JPH01320464A - 白血球の鑑別および測定のための方法および剤 - Google Patents
白血球の鑑別および測定のための方法および剤Info
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- JPH01320464A JPH01320464A JP1112368A JP11236889A JPH01320464A JP H01320464 A JPH01320464 A JP H01320464A JP 1112368 A JP1112368 A JP 1112368A JP 11236889 A JP11236889 A JP 11236889A JP H01320464 A JPH01320464 A JP H01320464A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、全血中の白血球の鑑別および定量のための方
法および刑、およびフローサイトメトリー(flow
cytometry)または鏡検にその刑を用いること
に関する。
法および刑、およびフローサイトメトリー(flow
cytometry)または鏡検にその刑を用いること
に関する。
白血球の血球学的計数および鑑別は、病院その他におい
て、一般的に、頻繁に行われる研究室的検査である。鑑
別血球数の確認は、次の有核血球の絶対数と%を測定す
ることより成る:リンパ球、単核球、中好性、塩基好性
および酸好性顆粒(0血)球およびそれらリンパ系およ
び骨髄系の前駆体。
て、一般的に、頻繁に行われる研究室的検査である。鑑
別血球数の確認は、次の有核血球の絶対数と%を測定す
ることより成る:リンパ球、単核球、中好性、塩基好性
および酸好性顆粒(0血)球およびそれらリンパ系およ
び骨髄系の前駆体。
鑑別血球数の確認には2つの異なる方法、すなわち、マ
ニュアル式方法および自動式方法が知られているが、マ
ニュアル式方法の方がよく用いられている。マニュアル
式方法では、血液塗抹標本をスライド上に調製し、乾燥
しそしてロマノウスキー染色(Rollanowski
stains)で染色する6次いで細胞を検査し、分類
し、そして顕微鏡下に計数する。鑑別される細胞数は少
くとも100 @胞個である。
ニュアル式方法および自動式方法が知られているが、マ
ニュアル式方法の方がよく用いられている。マニュアル
式方法では、血液塗抹標本をスライド上に調製し、乾燥
しそしてロマノウスキー染色(Rollanowski
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し、そして顕微鏡下に計数する。鑑別される細胞数は少
くとも100 @胞個である。
マニュアル式方法の欠点は、鑑別血球数の確認に長時間
(10分間に及ぶこともあり得る)を要する点である。
(10分間に及ぶこともあり得る)を要する点である。
この方法のもう一つの大きな欠点は、個々の生物種の分
布の信頼区間が広い点である。このことは、あまり多く
存在しない細胞、例えば単核球や酸好性および塩基好性
顆粒球などの場合に特にいえる、更に、それを用いた場
合、個々の細胞タイプの分布率(%)だけしか分らない
、絶対値を確認するにはすべての白血球を個別に計数す
る必要がある。
布の信頼区間が広い点である。このことは、あまり多く
存在しない細胞、例えば単核球や酸好性および塩基好性
顆粒球などの場合に特にいえる、更に、それを用いた場
合、個々の細胞タイプの分布率(%)だけしか分らない
、絶対値を確認するにはすべての白血球を個別に計数す
る必要がある。
工別血球数の確認により最近用いられている自動式方法
は、フローサイトメトリーの原理に基づいている。ヨー
ロッパ公開明細書第121261号は、広角散乱光の関
数としての細胞容積から、リンパ球、単核球および顆粒
球の間の区別を可能とするこのタイプの白血球鑑別方法
を開示している。更に、これに関しては、2種類のイム
ノフルオレッセンス色素(フルオレラセンイソチオシア
ネートおよびファイコニリスリン)の添加についても記
載されているが、これは前記3つの集団以上にわたる鑑
別に寄与することはない。
は、フローサイトメトリーの原理に基づいている。ヨー
ロッパ公開明細書第121261号は、広角散乱光の関
数としての細胞容積から、リンパ球、単核球および顆粒
球の間の区別を可能とするこのタイプの白血球鑑別方法
を開示している。更に、これに関しては、2種類のイム
ノフルオレッセンス色素(フルオレラセンイソチオシア
ネートおよびファイコニリスリン)の添加についても記
載されているが、これは前記3つの集団以上にわたる鑑
別に寄与することはない。
ヨーロッパ公開明細書161770に同様に白血球鑑別
のためのフローサイトメトリー法が記載されているが、
この方法では、測定に先立ち、検体は赤血球を溶解しそ
して白血球画分を固定できる忍解剤で処理されている。
のためのフローサイトメトリー法が記載されているが、
この方法では、測定に先立ち、検体は赤血球を溶解しそ
して白血球画分を固定できる忍解剤で処理されている。
この場合においても、蛍光g識抗体の添加後に、広角散
乱および一種以上の蛍光測定を用いて顆粒球、単核球お
よびリンパ球への鑑別がなされているが、この方法も、
3種類の細胞タイプしか鑑別し得ないという欠点の他に
、実際のフローサイトメトリーが全部で40分におよぶ
インキュベーション時間および2回の遠心分離を経なけ
ればならないという欠点を有する。
乱および一種以上の蛍光測定を用いて顆粒球、単核球お
よびリンパ球への鑑別がなされているが、この方法も、
3種類の細胞タイプしか鑑別し得ないという欠点の他に
、実際のフローサイトメトリーが全部で40分におよぶ
インキュベーション時間および2回の遠心分離を経なけ
ればならないという欠点を有する。
本発明の目的は、既知の方法の欠点がなく、かつ、遠心
分離を伴うことなく極めて短時間でしかも高い精度で5
種類の白血球集団の信頼性ある鑑別を行うことができる
全血中白血球の鑑別および定量測定のための方法および
刑を提供することにある。
分離を伴うことなく極めて短時間でしかも高い精度で5
種類の白血球集団の信頼性ある鑑別を行うことができる
全血中白血球の鑑別および定量測定のための方法および
刑を提供することにある。
本発明は、フローサイトメトリーを用いて、細胞容積、
散乱光および蛍光を測定することにより全血中白血球の
鑑別および定量測定を行う方法を提供するものであって
、この方法は、赤血球を溶解し白血球を固定する活性組
成物で全血を処理し、そしてチアゾール類およびアミノ
キサンテン類より成る群から選ばれた少くとも2種類の
蛍光色素の混合物と混合し、染色された細胞をある波長
で励起し、少くとも2種類の異なる波長範囲における蛍
光発光の相対強度を同時測定し、そして前方および広角
の散乱光を測定することを特徴とする。
散乱光および蛍光を測定することにより全血中白血球の
鑑別および定量測定を行う方法を提供するものであって
、この方法は、赤血球を溶解し白血球を固定する活性組
成物で全血を処理し、そしてチアゾール類およびアミノ
キサンテン類より成る群から選ばれた少くとも2種類の
蛍光色素の混合物と混合し、染色された細胞をある波長
で励起し、少くとも2種類の異なる波長範囲における蛍
光発光の相対強度を同時測定し、そして前方および広角
の散乱光を測定することを特徴とする。
更に本発明は、この方法を行うための刑として、溶解作
用および固定作用を有する活性組成物と発色試薬とを含
有する刑を提供するものである。この活性組成物は本質
的にサポニンと低級アルデヒドを含有し、また前記の呈
色試薬はチアゾール類およびアミノキサンテン類の群の
各々より選ばれた少くとも1種類の色素を含有する。上
記の白血球の鑑別および定量測定のたメツ刑は、フロー
サイトメーター(flow cyto−ieter )
を用いる自動式方法、および蛍光顕微鏡を用いるマニュ
アル式方法のいずれにも使用することができる。
用および固定作用を有する活性組成物と発色試薬とを含
有する刑を提供するものである。この活性組成物は本質
的にサポニンと低級アルデヒドを含有し、また前記の呈
色試薬はチアゾール類およびアミノキサンテン類の群の
各々より選ばれた少くとも1種類の色素を含有する。上
記の白血球の鑑別および定量測定のたメツ刑は、フロー
サイトメーター(flow cyto−ieter )
を用いる自動式方法、および蛍光顕微鏡を用いるマニュ
アル式方法のいずれにも使用することができる。
本発明方法を用いれば、白血球を、リンパ球、単核球、
中野性、酸好性および塩基好性顆粒球、および骨髄系お
よびリンパ球系の前駆体の群に鑑別することができる。
中野性、酸好性および塩基好性顆粒球、および骨髄系お
よびリンパ球系の前駆体の群に鑑別することができる。
全細胞量中の各個別集団の割合を測定できるほかに、そ
れによって血液1μmあたりの細胞の絶対数を測定する
ことができる。
れによって血液1μmあたりの細胞の絶対数を測定する
ことができる。
本発明の方法は、フローサイトメトリーによる測定に基
づいて行われる。白血球を固定し染色すると同時に赤血
球を溶解後、前方および広角散乱光、2種類の蛍光パラ
メータおよび細胞容積といったパラメータを測定する。
づいて行われる。白血球を固定し染色すると同時に赤血
球を溶解後、前方および広角散乱光、2種類の蛍光パラ
メータおよび細胞容積といったパラメータを測定する。
驚くべきことに、細胞を唯一の波長範囲でしかも極めて
狭い波長範囲で照射でき、また前方および広角散乱光を
介してすべての白血球を予め選択した後、後者を二次元
ヒストグラム(蛍光1対蛍光2)で鑑別することにより
容易に前述の諸群に分けることを可能にする色素組合せ
を見出すことができな。
狭い波長範囲で照射でき、また前方および広角散乱光を
介してすべての白血球を予め選択した後、後者を二次元
ヒストグラム(蛍光1対蛍光2)で鑑別することにより
容易に前述の諸群に分けることを可能にする色素組合せ
を見出すことができな。
その色素組合せはチアゾール類およびアミノキサンテン
類の群の少くとも2N類の蛍光色素より成る。適当なチ
アゾール色素の例はチオフラビンTCN (C,1,
49005)、チオフラビンS、プリムリン(C,1,
49000)、好ましくはチオフラビンTCNである。
類の群の少くとも2N類の蛍光色素より成る。適当なチ
アゾール色素の例はチオフラビンTCN (C,1,
49005)、チオフラビンS、プリムリン(C,1,
49000)、好ましくはチオフラビンTCNである。
適当なアミノキサンテン色素の例はサフラニリン、ベー
シックレッド8(C,1゜45150)、ベーシックレ
ッド1(C,1,45160)、アシッドバイオレット
9 (C,1,45190)、ベーシックレッド3 (
C,1,45210)、アシッドレッド52(C,1,
45100)、ビロニンB (C,1,45010)、
ビロニンG (C,1,45005)、好ましくはサフ
ラニリンである。
シックレッド8(C,1゜45150)、ベーシックレ
ッド1(C,1,45160)、アシッドバイオレット
9 (C,1,45190)、ベーシックレッド3 (
C,1,45210)、アシッドレッド52(C,1,
45100)、ビロニンB (C,1,45010)、
ビロニンG (C,1,45005)、好ましくはサフ
ラニリンである。
それら2群からの色素は1:2〜2:1、好ましくはl
:1、の割合で用いられ、また色素混合物の濃度は0.
6〜60μg/’j、好ましくは20〜40μg/j
(溶液)、の範囲とすべきである1色素溶液は好まし
くは更に50〜100iHの緩衝剤を、そして適切な場
合には20〜100118の塩化ナトリウムを含有する
。そのl)Hは適当な酸またはアルカリを用いて、中性
〜弱酸性pH1好ましくは7.5のDH5に調整される
。
:1、の割合で用いられ、また色素混合物の濃度は0.
6〜60μg/’j、好ましくは20〜40μg/j
(溶液)、の範囲とすべきである1色素溶液は好まし
くは更に50〜100iHの緩衝剤を、そして適切な場
合には20〜100118の塩化ナトリウムを含有する
。そのl)Hは適当な酸またはアルカリを用いて、中性
〜弱酸性pH1好ましくは7.5のDH5に調整される
。
赤血球を溶解し白血球を固定する働きをする前記の活性
組成物は低級アルデヒド、好ましくはホルムアルデヒド
、サポニン、好ましくはジギトニン、とpHを5〜8.
5の範囲に保つための等張M1衝剤の基礎として適切な
M?II′!IJ質、好ましくはトリス緩衝剤とを含有
する。類似の前処理試薬は、例えばヨーロッパ公開明細
書第161770号に開示されている。
組成物は低級アルデヒド、好ましくはホルムアルデヒド
、サポニン、好ましくはジギトニン、とpHを5〜8.
5の範囲に保つための等張M1衝剤の基礎として適切な
M?II′!IJ質、好ましくはトリス緩衝剤とを含有
する。類似の前処理試薬は、例えばヨーロッパ公開明細
書第161770号に開示されている。
本発明方法は、血液細胞の一定の性質を色素により染色
しそして細胞の大きさに相関させて測定することに基づ
いている。フローサイトメトリーによる測定の場合には
、それら細胞を前処理後染色し、検体アプリケータを介
して被包ストリーム([IVCilODin(l St
realm)中に通し、後者により中心に据え(cen
tered ) 、レンズの下に通し、それら細胞をレ
ンズを順次通過させながら例えばレーザー光で照射し励
起して蛍光を出させる。このようにして多数の細胞を短
時間で測定することができる。レーザービーム照射によ
り染色細胞から発光する蛍光は2つのスペクトル部分に
分割された後、光電子倍増管により検出され適宜の電流
に変換される。同様に広角散乱光も記録される。前方散
乱光は光ダイオードを用いて定量される。このようにし
て得られた信号は、ディジタル変換されコンピュータに
ディジタル記憶される。それらは、1−および2−パラ
メータヒストグラムとしてアレンジされる。これら4つ
のパラメータを様々に組み合わせることによって血球集
団の十分に離間したクラスタを得ることができる。
しそして細胞の大きさに相関させて測定することに基づ
いている。フローサイトメトリーによる測定の場合には
、それら細胞を前処理後染色し、検体アプリケータを介
して被包ストリーム([IVCilODin(l St
realm)中に通し、後者により中心に据え(cen
tered ) 、レンズの下に通し、それら細胞をレ
ンズを順次通過させながら例えばレーザー光で照射し励
起して蛍光を出させる。このようにして多数の細胞を短
時間で測定することができる。レーザービーム照射によ
り染色細胞から発光する蛍光は2つのスペクトル部分に
分割された後、光電子倍増管により検出され適宜の電流
に変換される。同様に広角散乱光も記録される。前方散
乱光は光ダイオードを用いて定量される。このようにし
て得られた信号は、ディジタル変換されコンピュータに
ディジタル記憶される。それらは、1−および2−パラ
メータヒストグラムとしてアレンジされる。これら4つ
のパラメータを様々に組み合わせることによって血球集
団の十分に離間したクラスタを得ることができる。
1次元ヒストグラムでは極めてわずがな細胞分離しか起
きないが、2つのパラメータを組み合わせることにより
相関2−パラメータヒストグラムが得られ、クラスタの
明瞭な分割が認められる。しかしながら異なる集団の明
確な分離がこれによって可能とはなるが、多大な困雛を
伴う0重複頭域での2集団への分別は達成し得ても多大
な数学的処理を必要とし、また大きな不確定要因を伴う
、更に、これら1次元ヒストグラムに基づく分割は最大
3集団(リンパ球、単核球および顆粒球)に対して確実
に行われるにすぎない。
きないが、2つのパラメータを組み合わせることにより
相関2−パラメータヒストグラムが得られ、クラスタの
明瞭な分割が認められる。しかしながら異なる集団の明
確な分離がこれによって可能とはなるが、多大な困雛を
伴う0重複頭域での2集団への分別は達成し得ても多大
な数学的処理を必要とし、また大きな不確定要因を伴う
、更に、これら1次元ヒストグラムに基づく分割は最大
3集団(リンパ球、単核球および顆粒球)に対して確実
に行われるにすぎない。
第1図のヒストグラムが示すように、本発明方法によれ
ば、同時および相関測定により、そして1個の同じ細胞
からの2つの蛍光発光(緑色および赤色蛍光)を同時に
記録することにより、大きな数学的処理を伴うことなく
5集団への分離を達成することができる。そこには6個
の点クラスタが極めて明白であり、また異なる白血球集
団を表わしている。第1図は前処理され蛍光染色された
全血の緑色蛍光(y)を赤色蛍光(x)に対しプロット
した2次元ヒストグラムを示す、第2図は第1図に示さ
れたヒストグラムにおける各種白血球クラスタの位置を
示す、LlおよびL2により同定される集団はリンパ球
を表わす、集団Bは塩基好性顆粒球を表わす、集団Mは
単核球を表わす、中野性顆粒球は集団Nそして酸好球は
集団Eに認められる。
ば、同時および相関測定により、そして1個の同じ細胞
からの2つの蛍光発光(緑色および赤色蛍光)を同時に
記録することにより、大きな数学的処理を伴うことなく
5集団への分離を達成することができる。そこには6個
の点クラスタが極めて明白であり、また異なる白血球集
団を表わしている。第1図は前処理され蛍光染色された
全血の緑色蛍光(y)を赤色蛍光(x)に対しプロット
した2次元ヒストグラムを示す、第2図は第1図に示さ
れたヒストグラムにおける各種白血球クラスタの位置を
示す、LlおよびL2により同定される集団はリンパ球
を表わす、集団Bは塩基好性顆粒球を表わす、集団Mは
単核球を表わす、中野性顆粒球は集団Nそして酸好球は
集団Eに認められる。
これら6集団への分割は、大きな数学的処理を必要とす
ることなく、単に検査操作を行うだけで明瞭にされる。
ることなく、単に検査操作を行うだけで明瞭にされる。
それら集団の確認はクラスタ分析により自動化すること
ができる。更にこれは血液固体差により生じる限界を変
えるということをももたらす、より小さな血球:例えば
赤血球や血小板は、前方散乱光のゲーティング(gat
ing)によって除去される、すなわち、緑色および赤
色の蛍光は、前方散乱光がある大きさを超える細胞から
のみ記録される。白血球鑑別のほか、このようにすれば
検体の単位容量あたりのこれら細胞の厳密な数も得られ
る。
ができる。更にこれは血液固体差により生じる限界を変
えるということをももたらす、より小さな血球:例えば
赤血球や血小板は、前方散乱光のゲーティング(gat
ing)によって除去される、すなわち、緑色および赤
色の蛍光は、前方散乱光がある大きさを超える細胞から
のみ記録される。白血球鑑別のほか、このようにすれば
検体の単位容量あたりのこれら細胞の厳密な数も得られ
る。
鑑別血球数確認のためのこの自動化されたバージョンの
ほか、本発明によればこの染色および前処理法は、鑑別
血球数定量用の鏡検用標本の調製にも適している。
ほか、本発明によればこの染色および前処理法は、鑑別
血球数定量用の鏡検用標本の調製にも適している。
本発明による刑を用いて、前処理および染色を行った後
の様々な白血球の特徴的性質は以下の如く述べることが
できる: 中野性顆粒球:成熟中好性細胞は主にスペクトルにより
同定できる。核は強い緑色蛍光を有し、またその顕著な
分離(segnentat 1on)が極めて明白であ
る。細胞質は淡橙色蛍光を有する。
の様々な白血球の特徴的性質は以下の如く述べることが
できる: 中野性顆粒球:成熟中好性細胞は主にスペクトルにより
同定できる。核は強い緑色蛍光を有し、またその顕著な
分離(segnentat 1on)が極めて明白であ
る。細胞質は淡橙色蛍光を有する。
その緑色および赤色の蛍光の両者の強度は、他のすべて
の細胞のそれよりも大きい、このタイプの細胞のもう一
つの特徴は、細胞質が顕著に顆粒化し、黄色蛍光を有す
る極めて多くの微粒子を有している点である。
の細胞のそれよりも大きい、このタイプの細胞のもう一
つの特徴は、細胞質が顕著に顆粒化し、黄色蛍光を有す
る極めて多くの微粒子を有している点である。
酸好性顆粒球:これらを特徴付ける球状核の有する緑色
蛍光はそのふち部が細胞質との強い緑色境界となってい
る。HJ胞質は強い橙色を発しまた完全に均質である。
蛍光はそのふち部が細胞質との強い緑色境界となってい
る。HJ胞質は強い橙色を発しまた完全に均質である。
細胞質には強い黄色蛍光をもった顆粒が認められる。
塩基好性顆粒球:これらは、三葉の形または不規則に分
離した、そして明るい緑色蛍光を有する核をもつ、細胞
質の基本色は橙色である。
離した、そして明るい緑色蛍光を有する核をもつ、細胞
質の基本色は橙色である。
強い濃橙色光を発し、そして細胞質とは明らかに異なる
顆粒は、特に細胞のふち、およびセグメント間の間隙に
存在する。
顆粒は、特に細胞のふち、およびセグメント間の間隙に
存在する。
単核球:それらは、淡緑色蛍光を有する凹所のある“分
葉核を持つ、核のふちの蛍光は極めて強い、+dB胞質
の蛍光は顆粒球のそれよりも弱くまたリンパ球のそれよ
りは黄色〜橙色が強い。
葉核を持つ、核のふちの蛍光は極めて強い、+dB胞質
の蛍光は顆粒球のそれよりも弱くまたリンパ球のそれよ
りは黄色〜橙色が強い。
リンパ球:それらは、弱緑色蛍光を有する丸いまたは腎
臓形の核を持つ、核内に時として核小体が存在する。細
胞質は通常黄橙色蛍光を有する狭い境界としてしかみえ
ない。
臓形の核を持つ、核内に時として核小体が存在する。細
胞質は通常黄橙色蛍光を有する狭い境界としてしかみえ
ない。
本発明方法は一般的には、次のようにして行われる。ま
ず、溶解および固定の作用を有する活性組成物(前処理
ン容液)および発色試薬溶液を調製する。フローサイト
メトリーによる方法の実施にあたっては、例えば50μ
」の血液を試験管に入れ、そして50μmの前処理試薬
をピペットで入れる。血液と前処理試薬の容量比は2:
1〜1:2とすべきである。その溶液を緩やかに攪拌し
ながら5〜120秒間インキュベートし、500μmの
緩衝剤を混合物に添加し、そして振盪する4次に振盪し
ながら100μ」の発色試薬溶液を添加する。その溶液
を更に5〜120秒間インキュベートした後それを測定
する。この為に、それをフローサイトメーターに送るが
、そのフローサイトメーターの被包ストリームはpH範
囲7〜8の緩衝剤より成る。照射は515nl以下の波
長で行い、そして蛍光発光は500〜550および57
0〜630nnの範囲で測定する。
ず、溶解および固定の作用を有する活性組成物(前処理
ン容液)および発色試薬溶液を調製する。フローサイト
メトリーによる方法の実施にあたっては、例えば50μ
」の血液を試験管に入れ、そして50μmの前処理試薬
をピペットで入れる。血液と前処理試薬の容量比は2:
1〜1:2とすべきである。その溶液を緩やかに攪拌し
ながら5〜120秒間インキュベートし、500μmの
緩衝剤を混合物に添加し、そして振盪する4次に振盪し
ながら100μ」の発色試薬溶液を添加する。その溶液
を更に5〜120秒間インキュベートした後それを測定
する。この為に、それをフローサイトメーターに送るが
、そのフローサイトメーターの被包ストリームはpH範
囲7〜8の緩衝剤より成る。照射は515nl以下の波
長で行い、そして蛍光発光は500〜550および57
0〜630nnの範囲で測定する。
蛍光顕微鏡による方法を行うには、血液1滴を前処理試
薬1滴とスライド上で混合する。約10秒間のインキュ
ベーション後、発色試薬溶液を直接添加する。標本にカ
バーグラスをかぶせた後、励起波長<500 nIIお
よび発行波長〉500nlにて蛍光顕微鏡で検査するこ
とができる。
薬1滴とスライド上で混合する。約10秒間のインキュ
ベーション後、発色試薬溶液を直接添加する。標本にカ
バーグラスをかぶせた後、励起波長<500 nIIお
よび発行波長〉500nlにて蛍光顕微鏡で検査するこ
とができる。
被検血液検体としては新鮮な静脈血、濃縮白血球(密度
勾配沈降)または毛細血管血等の様々な給源に由来する
ものがあげられる。その血液には、凝血防止剤として、
ヘパリン、EDTAまたはクエン酸塩を添加することが
できるが、凝血防止剤としてEDTAを含む血液を用い
るのが好ましい。
勾配沈降)または毛細血管血等の様々な給源に由来する
ものがあげられる。その血液には、凝血防止剤として、
ヘパリン、EDTAまたはクエン酸塩を添加することが
できるが、凝血防止剤としてEDTAを含む血液を用い
るのが好ましい。
本発明方法は、上述した長所すなわち、迅速さ、高精度
、5つの白血球集団の鑑別等のほかに、フローサイトメ
ーターで得られるデータが反応温度および前処理または
染色時間の変化に対し低い感度を示すという長所をも有
する。
、5つの白血球集団の鑑別等のほかに、フローサイトメ
ーターで得られるデータが反応温度および前処理または
染色時間の変化に対し低い感度を示すという長所をも有
する。
また、あまり新鮮でない血液、すなわち、24〜36時
間令までの血液を用いることができる。
間令までの血液を用いることができる。
さらに一つの長所は、蛍光顕微鏡下の細胞の蛍光パター
ンを従来の染色法[例えば透過光下のライト染色(Wr
ight 5tain) ]と直接比較できる点、すな
わち従来用いられているマニュアル式の方法との比較が
容易であるという点である。
ンを従来の染色法[例えば透過光下のライト染色(Wr
ight 5tain) ]と直接比較できる点、すな
わち従来用いられているマニュアル式の方法との比較が
容易であるという点である。
実施例1
静脈EDT^血1部全1部組成を有する前処理溶液1部
と混合する。
と混合する。
1、ホルマリン(37%) 200 me2、ジギ
トニン 20 g 3、トリス1ilI衡剤 50 nmo14、
二重蒸留水ad、 1オ()ICj″i:p
H=7.5とする)検体を混合して20秒間インキュベ
ートする。
トニン 20 g 3、トリス1ilI衡剤 50 nmo14、
二重蒸留水ad、 1オ()ICj″i:p
H=7.5とする)検体を混合して20秒間インキュベ
ートする。
次に500μmの50nHトリス緩衝剤(pH7,5)
を添加する。その混合物を攪拌後染色溶液AおよびBを
各々50μm添加する: 溶 液A: 1、サフラニリン 50■ 2、トリスt!II衝剤 50 nno13、塩
化ナトリウム 1001110+4、二重蒸留水a
d、 I Jl(pH=7.5 、HCJIを
用いる)溶 液B: 1、チオフラビンTCN 100■2、トリス緩衝
剤 50 mno13、塩化ナトリウム
100111014、二重蒸留水ad、 I
J(11H=7.5 、HCjを用いる)その混合物を
再び撹拌し、そして検体をフローサイトメーターに通し
た。細胞を488 r+nの波長で照射し、そしてそれ
によって誘出された蛍光を500〜550の範囲および
570〜630n!lの範囲で測定する。更に、細胞が
流通する際に生じる前方散乱光および広角散乱光(90
°)の強度も記録する。fl!!の3つの信号は前方散
乱光のおよび/または90°散乱光の信号によりトリガ
ーされる、すなわち、前方散乱光の信号がある程度の強
度を超える場合にのみ、90’散乱光および蛍光■およ
び蛍光■の値も記録する。
を添加する。その混合物を攪拌後染色溶液AおよびBを
各々50μm添加する: 溶 液A: 1、サフラニリン 50■ 2、トリスt!II衝剤 50 nno13、塩
化ナトリウム 1001110+4、二重蒸留水a
d、 I Jl(pH=7.5 、HCJIを
用いる)溶 液B: 1、チオフラビンTCN 100■2、トリス緩衝
剤 50 mno13、塩化ナトリウム
100111014、二重蒸留水ad、 I
J(11H=7.5 、HCjを用いる)その混合物を
再び撹拌し、そして検体をフローサイトメーターに通し
た。細胞を488 r+nの波長で照射し、そしてそれ
によって誘出された蛍光を500〜550の範囲および
570〜630n!lの範囲で測定する。更に、細胞が
流通する際に生じる前方散乱光および広角散乱光(90
°)の強度も記録する。fl!!の3つの信号は前方散
乱光のおよび/または90°散乱光の信号によりトリガ
ーされる、すなわち、前方散乱光の信号がある程度の強
度を超える場合にのみ、90’散乱光および蛍光■およ
び蛍光■の値も記録する。
蛍光Iおよび■の相開から得られる二次元ヒストグラム
を記録する。蛍光■信号の強度をX方向にプロットし、
そして蛍光■信号の強度をy方向にプロットし、一方、
蛍光工および蛍光■信号の特定の強度組合せを有する細
胞数を2方向に示す、第3図は得られる2次元ヒストグ
ラムおよび関連の1次元ヒストグラムを示す。
を記録する。蛍光■信号の強度をX方向にプロットし、
そして蛍光■信号の強度をy方向にプロットし、一方、
蛍光工および蛍光■信号の特定の強度組合せを有する細
胞数を2方向に示す、第3図は得られる2次元ヒストグ
ラムおよび関連の1次元ヒストグラムを示す。
この図から明らかなように、ヒストグラムには2つの顕
著な領域が存在する:第1の領域は高い蛍光工および蛍
光■強度を示す細胞であり、そして第2の領域は低い蛍
光Iおよび蛍光■強度を有する細胞である。生物学的関
連細胞集団の2次元ヒストグラムの個々のクラスタへの
割当ては第3図から明らかである。
著な領域が存在する:第1の領域は高い蛍光工および蛍
光■強度を示す細胞であり、そして第2の領域は低い蛍
光Iおよび蛍光■強度を有する細胞である。生物学的関
連細胞集団の2次元ヒストグラムの個々のクラスタへの
割当ては第3図から明らかである。
実施例2
静脈EDTA血1滴全1滴鏡スライドに置きそして前処
理試薬1滴と混合する。
理試薬1滴と混合する。
前処理試薬は次の組成を有する:
■、サポニン 0.75g2、ホルムア
ルデヒド(37%) 5−3、燐酸水素二ナトリウム
0,3g4、燐酸二水素ナトリウム 0.45g5
.二重蒸留水ad、 100w+110秒経
過後、この混合物を以下の組成を有する染色試薬1滴と
混合する: 1、チオフラビンTCN 250■2、サフラニ
リン 250 Nz3、トリスM衝剤
501no14、二重蒸留水ad、 1
jその溶液を7.5の1)11に調節する。
ルデヒド(37%) 5−3、燐酸水素二ナトリウム
0,3g4、燐酸二水素ナトリウム 0.45g5
.二重蒸留水ad、 100w+110秒経
過後、この混合物を以下の組成を有する染色試薬1滴と
混合する: 1、チオフラビンTCN 250■2、サフラニ
リン 250 Nz3、トリスM衝剤
501no14、二重蒸留水ad、 1
jその溶液を7.5の1)11に調節する。
この実施例において、染色された懸濁細胞は、青色光で
照射し、そして蛍光票微鏡で500 ni以上の発光を
観察したところ、各種白血球の特徴的性質として記述し
たものと同じ光学的性質を示す。
照射し、そして蛍光票微鏡で500 ni以上の発光を
観察したところ、各種白血球の特徴的性質として記述し
たものと同じ光学的性質を示す。
チオフラビンTCNおよびサフラニリンに代えてプリム
リンおよびベーシックレッド8を用いても同様の結果が
得られる。
リンおよびベーシックレッド8を用いても同様の結果が
得られる。
実施例3
フローサイトメーターで得られたデータと、顕微鏡を用
いての対応実験で得られたデータとの相関 被験者250名からのEDTA血液を各々実施例1およ
び2と同様にして、顕微鏡下にマニュアル的に鑑別し、
またフローサイトメーターで測定し、そして前述の集団
限界に基づいて、リンパ球、単核球、中野性、酸好性お
よび塩基好性顆粒の量を測定する。そのデータをBab
lok −PPa5−1n法により相関させた。関連統
計値は比較方法間に明らかな相関を示す。
いての対応実験で得られたデータとの相関 被験者250名からのEDTA血液を各々実施例1およ
び2と同様にして、顕微鏡下にマニュアル的に鑑別し、
またフローサイトメーターで測定し、そして前述の集団
限界に基づいて、リンパ球、単核球、中野性、酸好性お
よび塩基好性顆粒の量を測定する。そのデータをBab
lok −PPa5−1n法により相関させた。関連統
計値は比較方法間に明らかな相関を示す。
実施例4
フロー血球計算器による単離されたリンパ球集団の測定
純度〉95%のリンパ球を簸別(elutriatio
n)によりEDTA全血から単離する。リンパ球集団の
純度はPANリンパ球抗体による抗体染色により実証す
る。単離後、50μmの細胞懸濁液(約5^10’細胞
個/−)を次の組成を有する50gjの前処理試薬と混
合する: 1、ジギトニン 5g 2、ホルマリン(37%)75αに 3、トリスtIt衝剤 100 imo14、
二重蒸留水ad、 1 j(pH= 8.0
) 10秒間インキュベーション後、その懸濁液を500μ
」のトリス緩衡剤(pH7,5)と混合する。
n)によりEDTA全血から単離する。リンパ球集団の
純度はPANリンパ球抗体による抗体染色により実証す
る。単離後、50μmの細胞懸濁液(約5^10’細胞
個/−)を次の組成を有する50gjの前処理試薬と混
合する: 1、ジギトニン 5g 2、ホルマリン(37%)75αに 3、トリスtIt衝剤 100 imo14、
二重蒸留水ad、 1 j(pH= 8.0
) 10秒間インキュベーション後、その懸濁液を500μ
」のトリス緩衡剤(pH7,5)と混合する。
更に10秒間インキュベーション後、次の組成を有する
発色試薬溶液を添加する。
発色試薬溶液を添加する。
1、サフラニリン 50011Ir2、チオフ
ラビンTCN 500■3、トリスkli街刑
100 vio14、塩化ナトリウム
20 mmo15、二重蒸留水ad、 i
J(l]l+=7.5 、塩酸使用) それら2つの溶液を混合後、染色されたリンパ球集団を
フローサイトメーターに通す、実施例1と同様にして、
前方散乱光、90’散乱光、蛍光Iおよび蛍光■を測定
する。蛍光工を蛍光■に対してプロットした2次元ヒス
トグラムには単一の細胞集団のみ認められる。ヒストグ
ラムにおける相対位置はリンパ球として既に前述された
集団と同じである。
ラビンTCN 500■3、トリスkli街刑
100 vio14、塩化ナトリウム
20 mmo15、二重蒸留水ad、 i
J(l]l+=7.5 、塩酸使用) それら2つの溶液を混合後、染色されたリンパ球集団を
フローサイトメーターに通す、実施例1と同様にして、
前方散乱光、90’散乱光、蛍光Iおよび蛍光■を測定
する。蛍光工を蛍光■に対してプロットした2次元ヒス
トグラムには単一の細胞集団のみ認められる。ヒストグ
ラムにおける相対位置はリンパ球として既に前述された
集団と同じである。
実施例5
酸好性顆粒球の分類
50μmの細胞を実施例2と同様に測定を行うため前処
理し、染色しそしてフローサイトメーターに通す、前方
散乱光によるトリガリングの後細胞の蛍光■および蛍光
■を測定する。酸好性顆粒球に属するクラスタ領域をマ
ークする。
理し、染色しそしてフローサイトメーターに通す、前方
散乱光によるトリガリングの後細胞の蛍光■および蛍光
■を測定する。酸好性顆粒球に属するクラスタ領域をマ
ークする。
次いで、このようにしてマークされた領域に入る細胞を
残りの細胞からとり出すことができる。
残りの細胞からとり出すことができる。
このようにして得られた細胞をスライドにのせ、展延し
、そして空気乾燥する0次にそれら細胞を処理してフロ
ーサイトメーター染色からの色素残分を除去する。それ
らをまず蒸留水で1分間処理し次いで酢酸ナトリウムM
衝剤、DH5、で5分間蒸留する9次いでGiensa
yX液の1:10希釈液を用いてarensa染色を行
う。
、そして空気乾燥する0次にそれら細胞を処理してフロ
ーサイトメーター染色からの色素残分を除去する。それ
らをまず蒸留水で1分間処理し次いで酢酸ナトリウムM
衝剤、DH5、で5分間蒸留する9次いでGiensa
yX液の1:10希釈液を用いてarensa染色を行
う。
約8〜10分間の染色時間が最適であることがわかる。
アルコール中に各々15秒間25.70.80および9
0から100%まで順次増加させながら浸漬することに
より染色標本から水分を除去する。
0から100%まで順次増加させながら浸漬することに
より染色標本から水分を除去する。
それらスライドを次にキシレン中に30分間移した後カ
バーをかぶせる。
バーをかぶせる。
分類により得られた染色スライドを蛍光顕微鏡下に検査
した後細胞を写真撮影する。他のいかなる細胞タイプも
混入していない均質な酸好性細胞集団が得られる。
した後細胞を写真撮影する。他のいかなる細胞タイプも
混入していない均質な酸好性細胞集団が得られる。
第1図は、本発明方法の一実施例により前処理された蛍
光染色されな全血例の緑色蛍光(y)を赤色蛍光(x)
に対しプロットした2次元ヒストグラムを示す。 第2図は、第1図に示されたヒストグラムにおける各種
白血球のクラスタの位置を示す。 第3図は、本発明により得られる2次元ヒストグラムお
よび関連の1次元ヒストグラムの例を示す。 第 1 図 第 2 図 ム 箒3図
光染色されな全血例の緑色蛍光(y)を赤色蛍光(x)
に対しプロットした2次元ヒストグラムを示す。 第2図は、第1図に示されたヒストグラムにおける各種
白血球のクラスタの位置を示す。 第3図は、本発明により得られる2次元ヒストグラムお
よび関連の1次元ヒストグラムの例を示す。 第 1 図 第 2 図 ム 箒3図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)フローサイトメトリーを用いて細胞容積、散乱光お
よび蛍光を測定することにより全血中白血球の鑑別およ
び定量測定を行う方法であつて、赤血球を溶解し、白血
球を固定する活性組成物を用いて全血を処理し、そして
チアゾール類およびアミノキサンテン類より成る群から
選ばれた少くとも2種類の蛍光色素の混合物と混合し、
染色細胞をある波長で励起し、少くとも2種類の異なる
波長範囲における蛍光発光の相対強度を同時測定し、そ
して前方および広角の散乱光を測定することを特徴とす
る前記方法。 2)前記の溶解作用および固定作用を有する活性組成物
と発色試薬とを含有する請求項1記載の方法を行うため
の剤。 3)前記の溶解作用および固定作用を有する活性組成物
が、サポニンと低級アルデヒドを含有し、そして前記の
発色試薬が、チアゾール類およびアミノキサンテン類の
群の各々より選ばれた少くとも1つの色素を含有する請
求項2記載の剤。 4)フローサイトメトリーまたは鏡検により、全血中の
白血球の鑑別および定量測定を行うための請求項2およ
び3記載の剤。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE3814811A DE3814811A1 (de) | 1988-05-02 | 1988-05-02 | Verfahren und mittel zur differenzierung und bestimmung von leukozyten |
| DE3814811.0 | 1988-05-02 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01320464A true JPH01320464A (ja) | 1989-12-26 |
Family
ID=6353365
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1112368A Pending JPH01320464A (ja) | 1988-05-02 | 1989-05-02 | 白血球の鑑別および測定のための方法および剤 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0343380A1 (ja) |
| JP (1) | JPH01320464A (ja) |
| DE (1) | DE3814811A1 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2008256713A (ja) * | 2001-02-23 | 2008-10-23 | Abx Sa | 生物学的細胞の同定および計数のための方法 |
| CN106796169A (zh) * | 2014-10-01 | 2017-05-31 | 水光科技私人有限公司 | 探测流体中颗粒的传感器 |
Families Citing this family (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5204884A (en) * | 1991-03-18 | 1993-04-20 | University Of Rochester | System for high-speed measurement and sorting of particles |
| JP2941041B2 (ja) * | 1990-11-16 | 1999-08-25 | シスメックス株式会社 | フローサイトメトリーによる白血球の分類方法 |
| US5199576A (en) * | 1991-04-05 | 1993-04-06 | University Of Rochester | System for flexibly sorting particles |
| JP3067849B2 (ja) * | 1991-07-29 | 2000-07-24 | シスメックス株式会社 | 白血球分類計数用試料調製方法 |
| JP3048260B2 (ja) * | 1991-07-29 | 2000-06-05 | シスメックス株式会社 | 白血球分類計数用試料調製方法 |
| US5334450A (en) * | 1992-05-20 | 1994-08-02 | The Dow Chemical Company | Weatherable styrenic film structures with intermediate tie layer and laminates thereof |
| DE19700648A1 (de) * | 1997-01-10 | 1998-07-23 | Basf Ag | Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung der Größenverteilung von verschiedenartigen Partikeln in einer Probe |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE2836644A1 (de) * | 1978-08-22 | 1980-03-06 | Boehringer Mannheim Gmbh | Diagnostisches mittel zum nachweis von leukozyten in koerperfluessigkeiten und dafuer geeignete chromogene |
| DE3587636T2 (de) * | 1984-05-31 | 1994-03-10 | Coulter Corp | Reagenssystem und verfahren zum nachweis, aufzählen und prüfen der klassen und unterklassen von blutleukozyten. |
| JPH06100596B2 (ja) * | 1986-09-10 | 1994-12-12 | 東亜医用電子株式会社 | フロ−サイトメトリ−による白血球の分類方法 |
-
1988
- 1988-05-02 DE DE3814811A patent/DE3814811A1/de not_active Withdrawn
-
1989
- 1989-04-21 EP EP89107184A patent/EP0343380A1/de not_active Withdrawn
- 1989-05-02 JP JP1112368A patent/JPH01320464A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2008256713A (ja) * | 2001-02-23 | 2008-10-23 | Abx Sa | 生物学的細胞の同定および計数のための方法 |
| CN106796169A (zh) * | 2014-10-01 | 2017-05-31 | 水光科技私人有限公司 | 探测流体中颗粒的传感器 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0343380A1 (de) | 1989-11-29 |
| DE3814811A1 (de) | 1989-11-16 |
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