JPH03180175A - 無血清培地 - Google Patents
無血清培地Info
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- JPH03180175A JPH03180175A JP1318439A JP31843989A JPH03180175A JP H03180175 A JPH03180175 A JP H03180175A JP 1318439 A JP1318439 A JP 1318439A JP 31843989 A JP31843989 A JP 31843989A JP H03180175 A JPH03180175 A JP H03180175A
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Classifications
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/0018—Culture media for cell or tissue culture
- C12N5/0043—Medium free of human- or animal-derived components
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
皮果±立赴且立立
本発明は基礎合成培地に無機鉄化合物を増殖因子として
添加してなる無血清培地に関する。本発明の培地は、動
物細胞の培地として用いられる。
添加してなる無血清培地に関する。本発明の培地は、動
物細胞の培地として用いられる。
従来立技歪
動物細胞を用いた物質生産において、細胞を培養する培
地の選択は非常に重要である。何故なら、生産物の生産
コストは培地の価格と、生産物の精製コストに依存する
からである。動物細胞の培養には、従来基礎合成培地に
10%程度の動物血清を添加した培地が用いられてきた
。しかし、血清の添加は培地のコストを引き上げるのみ
ならず、血清中に含まれる高濃度のタンパク質によって
、生産物の精製コストも引き上げる。そこで血清を含ま
ない無血清培地が開発され、現在では物質生産を目的と
する場合には無血清培地が一般的になってきている。無
血清培地には種々の細胞増殖因子が添加されている6代
表的なものは、インスリン、エタノールアミン、亜セレ
ン酸、トランスフェリン、アルブミン、リポタンパク質
、種々のサイトカイン類等である。このうち、培地のコ
ストおよび生産物の精製コストを引き上げる要因となり
うるのはタンパク質性の増殖因子である。したがって、
より低タンパク質、究極的には無タンパク質の無血清培
地の開発が必須である。
地の選択は非常に重要である。何故なら、生産物の生産
コストは培地の価格と、生産物の精製コストに依存する
からである。動物細胞の培養には、従来基礎合成培地に
10%程度の動物血清を添加した培地が用いられてきた
。しかし、血清の添加は培地のコストを引き上げるのみ
ならず、血清中に含まれる高濃度のタンパク質によって
、生産物の精製コストも引き上げる。そこで血清を含ま
ない無血清培地が開発され、現在では物質生産を目的と
する場合には無血清培地が一般的になってきている。無
血清培地には種々の細胞増殖因子が添加されている6代
表的なものは、インスリン、エタノールアミン、亜セレ
ン酸、トランスフェリン、アルブミン、リポタンパク質
、種々のサイトカイン類等である。このうち、培地のコ
ストおよび生産物の精製コストを引き上げる要因となり
うるのはタンパク質性の増殖因子である。したがって、
より低タンパク質、究極的には無タンパク質の無血清培
地の開発が必須である。
基礎合成培地に添加する増殖因子のうち、比較的高価な
のはトランスフェリンである。トランスフェリンの増殖
因子としての役割は、細胞への効率的な鉄イオンの供給
であると考えられている〔木材、小沢°トランスフェリ
ンの生長促進作用”最新医学、第40巻、第554−5
59頁1985年及び日本組織培養学会編、“細胞成長
因子”第152−155頁1980年参照〕、高後高径
よって鉄結合型トランスフェリンがエンドサイト−シス
によって、細胞内に取り込まれ、細胞内で鉄イオンを遊
離した後、再び細胞外へ再分泌される、トランスフェリ
ンのリサイクリングモデルが提唱されている。
のはトランスフェリンである。トランスフェリンの増殖
因子としての役割は、細胞への効率的な鉄イオンの供給
であると考えられている〔木材、小沢°トランスフェリ
ンの生長促進作用”最新医学、第40巻、第554−5
59頁1985年及び日本組織培養学会編、“細胞成長
因子”第152−155頁1980年参照〕、高後高径
よって鉄結合型トランスフェリンがエンドサイト−シス
によって、細胞内に取り込まれ、細胞内で鉄イオンを遊
離した後、再び細胞外へ再分泌される、トランスフェリ
ンのリサイクリングモデルが提唱されている。
〔新津、高径“°鉄の膜透過障害による貧血”別冊医学
の歩み、メディカルトピックス第3巻、第124頁19
88年参照〕、すなわち、トランスフェリンは鉄イオン
を細胞内に、くりかえし供給しているというものである
。これに対し、Me ther及びSa t。
の歩み、メディカルトピックス第3巻、第124頁19
88年参照〕、すなわち、トランスフェリンは鉄イオン
を細胞内に、くりかえし供給しているというものである
。これに対し、Me ther及びSa t。
はF12を基礎合成培地とした無血清培地において、ト
ランスフェリンの増殖促進効果は、高濃度の鉄イオンに
よって代替されることを示した(J、P、Mether
and G、H,5ato、エクスベリメント セルリ
サーチ(Exp、 Ce1l Res、)第1201!
、第191−200頁1979年参照〕、さらにKov
ar及びFranekはマウスハイブリドーマの無血清
培地において、RPM1l640培地を基礎合成培地と
し500μHという非常に高濃度のクエン酸鉄を加える
ことによって、ハイブリドーマの無タンパク質無血清培
養が可能であることを報告している〔バイオテクノロジ
ー レターズ(Biotechnology Lett
ers)第9巻、第259−264頁1987年参照)
、シかし高濃度の鉄イオンは、細胞に障害を与えること
が知られており、より低濃度で効率よく鉄を供給するこ
とのできる無血清培地の開発が望まれていた。
ランスフェリンの増殖促進効果は、高濃度の鉄イオンに
よって代替されることを示した(J、P、Mether
and G、H,5ato、エクスベリメント セルリ
サーチ(Exp、 Ce1l Res、)第1201!
、第191−200頁1979年参照〕、さらにKov
ar及びFranekはマウスハイブリドーマの無血清
培地において、RPM1l640培地を基礎合成培地と
し500μHという非常に高濃度のクエン酸鉄を加える
ことによって、ハイブリドーマの無タンパク質無血清培
養が可能であることを報告している〔バイオテクノロジ
ー レターズ(Biotechnology Lett
ers)第9巻、第259−264頁1987年参照)
、シかし高濃度の鉄イオンは、細胞に障害を与えること
が知られており、より低濃度で効率よく鉄を供給するこ
とのできる無血清培地の開発が望まれていた。
本発明は、上記した事情に鑑み、より効率的な鉄供給形
態を把握して、汎用性の高い無血清培地を開発すること
を目的とするものである。さらに、望ましくは比較的簡
単な構造の鉄化合物の添加により、その目的が達成され
ることが望ましい、これに加えて、基礎合成培地の選択
が重要である。
態を把握して、汎用性の高い無血清培地を開発すること
を目的とするものである。さらに、望ましくは比較的簡
単な構造の鉄化合物の添加により、その目的が達成され
ることが望ましい、これに加えて、基礎合成培地の選択
が重要である。
何故なら、増殖因子の活性の発現には細胞の基本代謝を
支える基礎合成培地の成分が重要な役割を果たすからで
ある。
支える基礎合成培地の成分が重要な役割を果たすからで
ある。
本発明者らは、種々の鉄剤および種々の基礎合成培地に
ついて検討した結果、最良の組合わせを見出し、本発明
汽完戒するに至った。すなわち、本発明は、低価格で容
易に調製可能な汎用性のある無血清培地を提供すること
を目的とする。
ついて検討した結果、最良の組合わせを見出し、本発明
汽完戒するに至った。すなわち、本発明は、低価格で容
易に調製可能な汎用性のある無血清培地を提供すること
を目的とする。
i ° るt−の
すなわち、本発明は、基礎合成培地に無機鉄化合物を増
殖因子として添加した無血清培地が、動物細胞を効率よ
く増殖させ、生産物の精製も容易で、汎用性も高いこと
を見出し、本発明を完成したものである。しかも本発明
の無血清培地は、低価格で容易に調製することができる
。
殖因子として添加した無血清培地が、動物細胞を効率よ
く増殖させ、生産物の精製も容易で、汎用性も高いこと
を見出し、本発明を完成したものである。しかも本発明
の無血清培地は、低価格で容易に調製することができる
。
本発明の基礎合成培地は、細胞の基本代謝を支える成分
、すなわち、アミノ酸、無機塩、Ii頬が主成分となっ
ている培地をいう。
、すなわち、アミノ酸、無機塩、Ii頬が主成分となっ
ている培地をいう。
しかし、特に本発明では、基礎合成培地ERDF (E
nriched RD F )と無機鉄化合物との組合
わせにより、動物細胞の長期培養が可能な、無血清低タ
ンパク質、あるいは完全無タンパク質培地を提供するこ
とができる。ERDFを基礎合成培地に用いたときに他
の基礎合成培地を用いたときに比べて著しく高い効果を
達成することができる。
nriched RD F )と無機鉄化合物との組合
わせにより、動物細胞の長期培養が可能な、無血清低タ
ンパク質、あるいは完全無タンパク質培地を提供するこ
とができる。ERDFを基礎合成培地に用いたときに他
の基礎合成培地を用いたときに比べて著しく高い効果を
達成することができる。
ERDFは、マウス主エローマNSIの増殖を指標にし
て、村上らによって開発された公知の無血清培養用基礎
合成培地である〔層化、第575−583頁1984年
参照)、ERDFは、RP M I 1640、ダルベ
ツコ変法最少必須培地(DMEM) 、およびハムF1
2を2 : 1 : 1 (vol/vol)の割合で
混合したものを基礎としくこの培地をRDFという)、
アミノ酸濃度を3倍に、グルコース濃度を2倍に、ビタ
ミン類も濃度を高め、さらに培地の浸透圧を通常の培地
より5%高い290m05m+に調整している。
て、村上らによって開発された公知の無血清培養用基礎
合成培地である〔層化、第575−583頁1984年
参照)、ERDFは、RP M I 1640、ダルベ
ツコ変法最少必須培地(DMEM) 、およびハムF1
2を2 : 1 : 1 (vol/vol)の割合で
混合したものを基礎としくこの培地をRDFという)、
アミノ酸濃度を3倍に、グルコース濃度を2倍に、ビタ
ミン類も濃度を高め、さらに培地の浸透圧を通常の培地
より5%高い290m05m+に調整している。
その組成を第1表に示す。
本発明におけるERDFはこのような厳密な組成をいう
ものではなく、その目的及び効果が達成される限り、成
分一部の削除、追加、変更あるいは使用量の変更は可能
である。また、ERDFにインスリン(I)、トランス
フェリン(T)、エタノ−ルアξン(E)、セレニウム
(S)(ITES)を加えたITES−ERDFは、汎
用性の高い培地としてマウスハイプリドーマ、あるいは
ヒトハイプリドーマの培養に用いられているが!TES
−ERDFはタンパク質濃度が高い(25μg/ld)
ため本発明には用いられない、ERDF中には0.8μ
Hの硫酸鉄(II)が含まれている。この鉄濃度ハ、E
RDF(7)原処方i’あるRPM1l640:DME
M: F12=2 : 1 : 1の混合培地と同じで
あり、最適化されているわけではない0本発明の無血清
培地は、ERDFを基礎合成培地とし、さらに培地中の
無機鉄濃度を高め、培地1l当り40〜100μHに強
化したIES−ERDF、あるいは無機鉄濃度を40〜
100μHに強化したES−ERDFが好ましい、また
、この培地中のタンパク質濃度を極めて低くし、例えば
基礎培地12中にタンパク質5mg以下にするかあるい
は無タンパク質培地として用いてもよい、このようにす
ると、タンパク質の含量が少く、細胞生産物の精製が容
易である。
ものではなく、その目的及び効果が達成される限り、成
分一部の削除、追加、変更あるいは使用量の変更は可能
である。また、ERDFにインスリン(I)、トランス
フェリン(T)、エタノ−ルアξン(E)、セレニウム
(S)(ITES)を加えたITES−ERDFは、汎
用性の高い培地としてマウスハイプリドーマ、あるいは
ヒトハイプリドーマの培養に用いられているが!TES
−ERDFはタンパク質濃度が高い(25μg/ld)
ため本発明には用いられない、ERDF中には0.8μ
Hの硫酸鉄(II)が含まれている。この鉄濃度ハ、E
RDF(7)原処方i’あるRPM1l640:DME
M: F12=2 : 1 : 1の混合培地と同じで
あり、最適化されているわけではない0本発明の無血清
培地は、ERDFを基礎合成培地とし、さらに培地中の
無機鉄濃度を高め、培地1l当り40〜100μHに強
化したIES−ERDF、あるいは無機鉄濃度を40〜
100μHに強化したES−ERDFが好ましい、また
、この培地中のタンパク質濃度を極めて低くし、例えば
基礎培地12中にタンパク質5mg以下にするかあるい
は無タンパク質培地として用いてもよい、このようにす
ると、タンパク質の含量が少く、細胞生産物の精製が容
易である。
タンパク質含量をを低くする場合、培地中に例えばイン
スリンを5μg/rd程度(無機鉄濃度を40〜100
μM ニ強化したIES−ERDF)とするとよい、ま
た、全く無タンパク質培地の場合は、例えば、無機鉄濃
度を40〜100μM/j!にて強化したBS−ERD
Fを用いるとよい、このような培地を用いても、ハイプ
リドーマ等の動物細胞の長期継代培養が可能である。さ
らに抗体産生量もITES−ERDFと差がない、IE
S−ERDFで培養可能な細胞は無機鉄強化ITES−
ERDFおよび無機鉄強化ES−ERDF中で継代培養
可能である。したがって、この無機鉄強化無血清培地は
SF3やNSI、あるいはX63のような親株由来のマ
ウスバイプリドーマの培養に適している。無機鉄として
は硫酸鉄、塩化鉄、硝酸鉄あるいはこれらの水和物を用
いることができる。
スリンを5μg/rd程度(無機鉄濃度を40〜100
μM ニ強化したIES−ERDF)とするとよい、ま
た、全く無タンパク質培地の場合は、例えば、無機鉄濃
度を40〜100μM/j!にて強化したBS−ERD
Fを用いるとよい、このような培地を用いても、ハイプ
リドーマ等の動物細胞の長期継代培養が可能である。さ
らに抗体産生量もITES−ERDFと差がない、IE
S−ERDFで培養可能な細胞は無機鉄強化ITES−
ERDFおよび無機鉄強化ES−ERDF中で継代培養
可能である。したがって、この無機鉄強化無血清培地は
SF3やNSI、あるいはX63のような親株由来のマ
ウスバイプリドーマの培養に適している。無機鉄として
は硫酸鉄、塩化鉄、硝酸鉄あるいはこれらの水和物を用
いることができる。
なお、本発明における培地の略称において、■はインス
リンを、Tはトランスフェリンを、Eはエタノールアミ
ンを、Sはセレニウムを表わし、ERDFO前に付した
表示はこれらの成分を含有することを示す(例 ES−
ERDF−エタノ−ルアξン及びセレニウムを含有する
ERDF)。
リンを、Tはトランスフェリンを、Eはエタノールアミ
ンを、Sはセレニウムを表わし、ERDFO前に付した
表示はこれらの成分を含有することを示す(例 ES−
ERDF−エタノ−ルアξン及びセレニウムを含有する
ERDF)。
また、培地のRDFのRはRP M I 1640を、
DはDMEMを、FはハムF12をそれぞれ表わし、R
DFがこれらの培地より構成されることを示す。
DはDMEMを、FはハムF12をそれぞれ表わし、R
DFがこれらの培地より構成されることを示す。
以下に、本発明を実施例にて具体的に説明する。
2施貫1
(1)細胞
Kawakami et al、が樹立した抗ウシラク
トフェリン抗体分泌マウスハイブリドーマHB 885
2を用いた〔ジャーナルオプデイリイ サイエンス(J
、Dairy Sci、)、第70巻、第752−75
9頁1987年参照〕、このハイブリドーマはIgG型
抗体を分泌する。細胞は10%FC3(フロー社)を含
むERDF(極東製薬)で継代培養した。細胞の継代培
養には、底面積25cjのティシュカルチャーフラスコ
(コーニング251025)を使用した。培養は5%炭
酸ガス/95%空気、湿度90%以上、37°Cで行っ
た。
トフェリン抗体分泌マウスハイブリドーマHB 885
2を用いた〔ジャーナルオプデイリイ サイエンス(J
、Dairy Sci、)、第70巻、第752−75
9頁1987年参照〕、このハイブリドーマはIgG型
抗体を分泌する。細胞は10%FC3(フロー社)を含
むERDF(極東製薬)で継代培養した。細胞の継代培
養には、底面積25cjのティシュカルチャーフラスコ
(コーニング251025)を使用した。培養は5%炭
酸ガス/95%空気、湿度90%以上、37°Cで行っ
た。
(2)ハイブリドーマの無血清培養
基礎合成培地には、インスリン(5μs/d、ノボ社二
相性インスリン)、エタノールアミン(20μH1シグ
マ社)およびセレニウム〈亜セレン酸ナトリウム、25
nM、シグマ社)(IES)、あるいはエタノールアミ
ンおよびセ・レニウム(ES)を添加したERDF (
極東製薬)を用いた。鉄剤としては、硫酸鉄(■)7水
和物、塩化鉄(■)、硝酸鉄(■)9水和物、(いずれ
も和光純薬)を用いた。HB8852を無血清培地へ移
行する際には、継代に用いたFe2の影響を避けるため
に、インスリン、トランスフェリン、エタノールアミン
、セレニウムを含むERDF (ITES−ERDF)
で1週間以上ハイブリドーマを継代培養した後、ITE
Sを含まないERDFで細胞を3回洗浄し、使用した。
相性インスリン)、エタノールアミン(20μH1シグ
マ社)およびセレニウム〈亜セレン酸ナトリウム、25
nM、シグマ社)(IES)、あるいはエタノールアミ
ンおよびセ・レニウム(ES)を添加したERDF (
極東製薬)を用いた。鉄剤としては、硫酸鉄(■)7水
和物、塩化鉄(■)、硝酸鉄(■)9水和物、(いずれ
も和光純薬)を用いた。HB8852を無血清培地へ移
行する際には、継代に用いたFe2の影響を避けるため
に、インスリン、トランスフェリン、エタノールアミン
、セレニウムを含むERDF (ITES−ERDF)
で1週間以上ハイブリドーマを継代培養した後、ITE
Sを含まないERDFで細胞を3回洗浄し、使用した。
(3)結果
^、 ■ によるバイブ −マ果
硫酸鉄(II)をIBS−ERDFに添加して、ハイブ
リドーマを培養した。ERDF中にもともと含まれる硫
酸鉄(II)の濃度は、0.8μHである。この実験で
は、IES−ERDFに硫酸鉄(II)をもとの鉄濃度
の5〜100倍(4〜80μM)添加した。第1図に示
すように、硫酸鉄(n)の添加量が増加するに従って、
ハイブリドーマの増殖が促進され、40μ阿あるいは8
0μHの硫酸鉄(■)を添加した培地中では、培養6日
後の細胞密度は?、2X10’/dニ達シタ。
リドーマを培養した。ERDF中にもともと含まれる硫
酸鉄(II)の濃度は、0.8μHである。この実験で
は、IES−ERDFに硫酸鉄(II)をもとの鉄濃度
の5〜100倍(4〜80μM)添加した。第1図に示
すように、硫酸鉄(n)の添加量が増加するに従って、
ハイブリドーマの増殖が促進され、40μ阿あるいは8
0μHの硫酸鉄(■)を添加した培地中では、培養6日
後の細胞密度は?、2X10’/dニ達シタ。
B、4 の のハイフ悄 −マ
鉄則の種類によって、ハイブリドーマの増殖が影響を受
けるか否かを検討するために、それぞれ80μHの硫酸
鉄(■)、塩化鉄(■)、硝酸鉄(■)、フェリシアン
酸カリウム(KsFe(CN)i)を添加したI ES
−ERDF中で、ハイブリドーマHB8852を培養し
た。第2図に示すように、培養3日後、6日後ともに、
硫酸鉄(II)添加培地中でのハイブリドーマの細胞密
度が最も高い値を示し、6日後には8.2X10’/−
に達した。塩化鉄(Ill)および硝酸鉄(Ill)も
硫酸鉄(II)と同程度の増殖促進効果を示した。6日
後の到達細胞密度はそれぞれ?、8 X 10’/−お
よび7.3 X 10’/−であった。
けるか否かを検討するために、それぞれ80μHの硫酸
鉄(■)、塩化鉄(■)、硝酸鉄(■)、フェリシアン
酸カリウム(KsFe(CN)i)を添加したI ES
−ERDF中で、ハイブリドーマHB8852を培養し
た。第2図に示すように、培養3日後、6日後ともに、
硫酸鉄(II)添加培地中でのハイブリドーマの細胞密
度が最も高い値を示し、6日後には8.2X10’/−
に達した。塩化鉄(Ill)および硝酸鉄(Ill)も
硫酸鉄(II)と同程度の増殖促進効果を示した。6日
後の到達細胞密度はそれぞれ?、8 X 10’/−お
よび7.3 X 10’/−であった。
ES−ERDFに80μHの硫酸鉄(II)を添加し、
ハイブリドーマHB8852を培養した。第3図に示す
ように、インスリンを含まない、完全無タンパク質培地
(E S Fe5O4)中でもハイブリドマは良好な
増殖を示した。
ハイブリドーマHB8852を培養した。第3図に示す
ように、インスリンを含まない、完全無タンパク質培地
(E S Fe5O4)中でもハイブリドマは良好な
増殖を示した。
裏嵐朋1
80μHの硫酸鉄(II)を添加したI ES−ERD
F、あるいはES−ERDPI(ldに、ハイブリドー
マをI X 10’/M1の密度で浮遊させ、ティシュ
カルチャーフラスコにまきこんだ、その後、3〜4日毎
に細胞密度を測定し、新鮮な培地で細胞密度をI X
10’/dとなるように希釈して培養を継続した。細胞
は17日日間化培養した。
F、あるいはES−ERDPI(ldに、ハイブリドー
マをI X 10’/M1の密度で浮遊させ、ティシュ
カルチャーフラスコにまきこんだ、その後、3〜4日毎
に細胞密度を測定し、新鮮な培地で細胞密度をI X
10’/dとなるように希釈して培養を継続した。細胞
は17日日間化培養した。
(2)因果
80μHの硫酸鉄(II)を含むI ES−ERDF、
あるいはES−ERDF中でハイブリドーマHB885
2を継代培養した結果を第4図に示す、 17日間の培
養中に細胞の増殖速度が低下することはなかった。マウ
スハイブリドーマHB8852は、インスリンのみをタ
ンパク質として含む、無機鉄強化rEs−ERDF、あ
るいはタンパク質を全く含まない無機鉄強化ES−ER
DF中で、インスリン及びトランスフェリンを含むIT
ES−ERDF中と同様に継代培養することが可能であ
った。
あるいはES−ERDF中でハイブリドーマHB885
2を継代培養した結果を第4図に示す、 17日間の培
養中に細胞の増殖速度が低下することはなかった。マウ
スハイブリドーマHB8852は、インスリンのみをタ
ンパク質として含む、無機鉄強化rEs−ERDF、あ
るいはタンパク質を全く含まない無機鉄強化ES−ER
DF中で、インスリン及びトランスフェリンを含むIT
ES−ERDF中と同様に継代培養することが可能であ
った。
HB8852を硫酸鉄(n)強化I ES−ERDF、
ES−ERDF、あるいは10%FC3添加ERDFに
0.5X10’/dの密度でティシュカルチャーフラス
コにまきこみ3日間培養後、培養上清中に分泌されたI
gGをELISA(イムニッケ亀ストリイ(Immun
ochemistry)第8巻、第871−874頁、
1971年参照〕で測定した。
ES−ERDF、あるいは10%FC3添加ERDFに
0.5X10’/dの密度でティシュカルチャーフラス
コにまきこみ3日間培養後、培養上清中に分泌されたI
gGをELISA(イムニッケ亀ストリイ(Immun
ochemistry)第8巻、第871−874頁、
1971年参照〕で測定した。
(2)因果
HB 8852を硫酸鉄(II)強化IES−ERDF
、硫酸鉄(II)強化BS−ERDF、アルイハlo%
FC3添加ERDF中で培養した。培養3日後に培地中
で分泌された抗体(IgG)fi度をELISAで測定
した結果を第2表に示す。標準として用いた10%FC
3添加ERDF中での細胞あたりの抗体分泌濃度は0.
216(μg/10’細胞)であった。
、硫酸鉄(II)強化BS−ERDF、アルイハlo%
FC3添加ERDF中で培養した。培養3日後に培地中
で分泌された抗体(IgG)fi度をELISAで測定
した結果を第2表に示す。標準として用いた10%FC
3添加ERDF中での細胞あたりの抗体分泌濃度は0.
216(μg/10’細胞)であった。
これに対して、硫酸鉄(II)強化I ES−ERDF
、および硫酸鉄(If)強化ES−ERDF中での抗体
産生量は、10%FC3添加ERDF中での産生量の2
倍以上に達した。
、および硫酸鉄(If)強化ES−ERDF中での抗体
産生量は、10%FC3添加ERDF中での産生量の2
倍以上に達した。
第2表
無血清培地中でのHB8852による抗体分泌量Pe5
o、強化 IES−ERDF 20.0 37.8 0.529 FeSO,強化 BS−ERDF 15.0 27.3 0.549 10%FC5添加 ERDF 14.0 64.8 0.216 発1影1九果 本発明は、基礎培地に無機鉄化合物を増殖因子として添
加してなる新規な無血清培地を提供するものである0本
発明の培地によると動物細胞を血清培地を使用したとき
と同様に効率よく培養することができ、血清培地を使用
したときよりも生産物の精製が容易であり、また培地の
調製も経済的に有利に行うことができる。
o、強化 IES−ERDF 20.0 37.8 0.529 FeSO,強化 BS−ERDF 15.0 27.3 0.549 10%FC5添加 ERDF 14.0 64.8 0.216 発1影1九果 本発明は、基礎培地に無機鉄化合物を増殖因子として添
加してなる新規な無血清培地を提供するものである0本
発明の培地によると動物細胞を血清培地を使用したとき
と同様に効率よく培養することができ、血清培地を使用
したときよりも生産物の精製が容易であり、また培地の
調製も経済的に有利に行うことができる。
特に、本発明では基礎合成培地としてERDFを用いる
と有利である。
と有利である。
第1図は、硫酸鉄(II)をIES−ERDFに添加し
てハイブリドーマを培養したときの硫酸鉄(n)濃度と
増殖促進効果との関係を示す。 第2図は、各種鉄塩を添加して培養したときの鉄塩の種
類とハイブリドーマの増殖促進効果との関係を示す。 第3図は、硫酸鉄(1l)を添加し無タンパク質培地中
で培養した時のハイブリドーマの増殖促進効果を示す。 第4図は、硫酸鉄(II)を添加し、継代培養したとき
のハイブリドーマの増殖促進速度の変化を示す。
てハイブリドーマを培養したときの硫酸鉄(n)濃度と
増殖促進効果との関係を示す。 第2図は、各種鉄塩を添加して培養したときの鉄塩の種
類とハイブリドーマの増殖促進効果との関係を示す。 第3図は、硫酸鉄(1l)を添加し無タンパク質培地中
で培養した時のハイブリドーマの増殖促進効果を示す。 第4図は、硫酸鉄(II)を添加し、継代培養したとき
のハイブリドーマの増殖促進速度の変化を示す。
Claims (9)
- (1)基礎合成培地に無機鉄化合物を増殖因子として添
加してなる無血清培地。 - (2)無血清培地がERDFである特許請求の範囲第(
1)項記載の無血清培地。 - (3)無機鉄化合物が硫酸鉄、硝酸鉄及び塩化鉄よりな
る群から選択された無機鉄化合物の1種又は2種以上で
ある特許請求の範囲第(1)項または第(2)項記載の
無血清培地。 - (4)無機鉄化合物の濃度が基礎合成培地1l当り40
マイクロモルから100マイクロモルである特許請求の
範囲第(1)項乃至第(3)項のいずれかに記載の無血
清培地。 - (5)基礎合成培地が増殖因子としてエタノールアミン
及び/又は亜セレン酸を含む培地である特許請求の範囲
第(1)項乃至第(4)項のいずれかに記載の無血清培
地。 - (6)基礎合成培地が1l中に5mg以下のタンパク質
を含む培地である特許請求の範囲第(1)項乃至第(5
)項のいずれかに記載の無血清培地。 - (7)タンパク質がインスリンである特許請求の範囲第
(1)項乃至第(6)項のいずれかに記載の無血清培地
。 - (8)基礎合成培地がタンパク質を全く含まない培地で
ある特許請求の範囲第(1)項乃至第(5)項のいずれ
かに記載の無血清培地。 - (9)基礎合成培地がトランスフェリンを全く含まない
培地である特許請求の範囲第(1)項乃至第(7)項の
いずれかに記載の無血清培地。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1318439A JPH03180175A (ja) | 1989-12-07 | 1989-12-07 | 無血清培地 |
| EP19900313098 EP0432952A1 (en) | 1989-12-07 | 1990-12-03 | Serum-free culture medium |
| US08/370,218 US5573937A (en) | 1989-12-07 | 1995-01-09 | Serum free culture medium |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1318439A JPH03180175A (ja) | 1989-12-07 | 1989-12-07 | 無血清培地 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH03180175A true JPH03180175A (ja) | 1991-08-06 |
Family
ID=18099157
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1318439A Pending JPH03180175A (ja) | 1989-12-07 | 1989-12-07 | 無血清培地 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0432952A1 (ja) |
| JP (1) | JPH03180175A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1998000521A1 (fr) * | 1996-06-28 | 1998-01-08 | The Green Cross Corporation | Milieux exempts de serum, methode de culture de cellules d'origine animale, et procede de production de substances physiologiquement actives |
| JP2009514532A (ja) * | 2005-11-02 | 2009-04-09 | ワイス | 哺乳動物細胞を適応させるための方法 |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR930006117B1 (ko) * | 1990-12-28 | 1993-07-07 | 재단법인 목암생명공학연구소 | 동물세포 배양용 고농도 배지 및 배양공정 |
| NZ255617A (en) * | 1992-09-04 | 1996-11-26 | Ericsson Telefon Ab L M | Tdma digital radio: measuring path loss and setting transmission power accordingly |
| CN120574782B (zh) * | 2025-07-29 | 2025-10-10 | 武汉普诺赛生命科技有限公司 | Raw264.7小鼠单核巨噬细胞白血病细胞专用完全培养基及应用 |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CS262822B1 (en) * | 1986-10-03 | 1989-04-14 | Kovar Jan | Synthetic medium for the cultivation of myelomic cells |
| NO162160C (no) * | 1987-01-09 | 1989-11-15 | Medi Cult As | Serumfritt vekstmedium, samt anvendelse derav. |
| CA2001550A1 (en) * | 1989-03-03 | 1990-09-03 | Aaron H. Heifetz | Very low protein nutrient medium for cell culture |
-
1989
- 1989-12-07 JP JP1318439A patent/JPH03180175A/ja active Pending
-
1990
- 1990-12-03 EP EP19900313098 patent/EP0432952A1/en not_active Ceased
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1998000521A1 (fr) * | 1996-06-28 | 1998-01-08 | The Green Cross Corporation | Milieux exempts de serum, methode de culture de cellules d'origine animale, et procede de production de substances physiologiquement actives |
| JP2009514532A (ja) * | 2005-11-02 | 2009-04-09 | ワイス | 哺乳動物細胞を適応させるための方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0432952A1 (en) | 1991-06-19 |
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