JPH02257894A - 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 - Google Patents
微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法Info
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- JPH02257894A JPH02257894A JP8086889A JP8086889A JPH02257894A JP H02257894 A JPH02257894 A JP H02257894A JP 8086889 A JP8086889 A JP 8086889A JP 8086889 A JP8086889 A JP 8086889A JP H02257894 A JPH02257894 A JP H02257894A
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- JP
- Japan
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- propanol
- dichloro
- dch
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- genus pseudomonas
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はラセミ体2,3−ジクロロ−1−プロパノール
の微生物処理による光学活性R−(+)−2,3−ジク
ロロ−1−プロパノールの分取法に関する。
の微生物処理による光学活性R−(+)−2,3−ジク
ロロ−1−プロパノールの分取法に関する。
(従来技術と発明が解決しようとする課題)光学活性2
,3−ジクロロ−1−プロパノール(以下、β−DCH
と略称する。)は光学活性エピクロルヒドリンと共に各
種の医薬、農薬等の中間原料として重要なものである。
,3−ジクロロ−1−プロパノール(以下、β−DCH
と略称する。)は光学活性エピクロルヒドリンと共に各
種の医薬、農薬等の中間原料として重要なものである。
しかしながら、従来、光学活性β−DCHを得るには合
成法によってつくられたラセミ体β−DCHから光学活
性体を分離する方法、例えば、β−oct−tの水酸基
を無水酢酸でアセチル化して1−アセトキシ−2,3−
ジクロロプロパンとした後リパーゼを作用させる方法等
の、他の誘導体を経由して行う複雑で純度の低い製法し
か知られていなかった。
成法によってつくられたラセミ体β−DCHから光学活
性体を分離する方法、例えば、β−oct−tの水酸基
を無水酢酸でアセチル化して1−アセトキシ−2,3−
ジクロロプロパンとした後リパーゼを作用させる方法等
の、他の誘導体を経由して行う複雑で純度の低い製法し
か知られていなかった。
本発明者らは既にラセミ体β−DCHとR−(+)−β
−DCH資化性菌とを接触させて高純度な光学活性5−
(−)−β−DCHを得る方法(特開昭61−1321
96>を開発したが、これらとは逆の光学異性体、すな
わらR−(+)−β−DCHの簡便な製造方法は知られ
ていない。
−DCH資化性菌とを接触させて高純度な光学活性5−
(−)−β−DCHを得る方法(特開昭61−1321
96>を開発したが、これらとは逆の光学異性体、すな
わらR−(+)−β−DCHの簡便な製造方法は知られ
ていない。
(課題を解決するための手段)
本発明者らは微生物処理により上記光学活性β−DCH
を簡便に、また高純度に製造し得ることを見出し本発明
を完成させた。
を簡便に、また高純度に製造し得ることを見出し本発明
を完成させた。
すなわち本発明はS−(−) −2,3−ジクロロ−1
−プロパノール資化能を有するシュードモナス属に属す
る細菌、又はその培養菌体を、培地中でラセミ体2,3
−ジクロロ−1−プロパノールと作用せしめてR−(+
)〜2.3−ジクロロー1−プロパノールを分取するこ
とを特徴とする微生物処理による光学活性ジクロロプロ
パノールの製法である。
−プロパノール資化能を有するシュードモナス属に属す
る細菌、又はその培養菌体を、培地中でラセミ体2,3
−ジクロロ−1−プロパノールと作用せしめてR−(+
)〜2.3−ジクロロー1−プロパノールを分取するこ
とを特徴とする微生物処理による光学活性ジクロロプロ
パノールの製法である。
本発明者らが土壌中より分離採取して本発明において用
いた微生物の菌学的性質は表1に示すとおりである。
いた微生物の菌学的性質は表1に示すとおりである。
表
■細胞の多形性 無■運動性の有無
有、極鞭毛■胞子の有無
無■ダラム染色性
陰性■抗酸性 無す、各培地
における生育状態 ■肉汁寒天平板培養(30℃、3日間培養)イ)コロニ
ー形状の遅速 普通 直径的3〜4110)コ
ロニーの形状 円形ハ)コロニー表面の形
状 平滑二 コロニーの隆起状態 凸
円状ホ コロニーの周縁 金縁へ コロニ
ーの内容 均質ト コロニーの色調
乳白色チ コロニーの透明度 半透
明リ コロニーの光沢 鈍光ヌ 可溶性色
素の生成 無 ■肉汁寒天斜面培養(30℃、3日間培養)イ 生育の
良否 生育良好、糸状ロ コロニーの
形 平滑ハ コロニーの断面の隆起状I
ll 扁平状二 コロニーの光沢 鈍
光ホ コロニー表面の形状 平滑へ コロニー
の透明度 半透明ト コロニーの色
乳白色■肉汁液体培養(30℃、3日間培養)イ
)生育性状 躾状口)濁度
わずかに濁るハ)ガス発生
なしホ)培地の着色 なし ■肉汁ゼラチン穿刺培養 ゼラチンを液化せ
ず■リドマス・ミルク 無変化C1生理
学的試験 1 硝酸塩の遠夫 2 MRテスト 3 VPテスト 4 インドール生産 5 硫化水素の生成 6 デンプンの加水分解 7 1!121!反応 −8クエ
ン酸の利用 十 9 無機窒素源の利用 十10 色票の
生成 特に生成しない11 ウレ
アーゼ −12 オキシダーゼ
+13 カタラーゼ
+14 生育の範囲 pH
s、o〜9.O1温度20〜45℃15 MNに対す
るS度 好気性16 0−Fテスト(Hu
gh Lelrson法による) 017
糖類からの酸及びガスの生成の有無糖 類
酸 ガ ス(1)D−グルコース
−(2)D−ガラクトース (3)ショ糖 (4)トレハロース (5)デンプン −(6)グリ
セリン +18 アルギニンジ
ヒドロラーゼ +9 PH8の蓄積 以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
システマティツク・バタテリオロジイ(Bergey’
s Manual of Systematic Ba
cteriology)第1巻の記載に基づき帰属同定
を行うと本国はシュードモナス属の特徴を有する(微工
研菌奇第10520号: FERM P−10520
゜以下O3−に−38株という)。
有、極鞭毛■胞子の有無
無■ダラム染色性
陰性■抗酸性 無す、各培地
における生育状態 ■肉汁寒天平板培養(30℃、3日間培養)イ)コロニ
ー形状の遅速 普通 直径的3〜4110)コ
ロニーの形状 円形ハ)コロニー表面の形
状 平滑二 コロニーの隆起状態 凸
円状ホ コロニーの周縁 金縁へ コロニ
ーの内容 均質ト コロニーの色調
乳白色チ コロニーの透明度 半透
明リ コロニーの光沢 鈍光ヌ 可溶性色
素の生成 無 ■肉汁寒天斜面培養(30℃、3日間培養)イ 生育の
良否 生育良好、糸状ロ コロニーの
形 平滑ハ コロニーの断面の隆起状I
ll 扁平状二 コロニーの光沢 鈍
光ホ コロニー表面の形状 平滑へ コロニー
の透明度 半透明ト コロニーの色
乳白色■肉汁液体培養(30℃、3日間培養)イ
)生育性状 躾状口)濁度
わずかに濁るハ)ガス発生
なしホ)培地の着色 なし ■肉汁ゼラチン穿刺培養 ゼラチンを液化せ
ず■リドマス・ミルク 無変化C1生理
学的試験 1 硝酸塩の遠夫 2 MRテスト 3 VPテスト 4 インドール生産 5 硫化水素の生成 6 デンプンの加水分解 7 1!121!反応 −8クエ
ン酸の利用 十 9 無機窒素源の利用 十10 色票の
生成 特に生成しない11 ウレ
アーゼ −12 オキシダーゼ
+13 カタラーゼ
+14 生育の範囲 pH
s、o〜9.O1温度20〜45℃15 MNに対す
るS度 好気性16 0−Fテスト(Hu
gh Lelrson法による) 017
糖類からの酸及びガスの生成の有無糖 類
酸 ガ ス(1)D−グルコース
−(2)D−ガラクトース (3)ショ糖 (4)トレハロース (5)デンプン −(6)グリ
セリン +18 アルギニンジ
ヒドロラーゼ +9 PH8の蓄積 以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
システマティツク・バタテリオロジイ(Bergey’
s Manual of Systematic Ba
cteriology)第1巻の記載に基づき帰属同定
を行うと本国はシュードモナス属の特徴を有する(微工
研菌奇第10520号: FERM P−10520
゜以下O3−に−38株という)。
本発明はこの細菌によって上記ラセミ体β−DCHの光
学活性化を行うものである。本発明においてはO3−に
−38株をそのまま用いてもよいし、固定化させても実
施できるが上記細菌の培養方法ならびに固定化方法は通
常よく用いられる方法でよい。すなわち培養方法は、上
記細菌をブイヨン培地、あるいは加糖ブイヨン培地等、
炭素源、窒素源、有機栄養源、無機栄養源を含む栄養培
地中で培養せしめ、よく生育させておき、これから得ら
れる培養物あるいは培養菌体を用いればよい。炭素源と
してはグリセリン等の炭水化物、あるいはクエン酸、マ
レイン酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒素源
としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸ア
ンモニウム。
学活性化を行うものである。本発明においてはO3−に
−38株をそのまま用いてもよいし、固定化させても実
施できるが上記細菌の培養方法ならびに固定化方法は通
常よく用いられる方法でよい。すなわち培養方法は、上
記細菌をブイヨン培地、あるいは加糖ブイヨン培地等、
炭素源、窒素源、有機栄養源、無機栄養源を含む栄養培
地中で培養せしめ、よく生育させておき、これから得ら
れる培養物あるいは培養菌体を用いればよい。炭素源と
してはグリセリン等の炭水化物、あるいはクエン酸、マ
レイン酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒素源
としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸ア
ンモニウム。
リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及びペプトン、カ
ゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用いる
ことができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、マ
グネシウム塩、カリ塩、鉄塩。
ゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用いる
ことができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、マ
グネシウム塩、カリ塩、鉄塩。
亜鉛塩、銅塩等が用いられる。その培養条件は通常、温
度的20〜45℃、好ましくは25〜31℃、OH約5
〜9、好ましくはpH6,0〜7.5で振盪あるいは通
気撹拌等の手段で好気的に行われる。
度的20〜45℃、好ましくは25〜31℃、OH約5
〜9、好ましくはpH6,0〜7.5で振盪あるいは通
気撹拌等の手段で好気的に行われる。
また、固定化方法は例えばアクリルアミド、に−カラギ
ーナン、寒天、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム等を用
いて生国体を包括する方法でよく、固定化後、適当な大
きさ、形状に破砕して用いればよい。
ーナン、寒天、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム等を用
いて生国体を包括する方法でよく、固定化後、適当な大
きさ、形状に破砕して用いればよい。
本菌株とラセミ体β−DCt(との反応はラセミ体β−
DCHを含有する合成培地中で上記培養物又はその固定
化物を撹拌しよく接触させればよく、その接触時間は通
常半日〜10日でありβ−DCHの濃度は培地巾約0.
1〜0.6容但%程度であればよい。
DCHを含有する合成培地中で上記培養物又はその固定
化物を撹拌しよく接触させればよく、その接触時間は通
常半日〜10日でありβ−DCHの濃度は培地巾約0.
1〜0.6容但%程度であればよい。
反応終了後、反応液をとり出して濾過し固定化物と上清
液とを分離し、上清液中に残存するR−(+)−β−D
CI−1を活性炭カラム処理、エーテル抽出、減圧蒸留
等の操作によって分取する。
液とを分離し、上清液中に残存するR−(+)−β−D
CI−1を活性炭カラム処理、エーテル抽出、減圧蒸留
等の操作によって分取する。
また本発明方法において固定化させた菌体を使用すれば
遠心分離等の操作が容易になり、ざらに固定化物はくり
返し使用できる。
遠心分離等の操作が容易になり、ざらに固定化物はくり
返し使用できる。
以下実施例により具体的に説明する。例中%は特に記さ
ない限り重量基準である。
ない限り重量基準である。
実施例1
酵母エキス1.0%、グリセリン2.0%、ポリペプト
ン1.0%、 pal 7.0の培地201)を3op
容シャーファーメンタ−に入れ、常法どおり加熱滅菌後
、O3−に−38株を接種し、次の条件下で24時間培
養した。
ン1.0%、 pal 7.0の培地201)を3op
容シャーファーメンタ−に入れ、常法どおり加熱滅菌後
、O3−に−38株を接種し、次の条件下で24時間培
養した。
温度 30℃
DH初発1))f7.0
通気量 204! /sin
撹拌回転数 30Or、p、m。
培養終了後、微生物菌体と培養濾液とを遠心分離機を用
いて分離し生菌体soogを得た。続いて、生菌体は、
以下に示す合成培地にけんだくさせ10g容とした後、
常法どおりアクリルアミドで固定化した。固定化物は、
ミキサーで0.5〜1m1ll角の大きさに破砕し合成
培地でよく洗浄した。
いて分離し生菌体soogを得た。続いて、生菌体は、
以下に示す合成培地にけんだくさせ10g容とした後、
常法どおりアクリルアミドで固定化した。固定化物は、
ミキサーで0.5〜1m1ll角の大きさに破砕し合成
培地でよく洗浄した。
合成培地の成分
硫酸アンモニウム 0.05重量%硝酸アンモニ
ウム 0.05 #リン酸水素第2カリウム
0.1〃 リン酸第1ナトリウム 0.2〃 リン酸第2ナトリウム 0.1〃 硫酸マグネシウム o、os n硫酸鉄、硫酸
銅、硫酸マンガン 微量pH初発pH6,8 次に、このようにしてwA製した固定化物は1001容
ジャーファーメンタ−の中に入れ合成培地とともに80
j!とする。そしてさらに、ラセミ体β−DCHを32
0me、炭酸カルシウム160(lを加え、以下の条件
下で攪拌した。
ウム 0.05 #リン酸水素第2カリウム
0.1〃 リン酸第1ナトリウム 0.2〃 リン酸第2ナトリウム 0.1〃 硫酸マグネシウム o、os n硫酸鉄、硫酸
銅、硫酸マンガン 微量pH初発pH6,8 次に、このようにしてwA製した固定化物は1001容
ジャーファーメンタ−の中に入れ合成培地とともに80
j!とする。そしてさらに、ラセミ体β−DCHを32
0me、炭酸カルシウム160(lを加え、以下の条件
下で攪拌した。
温度 30℃
通気量 4ON /min
回転数 300 r、p、m。
反応開始後12時間後に上清液と固定化物とを濾別し、
この液から残存するβ−DCI−1を活性炭カラム、エ
ーテル抽出、減圧蒸留によって分取し152gを採取し
た。本物質の同定は次の方法で行った。
この液から残存するβ−DCI−1を活性炭カラム、エ
ーテル抽出、減圧蒸留によって分取し152gを採取し
た。本物質の同定は次の方法で行った。
1)ガスクロマトグラフィーによる同定カラム担体PE
G−20MP、5%、60〜80メツシユを用いて市販
β−DCHと比較した結果、その保持時間は全く同じで
あった。純度98.2%以上。
G−20MP、5%、60〜80メツシユを用いて市販
β−DCHと比較した結果、その保持時間は全く同じで
あった。純度98.2%以上。
2>IR(赤外吸収スペクトル)による同定第1図に示
したチャートのように、その吸収パターンは市販β−D
CHと全く同一であった。
したチャートのように、その吸収パターンは市販β−D
CHと全く同一であった。
以上から本物質は明らかにβ−DCHである事が判明し
た。又本物質がR−(+)−β−DCHである事の確認
は以下の方法によった。
た。又本物質がR−(+)−β−DCHである事の確認
は以下の方法によった。
1)旋光度の測定
市販β−D CH及び本物質の比旋光度は次の如くであ
る。
る。
市販β−D CH
〔α〕萱=0.0° C=1. ジクロロメタン本物
質 〔α〕萱= +10.4°C=1. ジクロロメタン
2)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調製ならびに高速液体
クロマトグラフィーによる分析R−(+)−α−メトキ
シ−α−トリフルオロメチルフェニルアセテートクロラ
イドを市販β−DCHならびに本物質に反応せしめ、そ
のエステル誘導体を調製した後、液体クロマトグラフィ
ーでの分析結果は次のようであった。
質 〔α〕萱= +10.4°C=1. ジクロロメタン
2)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調製ならびに高速液体
クロマトグラフィーによる分析R−(+)−α−メトキ
シ−α−トリフルオロメチルフェニルアセテートクロラ
イドを市販β−DCHならびに本物質に反応せしめ、そ
のエステル誘導体を調製した後、液体クロマトグラフィ
ーでの分析結果は次のようであった。
分析条件
カラム担体 ZORBAXODS
4.6mmx25cm (Du Pont社製)溶出液
メタノール:水=65 : 35 (V/V )
溶出量 1m/III!n 検出法 260nmにおける吸光度分析結果 市販β−DCH保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピーク を与えたシ 本 物 質 保持時間52.0分にのみピークを
与え50.5分にはピークを与 えなかった。
メタノール:水=65 : 35 (V/V )
溶出量 1m/III!n 検出法 260nmにおける吸光度分析結果 市販β−DCH保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピーク を与えたシ 本 物 質 保持時間52.0分にのみピークを
与え50.5分にはピークを与 えなかった。
3)ジクロロプロピル−N−フェニルカルバメートの調
製及びその旋光度 市販β−DCI七及び本物質1gとフェニルイソシアネ
ート0.9gを乾燥アセトン30rI11.トリエチル
アミン0.3dに加え、約3時間加熱還流し、そのジク
ロロプロピル−N−フェニルカルバメートを調製した後
、その比旋光度を測定した。
製及びその旋光度 市販β−DCI七及び本物質1gとフェニルイソシアネ
ート0.9gを乾燥アセトン30rI11.トリエチル
アミン0.3dに加え、約3時間加熱還流し、そのジク
ロロプロピル−N−フェニルカルバメートを調製した後
、その比旋光度を測定した。
市販β−DCH
〔α〕管=0.0″ C=1. メタノール本物質
〔α〕管= + 16.4° C=1. メタノール
以上の結果から本物質は、R−(十)−β−DCHであ
り、その光学純度は99%以上であることが判った。
以上の結果から本物質は、R−(十)−β−DCHであ
り、その光学純度は99%以上であることが判った。
実施例2
実施例1と同様に酵母エキス1.0%、ポリペプトン1
.0%、グリセリン2.0%、 pH7,0の培地21
を51容ジャーファーメンタ−に入れ常法どおり、加熱
滅菌後、O3−に−38株を接種し、実施例1と同じ条
件下で24時間培養した。
.0%、グリセリン2.0%、 pH7,0の培地21
を51容ジャーファーメンタ−に入れ常法どおり、加熱
滅菌後、O3−に−38株を接種し、実施例1と同じ条
件下で24時間培養した。
この培養物は、次に1001容ジャーファーメンタ−に
実施例1に示した合成培地80ρ及び炭酸カルシウム1
60(1,ラセミ体β−DCH320m、ポリペプトン
40(lと共に入れ、加熱滅菌のあと、常法どおり接種
し温度30℃1通気1401! /min 、回転数3
00rpmの条件下で培養しながら反応させた。
実施例1に示した合成培地80ρ及び炭酸カルシウム1
60(1,ラセミ体β−DCH320m、ポリペプトン
40(lと共に入れ、加熱滅菌のあと、常法どおり接種
し温度30℃1通気1401! /min 、回転数3
00rpmの条件下で培養しながら反応させた。
反応開始後48時間後に反応液は、遠心処理機にて、上
清液と菌体、沈澱物とに分離し、上清液から残存するβ
−DCHを、実施例1と同様に分取し、R−(十)−β
−DCH14B!1]を(qだ。
清液と菌体、沈澱物とに分離し、上清液から残存するβ
−DCHを、実施例1と同様に分取し、R−(十)−β
−DCH14B!1]を(qだ。
得られたR−(+)−β−DCHの比旋光度は[α19
=+1()、4° (C=1.0 、ジクロロメタン)
であり、実施例1と同様に分析した結果、光学純度は9
9%以上であった。
=+1()、4° (C=1.0 、ジクロロメタン)
であり、実施例1と同様に分析した結果、光学純度は9
9%以上であった。
(発明の効果)
本発明によれば土壌中より分離したシュードモナス属に
属する細菌を利用してラセミ休2,3−ジクロロー1−
プロパノールより簡便に且つ高純度に光学活性なR−(
+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを得ること
ができる。
属する細菌を利用してラセミ休2,3−ジクロロー1−
プロパノールより簡便に且つ高純度に光学活性なR−(
+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを得ること
ができる。
第1図は実施例1により1qられたR−(+)−2,3
−ジクロロ−1−プロパノールおよび市販品の同物質の
赤外線吸収スペクトルである。□は市販β−DCHを、
−m−はR−(+)−β−DCHを示す。
−ジクロロ−1−プロパノールおよび市販品の同物質の
赤外線吸収スペクトルである。□は市販β−DCHを、
−m−はR−(+)−β−DCHを示す。
Claims (2)
- (1)S−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノー
ル資化能を有するシュードモナス属に属する細菌、又は
その培養菌体を、培地中でラセミ体2,3−ジクロロ−
1−プロパノールと作用せしめてR−(+)−2,3−
ジクロロ−1−プロパノールを分取することを特徴とす
る微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製
法。 - (2)S−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノー
ル資化能を有するシュードモナス属に属する細菌、又は
その培養菌体を固定化して使用する特許請求の範囲第1
項記載の製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8086889A JPH02257894A (ja) | 1989-03-30 | 1989-03-30 | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8086889A JPH02257894A (ja) | 1989-03-30 | 1989-03-30 | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02257894A true JPH02257894A (ja) | 1990-10-18 |
Family
ID=13730324
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8086889A Pending JPH02257894A (ja) | 1989-03-30 | 1989-03-30 | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02257894A (ja) |
-
1989
- 1989-03-30 JP JP8086889A patent/JPH02257894A/ja active Pending
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