLPはRNAバクテリオファージ、好ましくはRNAバクテリオファージQβのVLPであり、好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチド(b)は専らホスホジエステル結合ヌクレオチド、最も好ましくは配列番号27からなる。
本発明の好ましい実施態様は、動物における過敏症の治療のための医薬の製造における、粒子とISS-NAを含有し、該粒子に上記ISS-NAがパッケージされた組成物の使用であり、過敏症は、(a)アトピー性湿疹;(b)アトピー性喘息;及び(c)IgE依存性アレルギー(I型アレルギー)、好ましくは花粉アレルギー(花粉症)からなる群から好ましくは選択され、更に好ましくは、上記粒子は、RNAバクテリオファージ、好ましくはRNAバクテリオファージQβのVLPであり、好ましくは上記ISS-NAは非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなり、より好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは配列番号28のパリンドローム配列を含み、最も好ましくは上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドはG10(配列番号27)である。
上記粒子がバクテリオファージQβのVLPであり、上記ISS-NAが非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドG10(配列番号27)である全ての側面と実施態様において、特に本発明の全ての組成物、方法、プロセス及び使用において、バクテリオファージQβの上記VLPは好ましくは本質的に配列番号3のアミノ酸配列を有するコートタンパク質からなり、更に好ましくは、上記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドは専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなる。
ここで言及される全ての特許、特許出願及び文献は明示的に出典明示によりその全体を援用する。
AP205VLP及びQbVLP中へのCpG-DNA1668のパッケージ化の実施例
細菌で産生させたVLPは、自己組織化に無作為にVLP中にパッケージ化された高レベルの一本鎖RNAを含んでおり、これは、RNA/DNA又はタンパク質の検出のために臭化エチジウム又はクーマシーブルーで染色された1%アガロースゲルで可視化できる。RNAは、RNエースAを用いた消化によって、CpG DNAのパッケージ化の前にVLPから除去されなければならない。従って、20mMのHEPES,pH7.4中の1mg/mlのVLPを300μgのRNエースAと共に37℃で3時間、インキュベートした。RNエースA(及び加水分解したRNA)の除去のために、VLPを、100'000又は300'000MWカットオフ膜を使用して20mMのHEPESに対して2−3日透析した。ついで、空になったVLPにCpG-オリゴヌクレオチド1668-CpG(TCCATGACGTTCCTGAATAAT,配列番号80)を補填し、これを100nmolのCpGを用いてホスホロチオエート骨格によって保護し(1mlのVLP(20mMのHEPES,pH7.4中に1mg/ml,2mMのMgCl2)、37℃で3時間のインキュベーション中に粒子内に自由拡散させた。CpGオリゴヌクレオチド含有VLPをVLPを、300'000MWカットオフ膜を使用してタンジェンシャルフロー濾過を介して未結合CpG-オリゴヌクレオチドから精製した。臭化エチジウム又はクーマシーブルーで染色された1%のアガロースゲルはRNAの除去に続くCpGのVLP中へのパッケージ化を可視化させ、未結合のCpGの除去を証明した。
オリゴヌクレオチドG10(配列番号27)の脱凝集及び凝集と凝集状態の分析
脱凝集(10.0mlスケール,260μMのG10,25mMのNaOH,50℃,70分):
45.91mgのG10を15mlの試験管中に計量した。粉末を11.0mlの精製水(c=325.3μM;光度計で検出)に溶解させた。8.0mlのオリゴヌクレオチド溶液を、250μlの1MのNaOH及び1.75mlの精製水と15mlの試験管中において(260μMのG10,25mMのNaOH)混合した。水浴中にて混合物を50℃で70分間、脱凝縮させた。氷で溶液を冷却した後、0.5MのHClを用いてpHをpH5.31まで調節し;540μlの0.5MのHClと5μlの1MのNaOHを加えた。
7.1mlの脱凝縮G10溶液、2.13mlの精製水及び770μlの3MのNaClを15mlの試験管中で混合した(175μMオリゴ,250mMのNa+)。混合物を水浴中にて85℃で9分間、インキュベートした。溶液を氷/水浴で冷却し、使用するまで氷上に保存した。凝集オリゴヌクレオチド溶液は調製から3時間以内に使用されなければならない。
340nmでの吸収によって補正した260nmでの紫外線吸収によってG10を定量した。1A260−340=27.8μg/ml。
凝集状態の分析:
G10の凝集状態を、標準としてQβカプシドを使用し、次の条件を使用するHPLCによって分析した。
カラム: TSKge l5000PWXL 7.8mm×30.0cm
(ロット:5PWX06GNMH3304,Art:08023, Tosoh Bioscience)
溶出剤: PBS pH7.2
注入体積: 40.0μl
流量: 0.8ml/分
勾配: 均一濃度
遂行時間: 20分
波長: 215,260及び280nm,
260nmでデータ評価
カラムオーブン温度: 25℃
オートサンプラー温度: 8℃
脱凝集G10は138%の相対保持時間を示した(136.9−140.3%;n=5)。上に記載した脱凝集/凝集処理を受けていないG10調製物は同じ範囲での相対保持時間を示す。脱凝縮及び凝縮後、G10の相対保持時間は118%であることが分かった。
QβVLPの分解:
PBS(20mMのホスフェート,150mMのNaCl,pH7.5)中の45mgのQβVLP(2.5mg/ml,Bradford分析で定量)を、撹拌条件下で室温にて15分間、10mMのDTTで還元させた。ついで、塩化マグネシウムを0.7Mの最終濃度になるまで加え、インキュベーションを撹拌しながら室温で15分間継続させると、カプセル化宿主細胞RNAが沈殿し、同時にVLPの崩壊が生じた。その溶液を4℃にて4000rpmで10分間、遠心分離し(エッペンドルフ5810R,固定角度ロータA−4−62を次の全工程で使用)、溶液から沈殿したRNAを除去した。放出された二量体Qβコートタンパク質を含む上清をクロマトグラフィー精製工程に使用した。
二量体コートタンパク質、宿主細胞タンパク質及び残留宿主細胞RNAを含む分解反応の上清をSP-セファロースFFカラム(xk16/20, 6 ml, Amersham Bioscience)に充填した。カラムを20mMのリン酸ナトリウムバッファー(pH7)で平衡にし、試料を水に1:15で希釈し、カラムへのコートタンパク質の適切な結合を達成するために10mS/cm以下に伝導率を調節した。結合コートタンパク質の溶出は、20mMリン酸ナトリウム/500mM塩化ナトリウムの一ステップ勾配によって達成し、タンパク質をおよそ25mlの画分体積で収集した。全工程中においてクロマトグラフィーを5ml/分の流量で室温にて実施し、260nm及び280nmの吸光度をモニターした。第二の工程では、単離されたQβコートタンパク質(カチオン交換カラムからの溶出画分)を、20mMのリン酸ナトリウム/250mMの塩化ナトリウム、pH7.2で平衡にしたセファクリルS-100HRカラム(xk26/60, 320 ml, Amersham Bioscience)に充填した。クロマトグラフィーを2.5ml/分の流量で室温にて実施し、260nm及び280nmの吸光度をモニターした。5mlの画分を集めた。
精製したQβコートタンパク質の試料を分析的サイズ排除クロマトグラフィーにより分析し(図1C)、i)インタクトなQβVLP (図1A)(これは、大腸菌可溶化液から精製し、精製手順に対するソース材料として使用した)、及びii)分解反応の上清(図1B)と比較した。コートタンパク質からのRNA分子の効果的な分離は、図1CにおいてRNA様ピーク(典型比A280/A260=0.5)がなく、独特のタンパク質様ピーク(典型比A280/A260=1.7)が存在することによって示されている。
精製されたコートタンパク質(20mMのリン酸ナトリウム、pH7.2、250mMのNaCl中)を水、尿素、NaCl、DTTの原液及び凝集G10オリゴヌクレオチド(本質的に実施例2に記載されたようにして調製したもの)と混合した。混合物の容積は50mlで、成分の最終濃度は、コートタンパク質1mg/ml、尿素1.0M、NaCl 250mM、DTT 2.5mM及びG10 0.24mg/mlであった。ついで、溶液を、30kDaのカットオフカートリッジ(Pellicon XL, Millipore)及び10ml/分のクロスフロー流量及び2.5ml/分の透過流量を使用して、300mlの20mMリン酸ナトリウム、250mMのNaCl、pH7.2に対して室温で透析濾過した。H2O2を7mMの最終濃度になるまで加え、その溶液を室温で1時間インキュベートしてジスルフィド結合を生じさせた。ついで、その溶液を、300kDaのカットオフカートリッジ(Pellicon XL, Millipore)及び10ml/分のクロスフロー流量及び2.5ml/分の透過流量を使用して、500mlの20mMリン酸ナトリウム、150mMのNaCl、pH7.2に対して透析濾過し、構築されたQβG10産物から過剰のH2O2と非パッケージ化G10オリゴヌクレオチドを除去した。
QβG10パッケージ化産物の分析とパッケージ化法の収率の決定
分析的サイズ排除クロマトグラフィーによるパッケージ化QβVLPの特徴付け:
パッケージ化QβVLPの試料を分析的サイズ排除クロマトグラフィーにより分析し(図2)、大腸菌溶解化液から精製したインタクトなQβVLPと比較した。生成物中の正しく組み立てられたVLPの存在を、天然QβVLPを表すピークと同じ保持時間で移動するピークによって確認した。QβG10VLP(図2D)に対して観察されたピークは、260nmでの核酸の吸収係数がコートタンパク質の吸収係数より100倍以上高いため、VLPの核酸量によって占められている。精製されたQβG10VLPの比A260/A280は1.70(1.65−1.76;n=5)であることが見出され、これはG10(A260/A280=1.74)に特徴的であり、QβVLPの比A260/A280は1.87(1.85−1.90;n=10)であることが見出され、これはRNAに特徴的である。
パッケージされたQβG10の試料を非還元的SDS-PAGEにより分析し(図3)、大腸菌可溶化液から精製したインタクトなQβVLPと比較した。生成物中における正しく組み立てられたVLPの存在は、インビトロで組み立てられたQβG10VLP中のコートタンパク質の正確な構造的配置を示すインタクトなQβVLPと同様に、コートタンパク質のジスルフィド結合五量体及び六量体形態のバンドの生成によって確認された。
QβG10VLP(PBS中0.25mg/ml)の試料を0.1mMのTCEPで処理し(室温で15分)、ジスルフィド結合を還元した。NaClを還元された試料(1Mの最終濃度)に加え、混合物を60℃で15分間インキュベートしてタンパク質成分を沈殿させた。遠心分離後、得られた上清を95℃で5分間インキュベートし、氷で1分冷却して、A260値を測定した。上清中のオリゴヌクレオチドG10の濃度を次の式に従って計算した:
c(G10)(mg/ml)=A260×1.12×9600/344580
ここで、
1.12=試料中の塩含量に対する修正因子
9600=オリゴヌクレオチドG10の分子量
344580=オリゴヌクレオチドG10の比モル吸収係数
典型的には、パッケージ化オリゴヌクレオチドG10の量はQβコートタンパク質1mg当たり0.2mgであった。
凝集したG10を、実施例3に記載されているようにしてVLPの組立/再構築によってQβVLP中にパッケージ化した。953mgのG10オリゴヌクレオチドを400mgの精製Qβ二量体との再構築のために導入した。反応は、100μgのタンパク質当たり20μgのG10オリゴヌクレオチドを含むQβG10を生じた(タンパク質量はBradford分析又はHPLCで定量した)。パッケージ化反応のG10収率は75%のタンパク質収率で63%であった。
分解/再構築によるAP205及びGA355VLPのパッケージ化
分解:
バッファーA(5mMのNaPO4、pH6.8、100mMのNaCl、2mMのMgCl2)中の50−100mgのAP205又はGA355VLP(Bradford分析によって定量)を、それぞれ1mg/ml及び5U/mlのRNエースA(Sigma)及びベンゾナーゼ(Novagen)と共に30℃で16時間インキュベートした。AP205VLPの場合は、内部ジスルフィド結合の脱酸素を、RNエースAとベンゾナーゼの添加に先立って実施した後、20mMのDTTを添加し、37℃で30分インキュベートした。1MのNaClの添加後、70℃で15分のインキュベーションによってウイルスコートタンパク質の沈殿が誘導された。沈殿したコートタンパク質を、4℃、27000gで10分間遠心分離して沈降させた。RNエースA、ベンゾナーゼ及び分解した核酸を含む上清を捨てた。ペレットをバッファーB(20mMのNaPO4、pH7.2,6Mの尿素)中に再懸濁させ、室温で10分間、インキュベートした。
溶液を4℃、27000gで10分間遠心分離して透明にした。 無視できるペレットは捨てた。そして、再構築されたコートタンパク質を含む上清を、バッファーBで平衡にしたSPセファロースTM FFカラム(16/20, Amersham Biosciences)にかけた。通過物を捨てた。バッファーB(15CV)での十分な洗浄後に、カラムを、37.5CVの勾配長で、バッファーBからバッファーC(20mMのNaPO4 pH7.2,1Mの尿素)の線形勾配で調節した。254nm及び280nmでの充填、洗浄及び溶出の間の吸光度をモニターした。コートタンパク質は、バッファーD(20mMのNaPO4 pH6.5,1Mの尿素,300mMのNaCl)での一画分として溶出させ、LDS-PAGEと続くクーマーシー染色によって分析した。溶出タンパク質画分を「分解コートタンパク質」として4℃で保存した。タンパク質濃度はBradford分析によって定量した。
精製したAP205又はGA355コートタンパク質をG10オリゴヌクレオチドに対して5倍の過剰量(w/w)で使用した。コートタンパク質を、1Mの尿素と2.5mMのDTTを含む再構築バッファー中のG10オリゴヌクレオチドと混合し、室温で1時間インキュベートした。インキュベーション後、再構築混合物を、5リットルのPBSに対して24時間透析した。得られた懸濁液を27000g、4℃で10分間遠心分離した。無視できる沈降物を捨てた。上清は再構築されパッケージ化されたVLPを含んでいた。タンパク質濃度はBradford分析によって定量し、組み立てられパッケージされたVLPを遠心濾過装置(Amicon Ultra 15, 10K MWCO)で濃縮した。
PBSで平衡にされたセファロースTM CL-4B(26/60, Amersham Biosciences)上に25mgまでの全タンパク質を充填した。1.25ml/分の流量で室温にて平衡バッファーを用いてサイズ排除クロマトグラフィーを実施した。溶出の間、254nmと260nmの吸光度をモニターした。二つのピークが分離された。主要な高分子量のピークが低見かけ分子量の小さなピークの前にあった。主要なピークはSE-HPLCによって示された精製VLPと一致した見かけ分子量を明らかにしていた。G10オリゴヌクレオチドがパッケージされたAP205又はGA355VLPの分析は、国際公開第03/024481号の実施例16(p.131ff)に本質的に示されているようにして実施される。
分解/再構築によるG10でのFRVLPのパッケージ化
分解:
バッファーA(5mMのNaPO4、pH6.8、100mMのNaCl、2mMのMgCl2)中の50−100mgのFRVLP(Bradford分析によって定量)を、それぞれ1mg/ml及び5U/mlのRNエースA(Sigma)及びベンゾナーゼ(Novagen)と共に30℃で16時間インキュベートした。1MのNaClの添加後、70℃で15分のインキュベーションによってFRコートタンパク質の沈殿が誘導された。沈殿したコートタンパク質を、4℃、27000gで10分間遠心分離して沈降させた。RNエースA、ベンゾナーゼ及び分解した核酸を含む上清を捨てた。ペレットをバッファーB(20mMのNaPO4、pH7.2,6Mの尿素)中に再懸濁させ、室温で10分間、インキュベートした。
溶液を4℃、27000gで10分間遠心分離して透明にした。 無視できるペレットは捨て、再構築されたコートタンパク質を含む上清を、バッファーBで平衡にしたSPセファロースTM FFカラム(16/20, Amersham Biosciences)にかけた。通過物を捨てた。バッファーB(15CV)での十分な洗浄後に、カラムを、37.5CVの勾配長で、バッファーBからバッファーC(20mMのNaPO4 pH7.2,1Mの尿素)の線形勾配で調節した。254nm及び280nmでの充填、洗浄及び溶出の間での吸光度をモニターした。FRコートタンパク質は、バッファーD(20mMのNaPO4 pH6.5,1Mの尿素,300mMのNaCl)での一画分として溶出させ、LDS-PAGEと続くクーマーシー染色によって分析した。溶出タンパク質画分を「分解コートタンパク質」として4℃で保存した。タンパク質濃度はBradford分析によって定量した。
精製したFRコートタンパク質をG10オリゴヌクレオチドに対して5倍の過剰量(w/w)で使用した。FRコートタンパク質を、1Mの尿素と2.5mMのDTTを含む再構築バッファー中のG10オリゴヌクレオチドと混合し、室温で1時間インキュベートした。インキュベーション後、再構築混合物を、5リットルのPBSに対して24時間透析した。得られた懸濁液を27000g、4℃で10分間遠心分離した。無視できる沈降物を捨てた。上清は再構築されパッケージ化されたFRVLPを含んでいた。タンパク質濃度はBradford分析によって定量し、組み立てられパッケージされたFRVLPを遠心濾過装置(Amicon Ultra 15, 10K MWCO)で濃縮した。
PBSで平衡にされたセファロースTM CL-4B(26/60, Amersham Biosciences)上に25mgまでの全タンパク質を充填した。1.25ml/分の流量で室温にて平衡バッファーを用いてサイズ排除クロマトグラフィーを実施した。溶出の間、254nmと260nmの吸光度をモニターした。二つのピークが分離された。主要な高分子量のピークが低見かけ分子量の小さなピークの前にあった。主要なピークはSE-HPLCによって示された精製FRVLPと一致した見かけ分子量を明らかにしていた。G10オリゴヌクレオチドがパッケージされたFRVLPの分析は、国際公開第03/024481号の実施例16(p.131ff)に本質的に示されているようにして実施される。
リンパ節へのナノ粒子のサイズ依存性輸送
リンパ節への粒子状抗原の輸送メカニズムを研究するために、20nmから2000nmの範囲のサイズの黄緑色の蛍光ポリスチレンナノ粒子(Molecular probes)を、C57BL/6マウスの足蹠に注射し(25μg/足蹠)、追跡した。バクテリオファージQβのVLPをタンパク質標識キット(Molecular probes)を使用してAlexa488にカップリングさせ、30nmの蛍光粒子として実験に含めた。48時間後に、ナノ粒子とVLPを膝窩流入領域リンパ節(LN)においてフローサイトメトリーによって追跡した。膝窩LNを単離し、1mg/mlのコラゲナーゼD(Boehringer)及び0.04mg/mlのDNエースI(Roche) で37℃にて30分間、消化させた。ナノ粒子を取り込む細胞集団を同定するために、LN細胞を抗CD11c-PE(BD)で染色した。フローサイトメトリー分析によって、注射から48時間後に、ナノ粒子とVLPは膝窩LNに到達し、樹状細胞(DC、表1)を含むLN細胞に異なったレベルで結合することが示された。LN細胞は大きな粒子(1000−2000nm)よりも小さな粒子(20−500)をより効率的に獲得した。VLP-Alexa488(30nm)は20nmと100nmの間のポリスチレンナノ粒子のLN取込み効果を示した。これらのデータは、ナノ粒子とVLPがサイズに依存した形で注射部位からLNまで輸送され、顕著な輸送が20から500nmの間のサイズの粒子で起こることを示唆している。
LNへのVLPの輸送の動態
LN細胞中へのナノ粒子の取り込みの動態を研究するために、VLP-Alexa488(実施例7に記載したようにして調製した)をC57BL/6マウス(実施例7に記載したもの) に注射し、2時間後から96時間後まで追跡した。LN細胞は次の抗体の組合せで染色した:抗CD11c-PE、抗CD11b-APC、抗CD11c-ビオチン、抗CD19-APC、抗B220-PE、抗CD8-CyChr、抗CD40-APC及びストレプトアビジン-CyChr(全てBD由来)。フローサイトメトリー分析は、足蹠への注射の2時間後に、VLP-Alexa488が膝窩LNからの抗原提示細胞(APC)に結合したことを示している(表2)。皮膚由来の樹状細胞がVLP-Alexa488を取り込み2時間という短い間に流入領域LNに輸送することは全く起こりそうになかった。これらの結果は、VLP-Alexa488が無細胞の形でリンパ系を通って流入領域リンパ節に流入したことをむしろ示唆している。マクロファージ及びDCは VLP-Alexa488を取り込む最も顕著な集団であった。最も重要なことは、注射から2時間後に、1.9%のLN常在形質細胞様DCがまたVLP-Alexa488を獲得したことである。ヒトにおけるpDCは大体は二次リンパ系組織に見出され、TLR9を発現する唯一のDC集団である。従って、VLP-Alexa488のLNへ自由に流入する能力は、それらを、VLPにパッケージされたISS(例えばCpG)を同時に移送する可能性を持ち、pDCを標的とする非常に適切なベヒクルとする。
VLP-Alexa488の取り込みは、注射から24時間後にピークに達し(表2)、48時間までかなり安定したままで、96時間後に低下した。その後の時点でまた、皮膚由来DCが流入領域LNへのVLP-Alexa488の輸送に寄与する蓋然性が高い。確かに、VLP-Alexa488の取り込みの2時間(流入)と24時間(DC媒介輸送)の間の比は、LNにおいてもVLPを獲得する(図4)リンパ球(CD11c+CD40loCD8+) DCと比較して、骨髄(皮膚由来CD11c+CD40hiCD8-を含む)について低い。
インビボ画像処理によるナノ粒子の輸送の動態
20及び500nmの蛍光ポリスチレンナノ粒子並びにVLP-Alexa488の輸送を、470/40nm励起フィルターと高解像度カメラ (KM_Dynax_5D)を装備したUV光ツール(LT-99D2-220, Lightools Research, CA)を使用して、インビボで調査した。実施例7に記載のようにマウスの足蹠に蛍光ナノ粒子を注射し、注射後2、24及び192時間に写真を撮った。フローサイトメトリーのデータ(表2)と一致して、注射2時間後に、VLP-Alexa488は、蛍光顕微鏡によって検出されているように、膝窩LNに達した。VLP(30nm)と同様、20nmのナノ粒子(表3)もまた検出されており、これは、小さいナノ粒子が無細胞の形でLNに流れることができることを示唆している。これとは対照的に、この初期の時点では500nmのナノ粒子は膝窩LNには検出されておらず(表3)、これは大きな粒子のLNへの遅い輸送動態を証明している。20又は500nmのナノ粒子の注射から2時間後にフローサイトメトリー分析を実施した。これらの結果は、光ツール画像処理での知見を確認している(表3)。500nmの粒子の遅い輸送動態に対する一つの可能性は、それが注射部位でのDC取り込みとLNへの輸送を介して部分的に起こることである。
併せると、これらのデータは、ナノ粒子のLNへの輸送のサイズ依存性メカニズムを示唆している。小粒子、例えば20nm及びVLP-Alexa488は無細胞の形で早い時点でLNまで流入する一方、大きな粒子(500nm)はDC媒介輸送の必要性のために遅い動態を示すことを示唆している。
LNへのナノ粒子の送達のDC依存性
マクロファージは非遊走性細胞であると考えられ、よってマクロファージを担持する粒子はLNにおいて粒子を獲得したLN常在細胞であると思われる。これに対して、DCは注射部位で粒子を貪食し、流入領域LNまで遊走する能力を有している。ナノ粒子のサイズとLNへの輸送のメカニズムの間の関係を調査するために、20から2000nmの範囲の蛍光ナノ粒子を実施例7に記載したようにマウスの足蹠に注射し、ナノ粒子含有DCとマクロファージの間の比を計算した(図5)。注射した粒子が大きくなればなるほど(500−2000nm)、より多くのDCがLNにおけるその取り込みに関与する。より小さい粒子(20−200nm)は匹敵する割合のDC及びマクロファージで検出されており、細胞フリーの流入とLN常在APCとの結合が示唆される。
野生型マウス及びDCを条件枯渇させたマウス(CD11c-DTR-GFP mice, Jung S.等, 2002)におけるインビボ画像処理動態研究では、大きな粒子(500nm)はDCの存在下でのみ流入領域LNに達する一方、小さい(20nm)ナノ粒子はDC枯渇動物でもまた効果的に輸送されたことが示された。これらのデータは、小さいナノ粒子がリンパ節常在DC集団を標的とすることができることを示唆している。確かに、表4に示されるように、20nmの粒子とVLP(30nm)はリンパ節常在形質細胞様DC(PDCA-1+B220+)、B細胞(PDCA-1−B220+)及びリンパ様DC(CD11c+CD8+)に結合した。従って、小粒子はLN錠剤APCを標的とするのに有用である一方、大きな粒子は専ら注射部位でDCを標的とする。
骨髄由来樹状細胞(BMDC)の産生とQβG10バッチでの処理
LPS耐性(C3H/HeJ)及びLPS応答性(C3H/HeN)株由来の11週齢のマウスを屠殺し、大腿及び脛骨を単離し、PBS中に保った。肉を除去後、骨を両側から切断し、10%のFCS RPMIを満たしたシリンジを使用して骨髄を流し出した。放出された細胞を集め、70μmの細胞ストレーナーを通過させた。細胞を洗浄し、10ng/mlのマウスGM-CSF(R&D)を含む10%のFCS RPMI中に20×104細胞/mlで再懸濁させた。20×106細胞を6日間、10mlの培地中の細菌グレードのペトリ皿に蒔いた。CD11c及びCD11bの発現についてフローサイトメトリーによって細胞を分析することによって、BMDCの分化状態を6日目に確認した。分化の6日目に、BMDCをペトリ皿から回収し、一回洗浄し、5×104/ウェルで96ウェルのU底プレート(BD)に蒔いた。QβG10の6の希釈物(4倍)を別のプレートに調製し、20時間の間、BMDCに加えた。
コーティングバッファー(0.1MのNaHCO3,pH9.6)中の2μg/mlのラット抗マウスIL-12(p40/p70モノクローナル抗体(mAb, Pharmingen)をマイクロタイタープレート(Maxisorp, Nunc)に一晩被覆した。洗浄(0.05%のTween20/PBS)及びブロッキング(2%のBSA/0.05%のTween20/PBS)後、BMDCの70μlの上清又は組み換えIL−12の2倍希釈物(20μg/mlから出発)を加え、室温(RT)で2時間インキュベートした。プレートを洗浄後、ビオチン標識ラット抗マウスIL−12mAb(p40/p70,Pharmingen)を 1μg/mlで室温にて1時間加えた。プレートを洗浄し、室温で1時間、1μg/mlのストレプトアビジン−HRPO(Jackson laboratories)と共にインキュベートした。洗浄後、クエン酸バッファー(pH5)中のo−フェニレンジアミン(OPD, Fluka)を5分間加え、反応を5%のH2SO4で停止させた。490nmでの光学密度をELISAリーダー(Molecular Devices)で測定し、ソフトウェアSoft max Proを使用してデータを解析した。
G10オリゴがパッケージされたQβによるBMDCの活性化は図6に示す。BMDCはQβG10によって活性化され、よって用量依存的な形でIL-12を分泌した(用量はQβVLP中にパッケージ化されたG10オリゴヌクレオチドの当量として与える)が、未処理のコントロール細胞はIL-12を分泌しなかった。従って、QβVLP中にパッケージ化されたG10オリゴヌクレオチドはBMDCを活性化させることができ、該粒子が細胞によって取り込まれ、続いてオリゴヌクレオチドがBMDCの刺激のために利用可能になることが実証された。
BMDCはAP205G10での処理時にIL-12を放出する
C3H/HeJマウス由来のBMDCを実施例11に記載されているようにしてインビトロで産生した。細胞を96ウェルプレートに蒔き、モック又は標記した濃度のG10を組み込んだAP205(AP205G10)で刺激した。18時間後、上清を回収し、実施例11に記載されているようにサンドウィッチELISAによってIL-12を測定した。AP205G10はIL-12の用量依存的な分泌を誘導したが、未処理細胞は基底レベルでのみIL-12を放出した(表5)。これらの結果は、AP205G10がBMDCによって取り込まれ、それらを活性化してIL-12を放出させることを実証している。
G10オリゴデスオキシヌクレオチド(G10-ODN)のためのデリバリー系としてのゼラチンナノ粒子の調製と特徴付け
二工程脱溶媒和によるプレーンなゼラチンナノ粒子(GNP)の調製:
使用した手順は、次のように(Coester等 2000)によって記載されたオリジナルなものである。1.25gのゼラチンA型 (Bloom175) を25mlの高度に精製した水(HPW)に、50℃まで穏やかに加熱しながら5%(w/w)になるまで溶解させた。最初の脱溶媒和工程は25mlのアセトンの添加によって開始した。沈殿したゼラチン画分を60秒間沈降させた後、分散したゼラチン並びに溶解したゼラチンからなる上清を捨てた。50℃への加熱下で25mlの水を加えて沈降物を再び溶解させ、pHを2.5に調整した。一定速度での撹拌(500rpm)下で50mlのアセトンを滴下して添加することによる第二の脱溶媒和の間にその場でゼラチンナノ粒子が形成された。10分後、175μlのグルタルアルデヒド(25%)を反応容器に加え、ナノ粒子を架橋させた。最後に、抽出器フード中で12時間撹拌した後、粒子を、3倍遠心分離(20000gで20分)とアセトン/水(30/70)中での再分散、HPW単独での最後の工程によって精製した。精製したナノ粒子は4−8℃でHPW(伝導率<0.04μs/cm)中の分散液として保存した。次の標準的プロセスパラメータはナノ粒子の調製に対して重要である:(a)第一及び第二脱溶媒和工程の前の温度:50℃;(b)撹拌速度:500−700rpm;(c)第一脱溶媒和工程後の沈殿時間:60秒;(d)アセトン添加の速度(第二脱溶媒和工程):3−5ml/分。
粒子サイズは動的光散乱(DLS)法を用いて決定した。DLS実験は、173°の静的検出角でNIBS?技術(Non Invasive Back Scattering)を使用してZetasizer ZS (Malvern Instruments, Worcestershire, England)で実施した。ナノ粒子を滅菌濾過し高度に精製した水に希釈し、30から100μg/mlの範囲の濃度で測定した。かかる低濃度のため、ナノ粒子は分散液の粘度には影響を与えず、よって、25℃で0.8872cPである純水の粘度を使用した。実験は25℃で実施した。
塩化コールアミン塩酸塩を使用してCoester(2003)によって記載されたオリジナルな方法の新たな修正版を使用した。プレーンなナノ粒子の水性分散液をpH4.5に調節し、モル過剰量のカチオン化剤塩化コールアミン塩酸塩(例えば500mgのナノ粒子に対して50mg)を一定撹拌下で加えた。5分のインキュベーション後、50mgの1-エチル-3-(3-ジメチル-アミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(EDC)を加えて、粒子上のフリーのカルボキシル基を活性化させ、塩化コールアミン塩酸塩と反応させた。カチオン化反応の間、塩化コールアミン塩酸塩の第1級アミノ基がナノ粒子表面上の二つの可能な官能基と反応することができる。最初の相互作用部位は、一官能だけの結合架橋試薬グルタルアルデヒドから誘導された残留アルデヒド基である。更に、第1級アミノ基はナノ粒子表面上の活性化されたカルボキシル基と反応可能である。反応は1時間後に停止され、ナノ粒子は、プレーンなナノ粒子の精製と同様に、3倍遠心分離と再分散によって精製した。最終の粒子を、動的光散乱を使用したサイズ決定とゼータ電位の測定によって、特徴付けした。各割り当てサイズと対応する多分散指数は10回の試行の平均とした。ゼータ電位は同じ機器を使用して決定し、PBS中での10回の個々の測定の平均として計算した。PBS中で5mV又はそれ以上の正電荷を示す粒子を充填に使用した。
G10-ODNを、精製水及びPBS中の凝集又は非凝集形態(実施例2のODN G10の調製プロトコルにおける凝集工程を省略)で用いた。以下に記載した細胞性アッセイに対して、含有量はGNPが1%、G10-ODNが0.1%であり、PBS中10%(w/w)の標的の充填が得られる。以下に記載するマウスモデルでの研究に対しては、0.25%のG10-ODN含量と2.5%のGNPをまた調製し、PBS中10%(w/w)とする。充填実験はPBS中のGNPに対して標的とする(所望される)10%(w/w)のG10-ODNの充填について例示して記載するが、同じ手順を、凝集又は非凝集G10-ODNを使用する他の標的充填割合に対して適合化させた。1.2mgのGNPを含む水性GNP分散液43.3μlを無菌条件下でエッペンドルフ(EppendorfTM)1.5mlキャップに移した。ついで、1086μlのPBSを加え、ピペットで同時に混合した。次の工程で、120μgの凝集G10を含む71.4μlのG10原液を、少なくとも20秒間、ピペットを素早くしかし穏やかに上下させることにより分散液に添加した。次に、調製された試料を22℃で1時間15分の間、インキュベートし、750rpmでThermomixerTM装置にかけた。
インキュベーション後、充填の成功が試験されるG10-ODN充填GNP試料を15000gで1時間遠心分離した。遠心分離後、上清を残りのペレットから注意深く分離させ、260nmの波長で分光測定によって分析した。同じ濃度(1mg/ml)の無充填GNP参照体と同じ濃度(100μg/ml)のG10-ODNの参照体を調製し、遠心分離した。G10-ODNの充填割合は、試料の結果から粒子参照体の測定吸収値を減じた後、G10-ODN参照体の測定吸収値でこの結果を除し、それに100を乗じることにより得られる、G10-ODNがない割合から計算した。最後に、充填効率は、100%からフリーG10-ODNパーセントを減じることによって計算した。
充填効率の結果は様々なGNPバッチによって得られた。しかしながら、調製方法、特にカチオン化はそれぞれの場合で同じであった。よって、充填はまた異なった粒子サイズのバッチの間で比較することができる。割合で与えられる全ての結果は、G10-ODN及びGNPの用いられた質量で計算された質量パーセント(w/w)である。非凝集G10-ODNに対する表I−IIIと凝集G10-ODNに対する表IV−Vに示されるように、3−15%(非凝集G10-ODN)又は5−10%(凝集G10-ODN)の充填割合のG10-GNPが首尾良く得られた。最適な充填媒体はPBSであり、そこでは調製物に凝塊(フロキュレーション)が検出されなかった。非凝集G10-ODNの結果は、全体として十分な結合を示し、水中では5から10%、充填効率が減少する傾向があり、PBSではこの傾向はなかった。GNPへの15%のG10-ODNの充填は僅かだけ低い効率を示している。
GNP-G10を上記のようにして調製した。未結合G10の効果を評価するために、一定量のGNP-G10調製物を4℃で1時間16000gで遠心分離し、上清を回収した(supGNP-G10)。実施例11に記載されているようにして、C3H/HeJマウス由来のBMDCをインビトロで産生した。細胞を96ウェルプレートに蒔き、モックか標記した濃度のGNP-G10又はsupGNP-G10(そのG10の濃度として与える)の何れかで刺激した。18時間後、細胞上清を回収し、IL-12を、実施例11に記載したように、サンドウィッチELISAによって測定した。GNP-G10は試験された全ての濃度でBMDCからのIL-12の分泌を誘導した(表VI)。これに対して、BMDCはsupGNP-G10での処理時には、有意な量のIL-12を放出しなかった。これらの結果は、GNP-G10はBMDCによって取り込まれ、IL-12の放出を惹起する。また、これらのデータは、G10は効率的にGNPに充填されたが、supGNP-G10はBMDCからのIL-12の分泌を誘導しなかったことを示している。GNPはG10がないとマウス樹状細胞においてIL-12の分泌を誘導しなかった。
アレルギー性気道の実験的喘息モデル(Hessel EM等, J.Exp.Med. 2005, 202, 1563) を使用して、全IgEレベルに対するGNP-G10の効果を評価した。感作のために、4グループのマウス(グループB−E、1グループ当たりマウス5匹)に450μgのミョウバン(アルハイドロゲル2.0%Brenntag Biosector, Denmark)と混合した150μgのブタクサ(Ambrosia artemisiifolia)花粉抽出物(RW, Greer)を0日目と3日目に腹腔内(i.p.) 注射した。一グループ(グループA)からのマウスはPBSだけでi.p.処理した。10日目に、グループCのマウスに300μgのQβG10(60μgのG10に等価)を、グループDのマウスに600μgのGNP-G10(60μgのG10に等価)を、グループEのマウスに600μgのGNP-G10凝集体(60μgのG10に等価)を、グループA及びBのマウスにPBSを皮下注射した。注射前に全ての動物から血液を採取する。17日目に、全ての動物を出血させ、全IgE力価を決定する。血中の全IgEレベルはELISAによって測定する。簡単に述べると、ELISAプレート(96ウェルMAXIsorp, NUNCイムノプレート#442404)に抗IgE(BD Pharmingen, # 553413)を、コーティングバッファー(0.1MのNaHCO3,pH9.6)中5μg/mlの濃度で4℃にて一晩被覆する。ついで、プレートを洗浄バッファー(PBS/0.05%のTween)で洗浄し、洗浄バッファー中2%のBSAを用いて37℃にて2時間ブロックする。ついで、プレートを十分に洗浄下後、1:20の希釈マウス血清又は連続希釈マウスIgE標準(BD Pharmingen, # 557079)と共にインキュベートする。そのプレートを室温で2時間インキュベートし、ついで洗浄バッファーで十分に洗浄する。ついで、結合した特異的マウス抗体を、HRPO標識のε鎖特異的ラット抗マウスIgE抗体(Southern Biotech #H021-NBB4C)との一時間のインキュベーションによって検出する。洗浄バッファーでの十分な洗浄後に、プレートを6分間OPD溶液(1OPD錠剤、25mlのOPDバッファー及び8μlのH2O2)で展開し、反応を5%のH2SO4溶液で停止させる。ついで、プレートをELISAリーダー(Biorad Benchmark)でOD450nmにて読み取る。血清中のIgE濃度は参照としてマウスIgE標準を使用してGraphPad Prism4で計算する。
Ahlers, Michael等 Biodegradable gelatin nanoparticles and procedure for their production. (Deutsche Gelatine-Fabriken Stoess A.-G., Germany, assignee. Patent 102004041340. 20060223. (2005)。
Coester, C. J.等 "Gelatin nanoparticles by two step desolvation-a new preparation method, surface modifications and cell uptake." Journal of Microencapsulation 17.2 (2000): 187-93。
Coester, Conrad. Development of a new carrier system for oligonucleotides and plasmids based on gelatin nanoparticles. New Drugs [1], 14-17. 2003。
Zillies, Jan及びCoester, Conrad. Evaluating gelatin based nanoparticles as a carrier system for double stranded oligonucleotides. Journal of Pharmacy & Pharmaceutical Sciences 7[4], 17-21. 2004。
Zwiorek, Klaus, Kloeckner, Julia, Wagner, Ernst, and Coester, Conrad. Gelatin nanoparticles as a new and simple gene delivery system. Journal of Pharmacy & Pharmaceutical Sciences 7 [4], 22-28. 2004。
ELISAによる細胞中におけるIFN-α産生の検出
ヒト末梢血単核細胞(PBMC)をバフィーコートから単離し、10%の仔ウシ血清(FCS)を含むRPMI培地中の免疫賦活性核酸で18時間処理した。上清中のIFN-αを、PBL Biomedical Laboratoriesによって提供された抗体セットを使用して、サンドウィッチELISAによって測定した。簡単に述べると、ELISAプレートに5μg/mlの捕獲抗IFN-α抗体を被覆した。洗浄後、プレートを室温(RT)で1時間、0.5%BSAでブロックした。処理したPBMC及びコントロールPBMCからの上清並びに組換えIFN-αをプレートに加え、37℃で2時間インキュベートした。ウサギポリクローナル抗IFN-α血清を検出抗体として使用し、室温で1時間インキュベートした。室温で1時間、ペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ウサギ血清を続いてプレートに加えた。各インキュベーション後に洗浄工程を実施した。発色反応を酵素基質o-フェニレンジアミンを使用して起こさせ、ELISAリーダー装置において490nmで読み取った。データは、組換えIFN-αの標準曲線に従って分泌されたIFN-α(pg/ml)として表されている。
蛍光色素コンジュゲート抗体を使用するフローサイトメトリー分析
PBMCを免疫賦活性核酸を用いて3−6時間刺激し、ついでブレフェルジンAと共に更に4時間インキュベートした。ついで、細胞をDC特異的表面マーカーで染色し、透過処理し、IFN-αに対して細胞内染色する。
ブタクサ花粉での感作後及び11日目の一回の誘発後の好酸球増加症に対するQβG10の効果
アレルギー性気道の実験的喘息モデル(Hessel EM等, J.Exp.Med. 2005, 202, 1563) を使用して、喘息の病理的原因である好酸球増加症に対するQβG10の効果を評価した。感作のために、3グループのマウス(1グループ当たりマウス5匹)に450μgのミョウバン(アルハイドロゲル2.0%Brenntag Biosector, Denmark)と混合した150μgのブタクサ(Ambrosia artemisiifolia)花粉抽出物(RW, Greer)を0日目と3日目に腹腔内(i.p.) 注射した。9日目に、グループBのマウスに375μgのQβG10を皮下(s.c.)投与した。10日目に、グループCのマウスに375μgのQβG10を皮下投与した。グループAのマウスにはコントロールとしてPBSを投与した。11日目に、全マウスにPBS中200μgのRWを鼻腔内(i.n.)負荷投与した。負荷投与から48時間後に、マウスを屠殺し、肺をPBSで洗浄した(表6)。気管支肺胞洗浄(BAL)に含まれている細胞をFACSによって分析した。好酸球は高CCR3(マウスCCR3フィコエリトリンMAb,R&D)発現によって同定した。表7に示されるように、BAL中の細胞の全量はPBSコントロールマウスと比較して処理されたQβG10において強く減少した。減少は、負荷投与の24時間前(52%)よりも負荷投与の48時間前(61%、p<0.05)にQβG10を与えた場合に、より顕著であった。表8に示されるように、好酸球の量は、PBSコントロールマウスと比較して処理されたQβG10において強く減少した。再び、減少は、負荷投与の24時間前(60%、p<0.05)よりも負荷投与の48時間前(70%、p<0.05)にQβG10を与えた場合に、より顕著であった。よって、QβG10処理は喘息のマウスモデルにおいて喘息の発症を予防する。
ブタクサ花粉での感作後及び二回の誘発(11日目及び15日目)後の好酸球増加症に対するQβG10の効果
アレルギー性気道のより強い実験的喘息モデル(Hessel EM等., J. Exp. Med. 2005, 202, 1563の修正) をまた使用して好酸球増加症と血液中のIgE濃度に対するQβG10の効果を評価した。感作のために、2グループのマウス(1グループ当たりマウス5匹)に, 450μgのミョウバン中の150μgのRW花粉抽出物を0日目と3日目に腹腔内投与した。9日目と13日目に、グループBのマウスに375μgのQβG10を皮下注射した。AグループのマウスにはコントロールとしてPBSを投与した。11日目と15日目に、マウスにPBS中の200μgのRWを鼻腔内誘発投与した。誘発後48時間で、マウスを屠殺し、肺をPBSで洗浄した(表9)。BALに含まれている細胞を、実施例16に記載されているようにしてFACSによって分析した。表10及び11に示されるように、細胞の全量(51%、p<0.01)及び好酸球の量(62%,p<0.001)は、PBSコントロールマウスと比較して処理されたQβG10において強く減少した。よって、QβG10は喘息の強いマウスモデルにおいて喘息の発症を防止する。
QβG10の効果の持続時間とRW抗原とのQβG10の相互作用
実施例16におけるようにミョウバンと混合したRWで0日目と3日目にマウスを感作した。10日目と12日目に、マウスにQβG10、RW(20μg)と混合したQβG10又はPBSを皮下投与した。処置の6日及び14日後に、マウスをRWで誘発した。誘発後48時間で、血清中のIgEレベルを分析した(表13)。データは、QβG10、又はRWと混合したQβG10におけるIgEレベルが、PBS処理コントロールと比較して有意に減少し(表14)、QβG10と、RWと混合したQβG10との間に明確な差が見られなかった。
QβG10の特異性
マウスを0日目と3日目にRWとFel d1(Cytos, Switzerland) で感作させた。10日目にマウスをPBS(グループA及びB)、又はQβG10(グループC及びD)、又はRWと混合したQβG10(グループE及びF)又はFel d1と混合したQβG10の何れかで処理した。12日目に、グループA、C、E及びGからのマウスにミョウバン混合ブタクサを負荷投与した。一方、グループB、D、F及びHからのマウスにはFel d1を負荷投与した。14日目に、全マウスが10日目と同じ処置を受けた。16日目に全マウスが12日目のように負荷投与を受けた。最後の負荷投与の48時間後に、BAL及び血液中のRW及びFel d1特異的IgEを測定し、BAL中の浸潤細胞を分析した(表15)。
G10及びQβG10の比較
G10及びQβG10の効果をブタクサアレルギーモデルにおいて比較した。3グループのマウスを、ミョウバンを混合したブタクサの i.p.注射によって0日目と3日目に感作させた。10日目と12日目に、グループB及びCのマウスをそれぞれG10又はQβG10で処置した。グループAのマウスにはコントロールとしてPBSが投与された。全マウスに200μgのRWがi.n.投与によって誘発投与され、誘発の2日後に、マウスを屠殺した。浸潤細胞及びBAL中のIL-4濃度及び血液中のIgEレベルを分析した(表16)。
表17に示すように、BAL中の細胞の全量はG10処理マウスにおいて有意には変化しなかったが、PBSコントロールマウスと比較してQβG10処理マウスにおいて強く減少していた(32%、p<0.05)。同様に、好酸球の量はPBSコントロールマウスと比較してQβG10処理マウスにおいて強く減少しており(64.1%、p<0.01)、G10処理マウスにおける変化は有意ではなかった(表18)。よって、非パッケージ化G10はBAL中の浸潤細胞に有意な効果を示さないが、Qβにパッケージ化したG10は細胞が肺に浸潤するのを防止した。表19に示されているように、G10で処理されたマウス中のIgEレベルの変化は有意ではなかったが、QβG10処理マウスは、PBS処理マウスと比較して有意に(p<0.001)減少した血中IgEレベルを有していた。表20に示されているように、G10で処理されたマウスのBAL中のIL4レベルの変化は有意ではなかったが、QβG10処理マウスは、PBS処理マウスと比較して有意に(p<0.001)減少したBAL IL-4レベルを有していた。従って、G10をQβにパッケージ化した場合、それは喘息とアレルギーの病理マーカーを減少させた。
QβG10でのネコアレルギーの治療
マウスを1日目と14日目に5μgのFel d1を腹腔内注射して感作させた後、28、29、30及び33日目に1μgのFel d1を鼻腔内に追加投与した。37日、39日及び41日目に、マウスに375μgのQβG10又はPBSを皮下注射した。43日目に、1μgのFel d1を鼻腔内に負荷投与し、マウスのコア温度を直腸プローブデジタル体温計を使用して直腸的に測定する。マスト細胞の脱顆粒をネコアレルギーモデルでモニターする。マウスに0日目と3日目に375μgのQβG10を皮下注射する。5日目に、マウスに、50μlの1:5の希釈ネコアレルギー血清又はその血清又はコントロール血清からの精製IgEを皮内注射した。4又は24時間後に、マウスに、10μgのFel d1プラスエバンスブルー線量を静脈内注射した。静脈内注射の30分後にマウスを屠殺し、ブルー染色反応を分析した。QβG10処理マウスは未処理マウスと比較してブルー染色が低減していた。
QβG10での蜂毒アレルギーの治療
雌の6から8週齢のCBA/JマウスをHarlan(Zeist, The Netherlands)から得た。1mgのミョウバンに吸着させた0.1μgのPLA2を腹側領域及び尾の基部にs.c.注射することにより、動物を隔週毎に感作した。二通りのプロトコルがQβG10療法に適用される。最初は、前もって感作させたマウスに6連続日にわたって375μgのQβG10のs.c.注射を行う。IgEレベルはQβG10の最後の注射の48時間後に測定する。第二は、未処置マウスに0日目と3日目に375μgのQβG10のs.c.注射を行う。最後のQβG10注射の2週間後に、マウスをミョウバン中のPLA2で感作させる。PLA2感作から7日後にIgEレベルを測定する。コントロールグループにはPBSか30μgの天然PLA2を投与する。アナフィラキシー応答の誘導には、動物にPBS中30μgの天然PLA2をi.p.注射し、直腸温度を較正デジタル体温計を用いてモニターする。未処理マウスと比較して、QβG10処理マウスにおける体温低下は顕著ではない。
QβG10でのチリダニアレルギーの治療
雄CBA/CaHマウスを 5μgの Der P1 + 1 mgのアルハイドロゲルの腹腔内注射で感作する。鼻腔内注入の場合は、5μgのDer P1又は滅菌生理食塩水を含む25μlの一定量を麻酔をかけたマウスの鼻に適用する。二通りのプロトコルがQβG10療法に適用される。 最初は、前もって感作させたマウスに6連続日にわたって375μgのQβG10のs.c.注射を行う。IgEレベルはQβG10の最後の注射の48時間後に測定する。第二は、未処置マウスに0日目と3日目に375μgのQβG10のs.c.注射を行う。最後のQβG10注射の2週間後に、マウスをミョウバン中のDer P1 で感作させる。Der P1 感作から7日後にIgEレベルを測定する。QβG10処理マウスは、未処理マウスより低いIgE濃度を示す。
QβG10でのアトピー性皮膚炎を被っている患者の治療と効果の評価
24.1 アトピー性皮膚炎の症状の評価:
全身体関与を100から1000cm2の形状の使用で、又は身体部分のサイズをベースとして身体部分に標準的な測定値をあてがった9のルールによって推定する。全身体スコアは、紅斑、そう痒、滲痂皮(oozing crusting)、剥脱、及び、全ての関連した皮膚の苔癬化、非関連皮膚の乾燥、及び不眠に対する0から3のスケールの個々のスコアの合計である。研究者は、紅斑、そう痒、滲痂皮(oozing crusting)、剥脱、及び全ての関連した皮膚の苔癬化及び非関連皮膚の乾燥の深刻度に対して0から3のスケールで被験者の冒された皮膚領域にグレードを付ける。被験者は10cmの可視類似スケールで選択領域のそう痒にグレードを付け、下限を深刻とし、上限を無しとする;このグレードは解析のために0から3のスコアに転換される。効果の評価を一定にするために、全ての審査者がマニュアルを受け取り、当日参加し、集中訓練過程とオンサイト訓練を受ける。
24.2 QβG10での治療:
アトピー性皮膚炎を患っている被験者のグループを、300μgのQβG10(G10(配列番号27)をパッケージしたQβVLP)で1週間の間隔で少なくとも3回、処置し、匹敵する症状のコントロールグループはプラシーボで処置する。試験グループの平均症状スコアに応じて、試験グループの治療を、それぞれ300μgのQβG10の全6から10のワクチン接種まで繰り返すことができる;コントロールグループは常に平行してプラシーボで処置される。
24.3 効果の評価:
最初の処置の前と研究の終わりに全身体関与を評価する。各患者に対して個々に選択された選択された皮膚領域の症状を、各処置前と最後の処置の3ヶ月後までの間隔で直接評価する。研究の最初と最後の試験グループの症状スコアの変化をコントロールグループのものと比較する。
アトピー性皮膚炎の効果パラメータ
アトピー性皮膚炎(AD)の医師の総括的評価(PGA):
研究者は、表21に記載されたスケールを使用して全体の疾患重症度に評点を付ける。評点は、過去の評価を参照しないで、患者の現在の症状を考慮してあてがわれることになる。
湿疹面積及び重症度インデックス(EASI):
4つの身体表面領域に対する皮膚炎の程度と重症度を、湿疹面積及び重症度インデックス(EASI)を使用して計算する。4つの身体領域には比例した身体表面積(BSE)を、頭部と首部が合わさって10%BSAを構成し、胴体の前部と背部がそれぞれ15%BSAを構成し、各腕が10%BSAを構成し、各脚が20%BSAを構成するように、割り当てる。身体領域の各々に関連する面積の割合に0から6のスコアが与えられ、ここで、0=発疹なし、1=<10%、2=10%から29%、3=30%から49%、4=50%から69%、5=70%から89%、及び6=90%から100%である。評価されるアトピー性皮膚炎の4つの重要な症状は、紅斑、結節/浮腫、剥脱(引っ掻きによる皮膚の線状の擦過)、及び苔癬化である。これらの症状のそれぞれが0から3のスケールを使用して4つの身体領域のそれぞれで評点化され、半分の段階が許容され、ここで0=なし、1=穏やか、2=中程度、及び3=重症である。表22に概要を述べた定義が使用される。
各身体領域に対するスコアは4つの重要な症状の重症度スコアの合計に、身体領域に関連した面積の割合を乗じ、ついでその結果に特定の身体領域にあてがわれた一定の加重値を乗じることによって得られる(表23を参照)。EASIスコアは4つの身体領域スコアの合計である。
患者の痒みスコア評価:
研究のための来診の都度に、患者は表24に示した評点を使用して最後の来診以来の痒みの重症度を評価することを求められる。
アトピー性皮膚炎に罹っている被験者のQβG10での治療と効果の評価
QβG10での治療:
二重盲検平行グループ臨床試験をアトピー性皮膚炎の36名の患者で実施する。患者はそれぞれ18名の患者の二つのグループに無作為に割り当てられる。最初のグループは1週間の間隔で6回、300μgのQβG10(G10(配列番号27)が満たされたQβVLP)で処置する。第二のグループはプラシーボで処置する。
効果の評価:
医師総括評価(PGA)、EASIスコア、及び患者の痒みの評価(実施例25を参照)を最初の処置の前と、治療期間中は隔週で、また治療後は最初の治療後24週目の研究の終了時点まで数回、実施する。
喘息に罹っている被験者のQβG10又はAP205G10での治療と標準化された喘息生活の質の質問状を使用する効果の評価
27.1 喘息症状の評価:
喘息の症状を、標準化された喘息生活の質の質問状を使用して評価する(AQLQ(S)又はAQLQ12+, Juniper等, Health Qual. Life Outcomes Sept. 2005 3:58)。
27.1 QβG10又はAP205G10での治療:
喘息を患っており、AQLQ(S)又はAQLQ12+の匹敵する症状スコアを示す二つの試験グループと一つのコントロールグループを、それぞれG10(配列番号27)がパッケージされたバクテリオファージQβのVLP、G10(配列番号27)がパッケージされたバクテリオファージAP205のVLP又はプラシーボで治療する。QβG10及びAP205G10は国際公開第03/024481号の実施例16及び17に従って又は好ましくはここの実施例に従って産生される。被験者は1週間の間隔で少なくとも3回、300μgのQβG10又は300μgのAP205G10で治療される。試験グループの平均症状スコアに応じて、試験グループの治療を、それぞれ300μgのVLP-G10の全6から10のワクチン接種まで繰り返すことができる;コントロールグループは常に平行してプラシーボで処置される。
27.3 効果の評価:
各治療の前直接と最後の治療後1ヶ月と3ヶ月目にAQLQ(S)又はAQLQ12+を使用して全被験者を評点付けする。CpGパッケージ化VLPで治療した二グループとコントロールグループにおける平均スコアの発生を比較する。
喘息の症状の評価
喘息の症状の重症度は、次のプロトコルに従ってメタコリンの投与の前後でのスパイロメトリー測定によって評価することができる。
工程1:試験溶液の調製
− 試験の20分前に冷蔵庫から試験溶液(メタコリン)を取り除き、室温までもっていく;
− 試験溶液の有効期限をチェックする;
工程2:試験患者の準備
− 患者を部屋の気温に10分間、適応させる;
− 呼吸器スパイロメーター試験を実施する(アペンディクス11.4呼吸器スパイロメトリーを参照);
− メタコリン試験の禁忌者を除外する(関連の気道閉塞、急性感染、妊婦、β-ブロッカー又は抗コリン薬)(コリン作用薬又は抗コリン作用薬);
工程3:「線量計Mefar MB3」の準備
− 右側の二つの黄色のボタン(「ユニット」、「コンプレッサー」)を押してマシンのスイッチを入れ、圧が25kg/cm2に達するまで待つ;
− 灰色の05番のボタンを押して吸入時間を定め、ついでポーズの時間050と吸入時間(N.吸入)02を決め、「リセット」を押す
− 1.5mlのNaCl0.9%を吸入セットの下方プラスチック片中に満たすことによって吸入セットを準備し、同じ数で上方部分をねじ込み、ついで吸入機器をマシンに連結する連結及びマウスピース及びホースをつける
− 「エアータンク放出」のボタンを押す
工程4:ネガティブ制御及び患者の指示
− 患者に唇にマウスピースをつけさせ、深く息をするように指示することによって、NaCl0.9%でネガティブ制御を実施する;
− 深く息を吸い込みながら、ボタン「緊急マニュアルサーミスタ」を押す;
− 一回繰り返し(以下の投薬プロトコルを参照)、ついで「終了」及び「リセット02」を押す;
− 2分間待ち、ついで呼吸器スパイロメータ試験を繰り返す;
工程5:メタコリンでの吸入誘発
− 1.5mlのメタコリン濃度10mg/mlを吸入セットの下方プラスチック片中に満たし、セットをねじ込み、「エアータンク放出」を押す;
− 患者に唇にマウスピースをつけさせ、深く息をするように指示する。深く息を吸い込みながら、ボタン「緊急マニュアルサーミスタ」を押す;
− 一回繰り返し(以下の投薬プロトコルを参照、表25)、ついで「終了」及び「リセット02」を押す;
− 2分間待ち、ついで呼吸器スパイロメータ試験を繰り返す;
工程1:準備
− 使用前に毎日スパイロメータを調整する
工程2:試験
− 被験者に直立位置で座って、普通に呼吸をするように依頼する;
− 被験者に息を大きく吸って、ついで全ての空気が吐き出されるまで、スパイロメータ中にできるだけ速やかにかつ完全に吐くよう指示する;
− 更に二回(全部で三回)繰り返す;
工程3:結果
− 最善の試みを定める(最大のFEV1/FVC比として定義)。最大のFEV1/FVC比が一回を越える試みにおいて見られる場合、最善の試みは最も高いFEV1のものである;
− 最大のFEV1/FVC比が正常の70%未満である場合、「関連気道閉塞」として分類し、除外基準を証明する。その他の場合は続ける;
− 測定されたFEV1から20%を差し引き、それをFEV1−20%として定義する;
− 測定されたFEV1、「FEV1−正常」及び計算されたFEV1−20%を準備されたシートに書き写す(「メタコリン-(気管支)誘発試験」)。
喘息を被っている被験者のQβG10又はAP205G10での治療とメタコリン誘発投与後にスパイロメトリーを使用した効果の評価
29.1 喘息症状の評価:
喘息の症状を、実施例28に従ってメタコリン投与の前後で得られた測定値を用いたスパイロメトリーによって評価する。定量したものは、パラメータFEV1及び予想値の割合として表された努力肺活量に対するFEV1の比である。加えて、被験者(又はその両親又は保護者)が日誌カードを治験を通して毎日つけ、喘息による夜の目覚め、最大流量メータによって測定した朝と夜の最大流量、医薬の使用、症状のためで運動誘発性気管支痙攣防止のための救出医薬(アルブテロール)の使用、プレゾニドンの使用、喘息による学校の欠席/仕事の欠勤、喘息及び症状の重症度のための診療所又は病院への通院を記録する。被験者は治験を通して自身の通常の医薬を使用する。
29.2 QβG10又はAP205G10での治療:
実施例27.2を参照のこと。
29.3 効果の評価:
全被験者のスパイロメトリーのデータを各治療前で直接取得し、毎日のデータを、最初の治療前1ヶ月から最後の治療から3ヶ月後まで毎日のペースで得る。分析するのは例えば毎月の夜の目覚めに関連した喘息の回数、エピソードのない日の数及び朝の最大流量である。CpGパッケージ化VLPで治療した二グループの平均データをプラシーボグループと比較する。
皮膚プリックテスト
皮膚プリックテスト(SPT)は、被験者がある種のアレルゲンに対して過敏化を示すことを証明するために実施される。該テストは、花粉アレルゲン及びアトピーのスクリーニングに常套的に使用されるアレルゲンミックスを含む広範囲のアレルゲンに対する患者の反応を試験するのに有用である。該テストはチリダニアレルゲン(Der p及びDer f)に対する反応を試験するのに有用である。スクリーニングでは、このテストはCPTの前に実施されなければならない(実施例31)。皮膚プリックテスト及び皮内皮膚テストは過敏化の可視化を可能にする。皮膚テストの基本原理は、真皮中への少量のアレルゲンの導入である。放出されたメディエータが血管拡張を引き起こして血管透過性を増大させ、これがついで組織浮腫に至り、みみず腫れを生じさせる。ヒスタミンが軸索反射によってニューロメディエータのサブスタンスPの放出を惹起し、これが周りの皮膚の発赤を生じさせる。
アレルゲンの約30mlの連続希釈物の小液滴を前腕の手掌表面に配する。テスト部位は擬陽性反応を避けるために少なくとも2cm離さなければならない。いわゆるプリック針、つまり皮膚中に直角に穿刺され得る針を使用して、アレルゲン溶液を真皮中に「穿刺」し、高度に再現性のある結果を得る。ネガティブコントロールについては、アレルゲン溶液の希釈剤を使用する。ヒスタミンがポジティブコントロールとして使用され、医薬(主として抗ヒスタミン薬)による皮膚反応性の抑制を検出する。1mg/mlのヒスタミン溶液が直径2−7mmの範囲の腫れを誘発する。
腫れ及び発赤反応の面積を15分後に記録する。永久的な記録を得るために、腫れ並びに発赤のサイズをペンで皮膚の上に描き、セロハンテープ上にブロットし、ペーパー上に保存する。腫れと発赤の両面積を面積測定によって評価する。従って、反応がコンピュータによってスキャンされ、表面積が市販のソフトウェアを使用して測定される。7mm2以上の腫れサイズが陽性とみなされる。
ヒスタミンに対する皮膚の反応における個人間の変動がかなりあることを知った上で、反応をポジティブコントロールに対する割合でスコア付けする。限界希釈法の評価は平行線生物検定及び中央値傾きに基づく。
工程1:準備
− 最近受けた投薬療法(コルチコステロイド、抗アレルギー療法、鎮静剤及び抗うつ薬療法)について質問し、SPTに対する禁忌者を除く;
− 試験溶液をチェックする(有効期間、管理温度、必要とされる体温);
− アルコールで試験部位(腕の掌側)を清浄化する。ペンを使用して、アレルゲンを穿刺する領域をマークする。これらの穿刺部位は少なくとも2cm離しておかなければならない;
− チリダニに使用される濃度は1:1000、1:100、1:10及び1:1である。
工程2:テスト
− アレルゲン溶液の一滴を皮膚の各マーク領域に配する。1mmポイントの殺菌プリックランセットを用いて皮膚に液滴を穿刺する。これは血が出ないようにしてする。アレルゲンのキャリーオーバーを防ぐために、ランセットは穿刺間がアルコールスワブで拭い取られる;
− ハウスダストのチリダニアレルゲンテストは、1:1000、1:100、1:10及び1:1のアレルゲン濃度で実施する;
− ポジティブ(ヒスタミン)及びネガティブコントロール(希釈剤)が含められなければならない;
− 1分後に、溶液をテスト部位にブロットし、拭い取ってはいけない;
− 30分待つ;
工程3:結果
− テスト部位をアルコールと、ついで創傷ベンジンで拭い、マーカーペンで紅斑及び浮腫の周りにラインを引く;
− テスト部位の透明なスコッチテープを貼り、ついで引き剥がし、ペーパーシートに貼り付ける;
− 紅斑及び浮腫の直径及び/又は面積を決定する。ソースドキュメントに測定値を記録し、症例報告用紙に書き写す;
− 痒いテスト部位は抗ヒスタミンゲルで局所的に処理することができる;
アレルギー反応は常にコントロール反応(希釈剤のみ)に対して評価される。典型的には、被験者は、少なくとも6mm直径の少なくとも一つの浮腫又は紅斑あるいは少なくとも7mm2の面積の少なくとも一つの浮腫又は紅斑を示す場合、アレルギーであると考えられる。
結膜誘発試験
アレルゲンに対する患者の応答は、次の手順に従って実施されるいわゆる結膜誘発試験を使用して評価することができる。該試験は、花粉アレルゲンを含む広範囲のアレルゲンに対する患者の反応を試験するのに有用である。該試験はチリダニアレルゲン(Der p及びDer f)に対する反応を試験するのに有用である。
工程1:準備
− 患者を10分間部屋の気候に適合させる;
− 試験溶液をチェックする(有効期間、管理温度、必要とされる体温);
− 誘発の最初の時点では眼に痒みがないことを確認する;
− CPTに対する禁忌者を除外する(あらゆる眼の疾患、但し屈折異常又はアレルギー性結膜炎を除く、コンタクトレンズ、抗アレルギー治療);
工程2:コントロール
− 左眼(コントロール眼)の下部結膜嚢中にアレルゲン内容物を除いたアレルゲン溶液と同一のコントロール溶液を50μl投与する;
工程3:アレルゲン濃度1での誘発
− コントロール溶液の適用直後に、右/反対眼(誘発眼)の下部結膜嚢中にアレルゲン溶液濃度1を50μl投与する;
− 患者に眼をこすらないように知らせる;
− 10分待った後、CPTに対する二つの症状スコアを記入する;
工程4:アレルゲンでの誘発に対する応答
− 陽性の場合は、抗ヒスタミンを局所投与しCPTを止める;
− 陰性の場合には、誘発眼に次に高いアレルゲン濃度で濃度4まで誘発を繰り返す(工程5を参照);
− 濃度4での誘発後に陰性の場合、陰性として分類して停止する;
工程5:次の高いアレルゲン濃度での誘発
− 反対眼(誘発眼)の下部結膜嚢中に次に高い濃度のアレルゲン溶液を50μl投与する;
− 患者に眼をこすらないように知らせる;
− 10分待った後、CPTに対する二つの症状スコアを記入する(工程4参照);
0:主観的な又は可視可能な反応なし;
I:痒み、発赤、異物感;
II:段階Iに加えて、涙、結膜肉芽の血管拡張;
III:段階IIに加えて、結膜足根の血管拡張及び紅斑、眼瞼痙攣;
IV:段階IIIに加えて、結膜浮腫、眼瞼膨張;
段階は次の溶液(標準的なアレルゲン溶液の希釈係数)で決定される:ネガティブ溶液;濃度I:1:1000、濃度II:1:100;濃度III;1:10;及び濃度IV:1:1;CPTは応答が段階II以上の場合に陽性である。
症状は、5つの異なったパラメータに対して0から3のスコアを付与するCPTのスコアシート(表26)を使用してスコア付けがなされる。よって、最大のスコアは一回の誘発当たり15である。CPTは全応答が>10であれば陽性である。
鼻粘膜誘発試験
鼻粘膜誘発試験は、広範囲のアレルゲン、特に花粉アレルゲンに対する患者の反応を試験するのに有用である。鼻はアレルゲンの誘発のためには理想的な部位を提供する。アレルゲンは高度の精確さをもって粘膜に適用できる。誘発手順は自然の暴露を反映するものでなければならない。高い再現性を有する定量測定は重要である(Andersson M, L. Greiff, C. Svensson及びC. Persson. Acta Otolaryngol. 115 (1995), pp.705-713)。最近、Bousquet (Bousquet J, P. van Cauwenberge及びN. Khaltaev. Aria Workshop Group; WHO, J. Allergy Clin. Immunol. 108 (2001), pp. S147-334.)及びARIAワークショップグループは、アレルギー性鼻炎とその喘息に対する影響に関する文献を提示し(Bousquet等, 2001)、適応、技術及び試験の評価に関して(Malm L, R. Gerth van Wijk及びC. Bachert. Rhinology 38 (2000), pp.1-6)鼻粘膜誘発試験のための「鼻気道の客観的評価についての国際委員会(International Committee on Objective Assessment of the Nasal Airways)」の小委員会からのガイドラインを提供している。また、アレルギー学及び臨床免疫学のための独国学会(German Society for Allergology and Clinical Immunology)は、独国耳鼻咽喉学会の臨床免疫学、アレルギー学及び環境医薬のワーキンググループ(Working Group for Clinical Immunology, Allergology and Environemental Medicine of the German Society for Ear, Nose and Throat)と共に方針説明書を作成した(Reichelmann等 Position statement. Allergo J (2002) 11:29-36.)。
アレルゲンの沈着及びアレルゲン投薬:鼻ポンプスプレーが鼻粘膜の広い領域に溶液を送達させるので、アレルゲンの溶液は定量ポンプスプレーから送達される。アレルゲン溶液は、中性pHの等張緩衝水溶液である。生理食塩水での1:3連続希釈物が試験の前に新たに調製される。正確なアレルゲン濃度は過去の研究で決定される。アレルゲン溶液は100μlの体積で適用される。
NPTの禁忌者:最近の4週間での鼻炎のエピソード;アレルギー疾患増悪;アナフィラキシー反応を引き起こしたことが知られているアレルゲンの使用;妊娠;最近の8週間での鼻の手術;併発している重症の全身病、特に心肺疾患;全身性アレルギー反応の治療を妨害しうる医薬での治療(例えばβブロッカー又はACE阻害剤);試験1週間前のワクチン接種。
鼻粘膜誘発試験を妨害することが知られている医薬の退薬期間:全身性抗ヒスタミン薬:その半減期に応じて48時間から1週間;経鼻抗ヒスタミン薬:1週間;ケトチフェン:2週間;DNCG、ネドクロミル:3日間;経鼻コルチコステロイド:1週間;全身性コルチコステロイド:1週間;局所用βアドレナリン作動薬:1日;非ステロイド系抗炎症薬(NSAID):1週間;降圧薬(例えばレセルピン、クロニジン):3週間;抗うつ薬(例えばイミプラミン、三環系):3日。
ベースライン条件を評価するためにNPTに先だって、前側又は後側鼻鏡検査、好ましくは前側鼻鏡検査を含む鼻鏡検査を実施する。鼻鏡検査によるベースライン評価及び臨床症状スコア、並びに鼻腔通気度検査の前の少なくとも15分、患者を室温に十分に適合させる。鼻の広い側が誘発に使用される。実際のアレルゲン溶液の投与前に、鼻の広い側の鼻粘膜に、非特定の応答性亢進のために100μlのアレルゲン希釈剤を誘発投与する。スコア及び鼻腔通気度検査の評価を10分後に繰り返して、臨床的症状又は鼻疎通性の客観的測定値の有意な変化をチェックする。有意な変化が生じていないならば、鼻の広い側について実際のアレルゲン誘発を実施する。送達装置のアプリケータを鼻前庭に挿入し、眼の内眼角に向けて上方かつ側方に向け、100μLのアレルゲン試験溶液を鼻内に噴霧するときに下及び中鼻甲粘膜にアレルゲンを付着させる。アレルゲン投与中、患者は下気道へのアレルゲンの吸入を避けるために息を止めなければならない。患者には投与前に吸い込み投与直後に吐くように指示する。
鼻の症状の記録を3つの一般的な方法に従って平行して実施する(Bachert C: Nasal provocation test: critical evaluation. Ring J, Behrendt HD編: New trends in allergy, IV, Berlin, 1997, Vieluf Springer-Verlag, p 277)。
スコア1:各鼻の症状の重症度を10cmの線形の可視アナログスケールに記録する。ついで、重症度を、希釈剤(ネガティブコントロール)及び各誘発用量で得られたスコア(軽度1−3cm;中程度4−7cm;重症8−10cm)に基づいて評価する。
スコア2:これらのパラメータの標準化された定量のための実際のスコアリング系で、独国アレルギー学及び臨床免疫学学会のENT部によって提案されたものを表27にまとめる(Reichelmann等 Position statement. Allergo J (2002) 11:29-36.)。
スコア3:このスコアはしばしば臨床研究と科学的研究の双方において使用される(Linder, 1988)。エンドポイントは13ポイントの最大スコアから5の全症状スコアをもたらす刺激薬の量と考える(表28)。
鼻漏:0=軽度、1=中程度、3=重症;くしゃみ:0=0−2回のくしゃみ;1ポイント=3−5回のくしゃみ;2ポイント=>5回のくしゃみ。他の症状は痒み又は涙(1ポイント)及び結膜炎、咳、蕁麻疹、又は呼吸困難(2ポイント)を含む。
エンドポイント:アレルゲン誘発後、患者がスコア2において3ポイントより多く取得するか、又は鼻流量の減少が150Paで>40%ならば、エンドポイントに達する。エンドポイントにはまた、スコア2の>2ポイントと関連して鼻流量の減少が150Paで>20%の場合に達する。
鼻疎通性の客観的測定:鼻の気道空間体積及び疎通性を前側鼻腔通気度検査によって評価する。経鼻圧に応じた時間に一鼻孔中における経鼻的気流を分析するように設計され、これは周期的呼吸中に反対側が評価される。鼻疎通性の完全な従来の評価では、この方法は、鼻孔内の断面積として鼻の形状を記録する音響鼻腔計測法と併用される。
前側鼻腔通気度検査及び音響鼻腔検査法の双方の結果が図解的に可視化され分析と文書化が容易にされる。NPT前後の測定は、各分析器によって計算される鼻流量(cm3/s)及び断面積(cm2)の正確な数と組み合わせてこれらのグラフを使用して容易に比較され正確に評価される。
花粉アレルギー及びアトピー性湿疹を煩っている被験者のQβG10での治療と鼻粘膜誘発試験を使用する効果の評価
花粉アレルギー及びアトピー性湿疹を煩っている個人を1週間の間隔で300μgのQβG10の皮下注射により4回治療した。実施例30に従う皮膚プリックテスト及び実施例32に従う鼻粘膜誘発試験をベースラインを決定するための最初の治療の前の日に実施した。鼻粘膜誘発試験は、1:1000、1:100、1:10及び1:1の希釈の花粉アレルゲンを含む市販の誘発剤を用いて実施し、第二の治療の1週間後(第三の治療の前直接)と第四の治療の1週間後に繰り返した。被験者の反応を実施例32に記載しているようにスコア2及びスコア3を使用して評点を付けた。加えて、くしゃみの回数を記録した(表31)。表29−31に示されるように、三つ全てのパラメータはアレルゲン誘発に対する被験者の反応の有意な減少を示している。加えて、初冬に症状が出る、典型的にアトピー性湿疹を被っている被験者は、晩秋に実施された試験後にアトピー性湿疹の症状が全くなくなったことが報告された。後者の知見はアトピー性湿疹に対する処置の予防効果を示すものである。
花粉アレルギーを煩っている被験者のQβG10及びQβG8−8での治療と鼻粘膜誘発試験を使用する効果の評価
34.1 QβG10 QβG8−8での治療:
皮膚プリック及び鼻粘膜誘発試験(実施例30及び32を参照)でのベースラインの決定後、花粉アレルギーを煩っている被験者の三グループを形成する。ここで、全てのグループは同様の平均試験スコアを示している。最初のグループは1週間の間隔で少なくとも3回、300μgのQβG10(G10(配列番号27)がパッケージされたQβVLP)で治療する。第二のグループはG8−8(配列番号25)がパッケージされた300μgのQβで平行して処置する。第三のグループはプラシーボで処置する。試験中における平均症状スコアに応じて、試験グループの治療は、それぞれ300μgのQβG10又はQβG8−8の全6から10のワクチン接種まで繰り返すことができる;コントロールグループは常に平行してプラシーボで処置される。
34.2 効果の評価:
各治療前と最後の治療後の3ヶ月までの間隔中に結膜誘発試験を実施する。研究の最初と最後の試験グループの症状スコアの変化をコントロールグループのものと比較する。
ハウスダストアレルギーを煩っている被験者のQβG10及びQβG8−8での治療と結膜誘発試験を使用する効果の評価
35.1 QβG10 QβG8−8での治療:
皮膚プリック及び結膜誘発試験(実施例30及び31を参照)でのベースラインの決定後、ハウスダストアレルギーを煩っている被験者の三グループを形成する。ここで、全てのグループは同様の平均試験スコアを示している。最初のグループは1週間の間隔で少なくとも3回、300μgのQβG10(G10(配列番号27)がパッケージされたQβVLP)で治療する。第二のグループはG8−8(配列番号25)がパッケージされた300μgのQβで平行して処置する。第三のグループはプラシーボで処置する。試験中における平均症状スコアに応じて、試験グループの治療は、それぞれ300μgのQβG10又はQβG8−8の全6から10のワクチン接種まで繰り返すことができる;コントロールグループは常に平行してプラシーボで処置される。
35.2 効果の評価:
各治療前と最後の治療後の3ヶ月までの間隔中に結膜誘発試験を実施する。研究の最初と最後の試験グループの症状スコアの変化をコントロールグループのものと比較する。
ハウスダストアレルギーを煩っている被験者のHBc及びHBcG8−8での治療と結膜誘発試験を使用する効果の評価
36.1 HBcG10 HBcG8−8での治療:
皮膚プリック及び結膜誘発試験(実施例30及び31を参照)でのベースラインの決定後、ハウスダストアレルギーを煩っている被験者の三グループを形成する。ここで、全てのグループは同様の平均試験スコアを示している。最初のグループは1週間の間隔で少なくとも3回、300μgのHBcG10(G10(配列番号27)がパッケージされたHBcVLP)で治療する。第二のグループはG8−8(配列番号25)がパッケージされた300μgのHBcで平行して処置する。第三のグループはプラシーボで処置する。試験中における平均症状スコアに応じて、試験グループの治療は、それぞれ300μgのHBcG10又はHBcG8−8の全6から10のワクチン接種まで繰り返すことができる;コントロールグループは常に平行してプラシーボで処置される。
36.2 効果の評価:
各治療前と最後の治療後の3ヶ月までの間隔中に結膜誘発試験を実施する。研究の最初と最後の試験グループの症状スコアの変化をコントロールグループのものと比較する。
花粉アレルギーを被っている被験者のQβG10での治療と鼻粘膜誘発試験、皮膚プリックテスト、及び患者の日誌を使用する効果の評価
QβG10での治療:
非盲検臨床試験を花粉にアレルギーのある患者で実施した。患者は、1週間の間隔で6回、300μgのQβG10(G10(配列番号27)が満たされたQβVLP)で治療した。
効果の評価:
標準化された花粉抽出物での鼻粘膜誘発試験(実施例32を参照)を、最初の処置の前と、最後の治療の2週間後に実施した。鼻粘膜誘発試験はまた最初の治療後6ヶ月目と12ヶ月目にも実施する。治療前からの症状スコアの変化を、治療後の様々な評価時点において評価する。また様々な量の花粉アレルゲンを含む溶液を使用して皮膚プリックテスト(実施例30を参照)で効果を測定する。毎日の生活における治療の効果を、治療の後に最初の花粉シーズン中における症状及び使用医薬を記録する有効な患者の日誌を使用して測定する。有効な患者の日誌はまた治療後の第二の花粉シーズンの間の症状と使用医薬を記録するためにも使用される。
鼻粘膜誘発試験:
300μgのQβG10の6回の毎週の注射によって治療した花粉アレルギーの5名の患者について治療前と治療後2週間目に鼻粘膜誘発試験(実施例32)を実施した。表32に示されるように、これらの患者は、治療前のその反応と比較して低下した症状スコアを示した。
花粉アレルギーを被っている被験者のQβG10での治療と結膜誘発試験、皮膚プリックテスト、及び患者の日誌を使用する効果の評価
QβG10での治療:
二重盲検平行グループ臨床試験を花粉にアレルギーのある30名の患者で実施する。患者はそれぞれ10名の患者の三グループに無作為に割り当てられる。最初のグループは1週間の間隔で6回、300μgのQβG10(G10(配列番号27)が満たされたQβVLP)で処置する。第二のグループは1週間の間隔で6回、水酸化アルミニウムアジュバントと組み合わせた300μgのQβG10で処置する。第三のグループはプラシーボで処置する。
効果の評価:
標準化された花粉抽出物での結膜誘発試験(実施例31を参照)を、最初の処置の前と、最後の治療の2週間後と、最初の治療後6ヶ月と12ヶ月で実施する。治療前からの症状スコアの変化を、治療後の様々な評価時点においてグループ間で比較する。また様々な量の花粉アレルゲンを含む溶液を使用して皮膚プリックテスト(実施例30を参照)用いて効果を測定する。毎日の生活における治療の効果を、治療の後に最初の花粉シーズン中における症状及び使用医薬を記録する有効な患者の日誌を使用して測定する。有効な患者の日誌はまた治療後の第二の花粉シーズンの間の症状と使用医薬を記録するためにも使用される。
チリダニアレルギーを被っている被験者のQβG10での治療と結膜誘発試験、皮膚プリックテスト、及び患者の日誌を使用する効果の評価
QβG10での治療:
二重盲検平行グループ臨床試験をチリダニにアレルギーのある20名の患者で実施する。患者はそれぞれ10名の患者の二つのグループに無作為に割り当てられる。最初のグループは1週間の間隔で6回、300μgのQβG10(G10(配列番号27)が満たされたQβVLP)で処置する。第二のグループはプラシーボで処置する。
効果の評価:
標準化されたチリダニ抽出物での結膜誘発試験(実施例31を参照)を、最初の処置の前と、最後の治療の2週間後と、最初の治療後6ヶ月と12ヶ月で実施する。治療前からの症状スコアの変化を、治療後の様々な評価時点においてグループ間で比較する。また様々な量のチリダニアレルゲンを含む溶液を使用して皮膚プリックテスト(実施例30を参照)用いて効果を測定する。毎日の生活における治療の効果を、治療前の連続14日間、治療後の2週間、及び最初の治療後の6ヶ月目及び12ヶ月目に症状及び使用医薬を記録する有効な患者の日誌を使用して測定する。
Claims (26)
- 動物の過敏症を治療するための組成物において、前記組成物が、
(A)RNAバクテリオファージQβのコートタンパク質のウイルス様粒子と、
(B)免疫賦活性核酸であって、前記免疫賦活性核酸が(a)「G6−6」 GGGGGGGACGATCGTCGGGGGG(配列番号32);(b)「G7−7」 GGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGG(配列番号33);(c)「G8−8」 GGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGG(配列番号25);(d)「G9−9」 GGGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGGG(配列番号26);及び(e)「G10」 GGGGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGGGG(配列番号27)からなる群から選択される配列を含む非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであるもの
を含んでなり、
前記ウイルス様粒子が前記免疫賦活性核酸と共にパッケージされており、前記組成物がアレルゲン又はアレルゲン抽出物を含んでおらず、及び前記組成物が過敏症を治療する方法に使用され、アレルゲン又はアレルゲン抽出物の同時投与なしに前記動物に導入される、組成物。 - 前記コートタンパク質が配列番号3のアミノ酸配列を有する請求項1に記載の組成物。
- 前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドが、配列GGGGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGGGG(配列番号27)からなる請求項1又は2に記載の組成物。
- 前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドが、専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなる請求項1から3の何れか一項に記載の組成物。
- 前記非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドが、デオキシリボヌクレアーゼ加水分解又はベンゾネース加水分解を受けない請求項1から4の何れか一項に記載の組成物。
- 前記免疫賦活性核酸が配列GGGGGGGGGGGACGATCGTCGGGGGGGGGG(配列番号27)からなる非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであり、該非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドが、専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなる請求項1から5の何れか一項に記載の組成物。
- 前記過敏症が、(a)アレルギー、(b)喘息、及び(c)皮膚炎から選択される請求項1から6の何れか一項に記載の組成物。
- 前記過敏症が、(a)IgE依存性アレルギー(I型アレルギー)、(b)IgE依存性喘息、及び(c)アトピー性湿疹から選択される請求項1から7の何れか一項に記載の組成物。
- 前記過敏症が天然に存在するアレルゲンに対するIgE依存性アレルギーである請求項1から8の何れか一項に記載の組成物。
- 前記IgE依存性アレルギーが、
(a)花粉アレルギー(花粉症);
(b)ハウスダストアレルギー;
(c)食物アレルギー;
(d)薬物アレルギー;
(e)昆虫毒アレルギー;
(f)蜂毒アレルギー;
(g)動物アレルギー;及び
(h)ネコアレルギー
からなる群から選択される請求項9に記載の組成物。 - 前記過敏症が喘息である請求項1から10の何れか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が前記動物に、皮下、筋肉内、静脈内、鼻腔内、又はリンパ節に直接に導入される、請求項1から11の何れか一項に記載の組成物。
- 前記動物への前記導入が、1週間から3ヶ月の間隔で、少なくとも2回繰り返される請求項12に記載の組成物。
- 前記動物への前記導入が、2週間の間隔で少なくとも3回繰り返される請求項13に記載の組成物。
- 前記動物への前記導入が、毎週の間隔で少なくとも6回繰り返され、それぞれの都度、50μgから500μgの組成物が導入される請求項1から14の何れか一項に記載の組成物。
- 前記動物への前記導入が、毎週の間隔で少なくとも6回繰り返され、それぞれの都度、300μgの組成物が導入される請求項1から15の何れか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が、アレルゲン又はアレルゲン抽出物の投与をしないで前記動物に導入される請求項1から16の何れか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が前記動物に導入され、前記動物への前記組成物の前記導入が、前記動物への前記組成物の前記導入の(a)少なくとも1週間前と少なくとも1週間後の間はアレルゲン又はアレルゲン抽出物が前記動物に導入されないように、実施される請求項1から17の何れか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が前記動物に導入され、前記動物への前記組成物の前記導入が、前記動物への前記組成物の前記導入の(b)少なくとも4週間前と少なくとも4週間後の間はアレルゲン又はアレルゲン抽出物が前記動物に導入されないように実施される請求項1から17の何れか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が前記動物に導入され、前記動物への前記組成物の前記導入が、前記動物への前記組成物の前記導入の(c)少なくとも8週間前と少なくとも8週間後の間はアレルゲン又はアレルゲン抽出物が前記動物に導入されないように実施される請求項1から17の何れか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が前記動物に導入され、前記動物への前記組成物の前記導入はアレルゲン又はアレルゲン抽出物が前記動物に全く導入されないように実施される請求項1から17の何れか一項に記載の組成物。
- 前記動物がヒトである請求項1から21の何れか一項に記載の組成物。
- ヒトの過敏症を治療するための組成物において、前記組成物が、
(a)配列番号3のアミノ酸配列を有するコートタンパク質から成るRNAバクテリオファージQβのウイルス様粒子と、
(b)配列番号27に記載の配列を有する非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドであって、専らホスホジエステル結合ヌクレオチドからなる非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドから成り、
前記ウイルス様粒子が非メチル化CpG含有オリゴヌクレオチドと共にパッケージされており、前記組成物がアレルゲン又はアレルゲン抽出物を含んでおらず、及び前記組成物が過敏症を治療する方法に使用され、アレルゲン又はアレルゲン抽出物の同時投与なしに前記ヒトに導入される、組成物。 - (a)請求項1から23の何れか一項に記載の組成物及び
(b)アジュバントを含有する薬学的組成物。 - アルミニウム含有アジュバントを含有する請求項24に記載の薬学的組成物。
- アルハイドロゲルを含有する請求項24に記載の薬学的組成物。
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