JPH0249718A - リポソーム製剤の精製法 - Google Patents
リポソーム製剤の精製法Info
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Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
- A61K9/1271—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers
- A61K9/1272—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers comprising non-phosphatidyl surfactants as bilayer-forming substances, e.g. cationic lipids or non-phosphatidyl liposomes coated or grafted with polymers
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は薬物を封入したリボソーム製剤の精製法に関す
る。
る。
従来の技術
リン脂質と薬物液とから薬物を封入したリボソームを形
成後は、一般に薬物封入リボソームと未封入の遊離薬物
とを分離する工程が必要である。
成後は、一般に薬物封入リボソームと未封入の遊離薬物
とを分離する工程が必要である。
その分離技術としては、従来、セロファン袋膜による透
析法〔細胞工学、λ、1136(1983)]、超遠心
分離法[Biochemistry 17.1792
(1978)〕、ゲルろ過性[Biochemistr
y 8 、344(1969))などが知られている。
析法〔細胞工学、λ、1136(1983)]、超遠心
分離法[Biochemistry 17.1792
(1978)〕、ゲルろ過性[Biochemistr
y 8 、344(1969))などが知られている。
上記のように、リボソームに未封入の遊離薬物を分離除
去する方法は、従来、いくつか見られるものの、いずれ
の方法も工業的スケールで実施するには不適当である。
去する方法は、従来、いくつか見られるものの、いずれ
の方法も工業的スケールで実施するには不適当である。
例えば、セロファン袋膜を用いる方法は、処理対象液で
あるリボソーム懸濁液を袋膜に小分する作業が煩雑なこ
と、長時間の処理時間を要すること、品質が一定しない
こと、無菌化製造することが容易でないことなどの欠点
がある。超遠心分離法の場合、超遠心受器にリボソーム
懸濁液を小分は分注し、遠心分離した後、上清を廃液し
て沈降物を回収するという操作を数回くり返して遊離薬
物を除去する方法であり、やはり操作が煩雑となり、無
菌化処理も困難なことが予想される。さらに、リボソー
ムの種類(例えば、SUV、REV)によっては、リボ
ソームが完全に沈降せず、上清の廃液時に流出し、完全
な回収が困難であることから、比較的粒径の大きいリボ
ソームに限られること、また、遠心沈降によるリボソー
ムの凝集が起こり、再分散後、凝集体を形成することが
懸念される。
あるリボソーム懸濁液を袋膜に小分する作業が煩雑なこ
と、長時間の処理時間を要すること、品質が一定しない
こと、無菌化製造することが容易でないことなどの欠点
がある。超遠心分離法の場合、超遠心受器にリボソーム
懸濁液を小分は分注し、遠心分離した後、上清を廃液し
て沈降物を回収するという操作を数回くり返して遊離薬
物を除去する方法であり、やはり操作が煩雑となり、無
菌化処理も困難なことが予想される。さらに、リボソー
ムの種類(例えば、SUV、REV)によっては、リボ
ソームが完全に沈降せず、上清の廃液時に流出し、完全
な回収が困難であることから、比較的粒径の大きいリボ
ソームに限られること、また、遠心沈降によるリボソー
ムの凝集が起こり、再分散後、凝集体を形成することが
懸念される。
一方、ゲルろ適法は、薬物を吸着するための吸管剤を充
填したカラムにリボソーム懸濁液を流通させ、未封入薬
物を吸着分離する方法であるが、カラム流通速度が比較
的遅いため、処理時間に長時間を要すること、カラム溶
離液により希釈されるので、後に濃縮工程が必要である
こと、吸着剤にリン脂質が吸着することも起こりうるの
で、空リボソーム等での前処理が必要であること、とき
には試料注入部位への物理的なブロッキングが認められ
ること、また、再使用するには吸着剤の再生処理(吸着
した薬物の再遊離除去処理)が必要であること、無菌化
処理(使用前の吸着剤の滅菌処理)が困難であることな
どの欠点がある。
填したカラムにリボソーム懸濁液を流通させ、未封入薬
物を吸着分離する方法であるが、カラム流通速度が比較
的遅いため、処理時間に長時間を要すること、カラム溶
離液により希釈されるので、後に濃縮工程が必要である
こと、吸着剤にリン脂質が吸着することも起こりうるの
で、空リボソーム等での前処理が必要であること、とき
には試料注入部位への物理的なブロッキングが認められ
ること、また、再使用するには吸着剤の再生処理(吸着
した薬物の再遊離除去処理)が必要であること、無菌化
処理(使用前の吸着剤の滅菌処理)が困難であることな
どの欠点がある。
発明が解決しようとする課題
上記のように薬物封入リボソーム製剤の製造法において
、未封入の遊離薬物を効率的に分離除去する方法はまだ
完成されていない。この工業的実施のためには、大量処
理が短時間で実施できること、無菌化処理が簡単にでき
ること、リボソーム製剤の製造と連結することができ一
貫した操作で、−日内に製品化できること、などの条件
をできるだけ満足する必要がある。
、未封入の遊離薬物を効率的に分離除去する方法はまだ
完成されていない。この工業的実施のためには、大量処
理が短時間で実施できること、無菌化処理が簡単にでき
ること、リボソーム製剤の製造と連結することができ一
貫した操作で、−日内に製品化できること、などの条件
をできるだけ満足する必要がある。
課題を解決するための手段
以上の点に鑑み、本発明者らは鋭意研究を重ねた結果、
リボソーム製剤の製造における未封入薬物の分離除去に
はホローファイバー型透析器が工業的有利に利用できる
ことを知り、本発明を完成した。
リボソーム製剤の製造における未封入薬物の分離除去に
はホローファイバー型透析器が工業的有利に利用できる
ことを知り、本発明を完成した。
すなわち、本発明は薬物を封入してなるリボソームと未
封入薬物とを含有してなる水性液をホローファイバーに
よる透析に付し、該ファイバーの外液中に未封入薬物を
分離除去することを特徴とするリボソーム製剤の精製法
である。
封入薬物とを含有してなる水性液をホローファイバーに
よる透析に付し、該ファイバーの外液中に未封入薬物を
分離除去することを特徴とするリボソーム製剤の精製法
である。
本発明でいう「薬物を封入してなるリボソームと未封入
薬物とを含有してなる水性液」は、水に薬物を封入して
なるリボソームが懸濁しており、同時にその水に薬物が
含有されている系であれば特に限定されない。一般には
リン脂質と薬物液を用いて自体公知の方法によって薬物
を封入するリボソームを調製した後に得られる液であっ
て、該ノポソームを懸濁し、かつ未封入の薬物を含有し
ている水性液が主対象となる。以下、本明細書では上記
の水性液を単に「リボソーム懸濁液」と称することもあ
る。薬物を封入するリボソーム製剤の調製において、現
在まで知られているリボソームの形成法では、未封入薬
物の発生は避は難い。そして、リボソーム製剤をD D
S (Drug DeliverySystem)等
の目的で使用する場合、未封入薬物は予め除去しておく
ことが一般に望ましいことが多い。本発明の適用対象と
なりうるリボソームの種類は、S U V (sn+a
ll unilaa+ellar vesicle
)。
薬物とを含有してなる水性液」は、水に薬物を封入して
なるリボソームが懸濁しており、同時にその水に薬物が
含有されている系であれば特に限定されない。一般には
リン脂質と薬物液を用いて自体公知の方法によって薬物
を封入するリボソームを調製した後に得られる液であっ
て、該ノポソームを懸濁し、かつ未封入の薬物を含有し
ている水性液が主対象となる。以下、本明細書では上記
の水性液を単に「リボソーム懸濁液」と称することもあ
る。薬物を封入するリボソーム製剤の調製において、現
在まで知られているリボソームの形成法では、未封入薬
物の発生は避は難い。そして、リボソーム製剤をD D
S (Drug DeliverySystem)等
の目的で使用する場合、未封入薬物は予め除去しておく
ことが一般に望ましいことが多い。本発明の適用対象と
なりうるリボソームの種類は、S U V (sn+a
ll unilaa+ellar vesicle
)。
M L V (multilamellar ves
icle)、 L U V (largeunila
mellar vesicle)、 RE V (
reverse−phaseevaporation
vesicle)あるいはS P L V (sta
bleplurila+nellar vesicl
e)のいずれてあってもよい。
icle)、 L U V (largeunila
mellar vesicle)、 RE V (
reverse−phaseevaporation
vesicle)あるいはS P L V (sta
bleplurila+nellar vesicl
e)のいずれてあってもよい。
次に、本発明に用いるホローファイバー型透析器は、半
透膜の材質からなり中空を有する繊維を一般に数千本を
束ねて形成し、かつ該繊維の外側に透析液を流通するよ
うに構成された装置をいう。
透膜の材質からなり中空を有する繊維を一般に数千本を
束ねて形成し、かつ該繊維の外側に透析液を流通するよ
うに構成された装置をいう。
この例としては、公知のホローファイバー型人工腎臓と
同様に構成された透析装置があげられる。
同様に構成された透析装置があげられる。
ホローファイバーの材質は、リボソーム形成材料である
リン脂質と反応もしくは吸着を起こさないことを基準に
天然高分子膜またはその加工処理膜、再生高分子膜ある
いは合成高分子膜のなかから選択すればよい。
リン脂質と反応もしくは吸着を起こさないことを基準に
天然高分子膜またはその加工処理膜、再生高分子膜ある
いは合成高分子膜のなかから選択すればよい。
具体的には、天然高分子膜またはその加工処理膜として
はセロファン、架橋コラーゲンか、再生高分子膜として
は各種のセルロース系膜、たとえば、酢酸セルロース(
例、酢化50%以上)、三酢酸セルロース、酢酸・酪酸
セルロース、ニトロセルロース、キュプロ・アンモニウ
ム・レーヨン膜等があげられる。
はセロファン、架橋コラーゲンか、再生高分子膜として
は各種のセルロース系膜、たとえば、酢酸セルロース(
例、酢化50%以上)、三酢酸セルロース、酢酸・酪酸
セルロース、ニトロセルロース、キュプロ・アンモニウ
ム・レーヨン膜等があげられる。
また合成高分子膜としては、ポリビニールアルコール、
ポリビニールピロリドン・メチレンビス。
ポリビニールピロリドン・メチレンビス。
4・フェニルイソシアネート(MDI)、ポリエチレン
グリコールMD[、ポリビスフェノール・カーボネイト
−ポリエチレンオキシド共重合体、ボッイオンコンプレ
ックス、ポリプロピレン、ボリビュルアセテート、ポリ
スルフォンカーボネイト、ポリエチレン、ポリアクリロ
ニトリル、ポリメチルメタクリレート膜等が検討されて
おり、これらの中でもポリビニルアルコールMDI、m
lコラーゲンポリビスフェノール・カーボネイト・ポリ
エチレンオキシドポリビニルアセテート、ポリスルフォ
ンカーボネイト、ポリアクリルニトリル、ポリメチルメ
タアクリレート膜が本発明では好ましく用いられる。
グリコールMD[、ポリビスフェノール・カーボネイト
−ポリエチレンオキシド共重合体、ボッイオンコンプレ
ックス、ポリプロピレン、ボリビュルアセテート、ポリ
スルフォンカーボネイト、ポリエチレン、ポリアクリロ
ニトリル、ポリメチルメタクリレート膜等が検討されて
おり、これらの中でもポリビニルアルコールMDI、m
lコラーゲンポリビスフェノール・カーボネイト・ポリ
エチレンオキシドポリビニルアセテート、ポリスルフォ
ンカーボネイト、ポリアクリルニトリル、ポリメチルメ
タアクリレート膜が本発明では好ましく用いられる。
ホローファイバー膜の透過性は尿素透析速度で表わした
ときの半減期が、セロファンと同等もしくは小であるこ
とが一般に好ましく、たとえばセロファンの半減期を1
とした場合、約0.2〜1の透過性を有するものが有利
に使用できる。
ときの半減期が、セロファンと同等もしくは小であるこ
とが一般に好ましく、たとえばセロファンの半減期を1
とした場合、約0.2〜1の透過性を有するものが有利
に使用できる。
本発明において、ホローファイバーの透過性を選択する
基準は、使用する薬物の分子の大きさ等とも関係するの
でこの点について説明する。
基準は、使用する薬物の分子の大きさ等とも関係するの
でこの点について説明する。
まず、本リボソーム製剤の製造に用いられる薬物の種類
は、水溶性薬物であってマイクロカプセル化して使用す
る可能性を有するものが対象となり得る。水溶性の程度
は、たとえば、オクタツール/水で示される分配率の対
数値が10以下であるものをいう。ホローファイバーは
、薬物を透過しリボソームを透過しないような孔径を有
するものを選択するが、薬物の透過性はファイバーの孔
径と薬物の分子の大きさに関係する。例えば、孔径6人
ではクレアチニン(分子ff1l l 3)、 l 5
人でビタミンB12(分子量1,350)、24人でビ
タミン(分子量5.200)、32人でチトクロームC
(分子ff124,000)、 46人でβ−イミ/グ
ロフリン(分子ff138,000)、 55人でアル
ブミン(分子ff160,000)等に相当し、透析性
の目安になる。ホローファイバー型透析器の中空繊維膜
として一般によく使用されるキュプロ・アンモニウム・
レーヨンの場合、孔径が約20人である。分子量3.0
00以下の薬物であれば約20人の孔径を有するホロー
ファイバー膜で有効に透析される。
は、水溶性薬物であってマイクロカプセル化して使用す
る可能性を有するものが対象となり得る。水溶性の程度
は、たとえば、オクタツール/水で示される分配率の対
数値が10以下であるものをいう。ホローファイバーは
、薬物を透過しリボソームを透過しないような孔径を有
するものを選択するが、薬物の透過性はファイバーの孔
径と薬物の分子の大きさに関係する。例えば、孔径6人
ではクレアチニン(分子ff1l l 3)、 l 5
人でビタミンB12(分子量1,350)、24人でビ
タミン(分子量5.200)、32人でチトクロームC
(分子ff124,000)、 46人でβ−イミ/グ
ロフリン(分子ff138,000)、 55人でアル
ブミン(分子ff160,000)等に相当し、透析性
の目安になる。ホローファイバー型透析器の中空繊維膜
として一般によく使用されるキュプロ・アンモニウム・
レーヨンの場合、孔径が約20人である。分子量3.0
00以下の薬物であれば約20人の孔径を有するホロー
ファイバー膜で有効に透析される。
本発明にお(′Xでは、分子量が約100〜約6万の薬
物が好ましい適用対象である。以下に、本発明方法にお
いて適用可能な薬物の例を分子量の範囲別に示す。
物が好ましい適用対象である。以下に、本発明方法にお
いて適用可能な薬物の例を分子量の範囲別に示す。
(1)分子ff1loo以上1000以下(例) シ
スプラチン(CDDP)、カルポプラチン、イブ口ブラ
チン、テトラプラチン等の金属錯体。
スプラチン(CDDP)、カルポプラチン、イブ口ブラ
チン、テトラプラチン等の金属錯体。
マイトマイシン、アドリアマイシン、アンサマイト/ン
、アクチノマイシンあるいはその誘導体(例、9−チオ
メイタンシン)、プレオマイシン、Ara−C,ダウノ
マイシン等の制癌抗生物質、5−FU。
、アクチノマイシンあるいはその誘導体(例、9−チオ
メイタンシン)、プレオマイシン、Ara−C,ダウノ
マイシン等の制癌抗生物質、5−FU。
メトトレキセート、TAC−788(イソブチル5−フ
ルオロ−6−(E)−フルフリリデンアミノオキン−1
,2,3,4,5,6−へキサヒドロ−2゜4−ジオキ
ソピリミジン−5−カルボキシレート。
ルオロ−6−(E)−フルフリリデンアミノオキン−1
,2,3,4,5,6−へキサヒドロ−2゜4−ジオキ
ソピリミジン−5−カルボキシレート。
特開昭59−13780号〕等の代謝拮抗剤、BCNU
、CCNU等のアルキル化剤;メルフアラン。
、CCNU等のアルキル化剤;メルフアラン。
ミドキサントロン等の抗腫瘍剤、ゲンタマイシン。
ストレプトマイシン、カナマイシン、ジベカシン。
バロモマイシン、力不ンドマインン、リビドマイシン、
トブラマイシン9アミカシン、フラジオマイシン、シソ
マイシン等のアミノ配糖系抗生物質、スルペニシリン、
メシリナム、カルベニシリン、ピペラジリン、チカルシ
リン等のペニシリン類;チェナマイシン類;セフオチア
ム、セフスロジン、セフメツキシム、セフメタゾール、
セファゾリン、セフオタキシム、セフオペラゾン、セフ
チゾキシム、モキソラクタム等のセファロスポリン類等
のβ−ラクタム系抗生物質、TRH類[TRH,TRH
アナログ(例、L−N−(2−オキソピペラジン−6カ
ルボニル)−L−ヒスチジル−し−チアゾリジン−4−
カルボキサミド、L−2−オキソオキサプリン−4−カ
ルボニル−し−ヒスチジル−しプロリンアミド、L−1
−ランス−5−メチル−2オキソオキサゾリジン−4−
カルボニル−し−ヒスチジル−し−プロリンアミド、L
−2−オキフチアゾリジン−4−カルボニル−し一ヒス
チジルーし一プロリンアミド、γ−ブチロラクトンーγ
−カルボニル−し−ヒスチジル−し−プロリンアミド、
2−ケトピペリジン−6−カルボニル−し−ヒスチジル
−し−プロリンアミド、3−オキソバーハイドロ−1,
4−チアジン−5−カルボニル−し−ヒスチジル−し−
プロリンアミド)これらT RH、T RHアナログの
アミド基における水素原子がメチル基、エチル基、n−
プロピル基、n−ブチル基、n−ヘキシル基、n−アミ
ル基、β−フェネチル基で置換された化合物、ならびに
これら化合物の酢酸塩、酒石酸塩など〕、エンケファリ
ン等のペプチド系薬物、アスピリン、ジフルニサール。
トブラマイシン9アミカシン、フラジオマイシン、シソ
マイシン等のアミノ配糖系抗生物質、スルペニシリン、
メシリナム、カルベニシリン、ピペラジリン、チカルシ
リン等のペニシリン類;チェナマイシン類;セフオチア
ム、セフスロジン、セフメツキシム、セフメタゾール、
セファゾリン、セフオタキシム、セフオペラゾン、セフ
チゾキシム、モキソラクタム等のセファロスポリン類等
のβ−ラクタム系抗生物質、TRH類[TRH,TRH
アナログ(例、L−N−(2−オキソピペラジン−6カ
ルボニル)−L−ヒスチジル−し−チアゾリジン−4−
カルボキサミド、L−2−オキソオキサプリン−4−カ
ルボニル−し−ヒスチジル−しプロリンアミド、L−1
−ランス−5−メチル−2オキソオキサゾリジン−4−
カルボニル−し−ヒスチジル−し−プロリンアミド、L
−2−オキフチアゾリジン−4−カルボニル−し一ヒス
チジルーし一プロリンアミド、γ−ブチロラクトンーγ
−カルボニル−し−ヒスチジル−し−プロリンアミド、
2−ケトピペリジン−6−カルボニル−し−ヒスチジル
−し−プロリンアミド、3−オキソバーハイドロ−1,
4−チアジン−5−カルボニル−し−ヒスチジル−し−
プロリンアミド)これらT RH、T RHアナログの
アミド基における水素原子がメチル基、エチル基、n−
プロピル基、n−ブチル基、n−ヘキシル基、n−アミ
ル基、β−フェネチル基で置換された化合物、ならびに
これら化合物の酢酸塩、酒石酸塩など〕、エンケファリ
ン等のペプチド系薬物、アスピリン、ジフルニサール。
インドメタシン、ジクロフェナック、フエンブフエン、
スハンダク、アセメタシン、イブプロフェン、ナブキセ
ン、ケトプロフェン、フェノプロフェン。
スハンダク、アセメタシン、イブプロフェン、ナブキセ
ン、ケトプロフェン、フェノプロフェン。
フェノプロフェン、チアプロフェン、プラノプロフェン
、メフェナム酸、トルフエナム酸、フルフェナム酸、フ
ェニルブタシン、オキシフェン、ブタシン、ピロキシカ
ム、メピルゾーム、エモルファゾン等抗炎症剤、鎮痛剤
、解熱剤そして各種プロスタグランジン及びその誘導体
。
、メフェナム酸、トルフエナム酸、フルフェナム酸、フ
ェニルブタシン、オキシフェン、ブタシン、ピロキシカ
ム、メピルゾーム、エモルファゾン等抗炎症剤、鎮痛剤
、解熱剤そして各種プロスタグランジン及びその誘導体
。
(2)分子量1000以上2000以下(例)グラミシ
ジンD、バシトラシン等のペプチド系抗生物質 (3)分子量2000以上5000以下(例) A
CT H、ポリミキシンB、コリスチン等ペプチド系物
質 (4)分子量5000以上10000以下(例)ヘパリ
ン、レンチナン、ザイモサン、PS−に等の多糖類、イ
ンスリン、成長ホルモン等のペプチドホルモン (5)分子量10000以上20000以下(M)
インターフェロン(α、β、γ)、インターロイキン2
.TNF等のリンホカイン類(6)分子量20000以
上60000以下(例) SOD 次に、ホローファイバーは、通常、その中空内径が約1
50〜250 am、膜厚さは約lO〜20μmの形状
を有するものが好ましく用いられる。
ジンD、バシトラシン等のペプチド系抗生物質 (3)分子量2000以上5000以下(例) A
CT H、ポリミキシンB、コリスチン等ペプチド系物
質 (4)分子量5000以上10000以下(例)ヘパリ
ン、レンチナン、ザイモサン、PS−に等の多糖類、イ
ンスリン、成長ホルモン等のペプチドホルモン (5)分子量10000以上20000以下(M)
インターフェロン(α、β、γ)、インターロイキン2
.TNF等のリンホカイン類(6)分子量20000以
上60000以下(例) SOD 次に、ホローファイバーは、通常、その中空内径が約1
50〜250 am、膜厚さは約lO〜20μmの形状
を有するものが好ましく用いられる。
ホローファイバー型の透析器として用いる場合、表面積
の大きな一本のファイバーを使用してもよいが、大量処
理の目的をより容易に達成するためには、小膜面積のホ
ローファイバーを複数個並列または直列に連結して用い
るのが有利である。さらに、ホローファイバーを多数集
束して用いるのが好ましく、例えば、内径200μmで
有効長23.5cmのホローファイバーを9900本集
束させることによって、透析面積1.・5I11′の透
析器が得られ、この程度の表面積を有するものが実用的
に利用しうる。集束させたホローファイバーをさらに直
列または並列に連結させることにより、透析面積の拡大
をはかってもよい。
の大きな一本のファイバーを使用してもよいが、大量処
理の目的をより容易に達成するためには、小膜面積のホ
ローファイバーを複数個並列または直列に連結して用い
るのが有利である。さらに、ホローファイバーを多数集
束して用いるのが好ましく、例えば、内径200μmで
有効長23.5cmのホローファイバーを9900本集
束させることによって、透析面積1.・5I11′の透
析器が得られ、この程度の表面積を有するものが実用的
に利用しうる。集束させたホローファイバーをさらに直
列または並列に連結させることにより、透析面積の拡大
をはかってもよい。
次に、本発明の透析処理法においては、ホローファイバ
ーの外側に液を流通させて、透過してきた薬物を系外に
除去させるが、この透析外液として単に水を用いてもよ
いが、そのリボソーム製剤の投与形態に合うような液を
用いるのが実用上、好都合である。すなわち、温血動物
が生理的に許容しつるような各種物質の水溶液、具体的
には、塩類(例、食塩)、糖類(例、ぶどう糖、マンニ
ット。
ーの外側に液を流通させて、透過してきた薬物を系外に
除去させるが、この透析外液として単に水を用いてもよ
いが、そのリボソーム製剤の投与形態に合うような液を
用いるのが実用上、好都合である。すなわち、温血動物
が生理的に許容しつるような各種物質の水溶液、具体的
には、塩類(例、食塩)、糖類(例、ぶどう糖、マンニ
ット。
ソルビット)、アミノ酸類(例、グリシン、アスパラギ
ン酸、グルタミン酸)などの水溶液あるいはこれらの2
種またはそれ以上の混合溶液があげられる。
ン酸、グルタミン酸)などの水溶液あるいはこれらの2
種またはそれ以上の混合溶液があげられる。
これらの中でも、生理食塩水は各種薬剤の静脈投与の際
に最も広く用いられている分散媒であり、本発明におい
ても有利に用いることができる。
に最も広く用いられている分散媒であり、本発明におい
ても有利に用いることができる。
本発明方法は、たとえば第1図(a)(b)に示す装置
を用いて、次のような順序で実施できる。
を用いて、次のような順序で実施できる。
第1図(a)に示す装置において、貯留容器■にリボソ
ーム懸濁液を仕込み、送液ポンプ■によって、送液バイ
ブ■を介して連結されているホローファイバー型透析器
■に液送される。該透析器■は第1図(b)に示される
構造を有し、ホローファイバー■は接着固定部@によっ
て集束された状態でケース■内に装着されており、該ケ
ース■は透析外液流入口■および流出口■を有し、ホロ
ーファイバーの外側に透析外液を通過させうる。
ーム懸濁液を仕込み、送液ポンプ■によって、送液バイ
ブ■を介して連結されているホローファイバー型透析器
■に液送される。該透析器■は第1図(b)に示される
構造を有し、ホローファイバー■は接着固定部@によっ
て集束された状態でケース■内に装着されており、該ケ
ース■は透析外液流入口■および流出口■を有し、ホロ
ーファイバーの外側に透析外液を通過させうる。
リボソーム懸濁液は、透析器■の流入口■に液送され、
ホローファイバー内に送り込まれ、流出口■から、送液
バイブ■を通して貯留容器■に戻る。一方、第1図(a
)の貯留容器■に仕込まれた透析外液は送液ポンプ■に
よって送液バイブ■を通して、前記のホローファイバー
型透析器の透析外液流入ロ■、流出ロ■、送液パイプ■
を通って、透析器外に流出させる。この透析外液は、必
要に応じて活性炭、イオン交換樹脂により薬物を吸着・
除去したのち、循環使用し得る。かくして、リボソーム
懸濁液中の遊離薬物はホローファイバーの膜を通過して
、透析外液中に溶解して、次第に系外に分離されていき
、精製されたリボソーム製剤を貯留容器■に回収するこ
とができる。
ホローファイバー内に送り込まれ、流出口■から、送液
バイブ■を通して貯留容器■に戻る。一方、第1図(a
)の貯留容器■に仕込まれた透析外液は送液ポンプ■に
よって送液バイブ■を通して、前記のホローファイバー
型透析器の透析外液流入ロ■、流出ロ■、送液パイプ■
を通って、透析器外に流出させる。この透析外液は、必
要に応じて活性炭、イオン交換樹脂により薬物を吸着・
除去したのち、循環使用し得る。かくして、リボソーム
懸濁液中の遊離薬物はホローファイバーの膜を通過して
、透析外液中に溶解して、次第に系外に分離されていき
、精製されたリボソーム製剤を貯留容器■に回収するこ
とができる。
本発明において、ホローファイバー内液の圧力を透析外
液のそれよりも高くなるように制御しながら透析を続け
ると、遊離薬物の除去効率を高めることができる。この
差圧は一般に300mmHgまでに制御されるが、好ま
しくは約50mmHg以下さらに好ましくは10〜50
mmHgとなるように制御される。差圧を50mn+H
g以上にすると、水の透過も大きくなり、リボソーム分
散液が濃縮されてくるので、未封入の遊離薬物の分散除
去と同時に濃縮を行なうことも可能である。ただ、過剰
の差圧下で濃縮を行なわせると、リボソーム内に封入さ
れている薬物が漏出してくることがあり好ましくない場
合がある。この差圧の制御方法は、たとえば第1図(a
)に示される装置において、リボソーム懸濁液送液バイ
ブ■および透析外液送液バイブ■にそれぞれ設置された
差圧調整バルブ[相]によって調整される。特に、高分
子量薬物(例、分子量1〜6万)の場合には、拡散透析
速度か遅いため、より効率を上げるためにホローファイ
バー膜内液を加圧して行なう中空繊維膜透析が有効であ
り、この場合、耐圧強度をもたせるために膜はやや厚い
方がよい。
液のそれよりも高くなるように制御しながら透析を続け
ると、遊離薬物の除去効率を高めることができる。この
差圧は一般に300mmHgまでに制御されるが、好ま
しくは約50mmHg以下さらに好ましくは10〜50
mmHgとなるように制御される。差圧を50mn+H
g以上にすると、水の透過も大きくなり、リボソーム分
散液が濃縮されてくるので、未封入の遊離薬物の分散除
去と同時に濃縮を行なうことも可能である。ただ、過剰
の差圧下で濃縮を行なわせると、リボソーム内に封入さ
れている薬物が漏出してくることがあり好ましくない場
合がある。この差圧の制御方法は、たとえば第1図(a
)に示される装置において、リボソーム懸濁液送液バイ
ブ■および透析外液送液バイブ■にそれぞれ設置された
差圧調整バルブ[相]によって調整される。特に、高分
子量薬物(例、分子量1〜6万)の場合には、拡散透析
速度か遅いため、より効率を上げるためにホローファイ
バー膜内液を加圧して行なう中空繊維膜透析が有効であ
り、この場合、耐圧強度をもたせるために膜はやや厚い
方がよい。
リボソーム懸濁液と透析外液は、第1図(a)のように
、自流方式で流通させるのが一般的であるが、並流方式
も場合によっては採用できる。ホローファイバー透析器
は■に示すような装置を、さらに直列または並列で複数
個連結させることにより、さらに大量処理に適した装置
を用いてもよい。
、自流方式で流通させるのが一般的であるが、並流方式
も場合によっては採用できる。ホローファイバー透析器
は■に示すような装置を、さらに直列または並列で複数
個連結させることにより、さらに大量処理に適した装置
を用いてもよい。
一方、より実用的には第2図に示されるように、リボソ
ーム製造装置と、たとえば第1図(b)に示されるホロ
ーファイバー透析装置とを直結させることによりクロー
ズドシステムで、リボソーム懸濁液の製造と未封入薬物
の分離除去を一貫処理でき、作業性を一段と向上させ得
る。この場合、ホローファイバー透析装置は、予め高圧
蒸気滅菌などの処理を施しておくことにより、精製され
たリボソーム製剤を無菌的に製造することができる。
ーム製造装置と、たとえば第1図(b)に示されるホロ
ーファイバー透析装置とを直結させることによりクロー
ズドシステムで、リボソーム懸濁液の製造と未封入薬物
の分離除去を一貫処理でき、作業性を一段と向上させ得
る。この場合、ホローファイバー透析装置は、予め高圧
蒸気滅菌などの処理を施しておくことにより、精製され
たリボソーム製剤を無菌的に製造することができる。
夫施■
以下に実験例及び実施例を示し、本発明を更に詳しく説
明するが、これらは何ら本発明を限定するものではない
。
明するが、これらは何ら本発明を限定するものではない
。
実験例1
(1) REVリボソームの製法
lQ丸底フラスコ中に、0.5mM 6−CF(6カル
ポキンフルオレセイン)の生理食塩水溶液300旋とリ
ン脂質(ジパルミトイルフォスファチジルコリン: ジ
ステアリルフォスファチジルコ’)7=9:1)6gを
クロロホルム: ジイソプロピルエーテル(1:1)の
混合溶媒300dに溶解した液を入れて混合し、次に浴
槽型超音波発生機(60W)で20分間超音波照射して
乳化した。これを、55°Cの水浴加温下で真空ロータ
リーエバポレーターによって有機溶媒を徐々に留去して
、6−CFを封入するREVリボソームの懸濁液を調製
した。本懸濁液にはリボソームに未封入の6−CFが溶
解されている。
ポキンフルオレセイン)の生理食塩水溶液300旋とリ
ン脂質(ジパルミトイルフォスファチジルコリン: ジ
ステアリルフォスファチジルコ’)7=9:1)6gを
クロロホルム: ジイソプロピルエーテル(1:1)の
混合溶媒300dに溶解した液を入れて混合し、次に浴
槽型超音波発生機(60W)で20分間超音波照射して
乳化した。これを、55°Cの水浴加温下で真空ロータ
リーエバポレーターによって有機溶媒を徐々に留去して
、6−CFを封入するREVリボソームの懸濁液を調製
した。本懸濁液にはリボソームに未封入の6−CFが溶
解されている。
(2)透析法
対照透析法: セロファン袋膜(内径2 cm、長さ1
I11,0.08m’、スペクトラポア、SI’ECT
RUMMEDICAL INDUSTRIES、IN
C,’!!りにリボソーム懸濁l夜300旙を充填し、
これを生理食塩水溶1ffl 10Q中に浸漬し、室温
下で撹拌しながら透析した。
I11,0.08m’、スペクトラポア、SI’ECT
RUMMEDICAL INDUSTRIES、IN
C,’!!りにリボソーム懸濁l夜300旙を充填し、
これを生理食塩水溶1ffl 10Q中に浸漬し、室温
下で撹拌しながら透析した。
本発明透析法: キュプラ・アンモニウム・レーヨン使
用のホローファイバー型透析器(中空の平均内径200
am、有効表面積08m2、TAFOBW型、テルモ
!2)を用いて、リボソーム懸濁液循環流量150滅/
分、透析外液(生理食塩水)の流量500滅/分で懸濁
液と透析外液との差圧がlommHgの条件でリボソー
ム懸濁液300旙を処理した。
用のホローファイバー型透析器(中空の平均内径200
am、有効表面積08m2、TAFOBW型、テルモ
!2)を用いて、リボソーム懸濁液循環流量150滅/
分、透析外液(生理食塩水)の流量500滅/分で懸濁
液と透析外液との差圧がlommHgの条件でリボソー
ム懸濁液300旙を処理した。
(3)透析分離除去の効果の測定
未封入の遊1!l6−CFの分離除去の効果は、分離除
去前のリボソーム懸濁液中の遊離6−CFの含量に対す
る分離除去後の同含量の百分率(残存率)で表わした。
去前のリボソーム懸濁液中の遊離6−CFの含量に対す
る分離除去後の同含量の百分率(残存率)で表わした。
(4)遊離5−CFの測定法
リボソーム懸濁液の0.1dを採取し、セントリザルト
(CenLrisart 1. S M 1324
9 +西独製)に入れ、生理食塩水1滅を加えて遠心分
離(2000rpm、 5分間)して、遊離6−CFの
みを含有する上清の一定量を蒸留水で100倍に希釈し
たのち、光路長1cmの石英セルに入れ、蛍光分光器に
よって蛍光強度(励起波長494 run、蛍光波長5
15nm)を測定し、検量線から遊離6−CFを定量し
た。検量線は、別に5−CFの標準液の蛍光強度を測定
し作成した。
(CenLrisart 1. S M 1324
9 +西独製)に入れ、生理食塩水1滅を加えて遠心分
離(2000rpm、 5分間)して、遊離6−CFの
みを含有する上清の一定量を蒸留水で100倍に希釈し
たのち、光路長1cmの石英セルに入れ、蛍光分光器に
よって蛍光強度(励起波長494 run、蛍光波長5
15nm)を測定し、検量線から遊離6−CFを定量し
た。検量線は、別に5−CFの標準液の蛍光強度を測定
し作成した。
(5)結果
対照透析法と本発明透析法をそれぞれ適用したときの、
処理時間とf3−CF残存率との関係を表1に示す。
処理時間とf3−CF残存率との関係を表1に示す。
表l
6−CF残存率(%)
時間(hr) 0 0.0g0.250.5 0.6
6 6 24 48 72本発明 100 25 3
<1.0 <0.1烙 表1の結果から明らかなように、セロファン袋膜透析法
が、リボソーム中へ未封入の遊離6−CFの残存率が7
2時間(3日)後に漸く0.8%以下になるのに対し、
本発明方法によると遊離6CFの残存率は40分間で0
.1%以下にすることができ、きわめて短時間で効率的
に分離除去できる。
6 6 24 48 72本発明 100 25 3
<1.0 <0.1烙 表1の結果から明らかなように、セロファン袋膜透析法
が、リボソーム中へ未封入の遊離6−CFの残存率が7
2時間(3日)後に漸く0.8%以下になるのに対し、
本発明方法によると遊離6CFの残存率は40分間で0
.1%以下にすることができ、きわめて短時間で効率的
に分離除去できる。
さらに、前記の本発明の透析法において、有効表面積を
1.5m”に増大したホローファイバーを使用した場合
は、処理時間20分でも6−CF残存率を0.1%以下
にすることができ、さらに処理時間を短縮することがで
きた。
1.5m”に増大したホローファイバーを使用した場合
は、処理時間20分でも6−CF残存率を0.1%以下
にすることができ、さらに処理時間を短縮することがで
きた。
実験例2
実験例1と同様の方法で調製した6−CF封入リボソー
ム懸濁液を用いて、超遠心分離(12000Xg、30
分間)法と本発明法とによる未封入6−CF液の分離効
果について比較した。
ム懸濁液を用いて、超遠心分離(12000Xg、30
分間)法と本発明法とによる未封入6−CF液の分離効
果について比較した。
その結果、超遠心分離法では、粒径の小さいリボソーム
が完全に沈降せずに上清中に浮遊し、傾斜分離操作中に
リボソームが流出し、損失量が大であった。また、分離
除去率は1回だけの超遠心分離処理では、5−CF残存
率が6.3%と大きく、洗浄と遠心分離の操作を3回繰
り返した後にはじめて1%以下となり、従って約90分
もの処理時間を要し、大量処理が困難であった。これに
対し、本発明法は全ての種類のリボソームに適用でき、
リボソームをほとんど損失することなく、きわめて短時
間に大量処理できた。
が完全に沈降せずに上清中に浮遊し、傾斜分離操作中に
リボソームが流出し、損失量が大であった。また、分離
除去率は1回だけの超遠心分離処理では、5−CF残存
率が6.3%と大きく、洗浄と遠心分離の操作を3回繰
り返した後にはじめて1%以下となり、従って約90分
もの処理時間を要し、大量処理が困難であった。これに
対し、本発明法は全ての種類のリボソームに適用でき、
リボソームをほとんど損失することなく、きわめて短時
間に大量処理できた。
実験例3
(1) シスプラチン(CDDP)封入のREVの調製
実験例1のREV調製法において、6−CFの代わりに
CD、D P(300mg)を用いて同様の方法により
CDDPを封入するリボソームを懸濁し、未封入のCD
DPを溶解する液を得た。
CD、D P(300mg)を用いて同様の方法により
CDDPを封入するリボソームを懸濁し、未封入のCD
DPを溶解する液を得た。
(2)透析法
対照透析法; 実験例1と同様に、セロファン袋膜にC
DDP封入リボソーム懸濁液300滅を充填し、同様の
処理をした。
DDP封入リボソーム懸濁液300滅を充填し、同様の
処理をした。
本発明透析法: 実験例1と同様の条件で、CDDP封
入リボソーム懸濁液の300−を処理した。
入リボソーム懸濁液の300−を処理した。
(3)透析分離除去の効果の測定
前記リボソーム懸濁液中の未封入の遊離0DDP含量を
、実験例1の第(3)項に示したと同様の操作で、分離
除去前及び分離除去後において定量し、残存率を測定し
た。
、実験例1の第(3)項に示したと同様の操作で、分離
除去前及び分離除去後において定量し、残存率を測定し
た。
(4)遊離CDDPの測定法
遊1llICDDPの測定は実験例1の第(4)項に示
したと同様の操作で、CDDP封入リボソームと遊離C
DDPをセントリザルト(Centrisart l
+5M13249.西独製)で分離し、遊離CDDPの
み含有する上清のO,ldを採取し、内部標準液0.1
TnIlを加えて、その一定量を高速液体クロマトグラ
フィー(HPLC)法によって定量した。
したと同様の操作で、CDDP封入リボソームと遊離C
DDPをセントリザルト(Centrisart l
+5M13249.西独製)で分離し、遊離CDDPの
み含有する上清のO,ldを採取し、内部標準液0.1
TnIlを加えて、その一定量を高速液体クロマトグラ
フィー(HPLC)法によって定量した。
+(P L Cの条件を以下に示す。
カラム、日立ゲル3013N 4 mmφX15cm
カラム温度:50°C 分gi液: 0.02M KH,PO4−HCl2(
pH流速+ 0.9d/分、 検出:UV210nm内
部標準液:ヒボキサンチン(4μg/d )水溶液表2
にその結果を示す。
カラム温度:50°C 分gi液: 0.02M KH,PO4−HCl2(
pH流速+ 0.9d/分、 検出:UV210nm内
部標準液:ヒボキサンチン(4μg/d )水溶液表2
にその結果を示す。
表2
CDDP残存率(%)
時間(hr) 0 0.080.250.33 0.
5 6 24 48 72この結果、セロファン袋膜透
析法の場合、未封入のi!t41ECDopの分離除去
残存率が、72時間後(3日)後にょうや<0.8%に
なるのに対し、本発明法によると30分後に0.2%に
することかでき、きわめて短時間に分離除去できる。
5 6 24 48 72この結果、セロファン袋膜透
析法の場合、未封入のi!t41ECDopの分離除去
残存率が、72時間後(3日)後にょうや<0.8%に
なるのに対し、本発明法によると30分後に0.2%に
することかでき、きわめて短時間に分離除去できる。
実施例1
シスプラチン(CDDP)の1 mg/rrdl生理食
塩水溶液500厳とリン脂質(ジパルミトイルフオスフ
ァチジルコリン: ジステアリルフオスファチシルコリ
ン=9:])IOgをクロロホルム゛ ジイソプロピル
エーテル(1:l)の混合溶媒に溶解した溶液500d
とから、CDDP封入REVリボソームを実験例1の方
法に準じて製造した。このリボソーム懸濁液をホローフ
ァイバー型透析器(有効表面積1.5m”、キュプラ・
アンモニウム・レーヨン、テルモ製TΔF 15W型
)を用い、リボソーム懸濁液のホローファイバー内循環
流量150+J/分、透析外液(生理食塩水)流ff1
500滅/分リボソーム懸濁液の循環液流出側系路と透
析外液側との差圧を110m1iHに調整した。この条
件下で0.5時間処理することにより、未封入の遊離C
DDPを分離除去できた。その結果、遊離のCDDPを
含有せず、CDDPの封入率20%のリボソーム製剤を
得た。
塩水溶液500厳とリン脂質(ジパルミトイルフオスフ
ァチジルコリン: ジステアリルフオスファチシルコリ
ン=9:])IOgをクロロホルム゛ ジイソプロピル
エーテル(1:l)の混合溶媒に溶解した溶液500d
とから、CDDP封入REVリボソームを実験例1の方
法に準じて製造した。このリボソーム懸濁液をホローフ
ァイバー型透析器(有効表面積1.5m”、キュプラ・
アンモニウム・レーヨン、テルモ製TΔF 15W型
)を用い、リボソーム懸濁液のホローファイバー内循環
流量150+J/分、透析外液(生理食塩水)流ff1
500滅/分リボソーム懸濁液の循環液流出側系路と透
析外液側との差圧を110m1iHに調整した。この条
件下で0.5時間処理することにより、未封入の遊離C
DDPを分離除去できた。その結果、遊離のCDDPを
含有せず、CDDPの封入率20%のリボソーム製剤を
得た。
実施例2
実施例1と同様の方法で製造した、CDDP封入RE
Vリボソーム懸濁液500滅を、ホローファイバー型透
析器(有効表面積1−5 m”+キュプラ・アンモニウ
ム・レーヨン、テルモ5JTAI−15W型)を用い、
リボソーム懸濁液の循環流出側系路の差圧調整バルブを
絞って圧力を高めて、透析外液側との差圧を70mmH
gにした。この条件下で03時間処理し、未封入の遊離
CDDPの残存率が05%以下で、リボソームを分散す
る液量が初期量の80%に濃縮されており、CDDPの
封入率20%のリボソーム製剤を得た。
Vリボソーム懸濁液500滅を、ホローファイバー型透
析器(有効表面積1−5 m”+キュプラ・アンモニウ
ム・レーヨン、テルモ5JTAI−15W型)を用い、
リボソーム懸濁液の循環流出側系路の差圧調整バルブを
絞って圧力を高めて、透析外液側との差圧を70mmH
gにした。この条件下で03時間処理し、未封入の遊離
CDDPの残存率が05%以下で、リボソームを分散す
る液量が初期量の80%に濃縮されており、CDDPの
封入率20%のリボソーム製剤を得た。
実施例3
前記実施例1と同様の方法で製造した、CDDP封入リ
ボソーム懸濁1夜100 C7を調製した。
ボソーム懸濁1夜100 C7を調製した。
この懸濁液をホローファイバー型透析器(有効表面積1
、5 m’、キュプラ中アンモニウム・レーヨン、テ
ルモ製TAF−15W型)を2本並列に連結した透析器
を用いて、リボソーム懸濁液側と透析外液側の差圧をI
OmmHgに調整した条件下で、未封入CDDPの分離
除去を行い、処理時間0.5時間で遊ficDDPを実
質的に含まず、CDDP封入率20%のリボソーム製剤
を得た。
、5 m’、キュプラ中アンモニウム・レーヨン、テ
ルモ製TAF−15W型)を2本並列に連結した透析器
を用いて、リボソーム懸濁液側と透析外液側の差圧をI
OmmHgに調整した条件下で、未封入CDDPの分離
除去を行い、処理時間0.5時間で遊ficDDPを実
質的に含まず、CDDP封入率20%のリボソーム製剤
を得た。
実施例4
CDDP 0.6gを溶解した生理食塩水溶液600
M1とリン脂質(ジバルミトイルフオスファチジルコリ
ン; ジステアリルフォスファチジルコリン−9+lN
2gを溶解した有n、溶媒溶液〔クロロホルム ジイ
ソプロピルエーテル(1・1)]600dとを真空乳化
機(アジホモミキサーM型、特殊機化工業製)に入れホ
モミキサー(回転数1500 Orpm、 30分間)
で乳化し、60’Cの加温及び減圧下でパドルミキサー
によって撹拌(80回転/分)しながら、徐々に有機溶
媒を留去してCDDPを封入するREVリボソームを製
造した。
M1とリン脂質(ジバルミトイルフオスファチジルコリ
ン; ジステアリルフォスファチジルコリン−9+lN
2gを溶解した有n、溶媒溶液〔クロロホルム ジイ
ソプロピルエーテル(1・1)]600dとを真空乳化
機(アジホモミキサーM型、特殊機化工業製)に入れホ
モミキサー(回転数1500 Orpm、 30分間)
で乳化し、60’Cの加温及び減圧下でパドルミキサー
によって撹拌(80回転/分)しながら、徐々に有機溶
媒を留去してCDDPを封入するREVリボソームを製
造した。
このリボソーム懸iQi& l l 50蔵をホローフ
ァイバー型透析器(有効表面積1.5Tl”、キュプラ
・アンモニウム・レーヨン、テルモ製TAF−15W型
)を用い、リボソーム懸濁液循環流出fi!150−/
分、透析外液に生理食塩水を用い流ff150〇−/分
で前者と後者の差圧をloIIImHgに調整した条件
によって分離除去し、1.2時間でCDDP封入率20
%のリボソーム製剤(1150me)を得た。
ァイバー型透析器(有効表面積1.5Tl”、キュプラ
・アンモニウム・レーヨン、テルモ製TAF−15W型
)を用い、リボソーム懸濁液循環流出fi!150−/
分、透析外液に生理食塩水を用い流ff150〇−/分
で前者と後者の差圧をloIIImHgに調整した条件
によって分離除去し、1.2時間でCDDP封入率20
%のリボソーム製剤(1150me)を得た。
実施例5
実施例4と同様のホローファイバー型透析器(透析表面
積1.5C、キュプラ・アンモニウム・レーヨン、テル
モ製TAF−15W型)を予め高圧蒸気滅菌した。この
透析器にリボソーム製造装置である真空乳化機(アジホ
モミキサーM型、特殊機化工業製)を直結し、実施例4
と同様の方法でリボソーム製造後直ちにクローズドシス
テム(第2図)で、リボソーム懸濁液をホローファイバ
ー内に循環させて透析外液に生理食塩水を用い、流量5
00d/分で、リボソーム分散液と透析外液との差圧を
lonusHgに調整した。この条件で未封入の遊離C
DDPを分離除去し、無菌化リボソームを一貫処理で製
造した。このとき、透析時間は1時間で、CDDP封入
率20%のリボソーム分散液(1000d)を得た。
積1.5C、キュプラ・アンモニウム・レーヨン、テル
モ製TAF−15W型)を予め高圧蒸気滅菌した。この
透析器にリボソーム製造装置である真空乳化機(アジホ
モミキサーM型、特殊機化工業製)を直結し、実施例4
と同様の方法でリボソーム製造後直ちにクローズドシス
テム(第2図)で、リボソーム懸濁液をホローファイバ
ー内に循環させて透析外液に生理食塩水を用い、流量5
00d/分で、リボソーム分散液と透析外液との差圧を
lonusHgに調整した。この条件で未封入の遊離C
DDPを分離除去し、無菌化リボソームを一貫処理で製
造した。このとき、透析時間は1時間で、CDDP封入
率20%のリボソーム分散液(1000d)を得た。
実施例6
卵黄レシチン1gを含有するクロロホルム溶液1ooy
を500成用ナス型コルベンに入れ、真空ロータリーエ
ハホレーターでクロロホルムを徐々に留去して、ガラス
壁にリン脂質の薄膜を形成させ、これに生理食塩水に溶
解した1mg/滅のCDDP60旙を加え、よく撹拌し
なからCDDPを封入し、CD’D P液に分散された
MLVを製造した。この方法でMLVを5バツチ製造し
、これらを合わせ得た300滅をホローファイバー型透
析器(キュプラ・アンモニウム・レーヨン、有効表面積
0.8m’、TAFO8型、テルモ製)を用い、リボソ
ーム循環流量150h、Il/分、透析外液流量(生理
食塩水)500y4/分で処理し、未封入の遊離CDD
Pを分離除去して、0.3時間で封入率3%のリボソー
ム分散液(300d)を得た。
を500成用ナス型コルベンに入れ、真空ロータリーエ
ハホレーターでクロロホルムを徐々に留去して、ガラス
壁にリン脂質の薄膜を形成させ、これに生理食塩水に溶
解した1mg/滅のCDDP60旙を加え、よく撹拌し
なからCDDPを封入し、CD’D P液に分散された
MLVを製造した。この方法でMLVを5バツチ製造し
、これらを合わせ得た300滅をホローファイバー型透
析器(キュプラ・アンモニウム・レーヨン、有効表面積
0.8m’、TAFO8型、テルモ製)を用い、リボソ
ーム循環流量150h、Il/分、透析外液流量(生理
食塩水)500y4/分で処理し、未封入の遊離CDD
Pを分離除去して、0.3時間で封入率3%のリボソー
ム分散液(300d)を得た。
実施例7
実施例1で用いられるl mg/1rtlc D D
Pの代わりに200dg/dの5−フルオロウラシル(
5−FU)を用いて、それ以外は実施例1と同じ方法で
、5−FUを封入するリボソーム懸濁液を得て、同じ透
析条件で未封入の遊離5−FUを分離除去して、0.5
時間処理で封入率22%のリボソーム分散1ff(30
0りを得た。
Pの代わりに200dg/dの5−フルオロウラシル(
5−FU)を用いて、それ以外は実施例1と同じ方法で
、5−FUを封入するリボソーム懸濁液を得て、同じ透
析条件で未封入の遊離5−FUを分離除去して、0.5
時間処理で封入率22%のリボソーム分散1ff(30
0りを得た。
実施例8
実施例1で用いられる1 mg/mlc D D Pの
代わりに、200dg/M/、のマイトマイシンC(M
MC)を用いて、それ以外は実施例1と同じ方法で、M
MCを封入するリボソーム製剤を得て、同じ透析条件で
未封入の遊I!lIMMCを分離除去して、0.5時間
処理で封入率24%のリボソーム分散液(300ne)
を得た。
代わりに、200dg/M/、のマイトマイシンC(M
MC)を用いて、それ以外は実施例1と同じ方法で、M
MCを封入するリボソーム製剤を得て、同じ透析条件で
未封入の遊I!lIMMCを分離除去して、0.5時間
処理で封入率24%のリボソーム分散液(300ne)
を得た。
実施例9
実施例1で用いられるl mg/lic D D Pの
代わりに、500dg/−のアクラルビシン(Ara−
C)を用いて、それ以外は実施例1と同じ方法で、Ar
a−Cを封入するリボソーム製剤を得て、同じ透析条件
で未封入の遊離Ara−Cを分離除去して、085時間
処理で封入率20%のリボソーム分散液(300成)を
得た。
代わりに、500dg/−のアクラルビシン(Ara−
C)を用いて、それ以外は実施例1と同じ方法で、Ar
a−Cを封入するリボソーム製剤を得て、同じ透析条件
で未封入の遊離Ara−Cを分離除去して、085時間
処理で封入率20%のリボソーム分散液(300成)を
得た。
実施例10
実施例1で用いられる1 mg/−〇 D D Pの代
わりに、200dg/dのビスクロルエチルニトロソウ
レア(BCNU)を用いて、それ以外は実施例1と同じ
方法で、BCNUを封入するリボソーム製剤を得て、同
じ透析条件で未封入の遊離BCNUを分離除去して、0
.5時間処理で封入率20%のリボソーム分散液(30
0d)を得た。
わりに、200dg/dのビスクロルエチルニトロソウ
レア(BCNU)を用いて、それ以外は実施例1と同じ
方法で、BCNUを封入するリボソーム製剤を得て、同
じ透析条件で未封入の遊離BCNUを分離除去して、0
.5時間処理で封入率20%のリボソーム分散液(30
0d)を得た。
実施例11
18gのDPPcと2gのDSPCを210ビーカー内
でクロロホルムとイソプロピルエーテルの1:1の混合
溶液1000dに溶解した。この溶液に浸透圧が生理食
塩水の浸透圧の1.9倍となるようにあらかじめ調製し
ておいた500dg/meのCDDP食塩水溶液を10
00d加え軽(混合した後、乳化機(312用ホモミキ
サー、特殊機化工業製)で60分間乳化しW10エマル
ジョンを作製した。このようにして得たエマルジョンを
同じホモミキサーを用いて、60°C減圧下で有機溶媒
を留去することによりLUVを得た。さらに得られたL
U Vの一部500滅をホローファイバー型透析器[
AM−Neo −2001型、脂化成製。
でクロロホルムとイソプロピルエーテルの1:1の混合
溶液1000dに溶解した。この溶液に浸透圧が生理食
塩水の浸透圧の1.9倍となるようにあらかじめ調製し
ておいた500dg/meのCDDP食塩水溶液を10
00d加え軽(混合した後、乳化機(312用ホモミキ
サー、特殊機化工業製)で60分間乳化しW10エマル
ジョンを作製した。このようにして得たエマルジョンを
同じホモミキサーを用いて、60°C減圧下で有機溶媒
を留去することによりLUVを得た。さらに得られたL
U Vの一部500滅をホローファイバー型透析器[
AM−Neo −2001型、脂化成製。
ファイバー長駒25cm、有効膜面積1.5m2]中に
、約150d/分の速度で注入し、透析外液として生理
食塩水をホローファイバーにかかる膜圧がOとなるよう
に、約500d/分の速度で流すことにより、遊離のC
DDPを透析除去し、CDDPが上記高張溶液と共に封
入されたリボソーム製剤を得た。
、約150d/分の速度で注入し、透析外液として生理
食塩水をホローファイバーにかかる膜圧がOとなるよう
に、約500d/分の速度で流すことにより、遊離のC
DDPを透析除去し、CDDPが上記高張溶液と共に封
入されたリボソーム製剤を得た。
発明の効果
本発明によると、薬物を封入し7てなるリボソームど未
封入薬物とを含有してなる水性液から、未封入薬物を実
用的に有利に分離除去でき、リボソーム製剤の精製法と
して極めて有用である。すなわち、従来、採用されてき
た透析袋膜法、遠心分離法、ゲルろ適法に比較して、短
時間に大量処理が可能であること、透析装置の殺菌処理
が可能でありかつリボソーム製造装置と直結したクロー
ズドシステムを採用しうろこと、などにおいて極めて実
用に適した方法である。また、本発明方法を適用しても
、リボソームに損傷を与えることがなく、封入された薬
物の漏出を起こさないので、この点でも優れた方法であ
る。
封入薬物とを含有してなる水性液から、未封入薬物を実
用的に有利に分離除去でき、リボソーム製剤の精製法と
して極めて有用である。すなわち、従来、採用されてき
た透析袋膜法、遠心分離法、ゲルろ適法に比較して、短
時間に大量処理が可能であること、透析装置の殺菌処理
が可能でありかつリボソーム製造装置と直結したクロー
ズドシステムを採用しうろこと、などにおいて極めて実
用に適した方法である。また、本発明方法を適用しても
、リボソームに損傷を与えることがなく、封入された薬
物の漏出を起こさないので、この点でも優れた方法であ
る。
第1図(a)は、本発明に用いる装置の1例を示す。図
中、■はリボソーム懸濁液貯留容器、■はリボソーム懸
濁液送液ポンプ、■および■はリボソーム懸濁液の送液
パイプ、■はホローファイバー型透析器、■は透析外液
貯留容器、■透析外液送液ポンプ、■および■は透析外
液送液パイプ、■は差圧調整バルブをそれぞれ示す。 第1図(b)は、第1図(a)中の■ホローファイバー
型透析器の拡大図を示す。■中空繊維膜(ホローファイ
バー)、o中空繊維集束接着固定部、0ケース、■リボ
ソーム懸濁液流入口(透析前)、■Jボソーム懸濁液流
出口(透析後)、■透析外液流入ロ、■透析外液流出口
をそれぞれ示す。 第2図は、リボソーム製造装置にホローファイバー型透
析器を直結させ、薬物を封入するリボソームの調製と未
封入の薬物の分離を無菌的に一貫して実施できる装置の
一例を示す。図中、■リボソーム製造装置(真空乳化機
)、■リボソーム懸濁液、■ホローファイバー型透析器
、■リボソーム懸濁液循環送液ポンプ、■透析外液送液
ポンプ、■リボソーム懸濁液送液パイプ、■透析外液送
液パイプ、■中空繊維内側圧調整バルブ、■透析外液側
圧調整バルブ、1Φ透析外液貯留タンクをそれぞれ示す
。 第1図(a) 亨1図(b) 代理人 弁理士 台 1) 弘
中、■はリボソーム懸濁液貯留容器、■はリボソーム懸
濁液送液ポンプ、■および■はリボソーム懸濁液の送液
パイプ、■はホローファイバー型透析器、■は透析外液
貯留容器、■透析外液送液ポンプ、■および■は透析外
液送液パイプ、■は差圧調整バルブをそれぞれ示す。 第1図(b)は、第1図(a)中の■ホローファイバー
型透析器の拡大図を示す。■中空繊維膜(ホローファイ
バー)、o中空繊維集束接着固定部、0ケース、■リボ
ソーム懸濁液流入口(透析前)、■Jボソーム懸濁液流
出口(透析後)、■透析外液流入ロ、■透析外液流出口
をそれぞれ示す。 第2図は、リボソーム製造装置にホローファイバー型透
析器を直結させ、薬物を封入するリボソームの調製と未
封入の薬物の分離を無菌的に一貫して実施できる装置の
一例を示す。図中、■リボソーム製造装置(真空乳化機
)、■リボソーム懸濁液、■ホローファイバー型透析器
、■リボソーム懸濁液循環送液ポンプ、■透析外液送液
ポンプ、■リボソーム懸濁液送液パイプ、■透析外液送
液パイプ、■中空繊維内側圧調整バルブ、■透析外液側
圧調整バルブ、1Φ透析外液貯留タンクをそれぞれ示す
。 第1図(a) 亨1図(b) 代理人 弁理士 台 1) 弘
Claims (3)
- (1)薬物を封入してなるリボソームと未封入薬物とを
含有してなる水性液をホローファイバーによる透析に付
し、該ファイバーの外液中に未封入薬物を分離除去する
ことを特徴とするリボソーム製剤の精製法。 - (2)ホローファイバー中の水性液圧を外液圧よりも高
くなるように制御する請求項(1)記載の方法。 - (3)差圧が300mmHg以下である請求項(2)記
載の方法。
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63-52249 | 1988-03-04 | ||
| JP5224988 | 1988-03-04 | ||
| JP63-110792 | 1988-05-07 | ||
| JP11079288 | 1988-05-07 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0249718A true JPH0249718A (ja) | 1990-02-20 |
| JP2916684B2 JP2916684B2 (ja) | 1999-07-05 |
Family
ID=26392844
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1050917A Expired - Fee Related JP2916684B2 (ja) | 1988-03-04 | 1989-03-01 | リポソーム製剤の精製法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0331505A1 (ja) |
| JP (1) | JP2916684B2 (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2003514832A (ja) * | 1999-11-19 | 2003-04-22 | ザイコス インク. | 微粒子製造に関する連続フロー法 |
| JP2005225770A (ja) * | 2004-02-10 | 2005-08-25 | Japan Health Science Foundation | 中空糸透析カラムを利用したリポソームの製造方法 |
| JP2007327511A (ja) * | 2006-06-06 | 2007-12-20 | Nok Corp | 防振マウント |
| JPWO2013011598A1 (ja) * | 2011-07-15 | 2015-02-23 | コニカミノルタ株式会社 | 溶解助剤を利用したリポソーム含有製剤およびその製造方法 |
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1989
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