JPH0121760B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH0121760B2 JPH0121760B2 JP1786682A JP1786682A JPH0121760B2 JP H0121760 B2 JPH0121760 B2 JP H0121760B2 JP 1786682 A JP1786682 A JP 1786682A JP 1786682 A JP1786682 A JP 1786682A JP H0121760 B2 JPH0121760 B2 JP H0121760B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- carboxylic acid
- acid
- dien
- salt
- alcaligenes
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明はデオキシコール酸及び/又はその塩か
ら微生物により12α―ヒドロキシプレグナ―1,
4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸及び/
又はその塩を製造する方法に関し、詳しくはデオ
キシコール酸及び/又はその塩を基質として12α
―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オ
ン―20α―カルボン酸及び/又はその塩を生産す
るアルカリゲネス属に属する細菌を、デオキシコ
ール酸及び/又はその塩を含む培地に培養して
12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン―3
―オン―20α―カルボン酸及び/又はその塩を生
成せしめ、これを採取することを特徴とする12α
―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オ
ン―20α―カルボン酸及び/又はその塩の製造方
法に関する。
従来、デオキシコール酸に微生物を作用させて
12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン―3
―オン―20α―カルボン酸を得る方法はいくつか
知られている。まずバルネス(P.J.Barnes)らに
よつて、シユードモナス・エスピーNCIB10590
(Pseudomonas sp.NCIB10590)菌株を用いる方
法が報告されている〔J.Chem.Soc.Chem.
Commun、(1974年)、115〜116頁及び
Tetrahedron,32巻、89〜93頁(1976年)参照〕。
この方法は、デオキシコール酸を0.1%含む無機
塩培地10でシユードモナス・エスピー
NCIB10590菌株を14時間好気的に培養し、デオ
キシコール酸10gから12α―ヒドロキシプレグナ
―1,4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸
657mg及び12β―ヒドロキシアンドロスター1,
4―ジエン―3,17―ジオン960mgを主生産物と
して得、さらに12α―ヒドロキシアンドロスタ―
1,4―ジエン―3,17―ジオン、12β―ヒドロ
キシー4―アンドロステン―3,17―ジオン及び
12ξ,17ξ―ジヒドロキシ―4―アンドロステン
―3―オンを微量成分として得るものである。こ
の方法は12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジ
エン―3―オン―20α―カルボン酸の収率が7%
未満と低い点、アンドロスタン系の副生物が多い
点、及び基質であるデオキシコール酸の濃度が
0.1%と低い点で実用的ではない。また、テネソ
ン(M.E.Tenneson)らによる、嫌気性大腸菌を
用いてデオキシコール酸から12α―ヒドロキシプ
レグナ―1,4―ジエン―3―オン―20α―カル
ボン酸及び12β―ヒドロキシアンドロスター1,
4―ジエン―3,17―ジオンを得る方法
〔Biochem.Soc.Trans.,5巻、1758〜1760頁
(1977年)参照〕;オーエン(R.W.OWen)らに
よる、バクテロイデス・フラギリスXF23
(Bacteroides fragilis XF23)菌株又はバクテロ
イデス・フラギリス・サブスピーシーズ・セタイ
オタオミクロンE59(Bacteroides fragilis subsp.
thetaiotaomicron E59)菌株を用いてデオキシ
コール酸から12α―ヒドロキシプレグナ―1,4
―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸、12β―
ヒドロキシアンドロスター1,4―ジエン―3,
17―ジオン、12α―ヒドロキシアンドロスタ―
1,4―ジエン―3,17―ジオン及び12β―ヒド
ロキシ―4―アンドロステン―3,17―ジオンを
得る方法〔Biochem.Soc.Trans.,5巻、1711〜
1713頁(1977年)参照〕が知られているが、これ
らの方法はいずれも嫌気性菌を用いており、用い
る基質が低濃度となること、培養に長期間を要す
ること、目的物の収率が低いことなど工業的に発
酵生産するに当り種々の問題点を有する。
本発明者らはデオキシコール酸及び/又はその
塩を基質として12α―ヒドロキシプレグナ―1,
4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸及び/
又はその塩を工業的に有利に生産する微生物の探
索を長期間行なつた結果、アルカリゲネス属に属
する特定の細菌がデオキシコール酸及び/又はそ
の塩を基質として12α―ヒドロキシプレグナ―
1,4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸及
び/又はその塩を高選択率、高収率で生産するこ
とを見出し、本発明を完成するに至つた。
本発明者らが得た上記のアルカリゲネス属に属
する細菌としては、アルカリゲネス・フエカリス
D4020(Alcaligenes faecalis D4020)菌株(微工
研条寄第182号)及びアルカリゲネス・フエカリ
スD4020―H405(Alcaligenes faecalis D4020―
H405)菌株(微工研条寄第183号)がある。アル
カリゲネス・フエカリスD4020菌株は土壌中から
取得した野生株であり、アルカリゲネス・フエカ
リスD4020―H405菌株はアルカリゲネス・フエ
カリスD4020菌株に突然変異処理を施して得られ
た変異株である。これら菌株の菌学的性質を列挙
すると次表のとおりである。
The present invention utilizes deoxycholic acid and/or its salts to produce 12α-hydroxypregnar-1,
4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/
or a salt thereof, in detail, 12α using deoxycholic acid and/or a salt thereof as a substrate.
-Bacteria belonging to the genus Alcaligenes that produce hydroxypregnar-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or its salts are cultured in a medium containing deoxycholic acid and/or its salts.
12α-hydroxypregna-1,4-diene-3
12α characterized by producing -on-20α-carboxylic acid and/or its salt and collecting the same.
-Hydroxypregnane-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or a salt thereof. Conventionally, deoxycholic acid was treated with microorganisms.
12α-hydroxypregna-1,4-diene-3
Several methods are known for obtaining -on-20α-carboxylic acid. First, by PJ Barnes et al., Pseudomonas sp. NCIB10590
(Pseudomonas sp. NCIB10590) strain has been reported [J.Chem.Soc.Chem.
Commun, (1974), pp. 115-116 and
Tetrahedron, vol. 32, pp. 89-93 (1976)].
This method is used to grow Pseudomonas sp. in mineral salts medium 10 containing 0.1% deoxycholic acid.
NCIB10590 strain was cultured aerobically for 14 hours, and 10 g of deoxycholic acid was added to 12α-hydroxypregnathic acid-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid.
657mg and 12β-hydroxyandroster 1,
960 mg of 4-diene-3,17-dione was obtained as the main product, and 12α-hydroxyandroster was obtained as the main product.
1,4-diene-3,17-dione, 12β-hydroxy-4-androstene-3,17-dione and
12ξ,17ξ-dihydroxy-4-androsten-3-one is obtained as a trace component. This method has a yield of 7% of 12α-hydroxypregnane-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid.
The concentration of androstane-based by-products is low, and the concentration of the substrate deoxycholic acid is low.
It is not practical as it is as low as 0.1%. In addition, 12α-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and 12β-hydroxyandroster 1,
Method for obtaining 4-diene-3,17-dione [see Biochem.Soc.Trans., Vol. 5, pp. 1758-1760 (1977)]; Bacteroides fragilis XF23 by RWOWen et al.
(Bacteroides fragilis XF23) strain or Bacteroides fragilis subsp. thetaiotaomicron E59 (Bacteroides fragilis subsp.
12α-Hydroxypregnane-1,4 from deoxycholic acid using thetaiotaomicron E59) strain.
-Dien-3-one-20α-carboxylic acid, 12β-
hydroxyandroster 1,4-diene-3,
17-dione, 12α-hydroxyandroster
Method for obtaining 1,4-diene-3,17-dione and 12β-hydroxy-4-androstene-3,17-dione [Biochem.Soc.Trans., vol. 5, 1711-
1713 (1977)], but all of these methods use anaerobic bacteria, require low concentrations of substrates, require long cultivation times, and are difficult to collect the target product. There are various problems in industrial fermentation production such as low yield. The present inventors used deoxycholic acid and/or its salt as a substrate to
4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/
As a result of long-term searches for microorganisms that can industrially advantageously produce 12α-hydroxypregnathic acid and its salts, certain bacteria belonging to the genus Alcaligenes have been found to produce 12α-hydroxypregnathic acid using deoxycholic acid and/or its salts as substrates.
We have discovered that 1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or its salts can be produced with high selectivity and high yield, and have completed the present invention. The bacteria belonging to the genus Alcaligenes obtained by the present inventors include Alcaligenes fuecalis
D4020 (Alcaligenes faecalis D4020) strain (Feikoken Article No. 182) and Alcaligenes faecalis D4020-H405 (Alcaligenes faecalis D4020-
H405) strain (Feikoken Joyori No. 183). The Alcaligenes fuecalis D4020 strain is a wild strain obtained from soil, and the Alcaligenes fuecalis D4020-H405 strain is a mutant strain obtained by mutating the Alcaligenes fuecalis D4020 strain. The following table lists the mycological properties of these strains.
【表】【table】
【表】【table】
【表】
上記の表に示した菌学的性質に基づき、アルカ
リゲネス・フエカリスD4020菌株及びアルカリゲ
ネス・フエカリスD4020―H405菌株の同定を行
なつた。アルカリゲネス・フエカリスD4020菌株
は、桿菌であること、周鞭毛を有していること、
グラム染色が陰性であることなどの顕微鏡的所見
並びにオキシダーゼ反応及びカタラーゼ反応がと
もに陽性であること、好気性であること、O―F
テストの結果が酸化的(Oxidative)であること
などの生理学的性質からバージエイズ・マニユア
ル・オブ・デイターミネイテイブ・バクテリオロ
ジー第7版及び第8版に基づき、アルカリゲネス
属に属する細菌であると同定した。さらにアルカ
リゲネス・フエカリスD4020菌株は、ゼラチンを
液化しない点、ミルクがアルカリ性となる以外に
変化しない点及び脱窒反応がない点から、アルカ
リゲネス属のフエカリス種に属する細菌であると
同定した。また、一般に突然変異株はその親株と
同じ種に属するものと考えられており、アルカリ
ゲネス・フエカリスD4020―H405菌株はアルカ
リゲネス属のフエカリス種に属する細菌であると
判定した。
本発明の方法による12α―ヒドロキシプレグナ
―1,4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸
及び/又はその塩の生産は、デオキシコール酸及
び/又はその塩を基質として12α―ヒドロキシプ
レグナ―1,4―ジエン―3―オン―20α―カル
ボン酸及び/又はその塩を生産するアルカリゲネ
ス属に属する細菌を、デオキシコール酸及び/又
はその塩を含む培地に培養することにより行なわ
れる。デオキシコール酸の塩としては具体的には
デオキシコール酸のナトリウム、カリウムなどの
アルカリ金属の塩又はカルシウム、マグネシウム
などのアルカル土類金属の塩である。デオキシコ
ール酸及び/又はその塩の濃度は通常約1〜200
g/の範囲でよいが、生産される12α―ヒドロ
キシプレグナ―1,4―ジエン―3―オン―20α
―カルボン酸及び/又はその塩の収量、培養条件
及び操作性などの経済的観点から約10〜100g/
の範囲が好ましい。培養方法は原則的には一般
微生物の好気培養で採用される方法と同じである
が、通常は液体培地による振盪培養法又は通気撹
拌培養法が用いられる。培地としては上記のデオ
キシコール酸及び/又はその塩を基質として12α
―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オ
ン―20α―カルボン酸及び/又はその塩を生産す
るアルカリゲネス属に属する細菌が資化利用でき
る栄養源を含有するものであればよい。炭素源と
してはデオキシコール酸及び/又はその塩を単一
炭素源としてもよく、或いはデオキシコール酸及
び/又はその塩にグルコース、グリセリン、ペプ
トン、肉エキス、酵母エキスなどを併用してもよ
い。また窒素源としては、例えば硫酸アンモニウ
ム、塩化アンモニウム、燐酸アンモニウム、硝酸
アンモニウム、硝酸ナトリウム、硝酸カリウムな
どの無機窒素源、又はポリペプトン、ペプトン、
肉エキスなどの有機窒素源が用いられる。また、
この他に燐酸水素2カリウム、燐酸2水素カリウ
ム、硫酸マグネシウムなどの無機塩類が添加され
る。培養条件に特徴はないが、通常25〜35℃で10
時間〜7日間振盪培養又は通気撹拌培養を行な
う。
このようにして培養液中に蓄積された12α―ヒ
ドロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オン―
20α―カルボン酸及び/又はその塩は、既知の方
法により分離採取することができる。例えば、培
養液中の菌体その他の不溶成分を濾過又は遠心分
離などにより分離除去して得られた培養濾液又は
上清に、塩酸、硫酸などの酸を加えて酸性とした
のち、上記カルボン酸を溶解しかつ水と相分離す
る有機溶媒、例えば酢酸エチル、クロロホルム、
クロロホルムとメタノールの混合液などを用いて
抽出する。得られた抽出液を集め、これにより溶
媒を溜去することによつて目的とする12α―ヒド
ロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オン―
20α―カルボン酸を回収することができる。この
有機溶媒による抽出操作は培養濾液又は上清につ
いてのみでなく、培養液そのものについて行なう
ことができ、またこれらの培養液、培養濾液又は
上清に予め酸を加えることなしに行なうこともで
きる。上記において培養濾液又は上清を酸性とし
た場合には12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―
ジエン―3―オン―20α―カルボン酸が沈澱物と
して得られるため、これをそのまま濾過又は遠心
分離などにより回収することもできる。上記の方
法で得られた抽出物又は沈澱物中には12α―ヒド
ロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オン―
20α―カルボン酸の他に残存基質のデオキシコー
ル及び/又はその塩並びに副生物がほとんど含ま
れておらず、例えば水/メタノールからの再結晶
により容易に高純度の12α―ヒドロキシプレグナ
―1,4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸
を取得することができる。
本発明の方法により得られる12α―ヒドロキシ
プレグナ―1,4―ジエン―3―オン―20α―カ
ルボン酸は、その20位のカルボン酸を脱離させる
ことによつてプレドニゾンなどのホルモン系ステ
ロイドの合成原料となる12α―ヒドロキシプレグ
ナ―1,4―ジエン―3,20―ジオンに誘導する
ことができる〔H.Ruschig et al.,Chem.Ber.,
88巻、883頁(1955年)参照〕。
以下実施例によつて本発明をさらに詳細に説明
する。
参考例
変異株の取得方法
培地1(組成:デオキシコール酸0.5%、水酸化
ナトリウム0.05%、ペプトン0.5%、酵母エキス
0.5%、塩化ナトリウム0.5%及び寒天1.5%)のス
ラントに生育させたアルカリゲネス・フエカリス
D4020菌株の一白金耳を、予め試験管内に準備し
た培地2(組成:デオキシコール酸2%、水酸化
ナトリウム0.2%、硝酸アンモニウム0.2%、リン
酸1カリウム0.1%、リン酸2カリウム0.6%、硫
酸マグネシウム・7水和物0.02%及び酵母エキス
0.02%)の10mlに植菌し、30℃で8〜10時間振盪
培養した。この培養液の0.3mlを予め試験管に準
備した培地3(組成:デオキシコール酸0.5%、水
酸化ナトリウム0.05%、グルコース0.1%、硝酸
アンモニウム0.2%、リン酸1カリウム0.1%、リ
ン酸2カリウム0.6%、硫酸マグネシウム・7水
和物0.02%及び酵母エキス0.02%)の10mlに加
え、30℃で10〜15時間培養した。ついで、この対
数増殖期にある菌体を0.45μのメンブレンフイル
ターで無菌的に濾過集菌し、0.1Mリン酸塩緩衝
液(PH:7.0)20mlで洗滌後、同じ緩衝液25mlに
懸濁させた。これに終濃度が20μg/mlになるよ
うにN―メチル―N′―ニトロ―N―ニトロソグ
アニジンを添加し、30℃で10〜15分間振盪するこ
とにより突然変異処理を行なつた。突然変異処理
を施した菌体を0.4μのメンブレンフイルターで濾
過集菌し、0.1Mリン酸塩緩衝液(PH:7.0)20ml
で洗滌後、同じ緩衝液20mlに懸濁した。得られた
菌懸濁液を滅菌生理食塩水で希釈し、それを培地
4(組成:デオキシコール酸0.5%、水酸化ナトリ
ウム0.05%、硝酸アンモニウム0.2%、リン酸1
カリウム0.1%、リン酸2カリウム0.6%、硫酸マ
グネシウム・7水和物0.02%、酵母エキス0.02%
及び寒天1.5%)の寒天平板上に500〜1000個のコ
ロニーを出現させるように塗布したのち、30℃で
3〜4日間培養した。出現したコロニー中の極小
コロニーを培地1のスラントに単離したのち、そ
の一白金耳を予め試験管に準備した培地5(組
成:デオキシコール酸0.2%、水酸化ナトリウム
0.02%、グルコース0.1%、硝酸アンモニウム0.2
%、リン酸1カリウム0.1%、リン酸2カリウム
0.6%、硫酸マグネシウム・7水和物0.02%及び
酵母エキス0.02%)の10mlに植菌し、30℃で24時
間振盪培養した。得られたそれぞれの培養液中の
生産物を薄層クロマトグラフイーにより検定し、
目的とする12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―
ジエン―3―オン―20α―カルボン酸を選択的に
蓄積している一菌株を見い出し、これをアルカリ
ゲネス・フエカリスD4020―H405菌株と命名し
た。
実施例 1
アルカリゲネス・フエカリスD4020菌株(微工
研条寄第182号)を次に示す方法で培養した。デ
オキシコール酸2.0g、硝酸アンモニウム0.2g、
燐酸2水素カリウム0.12g、燐酸水素2カリウム
0.61g、硫酸マグネシウム・7水和物0.02g、酵
母エキス0.02g及び水酸化ナトリウム0.2gに水
道水を加えて容量を100ml(PH:8.4)に調整し、
これを培地とした。この培地を500ml容坂口フラ
スコに入れ、120℃で15分間、蒸気殺菌を行なつ
た。予め上記の培地と同じ培地で試験管振盪機に
て1日間増殖させた種菌10mlを上記の500ml容坂
口フラスコに添加し、30℃で3日間振盪培養し
た。培養後、この培養液を集め、遠心分離機で菌
体を除去後、得られた培養液上清に塩酸を加える
ことにより、この培養液上清のPHを3とした。生
じた沈澱を濾過し、充分水洗後、乾燥させること
により、12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジ
エン―3―オン―20α―カルボン酸を950mg得た。
得られた12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―
ジエン―3―オン―20α―カルボン酸の一部を取
り、これにメタノールを加えて1%溶液とし、こ
の溶液10μをミクロボンダパツクC―18カラム
を備えた高速液体クロマトグラフイー(米国ウオ
ーターズ社製、HLC―GPC―244型)に注入し
た。移動相としてPH4.0に調整した水/メタノー
ルの25/75容量比の混合液を流速1ml/分で流
し、検出を屈折率方式で行なつた。得られた液体
クロマトグラムにおける各ピークの面積比を積分
計(島津製作所製、島津クロマトパツクC―
R1A)で求め、この面積比から上記の12α―ヒド
ロキシプレグナ―1,4―ジエン―3―オン―
20α―カルボン酸の純度を求めたところ、93%で
あつた。
また、液体クロマトグラフのメインピークに相
当する物質を薄層クロマトグラフイーにより分取
し、下記の方法で12α―ヒドロキシプレグナ―
1,4―ジエン―3―オン―20α―カルボン酸と
同定した。
マススペクトルm/z:358〔M〕+ [Table] Based on the mycological properties shown in the table above, the Alcaligenes faecalis D4020 strain and the Alcaligenes faecalis D4020-H405 strain were identified. Alcaligenes fuecalis strain D4020 is a bacillus, has periflagella,
Microscopic findings such as negative Gram staining, positive oxidase and catalase reactions, aerobic status, O-F
Based on the physiological properties such as oxidative test results, it was identified as a bacterium belonging to the genus Alcaligenes based on the Verge's Manual of Determinative Bacteriology, 7th and 8th editions. . Furthermore, Alcaligenes fuecalis strain D4020 was identified as a bacterium belonging to the Alcaligenes fuecalis species, because it does not liquefy gelatin, does not change the milk other than to become alkaline, and does not have a denitrification reaction. Additionally, mutant strains are generally considered to belong to the same species as their parent strains, and the Alcaligenes fuecalis strain D4020-H405 was determined to be a bacterium belonging to the Alcaligenes fuecalis species. The production of 12α-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or its salt by the method of the present invention involves the production of 12α-hydroxypregnathic acid and/or its salt using deoxycholic acid and/or its salt as a substrate. It is carried out by culturing bacteria belonging to the genus Alcaligenes that produce -1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or its salts in a medium containing deoxycholic acid and/or its salts. Specifically, the salt of deoxycholic acid is a salt of an alkali metal such as sodium or potassium, or a salt of an alkaline earth metal such as calcium or magnesium. The concentration of deoxycholic acid and/or its salt is usually about 1 to 200
12α-hydroxypregnane-1,4-dien-3-one-20α produced.
- Approximately 10 to 100 g/carboxylic acid and/or its salt from economical viewpoints such as yield, culture conditions, and operability.
A range of is preferred. The culture method is basically the same as that used for aerobic culture of general microorganisms, but usually a shaking culture method using a liquid medium or an aerated agitation culture method is used. As a medium, use the above deoxycholic acid and/or its salt as a substrate and 12α
-Hydroxypregnane-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or its salts, as long as it contains a nutrient source that can be utilized by bacteria belonging to the genus Alcaligenes. As the carbon source, deoxycholic acid and/or its salt may be used as the sole carbon source, or glucose, glycerin, peptone, meat extract, yeast extract, etc. may be used in combination with deoxycholic acid and/or its salt. Examples of nitrogen sources include inorganic nitrogen sources such as ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium phosphate, ammonium nitrate, sodium nitrate, and potassium nitrate, or polypeptone, peptone,
Organic nitrogen sources such as meat extracts are used. Also,
In addition, inorganic salts such as dipotassium hydrogen phosphate, potassium dihydrogen phosphate, and magnesium sulfate are added. Culture conditions are not specific, but usually at 25-35℃ for 10
Shake culture or aerated agitation culture is performed for 7 days. 12α-Hydroxypregnane-1,4-diene-3-one- accumulated in the culture medium in this way
20α-carboxylic acid and/or its salt can be separated and collected by known methods. For example, the culture filtrate or supernatant obtained by separating and removing bacterial cells and other insoluble components in the culture solution by filtration or centrifugation is acidified by adding an acid such as hydrochloric acid or sulfuric acid, and then organic solvents that dissolve and phase separate from water, such as ethyl acetate, chloroform,
Extract using a mixture of chloroform and methanol. The obtained extract is collected and the solvent is distilled off to obtain the desired 12α-hydroxypregnane-1,4-dien-3-one.
20α-carboxylic acid can be recovered. This extraction operation using an organic solvent can be carried out not only on the culture filtrate or supernatant, but also on the culture solution itself, and can also be carried out without adding an acid to the culture solution, culture filtrate, or supernatant in advance. In the above, when the culture filtrate or supernatant is acidified, 12α-hydroxypregnane-1,4-
Since dien-3-one-20α-carboxylic acid is obtained as a precipitate, it can also be recovered as it is by filtration or centrifugation. The extract or precipitate obtained by the above method contains 12α-hydroxypregnane-1,4-dien-3-one-
In addition to 20α-carboxylic acid, it contains almost no residual substrate deoxycol and/or its salt and by-products, and can easily be purified by recrystallization from water/methanol, for example. 4-dien-3-one-20α-carboxylic acid can be obtained. 12α-Hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid obtained by the method of the present invention can be used for hormonal steroids such as prednisone by eliminating the carboxylic acid at position 20. It can be derived into 12α-hydroxypregna-1,4-diene-3,20-dione, which is a raw material for synthesis [H.Ruschig et al., Chem.Ber.,
88, p. 883 (1955)]. The present invention will be explained in more detail below using Examples. Reference example Method for obtaining mutant strains Medium 1 (composition: deoxycholic acid 0.5%, sodium hydroxide 0.05%, peptone 0.5%, yeast extract
Alcaligenes fuecalis grown on slants with 0.5% sodium chloride, 0.5% sodium chloride and 1.5% agar).
Culture medium 2 (composition: 2% deoxycholic acid, 0.2% sodium hydroxide, 0.2% ammonium nitrate, 0.1% monopotassium phosphate, 0.6% dipotassium phosphate, sulfuric acid) was prepared using a loopful of D4020 strain in a test tube. Magnesium heptahydrate 0.02% and yeast extract
0.02%) and cultured with shaking at 30°C for 8 to 10 hours. Medium 3 (composition: deoxycholic acid 0.5%, sodium hydroxide 0.05%, glucose 0.1%, ammonium nitrate 0.2%, monopotassium phosphate 0.1%, dipotassium phosphate 0.6 %, magnesium sulfate heptahydrate 0.02%, and yeast extract 0.02%) and cultured at 30°C for 10 to 15 hours. Next, the cells in the logarithmic growth phase were collected by aseptic filtration using a 0.45μ membrane filter, washed with 20ml of 0.1M phosphate buffer (PH: 7.0), and suspended in 25ml of the same buffer. Ta. Mutation treatment was carried out by adding N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine to the mixture at a final concentration of 20 μg/ml and shaking at 30° C. for 10 to 15 minutes. Filter and collect the mutant-treated bacterial cells using a 0.4μ membrane filter, and add 20ml of 0.1M phosphate buffer (PH: 7.0).
After washing with water, the cells were suspended in 20 ml of the same buffer. The obtained bacterial suspension was diluted with sterile physiological saline and mixed with medium 4 (composition: deoxycholic acid 0.5%, sodium hydroxide 0.05%, ammonium nitrate 0.2%, phosphoric acid 1
Potassium 0.1%, dipotassium phosphate 0.6%, magnesium sulfate heptahydrate 0.02%, yeast extract 0.02%
The mixture was plated on an agar plate containing 1.5% agar and 1.5% agar so that 500 to 1000 colonies appeared, and then cultured at 30°C for 3 to 4 days. After isolating a microscopic colony among the colonies that appeared on a slant of medium 1, a loopful of it was prepared in a test tube in advance in medium 5 (composition: deoxycholic acid 0.2%, sodium hydroxide).
0.02%, glucose 0.1%, ammonium nitrate 0.2
%, monopotassium phosphate 0.1%, dipotassium phosphate
0.6%, magnesium sulfate heptahydrate 0.02%, and yeast extract 0.02%) and cultured with shaking at 30°C for 24 hours. The products in each culture solution obtained were assayed by thin layer chromatography,
Target 12α-hydroxypregna-1,4-
We found a strain that selectively accumulates diene-3-one-20α-carboxylic acid and named it Alcaligenes faecalis strain D4020-H405. Example 1 Alcaligenes fuecalis D4020 strain (Kaikoken Joyori No. 182) was cultured by the following method. Deoxycholic acid 2.0g, ammonium nitrate 0.2g,
Potassium dihydrogen phosphate 0.12g, dipotassium hydrogen phosphate
Add tap water to 0.61g, magnesium sulfate heptahydrate 0.02g, yeast extract 0.02g and sodium hydroxide 0.2g to adjust the volume to 100ml (PH: 8.4),
This was used as a culture medium. This medium was placed in a 500 ml Sakaguchi flask and steam sterilized at 120°C for 15 minutes. 10 ml of the inoculum grown in advance in the same medium as the above one in a test tube shaker for one day was added to the above 500 ml Sakaguchi flask and cultured with shaking at 30°C for 3 days. After culturing, the culture solution was collected and the bacterial cells were removed using a centrifuge, and the pH of the culture solution supernatant was adjusted to 3 by adding hydrochloric acid to the obtained culture solution supernatant. The resulting precipitate was filtered, thoroughly washed with water, and then dried to obtain 950 mg of 12α-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid. The obtained 12α-hydroxypregna-1,4-
Take a portion of diene-3-one-20α-carboxylic acid, add methanol to it to make a 1% solution, and apply 10μ of this solution to a high-performance liquid chromatography system equipped with a Microbondapak C-18 column (Waters Inc., USA). manufactured by HLC-GPC-244). As a mobile phase, a mixed solution of water/methanol in a volume ratio of 25/75 adjusted to pH 4.0 was flowed at a flow rate of 1 ml/min, and detection was performed using a refractive index method. The area ratio of each peak in the obtained liquid chromatogram was measured using an integrator (Shimadzu Chromato Pack C-
R1A), and from this area ratio, the above 12α-hydroxypregnane-1,4-dien-3-one
The purity of 20α-carboxylic acid was determined to be 93%. In addition, the substance corresponding to the main peak of liquid chromatography was separated by thin layer chromatography, and 12α-hydroxy pregnate was extracted using the following method.
It was identified as 1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid. Mass spectrum m/z: 358 [M] +
Claims (1)
して12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン
―3―オン―20α―カルボン酸及び/又はその塩
を生産するアルカリゲネス属に属する細菌を、デ
オキシコール酸及び/又はその塩を含む培地に培
養して12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエ
ン―3―オン―20α―カルボン酸及び/又はその
塩を生成せしめ、これを採取することを特徴とす
る12α―ヒドロキシプレグナ―1,4―ジエン―
3―オン―20α―カルボン酸及び/又はその塩の
製造方法。1. Bacteria belonging to the genus Alcaligenes that produce 12α-hydroxypregnane-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or its salts using deoxycholic acid and/or its salts as substrates were treated with deoxycholic acid. and/or a salt thereof to produce 12α-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid and/or a salt thereof, and collecting the same. 12α-Hydroxypregna-1,4-diene-
A method for producing 3-one-20α-carboxylic acid and/or a salt thereof.
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1786682A JPS58134999A (en) | 1982-02-05 | 1982-02-05 | Preparation of 12alpha-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20alpha- carboxylic acid and/or its salt |
| US06/434,560 US4520102A (en) | 1981-10-20 | 1982-10-15 | Microbial process for producing 12α-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20α-carboxylic acid |
| DE8282109555T DE3273215D1 (en) | 1981-10-20 | 1982-10-15 | Microbial process for producing 12-alpha-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20-alpha-carboxylic acid |
| EP82109555A EP0077544B1 (en) | 1981-10-20 | 1982-10-15 | Microbial process for producing 12-alpha-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20-alpha-carboxylic acid |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1786682A JPS58134999A (en) | 1982-02-05 | 1982-02-05 | Preparation of 12alpha-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20alpha- carboxylic acid and/or its salt |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS58134999A JPS58134999A (en) | 1983-08-11 |
| JPH0121760B2 true JPH0121760B2 (en) | 1989-04-24 |
Family
ID=11955579
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1786682A Granted JPS58134999A (en) | 1981-10-20 | 1982-02-05 | Preparation of 12alpha-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20alpha- carboxylic acid and/or its salt |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS58134999A (en) |
-
1982
- 1982-02-05 JP JP1786682A patent/JPS58134999A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS58134999A (en) | 1983-08-11 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JPS6029470B2 (en) | Microorganisms that produce 9α-hydroxyandrostenedione | |
| JP2719377B2 (en) | Microbiological production of 9α-hydroxy-17-ketosteroid | |
| FR2505360A1 (en) | METHOD FOR DEGRADING A SIDE CHAIN IN 17 OF A STEROID USING A MUTANT MICROORGANISM | |
| EP0077544B1 (en) | Microbial process for producing 12-alpha-hydroxypregna-1,4-dien-3-one-20-alpha-carboxylic acid | |
| HU176627B (en) | Process for producing 3a-alpha-h-4-alpha-bracket-3-comma above-propionic acid-bracket closed-7a-beta-methyl-hexahydro-1,5-indanedione by microbiologicaltransformation of sytosterine | |
| EP0046769B1 (en) | Fermentation of bile | |
| JPH05336979A (en) | Production of p-hydroxybenzoic acid | |
| US4867914A (en) | Pregnane derivatives and method of producing the same | |
| JPH0215197B2 (en) | ||
| EP0518661A1 (en) | Microbial conversion of bile acids | |
| EP0088007B1 (en) | Microbial process for producing 12-hydroxyandrosta-1,4-diene-3,17-dione | |
| JPH0147156B2 (en) | ||
| FR2510138A1 (en) | PROCESS FOR THE PRODUCTION OF 9-HYDROXY-3-OXO-4,17 (20) -REGNADIENE-20-CARBOXALDEHYDE BY FERMENTATION AND PRODUCT OBTAINED | |
| JPS637795A (en) | Production of 7alpha-hydroxyandrost-4-ene-3,17-dione | |
| JPH0359915B2 (en) | ||
| JPS608120B2 (en) | Method of manufacturing compounds using microorganisms | |
| JPH0338838B2 (en) | ||
| JPH0120878B2 (en) | ||
| JPH0359916B2 (en) | ||
| JPH0420600B2 (en) | ||
| JPH07213295A (en) | Method for producing 4-hydroxy-2-methylbenzoic acid using microorganism | |
| EP0135297A2 (en) | Synthesis of indanedionepropionic acids and products therefrom, microorganisms for use therein and their production | |
| JPS6312598B2 (en) | ||
| JPS59166094A (en) | Preparation of physiologically active substance ml-236b | |
| JPH0147157B2 (en) |