JPS5810522A - 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 - Google Patents
不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法Info
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- JPS5810522A JPS5810522A JP56108289A JP10828981A JPS5810522A JP S5810522 A JPS5810522 A JP S5810522A JP 56108289 A JP56108289 A JP 56108289A JP 10828981 A JP10828981 A JP 10828981A JP S5810522 A JPS5810522 A JP S5810522A
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- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はアフィニティークロマトグラフィーにおいて、
不活化トロンビンをリガンドとして結合させた親水性ゲ
ルを用い、緩衝液と中性塩溶液及び血漿タンパク質混合
液とから成る溶離液をカラムを用いて通液させるか、あ
るいは回分法により容器内で両者を混合することにより
ゲルと接触させ、アンチトロンビン■を特異的に吸着さ
せることにより分離精製する方法に関するものである。
不活化トロンビンをリガンドとして結合させた親水性ゲ
ルを用い、緩衝液と中性塩溶液及び血漿タンパク質混合
液とから成る溶離液をカラムを用いて通液させるか、あ
るいは回分法により容器内で両者を混合することにより
ゲルと接触させ、アンチトロンビン■を特異的に吸着さ
せることにより分離精製する方法に関するものである。
さらに詳しくは、トロンビンの反応中心セリン残基がデ
ヒドロアラニン残基に変換した不活化型トロンビンを基
体としたアフィスティーゲルを用い、アンチトロンビン
■のトロンビンとの親和力を利用して分離精製する方法
に係るものである。
ヒドロアラニン残基に変換した不活化型トロンビンを基
体としたアフィスティーゲルを用い、アンチトロンビン
■のトロンビンとの親和力を利用して分離精製する方法
に係るものである。
血液は、赤血球、白血球、血小板から成る有形成分と血
漿と呼ばれる無形成分とから成り、血漿中には100種
類以上のタンパク質が含まれる。これらのタンパク質は
電気泳動的にアルブミン、α、βおよびr−グロブリン
およびフィブリノーゲンに分類される。
漿と呼ばれる無形成分とから成り、血漿中には100種
類以上のタンパク質が含まれる。これらのタンパク質は
電気泳動的にアルブミン、α、βおよびr−グロブリン
およびフィブリノーゲンに分類される。
アンチトロピン■は、α2−グロブリンに属する糖タン
パク質である。血漿中に通常30〜50mg1旧の割合
で含まれているのみである。しかし、トロンビンや活性
型X因子等と反応し、複合体をつくることにより、血液
凝固反応を阻害し、血管内での凝固反応の調節に大きな
役割をはたしている。
パク質である。血漿中に通常30〜50mg1旧の割合
で含まれているのみである。しかし、トロンビンや活性
型X因子等と反応し、複合体をつくることにより、血液
凝固反応を阻害し、血管内での凝固反応の調節に大きな
役割をはたしている。
アンチトロンビン■の分離精製法としては従来
(IJ 硫酸アンモニウムなどの中性塩添加、ポリエ
チレングリコール等の水溶性高分子の添加による分別沈
澱法 (2) 分子の荷電を利用したイオン交換クロマトグ
ラフィー法 (3) 分子の大きさを利用した分子篩クロマトグラ
フィー法 (4)分子の等電点の差を利用する電気泳動法(5)
ヘパリンとの親和力を利用するアフィニティークロマ
トグラフィー法 などが知られており、これらの方法の一つ又は幾つかを
組み合せた方法が用いられている。
チレングリコール等の水溶性高分子の添加による分別沈
澱法 (2) 分子の荷電を利用したイオン交換クロマトグ
ラフィー法 (3) 分子の大きさを利用した分子篩クロマトグラ
フィー法 (4)分子の等電点の差を利用する電気泳動法(5)
ヘパリンとの親和力を利用するアフィニティークロマ
トグラフィー法 などが知られており、これらの方法の一つ又は幾つかを
組み合せた方法が用いられている。
これらの方法のうち、(5)のアフィニティークロマト
グラフィー法を除く他の組み合せは夾雑タンパク質の分
離除去が難しく、何回も操作をくり返さねばならないこ
とから、回収量が少ないこと操作が繁雑であるといった
欠点がある。
グラフィー法を除く他の組み合せは夾雑タンパク質の分
離除去が難しく、何回も操作をくり返さねばならないこ
とから、回収量が少ないこと操作が繁雑であるといった
欠点がある。
一方、リガンドとの特異的な親和力により分離するアフ
ィニティークロマトグラフィー法は、アンチトロンビン
■のもつ特異的な性質を利用することから精製操作が簡
単であり夾雑物の分離がよく、活性回収率もよい利点を
もつ。
ィニティークロマトグラフィー法は、アンチトロンビン
■のもつ特異的な性質を利用することから精製操作が簡
単であり夾雑物の分離がよく、活性回収率もよい利点を
もつ。
ところで、従来使用されているヘパリンを基体としたア
フィニティークロマトグラフィー法は、アンチトロンビ
ン■かヘパリンと結合することを利用したものであり、
他の方法に比べ、簡単で効率的である。しかしながら、
現在工業的に広く行なわれている冷エタノール法による
ill 分画からこの方法によってアンチトロンビン■
を精製すると収率がきわめて低い。また、加熱処理血漿
より精製した場合においても収率が低い。すなわち、こ
の方法はアンチトロンビン■のヘパリン結合部位である
リジン残基付近の構造に依存するものであるので、この
部分の構造が低温エタノール処理、熱処理に対し不安定
であるため効率が悪いものと推定される。したがって、
アフィニティークロマトグラフィーに利用する構造とし
ては、アンチトロンビン■中の他の構造部位である、ア
ルギニン反応中心残基付近の構造を利用することが望ま
しい。
フィニティークロマトグラフィー法は、アンチトロンビ
ン■かヘパリンと結合することを利用したものであり、
他の方法に比べ、簡単で効率的である。しかしながら、
現在工業的に広く行なわれている冷エタノール法による
ill 分画からこの方法によってアンチトロンビン■
を精製すると収率がきわめて低い。また、加熱処理血漿
より精製した場合においても収率が低い。すなわち、こ
の方法はアンチトロンビン■のヘパリン結合部位である
リジン残基付近の構造に依存するものであるので、この
部分の構造が低温エタノール処理、熱処理に対し不安定
であるため効率が悪いものと推定される。したがって、
アフィニティークロマトグラフィーに利用する構造とし
ては、アンチトロンビン■中の他の構造部位である、ア
ルギニン反応中心残基付近の構造を利用することが望ま
しい。
本発明者らは、前述の点に着目しこれらの欠点を改善す
べく鋭意研死の結果、アンチトロンビン■のアルギニン
反応中心を利用したアフィニティークロマトグラフィー
によシ、血漿中および冷エタノール分画等の血漿タンパ
ク質混合液中に含有されるアンチトロンビン■を効率良
く、分画することが出来る方法を見出し本発明を完成し
たものである。
べく鋭意研死の結果、アンチトロンビン■のアルギニン
反応中心を利用したアフィニティークロマトグラフィー
によシ、血漿中および冷エタノール分画等の血漿タンパ
ク質混合液中に含有されるアンチトロンビン■を効率良
く、分画することが出来る方法を見出し本発明を完成し
たものである。
すなわち、本発明は、アフィニティークロマトグラフィ
ーにおいて従来用いられていたリガンドに代わり、不活
化トロンビンすなわち、アンチトロンビン■と反応し共
有結合性の複合体形成はしないが、親和性をもつトロン
ビンを用い、緩衝液、中性塩溶液および血漿タンパク質
からなる混合液を接触させ、アンチトロンビン■を特異
的に吸着せしめ、それを溶出することにより迅速かつ簡
便に効率よく分離精製する方法を提供するものである。
ーにおいて従来用いられていたリガンドに代わり、不活
化トロンビンすなわち、アンチトロンビン■と反応し共
有結合性の複合体形成はしないが、親和性をもつトロン
ビンを用い、緩衝液、中性塩溶液および血漿タンパク質
からなる混合液を接触させ、アンチトロンビン■を特異
的に吸着せしめ、それを溶出することにより迅速かつ簡
便に効率よく分離精製する方法を提供するものである。
以下、本発明の詳細な説明する。
本発明に用いる不活化トロンビンは精製人トロンビンを
pH8,0イオン強度0.0−5のトリス塩酸緩衝液中
で、フェニルメタンスルホニルフルオリドと反応させ、
活性中心セリン残基とエステル結合を形成せしめ、トロ
ンビン活性を失わせた。その後pH9,0に調整し、低
温に保ち、エステル結合を解離させ、ると共にセリン残
基をデヒドロアラニン残基に変換した。次に、ベンズア
ミジンを基体とするアガロースゲルヲ用い、アフィニテ
ィークロマトグラフィーを行い、親和性を示す分画を採
取し、アンヒドロトロンビンとして用いたものである。
pH8,0イオン強度0.0−5のトリス塩酸緩衝液中
で、フェニルメタンスルホニルフルオリドと反応させ、
活性中心セリン残基とエステル結合を形成せしめ、トロ
ンビン活性を失わせた。その後pH9,0に調整し、低
温に保ち、エステル結合を解離させ、ると共にセリン残
基をデヒドロアラニン残基に変換した。次に、ベンズア
ミジンを基体とするアガロースゲルヲ用い、アフィニテ
ィークロマトグラフィーを行い、親和性を示す分画を採
取し、アンヒドロトロンビンとして用いたものである。
なお、本発明はおける精製トロンビンは、低温エタノー
ル法(E、J、 Cohn:Journal ofAm
erican Chemical 5ociety、6
8:459(1946))により得られたコーンペース
ト■分画より、ポリエチレングリコール沈澱およびBa
Cl2沈澱によりプロトロンビン複合体を精製し、牛脳
より抽出したトロンボッ;ラスチンにより活性化し、そ
の後に、DEAEセフ7デツクスカラムクロマトグラフ
イーおよびベンズアミジンセファロースカラムクロマト
グラフィーにより精製したトロンビンを用いた。
ル法(E、J、 Cohn:Journal ofAm
erican Chemical 5ociety、6
8:459(1946))により得られたコーンペース
ト■分画より、ポリエチレングリコール沈澱およびBa
Cl2沈澱によりプロトロンビン複合体を精製し、牛脳
より抽出したトロンボッ;ラスチンにより活性化し、そ
の後に、DEAEセフ7デツクスカラムクロマトグラフ
イーおよびベンズアミジンセファロースカラムクロマト
グラフィーにより精製したトロンビンを用いた。
そして、該リガンドをアガロースに固定したゲルに血漿
タンパク質混合液を接触することにより、アンチトロン
ビン■を特異的に吸着し、それを溶出することにより分
離精製するものである。
タンパク質混合液を接触することにより、アンチトロン
ビン■を特異的に吸着し、それを溶出することにより分
離精製するものである。
本発明において該リガンドを結合するのに用いられる担
体は通常用いられている親和性の担体から任意に選ぶこ
とができる。架橋アガロースゲル(商品名:セファロー
ス4B、および6B)架橋デキストランゲル(商品名:
セファデックスG100、G150、G200)架橋ア
クリルアミドゲル(商品名:セファクリル5200゜5
300)などを挙げることができる。
体は通常用いられている親和性の担体から任意に選ぶこ
とができる。架橋アガロースゲル(商品名:セファロー
ス4B、および6B)架橋デキストランゲル(商品名:
セファデックスG100、G150、G200)架橋ア
クリルアミドゲル(商品名:セファクリル5200゜5
300)などを挙げることができる。
本発明において、血漿タンパク質混合液の吸着には、p
H6〜8かつイオン強度0〜1.0の緩衝液と中性塩溶
液とからなる溶離液を用いるものである。
H6〜8かつイオン強度0〜1.0の緩衝液と中性塩溶
液とからなる溶離液を用いるものである。
溶離液中の緩衝液はpH6〜8域を示す緩衝液を任意に
選ぶことができるが特にトリス緩衝液、リン酸緩衝液が
好ましく、中性塩溶液は通常用いられる中性塩溶液から
任意に選ぶことができるが、特にNaC1,KCIの水
溶液が好ましい。
選ぶことができるが特にトリス緩衝液、リン酸緩衝液が
好ましく、中性塩溶液は通常用いられる中性塩溶液から
任意に選ぶことができるが、特にNaC1,KCIの水
溶液が好ましい。
本発明における吸着アンチトロンビン■分画の溶出液に
はpH5,0〜5.5イオン強度1〜4の緩衝液かある
いは、pH4,0〜5.5の基質類似物を用いるもので
ある。
はpH5,0〜5.5イオン強度1〜4の緩衝液かある
いは、pH4,0〜5.5の基質類似物を用いるもので
ある。
緩衝液はpH4,0〜5.5のpH域を示す緩衝液を任
意に選ぶことができるが、特に酢酸緩衝液がよく、中性
塩溶液は通常用いられる中性塩溶液から任意に選ぶこと
が゛できるがNaC1の水溶液が好ましい。
意に選ぶことができるが、特に酢酸緩衝液がよく、中性
塩溶液は通常用いられる中性塩溶液から任意に選ぶこと
が゛できるがNaC1の水溶液が好ましい。
基質類似物としては、べ/ズアミジン!ニトロベンズア
ミジンラアミノベンズアミジンを挙げることができる。
ミジンラアミノベンズアミジンを挙げることができる。
0. I N NaOHを用い、pH4,0〜5.5と
して用いるものである。
して用いるものである。
次に本発明において使用される血漿タンパク質の状態に
ついて説明する。
ついて説明する。
血漿タンパク質の一つにフィブリノーゲンがある。血液
が体外に出ると凝固するが、これはフィブリノーゲンが
フィブリンとなつそ血栓をつくることが原因となってい
る。したがってクロマトグラフィーにおいてもフィブリ
ンが析出し、担体に付着する。この現象を防ぐため、フ
ィブリンを除く前処理を施した方が好ましい。
が体外に出ると凝固するが、これはフィブリノーゲンが
フィブリンとなつそ血栓をつくることが原因となってい
る。したがってクロマトグラフィーにおいてもフィブリ
ンが析出し、担体に付着する。この現象を防ぐため、フ
ィブリンを除く前処理を施した方が好ましい。
血漿を60℃で数分間加熱し、フィブリノーゲンを除去
後、用いることができる。血漿を低温でエタノールを用
いてフィブリノーゲンを除去すると共に沈澱、濃縮処理
を行った後溶離緩衝液に溶解して用いることができる。
後、用いることができる。血漿を低温でエタノールを用
いてフィブリノーゲンを除去すると共に沈澱、濃縮処理
を行った後溶離緩衝液に溶解して用いることができる。
血漿に水溶性高分子を共存させてフィブリノーゲンを除
去する前処理として利用することができる。また、中性
塩を共存させ、フィブリノーゲンを予め除去後、塩強度
を1.0以下になるように水で希釈し、用いることがで
きる。
去する前処理として利用することができる。また、中性
塩を共存させ、フィブリノーゲンを予め除去後、塩強度
を1.0以下になるように水で希釈し、用いることがで
きる。
したがって、本発明における血漿タンパク質を含む溶液
とは、水溶液、水溶性高分子、中性塩、またはアルコー
ル類を共存する水溶液を用いるものである。
とは、水溶液、水溶性高分子、中性塩、またはアルコー
ル類を共存する水溶液を用いるものである。
水溶性高分子とは、ポリエチレングリコール、ポリビニ
ルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリアクリル酸
、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシエチルデン
プンを挙げることができる。
ルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリアクリル酸
、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシエチルデン
プンを挙げることができる。
また、中性塩としては、NaC1、KCI 、NH,C
1、Na25O<、K2S0.、(N H4)2 S
Oi を挙げることができる。
1、Na25O<、K2S0.、(N H4)2 S
Oi を挙げることができる。
アルコール類としては、炭素数2〜5を有するアルコー
ルを挙げることができる。
ルを挙げることができる。
以上、述べたように溶離液および血漿タンパク質を含む
溶液を通液あるいは混合し、不活化トロンビンゲルに吸
着させ、それを溶出液で回収−しアフィニティークロマ
トグラフィーを行うものである。
溶液を通液あるいは混合し、不活化トロンビンゲルに吸
着させ、それを溶出液で回収−しアフィニティークロマ
トグラフィーを行うものである。
本発明においてカラム法を用いる場合は不活化トロンビ
ンゲルはガラス製のカラム内に充填されたものをはじめ
処理量にみあった任意の大きさの種々のカラム内に充填
されて使用される。
ンゲルはガラス製のカラム内に充填されたものをはじめ
処理量にみあった任意の大きさの種々のカラム内に充填
されて使用される。
該カラムはあらかじめ溶離液を通し平衡化させておく方
が望ましい。
が望ましい。
溶離液の流速は種々変化させることが出来るが、本発明
はアフィニティークロマトグラフィー法を基本とするた
め、流速は0.5 ml/am2以下であることがよシ
好ましい。流速をさらに高めることは、溶離液中に1〜
5単位/ml のヘパリンを共存させることにより可能
である。
はアフィニティークロマトグラフィー法を基本とするた
め、流速は0.5 ml/am2以下であることがよシ
好ましい。流速をさらに高めることは、溶離液中に1〜
5単位/ml のヘパリンを共存させることにより可能
である。
溶出液の流速は、使用した担体の機械的強度のl、5囲
において変化させることができる。
において変化させることができる。
また、溶出液に基質類似物を含む水溶液を用いた場合は
、拳法による分離精製後、基質類似物を除去するためp
H7,0、イオン強度1.0以上の緩衝液中で、透析あ
るいは分子篩クロマトグラフィーを行い該物質の除去す
ること望ましい。
、拳法による分離精製後、基質類似物を除去するためp
H7,0、イオン強度1.0以上の緩衝液中で、透析あ
るいは分子篩クロマトグラフィーを行い該物質の除去す
ること望ましい。
本発明において回分法を用いる場合も血漿タンパク質を
含む溶離液とゲルの量は処理量にみあって変化させるこ
とができる。ゲルと溶液の混合時間は攪拌の度合あるい
は容器の形状により異なるが一般に2時間以上行なうこ
とが望ましい。この操作でアンチトロンビン■を吸着さ
れたゲルは、ガラスフィルター上等で溶離液により洗浄
を行なった後、前述のカラム法に準じ溶出液で洗浄しア
ンチトロンビン■を回収するものである。
含む溶離液とゲルの量は処理量にみあって変化させるこ
とができる。ゲルと溶液の混合時間は攪拌の度合あるい
は容器の形状により異なるが一般に2時間以上行なうこ
とが望ましい。この操作でアンチトロンビン■を吸着さ
れたゲルは、ガラスフィルター上等で溶離液により洗浄
を行なった後、前述のカラム法に準じ溶出液で洗浄しア
ンチトロンビン■を回収するものである。
以上の操作はアンチトロンビン■の活性を安定に保存す
るため低温で行うことが望捷しい。
るため低温で行うことが望捷しい。
以上、説明したように本発明は不活化トロンビンゲルを
用い種々の血漿タンパク混合液と接触させ、アンチトロ
ンビン■を特異的に吸着せしめ、それを溶出することに
より、迅速かつ簡便に、効率よく分離精製できるもので
ある。
用い種々の血漿タンパク混合液と接触させ、アンチトロ
ンビン■を特異的に吸着せしめ、それを溶出することに
より、迅速かつ簡便に、効率よく分離精製できるもので
ある。
以下、本発明を実施及び比較例により詳細に説明する。
実施例1
アンヒドロトロンビンは人トロンビンかう次に示す方法
によシ調製した。精製したヒトα−トロンビン(716
000単位、 300mg )を50 mM トリス緩
衝液(pH8,0)に溶解し、21℃で1ooo倍量ノ
フェニルメタンスルホニルフルオライトヲ加え30分間
放置し、トロンビン活性を消失させた。−トロンビンの
エステラーゼ活性を測定したところ99.95%が失な
われた。その後50mM トリス緩衝液(pH9,0
>で平衡化した脱塩カラム(商品名=セファデックスG
−25)で脱塩を行ない、そのまま4℃で1昼夜放置し
た。この分画を50 mMトリス緩衝液(pH7,5)
で平衡化したベンズアミジンアガロ−ヌカラム(ゲル床
容積30m1)に通液し、同緩衝液で洗浄した。5.m
lづつ分取し、280rtmの吸光度とFolin法に
よるタンパク量を測定したところ第1図に示される如く
不活化トロンビンの大半はとのカラムに吸着し基質結合
能を有することが示された。これは第1図に示されると
と(,0,2Mベンズアミジン(pH7,5)で溶出さ
れ。
によシ調製した。精製したヒトα−トロンビン(716
000単位、 300mg )を50 mM トリス緩
衝液(pH8,0)に溶解し、21℃で1ooo倍量ノ
フェニルメタンスルホニルフルオライトヲ加え30分間
放置し、トロンビン活性を消失させた。−トロンビンの
エステラーゼ活性を測定したところ99.95%が失な
われた。その後50mM トリス緩衝液(pH9,0
>で平衡化した脱塩カラム(商品名=セファデックスG
−25)で脱塩を行ない、そのまま4℃で1昼夜放置し
た。この分画を50 mMトリス緩衝液(pH7,5)
で平衡化したベンズアミジンアガロ−ヌカラム(ゲル床
容積30m1)に通液し、同緩衝液で洗浄した。5.m
lづつ分取し、280rtmの吸光度とFolin法に
よるタンパク量を測定したところ第1図に示される如く
不活化トロンビンの大半はとのカラムに吸着し基質結合
能を有することが示された。これは第1図に示されると
と(,0,2Mベンズアミジン(pH7,5)で溶出さ
れ。
1MNaC1を含む50mM トリス緩衝液(pH7
,5)で透析し、ベンズアミジンを除去し、アンヒドロ
トロンビンとした。
,5)で透析し、ベンズアミジンを除去し、アンヒドロ
トロンビンとした。
つぎに、アンチトロンビンmにあらかじめアンヒドロト
ロンビンを加え37℃でインキュベートし、トロンビン
と混和し、フィブリノーゲン液に加え凝固時間を測定す
ることによシその活性の阻害率を調ベアン千トロンビン
活性を測定した。アンヒドロトロンビンと共に加温する
ことによりアンチトロンビン活性は低下し、アンチトロ
ンビン■とアンヒドロトロンビンが相互作用することが
示すした。また、アンヒドロトロンビンをトロンビンに
加えてもその活性が上昇しないことから、アンヒドロト
ロンビンが活性を示さないことが確かめられた。
ロンビンを加え37℃でインキュベートし、トロンビン
と混和し、フィブリノーゲン液に加え凝固時間を測定す
ることによシその活性の阻害率を調ベアン千トロンビン
活性を測定した。アンヒドロトロンビンと共に加温する
ことによりアンチトロンビン活性は低下し、アンチトロ
ンビン■とアンヒドロトロンビンが相互作用することが
示すした。また、アンヒドロトロンビンをトロンビンに
加えてもその活性が上昇しないことから、アンヒドロト
ロンビンが活性を示さないことが確かめられた。
該アンヒドロトロンビンを0.1M NaHCO−(p
H1s3 )で透析し、活性化架橋アガロースゲル(商
品名−活性化CHセファローズ4B)と混合することに
よりアンヒドロトロンビンセファロースケルヲ合成した
。
H1s3 )で透析し、活性化架橋アガロースゲル(商
品名−活性化CHセファローズ4B)と混合することに
よりアンヒドロトロンビンセファロースケルヲ合成した
。
実施例2
血漿を60℃に3分間加熱後、低温にて遠心分離し、上
澄みを集め0.2μのポアーサイズを有するフィルター
を用いて濾過し、その4ml を不活化トロンビンセ
ファローズカラム(ゲル床容積4ml )K通液し、5
0mMトリス緩衝液(pH7,5)につづいてOIMN
aClを含む同緩衝液で洗浄後、4MNaClを含む5
0 mM酢酸緩衝液(pH5,5)で吸着タンパク質を
溶出した。流速は1ml/minとした。その結果溶出
物は波長2F30nmの紫外部吸光度測定によシ第2図
に示す如く、夾雑タンパク質よシなるピークの他にpH
5,5で溶出した分画があった。この分画のアンチトロ
ンビン■活性を測定し、アンチトロンビン■が含まれる
こと、また第3図に示す如く、電気泳動像より、極少量
の夾雑タンパク質のみを含む、純度の高いアンチトロン
ビン■分画であることが確認された。表■に示される如
く、添加した加熱膜フィブリン血漿よシ該アンチトロン
ビン■分画へのアンチトロンビン■の活性回収率は90
%であシ、Folin法にょシ測定したタンパク質量当
シの活性の値は加熱膜フィブリン崩漿に比べて175倍
に上昇した。電気泳動像においてみとめられる微量の夾
雑タンパク質は、陰イオン交換樹脂カラムクロマトグラ
フィー(商品名= DEAEセファデックスA−50)
にょシ除去しさらに高純度のアンチトロンビン■を得る
ことができた。(表1参照) 表1 実施例2におけるアンチトロンビン■の精製実施
例3 実施例2において用いた溶出液を0.2 Mベンズアミ
ジン(pH5,5)と変えた以外は実施例2と同様な操
作・測定を行った。ただし、アンチトロンビン■分画は
、1MNaclを含む50 mM トリス緩衝液(pH
7,5)で透析した。その結果、実施例2とはぼ同様の
純度を保ち、アンチトロンビン■の活性も同程度に回収
されることが確認された。
澄みを集め0.2μのポアーサイズを有するフィルター
を用いて濾過し、その4ml を不活化トロンビンセ
ファローズカラム(ゲル床容積4ml )K通液し、5
0mMトリス緩衝液(pH7,5)につづいてOIMN
aClを含む同緩衝液で洗浄後、4MNaClを含む5
0 mM酢酸緩衝液(pH5,5)で吸着タンパク質を
溶出した。流速は1ml/minとした。その結果溶出
物は波長2F30nmの紫外部吸光度測定によシ第2図
に示す如く、夾雑タンパク質よシなるピークの他にpH
5,5で溶出した分画があった。この分画のアンチトロ
ンビン■活性を測定し、アンチトロンビン■が含まれる
こと、また第3図に示す如く、電気泳動像より、極少量
の夾雑タンパク質のみを含む、純度の高いアンチトロン
ビン■分画であることが確認された。表■に示される如
く、添加した加熱膜フィブリン血漿よシ該アンチトロン
ビン■分画へのアンチトロンビン■の活性回収率は90
%であシ、Folin法にょシ測定したタンパク質量当
シの活性の値は加熱膜フィブリン崩漿に比べて175倍
に上昇した。電気泳動像においてみとめられる微量の夾
雑タンパク質は、陰イオン交換樹脂カラムクロマトグラ
フィー(商品名= DEAEセファデックスA−50)
にょシ除去しさらに高純度のアンチトロンビン■を得る
ことができた。(表1参照) 表1 実施例2におけるアンチトロンビン■の精製実施
例3 実施例2において用いた溶出液を0.2 Mベンズアミ
ジン(pH5,5)と変えた以外は実施例2と同様な操
作・測定を行った。ただし、アンチトロンビン■分画は
、1MNaclを含む50 mM トリス緩衝液(pH
7,5)で透析した。その結果、実施例2とはぼ同様の
純度を保ち、アンチトロンビン■の活性も同程度に回収
されることが確認された。
実施例4
低温エタノール法を用いて人血漿タンパク質を分画する
方法は古< Cohn らによ多系統的な分画法が開発
され(E、J、Cohn:Journal of Am
eri −can Chemical 5ociety
、68:459(1946))現在も工業的に広く利用
されている。
方法は古< Cohn らによ多系統的な分画法が開発
され(E、J、Cohn:Journal of Am
eri −can Chemical 5ociety
、68:459(1946))現在も工業的に広く利用
されている。
この方法で分画されたIV−1ペイスト(湿重1g)を
4mlの50 mM トリス緩衝液(pH7,5)に溶
解し、0.2μのポアーサイズを有するフィルターを用
いて濾過し、実施例2と同様な操作でアンチトロンビン
■を分離精製した。波長230nmの吸光度測定の結果
、順次溶出するタンパク質は実施例1と同様なピークに
分れることを確認した。実施例2と同様にp H5,5
イオン強度4の溶出液で溶出されるピークを採取したと
ころ、表2に示される如く、アンチトロンビン■の活性
回収率は80チであシ、効率よく回収されていることが
確認された。また、タンパク当りのアンチトロンビン■
の活性の比もカラムに添加前に比べ177倍に上昇した
。(表2参照) 表2 実施例4におけるアンチトロンビン■の精製実施
例5 血漿に終濃度5omMになるようにトリスアミノメタン
を加え、0.IN塩酸でpH7,5とし冷却しながら5
0%ポリエチレングリコール4000溶液ヲ加工、ポリ
エチレングリコールの最終濃度を15俤とする。低温に
て遠心分離し上澄みを集め、フィルターを用いて濾過し
4ml を不活化トロンビンゲルカラム(ゲル床容積
4m1)に添加し、実施例2 、!: ホホ同程度の純
度のアンチトロンビンmを同程度の効率で回収できるこ
とがわかった。回収率は85g6比活性はクロマトグラ
フィーの前後で165倍上昇した。
4mlの50 mM トリス緩衝液(pH7,5)に溶
解し、0.2μのポアーサイズを有するフィルターを用
いて濾過し、実施例2と同様な操作でアンチトロンビン
■を分離精製した。波長230nmの吸光度測定の結果
、順次溶出するタンパク質は実施例1と同様なピークに
分れることを確認した。実施例2と同様にp H5,5
イオン強度4の溶出液で溶出されるピークを採取したと
ころ、表2に示される如く、アンチトロンビン■の活性
回収率は80チであシ、効率よく回収されていることが
確認された。また、タンパク当りのアンチトロンビン■
の活性の比もカラムに添加前に比べ177倍に上昇した
。(表2参照) 表2 実施例4におけるアンチトロンビン■の精製実施
例5 血漿に終濃度5omMになるようにトリスアミノメタン
を加え、0.IN塩酸でpH7,5とし冷却しながら5
0%ポリエチレングリコール4000溶液ヲ加工、ポリ
エチレングリコールの最終濃度を15俤とする。低温に
て遠心分離し上澄みを集め、フィルターを用いて濾過し
4ml を不活化トロンビンゲルカラム(ゲル床容積
4m1)に添加し、実施例2 、!: ホホ同程度の純
度のアンチトロンビンmを同程度の効率で回収できるこ
とがわかった。回収率は85g6比活性はクロマトグラ
フィーの前後で165倍上昇した。
実施例6
実施例2において用いた溶離液を50 mMト、IJス
緩衝液(pH8,0)と変えた以外は実施例2と同様な
操作・測定を行った。その結果得られたアンチトロンビ
ン■は、実施例とほぼ同程度の純度であ−たが、活性の
回収率は60チであった。
緩衝液(pH8,0)と変えた以外は実施例2と同様な
操作・測定を行った。その結果得られたアンチトロンビ
ン■は、実施例とほぼ同程度の純度であ−たが、活性の
回収率は60チであった。
実施例7
実施例2において用いた溶離液をIMNaCIを含む5
0 mM Uン酸緩衝液(pH6,0)と変えた以外は
実施例2と同様な操作・測定を行った。その結果アンチ
トロンビン■は、実施例とほぼ同程度の純度であったが
、活性の回収率は50%とやや低かった。
0 mM Uン酸緩衝液(pH6,0)と変えた以外は
実施例2と同様な操作・測定を行った。その結果アンチ
トロンビン■は、実施例とほぼ同程度の純度であったが
、活性の回収率は50%とやや低かった。
実施例8
血漿に低温で終濃度20チとなるように(NH,)2S
O4の粉末を加え、30分間放置後、遠心分離し、上澄
を取シ、50 mM トリス緩衝液(pH7,5)で1
00倍に希釈した。その後、フィルターを用いて濾過4
00m1を実施例2と同様な純度のアンチトロンビン■
を回収率約80q6で精製することができた。
O4の粉末を加え、30分間放置後、遠心分離し、上澄
を取シ、50 mM トリス緩衝液(pH7,5)で1
00倍に希釈した。その後、フィルターを用いて濾過4
00m1を実施例2と同様な純度のアンチトロンビン■
を回収率約80q6で精製することができた。
実施例9
回分法によシアンチトロンビンmを精久シた。
実施例2と同様な操作で加熱によりフィブリノーゲンを
除去した血漿100m1を得た。それに50m1のアン
ヒドロトロンビンゲルを加え%4℃で3時間攪拌した。
除去した血漿100m1を得た。それに50m1のアン
ヒドロトロンビンゲルを加え%4℃で3時間攪拌した。
グラスフィルター上で吸引しながらゲルを回収し、さら
に250m1の0.1M NaClを含む50mMトリ
ス緩衝液(pH7,5)で洗浄後、100m1ノ50m
M酢酸緩衝液(pH5,5)でアンチトロンビン■分画
を溶出した。
に250m1の0.1M NaClを含む50mMトリ
ス緩衝液(pH7,5)で洗浄後、100m1ノ50m
M酢酸緩衝液(pH5,5)でアンチトロンビン■分画
を溶出した。
タンパク質量とア、ンチトロンビン■活性を測定したと
ころ、回収率は約80%であること比活性はクロマトグ
ラフィー前後で150倍に上昇し、純度は実施例2に近
いものであることが確認された。
ころ、回収率は約80%であること比活性はクロマトグ
ラフィー前後で150倍に上昇し、純度は実施例2に近
いものであることが確認された。
さらに、DEAEセファデックスカラムクロマトグラフ
ィーを行ったところ高純度の標品が得られた。
ィーを行ったところ高純度の標品が得られた。
実施例10
実施例5と同様な操作で血漿にポリエチレングリコール
を加え、フィブリノーゲンを除去した後その150 m
lを実施例9と同様な操作で回分法によりアンチトロン
ビン■の分離精製を行った。
を加え、フィブリノーゲンを除去した後その150 m
lを実施例9と同様な操作で回分法によりアンチトロン
ビン■の分離精製を行った。
回収率、純度とも実施例7と同程度であった。
比較例1
ヘパリンをリガンドとしたアガロースゲル(商品名=ヘ
パリンセファロース(CL6 B ) 全充填したカラ
ム(ゲル床容積:20m1)にコーンIV−1ペイスト
(湿重5g)を20 mlの50mM)リス緩衛液(p
’H7,5)に溶解し濾過後添加した。同緩衝液100
m1でカラムを洗浄後0−2. OMNaClで直線的
に濃度勾配をつけた同緩衝液で吸着タンパク質を溶出し
た。流速は0.3ml/minであった。該溶出液は5
ml毎に分取し、 230nmの吸光度測定およびアン
壬トロンビン■活性の測定を行ったうその結果第4図に
示す如く溶出される2つの夾雑タンパク質ピークは各々
アンチトロンビン■活性を示した。したがってアンチト
ロンビン■は三つのピークに分かれるが、その純度から
アンチトロンビンm分画として採取されるのは第3のピ
ークのみである。表3に示す如く、この分画のタンパク
質当りのアンチトロンビン■活性は添加前ト比べ150
倍に上昇し、純度が高い標品であることがわかった。し
かし、アンチトロンビン■活性の回収率は30%と低い
値であり、効率が悪い。
パリンセファロース(CL6 B ) 全充填したカラ
ム(ゲル床容積:20m1)にコーンIV−1ペイスト
(湿重5g)を20 mlの50mM)リス緩衛液(p
’H7,5)に溶解し濾過後添加した。同緩衝液100
m1でカラムを洗浄後0−2. OMNaClで直線的
に濃度勾配をつけた同緩衝液で吸着タンパク質を溶出し
た。流速は0.3ml/minであった。該溶出液は5
ml毎に分取し、 230nmの吸光度測定およびアン
壬トロンビン■活性の測定を行ったうその結果第4図に
示す如く溶出される2つの夾雑タンパク質ピークは各々
アンチトロンビン■活性を示した。したがってアンチト
ロンビン■は三つのピークに分かれるが、その純度から
アンチトロンビンm分画として採取されるのは第3のピ
ークのみである。表3に示す如く、この分画のタンパク
質当りのアンチトロンビン■活性は添加前ト比べ150
倍に上昇し、純度が高い標品であることがわかった。し
かし、アンチトロンビン■活性の回収率は30%と低い
値であり、効率が悪い。
(表3参照)
表3 比較例1におけるアンチトロンビン■の精製第1
図はアンヒドロトロンビンのベンズアミジンセファロー
ズアフィニティークロアトゲラムである。
図はアンヒドロトロンビンのベンズアミジンセファロー
ズアフィニティークロアトゲラムである。
■、 アンヒドロトロンビン
第2図および第4図はアンヒドロトロンビンセファロー
ズアフィニティークロマトグラフィーにより分離された
血漿タンパク質混合液のクロマトグラムである。
ズアフィニティークロマトグラフィーにより分離された
血漿タンパク質混合液のクロマトグラムである。
2、 アンチトロンビン■
第3図ハ、アンヒドロドロンピンセファローズアフィニ
ティクロマトグラフィーにより精製されたアンチトロン
ビン■のポリアクリルアミドディスク電気泳動像である
。
ティクロマトグラフィーにより精製されたアンチトロン
ビン■のポリアクリルアミドディスク電気泳動像である
。
Claims (9)
- (1) アフィニティークロマトグラフィー法を用い
て、緩衝液、中性塩溶液および血漿タンノ々り質混合液
を含むpH6〜8かつイオン強度0〜1の溶離液とゲル
を接触させることにより、アンチトロンビン■を特異的
に吸着せしめ、pH4,o〜5.5の中性塩溶液あるい
は基質類似物により溶出することを特徴とするアンチト
ロンビン■の分離精製法。ただし、ここでいう基質類似
物とは、トロンビンの競合阻害剤のことである。 - (2) アフィニティークロマトグラフィーに用いる
ゲルが親水性担体にアフィニティーリガンドとして化学
修飾不活化トロンビンを結合しだものであり、それ自身
トロンビン活性を示さず、基質結合能のみを有するゲル
である特許請求の範囲第(1)項記載の方法。 - (3) アフィニティーリガンドとしての修飾不活化
トロンビンがアンヒドロトロンビンである特許請求の範
囲第(1)項または第(27項記載の方法。 - (4) 緩衝液が、トリス緩衝液、リン酸緩衝液、酢
酸緩衝液である特許請求の範囲第(11項ないし第(3
1項記載の方法。 - (5) 中性塩溶液が、NaC1,KCI 、 NH
4Cl 、(NH4)2S04である特許請求の範囲第
(1)項ないし第(3)項記載の方法。〜 - (6)基質類似物がベンズアミジン、アミノベンズアミ
ジン、ニトロベンズアミジンである特許請求の範囲第(
1jな、リシ第(,31項記載の方法。 - (7)血漿タンパク質を含む溶液が水溶液である特許請
求の範囲第(1+項ないし第(6)項のいずれかの項記
載の方法。 - (8) 血漿タンパク質を含む溶液が中性塩を共存す
る溶液である特許請求の範囲第(1)ないし第(6)項
のいずれかの項記載の方法。 - (9)血漿タンパク質を含む溶液がポリエチレングリコ
ールなどの水溶性高分子を共存する水溶液である特許請
求の範囲第(1)項ないし第(6ン項のいずれかの項記
載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56108289A JPS597694B2 (ja) | 1981-07-13 | 1981-07-13 | 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56108289A JPS597694B2 (ja) | 1981-07-13 | 1981-07-13 | 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5810522A true JPS5810522A (ja) | 1983-01-21 |
| JPS597694B2 JPS597694B2 (ja) | 1984-02-20 |
Family
ID=14480888
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP56108289A Expired JPS597694B2 (ja) | 1981-07-13 | 1981-07-13 | 不活化トロンビンゲルによるアンチトロンビン3の精製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS597694B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1999020655A1 (en) * | 1997-10-23 | 1999-04-29 | Fujimori Kogyo Co., Ltd. | Method for purifying thrombin substrates and/or inhibitors or method for eliminating the same |
| WO2004056870A3 (en) * | 2002-12-19 | 2004-10-14 | Octapharma Ag | Method for separation of antithrombin |
-
1981
- 1981-07-13 JP JP56108289A patent/JPS597694B2/ja not_active Expired
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1999020655A1 (en) * | 1997-10-23 | 1999-04-29 | Fujimori Kogyo Co., Ltd. | Method for purifying thrombin substrates and/or inhibitors or method for eliminating the same |
| EP1026172A4 (en) * | 1997-10-23 | 2003-05-07 | Fujimori Kogyo Co Ltd | METHOD FOR CLEANING THROMBINE SUBSTRATES AND / OR INHIBITORS OR METHOD FOR ELIMINATING THEM |
| US6582603B1 (en) | 1997-10-23 | 2003-06-24 | Fujimori Kogyo Co., Ltd. | Method for purifying thrombin substrate and/or inhibitors or method for eliminating the same |
| WO2004056870A3 (en) * | 2002-12-19 | 2004-10-14 | Octapharma Ag | Method for separation of antithrombin |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS597694B2 (ja) | 1984-02-20 |
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