JPH01300899A - 微生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製法 - Google Patents
微生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製法Info
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- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
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- RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K trisodium phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])([O-])=O RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
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- 150000003751 zinc Chemical class 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はラセミ体のジハロゲノプロパノールを微生物処
理して光学活性なジハロゲノプロパノールを分取する方
法に関する。
理して光学活性なジハロゲノプロパノールを分取する方
法に関する。
(従来技術)
ジハロゲノプロパノール、特に2,3−ジクロロ−1−
プロパノール(以下β−DCHと略称する)又は2.3
−ジブロモ−・1−プロパノール(以下β−DBHと略
称する)は、下記構造式で表わされるようにC2位に不
斉炭素をもつ化合物であり、このものを光学分割して得
られる光学異性体から製造された光学活性なエピクロロ
ヒドリン又はエビブロモヒドリンは医薬、農薬、強誘電
性液晶、光学活性ポリマーなどの中間原料として重要で
ある。
プロパノール(以下β−DCHと略称する)又は2.3
−ジブロモ−・1−プロパノール(以下β−DBHと略
称する)は、下記構造式で表わされるようにC2位に不
斉炭素をもつ化合物であり、このものを光学分割して得
られる光学異性体から製造された光学活性なエピクロロ
ヒドリン又はエビブロモヒドリンは医薬、農薬、強誘電
性液晶、光学活性ポリマーなどの中間原料として重要で
ある。
X0H
(但し、上式においてXは塩素原子又は臭素原子である
) 従来ジハロゲノプロパノールの光学分割は極めて困難で
あることが知られている。このジハロゲノプロパノール
を光学分割する方法については本出願人は先に微生物を
利用する光学分割方法を提案したく特開昭61−132
196@公報、特開昭62−40298@公報)。この
方法は、土壌中より分離採取して得られたシュードモナ
ス属に属する細菌、即ちシュードモナス(Pseudo
monas )OS−に−29(微工研菌奇第7846
号、FERMP−7846>と命名される細菌を用いて
ラセミ体のβ−DCH又はβ−DBHから8体のみを分
解せしめて、光学純度99%以上の8体を分取する方法
である。
) 従来ジハロゲノプロパノールの光学分割は極めて困難で
あることが知られている。このジハロゲノプロパノール
を光学分割する方法については本出願人は先に微生物を
利用する光学分割方法を提案したく特開昭61−132
196@公報、特開昭62−40298@公報)。この
方法は、土壌中より分離採取して得られたシュードモナ
ス属に属する細菌、即ちシュードモナス(Pseudo
monas )OS−に−29(微工研菌奇第7846
号、FERMP−7846>と命名される細菌を用いて
ラセミ体のβ−DCH又はβ−DBHから8体のみを分
解せしめて、光学純度99%以上の8体を分取する方法
である。
(発明が解決しようとする課題)
しかしながら、上記方法ではラセミ体β−DCH又はラ
セミ体β−DBHから培養によって8体を分解するに要
する時間が甚だ長く、従って上記培養に際して温度管理
、撹拌動力、空気供給等に要する動力費用が大きいとい
う問題があった。
セミ体β−DBHから培養によって8体を分解するに要
する時間が甚だ長く、従って上記培養に際して温度管理
、撹拌動力、空気供給等に要する動力費用が大きいとい
う問題があった。
(課題を解決するための手段)
本発明者らは、上記先願の微生物処理による方法と同等
な高光学@度を与えることができ、しかも一方の光学異
性体をより速く資化することのできる微生物のスクリー
ニングを行った。
な高光学@度を与えることができ、しかも一方の光学異
性体をより速く資化することのできる微生物のスクリー
ニングを行った。
その結果、約数子株の中からより強力なR体資化能を持
つシュードモナス属に属する後記3新菌株が上記欠点を
改善する微生物として見出された。
つシュードモナス属に属する後記3新菌株が上記欠点を
改善する微生物として見出された。
すなわち、本発明は、R−(+)−2,3−ジクロロ−
1−プロパノール又はR−(+> −2,3−ジブロモ
−1−プロパノール資化能を有し、それぞれシュードモ
ナス属に屈する新菌株OS−に−9菌株、OS−K−7
4菌株及びOS−に−7S菌株から選ばれた細菌又はそ
の培養菌体を適当な培地中でラセミ体2,3−ジクロロ
−1−プロパノール又はラセミ体2,3−ジブロモ−1
−プロパノールを作用させてS−(−)−2,3−ジク
ロロ−1−プロパノール又はS−(−)−2,3−ジブ
ロモ−1−プロパノールを分取することを特徴とする微
生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製
法である。
1−プロパノール又はR−(+> −2,3−ジブロモ
−1−プロパノール資化能を有し、それぞれシュードモ
ナス属に屈する新菌株OS−に−9菌株、OS−K−7
4菌株及びOS−に−7S菌株から選ばれた細菌又はそ
の培養菌体を適当な培地中でラセミ体2,3−ジクロロ
−1−プロパノール又はラセミ体2,3−ジブロモ−1
−プロパノールを作用させてS−(−)−2,3−ジク
ロロ−1−プロパノール又はS−(−)−2,3−ジブ
ロモ−1−プロパノールを分取することを特徴とする微
生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製
法である。
本発明において用いられる土壌中から採取された上記3
種の新菌株、O8−に−9菌株、OS−K−74菌株及
びOS−に−76菌株の菌学的性質は下記に示すとおり
である。
種の新菌株、O8−に−9菌株、OS−K−74菌株及
びOS−に−76菌株の菌学的性質は下記に示すとおり
である。
各培地における生育状態
1、肉汁寒天平板培!(30℃、 3日1ialり菌株
名 O8−に−90S−に−74O8−に−76イ)コ
ロニー形状の遅速 諺 通 鋳 通
普 通口)コロニーの形状 円 形
円 形 円 形ハ)コロニー表面の形状
平 lf! 平 滑 平 清二
)コロニー隆起状態 頭 状 凸 状
凸 状ホ)コロニーの周縁 全 円
全 円 全 円へ)コロニーの内容
均 質 均 質 均 質ト)コ
ロニーの色調 乳白色 肌 色
肌 色チ)コロニーの透明度 半透明
半透明 半透明り)コロニーの光沢
鈍 光 鈍 光 鈍 光ヌ)可
溶性色素の生成 無 無
無2、肉汁寒天斜面培!!(30℃、3日間)
イ)生育の良否 生育良好 生育良好 生
育良好口)生育状態 糸状 糸状 糸状ハ)
コロニー表面の形状 平 滑 平 滑
平 滑二)コロニー断面の形状 偏 平
偏 平 偏 平ホ)コロニーの光沢
鈍 光 鈍 光 鈍 光へ)コ
ロニーの色調 乳白色 乳肌色
乳肌色ト)コロニーの透明度 半透明
半透明 半透明3、肉汁液体培II(
30℃、3日間)イ)生育状態 僅かに濁
る 僅かに濁る 僅かに濁る口)ガス発生
無 無 無ハ)培地の着色
無 無
無4、肉汁ゼラチン穿刺培養 液化せず 液化せず 液化せず 5、リドマスミルク 凝固せず 凝固せず 凝固せず 青 色 青 色 無変化6、生理学的
試験 1)硝酸塩の還元 + +
+2)MRテスト −−−
3)VPテスト − −−
4)インドールの生成 −−−5)硫化水素の
生成 −−−6)でんぷんの加水分解
−−−7)脱窒反応
+ 十8)クエン酸の利用
+ + +9〉無機窒素源
の利用 + + +
10)蛍光性色素の生成 +
(al +(a)11)ウレアーゼ
十 −−12)オキシダーゼ
+ + +13)
カタラーゼ + +
+14)生育のl)H範囲 5−10
6−9 5−1015)酸素に対する
Br!1 好気性 好気性
好気性16)O−Fテスト 0
0 017)糖類からの酸及びガスの
生成 糖 類 義 ガス 酸 ガス 酸
ガスローグルコース − −+ −+
−D−ガラクトース − −+−+−ショ糖
−−−−+− トレハロース −−一一一一 デンプン −一一一一一 グリセリン − −+−+− 18>PH8の蓄積 −−−19)アルギ
ニンデヒドロラーゼ −十 +(a):P
seudomonas F寒天培地、キングB寒天培
地にて蛍光性色素生成 形態学的諸性質 1)!In胞の形状 桿菌 桿菌 桿菌2)
I胞の大きさ(s> 0.7x2.O0,7x
2.5 0.7x2.43)細胞の多形性
無 無 無4)運
動性の有無 有 有
有5)ダラム染色性 陰 性
陰 性 陰 性6)胞子の有無
無 無 無7)抗
酸性 無 無
無上記の結果をもとにパージエイズ・マニュア
ル・オブ・システマティック・バクテリオロジー(Be
rgey’s Manual of Systemat
ic Bacteriology)第1巻の記載に基づ
ぎ、それらの帰属同定を行うと、 O8−に−9菌株はシュードモナス シュードアルカリ
ジェネス(Pseudomonas pseudoal
kal igenes)の新菌株 OS−に−74菌株はシュードモナス プチダ(Pse
udomonas putida >の新菌株OS−に
−76菌株はシュードモナス フルオレッセンス(Ps
eudomonas fluorescence)の新
菌株と判明した。
名 O8−に−90S−に−74O8−に−76イ)コ
ロニー形状の遅速 諺 通 鋳 通
普 通口)コロニーの形状 円 形
円 形 円 形ハ)コロニー表面の形状
平 lf! 平 滑 平 清二
)コロニー隆起状態 頭 状 凸 状
凸 状ホ)コロニーの周縁 全 円
全 円 全 円へ)コロニーの内容
均 質 均 質 均 質ト)コ
ロニーの色調 乳白色 肌 色
肌 色チ)コロニーの透明度 半透明
半透明 半透明り)コロニーの光沢
鈍 光 鈍 光 鈍 光ヌ)可
溶性色素の生成 無 無
無2、肉汁寒天斜面培!!(30℃、3日間)
イ)生育の良否 生育良好 生育良好 生
育良好口)生育状態 糸状 糸状 糸状ハ)
コロニー表面の形状 平 滑 平 滑
平 滑二)コロニー断面の形状 偏 平
偏 平 偏 平ホ)コロニーの光沢
鈍 光 鈍 光 鈍 光へ)コ
ロニーの色調 乳白色 乳肌色
乳肌色ト)コロニーの透明度 半透明
半透明 半透明3、肉汁液体培II(
30℃、3日間)イ)生育状態 僅かに濁
る 僅かに濁る 僅かに濁る口)ガス発生
無 無 無ハ)培地の着色
無 無
無4、肉汁ゼラチン穿刺培養 液化せず 液化せず 液化せず 5、リドマスミルク 凝固せず 凝固せず 凝固せず 青 色 青 色 無変化6、生理学的
試験 1)硝酸塩の還元 + +
+2)MRテスト −−−
3)VPテスト − −−
4)インドールの生成 −−−5)硫化水素の
生成 −−−6)でんぷんの加水分解
−−−7)脱窒反応
+ 十8)クエン酸の利用
+ + +9〉無機窒素源
の利用 + + +
10)蛍光性色素の生成 +
(al +(a)11)ウレアーゼ
十 −−12)オキシダーゼ
+ + +13)
カタラーゼ + +
+14)生育のl)H範囲 5−10
6−9 5−1015)酸素に対する
Br!1 好気性 好気性
好気性16)O−Fテスト 0
0 017)糖類からの酸及びガスの
生成 糖 類 義 ガス 酸 ガス 酸
ガスローグルコース − −+ −+
−D−ガラクトース − −+−+−ショ糖
−−−−+− トレハロース −−一一一一 デンプン −一一一一一 グリセリン − −+−+− 18>PH8の蓄積 −−−19)アルギ
ニンデヒドロラーゼ −十 +(a):P
seudomonas F寒天培地、キングB寒天培
地にて蛍光性色素生成 形態学的諸性質 1)!In胞の形状 桿菌 桿菌 桿菌2)
I胞の大きさ(s> 0.7x2.O0,7x
2.5 0.7x2.43)細胞の多形性
無 無 無4)運
動性の有無 有 有
有5)ダラム染色性 陰 性
陰 性 陰 性6)胞子の有無
無 無 無7)抗
酸性 無 無
無上記の結果をもとにパージエイズ・マニュア
ル・オブ・システマティック・バクテリオロジー(Be
rgey’s Manual of Systemat
ic Bacteriology)第1巻の記載に基づ
ぎ、それらの帰属同定を行うと、 O8−に−9菌株はシュードモナス シュードアルカリ
ジェネス(Pseudomonas pseudoal
kal igenes)の新菌株 OS−に−74菌株はシュードモナス プチダ(Pse
udomonas putida >の新菌株OS−に
−76菌株はシュードモナス フルオレッセンス(Ps
eudomonas fluorescence)の新
菌株と判明した。
本発明者らは、上記3種の新菌株をそれぞれシュードモ
ナス シュードアルカリジェネス(pseu−domo
nas pseudoalkal igenes >
OS−K −9(微工研菌奇第9769号、FERM
P−9769>、シュードモナス プチダ(Pseu
domonas putida )OS−に−74(微
工研菌奇第9771号、FERMp−9771@) 、
シュードモナス フルオレッセンス(Pseudomo
nas fluorescence) OS−に−76
(微工研菌奇第9770号、FERM P−9770
号)と命名した。
ナス シュードアルカリジェネス(pseu−domo
nas pseudoalkal igenes >
OS−K −9(微工研菌奇第9769号、FERM
P−9769>、シュードモナス プチダ(Pseu
domonas putida )OS−に−74(微
工研菌奇第9771号、FERMp−9771@) 、
シュードモナス フルオレッセンス(Pseudomo
nas fluorescence) OS−に−76
(微工研菌奇第9770号、FERM P−9770
号)と命名した。
尚、本発明者らの実験によると、同病同種の標準菌株で
あるシュードモナス シュードアルカリジェネスIF0
14157株、シュードモナス プチダIFO1416
4株及びシュードモナス フルオレッセンスIF014
160株については本発明で用いる上記3新菌株と同様
な効果、即ち、ジハロゲノプロパノール資化性がないこ
とが明らかとなった。
あるシュードモナス シュードアルカリジェネスIF0
14157株、シュードモナス プチダIFO1416
4株及びシュードモナス フルオレッセンスIF014
160株については本発明で用いる上記3新菌株と同様
な効果、即ち、ジハロゲノプロパノール資化性がないこ
とが明らかとなった。
また、上記3新菌株は、前述した本出願人に係る先願の
菌株(O8−に−29(FERM P−7846>と
比較して、 (i)シュードモナス アルカリジェネスO8−に−9
(FERM P−9769)は、D−グルコース、D
−ガラクトース、ショ糖及びトレハロースよりいずれも
酸を生成しない (ii)シュードモナス プチダOS−に−74(FE
RM P−9771>及びシュードモナス フルオレ
ッセンスO5−に−76(FERM P−9770)
は、いずれもPSetJdOmOnaS F寒天培地、
キングB寒天培地において蛍光性色素を生成する という生理学的諸性質において明らかに異なるものであ
る。
菌株(O8−に−29(FERM P−7846>と
比較して、 (i)シュードモナス アルカリジェネスO8−に−9
(FERM P−9769)は、D−グルコース、D
−ガラクトース、ショ糖及びトレハロースよりいずれも
酸を生成しない (ii)シュードモナス プチダOS−に−74(FE
RM P−9771>及びシュードモナス フルオレ
ッセンスO5−に−76(FERM P−9770)
は、いずれもPSetJdOmOnaS F寒天培地、
キングB寒天培地において蛍光性色素を生成する という生理学的諸性質において明らかに異なるものであ
る。
本発明ではラセミ体β−DCH又はラセミ体β−DBH
に、上記微生物を接触させてS−(−)−β−DCH又
はS−(−)−β−DBHを分取するが、具体的にはラ
セミ体β−DCH又はラセミ体β−DBHを炭素源とし
、無)幾態窒素(各種のアンモニア塩、硝酸塩)を窒素
源としその他無機塩類を含む合成培地中で上記細菌を培
養するか、又は上記細菌をブイヨン培地、あるいは加糖
ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養源、無機栄
養源を含む通常よく用いられる栄養培地中で培養せしめ
、よく生育させておき、これから得られる菌体をラセミ
体β−DCH又はラセミ体β−DBHを含有する培地中
で作用させた後、残存するS−(−)−β−DCH又は
S−(−)−β−DBHを分取すればよい。
に、上記微生物を接触させてS−(−)−β−DCH又
はS−(−)−β−DBHを分取するが、具体的にはラ
セミ体β−DCH又はラセミ体β−DBHを炭素源とし
、無)幾態窒素(各種のアンモニア塩、硝酸塩)を窒素
源としその他無機塩類を含む合成培地中で上記細菌を培
養するか、又は上記細菌をブイヨン培地、あるいは加糖
ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養源、無機栄
養源を含む通常よく用いられる栄養培地中で培養せしめ
、よく生育させておき、これから得られる菌体をラセミ
体β−DCH又はラセミ体β−DBHを含有する培地中
で作用させた後、残存するS−(−)−β−DCH又は
S−(−)−β−DBHを分取すればよい。
炭素源としてはグルコース、シュクロース、グリセリン
等の炭水化物、あるいはクエン酸、マレイン酸、リンゴ
酸等の有IN酸及びその塩類を、窒素源としては硫酸ア
ンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム、リ
ン酸アンモニウム等の無機態窒素、及び尿素、ペプトン
、カゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用
いることができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩
。
等の炭水化物、あるいはクエン酸、マレイン酸、リンゴ
酸等の有IN酸及びその塩類を、窒素源としては硫酸ア
ンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム、リ
ン酸アンモニウム等の無機態窒素、及び尿素、ペプトン
、カゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用
いることができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩
。
マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩、
銅塩等が用いられる。
銅塩等が用いられる。
本国の培養は、慣用の方法で行うことができる。
通常、温度的20〜40℃、好ましくは25〜37℃、
pH約6〜9、好ましくはpl−16,5〜7.5で振
盪おるいは通気撹拌等の手段により好気的に行われる。
pH約6〜9、好ましくはpl−16,5〜7.5で振
盪おるいは通気撹拌等の手段により好気的に行われる。
本発明で用いる微生物とラセミ体β−DCH又はラセミ
体β−DBHを接触させるときのこれらの′a度は培地
巾約0.2容量%程度であればよく、その接触時間は通
常3日以内、好ましくは2日〜3日以内である。
体β−DBHを接触させるときのこれらの′a度は培地
巾約0.2容量%程度であればよく、その接触時間は通
常3日以内、好ましくは2日〜3日以内である。
培養終了後、培養液をとり出し遠心分離して微生物菌体
と上清液とに分離し、上清液中の光学活性なβ−D C
H又はβ−DBHを活性炭カラム処理、エーテル抽出、
減圧蒸留等の操作によって分取する。
と上清液とに分離し、上清液中の光学活性なβ−D C
H又はβ−DBHを活性炭カラム処理、エーテル抽出、
減圧蒸留等の操作によって分取する。
以下実施例により説明する。実施例中%は特に記さない
限り重量%を表わす。
限り重量%を表わす。
実施例1
ラセミ体β−DCHを唯一の炭素源とした培地、すなわ
ち ラセミ体β−DCI−10,2容■% 硫安 0.05%硝安
0.05%りん酸水素第2カリ
ウム Oo、1%1りん酸第2ナトリウム
0.1%りん酸第1ナトリウム 0.2%
1a酸マグネシウム 0.05%ft酸鉄
、硫酸銅、硫酸マンガン 微量pl−16,5 を含む培地100dを有する10個の坂ロフラスコ(5
00d容)に水筒OS−に−9株の傾斜寒天培地から1
白金耳ずつ植菌を行い、30℃でm!培養を3日間実施
する。次に上記組成の培地209を入れた25N容培養
器(ジャーフッメンタ−)に上記前項養分を加え、以下
の条件下で2日間通気撹拌培養した。
ち ラセミ体β−DCI−10,2容■% 硫安 0.05%硝安
0.05%りん酸水素第2カリ
ウム Oo、1%1りん酸第2ナトリウム
0.1%りん酸第1ナトリウム 0.2%
1a酸マグネシウム 0.05%ft酸鉄
、硫酸銅、硫酸マンガン 微量pl−16,5 を含む培地100dを有する10個の坂ロフラスコ(5
00d容)に水筒OS−に−9株の傾斜寒天培地から1
白金耳ずつ植菌を行い、30℃でm!培養を3日間実施
する。次に上記組成の培地209を入れた25N容培養
器(ジャーフッメンタ−)に上記前項養分を加え、以下
の条件下で2日間通気撹拌培養した。
温度30℃
1)l−(初発6.5
通気ffi 20.1! /min
回転@ 300rpm
培養終了後、培養液を取り出し、遠心分離機を用いて微
生物菌体とその上清液とに分離し、この中に残存するβ
−DC)−1を活性炭カラム処理、エーテル抽出、減圧
蒸留によって油状物質として6.2g採取した。本物質
の同定は次の方法で行った。
生物菌体とその上清液とに分離し、この中に残存するβ
−DC)−1を活性炭カラム処理、エーテル抽出、減圧
蒸留によって油状物質として6.2g採取した。本物質
の同定は次の方法で行った。
1)ガスクロマトグラフィーによる同定。
カラム担体PEG−20MP15%、60〜80メツシ
ユを用いて市販β−DCHと比較した結果、その保持時
間は全く同じであった。純度98.6%以上。
ユを用いて市販β−DCHと比較した結果、その保持時
間は全く同じであった。純度98.6%以上。
2)IR(赤外線吸収スペクトル)による同定。
第1図に示したチャートのように、その吸収パターンは
市販β−DCHと全く同一であった。
市販β−DCHと全く同一であった。
以上から本物質は明らかに光学活性β−DCHでおる事
が判明した。又本物質がS−(−)−β−DCHである
事の確認は以下の方法によった。
が判明した。又本物質がS−(−)−β−DCHである
事の確認は以下の方法によった。
1)比旋光度の測定。
市販β−D CH及び本物質の比旋光度は次の如くであ
る。
る。
市販β−DCH(α)萱=0.D C= 1゜ジク
ロロメタン 本 物 質 〔α〕萱=−9,5° C=1゜ジ
クロロメタン 2>R−(十)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調製ならびに高速液体
クロマトグラフィーによる分析。
ロロメタン 本 物 質 〔α〕萱=−9,5° C=1゜ジ
クロロメタン 2>R−(十)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調製ならびに高速液体
クロマトグラフィーによる分析。
R−(十)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチルフ
ェニルアセテートクロライドを市販β−DCHならびに
本物質に反応せしめ、そのエステル誘導体を調製した後
、液体クロマトグラフィーでの分析結果は次のようでお
った。
ェニルアセテートクロライドを市販β−DCHならびに
本物質に反応せしめ、そのエステル誘導体を調製した後
、液体クロマトグラフィーでの分析結果は次のようでお
った。
分析条件
カラム担体 ZORBAXODS
4.6mmx25cm (Du Pont社製)溶 出
液 メタノール:水= 63 : 35 (V/
V)溶出ffi 1ml/min 検 出 法 260nmにおける吸光度分析結果 市販β−DCH保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピークを与 えた。
液 メタノール:水= 63 : 35 (V/
V)溶出ffi 1ml/min 検 出 法 260nmにおける吸光度分析結果 市販β−DCH保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピークを与 えた。
本 物 質 保持時間50.5分にのみピークを与
え52.0分にはピークを与えな かった。
え52.0分にはピークを与えな かった。
3)ジクロロプロピル−N−フェニルカルバメートの調
製及びその比旋光度。
製及びその比旋光度。
市販β−DCH1及び本物質1gとフェニルイソシアネ
ート0.9(]を乾燥アセトン30d、 トリエチル
アミン0.3威に加え、約3時間加熱還流し、そのジク
ロロプロピル−N−7エニルカルバメートを調製した俊
、その比旋光度を測定した。
ート0.9(]を乾燥アセトン30d、 トリエチル
アミン0.3威に加え、約3時間加熱還流し、そのジク
ロロプロピル−N−7エニルカルバメートを調製した俊
、その比旋光度を測定した。
市販β−DCH(α)9=0.0 C=1゜メタノ
ール 本 物 質 〔α〕劃側−16,4° C−1゜
メタノール 以上の結果から本物質は、S−(−)−β−DCト1で
あり、その光学純度は99%以上であることが判った。
ール 本 物 質 〔α〕劃側−16,4° C−1゜
メタノール 以上の結果から本物質は、S−(−)−β−DCト1で
あり、その光学純度は99%以上であることが判った。
実施例2
肉エキス0.5%、ポリペプトン0.5%、グルコース
1.0%、pH7なる培地ioo、gを有する5個の坂
ロフラスコ(500m1容)を常法どおり、加圧蒸気滅
菌後、菌株OS−に−9株の傾斜寒天培地から菌株を1
白金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30℃下で48
時間往復振盪培養(200rpm )を行う。
1.0%、pH7なる培地ioo、gを有する5個の坂
ロフラスコ(500m1容)を常法どおり、加圧蒸気滅
菌後、菌株OS−に−9株の傾斜寒天培地から菌株を1
白金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30℃下で48
時間往復振盪培養(200rpm )を行う。
次に上記組成の培地2ONを30.1!容ジヤーフ7メ
ンターに入れ、常法どおり加圧蒸気滅菌後、各々のフラ
スコで生育せしめた微生物菌体を無菌的に接種せしめ、
次の条件下で20時間培養する。
ンターに入れ、常法どおり加圧蒸気滅菌後、各々のフラ
スコで生育せしめた微生物菌体を無菌的に接種せしめ、
次の条件下で20時間培養する。
温度30℃
pH初発pH7,0
通気邑 20Q /min
回転数 300rl)m
培養の終了した培養液は遠心分離機にて微生物菌体と上
清液とに分離し、上清液は廃棄する。残った微生物菌体
は50m1vlりん酸緩衝液pH6,5にて3回〜4回
洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄菌体を実施例1で
示したラセミ体β−D CHを含有する培地20.1!
に懸濁させ、次の条件下に保持する。
清液とに分離し、上清液は廃棄する。残った微生物菌体
は50m1vlりん酸緩衝液pH6,5にて3回〜4回
洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄菌体を実施例1で
示したラセミ体β−D CHを含有する培地20.1!
に懸濁させ、次の条件下に保持する。
温度30℃
通気N 20.1! /min
回転数 30Orpm
pH5,5(炭酸カルシウムを20(J加えて保持する
) 洗浄菌体を培地に加えてから48時間、上記の様に通気
撹拌培養し、再び遠心弁1i!tIaにて微生物菌体と
上清液とに分離した。上清液からの光学活性β−DCH
の分離は実施例1と同様にし、光学活性β−DCH7,
2fJを得た。このβ−DCHは、実施例1に示したよ
うに各種の分析を行った結果、光学純度99%以上のS
−(−)−β−DCHであった。
) 洗浄菌体を培地に加えてから48時間、上記の様に通気
撹拌培養し、再び遠心弁1i!tIaにて微生物菌体と
上清液とに分離した。上清液からの光学活性β−DCH
の分離は実施例1と同様にし、光学活性β−DCH7,
2fJを得た。このβ−DCHは、実施例1に示したよ
うに各種の分析を行った結果、光学純度99%以上のS
−(−)−β−DCHであった。
実施例3
使用した菌株としてOS−に−9株の代りにOS−に−
74株又はOS−に−76株とした以外は実施例1と同
様にしてそれぞれ下表に示すような分析結果の光学活性
S−β−DCHを得た。
74株又はOS−に−76株とした以外は実施例1と同
様にしてそれぞれ下表に示すような分析結果の光学活性
S−β−DCHを得た。
実施例4
炭素源として、ラセミ体β−DCHの代りにラセミ体β
−DBHを用い、菌株としてOS−に−9株、OS−に
−74株又はOS−に−76株を用いた以外は実施例1
と同様にしてそれぞれ下表に示すような分析結果の光学
活性S−β−DBHを得た。
−DBHを用い、菌株としてOS−に−9株、OS−に
−74株又はOS−に−76株を用いた以外は実施例1
と同様にしてそれぞれ下表に示すような分析結果の光学
活性S−β−DBHを得た。
(発明の効果)
本発明法によれば、光学活性なジハロゲノプロパノール
が先願発明に比べて短時間で製造することができ、しか
も得られた光学活性体は光学純度が非常に高いものであ
る。
が先願発明に比べて短時間で製造することができ、しか
も得られた光学活性体は光学純度が非常に高いものであ
る。
第1図は実施例1によって得られたS−β−DC]−1
と市販品ラセミ体β−D CHの赤外線吸収スペクトル
であり、第2図は実施例4のNo、3によって得られた
S−β−DBHと市販品ラセミ体β−DBHの赤外線吸
収スペクトルである。 第1図 実 線:実施例1のS−(−)−β−DC
H −点鎖線二市販品 第2図 実 線:実施例4N0.3の5−(−)
−β−D B H −点鎖線二市販品
と市販品ラセミ体β−D CHの赤外線吸収スペクトル
であり、第2図は実施例4のNo、3によって得られた
S−β−DBHと市販品ラセミ体β−DBHの赤外線吸
収スペクトルである。 第1図 実 線:実施例1のS−(−)−β−DC
H −点鎖線二市販品 第2図 実 線:実施例4N0.3の5−(−)
−β−D B H −点鎖線二市販品
Claims (1)
- R−(+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール又は
R−(+)−2,3−ジブロモ−1−プロパノール資化
能を有し、それぞれシュードモナス属に属する新菌株O
S−K−9菌株、OS−K−74菌株及びOS−K−7
6菌株から選ばれた細菌又はその培養菌体を培地中でラ
セミ体2,3−ジクロロ−1−プロパノール又はラセミ
体2,3−ジブロモ−1−プロパノールを作用させてS
−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール又はS
−(−)−2,3−ジブロモ−1−プロパノールを分取
することを特徴とする微生物処理による光学活性なジハ
ロゲノプロパノールの製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13370688A JP2651703B2 (ja) | 1988-05-30 | 1988-05-30 | 微生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13370688A JP2651703B2 (ja) | 1988-05-30 | 1988-05-30 | 微生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01300899A true JPH01300899A (ja) | 1989-12-05 |
| JP2651703B2 JP2651703B2 (ja) | 1997-09-10 |
Family
ID=15110987
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP13370688A Expired - Lifetime JP2651703B2 (ja) | 1988-05-30 | 1988-05-30 | 微生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2651703B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009116662A1 (ja) | 2008-03-17 | 2009-09-24 | 味の素株式会社 | 水産練製品の製造方法及び水産練製品用酵素製剤 |
| WO2012026618A1 (ja) | 2010-08-27 | 2012-03-01 | 味の素株式会社 | 水産練り製品の製造方法及び水産練り製品改質用の酵素製剤 |
-
1988
- 1988-05-30 JP JP13370688A patent/JP2651703B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009116662A1 (ja) | 2008-03-17 | 2009-09-24 | 味の素株式会社 | 水産練製品の製造方法及び水産練製品用酵素製剤 |
| EP2353406A1 (en) | 2008-03-17 | 2011-08-10 | Ajinomoto Co., Inc. | Use of an enzyme preparation for the production of a fish paste product |
| WO2012026618A1 (ja) | 2010-08-27 | 2012-03-01 | 味の素株式会社 | 水産練り製品の製造方法及び水産練り製品改質用の酵素製剤 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2651703B2 (ja) | 1997-09-10 |
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