JPH0136480B2 - - Google Patents
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- JPH0136480B2 JPH0136480B2 JP56044745A JP4474581A JPH0136480B2 JP H0136480 B2 JPH0136480 B2 JP H0136480B2 JP 56044745 A JP56044745 A JP 56044745A JP 4474581 A JP4474581 A JP 4474581A JP H0136480 B2 JPH0136480 B2 JP H0136480B2
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Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/55—Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
本発明はヒト脾臓フイブリン分解酵素(以下
SFPと略す。)と特異的に反応する新規な合成基
質に関するものである。 本発明者らはSFP、白血球中のエラスターゼ様
酵素を特異的に且つ感度よく測定できる新規合成
基質サクシニル−L−チロシル−L−ロイシル−
L−バリン−P−ニトロアニリドについて先に特
許出願(特願昭55−131709号)を行なつている
が、本発明者らはさらに研究を重さねた結果SFP
に対しすぐれた特異性を有する新規合成基質を見
い出し、本発明を完成した。 SFPは特異的にフイブリンおよびフイブリノー
ゲンを分解する中性プロテイナーゼであり、分子
量約30000の塩基性蛋白質である。SFPは無菌動
物には存在しない。細菌性内毒素投与により惹起
した血管内凝固症候群においては血液凝固機能亢
進の発現と共に増加し、その消退と共に回復す
る。この酵素は網内系(以下RESと略す。)細胞
における微細血栓除去機構と密接な関連を有する
ものと考えられる。 本酵素は元来不溶性細胞顆粒内酵素であるが、
活性増加時には溶性酵素として血中にも出現す
る。従つて本基質を使用しての血中酵素測定によ
りプラスミン作用とは分離してSFPが測定でき、
RESの活性亢進を推察することができる。本発
明に係る新規なポリペプチド誘導体は次の一般式
で示される。 (式中Aは第三ブチルオキシカルボニル基又はサ
クシニル基を示す。) 本基質によるSFPの測定原理を化学式で示せば
下記の通りである。 (式中Aは前記と同様である。) 即ち本基質をPH7の緩衝液中被検血清と混合
し、SFPの濃度に比例して生成するP−ニトロア
ニリンの吸光度を測定する。なお、P−ニトロア
ニリンの代りに他の発色性物質あるいは螢光性物
質を使用し、可視部の吸光度の変化、螢光スペク
トルの変化により直接測定したり、あるいは芳香
族アミノ化合物の定量で通常行なわれるジアゾ発
色反応、インドフエノール発色反応等を応用し、
発色度を高めて測定することも可能である。以上
の如く測定系は臨床検査の分野で行なわれている
公知方法を応用して種々の組合せにより実施する
ことができるが、本発明の範囲がそれにより限定
されるものではない。なお、該ポリペプチド誘導
体は次の如くして得ることができる。 例えば保護されたアミノ基をもつL−アラニン
(以下L−Alaと略す。)とL−チロシル−L−ロ
イシル−L−バリン−P−ニトロアニリド(以下
L−Tyr−L−Leu−L−Val−PNAと略す。)
をN,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミド法、
N,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミドと添
加剤による方法、アチド法あるいは混合酸無水物
法等常法により縮合させ、N−保護ポリペプチド
誘導体即ち保護基−L−Ala−L−Tyr−L−
Leu−L−Val−PNAを得ることができる。な
お、該縮合物のアミノ保護基を常法により脱離さ
せ、遊離ポリペプチド誘導体H−L−Ala−L−
Tyr−L−Leu−L−Val−PNAを得る。さらに
この遊離したアミノ基をトリエチルアミン存在
下、酢酸エチルまたはピリジン中無水コハク酸に
てサクシニル化しサクシニル−L−Ala−L−
Tyr−L−Leu−L−Val−PNAとすればよい。 なお、本発明で使用するL−Alaは市販品が利
用できる。一方、保護されたアミノ基を持つL−
Tyr−L−Leu−L−Val−PNAは本発明者らが
先に出願した特許願昭55−131709号に記載の方法
で合成することができる。即ち、N−第三ブチル
オキシカルボニル−L−ロイシル−L−バリン−
P−ニトロアニリド0.43g(1ミリモル)を7.6
規定塩化水素ジオキサン溶液0.4mlに溶かし10分
間撹拌した後ジオキサン2.6mlを加えさらに室温
にて30分間撹拌した。 エーテル50mlを加え生じた沈澱を濾取し、苛性
カリ上で乾燥。得られたL−ロイシル−L−バリ
ン−P−ニトロアニリドの塩化水素塩をN,
N′−ジメチルホルムアミド5mlに溶解し、トリ
エチルアミンでPH8に調節し、そこへN−第三ブ
チルオキシカルボニル−L−チロシン0.34g
(1.2ミリモル)、1−ヒドロキシベンゾトリアゾ
ール0.135g(1ミリモル)を加え溶解し、氷−
食塩にて冷却し、N,N′−ジシクロヘキシルカ
ルボジイミド0.25g(1.2ミリモル)を加え室温
にて18時間攪拌した。生じた沈澱を濾去し、溶媒
を減圧下留去した。残留物を酢酸エチルに溶解
し、氷冷下10%クエン酸、5%炭酸ナトリウム続
いて水で洗浄した。酢酸エチル層を無水硫酸ナト
リウム上で乾燥し、酢酸エチルを留去。残留物に
エーテルを加えると融点210〜211.5℃の無色結晶
の目的物が得られる。尚、第三ブチルオキシカル
ボニル−L−ロイシル−L−バリン−P−ニトロ
アニリドはSato、K.、Nagai、U.、and Kawai、
M.、“Peptide Chemistry 1979”、H.Yonehara
編、Protein Research Foundation、Osaka、
1980年、149頁に記載の方法で、またN−第三ブ
チルオキシカルボニル−L−チロシンは
Andeerson、G.W.、and McGregor、A.C.、J.
Am.Chem.、Soc.、79巻、6180頁、1957年に記載
の方法で得た。 本発明を実施するに必要な保護基はベンジルオ
キシカルボニル基、第三ブチルオキシカルボニル
基などペプチド合成に際し慣用されているアミノ
基の保護基をあげることができる。 また、保護基を脱離するにはペプチド合成の際
にアミノ基の保護基を脱離するのに慣用されてい
る手段に従つて容易に行なうことができる。 この様にして得た本発明の新規合成基質はSFP
の酵素作用によつてP−ニトロアニリンが生成せ
られるので、このものを比色定量することにより
SFP活性を求めることができる。本基質は以下に
記載の如くSFPを測定するためのすぐれた新規合
成基質である。下記にその一例を示す。
SFPと略す。)と特異的に反応する新規な合成基
質に関するものである。 本発明者らはSFP、白血球中のエラスターゼ様
酵素を特異的に且つ感度よく測定できる新規合成
基質サクシニル−L−チロシル−L−ロイシル−
L−バリン−P−ニトロアニリドについて先に特
許出願(特願昭55−131709号)を行なつている
が、本発明者らはさらに研究を重さねた結果SFP
に対しすぐれた特異性を有する新規合成基質を見
い出し、本発明を完成した。 SFPは特異的にフイブリンおよびフイブリノー
ゲンを分解する中性プロテイナーゼであり、分子
量約30000の塩基性蛋白質である。SFPは無菌動
物には存在しない。細菌性内毒素投与により惹起
した血管内凝固症候群においては血液凝固機能亢
進の発現と共に増加し、その消退と共に回復す
る。この酵素は網内系(以下RESと略す。)細胞
における微細血栓除去機構と密接な関連を有する
ものと考えられる。 本酵素は元来不溶性細胞顆粒内酵素であるが、
活性増加時には溶性酵素として血中にも出現す
る。従つて本基質を使用しての血中酵素測定によ
りプラスミン作用とは分離してSFPが測定でき、
RESの活性亢進を推察することができる。本発
明に係る新規なポリペプチド誘導体は次の一般式
で示される。 (式中Aは第三ブチルオキシカルボニル基又はサ
クシニル基を示す。) 本基質によるSFPの測定原理を化学式で示せば
下記の通りである。 (式中Aは前記と同様である。) 即ち本基質をPH7の緩衝液中被検血清と混合
し、SFPの濃度に比例して生成するP−ニトロア
ニリンの吸光度を測定する。なお、P−ニトロア
ニリンの代りに他の発色性物質あるいは螢光性物
質を使用し、可視部の吸光度の変化、螢光スペク
トルの変化により直接測定したり、あるいは芳香
族アミノ化合物の定量で通常行なわれるジアゾ発
色反応、インドフエノール発色反応等を応用し、
発色度を高めて測定することも可能である。以上
の如く測定系は臨床検査の分野で行なわれている
公知方法を応用して種々の組合せにより実施する
ことができるが、本発明の範囲がそれにより限定
されるものではない。なお、該ポリペプチド誘導
体は次の如くして得ることができる。 例えば保護されたアミノ基をもつL−アラニン
(以下L−Alaと略す。)とL−チロシル−L−ロ
イシル−L−バリン−P−ニトロアニリド(以下
L−Tyr−L−Leu−L−Val−PNAと略す。)
をN,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミド法、
N,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミドと添
加剤による方法、アチド法あるいは混合酸無水物
法等常法により縮合させ、N−保護ポリペプチド
誘導体即ち保護基−L−Ala−L−Tyr−L−
Leu−L−Val−PNAを得ることができる。な
お、該縮合物のアミノ保護基を常法により脱離さ
せ、遊離ポリペプチド誘導体H−L−Ala−L−
Tyr−L−Leu−L−Val−PNAを得る。さらに
この遊離したアミノ基をトリエチルアミン存在
下、酢酸エチルまたはピリジン中無水コハク酸に
てサクシニル化しサクシニル−L−Ala−L−
Tyr−L−Leu−L−Val−PNAとすればよい。 なお、本発明で使用するL−Alaは市販品が利
用できる。一方、保護されたアミノ基を持つL−
Tyr−L−Leu−L−Val−PNAは本発明者らが
先に出願した特許願昭55−131709号に記載の方法
で合成することができる。即ち、N−第三ブチル
オキシカルボニル−L−ロイシル−L−バリン−
P−ニトロアニリド0.43g(1ミリモル)を7.6
規定塩化水素ジオキサン溶液0.4mlに溶かし10分
間撹拌した後ジオキサン2.6mlを加えさらに室温
にて30分間撹拌した。 エーテル50mlを加え生じた沈澱を濾取し、苛性
カリ上で乾燥。得られたL−ロイシル−L−バリ
ン−P−ニトロアニリドの塩化水素塩をN,
N′−ジメチルホルムアミド5mlに溶解し、トリ
エチルアミンでPH8に調節し、そこへN−第三ブ
チルオキシカルボニル−L−チロシン0.34g
(1.2ミリモル)、1−ヒドロキシベンゾトリアゾ
ール0.135g(1ミリモル)を加え溶解し、氷−
食塩にて冷却し、N,N′−ジシクロヘキシルカ
ルボジイミド0.25g(1.2ミリモル)を加え室温
にて18時間攪拌した。生じた沈澱を濾去し、溶媒
を減圧下留去した。残留物を酢酸エチルに溶解
し、氷冷下10%クエン酸、5%炭酸ナトリウム続
いて水で洗浄した。酢酸エチル層を無水硫酸ナト
リウム上で乾燥し、酢酸エチルを留去。残留物に
エーテルを加えると融点210〜211.5℃の無色結晶
の目的物が得られる。尚、第三ブチルオキシカル
ボニル−L−ロイシル−L−バリン−P−ニトロ
アニリドはSato、K.、Nagai、U.、and Kawai、
M.、“Peptide Chemistry 1979”、H.Yonehara
編、Protein Research Foundation、Osaka、
1980年、149頁に記載の方法で、またN−第三ブ
チルオキシカルボニル−L−チロシンは
Andeerson、G.W.、and McGregor、A.C.、J.
Am.Chem.、Soc.、79巻、6180頁、1957年に記載
の方法で得た。 本発明を実施するに必要な保護基はベンジルオ
キシカルボニル基、第三ブチルオキシカルボニル
基などペプチド合成に際し慣用されているアミノ
基の保護基をあげることができる。 また、保護基を脱離するにはペプチド合成の際
にアミノ基の保護基を脱離するのに慣用されてい
る手段に従つて容易に行なうことができる。 この様にして得た本発明の新規合成基質はSFP
の酵素作用によつてP−ニトロアニリンが生成せ
られるので、このものを比色定量することにより
SFP活性を求めることができる。本基質は以下に
記載の如くSFPを測定するためのすぐれた新規合
成基質である。下記にその一例を示す。
【表】
次に実施例により本発明をさらに詳細に説明す
る 実施例 1 N−第三ブチルオキシカルボニル−L−アラニ
ル−L−チロシル−L−ロイシル−L−バリン
−P−ニトロアニリド N−第三ブチルオキシカルボニル−L−チロシ
ル−L−ロイシル−L−バリン−P−ニトロアニ
リド1.2g(0.002モル)に7.5規定塩化水素ジオキ
サン溶液1.8mlを加え、40分間撹拌した後エーテ
ル50mlを加え、生じた白色沈殿を遠心分離して集
めた。デシケーター中水酸化カリウム上で乾燥
し、得られたL−チロシル−L−ロイシル−L−
バリン−P−ニトロアニリドの塩化水素塩をN,
N−ジメチルホルムアミド(DMF)30mlに溶解
し、トリエチルアミンでPH8に調節した後N−第
三ブチルオキシカルボニル−L−アラニン0.38g
(0.002モル)、1−ヒドロキシベンゾトリアゾー
ル0.27g(0.002モル)を加え溶解し、氷−食塩
にて冷却し、N,N′−ジシクロヘキシルカルボ
ジイミド0.45g(0.0022モル)を加え室温にて18
時間撹拌した。生じた沈殿を去し、溶媒を減圧
下留去した。残留物を酢酸エチルに溶解し、氷冷
下10%クエン酸、5%炭酸ナトリウム続いて水で
洗浄した。酢酸エチル層を無水硫酸ナトリウム上
で乾燥し、酢酸エチルを留去。残渣オイルにエー
テルを加え、粗生成物を得た。シリカゲルクロマ
トグラフイーで精製し、クロロホルムーエーテル
より結晶化し、融点153〜155℃旋光度〔α〕25 D−
65.9゜(メタノール、C=1.38)の目的化合物を得
た。収量540mg(収率39.4%)、このものはシリカ
ゲル薄層クロマトグラフイー(クロロホルム:メ
タノール:酢酸=90:8:2;クロロホルム:メ
タノール:水=8:3:1の下層)にて単一のス
ポツトを示した。 元素分析値(C34H48N7C9として) 計算値;C 59.64 H 7.06 N 12.27 実測値;C 59.44 H 7.01 N 12.23 実施例 2 サクシニル−L−アラニル−L−チロシル−L
−ロイシル−L−バリン−P−ニトロアニリド N−第三ブチルオキシカルボニル−L−アラニ
ル−L−チロシル−L−ロイシル−L−バリン−
P−ニトロアニリド340mg(0.50ミリモル)に7.5
規定塩化水素ジオキサン溶液1.2mlを加え、室温
で撹拌した。20分後エーテル50mlを加え生じ沈殿
を吸引過で集め、デシケーター中水酸化カリウ
ム上で乾燥した。この化合物を水10mlに溶解し炭
酸ナトリウムを加えPH8〜9とした。生じたオイ
ルを酢酸エチルにて抽出するとL−アラニル−L
−チロシル−L−ロイシル−L−バリン−P−ニ
トロアニリドが結晶として析出する。これを吸引
過で集めピリジン10mlに溶解し、トリエチルア
ミン0.07ml(0.50ミリモル)を加え氷冷し撹拌し
た。無水コハク酸150mg(1.5ミリモル)を5回に
分けて15分間隔で加え、さらに3時間撹拌した。
反応液を留去し、残留物を10%酢酸−酢酸エチル
(10ml+10ml)に溶解し、酢酸エチル層を分離後
水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥後酢酸エ
チルを留去した。残渣にエーテルを加え生じた白
色沈殿を吸引過で集めた。この粗サクシニル−
L−アラニル−L−チロシル−L−ロイシル−L
−バリン−P−ニトロアニリド240mg(0.35ミリ
モル)をメタノール15mlに溶解し、1規定水酸化
ナトリウム0.70ml(0.70ミリモル)を加え室温に
て40分間撹拌した。酢酸で中和の後メタノールを
留去し、残渣を酢酸エチル−10%酢酸(10ml−10
ml)に溶解した。有機層を水で洗浄し、無水硫酸
ナトリウムで乾燥した後、酢酸エチルを留去し
た。残渣にエーテルを加え、生じた白色結晶を吸
引過で集め目的化合物を得た。収量180mg(収
率56.2%)、融点230〜234℃、旋光度〔α〕25 D−
28.0゜(メタノール、C=1.0)、薄層クロマトグラ
フイー上(クロロホルム:メタノール:酢酸=
90:8:2;クロロホルム:メタノール:水=
8:3:1の下層)で単一スポツトを示した。 元素分析値(C33H44N6O10) 計算値;C 57.88 H 6.47 N 12.27 実測値;C 57.71 H 6.77 N 11.97
る 実施例 1 N−第三ブチルオキシカルボニル−L−アラニ
ル−L−チロシル−L−ロイシル−L−バリン
−P−ニトロアニリド N−第三ブチルオキシカルボニル−L−チロシ
ル−L−ロイシル−L−バリン−P−ニトロアニ
リド1.2g(0.002モル)に7.5規定塩化水素ジオキ
サン溶液1.8mlを加え、40分間撹拌した後エーテ
ル50mlを加え、生じた白色沈殿を遠心分離して集
めた。デシケーター中水酸化カリウム上で乾燥
し、得られたL−チロシル−L−ロイシル−L−
バリン−P−ニトロアニリドの塩化水素塩をN,
N−ジメチルホルムアミド(DMF)30mlに溶解
し、トリエチルアミンでPH8に調節した後N−第
三ブチルオキシカルボニル−L−アラニン0.38g
(0.002モル)、1−ヒドロキシベンゾトリアゾー
ル0.27g(0.002モル)を加え溶解し、氷−食塩
にて冷却し、N,N′−ジシクロヘキシルカルボ
ジイミド0.45g(0.0022モル)を加え室温にて18
時間撹拌した。生じた沈殿を去し、溶媒を減圧
下留去した。残留物を酢酸エチルに溶解し、氷冷
下10%クエン酸、5%炭酸ナトリウム続いて水で
洗浄した。酢酸エチル層を無水硫酸ナトリウム上
で乾燥し、酢酸エチルを留去。残渣オイルにエー
テルを加え、粗生成物を得た。シリカゲルクロマ
トグラフイーで精製し、クロロホルムーエーテル
より結晶化し、融点153〜155℃旋光度〔α〕25 D−
65.9゜(メタノール、C=1.38)の目的化合物を得
た。収量540mg(収率39.4%)、このものはシリカ
ゲル薄層クロマトグラフイー(クロロホルム:メ
タノール:酢酸=90:8:2;クロロホルム:メ
タノール:水=8:3:1の下層)にて単一のス
ポツトを示した。 元素分析値(C34H48N7C9として) 計算値;C 59.64 H 7.06 N 12.27 実測値;C 59.44 H 7.01 N 12.23 実施例 2 サクシニル−L−アラニル−L−チロシル−L
−ロイシル−L−バリン−P−ニトロアニリド N−第三ブチルオキシカルボニル−L−アラニ
ル−L−チロシル−L−ロイシル−L−バリン−
P−ニトロアニリド340mg(0.50ミリモル)に7.5
規定塩化水素ジオキサン溶液1.2mlを加え、室温
で撹拌した。20分後エーテル50mlを加え生じ沈殿
を吸引過で集め、デシケーター中水酸化カリウ
ム上で乾燥した。この化合物を水10mlに溶解し炭
酸ナトリウムを加えPH8〜9とした。生じたオイ
ルを酢酸エチルにて抽出するとL−アラニル−L
−チロシル−L−ロイシル−L−バリン−P−ニ
トロアニリドが結晶として析出する。これを吸引
過で集めピリジン10mlに溶解し、トリエチルア
ミン0.07ml(0.50ミリモル)を加え氷冷し撹拌し
た。無水コハク酸150mg(1.5ミリモル)を5回に
分けて15分間隔で加え、さらに3時間撹拌した。
反応液を留去し、残留物を10%酢酸−酢酸エチル
(10ml+10ml)に溶解し、酢酸エチル層を分離後
水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥後酢酸エ
チルを留去した。残渣にエーテルを加え生じた白
色沈殿を吸引過で集めた。この粗サクシニル−
L−アラニル−L−チロシル−L−ロイシル−L
−バリン−P−ニトロアニリド240mg(0.35ミリ
モル)をメタノール15mlに溶解し、1規定水酸化
ナトリウム0.70ml(0.70ミリモル)を加え室温に
て40分間撹拌した。酢酸で中和の後メタノールを
留去し、残渣を酢酸エチル−10%酢酸(10ml−10
ml)に溶解した。有機層を水で洗浄し、無水硫酸
ナトリウムで乾燥した後、酢酸エチルを留去し
た。残渣にエーテルを加え、生じた白色結晶を吸
引過で集め目的化合物を得た。収量180mg(収
率56.2%)、融点230〜234℃、旋光度〔α〕25 D−
28.0゜(メタノール、C=1.0)、薄層クロマトグラ
フイー上(クロロホルム:メタノール:酢酸=
90:8:2;クロロホルム:メタノール:水=
8:3:1の下層)で単一スポツトを示した。 元素分析値(C33H44N6O10) 計算値;C 57.88 H 6.47 N 12.27 実測値;C 57.71 H 6.77 N 11.97
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 一般式 (式中Aは第三ブチルオキシカルボニル基または
サクシニル基を示す。) で示されるポリペプチド誘導体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56044745A JPS57159750A (en) | 1981-03-28 | 1981-03-28 | Polypeptide derivative |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56044745A JPS57159750A (en) | 1981-03-28 | 1981-03-28 | Polypeptide derivative |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63303949A Division JPH0234959B2 (ja) | 1988-12-02 | 1988-12-02 | Horipepuchidojudotai |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS57159750A JPS57159750A (en) | 1982-10-01 |
| JPH0136480B2 true JPH0136480B2 (ja) | 1989-07-31 |
Family
ID=12699977
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP56044745A Granted JPS57159750A (en) | 1981-03-28 | 1981-03-28 | Polypeptide derivative |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS57159750A (ja) |
-
1981
- 1981-03-28 JP JP56044745A patent/JPS57159750A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS57159750A (en) | 1982-10-01 |
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