JPH0359915B2 - - Google Patents

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JPH0359915B2
JPH0359915B2 JP6267983A JP6267983A JPH0359915B2 JP H0359915 B2 JPH0359915 B2 JP H0359915B2 JP 6267983 A JP6267983 A JP 6267983A JP 6267983 A JP6267983 A JP 6267983A JP H0359915 B2 JPH0359915 B2 JP H0359915B2
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JP
Japan
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pseudomonas
strain
culture
deoxycholic acid
cyano
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Application number
JP6267983A
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Japanese (ja)
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JPS59186998A (en
Inventor
Fumio Mori
Masao Tsuji
Tsutomu Sugiura
Yoshihiro Ichihara
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Kuraray Co Ltd
Original Assignee
Kuraray Co Ltd
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Publication date
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は式 (式中、波線〜はヒドロキシル基又はシアノ基
がα−立体配置又はβ−立体配置のいずれかにあ
ることを示す。)で示される17−シアノ−12,17
−ジヒドロキシアンドロスタ−1,4−ジエン−
3−オンに関する。 本発明により提供される17−シアノ−12,17−
ジヒドロキシアンドロスタ−1,4−ジエン−3
−オンは公知文献に未記載の新規化合物であり、
プロゲステロン又はブレドニゾン、ブレドニゾロ
ンなどで代表されるコルチコイドの合成中間体と
して有用である。 17−シアノ−12,17−ジヒドロキシアンドロス
タ−1,4−ジエン−3−オンは、12−ヒドロキ
シアンドロスタ−1,4−ジエン−3,17−ジオ
ン(以下、これを12−ヒドロキシADDと称す)
を低級アルコール及びシアノ化合物の存在下にシ
アン化水素と反応させることにより製造される。
溶媒として用いる低級アルコールとしてはメタノ
ール、エタノール、プロパノールなどが挙げられ
る。またシアノ化合物としてはシアン化カリウ
ム、シアン化ナトリウムなどが例示される。シア
ノ化合物の使用量は12−ヒドロキシADDに対し
て約1〜10倍モル量が好ましい。シアン化水素は
反応系内に直接加えてもよいし、系内に存在する
シアノ化合物に酢酸、プロピオン酸などの有機酸
又は塩酸、硫酸などの無機酸を作用させることに
より反応系内で発生させてもよい。シアン化水素
は12−ヒドロキシADDに対して約1〜8モル倍
量用いるのが好ましい。この反応は約0〜30℃の
温度で行なう。 また17−シアノ−12,17−ジヒドロキシアンド
ロスタ−1,4−ジエン−3−オンは、12−ヒド
ロキシADDにアセトンシアンヒドリンを少量の
ピリジンの存在下に反応させるか、又は12−ヒド
ロキシADDに直接シアン化水素を付加反応させ
ることによつても製造される。 反応終了後、反応混合物を水にあけ、塩化メチ
レンなどで抽出し、抽出液を水、重曹水などで洗
滌し、乾燥したのち、これより低沸点物を留去す
ることにより17−シアノ−12,17−ジヒドロキシ
アンドスタ−1,4−ジエン−3−オンの粗生成
物が得られる。この粗生成物を例えばエタノール
などから再結晶することにより高純度の17−シア
ノ−12,17−ジヒドロキシアンドロスタ−1,4
−ジエン−3−オンを得ることができる。 原料化合物である12−ヒドロキシADDは公知
化合物であるが、本発明者らのうちの数人が先に
見出した方法によれば、デオキシコール酸及び/
又はその塩を基質として12−ヒドロキシADDを
生産するシユードモナス・プチダ又はシユードモ
ナス・オバリスに属する細菌を、デオキシコール
酸及び/又はその塩を含む培地に培養することに
より得ることができる。 上記のシユードモナス・プチダに属する細菌と
しては、シユードモナス・プチダD4014−A1099
(Pseudomonas putida D4014−A1099)菌株
(微工研条寄第207号)がある。この菌株は土壤中
より採取したシユードモナス・プチダD4014
(Pseudomonas Putida D4014)菌株(微工研条
寄第205号)に突然変異処理を施して得られた変
異株である。またシユードモナス・オバリスに属
する細菌としては、シユードモナス・オバリスD
−40(Pseudomonas ovalis D−40)菌株(微工
研菌寄第6147号)がある。 シユードモナス・プチダD4014菌株、シユード
モナス・プチダD4014−A1099菌株及びシユード
モナス・オバリスD−40菌株の菌学的性質を列挙
すると第1及び第2表のとおりである。
The present invention is based on the formula (In the formula, the wavy line ~ indicates that the hydroxyl group or cyano group is in either the α-configuration or the β-configuration.) 17-cyano-12,17
-dihydroxyandrosta-1,4-diene-
Regarding 3-on. 17-cyano-12,17- provided by the present invention
Dihydroxyandrosta-1,4-diene-3
-one is a new compound not described in known literature,
It is useful as a synthetic intermediate for progesterone or corticoids such as brednisone and brednisolone. 17-cyano-12,17-dihydroxyandrosta-1,4-dien-3-one is 12-hydroxyandrosta-1,4-diene-3,17-dione (hereinafter referred to as 12-hydroxyADD). )
It is produced by reacting hydrogen cyanide with hydrogen cyanide in the presence of a lower alcohol and a cyano compound.
Examples of lower alcohols used as solvents include methanol, ethanol, and propanol. Examples of the cyano compound include potassium cyanide and sodium cyanide. The amount of the cyano compound to be used is preferably about 1 to 10 times the molar amount of 12-hydroxy ADD. Hydrogen cyanide may be added directly to the reaction system, or it may be generated within the reaction system by reacting an organic acid such as acetic acid or propionic acid or an inorganic acid such as hydrochloric acid or sulfuric acid to the cyano compound present in the system. good. Hydrogen cyanide is preferably used in an amount of about 1 to 8 moles relative to 12-hydroxy ADD. This reaction is carried out at a temperature of about 0-30°C. In addition, 17-cyano-12,17-dihydroxyandroster-1,4-dien-3-one can be obtained by reacting 12-hydroxyADD with acetone cyanohydrin in the presence of a small amount of pyridine, or by reacting 12-hydroxyADD with acetone cyanohydrin in the presence of a small amount of pyridine. It can also be produced by directly adding hydrogen cyanide to After the reaction is complete, the reaction mixture is poured into water, extracted with methylene chloride, etc., the extract is washed with water, sodium bicarbonate, etc., dried, and the lower boiling point substances are distilled off to obtain 17-cyano-12. , 17-dihydroxyandstar-1,4-dien-3-one crude product is obtained. Highly purified 17-cyano-12,17-dihydroxyandrosta-1,4 can be obtained by recrystallizing this crude product from, for example, ethanol.
-dien-3-one can be obtained. The raw material compound 12-hydroxy ADD is a known compound, but according to a method previously discovered by some of the present inventors, deoxycholic acid and/or
It can be obtained by culturing bacteria belonging to Pseudomonas putida or Pseudomonas ovalis that produce 12-hydroxy ADD using a salt thereof as a substrate in a medium containing deoxycholic acid and/or a salt thereof. Bacteria belonging to the above Pseudomonas putida include Pseudomonas putida D4014-A1099.
(Pseudomonas putida D4014-A1099) strain (Feikoken Joyori No. 207). This strain is Pseudomonas putida D4014, which was collected from Tuyongzhong.
(Pseudomonas Putida D4014) strain (Feikoken Joyori No. 205) was subjected to mutation treatment. In addition, as a bacterium belonging to Pseudomonas ovalis, Pseudomonas ovalis D
-40 (Pseudomonas ovalis D-40) strain (Feikoken Bacteria No. 6147). Tables 1 and 2 list the mycological properties of Pseudomonas putida D4014 strain, Pseudomonas putida D4014-A1099 strain, and Pseudomonas ovalis D-40 strain.

【表】【table】

【表】【table】

【表】【table】

【表】【table】

【表】 上記の表に示した菌学的性質に基づき、シユー
ドモナス・プチダD4014菌株、シユードモナス・
プチダD4014−A1099菌株及びシユードモナス・
オバリスD−40菌株の同定を行なつた。シユード
モナス・プチダD4014菌株は、桿菌であること、
極鞭毛を有していること、グラム染色が陰性であ
ることなどの顕微鏡的所見並びにオキシダーゼ反
応及びカタラーゼ反応がともに陽性であること、
好気性であること、O−Fテストの結果が酸化的
(Oxidative)であることなどの生理学的性質か
らパージエイズ・マニユアル・オブ・デイターミ
ネイテイブ・バクテリオロジー第7版及び第8版
に基づき、シユードモナス属に属する細菌である
と同定した。さらにシユードモナス・プチダ
D4014菌株は、培養液が螢光色を帯びる点、ゼラ
チンを液化しない点、37℃で生育する点、アルギ
ニン・ジヒドロラーゼを生成する点などからシユ
ードモナス属のプチダ種に属する細菌であると同
定した。一般に突然変異株はその親株と同じ種に
属するものと考えられており、シユードモナス・
プチダD4014−A1099菌株はシユードモナス属の
プチダ種に属する細菌であると判定した。また、
シユードモナス・オバリスD−40菌株は、桿菌で
あること、極鞭毛を有していること、グラム染色
が陰性であることなどの顕微鏡的所見及び好気性
であること、O−Fテストの結果がマイナスであ
ることなどの生理学的性質からバージエイズ・マ
ニユアル・オブ・デイターミネイテイブ・バクテ
リオロジー第7版及び第8版に基づき、シユード
モナス属に属する細菌であると同定した。さらに
シユードモナス・オバリスD−40菌株は、両端に
丸みを持つた短桿菌である点、寒点平板上で形成
するコロニーが円形で光沢を有する点、インドー
ルを生成しない点並びに糖類から酸及びガスの生
成が認められない点から、シユードモナス属のオ
バリス種に属する細菌であると同定した。 上記の微生物を利用した12−ヒドロキシADD
の製造方法では、デオキシコール酸及び/又はそ
の塩を基質として用いる。デオキシコール酸の塩
としては具体的にはデオキシコール酸のナトリウ
ム、カリウムなどのアルカリ金属の塩又はカルシ
ウム、マグネシウムなどのアルカリ土類金属の塩
である。デオキシコール酸及び/又はその塩の濃
度は通常約1〜200g/の範囲でよいが、生産
される12−ヒドロキシADDの収量、培養条件及
び操作性などの経済的観点から約2〜50g/の
範囲が好ましい。培養方法は原則的には一般微生
物の好気培養で採用される方法と同じであるが、
通常は液体培地による振盪培養法又は通気攪伴培
養法が用いられる。培地は上記のデオキシコール
酸及び/又はその塩を基質として12−ヒドロキシ
ADDを生産するシユードモナス・プチダ又はシ
ユードモナス・オバリスに属する細菌が資化剤用
できる栄養源を含有するものであればよい。炭素
源としてはデオキシコール酸及び/又はその塩を
単一炭素源としてもよいが好ましくはデオキシコ
ール酸及び/又はその塩にグルコース、グリセリ
ン、ペプトン、肉エキス、麦芽エキス、酵母エキ
スなどを併用するのがよい。また窒素源として
は、例えば硫酸アンモニウム、塩化アンモニウ
ム、燐酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、硝酸
ナトリウム、硝酸カリウムなどの無機窒素源、又
はボリペプトン、ペプトン、肉エキスなどの有機
窒素源が用いられる。また、この他に燐酸水素2
カリウム、燐酸2水素カリウム、硫酸マグネシウ
ムなどの無機塩類が添加される。培養条件に特徴
はないが、通常25〜35℃で10時間〜7日間振盪培
養又は通気撹拌培養を行なう。 このようにして培養液中に蓄積された12−ヒド
ロキシADDを分離、採取するには、培養液を所
望によりアルカリ性にしたのち、12−ヒドロキシ
ADDを溶解しかつ水と相分離する有機溶媒、例
えば酢酸エチル、クロロホルム、クロロホルムと
メタノールの混合液などを用いて抽出する方法が
採られる。この有溶媒による抽出は、菌体を含ん
だ状態の培養液について行なつてもよいし、予め
培養液中の菌体その他の不溶成分を濾過又は遠心
分離などにより分離除去し、得られた培養濾液又
は上清について行なつてもよい。後者の抽出方法
を採る場合には、必要に応じて濾過又は遠心分離
などによつて分離除去される不溶成分について上
記の有機溶媒による抽出操作を行なうことによ
り、培養液中に析出又は沈澱している12−ヒドロ
キシADDを回収することができる。このように
して得られた抽出液を集め、これより溶媒を溜去
することによつて12−ヒドロキシADDをはじめ
とするデオキシコール酸の酸化物及び未変換デオ
キシコール酸をほぼ全量回収することができる。
得られた抽出物を例えば酢酸エチル、ジクロルメ
タン/メタノールなどから再結晶するか、又はシ
リカゲルカラムに吸着させ、クロロホルムとエタ
ノールの混合液で溶出させることにより12−ヒド
ロキシADDを取得することができる。 本発明により提供される17−シアノ−12,17−
ジヒドロキシアンドロスター1,4−ジエン−3
−オンは、(i)これを脱水反応に付したのち部分水
素添加を行ない、得られた生成物の3位のケトン
部分を保護し、これをメチルマグネシウムハライ
ドと反応させ、さらにその生成物を必要に応じて
部分水素添加反応に付することによりプロゲステ
ロンに誘導することができ、また(ii)17−シアノ−
12,17−ジヒドロキシアンドロスタ−1,4−ジ
エン−3−オンの12位の水酸基を常法により11位
のβ−水酸基に転換させ、17位のシアノ基を利用
して側鎖を誘導することによりプレドニゾン、プ
レドニゾロンなどに代表されるコルチコイドに導
くことができる。 以下に、本発明を実施例及び参考例により具体
的に説明する。 参考例 1 シユードモナス・プチダD4014−A1099菌株の
取得方法 培地1(組成:デオキシコール酸0.5%、水酸化
ナトリウム0.05%、ペプトン0.5%、酵母エキス
0.5%、塩化ナトリウム0.5%及び寒天1.5%)のス
ラントに生育させたシユードモナス・プチダ
D4014菌株の一白金耳を、予め試験管内に準備し
た培地2(組成:デオキシコール酸2%、水酸化
ナトリウム0.2%、硝酸アンモニウム0.2%、燐酸
2水素カリウム01%、燐酸水素2カリウム0.6%、
硫酸マグネシウム・7水和物0.02%及び酵母エキ
ス0.02%)の10mlに植菌し、30℃で14〜15時間振
盪培養した。この培養液の0.3mlを予め試験管に
準備した培地3(組成:デオキシコール酸0.5%、
水酸化ナトリウム0.05%、グルコース0.1%、硝
酸アンモニウム0.2%、燐酸2水素カリウム0.1
%、燐酸水素2カリウム0.6%、硫酸マグネシウ
ム・7水和物0.02%及び酵母エキス0.02%)の10
mlに加え、30℃で8〜9時間培養した。ついで、
この対数増殖期にある菌体を0.45μのメンブレン
フイルターで無菌的に濾過集菌し、0.1M燐酸塩
緩衝液(PH:7.0)20mlで洗滌後、同じ緩衝液25
mlに懸濁させた。これに終濃度が50μg/mlにな
るようにN−メチル−N′−ニトロ−N−ニトロ
ソグアニジンを添加し、3〜4分放置することに
より突然変異処理を行なつた。突然変異処理を施
した菌体を0.45μのメンブレンフイルターで濾過
集菌し、0.1M燐酸塩緩衝液(PH:7.0)20mlで洗
滌後、同じ緩衝液20mlに懸濁した。得られた菌懸
濁液を滅菌生理食塩水で希釈し、それを培地4
(組成:デオキシコール酸0.5%、水酸化ナトリウ
ム0.05%、硝酸アンモニウム0.2%、燐酸2水素
カリウム0.1%、燐酸水素2カリウム0.6%、硫酸
マグネシウム・7水和物0.02%、酵母エキス0.02
%及び寒天1.5%)の寒天平板上に500〜1000個の
コロニーを出現させるように塗布したのち、30℃
で3〜4日間培養した。出現したコロニー中の極
小コロニーを培地1のスラントに単離したのち、
その一白金耳を予め試験管に準備した培地5(組
成:デオキシコール酸0.2%、水酸化ナトリウム
0.02%、グルコース0.1%、硝酸アンモニウム0.2
%、燐酸2水素カリウム0.1%、燐酸水素2カリ
ウム0.6%、硫酸マグネシウム・7水和物0.02%
及び酵母エキス0.02%)の10mlに植菌し、30℃で
24時間振盪培養した。得られたそれぞれの培養液
中の生産物を薄層クロマトグラフイーにより検定
し、目的とする12α−ヒドロキシアンドロスター
1,4−ジエン−3,17−ジオン(以下、これを
12α−ヒドロキシADDと称す)を選択的に蓄積し
ている一菌株を見い出し、これをシユードモナ
ス・プチダD4014−A1099と命名した。 参考例 2 シユードモナス・プチダD4014−A1099菌株
(微工研菌寄第6327号)を次に示す方法で培養し
た。デオキシコール酸0.5g、グルコース0.1g、
硝酸アンモニウム0.2g、燐酸2水素カリウム0.1
g、燐酸水素2カリウム0.6g、硫酸マグネシウ
ム・7水和物0.02g、酵母エキス0.02g及び水酸
化ナトリウム0.05gに水道水を加えて容量を100
ml(PH:8.4)に調整し、これを培地とした。こ
の培地を500ml容坂口フラスコに入れ、120℃で15
分間、蒸気殺菌を行なつた。予め上記の培地と同
じ培地で試験管振盪機にて15時間増殖させた種菌
の10mlを上記の500ml容坂口フラスコに添加し、
30℃で28時間振盪培養した。培養後、この培養液
を集め、遠心分離機で菌体を除去後、得られた培
養液上清に1規定の水酸化ナトリウム水溶液を加
えることにより、この培養液上清のPHを12附近に
調整した。ついで、培養液上清を酢酸エチル300
mlで抽出し、抽出液から酢酸エチルをロータリ
ー・エバポレーターで溜去することにより12α−
ヒドロキシADDを360mg得た。 得られた12α−ヒドロキシADDの一部を取り、
これにメタノールを加えて2%溶液とし、この溶
液25μlをミクロボンダパツクC−18カラムを備え
た高速液体クロマトグラフイー(米国ウオーター
ズ社製、HLC−GPC−244型)に注入した。移動
相としてPH4.0に調整した水/メタノールの30/
70容量比の混合液を流速1ml/分で流し、検出を
屈折率方式で行なつた。得られた液体クロマトグ
ラフにおける各ピークの面積比を積分計(島津製
作所製、島津クロマトパツクC−R1A)で求め、
この面積比から上記の12α−ヒドロキシADDの純
度を求めたところ、99.5%であつた。 また、上記で得られた12μ−ヒドロキシADDの
確認を下記の方法で行なつた。 マススペクトルm/z:300〔M〕+
[Table] Based on the mycological properties shown in the table above, Pseudomonas putida strain D4014, Pseudomonas putida
putida D4014-A1099 strain and Pseudomonas
The Ovaris D-40 strain was identified. Pseudomonas putida strain D4014 is a bacillus;
Microscopic findings such as having polar flagella, negative Gram staining, and positive oxidase and catalase reactions;
Based on the physiological properties such as being aerobic and the O-F test result being oxidative, Pseudomonas It was identified as a bacterium belonging to the genus. Furthermore, Pseudomonas putida
Strain D4014 was identified as a bacterium belonging to the putida species of the genus Pseudomonas based on the fact that the culture solution takes on a fluorescent color, that it does not liquefy gelatin, that it grows at 37°C, and that it produces arginine dihydrolase. . Generally, mutant strains are considered to belong to the same species as their parent strain, and Pseudomonas
The putida strain D4014-A1099 was determined to be a bacterium belonging to the putida species of the genus Pseudomonas. Also,
Pseudomonas obalis D-40 strain is a bacillus, has polar flagella, has negative Gram staining, is aerobic, and has a negative O-F test result. It was identified as a bacterium belonging to the genus Pseudomonas based on the physiological properties such as the fact that Furthermore, Pseudomonas ovalis strain D-40 is a short bacillus with rounded ends, the colonies formed on the cold plate are circular and shiny, it does not produce indole, and it does not produce acids and gases from sugars. Since no production was observed, it was identified as a bacterium belonging to the genus Pseudomonas spp. 12-hydroxy ADD using the above microorganisms
In the production method, deoxycholic acid and/or its salt is used as a substrate. Specifically, the salt of deoxycholic acid is a salt of an alkali metal such as sodium or potassium, or a salt of an alkaline earth metal such as calcium or magnesium. The concentration of deoxycholic acid and/or its salt may normally be in the range of about 1 to 200 g/, but from an economic standpoint such as the yield of 12-hydroxy ADD to be produced, culture conditions, and operability, the concentration of deoxycholic acid and/or its salt is about 2 to 50 g/. A range is preferred. The culture method is basically the same as that used for aerobic culture of general microorganisms, but
Usually, a shaking culture method or an aeration culture method using a liquid medium is used. The medium uses the above deoxycholic acid and/or its salt as a substrate and 12-hydroxy
It is sufficient that it contains a nutrient source that can be used as an assimilation agent by bacteria belonging to Pseudomonas putida or Pseudomonas ovalis that produce ADD. As the carbon source, deoxycholic acid and/or its salt may be used as the sole carbon source, but preferably glucose, glycerin, peptone, meat extract, malt extract, yeast extract, etc. are used in combination with deoxycholic acid and/or its salt. It is better. Further, as the nitrogen source, for example, an inorganic nitrogen source such as ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium phosphate, ammonium nitrate, sodium nitrate, potassium nitrate, or an organic nitrogen source such as boripeptone, peptone, meat extract, etc. is used. In addition, hydrogen phosphate 2
Inorganic salts such as potassium, potassium dihydrogen phosphate, and magnesium sulfate are added. Although there are no specific culture conditions, shaking culture or aerated agitation culture is usually carried out at 25 to 35°C for 10 hours to 7 days. In order to separate and collect the 12-hydroxy ADD accumulated in the culture solution in this way, the culture solution is made alkaline as desired, and then the 12-hydroxy
An extraction method is used that uses an organic solvent that dissolves ADD and undergoes phase separation from water, such as ethyl acetate, chloroform, or a mixture of chloroform and methanol. This extraction with a solvent may be performed on the culture fluid containing the bacterial cells, or the bacterial cells and other insoluble components in the culture fluid may be separated and removed by filtration or centrifugation, and the resulting culture The test may be carried out on the filtrate or supernatant. When using the latter extraction method, the insoluble components that are separated and removed by filtration or centrifugation, if necessary, can be extracted with the organic solvent described above, so that they can be precipitated or precipitated in the culture solution. The 12-hydroxy ADD that is present can be recovered. By collecting the extract obtained in this way and distilling off the solvent, it is possible to recover almost all of the deoxycholic acid oxides including 12-hydroxyADD and unconverted deoxycholic acid. can.
12-hydroxy ADD can be obtained by recrystallizing the obtained extract from ethyl acetate, dichloromethane/methanol, etc., or by adsorbing it on a silica gel column and eluting it with a mixture of chloroform and ethanol. 17-cyano-12,17- provided by the present invention
Dihydroxyandroster 1,4-diene-3
-one is obtained by (i) subjecting it to a dehydration reaction, followed by partial hydrogenation, protecting the ketone moiety at position 3 of the obtained product, reacting it with methylmagnesium halide, and further converting the product into If necessary, progesterone can be derived by subjecting it to a partial hydrogenation reaction, and (ii) 17-cyano-
The hydroxyl group at the 12th position of 12,17-dihydroxyandroster-1,4-dien-3-one is converted to the β-hydroxyl group at the 11th position by a conventional method, and the cyano group at the 17th position is used to induce a side chain. This can lead to corticoids such as prednisone and prednisolone. The present invention will be specifically explained below using Examples and Reference Examples. Reference example 1 Method for obtaining Pseudomonas putida D4014-A1099 strain Medium 1 (composition: deoxycholic acid 0.5%, sodium hydroxide 0.05%, peptone 0.5%, yeast extract
Pseudomonas putida grown on slants of 0.5% sodium chloride, 0.5% sodium chloride and 1.5% agar).
Culture medium 2 (composition: 2% deoxycholic acid, 0.2% sodium hydroxide, 0.2% ammonium nitrate, 01% potassium dihydrogen phosphate, 0.6% dipotassium hydrogen phosphate,
The cells were inoculated into 10 ml of 0.02% magnesium sulfate heptahydrate and 0.02% yeast extract, and cultured with shaking at 30°C for 14 to 15 hours. Medium 3 (composition: deoxycholic acid 0.5%,
Sodium hydroxide 0.05%, glucose 0.1%, ammonium nitrate 0.2%, potassium dihydrogen phosphate 0.1
%, dipotassium hydrogen phosphate 0.6%, magnesium sulfate heptahydrate 0.02% and yeast extract 0.02%).
ml and cultured at 30°C for 8 to 9 hours. Then,
The cells in the logarithmic growth phase were collected by aseptic filtration using a 0.45 μ membrane filter, washed with 20 ml of 0.1 M phosphate buffer (PH: 7.0), and washed with 25 ml of the same buffer.
ml. Mutation treatment was carried out by adding N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine to the mixture at a final concentration of 50 μg/ml and allowing it to stand for 3 to 4 minutes. The cells subjected to mutation treatment were collected by filtration using a 0.45μ membrane filter, washed with 20ml of 0.1M phosphate buffer (PH: 7.0), and then suspended in 20ml of the same buffer. The obtained bacterial suspension was diluted with sterile physiological saline and added to medium 4.
(Composition: Deoxycholic acid 0.5%, sodium hydroxide 0.05%, ammonium nitrate 0.2%, potassium dihydrogen phosphate 0.1%, dipotassium hydrogen phosphate 0.6%, magnesium sulfate heptahydrate 0.02%, yeast extract 0.02
% and agar 1.5%) on an agar plate so that 500 to 1000 colonies appear, and then incubated at 30°C.
The cells were cultured for 3 to 4 days. After isolating the tiny colonies among the colonies that appeared on the slant of medium 1,
Culture medium 5 (composition: deoxycholic acid 0.2%, sodium hydroxide
0.02%, glucose 0.1%, ammonium nitrate 0.2
%, potassium dihydrogen phosphate 0.1%, dipotassium hydrogen phosphate 0.6%, magnesium sulfate heptahydrate 0.02%
and yeast extract 0.02%) and inoculated at 30℃.
It was cultured with shaking for 24 hours. The products in each culture solution obtained were assayed by thin layer chromatography, and the target 12α-hydroxyandroster 1,4-diene-3,17-dione (hereinafter referred to as
We found a strain that selectively accumulates 12α-hydroxyADD) and named it Pseudomonas putida D4014-A1099. Reference Example 2 Pseudomonas putida D4014-A1099 strain (Feikoken Bibori No. 6327) was cultured by the following method. Deoxycholic acid 0.5g, glucose 0.1g,
Ammonium nitrate 0.2g, potassium dihydrogen phosphate 0.1
g, dipotassium hydrogen phosphate 0.6 g, magnesium sulfate heptahydrate 0.02 g, yeast extract 0.02 g, and sodium hydroxide 0.05 g, add tap water to make the volume 100.
ml (PH: 8.4) and used as a medium. Pour this medium into a 500ml Sakaguchi flask and heat at 120℃ for 15 minutes.
Steam sterilization was performed for 1 minute. Add 10 ml of the inoculum grown in advance in the same medium as the above medium in a test tube shaker for 15 hours to the above 500 ml Sakaguchi flask,
Shaking culture was performed at 30°C for 28 hours. After culturing, collect the culture fluid and remove the bacterial cells using a centrifuge. Add a 1N aqueous sodium hydroxide solution to the resulting culture supernatant to bring the pH of the culture supernatant to around 12. It was adjusted. Then, the culture supernatant was diluted with 300% ethyl acetate.
ml, and 12α-
360 mg of hydroxy ADD was obtained. Take a part of the obtained 12α-hydroxy ADD,
Methanol was added to this to make a 2% solution, and 25 μl of this solution was injected into a high performance liquid chromatography system (manufactured by Waters, USA, model HLC-GPC-244) equipped with a Micro Bondapak C-18 column. 30% water/methanol adjusted to PH4.0 as mobile phase
A mixed solution having a volume ratio of 70 was flowed at a flow rate of 1 ml/min, and detection was performed using a refractive index method. The area ratio of each peak in the obtained liquid chromatograph was determined using an integrator (Shimadzu Chromato Pack C-R1A, manufactured by Shimadzu Corporation),
The purity of the above 12α-hydroxy ADD was determined from this area ratio and was 99.5%. Furthermore, the 12μ-hydroxy ADD obtained above was confirmed by the following method. Mass spectrum m/z: 300 [M] +

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 17−シアノ−12,17−ジヒドロキシアンドロ
スタ−1,4−ジエン−3−オン。
1 17-cyano-12,17-dihydroxyandrosta-1,4-dien-3-one.
JP6267983A 1983-04-08 1983-04-08 17-cyano-12,17-dihydroxyandrosta-1,4-diene-3-one Granted JPS59186998A (en)

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