JP5902145B2 - リン酸化アミノ酸、合成リン酸化ペプチド及び胃石タンパク質を含む安定な非晶質炭酸カルシウム - Google Patents
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Description
カルシウムは、シグナル伝達において中心的な役割の一つを演じており、さらに生体系における重要な構成要素である。原生動物から脊椎動物まで、蓄積したカルシウム塩は、動物の堅い身体構造の維持に役立っており、リン酸カルシウムは脊椎動物の内骨格の主要な成分であり、炭酸カルシウムは無脊椎動物の外骨格である。主要構成物質としての炭酸カルシウム無機質を含む石灰化外骨格は、棘皮動物、軟体動物及び節足動物の間に広範囲に及ぶもので、保護をもたらし、カルシウムの貯蔵庫として働いている。一部の甲殻類は、炭酸カルシウムを非晶質状態で一時的に貯蔵し、特に脱皮後の新たな外骨格構造の石灰化の間にすばやく動員するために、より良好に利用できるようにしている。通常、非晶質の無機塩は熱力学的に不安定なので、生体(例えばザリガニの)における非晶質炭酸カルシウムの形成は、かなり興味深い。非晶質炭酸カルシウム(ACC)は、その結晶多形(主にカルサイト、アラゴナイト)に形態変化する傾向がある。WO2005/115414は、ヒトの摂取に容易に利用できる安定なACCを含む組成物を提供するため、甲殻類の器官を採用している。カルシウムの代謝及び生体力学的な一般的重要性に鑑み、また、ACCが、栄養補助食品として、潜在的により可溶型で吸収型の炭酸カルシウムなので、本発明の目的は、非晶質炭酸カルシウムを調製する新規の方法を提供することにある。
本発明は、非晶質炭酸カルシウム(ACC)と、リン酸化アミノ酸及びリン酸化ペプチドから選択される少なくとも1つの成分とを含む組成物に関する。前記リン酸化アミノ酸及びリン酸化ペプチドは、ホスホ−セリンもしくはホスホ−スレオニン、又は両方を含んでもよい。前記リン酸化アミノ酸及びリン酸化ペプチドは、本発明の組成物中の炭酸カルシウムの非晶質形態を安定化する。本発明の一つの側面では、前記リン酸化ペプチドは、甲殻類の胃石に由来する。一つの態様では、本発明の組成物は、ACC、少なくとも1つのリン酸化アミノ酸又はペプチド、及びキチン又はキトサンを含む。
これまでに、いくつかのリン酸化アミノ酸又はペプチドが、試験管内の炭酸カルシウムの沈殿に影響を及ぼし、炭酸カルシウムの非晶質形態の生成につながることが分かった。特に、前記ペプチドが、チェラックス・クワドリカリナタス(Cherax quadricarinatus)の未脱皮期後半の胃石に存在する数種のタンパク質を含む場合、この作用が観察された。約65kDa、22kDa、21kDa及び12kDaの見掛けの分子量を有するペプチドは、非晶質炭酸カルシウム物質のナノ粒子の沈殿を誘発する。これに比して、不活性なタンパク質はCaCO3の結晶を与える。ナノ粒子は、非晶質CaCO3に典型的なラマンシフトを示す。
i)カルシウムイオン(CaCl2溶液を用いて)で水性溶液を生成するステップと、
ii)溶解性又は不溶性の「添加剤」(ホスホアミノ酸、キトサン、キチン、合成ペプチド、リン酸化ペプチド/タンパク質又はそのフラグメントなど)を加えるステップと、
iii)炭酸イオン(Na2CO3溶液、又は、例えば、CO2もしくは(NH4)2CO3の様な別の炭酸源を用いて)を加えるステップと、
iv)振盪するステップと、
v)CaCO3スラリーを沈殿させる(遠心分離、濾過などによる)ステップと、
vi)スラリーを脱水する(凍結乾燥器、空気流、噴霧乾燥などによる)ステップと
を含めることができる。
生成物の分析には、非晶質性を検証するために、様々な方法(XRD、電子線回折、SEMのような)により得られたCaCO3を試験することを含めてもよい。ラマン分光法(RS)は、ACCの特性を示す最も効率的で信頼できる方法であることが分かった。本明細書で報告した無機物のラマンシフト特性では、炭酸塩のピークが1080cm−1にあり、この幅広の形状はACCを示しこの含有量に比例している。リン酸塩のピークは、950cm−1にあり、試料中のリン酸塩の含有量と比例している。しかし、1080〜950cm−1の間の割合は比例するが、CO3 2−/PO4 3−比を直接示すものではない。
(例1)
チェラックス・クワドリカリナタスの胃石は、[WO2005/115414]に記載されているように調製した。未脱皮期後半の胃石由来の可溶性タンパク質をSDS−PAGEで分離すると、少なくとも顕著な6つの異なるタンパク質の存在が明らかになり(図1A、左)、最も豊富な存在は約65kDaの大きさであった(胃石タンパク質65、GAP65)。胃石の可溶性タンパク質の全含有量からGAP65の更なる精製を、DEAEのクロマトグラフィー(HPLC)を用いて、NaCl濃度を1Mまで勾配をかけて行った。GAP65の溶出は、NaClが300mMの時に始まったが、主に600mMにおいて継続した(画分17)。GAP65を豊富に含む画分17は、SDS−PAGEで分析し、図1Aの右に示すように、クーマシー(非特異的なタンパク質染色)、「ステインオール」(マイナスに帯電しているタンパク質の染色)及び「pas」(糖タンパク質の染色)で染色した。これらの染色から、GAP65について、この豊富な画分中の主要なタンパク質であり、マイナスに帯電している糖タンパク質であることが示唆される。GAP65のトリプシン消化後にナノスプレー法でQtof2を用いて分離し、MS−MSを用いてペプチドの配列決定を行い、7つの予測ペプチド配列を作り(図1B)、これらを、胃石板上皮のmRNAにもとづいてGAP65をコードする遺伝子の完全配列を取得するため、縮重プライマーの構築に使用した。図2Aは、タンパク質のN末端の予測シグナル配列(太字)を示す、GAP65のオープンリーディングフレームの推定アミノ酸配列を説明している。GAP65の全アミノ酸の約4.6%を可能性のあるリン酸化部位(灰色の囲み)として予測したが、他方、わずか3つの予測N−糖鎖付加部位(3つの文字を含む薄い囲み)及びわずか2つの予測O−糖鎖付加部位(アミノ酸番号72及び173における濃い囲み)だけが見つかった。負電荷は、タンパク質の約12mol%を構成する酸性残基のアスパラギン酸及びグルタミン酸から一部生じる。GAP65配列の生物情報分析により、29〜102位アミノ酸のキチン結合ドメイン2(ChtBD2)、122〜159位アミノ酸の低密度リポタンパク質受容体クラスAドメイン(LDLa)、195〜332位アミノ酸の多糖体の脱アセチル化酵素ドメインの3つの既知ドメイン(図2B)の存在が示唆された。図2Cは、低密度リポタンパク質受容体関連タンパク質由来の補体様反復配列CR3のNMR構造に対する相同性にもとづいた、LDLaドメインの予測3D構造を明らかにしている。このLDLaドメインは、予測カルシウム結合性を有するGAP65中唯一の既知のドメインである。
GAP65の特異発現は、未脱皮期のザリガニの数種のターゲット組織において、RT−PCRにより試験した(図3A)。GAP65の発現は、胃石板上皮及び表皮下組織(両方とも、角質の関連組織である)において検出された。GAP65の発現は、肝膵臓、胃壁及び精管では、検出されなかった。誘発した未脱皮期及び誘発しない脱皮間期のザリガニの胃石板におけるGAP65発現の、in situハイブリダイゼーションによる位置特定は、図3Bに提示してある。左画面は、胃石板のヘマトキシリン−エオシン染色を示し、中画面は、発現が検出されない対照のセンスプローブである。2つの右画面は、特定の領域をできるだけ拡大したアンチセンスプローブを示す。アンチセンスプローブにより、GAP65の発現は、誘発したザリガニ胃石板の円柱上皮細胞においてのみ検出できることが明らかであるが、誘発しない脱皮間期のザリガニでは、この発現は検出されなかった。
GAP65dsRNAを用いたサイレンシング後の胃石板上皮における相対GAP65転写量は、リアルタイムRT−PCRを用いて測定し、図4に示した。GAP65濃度は、エクジソン及びGAP65のdsRNA、エクジソン及びdsRNAキャリア、エクジソン及びC.クワドリカリナタスのビテロゲニン(CqVg)のdsRNAを注入したザリガニ、並びに両キャリアを注入した対照において評価した。配列特異的サイレンシングの対照として働く肝膵臓特異的な遺伝子であるCqVgは、主として妊娠した雌で見つかる。エクジソン及びGAP65のdsRNAを注入したザリガニの転写量は、エクジソン及びdsRNAキャリアを注入したザリガニで見出された量に比べ、かなり低かった。エクジソン及びCqVgのdsRNAを注入したザリガニにおいて、GAP65の転写量は、エクジソン及びdsRNAキャリアの注入群で検出された量とほぼ同じであった。対照であるキャリアを注入したザリガニでは、GAP65の転写量は、エクジソン及びGAP65のdsRNAを注入したザリガニで見られた量よりも高かったが、エクジソン及びdsRNA並びにエクジソン及びCqVgのdsRNAを注入した両ザリガニで検出した量より低かった。しかし、キャリアの対照群は、他の3つの群と統計学的に有意な差はなかった。
胃石生成におけるGAP65の役割を試験するために、脱皮間期のザリガニに対するGAP65のdsRNAの生体内注入を用いたRNAi技術を適用した。胃石生成の開始は、エクジソンの注入により達成した。図5では、エクジソン+GAP65のdsRNAの両方、エクジソン+dsRNAキャリアの両方、又はエクジソン及びdsRNAの両キャリアを注入した、ザリガニの胃石を見ることができる。図5Aは、各処置群から切断した代表的な胃石の側面写真である。この写真からは、GAP65のdsRNA及びエクジソンの両方を注入したザリガニにおける、胃石の形態学的変形が観察できるが、エクジソン及びdsRNAキャリアだけを注入したザリガニでは、胃石は、変形がなく正常に見えた。キャリアを注入した対照では、胃石は、未発達又は成長初期段階に見えた。図5Bは、ザリガニ及び切断前の胃石の背面のX線画像を示し、他方、図5Cは、パネルBの画像のコントラストのより強い画像を提示している。GAP65のdsRNA及びエクジソンの両方を注入したザリガニでは、無機質がより低密度な検出領域がいくつか記録されたが、他方、胃石板形状の構造は、保持されていた。エクジソン+dsRNAキャリアを注入したザリガニでは、胃石は、無機質の密度に影響がみられず正常に見えた。キャリアの対照の胃石は、小さすぎてX線画像化による検出はできなかった。
GAP65のdsRNA及びエクジソンを注入したザリガニ、並びにエクジソン及びdsRNAキャリアだけを注入したザリガニから切断した胃石の走査型電子顕微鏡(SEM)画像を、図6に提示する。図6A、Bは、胃石の中心部を通る断面の画像を示している。GAP65のdsRNA及びエクジソンを注入したザリガニの胃石では、エクジソン及びdsRNAキャリアのみを注入したザリガニの胃石に比べて、重度の構造的異常が観察できる。エクジソン及びキャリアを注入した胃石で観察された、高密度の無機質の層状構造は、エクジソン及びGAP65のdsRNAを注入したザリガニの胃石においては、中空のストローに似ているゆるくまとまった無機質の柱状構造に置き換わっている。小球におけるACCのまとまり及び小球サイズは、胃石の高密度の凝縮にとって重要である。2つの処置間の小球サイズを比較した15000倍の拡大画像を、図6Cに提示する。エクジソン及びGAP65のdsRNAを注入したザリガニの低密度配列の胃石では、小球サイズは、約100〜300nmの範囲にあり、一方、エクジソン及びdsRNAキャリアを注入したザリガニの胃石に沈積した正常なACCでは、小球は、よりせまいサイズ分布にあり、40〜60nmの範囲にあった。
バイオミネラリゼーションの過程におけるGAP65の役割を解明するために、ACCの安定性を試験する、試験管内の炭酸カルシウム沈殿分析を設定した。図7では、GAP65の存在下及び他のタンパク質(トリプシン)の存在下での、炭酸カルシウムの沈殿結果が提示される。図7AのSEM画像は、各処置における、炭酸カルシウムの際立った多形を示している。GAP65の存在下での炭酸カルシウムの沈殿は非晶質形状の沈積をもたらし、これは100〜500nmの小球からなる薄層として観察された。同様な条件の下であるが、トリプシン存在下で行った沈殿実験では、急速な結晶化が付随する結果となり、カルサイト及びバテライト球晶の大きな10μmの単結晶として観察された。図7Bは、GAP65の存在下で沈殿した炭酸カルシウム中のACCの特質を裏付けている。ラマン分析は、1070cm−1において明瞭な幅広のピークを有する、ACCの際立ったスペクトルを示している。試験管内の沈殿によって生成したACCの小球中のGAP65の存在は、沈殿物の無機質画分由来のタンパク質を精製し、これを、元のGAP65が豊富な画分と比較したSDS−PAGEで評価することにより確認した。
GAP65と共に沈殿したACCの安定性を、室温で保持した試料におけるラマンスペクトル分析により試験した。100μlの1MのCaC12を10mlの再蒸留水に加えた(最終濃度:10mM)。タンパク質抽出溶液(1.2μg/μl)から80μlを分取し加えた(最終濃度、約10μg/ml)。100μlの1MのNa2CO3(最終濃度:10mM)を加え、激しく振盪した。バイアルを、4000rpmで5分間遠心分離し、沈殿物をスライドガラス上に塗りつけて、すぐに空気流で乾燥した。CaCO3の沈積物は、初めに偏光顕微鏡によってカルサイト、バテライト及びACCの混合物として特徴付けた。観察結果は、ラマンスペクトル分析によって確認した。ACCは、薄い「殻」の形状であり、全CaCO3の少なくとも約50%を含んでいると推定された。ACCは、沈殿後1日、27日、6.5カ月目のACCのラマンスペクトル(図8A、8B、8C)が示すように、室内条件で、少なくとも1カ月は安定性を維持した。6.5カ月経過後のACCのラマンスペクトル(1085ピーク近辺)とカルサイトを比較すると(図9)、外見的には、混合物はACC及びバテライトを含むことを示していた(1085のピークにある肩を、おそらくバテライトを特徴付けるピーク分離の始まりであると考えた場合)。
胃石抽出物は、炭酸カルシウムの結晶化を阻害し、炭酸カルシウムの非晶質形状(ACC)を安定させる。ACCは、CaCl2、Na2CO3及び胃石抽出物を含有する溶液から調製したCaCO3沈殿物のラマンスペクトル分析によって検出した(図11)。ACCの存在は、約1080cm−1における際立つ幅広のピークの出現によって確認される。560におけるピークは、ガラス基質によって生じる。GAP遺伝子の発現は、胃石板上皮及び表皮下組織(両方とも角質関連組織である)に特異的であることが分かった。数種のターゲット組織におけるGAP21、GAP22及びGAP65の特異的発現は、例2の記述と同様に、RT−PCR法によって調べた。GAP21及びGAP65の発現は、両角質関連組織において見つかった。GAP22の発現は、胃石板上皮でのみ見つかった。対応する遺伝子のcDNA配列を取得し、これらの推定タンパク質が見つかった(図13〜15)。4つの全てのタンパク質は、そのN末端にシグナルペプチドを含有することが分かった(図13〜15における下線部及び図2の太字のアミノ酸)。保存ドメインのデータベースに対する類似性検索によって、GAP65は、キチン結合ドメイン2、低密度リポタンパク質受容体クラスAドメイン及び多糖体の脱アセチル化酵素のドメインの3つの保存ドメインを含有することが明らかになった。一方、GAP12、GAP21及びGAP22は、既知のいずれのドメインとも、顕著な類似性を示さない。
100μlの1MのCaC12を10mlの再蒸留水(DDW)に加え、10mMの最終濃度を得た。200μlのP−セリン(P−ser)溶液(100mM)を、この溶液に加え、2mMのP−serを得た。100μlの1MのNa2CO3を加え(最終濃度:10mM)、続いて激しく振盪した。バイアルを、室温で4000rpmにおいて5分間遠心分離した。溶液の上部を除去し、沈殿物をスライドガラス上に塗りつけて、すぐに空気流で乾燥した。RSは、ACCを示した(図16)。試料を室温で保存し、沈殿の5カ月後にACCの安定性を試験した(図28)。
100μlの1MのCaCl2を10mlのDDWに加えた(最終濃度:10mM)。100μlのP−スレオニン(P−Thr)溶液(100mM)を、この溶液に加え、1mMのP−Thrを得た。100μlの1MのNa2CO2を加え(最終濃度:10mM)、続いて激しく振盪した。バイアルを、室温で4000rpmにおいて5分間遠心分離した。溶液の上部を除去し、沈殿物をスライドガラス上に塗りつけて、すぐに空気流で乾燥した。RSは、ACCを示した(図17)。試料を室温で保存し、沈殿の4.5カ月後にACCの安定性を試験した(図29)。
100μlの1MのCaCl2を10mlのDDWに加えた(最終濃度:10mM)。200μlのP−セリン溶液(100mM)を、この溶液に加えた。100μlの1MのNa2CO2を加え(最終濃度:10mM)、続いて激しく振盪した。バイアルを、室温で4000rpmにおいて5分間遠心分離した。溶液の上部を除去し、沈殿物を液体窒素中で凍結し、凍結乾燥器で凍結乾燥した。RSは、ACCを示した(図18)。
例11に記載した条件は、CaCl2及びNa2CO3の最終濃度を、10mMから100mMに変えることにより変更した。RSは、ACCを示した(図19)。
例10に記載した条件は、脱水方法を、流動空気から凍結乾燥に変えることにより変更した。RSは、ACCを示した(図20)。
20mMのCaCl2、20mMのNa2CO3、2mMのP−Serを含み、キトサン(3wt%、0.2Mの酢酸に溶解)を、カルシウム添加後の最終濃度0.3wt%に、沈殿析出用溶液に加えた系である。RSは、ACCを示した(図21)。
例14に記載した条件は、最終濃度が0.5MのCaCl2、0.5MのNa2CO3及び3mMのP−serを使用することにより変更した。この組成物は、濃度の上限を表す。RSは、ACCを示した(図22)。
胃石を、内分泌学的に誘発した未脱皮期にあるザリガニから切断し、重量を量り、蒸留水で洗い、−20℃で保持した。外側のあらゆる残留物質を除去するために、胃石の外層を掻取った後に、胃石を液体窒素を用いて凍結し、乳鉢と乳棒を用いてすりつぶし粉末にした。脱ミネラル化を、20mlの0.02M酢酸アンモニウム、0.5MのEGTA中で、氷上でpH7.0にして、胃石粉末の各グラムをかき混ぜることにより行った。CaCO3の溶解が完了してから、懸濁液を遠心分離し(2000rpm、15〜20分間、4℃)、上清を採取した。残りの不溶性マトリックス(ISM)は、石灰化溶液への添加剤として使用した(ステップii)。200μlのISM(推定:約30μgタンパク質)を、10mMのCaCl2及び10mMのNa2CO3を含む10mlの結晶化用混合物に加え、続いて、空気流で脱水した。RSは、ACCを示した(図23)。
例16に記載した条件の変更を、CaCl2及びNa2CO3の最終濃度を10mMから20mMに変え、ISMの量を100μl(約15μgタンパク質)に変え、さらに、凍結乾燥して脱水することにより行った。RSは、ACCを示した(図24)。
キチン質不溶相からキチンに結合しているタンパク質(水素結合により結合しているものまたは共有結合により結合しているもののいずれも)を遊離させ、得られたペプチドのACCの誘発及び安定化における活性を示すために、ISMを数種のタンパク質分解酵素で処理した(図25)。
28mlの酢酸アンモニウム(2mM)を7mlのISMに加えた。この溶液の10mlを、10mlのストレプトマイセス・グリセウス(Streptomyces griseus)(Sigma、P6911、0.6mg/ml)由来のプロテアーゼと、酢酸アンモニウム(2mM)中で混合した。ISMの懸濁液をタンパク質分解酵素と共に、渦流条件下で4℃で2時間インキュベートした。インキュベート後、バイアルを4000rpmで5分間遠心分離した。ISMの消化されたタンパク質を含有する上清を除去し、上清lmlを10m1のCaCl2(10mM)に加えた。100μlの1MのNa2CO3(最終濃度:10mM)を加え、続いて激しく振盪した。バイアルを4000rpmで5分間遠心分離し、沈殿物をスライドガラス上に塗りつけて、すぐに空気流で乾燥した。RSは、ACCのピーク(1080における)と、おそらくリン酸カルシウムである別の第2のピーク(950におけるピーク)を示した(図26)。試料を室温で保存し、沈殿の7カ月後にACCの安定性を試験した(図31)。
28mlの酢酸アンモニウム(2mM)を7mlのISMに加えた。この溶液の10mlを、10mlのパパイン(0.26mg/ml)と、酢酸アンモニウム(2mM)中で混合した。ISMの懸濁液をタンパク質分解酵素と共に、渦流条件下で、4℃で2時間インキュベートした。インキュベート後、バイアルを4000rpmで5分間遠心分離した。ISMの消化されたタンパク質をこの時点で含有する上清を除去し、上清lmlを10mlのCaCl2(10mM)に加えた。100μlの1MのNa2CO3(最終濃度:10mM)を加え、続いて激しく振盪した。バイアルを4000RPMで5分間遠心分離し、沈殿物をスライドガラス上に塗りつけて、すぐに空気流で乾燥した。RSは、ACCと、おそらくリン酸カルシウムを示した(図27)。試料を室温で保存し、沈殿の7カ月後にACCの安定性を試験した(図32)。
Claims (1)
- 単離され精製されたリン酸化ペプチドであって、甲殻類の胃石又は角質(cuticle)からのものであり、配列番号1で示されるアミノ酸配列を有するリン酸化ペプチド。
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