JPH0112474B2 - - Google Patents
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- JPH0112474B2 JPH0112474B2 JP57035637A JP3563782A JPH0112474B2 JP H0112474 B2 JPH0112474 B2 JP H0112474B2 JP 57035637 A JP57035637 A JP 57035637A JP 3563782 A JP3563782 A JP 3563782A JP H0112474 B2 JPH0112474 B2 JP H0112474B2
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本発明は新規な特徴を有するホスホリパーゼD
−Pおよびその製造法に関する。 ホスホリパーゼDはリン脂質に作用してアルコ
ールを遊離せしめる酵素作用を有しているためコ
リンオキシダーゼと組み合せてコリンリン脂質の
定量に用いることができることが知られている。
従来のホスホリパーゼDは、種々のリン脂質に作
用するため、特定のリン脂質の定量は不可能であ
つた。 本発明者らは、リン脂質のうち、レシチンに高
い基質特異性を示し、レシチンに作用してホスフ
アチジン酸およびコリンを生成する反応を触媒す
るホスホリパーゼD活性を有する新規な酵素を見
い出した。本酵素をホスホリパーゼD−Pと命名
した。また本発明のホスホリパーゼD−Pのスト
レプトミセス属に属する微生物の培養による製造
法を確立した。 ホスホリパーゼD−Pは、下記の理化学的性質
を有するものである。 基質特異性としてレシチンに作用し、リゾレ
シチンおよびスフインゴミエリンに対して、相
対活性がレシチンを基質とした場合の5%以下
である。 酵素作用は、反応式〔〕で示す通り。 レシチン+H2O→ホスフアチジン酸+コリ
ン 〔1〕 本酵素はまた、下記の性質を有するものであ
る。 分子量:約46000(バイオゲル・ゲル過法に
よる) 至適PH:5.5付近 PH安定性:PH4.2−8.5付近 等電点:PH4.2付近 熱安定性:PH6.0で60℃、10分間の加熱まで
安定 本発明者らは、宮崎県えびの市の土壌より分離
したストレプトミセス(Streptomyces)属に属
する細菌AA586株が、主にその菌体外にホスホ
リパーゼD−Pを生産することを見い出し、該酵
素を単一までに精製した。 上記の細菌AA586株の菌学的性状は、以下の
通りである。 (a) 形態的性状 イーストエキス・麦芽エキス寒天培地上で、
26℃、10〜15日間培養し観察した所見は次の通
りである。 気菌糸;直径0.6−0.8μ、曲線状で、単純
分岐をなして伸長し、多数の連鎖した胞子を
形成する。胞子の連鎖は螺旋を呈し、ゆるく
2−4回巻いたものが多い。 胞子;短桿状ないし卵形で、大きさ0.6〜
0.8×1.0〜1.5μ、表面は平滑。 基生菌糸;分岐をなして曲線状に伸長し、
直径0.7〜0.7μ、菌糸の分裂や着生はみられ
ない。 勒毛胞子、胞子のう;形成しない。 (b) ジアミノピメリン酸形成 全細胞による分析で、L−型のジアミノピメ
リン酸が検出された。 (c) 各培地における生育状態 各種培地上で26℃、14日間培養し、観察した
所見は以下の通りである。 シユクロース・硝酸塩寒天培地 生育;僅少ないし不良。 基生菌糸の色;ライト・アイボリー〔Light
Ivory(2ca)〕 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 グルコース・アスパラギン寒天培地 生育;不良 基生菌糸の色;ライト・ビート〔Light
Wheat(2ea)〕ないしバンブー〔Bamboo
(2gc)〕。 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 グリセリン・アスパラギン寒天培地 生育;中程度。 基生菌糸の色;バンブー(2gc)。 気菌糸;不良。 気菌糸の色;ナチユラル〔Natural(3dc)〕
ないしシルバー・グレイ〔SilverGray
(3fe)〕。 可溶性色素;ライト・イエロー〔Iight
Yellow(2ea)〕。 スターチ・無機塩寒天培地 生育;中程度 基生菌糸の色;ライト・ビート(2ea)。 気菌糸;僅少ないし不良。 気菌糸の色;ホワイト〔White(a)〕ないしビ
スク〔Bisque(3ea)〕。 可溶性色素;生じない。 チロシン寒天培地 生育;中程度ないし良好。 基生菌糸の色;クロウブ・ブラウン〔Clove
Brown(3pl)〕。 気菌糸;不良ないし中程度。 気菌糸の色;シルバー・グレイ(3fe)ない
しグレイ〔Gray(g)〕。 可溶性色素;生じない。 オート・ミール寒天培地 生育;中程度 基生菌糸の色;ライト・アイボリー(2ca)
ないしライト・ビート(2ea)。 気菌糸;僅少。 気菌糸の色;ホワイト(a)。 可溶性色素;生じない。 イーストエキス・麦芽エキス寒天培地 生育;良好。 基生菌糸の色;マスタード・ゴールド
〔Mustard Gold(2pg)〕ないしマスタード・
ブラウン〔Mustard Brown(2pi)〕。 気菌糸;中程度ないし良好。 気菌糸の色;グレイ(g)ないしシルバー・グレ
イ(3fe)。 可溶性色素;マスタード・ゴールド(2pg)。 ベネツト氏寒天培地 生育;中程度 基生菌糸の色;マスタード・ブラウン
(2pi)。 気菌糸;中程度。 気菌糸の色;グレイ(g)。 可溶性色素;マスタード・ゴールド(2pg)。 エマソン氏寒天培地 生育;中程度。 基生菌糸の色;マスタード・ゴールド
(2pg)。 気菌糸;生じない 可溶性色素;マスタード・ゴールド(2pg)。 栄養寒天培地 生育;僅少。 基生菌糸の色;無色 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 ペプトン・イーストエキス・鈴寒天培地 生育;僅少。 基生菌糸の色;無色 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 (d) 生理的諸性質 生育温度範囲;13〜35℃(至適温度22〜28
℃)。 ゼラチンの液化;液化しない。 スターチの加水分解;加水分解する。 脱脂牛乳のペプトン化、凝固;ペプトン化
および凝固しない。 メラニン様色素の生成;チロシン寒天培地
上では生成するが、ペプトン・イーストエキ
ス・鉄寒天培地上では生成しない。 炭素源の利用性; L−アラビノース − D−フラクトース − イノシトール − D−マンニトール − ラフイノース − L−ラムノース − シユクロース − D−キシロース − D−グルコース + (ただし、プリドハム・ゴドリーブの基礎培地に
グルコースを添加しても、生育がみられなかつた
ので、スターチ・無機塩寒天培地のスターチを除
いたものを基礎培地として用いて試験した。)以
上の菌学的性状を総括すると、本菌AA586株は、
真性の気菌糸より多数の胞子の連鎖を有する気菌
糸を形成し、ジアミノピメリン酸がL−型であ
り、鞭毛胞子や胞子のうを形成しないことなどの
性状を有しており、このような性状を有する菌株
を、バージーズ・マニユアル・オブ・ザ・デタミ
ネイテイブ・バクテリオロジー(Bergey′s
Manul of the Determinative Bacteriology)
第8版(1974年)で検索すると、ストレプトミセ
ス属に属するものであると同定された。よつて
AA586株を、ストレプトミセス・エス・ピー・
AA586(Streptomyces sp・AA586)と命名し
た。 また、本菌株は、工業技術院微生物工業技術研
究所に、微生物受託番号「微工研菌寄第6100号、
FERM P−6100」として寄託されている。 さらに、本菌に限らず、本発明の新規なホスホ
リパーゼD−Pを生産する菌はすべて、本発明に
使用することができる。また簡単には、ストレプ
トミセス属に属するホスホリパーゼD−P生産菌
が使用される。 本発明を実施するにあたつては、該ホスホリパ
ーゼD−P生産菌を酸素を生産する通常の方法で
培養する。培養の形態は通常は液体培養で行なう
が、工業的には深部通気撹拌培養を行なうのが有
利である。培養の栄養源としては、微生物の培養
に通常用いられるものが広く使用され得る。炭素
源としては資化可能な炭素化合物であればよく、
例えば、グルコース、シユクロース、乳糖、麦芽
糖、スターチ、デキストリン、糖蜜、グリセリン
などが使用される。窒素源としては、利用可能な
窒素化合物であれば良く、特に有機化合物が好ま
しい。例えば、コーン・スチープ・リカー、大豆
紛、綿実紛、小麦グルテン、ペプトン、肉エキ
ス、酵母エキス、乾燥酵母、カゼイン加水分解物
などが使用される。その他、リン酸塩、マグネシ
ウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜
鉛などの塩類が必要に応じて使用される。培養温
度はホスホリパーゼD−Pを生産する範囲内で適
宜変更し得るが、好ましくは25〜30℃、特に好ま
しくは26℃程度である。培養時間は条件によつて
異なるが、ホスホリパーゼD−Pが最高収量に達
する時期を見計つて適当な時期に培養を終了すれ
ばよく、通常は40〜90時間である。 このようにして得られた培養物からホスホリパ
ーゼD−Pを採取するのであるが、本酵素は水に
易溶性であつて、主として培養液中に存在す
る。培養液中に存在するホスホリパーゼD−Pは
培養液を濃縮するかもしくは濃縮することなく
可溶性塩類例えば硫安、食塩などで飽和沈澱させ
るか、または親水性有機溶媒、例えばメタノー
ル、エタノール、アセトンなどを添加することに
より沈澱させることができる。沈殿物は水に溶解
し、半透膜で透析することにより低分子の不純物
を除去することができる。また、例えばジエチル
アミノエチル−セルロース、ジエチルアミノエチ
ル−セフアロース、パルミトイル化ガーゼ(特公
昭55−48791号に基いて調製したもの)などの吸
着剤に対する吸着親和力の差を利用してイオン交
換クロマトグラフイーまたは吸着クロマトグラフ
イー、あるいはデキストランゲル、ポリアクリル
アミドゲル、セフアロースなどのゲル過剤を用
いるゲル過などの通常の手段を利用して培養液
中の低分子の不純物、有色物質などを有効に分離
することができる。これらの手段により得られる
酵素溶液から減圧濃縮、凍結乾燥などの操作によ
り、粗製ホスホリパーゼD−Pを得ることができ
る。 上記の処理により得られる粗製ホスホリパーゼ
D−Pの溶液あるいは固形物は、さらに蛋白質、
酵素などの精製に通常用いられる手段、例えば吸
着剤、ゲル過などを使用することにより、ホス
ホリパーゼD−Pを精製することができる。 次に本発明のホスホリパーゼD−Pの活性の測
定法、性質などについて述べる。 酸素活性測定法 10mM CaCl250μl、3%トリトンX−
100Triton X−100)50μl、0.2Mジメチルグル
タル酸−NaOH緩衝液(PH5.5)100μl、10mM
レシチンエマルジヨン100μl、水150μlの組成を
有する反応液0.45mlを37℃で3分間プレインキ
ユベーシヨン後、50μlのホスホリパーゼD−P
を含む酵素液を加え、反応を開始する。正確に
10分後に10mMEDTA−1Mトリス−HCl緩衝
液(PH8)に溶解した1%セチルトリメチルア
ンモニウムクロリド0.5mlを添加して反応を停
止せしめた。次いで生成したコリンを、コリン
オキシダーゼ2.5単位、ペルオキシダーゼ2.5単
位、0.2%フエノール50μl、0.3%4−アミノア
ンチピリン50μl、1Mトリス−HCl緩衝液(PH
8.0)50μlの組成を有する反応液0.5mlを加えて
20分間反応せしめて発色させた。さらにこれ
に、1.5mlの1%トリトンX−100を加えた後、
500nmで比色定量を行なつた。酵素活性は下
記の計算式により求めた。1単位(1Unit)は
上記反応条件下、1分間に1μmoleのコリンを
遊離させる活性とした。 酵素活性(Unit/ml) =△A500nm×1/4×1000/50×1/10 (ただし△A500nm:上記方法で酵素液を加え
ないで同様の操作を行ない、酵素液を添加した
値から差し引いた500nmの吸光度の値) 基質特異性 上記の酵素活性測定法における反応液中のレ
シチンの代わりに下記の種々の物質を用いて、
ホスホリパーゼD−Pの基質特異性を検討し
た。その結果をレシチンに対する相対活性で示
す。基 質 相対活性(%) レシチン 100 リゾレシチン 3.4 スフインゴミエリン 0.03 上記の結果より、本酵素は少なくともレシチ
ンに対し、非常に高い特異性を示すものと認め
られ、リゾレシチンに対してはわずかながら作
用し、またスフイゴミエリンに対してはほとん
ど作用せず、レシチンを基質とする相対活性に
おいて、レゾレシチン、スフインゴミエリンに
対する活性は5%以下であると認められるもの
である。 酵素作用 1モルのレシチンおよび1モルの水から、1
モルのホスフアチジン酸およびコリンを生成す
る反応を触媒する作用を有する。 至適PH 前記の酵素活性測定法における0.2Mジメチ
ルグルタル酸−NaOH緩衝液の代りに、0.2M
ジメチルグルタル酸−NaOH緩衝液(PH4−
7.5)(第1図中、〇――〇で示す)、リン酸緩衝
液(PH6.5−8)(第1図中、△――△で示す)、
トリス−HCl緩衝液(PH8−9)(第1図中、
□――□で示す)を用いて、本発明のホスホリ
パーゼD−Pのレシチンに対する酵素活性を測
定した結果第1図に示す通りであつて、至適PH
は5.5付近と認められる。 熱安定性 0.05%牛血清アルブミンを含む10mMジメチ
ルグルタル酸−NaOH緩衝液(PH6.0)に溶解
した酵素液(25U/ml)を45〜75℃の各温度で
10分間処理し、その後水冷し、前記の酵素活性
の測定法に従つてホスホリパーゼD−Pのレシ
チンに対する酵素活性(残存活性)を測定し
た。その結果、第2図に示す通りであつて、そ
の熱安定性において本酵素は、60℃まで安定で
あつた。 PH安定性 0.05%牛血清アルブミンを含むジメチルグル
タル酸−NaOH緩衝液(PH4−7.5)(第3図
中、〇で示す)、トリス−HCl緩衝液(PH8−
8.5)(第3図中、△で示す)、グリシン−
NaOH緩衝液(PH9.5)(第3図中、□で示す)
およびリン酸緩衝液(PH6.5〜7)(第3図中、
●で示す)に48U/mlになるよう酵素液を調製
し、37℃、60分間放置後、ホスホリパーゼD−
Pのレシチンに対する酵素活性(残存活性)を
測定した。その結果は第3図に示す通りであつ
て、そのPH安定性は、4.2−8.5付近と認められ
る。 等電点 PH4.2付近(キヤリアアンフオライトを用い
る電気泳動法により測定した。) 分子量 約46000(バイオゲルP−200を用いるゲル
過去において測定した。) 種々の金属イオンおよびEDTAの影響 前記の酵素活性の測定法において種々の添加
物を加えてホスホリパーゼD−Pのレシチンに
対する酵素活性を測定した結果は次の通りであ
る。
−Pおよびその製造法に関する。 ホスホリパーゼDはリン脂質に作用してアルコ
ールを遊離せしめる酵素作用を有しているためコ
リンオキシダーゼと組み合せてコリンリン脂質の
定量に用いることができることが知られている。
従来のホスホリパーゼDは、種々のリン脂質に作
用するため、特定のリン脂質の定量は不可能であ
つた。 本発明者らは、リン脂質のうち、レシチンに高
い基質特異性を示し、レシチンに作用してホスフ
アチジン酸およびコリンを生成する反応を触媒す
るホスホリパーゼD活性を有する新規な酵素を見
い出した。本酵素をホスホリパーゼD−Pと命名
した。また本発明のホスホリパーゼD−Pのスト
レプトミセス属に属する微生物の培養による製造
法を確立した。 ホスホリパーゼD−Pは、下記の理化学的性質
を有するものである。 基質特異性としてレシチンに作用し、リゾレ
シチンおよびスフインゴミエリンに対して、相
対活性がレシチンを基質とした場合の5%以下
である。 酵素作用は、反応式〔〕で示す通り。 レシチン+H2O→ホスフアチジン酸+コリ
ン 〔1〕 本酵素はまた、下記の性質を有するものであ
る。 分子量:約46000(バイオゲル・ゲル過法に
よる) 至適PH:5.5付近 PH安定性:PH4.2−8.5付近 等電点:PH4.2付近 熱安定性:PH6.0で60℃、10分間の加熱まで
安定 本発明者らは、宮崎県えびの市の土壌より分離
したストレプトミセス(Streptomyces)属に属
する細菌AA586株が、主にその菌体外にホスホ
リパーゼD−Pを生産することを見い出し、該酵
素を単一までに精製した。 上記の細菌AA586株の菌学的性状は、以下の
通りである。 (a) 形態的性状 イーストエキス・麦芽エキス寒天培地上で、
26℃、10〜15日間培養し観察した所見は次の通
りである。 気菌糸;直径0.6−0.8μ、曲線状で、単純
分岐をなして伸長し、多数の連鎖した胞子を
形成する。胞子の連鎖は螺旋を呈し、ゆるく
2−4回巻いたものが多い。 胞子;短桿状ないし卵形で、大きさ0.6〜
0.8×1.0〜1.5μ、表面は平滑。 基生菌糸;分岐をなして曲線状に伸長し、
直径0.7〜0.7μ、菌糸の分裂や着生はみられ
ない。 勒毛胞子、胞子のう;形成しない。 (b) ジアミノピメリン酸形成 全細胞による分析で、L−型のジアミノピメ
リン酸が検出された。 (c) 各培地における生育状態 各種培地上で26℃、14日間培養し、観察した
所見は以下の通りである。 シユクロース・硝酸塩寒天培地 生育;僅少ないし不良。 基生菌糸の色;ライト・アイボリー〔Light
Ivory(2ca)〕 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 グルコース・アスパラギン寒天培地 生育;不良 基生菌糸の色;ライト・ビート〔Light
Wheat(2ea)〕ないしバンブー〔Bamboo
(2gc)〕。 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 グリセリン・アスパラギン寒天培地 生育;中程度。 基生菌糸の色;バンブー(2gc)。 気菌糸;不良。 気菌糸の色;ナチユラル〔Natural(3dc)〕
ないしシルバー・グレイ〔SilverGray
(3fe)〕。 可溶性色素;ライト・イエロー〔Iight
Yellow(2ea)〕。 スターチ・無機塩寒天培地 生育;中程度 基生菌糸の色;ライト・ビート(2ea)。 気菌糸;僅少ないし不良。 気菌糸の色;ホワイト〔White(a)〕ないしビ
スク〔Bisque(3ea)〕。 可溶性色素;生じない。 チロシン寒天培地 生育;中程度ないし良好。 基生菌糸の色;クロウブ・ブラウン〔Clove
Brown(3pl)〕。 気菌糸;不良ないし中程度。 気菌糸の色;シルバー・グレイ(3fe)ない
しグレイ〔Gray(g)〕。 可溶性色素;生じない。 オート・ミール寒天培地 生育;中程度 基生菌糸の色;ライト・アイボリー(2ca)
ないしライト・ビート(2ea)。 気菌糸;僅少。 気菌糸の色;ホワイト(a)。 可溶性色素;生じない。 イーストエキス・麦芽エキス寒天培地 生育;良好。 基生菌糸の色;マスタード・ゴールド
〔Mustard Gold(2pg)〕ないしマスタード・
ブラウン〔Mustard Brown(2pi)〕。 気菌糸;中程度ないし良好。 気菌糸の色;グレイ(g)ないしシルバー・グレ
イ(3fe)。 可溶性色素;マスタード・ゴールド(2pg)。 ベネツト氏寒天培地 生育;中程度 基生菌糸の色;マスタード・ブラウン
(2pi)。 気菌糸;中程度。 気菌糸の色;グレイ(g)。 可溶性色素;マスタード・ゴールド(2pg)。 エマソン氏寒天培地 生育;中程度。 基生菌糸の色;マスタード・ゴールド
(2pg)。 気菌糸;生じない 可溶性色素;マスタード・ゴールド(2pg)。 栄養寒天培地 生育;僅少。 基生菌糸の色;無色 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 ペプトン・イーストエキス・鈴寒天培地 生育;僅少。 基生菌糸の色;無色 気菌糸;生じない。 可溶性色素;生じない。 (d) 生理的諸性質 生育温度範囲;13〜35℃(至適温度22〜28
℃)。 ゼラチンの液化;液化しない。 スターチの加水分解;加水分解する。 脱脂牛乳のペプトン化、凝固;ペプトン化
および凝固しない。 メラニン様色素の生成;チロシン寒天培地
上では生成するが、ペプトン・イーストエキ
ス・鉄寒天培地上では生成しない。 炭素源の利用性; L−アラビノース − D−フラクトース − イノシトール − D−マンニトール − ラフイノース − L−ラムノース − シユクロース − D−キシロース − D−グルコース + (ただし、プリドハム・ゴドリーブの基礎培地に
グルコースを添加しても、生育がみられなかつた
ので、スターチ・無機塩寒天培地のスターチを除
いたものを基礎培地として用いて試験した。)以
上の菌学的性状を総括すると、本菌AA586株は、
真性の気菌糸より多数の胞子の連鎖を有する気菌
糸を形成し、ジアミノピメリン酸がL−型であ
り、鞭毛胞子や胞子のうを形成しないことなどの
性状を有しており、このような性状を有する菌株
を、バージーズ・マニユアル・オブ・ザ・デタミ
ネイテイブ・バクテリオロジー(Bergey′s
Manul of the Determinative Bacteriology)
第8版(1974年)で検索すると、ストレプトミセ
ス属に属するものであると同定された。よつて
AA586株を、ストレプトミセス・エス・ピー・
AA586(Streptomyces sp・AA586)と命名し
た。 また、本菌株は、工業技術院微生物工業技術研
究所に、微生物受託番号「微工研菌寄第6100号、
FERM P−6100」として寄託されている。 さらに、本菌に限らず、本発明の新規なホスホ
リパーゼD−Pを生産する菌はすべて、本発明に
使用することができる。また簡単には、ストレプ
トミセス属に属するホスホリパーゼD−P生産菌
が使用される。 本発明を実施するにあたつては、該ホスホリパ
ーゼD−P生産菌を酸素を生産する通常の方法で
培養する。培養の形態は通常は液体培養で行なう
が、工業的には深部通気撹拌培養を行なうのが有
利である。培養の栄養源としては、微生物の培養
に通常用いられるものが広く使用され得る。炭素
源としては資化可能な炭素化合物であればよく、
例えば、グルコース、シユクロース、乳糖、麦芽
糖、スターチ、デキストリン、糖蜜、グリセリン
などが使用される。窒素源としては、利用可能な
窒素化合物であれば良く、特に有機化合物が好ま
しい。例えば、コーン・スチープ・リカー、大豆
紛、綿実紛、小麦グルテン、ペプトン、肉エキ
ス、酵母エキス、乾燥酵母、カゼイン加水分解物
などが使用される。その他、リン酸塩、マグネシ
ウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜
鉛などの塩類が必要に応じて使用される。培養温
度はホスホリパーゼD−Pを生産する範囲内で適
宜変更し得るが、好ましくは25〜30℃、特に好ま
しくは26℃程度である。培養時間は条件によつて
異なるが、ホスホリパーゼD−Pが最高収量に達
する時期を見計つて適当な時期に培養を終了すれ
ばよく、通常は40〜90時間である。 このようにして得られた培養物からホスホリパ
ーゼD−Pを採取するのであるが、本酵素は水に
易溶性であつて、主として培養液中に存在す
る。培養液中に存在するホスホリパーゼD−Pは
培養液を濃縮するかもしくは濃縮することなく
可溶性塩類例えば硫安、食塩などで飽和沈澱させ
るか、または親水性有機溶媒、例えばメタノー
ル、エタノール、アセトンなどを添加することに
より沈澱させることができる。沈殿物は水に溶解
し、半透膜で透析することにより低分子の不純物
を除去することができる。また、例えばジエチル
アミノエチル−セルロース、ジエチルアミノエチ
ル−セフアロース、パルミトイル化ガーゼ(特公
昭55−48791号に基いて調製したもの)などの吸
着剤に対する吸着親和力の差を利用してイオン交
換クロマトグラフイーまたは吸着クロマトグラフ
イー、あるいはデキストランゲル、ポリアクリル
アミドゲル、セフアロースなどのゲル過剤を用
いるゲル過などの通常の手段を利用して培養液
中の低分子の不純物、有色物質などを有効に分離
することができる。これらの手段により得られる
酵素溶液から減圧濃縮、凍結乾燥などの操作によ
り、粗製ホスホリパーゼD−Pを得ることができ
る。 上記の処理により得られる粗製ホスホリパーゼ
D−Pの溶液あるいは固形物は、さらに蛋白質、
酵素などの精製に通常用いられる手段、例えば吸
着剤、ゲル過などを使用することにより、ホス
ホリパーゼD−Pを精製することができる。 次に本発明のホスホリパーゼD−Pの活性の測
定法、性質などについて述べる。 酸素活性測定法 10mM CaCl250μl、3%トリトンX−
100Triton X−100)50μl、0.2Mジメチルグル
タル酸−NaOH緩衝液(PH5.5)100μl、10mM
レシチンエマルジヨン100μl、水150μlの組成を
有する反応液0.45mlを37℃で3分間プレインキ
ユベーシヨン後、50μlのホスホリパーゼD−P
を含む酵素液を加え、反応を開始する。正確に
10分後に10mMEDTA−1Mトリス−HCl緩衝
液(PH8)に溶解した1%セチルトリメチルア
ンモニウムクロリド0.5mlを添加して反応を停
止せしめた。次いで生成したコリンを、コリン
オキシダーゼ2.5単位、ペルオキシダーゼ2.5単
位、0.2%フエノール50μl、0.3%4−アミノア
ンチピリン50μl、1Mトリス−HCl緩衝液(PH
8.0)50μlの組成を有する反応液0.5mlを加えて
20分間反応せしめて発色させた。さらにこれ
に、1.5mlの1%トリトンX−100を加えた後、
500nmで比色定量を行なつた。酵素活性は下
記の計算式により求めた。1単位(1Unit)は
上記反応条件下、1分間に1μmoleのコリンを
遊離させる活性とした。 酵素活性(Unit/ml) =△A500nm×1/4×1000/50×1/10 (ただし△A500nm:上記方法で酵素液を加え
ないで同様の操作を行ない、酵素液を添加した
値から差し引いた500nmの吸光度の値) 基質特異性 上記の酵素活性測定法における反応液中のレ
シチンの代わりに下記の種々の物質を用いて、
ホスホリパーゼD−Pの基質特異性を検討し
た。その結果をレシチンに対する相対活性で示
す。基 質 相対活性(%) レシチン 100 リゾレシチン 3.4 スフインゴミエリン 0.03 上記の結果より、本酵素は少なくともレシチ
ンに対し、非常に高い特異性を示すものと認め
られ、リゾレシチンに対してはわずかながら作
用し、またスフイゴミエリンに対してはほとん
ど作用せず、レシチンを基質とする相対活性に
おいて、レゾレシチン、スフインゴミエリンに
対する活性は5%以下であると認められるもの
である。 酵素作用 1モルのレシチンおよび1モルの水から、1
モルのホスフアチジン酸およびコリンを生成す
る反応を触媒する作用を有する。 至適PH 前記の酵素活性測定法における0.2Mジメチ
ルグルタル酸−NaOH緩衝液の代りに、0.2M
ジメチルグルタル酸−NaOH緩衝液(PH4−
7.5)(第1図中、〇――〇で示す)、リン酸緩衝
液(PH6.5−8)(第1図中、△――△で示す)、
トリス−HCl緩衝液(PH8−9)(第1図中、
□――□で示す)を用いて、本発明のホスホリ
パーゼD−Pのレシチンに対する酵素活性を測
定した結果第1図に示す通りであつて、至適PH
は5.5付近と認められる。 熱安定性 0.05%牛血清アルブミンを含む10mMジメチ
ルグルタル酸−NaOH緩衝液(PH6.0)に溶解
した酵素液(25U/ml)を45〜75℃の各温度で
10分間処理し、その後水冷し、前記の酵素活性
の測定法に従つてホスホリパーゼD−Pのレシ
チンに対する酵素活性(残存活性)を測定し
た。その結果、第2図に示す通りであつて、そ
の熱安定性において本酵素は、60℃まで安定で
あつた。 PH安定性 0.05%牛血清アルブミンを含むジメチルグル
タル酸−NaOH緩衝液(PH4−7.5)(第3図
中、〇で示す)、トリス−HCl緩衝液(PH8−
8.5)(第3図中、△で示す)、グリシン−
NaOH緩衝液(PH9.5)(第3図中、□で示す)
およびリン酸緩衝液(PH6.5〜7)(第3図中、
●で示す)に48U/mlになるよう酵素液を調製
し、37℃、60分間放置後、ホスホリパーゼD−
Pのレシチンに対する酵素活性(残存活性)を
測定した。その結果は第3図に示す通りであつ
て、そのPH安定性は、4.2−8.5付近と認められ
る。 等電点 PH4.2付近(キヤリアアンフオライトを用い
る電気泳動法により測定した。) 分子量 約46000(バイオゲルP−200を用いるゲル
過去において測定した。) 種々の金属イオンおよびEDTAの影響 前記の酵素活性の測定法において種々の添加
物を加えてホスホリパーゼD−Pのレシチンに
対する酵素活性を測定した結果は次の通りであ
る。
【表】
上に示す通り、CuCl2、NH4Clのイオンにより
少し阻害されるが、他のイオンはほとんど影響
を及ぼさない。 各種界面活性剤の影響 前記の酵素活性の測定法において種々の界面
活性剤を加えてホスホリパーゼD−Pのレシチ
ンに対する酵素活性を測定した結果は次の通り
である。
少し阻害されるが、他のイオンはほとんど影響
を及ぼさない。 各種界面活性剤の影響 前記の酵素活性の測定法において種々の界面
活性剤を加えてホスホリパーゼD−Pのレシチ
ンに対する酵素活性を測定した結果は次の通り
である。
【表】
【表】
ロライド
以上の通り、本発明のホスホリパーゼD−Pは
レシチンに強く作用し、かつリゾレシチンおよび
スフインゴエミリンに対して相対活性が5%以下
と認められる特徴を有し、かつレシチンに作用し
て、ホスフアチジン酸とコリンを生じせしめ、ま
たその等電点が4.2、その分子量が46000であるこ
となどの理化学的性質により、公知のホスホリパ
ーゼDとは異なるものと認められ、本発明の酵素
ホスホリパーゼD−Pは新規な酵素と認められ
る。 さらに本酵素は臨床検査試薬として、リン脂質
中レシチンの特異的定量に用いることができ得る
有用なものである。 次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明する
が、本発明は何らこの実施例によつて限定される
ものではない。 実施例 1 脱脂大豆紛2%、グルコース2%、
K2HPO40.05%、MgSO40.01%、NaCl0.2%、ジ
スフオームCC−222 0.1%の組成を有する培地
100ml(PH6.5)を500ml容三角フラスコに入れ、
120℃、20分間滅菌後、ストレプトミセス・エ
ス・ピー・AA586株をスラントより−白金耳移
植し、26℃でロータリー・シエーカーにより通気
撹拌を行なつた。経時的に菌体外に分泌されたホ
スホリパーゼD−P活性を測定したところ、70時
間目に最大活性を示した(6.3U/ml)。 実施例 2 脱脂大豆紛2%、グルコース1.5%、マルトデ
キストリン1%、K2HPO40.05%、MgSO40.01
%、NaCl0.2%、ジスフオームCC−222 0.2%の
組成を有する培地20(PH6.5)を30容ジヤー
フアーメンターに入れ、加圧滅菌後、実施例1に
記載の条件で培養したストレプトミセス・エス・
ピーAA586株の培養液200mlを移植し、26℃、20
/分の通気条件、300r.p.m.の撹拌条件下で培
養を行なつた。64.5時間後に活性の最大値が得ら
れた(4.7U/ml)。 実施例 3 実施例2で得られた培養液を、5000r.p.m.、10
分間遠心分離して菌体を除去した。得られた上清
28を4まで減圧濃縮した。この濃縮液に12
の冷アセトンを加え、4℃で60分間静置し、上清
をデカンテーシヨンにより除去した。沈澱に2
の冷アセトンを加え、静置後上清を除去した。沈
澱物を5の精製水に溶解し、これを1Kgのパル
ミトイル化ガーゼを充てんしたカラムに通し、酵
素を吸着させた。次いでこのカラムを10mM酢酸
緩衝液で充分洗浄後、0.1%トリトンX−100を含
10mM酢酸緩衝液で溶出を行なつた。得られた溶
出液21を1まで減圧濃縮し、1N酢酸でPHを
4.4に調製した。 その後、1の冷アセトンを加え、生じた沈澱
を5000r.p.m、10分間の遠心分離で除去し、上清
液を得た。次いで上清液に2の冷アセトンを加
え、生じた沈澱を110mlの10mM酢酸緩衝液(PH
6.0)に溶解し、セフアデツクスG−25で脱塩後
凍結乾燥し、350U/mgの比活性を有する精製ホ
スホリパーゼD−Pの紛末113mgを得た。
以上の通り、本発明のホスホリパーゼD−Pは
レシチンに強く作用し、かつリゾレシチンおよび
スフインゴエミリンに対して相対活性が5%以下
と認められる特徴を有し、かつレシチンに作用し
て、ホスフアチジン酸とコリンを生じせしめ、ま
たその等電点が4.2、その分子量が46000であるこ
となどの理化学的性質により、公知のホスホリパ
ーゼDとは異なるものと認められ、本発明の酵素
ホスホリパーゼD−Pは新規な酵素と認められ
る。 さらに本酵素は臨床検査試薬として、リン脂質
中レシチンの特異的定量に用いることができ得る
有用なものである。 次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明する
が、本発明は何らこの実施例によつて限定される
ものではない。 実施例 1 脱脂大豆紛2%、グルコース2%、
K2HPO40.05%、MgSO40.01%、NaCl0.2%、ジ
スフオームCC−222 0.1%の組成を有する培地
100ml(PH6.5)を500ml容三角フラスコに入れ、
120℃、20分間滅菌後、ストレプトミセス・エ
ス・ピー・AA586株をスラントより−白金耳移
植し、26℃でロータリー・シエーカーにより通気
撹拌を行なつた。経時的に菌体外に分泌されたホ
スホリパーゼD−P活性を測定したところ、70時
間目に最大活性を示した(6.3U/ml)。 実施例 2 脱脂大豆紛2%、グルコース1.5%、マルトデ
キストリン1%、K2HPO40.05%、MgSO40.01
%、NaCl0.2%、ジスフオームCC−222 0.2%の
組成を有する培地20(PH6.5)を30容ジヤー
フアーメンターに入れ、加圧滅菌後、実施例1に
記載の条件で培養したストレプトミセス・エス・
ピーAA586株の培養液200mlを移植し、26℃、20
/分の通気条件、300r.p.m.の撹拌条件下で培
養を行なつた。64.5時間後に活性の最大値が得ら
れた(4.7U/ml)。 実施例 3 実施例2で得られた培養液を、5000r.p.m.、10
分間遠心分離して菌体を除去した。得られた上清
28を4まで減圧濃縮した。この濃縮液に12
の冷アセトンを加え、4℃で60分間静置し、上清
をデカンテーシヨンにより除去した。沈澱に2
の冷アセトンを加え、静置後上清を除去した。沈
澱物を5の精製水に溶解し、これを1Kgのパル
ミトイル化ガーゼを充てんしたカラムに通し、酵
素を吸着させた。次いでこのカラムを10mM酢酸
緩衝液で充分洗浄後、0.1%トリトンX−100を含
10mM酢酸緩衝液で溶出を行なつた。得られた溶
出液21を1まで減圧濃縮し、1N酢酸でPHを
4.4に調製した。 その後、1の冷アセトンを加え、生じた沈澱
を5000r.p.m、10分間の遠心分離で除去し、上清
液を得た。次いで上清液に2の冷アセトンを加
え、生じた沈澱を110mlの10mM酢酸緩衝液(PH
6.0)に溶解し、セフアデツクスG−25で脱塩後
凍結乾燥し、350U/mgの比活性を有する精製ホ
スホリパーゼD−Pの紛末113mgを得た。
第1図は本発明のホスホリパーゼD−Pの至適
PH曲線を示し、第2図は本発明のホスホリパーゼ
D−Pの熱安定性曲線を示し、第3図は本発明の
ホスホリパーゼD−PのPH安定性曲線を示す。
PH曲線を示し、第2図は本発明のホスホリパーゼ
D−Pの熱安定性曲線を示し、第3図は本発明の
ホスホリパーゼD−PのPH安定性曲線を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 少なくとも下記の理化学的性質を有すること
を特徴とするホスホリパーゼD−P。 基質特異性としてレシチンに作用し、リゾレ
シチンおよびスフインゴミエリンに対して、レ
シチンにを基質とする相対活性が5%以下であ
る。 酵素作用は、反応式〔〕で示す通り。 レシチン+H2O→ホスフアチジン酸+コリン 分子量:約46000(バイオゲル・ゲル濾過法に
よる)。 至適PH:5.5付近。 PH安定性:PH4.2−8.5付近。 等電点:PH4.2付近。 熱安定性:PH6.0で60℃、10分間の加熱まで
安定。 2 少なくとも下記の理化学的性質を有するホス
ホリパーゼD−Pの製造において、ストレプトミ
セス属に属するホスホリパーゼD−Pを生産する
ホスホリパーゼD−P生産菌を培地に培養し、培
養物からホスホリパーゼD−Pを採取することを
特徴とするホスホリパーゼD−Pの製造法。 基質特異性としてレシチンに作用し、リゾレ
シチンおよびスフインゴミエリンに対して、レ
シチンにを基質とする相対活性が5%以下であ
る。 酵素作用は、反応式〔〕で示す通り。 レシチン+H2O→ホスフアチジン酸+コリン 分子量:約46000(バイオゲル・ゲル濾過法に
よる)。 至適PH:5.5付近。 PH安定性:PH4.2−8.5付近。 等電点:PH4.2付近。 熱安定性:PH6.0で60℃、10分間の加熱まで
安定。 3 ストレプトミセス属に属するホスホリパーゼ
D−P生産菌が、ストレプトミセス・エス・ピー
AA586株(FERM P−6100)である特許請求の
範囲第2項記載のホスホリパーゼD−Pの製造
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57035637A JPS58152481A (ja) | 1982-03-05 | 1982-03-05 | 新規なホスホリパ−ゼd−pおよびその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57035637A JPS58152481A (ja) | 1982-03-05 | 1982-03-05 | 新規なホスホリパ−ゼd−pおよびその製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS58152481A JPS58152481A (ja) | 1983-09-10 |
| JPH0112474B2 true JPH0112474B2 (ja) | 1989-03-01 |
Family
ID=12447386
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57035637A Granted JPS58152481A (ja) | 1982-03-05 | 1982-03-05 | 新規なホスホリパ−ゼd−pおよびその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS58152481A (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6336790A (ja) * | 1986-08-01 | 1988-02-17 | Nippon Oil & Fats Co Ltd | リン脂質の塩基交換反応法 |
| US5273898A (en) * | 1986-10-17 | 1993-12-28 | Noro Nordisk A/S | Thermally stable and positionally non-specific lipase isolated from Candida |
| JPH088866B2 (ja) * | 1987-03-10 | 1996-01-31 | 株式会社ヤクルト本社 | ホスホリパ−ゼdおよびその製造法 |
| EP2438823A4 (en) | 2009-06-05 | 2014-06-11 | Ajinomoto Kk | ENZYME PREPARATION AGENT FOR THE RECONSTITUTION OF PROCESSED PRODUCTS OF LIVESTOCK MEAT AND PROCESS FOR THE MANUFACTURE OF PROCESSED BEETMEAT PRODUCTS |
-
1982
- 1982-03-05 JP JP57035637A patent/JPS58152481A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS58152481A (ja) | 1983-09-10 |
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