JPH01304880A - ジペプチジルカルボキシペプチダーゼ及びその製造法 - Google Patents
ジペプチジルカルボキシペプチダーゼ及びその製造法Info
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- JPH01304880A JPH01304880A JP13658288A JP13658288A JPH01304880A JP H01304880 A JPH01304880 A JP H01304880A JP 13658288 A JP13658288 A JP 13658288A JP 13658288 A JP13658288 A JP 13658288A JP H01304880 A JPH01304880 A JP H01304880A
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
■ 産業上の利用分野
この発明は、たんばく賀のカルボキシ末端よりジペプチ
ド単位でペプチド結合を加水分解する酵素のうち微生物
が生lL″rjるものに間覆るものである。
ド単位でペプチド結合を加水分解する酵素のうち微生物
が生lL″rjるものに間覆るものである。
■ 従来の技術及び本発明が解決しようとしている課題
ジペプチドあるいはトリペプチドは、これまで化学的方
法によりイヒ学薬品を使用して調製されていたため、価
格も高くかつ食品としての安全性も劣り、天吊に合成さ
れ食品や医桑に使用された例心ない。また、その生理活
性や効果もほとんど知られていない。しかし、ジ、トリ
ペプチドのR管吸収については、ある程度の研究があり
、これらジペプチドは、アミノ酸の混合液よりも、より
早い速度で吸収されるとされ栄養学的に注目されている
。また、医療に使われる補液への利用の場合でも浸透圧
を高めず高濃度に注入できるなど将来の発展が期待でき
る。
法によりイヒ学薬品を使用して調製されていたため、価
格も高くかつ食品としての安全性も劣り、天吊に合成さ
れ食品や医桑に使用された例心ない。また、その生理活
性や効果もほとんど知られていない。しかし、ジ、トリ
ペプチドのR管吸収については、ある程度の研究があり
、これらジペプチドは、アミノ酸の混合液よりも、より
早い速度で吸収されるとされ栄養学的に注目されている
。また、医療に使われる補液への利用の場合でも浸透圧
を高めず高濃度に注入できるなど将来の発展が期待でき
る。
ジペプチドを製造するためには有機化学的に合成するか
、もしくはジペプチジルペプチダーゼで任意のタンパク
質原料を酵素分解することによっ。
、もしくはジペプチジルペプチダーゼで任意のタンパク
質原料を酵素分解することによっ。
得られる。本発明は有力な酵素を開発して、これを使用
する点で後者に属するものである。タンパク賀のアミノ
又はカルボキシ末端からジペプチド単位で切断する酵素
はジペプチジルペプチダーゼと呼ばれ、主として哺乳動
物由来のものが知られている。そのほか、微生物由来の
ものとしてはCo−rynebacter*unおよび
E、CO!iに属する微生物が本酵素を生産することが
報告されている。これらのいずれの菌の1%もカル4;
キシ末端から作用するDPCPaseに属するが、菌自
体の病原性の点で安全性に疑問があるのが欠点である。
する点で後者に属するものである。タンパク賀のアミノ
又はカルボキシ末端からジペプチド単位で切断する酵素
はジペプチジルペプチダーゼと呼ばれ、主として哺乳動
物由来のものが知られている。そのほか、微生物由来の
ものとしてはCo−rynebacter*unおよび
E、CO!iに属する微生物が本酵素を生産することが
報告されている。これらのいずれの菌の1%もカル4;
キシ末端から作用するDPCPaseに属するが、菌自
体の病原性の点で安全性に疑問があるのが欠点である。
■ 課題を解決する手段及び作用
本発明者は、ジペプチドを食品として利用することを目
的として、病原性のない微生物より酵素を得たいと種々
検討したところ、安全性の高いバチルス属に属する菌株
にも、かような酵素の存在することを知った。すなわち
fi製した酵素をAla−6(アラニン6個よりなるペ
プチドを^1a−6と略記し、同様に例えばアラニン2
又は3個よりなるものをAla−2,Ala−3の如く
略記する。以下同じ)に作用させるとカルボキシ末端よ
り^1a−2づつに切断するほか、アンジオ′テンシン
!(^5p−Ar(1−Va−1−Tyr−11e−H
is−Pro−Phe−旧5−Leu )のカルボキシ
末端から旧5−teuを遊離する。また、ブラジキニン
(ArlJ−Pro−Pro−Gll/−Phe−8e
r−Pro−Phe−Ar(1)をArg−Pro−P
ro、 G 1y−Phe、 5er−Pro、 Ph
e−Ar(lに分解した。以上の結果より本酵素はカル
ボキシ末端よりジペプチド単位で加水分解するDPCP
aseであることを賄認した。また本酵素の作用pH7
゜5付近、作用温度50℃付近である点から、十分産業
的に利用できる酵素であることを!を認して本発明を完
成することができた。以下本発明に使用する菌株の蘭学
゛的性質を示寸。
的として、病原性のない微生物より酵素を得たいと種々
検討したところ、安全性の高いバチルス属に属する菌株
にも、かような酵素の存在することを知った。すなわち
fi製した酵素をAla−6(アラニン6個よりなるペ
プチドを^1a−6と略記し、同様に例えばアラニン2
又は3個よりなるものをAla−2,Ala−3の如く
略記する。以下同じ)に作用させるとカルボキシ末端よ
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゜5付近、作用温度50℃付近である点から、十分産業
的に利用できる酵素であることを!を認して本発明を完
成することができた。以下本発明に使用する菌株の蘭学
゛的性質を示寸。
バチルス プミルスHL721株
一1形態学的性質(肉汁寒天培地中)
1)Illf胞の形及び大きさ・・・・・・(0,4〜
0.6) x (0,8〜1.2)μの桿菌。
0.6) x (0,8〜1.2)μの桿菌。
連鎖性はない。
2)運動性・・・・・・有り。
3)胞子・・・・・・有り。
4)ダラム染色性・・・・・・陽性
二、生育状態
1)肉汁寒天平板培地・・・・・・生育良好。表面はや
や湿り白色に近い。
や湿り白色に近い。
2)肉汁寒天平板培地・・・・・・拡布状となり表面に
光沢あり。
光沢あり。
3)肉汁液体培地・・・・・・生育良好。液は混濁する
。
。
4)ゼラチン穿刺培地・・・・・・ゼラチンを液化する
。
。
5)食塩肉汁液体培養・・・・・・7%の食塩水濃度で
は生育できるが、8%では生育できない。
は生育できるが、8%では生育できない。
三、生理学的性質
1)V#酸塩の還元・・・・・・陰性
2)デン粉の加水分解・・・・・・陰性3)クエン酸の
醗酵性・・・・・・陰性4)カタラーゼの生成・・・・
・・陽性5)生育の範囲・・・・・・50℃まで生育で
きる。
醗酵性・・・・・・陰性4)カタラーゼの生成・・・・
・・陽性5)生育の範囲・・・・・・50℃まで生育で
きる。
6)糖のm解性・・・・・・グルコース、グリセロール
、しよ糖から酸を形成。ただしガス発生を伴わない。
、しよ糖から酸を形成。ただしガス発生を伴わない。
7)アセチルメチルカルビノールの生成・・・・・・陽
性 8)ゼラチンの分解・・・・・・陽性 以上の結果をバージ−のマニュアル・オブφシステマテ
ィック・バクテリオロジー第2巻(BerlJ−el/
’S l’1antlal Of 5ysten
+atic BaC1eriOIOQV vol、
2(1986) )と照合して、本国はバチルス プミ
ルス<Bacillus puanilius )と同
定した。
性 8)ゼラチンの分解・・・・・・陽性 以上の結果をバージ−のマニュアル・オブφシステマテ
ィック・バクテリオロジー第2巻(BerlJ−el/
’S l’1antlal Of 5ysten
+atic BaC1eriOIOQV vol、
2(1986) )と照合して、本国はバチルス プミ
ルス<Bacillus puanilius )と同
定した。
バチルス ズブチリスHL521株
−1形態学的性質(肉汁寒天培地中)
1)l胞の形及び大きさ・・・・・・
(0,7〜0.8) x (2,0〜3.0)μの桿菌
。
。
2)運vJ性・・・・・・有り。
3)胞子・・・・・・有り。
4)ダラム染色性・・・・・・毘性。
二、生育状態
1)肉汁寒天平板培地・・・・・・生育良好。表面はや
や乾き白色に近い。
や乾き白色に近い。
2)肉汁寒天平板培地・・・・・・拡布状となり表面の
光沢はない。
光沢はない。
3)肉汁液体培地・・・・・・生育良好。液は混濁覆る
。
。
4)ゼラチン穿刺培地・・・・・・ゼラチンを液化する
。
。
5)食塩肉汁液体培養・・・・・・6%の食塩水濃度で
生育できる。
生育できる。
三、住理学的性質
1)6rI酸塩の還元・・・・・・陽性2)デン粉の加
水分解・・・・・・陽性3)クエン酸の醗酵性・・・・
・・陰性4)カタラーゼの生成・・・・・・陽性5)生
育の範囲・・・・・・50″Cまで生育できる。
水分解・・・・・・陽性3)クエン酸の醗酵性・・・・
・・陰性4)カタラーゼの生成・・・・・・陽性5)生
育の範囲・・・・・・50″Cまで生育できる。
6〉糖の醗酵性・・・・・・グルコース、グリセロール
、しよ糖から酸を形成。ただしガス発生を伴わない。
、しよ糖から酸を形成。ただしガス発生を伴わない。
7)アセチルメチルカルビノールの生成・・・・・・陽
性 8)ゼラチンの分解・・・・・・陽性 以上の結果をバージ−のマニュアル・オブ・システマテ
ィック・バクテリオロジー第2@と照合して、本国はバ
チルス ズブチリス(Bac i l lus 5ub
−tilis )と同定した。
性 8)ゼラチンの分解・・・・・・陽性 以上の結果をバージ−のマニュアル・オブ・システマテ
ィック・バクテリオロジー第2@と照合して、本国はバ
チルス ズブチリス(Bac i l lus 5ub
−tilis )と同定した。
次にバチルス プミルスHL 721菌株の生産する酵
素を訂細に説明づる。
素を訂細に説明づる。
一1作用及び早賀特胃性
本IN?素は、タンパク買のカルボキシ末端より、アミ
ノ酸の種類の如何を問わずジペプチド単位でペプチドを
遊離覆る。しかしながら、カルボキシ末端より2番目に
プロリンがあった場合は切断しない。
ノ酸の種類の如何を問わずジペプチド単位でペプチドを
遊離覆る。しかしながら、カルボキシ末端より2番目に
プロリンがあった場合は切断しない。
二、作用D H
pH5,5〜9.0 (0,05MiLMIナトIJウ
ムー酊M緩衝液(pH5〜6)またはリン酸2ナトリウ
ム−リン酸1力リウムM白液(pH6〜9))で反応す
る。
ムー酊M緩衝液(pH5〜6)またはリン酸2ナトリウ
ム−リン酸1力リウムM白液(pH6〜9))で反応す
る。
三、作用最適1) H
pH7,5
四、f[用温度
0.01Mリン酸緩衝液(pH7,0>で各種温度下1
5分間反応さゼたところ、55°Cまで反応した。
5分間反応さゼたところ、55°Cまで反応した。
五、作用最適温度
50℃
六、熱安定性
0.01Mリン酸緩衝液(pH7,0)中で各種温度で
60分間処理し、残存活性を測定したところ、45℃ま
で安定であった。
60分間処理し、残存活性を測定したところ、45℃ま
で安定であった。
七、pH安定性
pH5〜8で安定である。
ハ、精製方法
菌体を破砕したのち、Q−セファロース、ハイトロキシ
ルアパタイト、ゲル濾過により、5DS−PAGEで単
一バンドを示す!?素を得た。
ルアパタイト、ゲル濾過により、5DS−PAGEで単
一バンドを示す!?素を得た。
九、分子量
155.000 <ゲル濾過による)
士、生産物
Ala−6に作用させたところ、すべてAla−2にな
った。
った。
十−1力価測定沫
ベンゾイル−グリシル−アラニル−プロリンを基質と覆
る下記の方法・条件により測定した。
る下記の方法・条件により測定した。
10mMベンゾイル−グリシル−アラニル−プロリン0
.1dに20mMリンMS!衝液0.05献と酵素液0
.05dを加え、40℃で15分間反応させ、生ずるア
ラニル−プロリンをニンヒドリン法で定量した。
.1dに20mMリンMS!衝液0.05献と酵素液0
.05dを加え、40℃で15分間反応させ、生ずるア
ラニル−プロリンをニンヒドリン法で定量した。
上記反応で1分間当り1μmolのアラニル−プロリン
を生成する酵素量を1単位とした。
を生成する酵素量を1単位とした。
次にバチルス ズブチリス1−IL521菌株の生産す
る酵素を詳細に説明する。
る酵素を詳細に説明する。
一1作用及び基質特異性
本酵素は、タンパク質のカルボキシ末端より、ジペプチ
ド中位でペプチドを遊離する。しかしながら、カルボキ
シ末端より2番目にプロリンがあった場合は切断しない
。
ド中位でペプチドを遊離する。しかしながら、カルボキ
シ末端より2番目にプロリンがあった場合は切断しない
。
二、作用E)H
DH6,0〜11.0 (0,05M耐酸ナトリウム−
酢i!1!緩衝液(pH5〜6)またはリン酸2ナトリ
ウム−リンM1カリウムM衝液(pH6〜11))で反
応する。
酢i!1!緩衝液(pH5〜6)またはリン酸2ナトリ
ウム−リンM1カリウムM衝液(pH6〜11))で反
応する。
三、作用最適pH
pH7,5
四、作用温度
0.01Mリン酸!l衝液(pH7,0)で各種温度下
15分間反応させたところ、55℃まで反応した。
15分間反応させたところ、55℃まで反応した。
五、作用最適温度 、
50℃
六、熱安定性
0.01MIJン1ltliIi液(1)H7,0>中
で各種温度で60分間処理し、残存活性を測定したとこ
ろ、45℃まで安定であった。
で各種温度で60分間処理し、残存活性を測定したとこ
ろ、45℃まで安定であった。
七、pH安定性
pH6〜9で安定である。
ハ、精製方法
菌体を破砕したのち、Q−セファロース、ハイトロキシ
ルアパタイト、ゲル濾過により、5DS−PAGEで単
一バンドを示す酵素を讐だ。
ルアパタイト、ゲル濾過により、5DS−PAGEで単
一バンドを示す酵素を讐だ。
九、分子か
110.000(ゲル濾過による)
土、生産物
Ala−6に作用させたところ、すべてAla−2にな
った。
った。
十−1力価測定法
ペンゾイルーグリシルーアラニループOリンを基質とす
る下記の方法・条件により測定した。
る下記の方法・条件により測定した。
10mM0mMベンゾイル−グリシル−アラニル−プロ
リンaffに20mMリンMM衝液0.05−と酵素液
0.05−を加え、40℃で15分間反応させ、生ずる
アラニルーブOリンをニンヒドリン法で定量した。
リンaffに20mMリンMM衝液0.05−と酵素液
0.05−を加え、40℃で15分間反応させ、生ずる
アラニルーブOリンをニンヒドリン法で定量した。
上記反応で1分間当り1μmofのアラニル−プロリン
を生成する酵素量を1単位とした。
を生成する酵素量を1単位とした。
本発明では、バチルス プミルスとかバチルスズブチリ
スの如きIN!’菌をi8養し、[)PCPaseを採
取するものである。゛ 培養法としては、例えば、1%ペプトン、0゜5%醇母
エキス、0.5%食塩を基本培地としたらよい。培i瀉
度は、30〜45℃、培養時間は16〜24時間前後で
あり、その他については常法に従う。以下に具体的な実
施例を示す。
スの如きIN!’菌をi8養し、[)PCPaseを採
取するものである。゛ 培養法としては、例えば、1%ペプトン、0゜5%醇母
エキス、0.5%食塩を基本培地としたらよい。培i瀉
度は、30〜45℃、培養時間は16〜24時間前後で
あり、その他については常法に従う。以下に具体的な実
施例を示す。
■ 実施例
*例1
1%ペプトン、0.5%Nff1エキス、0.5%食塩
を含む培地をpH7,3に調整し、殺菌後、バチルス
プミルス81フ21株を接種し、37’CI6時間振ど
う培養した。培養後、遠心分離により菌体を得、10m
MリンRH衝液で懸濁し超音波で菌体を破砕した。さら
に遠心分離により菌体破砕物を除去した。
を含む培地をpH7,3に調整し、殺菌後、バチルス
プミルス81フ21株を接種し、37’CI6時間振ど
う培養した。培養後、遠心分離により菌体を得、10m
MリンRH衝液で懸濁し超音波で菌体を破砕した。さら
に遠心分離により菌体破砕物を除去した。
上澄液にはDPCPaseo、03U/dを含んでいた
。この上澄液をQ−セファロース、ハイトロキシルアパ
タイト、TSK−Qe IG−30008WXLによる
ゲル濾過によりfii製酵素を得た。その酵素活性から
群山された酵素回収率は1゜3%であり、5DS−PA
GEにより単一のバンドを与えるものであった。
。この上澄液をQ−セファロース、ハイトロキシルアパ
タイト、TSK−Qe IG−30008WXLによる
ゲル濾過によりfii製酵素を得た。その酵素活性から
群山された酵素回収率は1゜3%であり、5DS−PA
GEにより単一のバンドを与えるものであった。
*例2
1%ペプトン、0.5%Hffiエキス、0.5%食塩
を含む培地をp)−17,3に調整し、殺菌後、バチル
ス ズブチリスHL521株を接種し、37℃16時間
振どう培養した。培養後、遠心分離により菌体を得、1
0mMリン酸緩衝液で懸濁し超音波で菌体を破砕した。
を含む培地をp)−17,3に調整し、殺菌後、バチル
ス ズブチリスHL521株を接種し、37℃16時間
振どう培養した。培養後、遠心分離により菌体を得、1
0mMリン酸緩衝液で懸濁し超音波で菌体を破砕した。
さらに遠心分離により菌体破砕物を除去した。
上澄液にはDPCPaseo、05U/dを含んでいた
。この上mHをQ−セフ10−ス、ハイトロキシルアパ
タイト、TSK−Qe IG−3000SWXLによる
ゲル濾過により精製酵素を臂た。モの酵素活性からp出
されたil?素回収率は1゜5%であり、5DS−PA
GEにより単一のバンドを向えるものであった。
。この上mHをQ−セフ10−ス、ハイトロキシルアパ
タイト、TSK−Qe IG−3000SWXLによる
ゲル濾過により精製酵素を臂た。モの酵素活性からp出
されたil?素回収率は1゜5%であり、5DS−PA
GEにより単一のバンドを向えるものであった。
■ 光明の効果
本光明の酵素は、哺乳類の酵素に比べ大量に調製づるこ
とが可能であるため、任意のタンパク賀原利より効率よ
くジペプチドを生産づることができる。
とが可能であるため、任意のタンパク賀原利より効率よ
くジペプチドを生産づることができる。
特許出願人 江崎グリコ株式会社
Claims (4)
- (1)バチルス属に属するジペプチジルカルボキシペプ
チダーゼ(以下、DPCPaseと表記する。 )生産菌を培養し、これから採取したことを特徴とする
DPCPase。 - (2)バチルス属に属するDPCPase生産菌を培養
し、これからDPCPaseを採取したことを特徴とす
るDPCPaseの製造法。 - (3)DPCPase生産菌がバチルス プミルス(B
acillus pumilus)又はバチルス ズブ
チリス(Bacillus subtilis)に属す
る菌であることを特徴とする特許請求の範囲の(1)又
は(2)記載のDPCPase又はその製造法。 - (4)DPCPase生産菌がバチルス プミルスHL
721株(微工研菌寄託第10006号)又はバチルス
ズブチリス HL521株(微工研菌寄託第1000
5号)であることを特徴とする特許請求の範囲の(3)
に記載のDPCPase又はその製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13658288A JPH01304880A (ja) | 1988-06-02 | 1988-06-02 | ジペプチジルカルボキシペプチダーゼ及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP13658288A JPH01304880A (ja) | 1988-06-02 | 1988-06-02 | ジペプチジルカルボキシペプチダーゼ及びその製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01304880A true JPH01304880A (ja) | 1989-12-08 |
| JPH0522511B2 JPH0522511B2 (ja) | 1993-03-29 |
Family
ID=15178649
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP13658288A Granted JPH01304880A (ja) | 1988-06-02 | 1988-06-02 | ジペプチジルカルボキシペプチダーゼ及びその製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01304880A (ja) |
-
1988
- 1988-06-02 JP JP13658288A patent/JPH01304880A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0522511B2 (ja) | 1993-03-29 |
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