JPH01226900A - プロテインcの精製方法 - Google Patents

プロテインcの精製方法

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JPH01226900A
JPH01226900A JP63054159A JP5415988A JPH01226900A JP H01226900 A JPH01226900 A JP H01226900A JP 63054159 A JP63054159 A JP 63054159A JP 5415988 A JP5415988 A JP 5415988A JP H01226900 A JPH01226900 A JP H01226900A
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protein
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JP63054159A
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English (en)
Inventor
Kenji Tanaka
憲次 田中
Yatsuhiro Kamimura
上村 八尋
Kazumasa Yokoyama
和正 横山
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Tanabe Pharma Corp
GC Biopharma Corp
Original Assignee
Green Cross Corp
Green Cross Corp Korea
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明はプロティンCの精製方法に関する。
〔従来技術〕
プロティンCは、ビタミンにの存在下に合成されるアミ
ノ酸のγ−力ルボキシグルタミン酸(Gla)を含有す
る蛋白質の一つであり、血漿からの精製過程におけるク
ロマトグラフィーの分画番号“C°゛にちなんで命名さ
れたものである。プロティンCは、分子量62.000
の1本鎖糖蛋白質として主に肝で合成され、循環血液中
では大部分は2本鎖分子(L鎖およびH鎖)として存在
する。プロティンCは、Gla含有凝固因子の■因子、
X因子、■因子と同様のセリンプロテアーゼ前駆酵素で
あり、その構造はこれら因子に類似し、相互に40%程
度の相同性が存在する。
生体の凝固機転により生成されたトロンビンは、血管内
皮細胞膜上に存在する特異的レセプターであるトロンボ
モジュリン(thrombos+odulin)  と
複合体を形成して、本来の凝固因子としての種々の触媒
作用を失い、もっばらプロティンCの強力なアクチベー
ターとなる。プロティンCはこの複合体により限定分解
を受けて活性化プロティンC(APC:活性化されたプ
ロティンC)となり、抗凝固と線溶促進の両方の作用を
持つ掻めて効率のよい凝固線溶tJ4節因子となる。そ
の作用機作は血小板膜および内皮細胞膜表面のリン脂質
上で、いわゆるテンナーゼおよびプロトロンビナーゼ複
合体中の補酵素であるF、VaとF、VIIIaを選択
的に分解し、失活させることで血液凝固反応を強く阻止
する。またAPCは、tPA阻害因子のFAI(プラス
ミノーゲン・アクチベーター・インヒビター)を選択的
に分解し、線溶反応をも促進させる。
プロティンCの精製方法としては、塩化バリウムによる
沈′iti吸着法、硫安分画、陰イオン交換体による処
理、調製用電気泳動、プロティンCに対する抗体カラム
、夾雑蛋白質に対する抗体カラムなどが知られている@
  (J、 Biol、 Chew、、 l。
355〜363 (1976)、同、 25iL191
4〜1920 (1983)。
J、 Nara Mad Ass、、 J5!、 44
8〜454 (1984)。
J、 Biol、Chem、 、  2j2J、 11
097〜11105 (1986) 。
Thromb、 l1aes+ostas、、 ill
、 1〜5 (1983))しかし、上記の方法によっ
ては、精製度、収率、作業効率の点で満足すべき結果が
得られない、あるいは蛋白質の大量精製には不向きであ
ることが本発明者らによって知見された。
〔発明が解決しようとする課題〕
そこで本発明者らは、プロティンCを効率良く精製単離
できる方法を検討したところ、等電点沈澱法、逆相クロ
マトグラフィーの使用が有効であることを見出し、さら
に、これらの工程を軸としたプロティンCの精製方法を
見出し、本発明を完成した。
〔課題を解決するための手段〕
即ち、本発明は次の通りである。
発明1ニ プロティンC含有溶液を等電点沈澱法により、pH4〜
6の条件下で処理して上清を回収する工程を含むことを
特徴とするプロティンCの精製方法。
発明2ニ プロティンC含有溶液を逆相クロマト用担体にpH1〜
2の条件下で添加した後、有機溶媒濃度10v/v%か
ら80v/v%までの濃度勾配で溶出する工程を含むこ
とを特徴とするプロティンCの精製方法。
発明3ニ プロティンC含有溶液を (a)  等電点沈澱法により、pH4〜6の条件下で
処理して上清を回収する工程、 (b)  陽イオン交換体にpl(4〜6の条件下で添
加シタ後に塩濃度0.1〜2Mの条件で溶出させる工程
、 (C)  陰イオン交換体にpH6〜9の条件下で添加
した後に塩濃度0.2から2Mまでの濃度勾配で溶出さ
せる工程、 (dl  分画分子量範囲1000〜100万のゲル濾
過用担体を用いてゲル濾過を行う工程、(e)  固定
化硫酸子w類にpH5〜7の条件下で添加した後に塩濃
度OMがら2Mまでの濃度勾配で溶出させる工程、 (「)逆相クロマト用担体にpH1〜2の条件下で添加
した後に有機溶媒4度10v/v%から8゜v / v
%までの濃度勾配で溶出させる工程、からなるプロティ
ンCの精製方法。
〔1〕出発原料 本発明で使用されるプロティンC含有溶液は、ヒト血漿
に由来するものであれば特に限定されない 具体的には血IF!凝固■因子含存画分、濃縮プロトロ
ンビン複合体台を画分およびその他プロティンC含存画
分等が例示される。
〔2〕情製方法 (a)  等電点法5法 等電点沈澱法とは、蛋白質が等電点において溶解度が最
小になって沈澱を生じるのでこれを利用して、蛋白質を
精製する方法である。
即ち、本工程においてはプロティンC含有溶液をpH4
〜6の条件下で処理して上清を回収する。
その際の処理温度は2〜6°Cであり、処理時間は6〜
24時間である。
当該処理後、5000〜2万g、10〜60分間遠心分
離して上清を回収する。
(b)  陽イオン交換体による処理 (a)で得たプロティンC含有溶液を陽イオン交換体に
pH4〜6の条件下で添加する。
陽イオン交換体としてはカルボキシメチル基をリガンド
とするBakerbond CBxあるいはCM−Se
pharose CL−6B等が例示される。
その後、開−pH1塩濃度0.1〜2Mの条件で溶出さ
せたプロティンC含有画分を回収する。
(C)  陰イオン交換体による処理 (b)で得たプロティンC含有溶液を陰イオン交換体に
pH6〜9の条件下で添加する。
陰イオン交換体としては高速液体クロマトグラフ用Mo
no Q (QAE系)等が例示される。
その後、同−p)l、塩濃度0.2〜0.3Mの条件で
洗浄した後、同−p)l、塩濃度0.2Mから2.0M
までの濃度勾配で溶出を行い、プロティンC含有画分を
回収する。
((支)ゲル濾過 (C)で得たプロティンC含有溶液を分画分子量範囲1
000〜100万のゲル濾過用担体に添加する。
このような担体としてはアガロースを基材とした高速液
体クロマトグラフ用5apense 12等が例示され
る。
溶出は、pH6〜B、塩濃度0.1〜2Mで行いプロテ
ィンC含有画分を回収する。
(e)  固定化硫酸多amによる処理(d)で得たプ
ロティンC含有溶液をpH5〜7の条件下で固定化硫酸
多I!類に添加する。
固定化硫酸多糖類としては硫酸デキストラン、ヘパリン
をリガンドとする5epharose CL4B等が例
示される。
その後、開−pH2塩濃度OMから2.0Mまでの濃度
勾配で溶出を行い、プロティンC含を画分を回収する。
(f)  逆相クロマトグラフィー telで得たプロティンC含有溶液をpH1〜2の条件
下で逆相クロマトグラフィー用担体に添加する。
逆相クロマトグラフィー用担体としてはclをリガンド
とした逆相カラム等が例示される。
その後、開−pH1有機溶媒(たとえば、アセトニトリ
ル、メタノール、エタノール、プロパツール、ジオキサ
ン等)濃度10 v / v%から80v/V%までの
濃度勾配で溶出を行い、プロティンC含有画分を回収す
る。
なお、各々の工程を行った後、所望により硫安分画ある
いは透析等を行う。
すなわち、硫安分画はプロティンC含有溶液を60〜8
0%飽和濃度の硫安で処理し、その沈澱画分を回収する
ことにより行われる。
また、透析は、pH4〜7の条件下に2〜6°C16〜
24時間行われる。
本発明においてはさらに、公知の精製工程を組み合わせ
ることも可能である。
か(して得られたプロティンCは、生化学用、薬理学用
の試薬として用いてもよく、また、医薬品として用いる
場合には医薬品製造の通例技術に従って、要すれば、滅
菌、除菌、凍結乾燥、製剤化等を行えばよい。
〔効果〕
本発明の方法によれば、プロティンCを効率よく単離精
製できる。しかも、本発明の方法は操作が簡略で、大規
模製造にも適用できる。従って、プロティンCの精製方
法として極めて有用である。
(実施例〕 本発明をより詳細に説明するために、実施例を挙げるが
、本発明はこれらによって何ら限定されるものではない
。
(11精製方法 1〕クリスマシン製剤lバイアルに10献の蒸留水を加
えて、完全に溶解させた後、20mM酢酸ナトリウム、
pH5,0の緩衝液で透析した。透析後、io、 oo
o cで20分間遠心分離して上清画分を回収した。
2)陽イオン交換クロマトグラフィー 上清画分をBakerbond CBxに添加した。開
始バッファーに20mM酢酸ナトリウム、PH5,0を
、ン容出バッファーに1M塩化ナトリウム、20mM酢
酸ナトリウム、p)15.0を使用した。試料添加後開
始バッファーで洗浄した後、溶出パンファーに切換え、
パス画分を回収した。
3)陰イオン交換クロマトグラフィー 透析復液をMono Q HR60/10(またはQ 
SepharoseHigh Peformance 
60/100)に添加した。開始バッファーに20vM
)リス塩酸、pH7,15を、溶出バッファーに1M塩
化ナトリウム、20mM)リス塩酸、p)17.15を
使用した。試料添加後、30%(V/ν)溶出ハンファ
ー/開始バッファーで洗浄した後、30%→40%溶出
バッファー/開始パンファーのリニアーグラジェント溶
出を行い、活性画分を回収した。
4)ゲルフィルトレージョンクロマトグラフィ透析復液
を5uperoSe 12 prep grade 6
0/600に添加した。i8離バッファーに20−Mト
リス塩酸、500mM塩化ナトリウム、pH7,2緩衝
液を使用し、活性画分を回収した。
5)デキストランサルフェートクロマトグラフィー 透析復液を硫酸デキストランをリガンドにしたセファロ
ースCL4Bに添加した。開始バッファーには25mM
イミダゾール、pH6を、溶出バッファーにはl塩化ナ
トリウム、25++Mイミダゾール、pH6,0を使用
した。試料添加後、0%→50%溶出バッファー/開始
パンファーのりニア−グラジェント溶出を行い、′活性
画分を回収した。
6)逆相クロマトグラフィー 得られた両分を08をリガンドとした逆相カラムに添加
した。ストック溶液A(0,1%テトラフルオロ酢酸含
有蒸留水)・B(800−のアセトニトリルをAfi、
で1.000 aZとしたもの)をall製し、開始パ
ンファーは400II7のB液にA液を加えて1.00
0 atとしくアセトニトリル最終濃度32%)、溶出
バッファーは500aZのB液にA液を加えて1.00
0−とじて(アセトニトリル最終濃度40%)使用した
。開始バッファーで洗浄後、0%→50%溶出パンファ
ー(実際のアセトニトリル濃度は32%→36%)のリ
ニアーグラジェント溶出を行った0分画後各フラクショ
ン中の有機溶媒を減圧乾燥させた。
〔2〕測定 1)オフタロニー法 常法通りに作成した1、2%の寒天ゲルに試料および各
種抗血清を10μずつ添加した。4°Cで一晩放置して
沈降線を確認後に、同ゲルを濾紙で脱水・生理食塩水で
洗浄し、脱水洗浄をさらに2回。
繰り返したのちに常法通りにクーマシー染色した◆2)
免疫電気泳動法 1.2%の寒天ゲルを作成しくp)1B、6、μm0.
06)、試料10パを添加後、ゲル中10曹あたり2m
Aで約4時間、4°Cで泳動した。泳動後、各溝に抗血
清100μを添加し、4°Cで一晩放置して沈降線を確
認後に、同ゲルを濾紙で脱水・生理食塩水で洗浄し、脱
水洗浄をさらに2回繰り返したのちに常法通りにクーマ
シー染色した。
3)活性測定法 試料は20−門トリス塩酸、100@M塩化ナトリウム
、pH,5緩衝液にて希釈後、測定に供した。
プロタックC(PROTACC) (3単位/バイアル
)は痕留水12−で希釈して使用した0発色基質MCA
−3112vば、lバイアル(5,I N、 7.0 
μmole)の内容物をla/のジメチルスルホキシド
で完全に溶解した後、85−の20mMトリス塩酸、p
)18.5緩衝液で希釈して使用した0反応停止液は、
20%(v/v)酢酸水溶液を使用した。測定フローシ
ートを第1表に示した。
第1表 プロタックCを使ったプロティンC分析法プロ
タックCサンプル     50st■ 30°Cl2O分間インキュベート 30°C520分間インキュベート 精製ステップ、活性回収率および精製度を第2表に示し
た。
第2表 等電点沈澱  2000 36.9  1.020  
100   196陽イオン 交I桑    2400
   18.0      808     95  
    318り■マドグラフ(− 陰イオン 交換     290   25.9   
 4.012    57    1.099クロマト
クラフイー ゲル濾過     67 28.0 13.195  
43  3.342りUマトクラフィー クロマドグラフイー 逆相     350  0.32 2,001  3
4 44,342クロマトクラフイー 〔4〕精製プロテインCの物理化学的性状5O3−PA
GE法による分子量測定の結果、非還元下の5OS−P
AGEでは分子量62,000に一本のバンドを認め、
還元条件下では分子量41,000(Hllt)と21
,000(L鎖)に二本のバンドを認めた。
免疫電気泳動では、α位にのみ一本の明瞭な沈降線を認
め、抗正常ヒト血清ウサギ血清をはじめ抗ヒトPS、 
F、II、 F、IX、 F、Xウサギ血清とは沈降線
を形成しなかった。
等電点電気泳動の結果、プロティンCはpl 3.8〜
4.2の間に連続したバンドとして認められた。
以上の結果から、単離されたプロティンCは純度99%
以上と推定された。
m−」 手続十甫正書(自発) 1、事件の表示 昭和63年特許願第54159号 2、発明の名称 プロティンCの精製方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 氏名(名称) 株式会社 ミドリ十字 4、代理人■541 住所 大阪市東区平野町4丁目56番地(場末ビル) Ta (06) 227−1156 6、補正の内容 (1)明細書第15頁第2行の「プロタックCサンプル
」を「プロティンCサンプル」に訂正する。
(2)明細書第16頁第2表の プロトロシビン      2200   67.1 
   927      100      98複合
体濃度                     」
を ブ日トロシビン        2200   67.
1    927     100     98複合
体濃縮液                    」
に訂正する。

Claims (3)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)プロテインC含有溶液を等電点沈澱法により、p
    H4〜6の条件下で処理して上清を回収する工程を含む
    ことを特徴とするプロテインCの精製方法。
  2. (2)プロテインC含有溶液を逆相クロマト用担体にp
    H1〜2の条件下で添加した後、有機溶媒濃度10v/
    v%から80v/v%までの濃度勾配で溶出する工程を
    含むことを特徴とするプロテインCの精製方法。
  3. (3)プロテインC含有溶液を、 (a)等電点沈澱法により、pH4〜6の条件下で処理
    して上清を回収する工程、 (b)陽イオン交換体にpH4〜6の条件下で添加した
    後に塩濃度0.1〜2Mの条件で溶出させる工程、 (c)陰イオン交換体にpH6〜9の条件下で添加した
    後に塩濃度0.2から2Mまでの濃度勾配で溶出させる
    工程、 (d)分画分子量範囲1000〜100万のゲル濾過用
    担体を用いてゲル濾過を行う工程、 (e)固定化硫酸多糖類にpH5〜7の条件下で添加し
    た後に塩濃度0Mから2Mまでの濃度勾配で溶出させる
    工程、 (f)逆相クロマトグラフィー用担体にpH1〜2の条
    件下で添加した後に有機溶媒濃度10v/v%から80
    v/v%までの濃度勾配で溶出させる工程、 からなるプロテインCの精製方法。
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